JP6454650B2 - TNFαポリペプチド阻害剤を発現する植物細胞及び薬学的に許容される担体を含む医薬組成物 - Google Patents
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Description
(i)TNF受容体のTNFα結合ドメインを含む第1のドメインと、
(ii)免疫グロブリンのFcドメインを含む第2のドメインと
を含み、第1のドメインおよび第2のドメインがそれぞれN末端からC末端へと順次、翻訳的に融合しており、キメラポリペプチドがTNFαに特異的に結合するTNFαポリペプチド阻害剤である。
記載される細胞を用意するステップと、
ポリペプチドを産生するように細胞を培養するステップと
を含む方法が提供される。
(i)TNF受容体のTNFα結合ドメインを含む第1のドメインと、
(ii)免疫グロブリンのFcドメインを含む第2のドメインと
を含むキメラポリペプチドであって、前記第1のドメインおよび前記第2のドメインがそれぞれN末端からC末端へと順次、翻訳的に融合しており、キメラポリペプチドがTNFαに特異的に結合するキメラポリペプチドである。
(i)TNF受容体のTNFα結合ドメインを含む第1のドメインと、
(ii)免疫グロブリンのFcドメインを含む第2のドメインと、
(iii)小胞体保留シグナルを含む第3のドメインと
を含むキメラポリペプチドであって、
第1のドメイン、第2のドメインおよび第3のドメインがそれぞれN末端からC末端へと順次、翻訳的に融合しており、TNFαに特異的に結合するキメラポリペプチドが提供される。
(i)アグロバクテリウム媒介遺伝子導入:Kleeら(1987)Annu.Rev.Plant Physiol.38:467〜486;KleeおよびRogers、Cell Culture and Somatic Cell Genetics of Plants、第6巻、Molecular Biology of Plant Nuclear Genes、Schell,J.およびVasil,L.K.編、Academic Publishers、サンディエゴ、カリフォルニア(1989)2〜25頁;Gatenby、Plant Biotechnology、Kung,S.およびArntzen,C.J.編、Butterworth Publishers、ボストン、マサチューセッツ州(1989)93〜112頁。
(ii)直接DNA取り込み:DNAのプロトプラストへの直接取り込みの方法を含むPaszkowskiら、Cell Culture and Somatic Cell Genetics of Plants、第6巻、Molecular Biology of Plant Nuclear Genes、Schell,J.およびVasil,L.K.編、Academic Publishers、サンディエゴ、カリフォルニア(1989)52〜68頁;Toriyama,K.ら(1988)Bio/Technology 6:1072〜1074。植物細胞の短い電気ショックによって誘導されるDNA取り込み:Zhangら Plant Cell Rep.(1988)7:379〜384。Frommら Nature(1986)319:791〜793。微粒子銃による植物細胞または組織へのDNAインジェクション、Kleinら Bio/Technology(1988)6:559〜563;MaCabeら Bio/Technology(1988)6:923〜926;Sanford、Physiol.Plant.(1990)79:206〜209;マイクロピペットシステムの使用による:Neuhausら、Theor.Appl.Genet.(1987)75:30〜36;NeuhausおよびSpangenberg、Physiol.Plant.(1990)79:213〜217、細胞培養液、胚またはカルス組織のガラス繊維または炭化ケイ素ウィスカ形質転換、米国特許第5,464,765号または発芽花粉によるDNAの直接インキュベーション、DeWetら、Experimental Manipulation of Ovule Tissue、Chapman,G.P.およびMantell,S.H.およびDaniels,W.編、Longman、ロンドン、(1985)197〜209頁およびOhta、Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1986)83:715〜719。
実施例
発現構築物および発現
prh TNFR2:FcをコードするcDNAをGENEART AG(Regensburg、ドイツ)によって最適化および合成した。コドン使用頻度をタバコ(Nicotiana tabacum)遺伝子のコドンバイアスに適合させた。IgG1部分をFc IgG1重鎖定量領域[ヒト(Homo sapiens]受託番号AEV43323からクローニングした。
タバコ(N.tabacum)BY2細胞での安定な発現
個々の細胞株を選択するために、高度希釈細胞懸濁液のアリコートを固体BY−2培地(Toshiyuki Nagata & Fumi Kumagai Methods in Cell Science 21:123〜127、1999)に散布した。次いで、小さなカルスが発生するまで、細胞を成長させた。次いで、各カルスを液体培地に再懸濁した。次いで、細胞をサンプリングし、prh TNFR2:FCについて評価した。約500個の細胞株を変性条件下ウエスタンブロットによってスクリーニングした(図4)。高い発現レベルの株を同じ方法によってさらに再分析してprh TNFR2:FC産生クローンの最高発現クローンを選択した。
ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)により、電界上でタンパク質をそのサイズにしたがって分離する。洗剤SDSの存在下でタンパク質は、その分子量の対数の一次関数として移動する。SDS−PAGE上でのprh TNFR2:FCの移動パターンおよび同定を、市販の分子量標準タンパク質(New England BioLabs;カタログ番号P7708S)およびCHO細胞で発現した市販の哺乳動物細胞由来Enbrel(Entanercept;Wyeth)と比較した。prh TNFR2:FCを、β−メルカプトエタノールを含む還元試料緩衝液または野生型抽出緩衝液のいずれかによって細胞から抽出した。野生型抽出上清を分析前に非還元試料緩衝液と混合した。予備混合電気泳動トリス−グリシン−SDS泳動緩衝液(Bio−Rad Laboratories)と共にCriterion(商標)細胞縦型電気泳動装置(Bio−Rad Lab.)を用いて電気泳動を行った。電気泳動後、タンパク質をポリアクリルアミドゲルからタンパク質結合ニトロセルロース膜(iBlot(商標))に移した。0.1%Tween20を含む5%ミルク緩衝液を用いて膜を室温で1時間ブロッキングした。分子のFc部分を同定するために、HRPに抱合したヤギ抗ヒトIgG(カタログ番号109−035−098、Jackson.)を使用した。TNFR2を検出するために、ウサギ抗TNFRII(ID:ab109853、Abcam)、引き続いてヤギ抗ウサギHRP(カタログ番号111−035−003、Jackson)を使用した。ECL検出キット(Pierce)を用いて検出を行った。prh TNFR2:FCの免疫反応性を市販のEnbrel(Entanercept;Wyeth)の免疫反応性と比較した。Molecular Imager Gel Doc XR System(Bio−Rad Laboratories)を用いてバンドを検出した。
prhTNFR2:FCを、イスラエル工科大学(Haifa、イスラエル)のSmoler Proteomics Centerでの配列決定解析のために送る。タンパク質をゲルから抽出し、2.8mM DTTで還元し(60℃で30分間)、100mM重炭酸アンモニウム中8.8mMヨードアセトアミドで修飾し(暗所、室温で30分間)、1:50の酵素対基質比で修飾トリプシン(Promega)またはキモトリプシンを含む10%ACNおよび10mM重炭酸アンモニウム中おいて37℃で一晩消化する。得られたペプチドの3%を、Reprosil逆相材料(Dr Maisch GmbH、ドイツ)を充填した0.075X200mm溶融シリカキャピラリー(J&W)での逆相クロマトグラフィーによって分離した。ペプチドを5〜45%の線形60分勾配および水中95%アセトニトリルと0.1%ギ酸で15分間、0.25μl/分の流量で溶出する。完全MSスキャン、引き続いて最初のMSスキャンから選択された7つの最も優勢なイオンの衝突誘起解離(CID)を繰り返し用いて、ポジティブモードのイオントラップ質量分析計(Orbitrap、Thermo)によってオンライン質量分析を行う。
チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞と植物細胞系で産生される糖タンパク質間の大きな違いは、グリコシル化プロファイルおよびグリカン構造である。予備的分析を行って、タンパク質に結合している種々のN結合型グリカン構造を特徴付けた。これらの結果を市販のEnbrelで見られるN−グリコシル化プロファイルの結果と比較する。O−結合型グリカンの存在およびグリカン部位分析を決定する。
結合ELISA:TNFα結合ELISAは、市販のTNFα検出ELISAキット(ヒトTNF−α;Hycult Biotech Inc.番号HK307)と市販の抗ヒトIgG抗体(ヤギ抗ヒトIgG FC特異的HRP;Sigma)の組み合わせである。このアッセイはprhTNFR2:FC結合活性についての定量的非放射性アッセイである。この結合ELISAにより、TNFRとIgGドメインの両方を含む機能的(TNFαに結合することができる)分子を検出することが可能になる。
A375細胞(ヒト黒色腫細胞)を培養培地(ATCC、番号30−2002、10%FBSを補充)中で懸濁培養した。104個/ウェルの細胞を96ウェルアッセイプレートに蒔き、アッセイ培地(ATCC、番号30−2002、5%FBSを補充)で一晩インキュベートした。組換えTNFα(2ng/ml、ProSpec、Rehovot、イスラエル)を異なる濃度(1.562〜100ng/ml)のprhTNFR2:FCまたは市販のEnbrel(Entanercept;Wyeth)の存在下37℃で2時間インキュベートした。インキュベーション後、混合溶液をアクチノマイシンD(0.8μg/ml)の存在下でA375細胞に添加し、加湿インキュベーター中37℃、5%CO2でさらに24時間インキュベートし、MTTアッセイ(Sigmaカタログ番号M5655)によってアポトーシスの定量化を決定した。プレートを570〜650nmで読み取り、TNFα誘導細胞毒性の阻害(%)を計算した。
prhTNFR2:FCを還元条件(図2A)および非還元条件(図2Bの野生型抽出)下で分析した。抗Fc抗体(上のパネル)および抗TNFR2抗体(下のパネル)を用いて、prhTNFR2:FC(1レーン)および市販のEnbrel(2レーン)を検出した。2種のタンパク質は、おそらくは植物細胞発現酵素と哺乳動物細胞発現酵素との間のグリコシル化パターンの差のために、移動特性のわずかな差を示す。
炎症性腸疾患(IBD)は、遺伝、免疫および環境因子によって媒介される慢性腸炎症状態である。毎年、人口の約0.2〜0.3%がIBDと診断されている。IBDは、消化管(GIT)内の慢性または再発性の免疫活性化および炎症の傾向によって特徴付けられる。この疾患は2つの症状を有する:クローン病(CD)、口から肛門までのGITのいずれかの位置に潜在的に関与する慢性炎症、および潰瘍性大腸炎(UC)、直腸で発症し、近位に拡大して結腸の変化する範囲に発症する炎症性障害。CDは、中でもサイトカインIL−12、IFN−γおよびTNFαを過剰産生するTH1免疫細胞応答によってより制御される。他方で、UCはTH2免疫細胞応答によって主に制御される。
インビボトリニトロベンゼン−スルホン酸(TNBS)モデルで証明されるようにPRX106発現細胞はIBDの症状を軽減するのに有効である。
倫理声明−全ての手順を実験動物の管理と使用に関する指針にしたがって厳密に行った。
雄Balb/cマウス、8〜9週齢を全ての実験に使用した。各実験群は5〜10匹のマウスを含んでいた。マウスはHarlan Laboratories、イスラエルから購入した。実験を開始する数日前に全てのマウスをSPFフリー部屋(自然細菌叢)に移した。
TNBSの直腸導入によってTNBSをマウスに誘導した[M.F.Neurath、I.Fussら:j exp.Med 182’1281〜1290(1995)]。暴露7日前にエタノール中1%TNBS100μLをマウスの腹部の毛を剃った皮膚上に塗ることによって、マウスを感作した。暴露の日に、マウスに、カテーテルを介して結腸の内腔にゆっくり注射して1%TNBS(Sigma Aldrich)120μLを与えた。TNBS処理後、タンパク質5μg(用量I)およびタンパク質30μg(用量II)に相当するPRX−106を発現しているBY−2細胞;同じ経口投与体積のPRX−106発現細胞のBY−2(−)対照細胞;および生理食塩水で、マウスを0日目から4日目まで毎日経口(PO)処理した。TNBS対照マウスはPBSのみを受けた。これらの動物の体重を1日1回監視した。0日目の体重から各日の体重を減じることによって体重減少を計算した。実験後、動物を屠殺し、解剖した。5日目に、血液試料を心臓穿刺によって回収し、凝固させ、次いで、遠心分離して血清サイトカインレベルを測定するための血清を得た(Curyら Cell Immunol.2013、282(1);66〜70)。実験は、3つの別々の実験で1群につき5〜15匹のマウスで行い;結果は全ての実験で同じパターンに従った。
組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞の経口投与を、TNBSの投与6時間後に開始した。マウスは350〜500μLに再懸濁した組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞を受けた。陰性対照は組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞の代わりに、同じ経口投与体積の宿主Mock植物細胞を受けた。経口投与は経管栄養によって行った。さらに2つの対照は未処理マウスおよび生理食塩水を受けたTNBS処理マウスであった。
製造業者の指示(R&D Systems、ミネアポリス、MN、米国)にしたがってELISAキットを用いて、サイトカインTNF−αおよびIL−10の血清レベルを測定した。
製造業者のマニュアルにしたがって、マウスサイトカイン抗体アレイ(R&D Systems、ミネアポリス、MN、米国)を用いて、サイトカイン含量の血清定性測定を行った。
パラフィン包埋結腸組織切片(5μm)を脱パラフィンし、再水和し、洗浄し、3%H2O2中でインキュベートし、ブロッキングした(Bar Selaら 2006)。スライドをIkB−α pSer32/Ser36抗体(Abcam)と共にインキュベートした。DAB基質キット(Thermo Scientific)またはZymed AEC基質キット(Zymed Laboratories)を用いて発色させ、引き続いてMayerのヘマトキシリンで対比染色した。一次抗体を添加していない対照は、全てのケースで低い背景染色しか示さないまたは背景染色を示さなかった。Bar−Selaら Histopathology.2006;49:188〜193にしたがってブロッキングを行った。
RPMI1640培地のマウスから脾臓を採取した。脾臓をカミソリの刃で方形切断し、引き続いて40μMナイロンフィルター(BD Falcon)に通過させることによって細胞懸濁液を調製した。脾細胞を抗マウスCD4(R&D Systems、ミネアポリス、MN、米国)および抗マウスCD25(R&D Systems、ミネアポリス、MN、米国)と共にインキュベートした。次いで、細胞を固定し、4℃で20分間透過処理し、次いで、透過処理緩衝液に希釈した抗マウスFoxp3(Mouse Regulatory T cell 3−Color Flow kit、R&D Systems、ミネアポリス、MN、米国)と共に30分間インキュベートした。10000個のCD4+細胞をFACSによって分析した。
Wallace肉眼的スコア化システム[W.Vermeulen、J.G.de Man、S.Nullens、P.A.Pelckmans、B.Y.de WinterおよびT.G.Moreels、「The use of colonoscopy to follow the inflammatory time course of TNBS colitis in rats」、Acta Gastro−Enterologica Belgica、第74巻、第2号、304〜311頁、2011]を用いて結腸の肉眼的外観を評価した。このスコア化システムでは、炎症を、潰瘍化、炎症および疾患の程度に基づいて0から10の以下のスケールで評価する:0=粘膜の正常な様相、1=潰瘍化のない限局性充血、2=潰瘍化、3=1つの部位での腸壁の肥厚を伴う潰瘍化、4=2つ以上の部位の潰瘍化および腸壁の肥厚、5=主な損傷部位が結腸の長さに沿って2cm未満広がる、および6〜10=損傷が2cm超広がる(スコアは損傷組織1センチメートル毎に1増加する)。
組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞の経口投与により、TNBS投与開始4日後に監視されるTNBS誘導体重減少が改善された(図7A〜図7B)。
(実施例3B)
インビボデキストラン硫酸ナトリウム誘発(DSS誘発)モデルで証明されるようにPRX106発現細胞はIBDの症状を軽減するのに有効である。
IBDのデキストラン硫酸ナトリウム誘発(DSS誘発)マウスモデルを炎症性腸疾患に有効な化合物に使用する。これは、下痢、血便、体重減少、粘膜潰瘍および大腸の短縮などのヒトUCで観察される症状と類似の症状を有する実験急性潰瘍性大腸炎モデルである。
全ての手順を実験動物の管理と使用に関する指針にしたがって厳密に行った。
雄C67/Blマウス、8〜9週齢を全ての実験に使用した。各実験群は10匹のマウスを含んでいた。マウスはHarlan Laboratories、イスラエルから購入した。実験を開始する数日前に全てのマウスをSPFフリー部屋(自然細菌叢)に移した。
通常の飲料水中1.5%(wt/vol)のDSS(試薬グレートDSS塩;分子質量=36〜50kD;MP Biomedicals)5日間の投与、引き続いて通常の水消費5日間によって大腸炎を誘発させた。組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞、ベクターのみを含むMock細胞または対照処理(生理食塩水)を経口投与する毎日の処理をDSS誘発24時間後に開始し、7日間行った。パンチ生検および組織学的スコアによってDSS処理5日後に結腸炎症を評価した。動物の体重を1日1回監視し、0日目の体重から毎日の体重を減じることによって体重減少を計算した。実験後、動物を屠殺し、解剖し、未処理結腸と比較した結腸長測定により結腸短縮を評価した。血液試料を心臓穿刺によって採取し、凝固させ、次いで、遠心分離して血清サイトカインレベルを測定するための血清を得た。
組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞の経口投与をDSS投与24時間後に開始した。マウスは、生理食塩水500μlに懸濁した組換えTNFR2:Fc(タンパク質30μgを含む)を発現している植物細胞を受けた。陰性対照は、組換えTNFR:Fcを発現している植物細胞に相当する体積の宿主Mock植物細胞を受けた。さらに2つの対照群は、生理食塩水を投与したDSS処理マウスおよび未処理マウスであった。経口投与は経管栄養によって行った。
パラフィン包埋結腸組織切片を光学顕微鏡検査のためにヘマトキシリンおよびエオシンで染色して結腸損傷および炎症を評価した。結腸全体からの試料を処理条件について盲検の病理学者によって病理学的に分析した。炎症の程度、陰窩損傷、炎症を伴う面積の割合および炎症の深さを含むスコア化システムを使用した。
マウス結腸に抗生物質を含むPBSを3回流し、縦軸に沿って開いた。その後、4mm2のパンチ生検を得て、抗生物質を補充したRPMI−1640培地で24時間インキュベートした。上清を回収し、サイトカイン発現について評価するまで−20℃に保った。製造業者のマニュアル(R&D Systems、ミネアポリス、MN、米国)にしたがってMagnetic Luminex Screening Assayを用いて結腸外植片による馴化培地でのサイトカイン含量の定性測定を行った。
製造業者の指示(R&D Systems、ミネアポリス、MN、米国)にしたがってMagnetic Luminex Screening Assayを用いて、サイトカインTNF−α、IL−6およびIL−10の血清レベルを測定した。
1.組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞の経口投与によりDSS誘導体重減少が改善した
短結腸をDSS処理マウスの結腸炎症の形態学的指標として使用することができることが確立されているので、結腸長を測定した。図14A〜図14Bに示されるように、DSSで処理したマウスの結腸長は、対照マウスと比べて有意に短縮した。組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞の経口投与群の結腸長は、DSS処理群の結腸長より有意に長かった。
図15は、組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞による経口処理後の腸炎症性サイトカインの統計学的に有意な減少を示している。
DSS大腸炎と関連する炎症性サイトカインの産生に対する組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞の経口投与の効果を評価した。図16に示されるように、DSSは血清中でのIL−6およびTNF−αなどの炎症性サイトカインのタンパク質発現を誘導したが、組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞の経口投与により、炎症性サイトカインの宿主タンパク質分泌が抑制された。これらの結果は、組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞の経口投与により、DSS誘発大腸炎モデルで炎症性サイトカインの産生が阻害されることを指摘した。
結腸炎症の重症度を組織学的検査によってさらに評価した(図17)。DSS投与後、結腸は貫壁性炎症および炎症細胞の激しい浸潤を示した。この細胞流入は、潰瘍化、杯細胞の喪失、および結腸の全体にわたる陰窩の著しい破壊に関連する。記録では、TNFR2:Fcを発現している植物細胞による経口処理によって、DSS誘発大腸炎の組織学的特徴が著しく改善した。結腸の組織学的検査により、DSSおよびMock処理結腸と比べて、組換えTNFR2:Fcを発現している植物細胞を経口投与した処理マウスの結腸で結腸損傷重症度が低下することが示された。
動物
ラット(SD、雌/9〜10週齢/n=6)を20時間の絶食に供し、次いで、組換えTNFR2:Fc(PRX−106)を発現している細胞および宿主BY2(−)を与えた(自由摂食)。摂食から2時間後、摂食量を測定した。若い哺乳ラット(SD、雄および雌/16日齢/n=6)を3時間絶食させ、組換えTNFR2:Fc(PRX−106)を発現している細胞および宿主BY2(−)細胞を(経管栄養により)与えた。
血液試料を各時点(例えば、0、1時間、2時間、4時間、6時間、8時間および24時間)で回収し、凝固させ、次いで、遠心分離して血清を得た。ヒトTNFRIIの血清レベルを製造業者の指示(R&D Systems、ミネアポリス、MN、米国)にしたがってELISAキットを用いて測定した。
血清中のTNFR2:Fcレベルを図18に示す。結果は、タンパク質を発現している植物細胞の経口投与後の血漿中のTNFR2:Fcレベルの上昇を示している。血清中のTNFR2:Fcレベルは8時間で検出され、24時間でまだ検出可能であった。宿主BY2(−)を与えられたラットの血清中のTNFR2:Fcレベルは検出不能であった。
動物
雄および雌のSDラット(Harlan Laboratories、イスラエル)、試験開始時に8週齢を標準的な実験室条件に入れた。試験開始時の平均体重は、およそ雄6.8gおよび雌6.3gであった。これらの動物に市販の齧歯動物の食餌(Teklad Certified Global 18% Protein Dietカタログ番号:2018SC)を与え、オートクレーブし、酸性化した飲料水(pH2.5〜3.5の間)を自由に入手できるようにした。
4つの群、1群当たり12匹のラット(6匹の雄および6匹の雌)を含む3つの投与群と1群当たり6匹のラット(3匹の雄および3匹の雌)を含む対照群を割り当てた。各性で、対照群は希釈緩衝液(0.2Mマンニトール)を受け、3つの処理群はTNFR2:Fc0.1、0.5および1mg/Kg体重の用量レベルのTNFR2:Fcを発現している細胞を受けた。細胞を要求される発現タンパク質量にしたがって分割した。各アリコートを市販の齧歯動物の食餌の粉末30gおよび希釈緩衝液と混合してペレットを作成した。対照ペレットは希釈緩衝液および市販の齧歯動物の食餌の粉末のみで作った。全ての動物に14日間ペレットを毎日経口で与えた。試験中、死亡率および全身の臨床観察を行い、体重を毎日監視した。二酸化炭素吸入による浅麻酔後の試験終了時(15日目)、全ての動物の後眼窩静脈叢から3つの血液試料を採取し、その後、動物を屠殺し、病理学を実施し、選択した器官を採取した。
14日間の安全性試験の間、有害臨床症状は記録されなかった。全ての血液パラメータは正常範囲内にあり、有意な逸脱はなかった。体重増加は持続的で正常であり、群間(処理または対照)で有意な差はなかった。細胞発現は安全であり、有害効果に耐えているようには見えなかった。生化学的パラメータまたは臨床症状に対する効果は見られなかった。肉眼での剖検観察では病理学的所見は明らかにならなかった。瀕死状態または重度の苦痛状態にある動物は見られなかった。重度の疼痛または体重減少を呈する動物は観察されなかった。
エドマン分解によるN末端配列決定
Alphalyse(デンマーク)uainf、ABI Procise 494シーケンサーで分析を行った。この手順は、エドマン分解化学によってタンパク質およびペプチドのN末端アミノ酸配列を決定する。エドマン分解は、アミノ酸残基を一度に1個切断し、クロマトグラフィーによって同定する循環的手順である。ここに循環的手順の3つのステップがある。ステップ1で、PITC試薬がアルカリ条件下でN末端アミノ基と結合する。ステップ2で、N末端残基が酸性媒体で切断される。ステップ3で、PITC結合残基がフラスコに移され、PTH残基に変換され、HPLCクロマトグラフィーによって同定される。次いで、次のN末端残基を同定するために次のサイクルが開始される。
配列はLPAQV(配列番号18)と決定された。
Smoler Proteomics Center(イスラエル工科大学、Haifa、イスラエル)で配列決定を行った。質量分析検出器と連結した逆相HPLCを用いて分析を行った。
タンパク質分解
分析試料を8M尿素、100mM重炭酸アンモニウム(ABC)に再懸濁し、引き続いて2.8mM DTTで還元し(60℃で30分間)、暗所中、周囲温度でさらに30分間100mM ABC中8.8mMヨードアセトアミドで修飾した。2M尿素、25mM ABC中1:50の酵素対基質比で修飾トリプシン(Promega)を用いて、タンパク質を37℃で一晩消化した。
トリプシンまたはキモトリプシンペプチドを、ステージチップ(自家製C18)を用いて脱塩し、残留緩衝液を蒸発させ、ペレットを0.1%(v/v)ギ酸に再懸濁した。得られたペプチド20ngを、Reprosil逆相材料(Dr Maisch GmbH、ドイツ)を充填した0.075X200mmヒューズドシリカキャピラリー(J&W)での逆相液体クロマトグラフィーによって分解した。ペプチドを5〜45%の線形60分勾配、引き続いて水中95%アセトニトリルと0.1%ギ酸で15分間、0.25μL/分の流量で溶出した。全MSスキャン、引き続いて最初のMSスキャンから選択された7つの最も優勢なイオンの衝突誘起解離(CID)を繰り返し用いて、ポジティブモードのイオントラップ質量分析計(Orbitrap、Thermo)によってオンライン質量分析を行った。具体的なタンパク質由来のデータベースを用いてDiscoverソフトウェアバージョン1.3ソフトウェアを用いて質量分析データを分析した。
配列をエタネルセプト配列のペプチド配列と比較した。同定された配列を以下の表Vに提示する。基準配列の84.8%被覆度が提示される(緑色、図20参照)。
Claims (21)
- TNFαポリペプチド阻害剤を発現する植物細胞及び薬学的に許容される担体を含む医薬組成物であって、
前記TNFαポリペプチド阻害剤は、対象のTNFα関連の医学的状態を治療するために使用される可溶性TNFRフラグメントを含むと共に、前記可溶性TNFRフラグメントが
(i)配列番号2に示されるTNF受容体のTNFα結合ドメインを含む第1のドメインと、
(ii)配列番号9に示される免疫グロブリンのFcドメインを含む第2のドメインとを有するキメラポリペプチドの一部であり、
前記第1のドメインおよび前記第2のドメインがそれぞれN末端からC末端へと順次、翻訳的に融合しており、
前記Fcドメイン又はその断片は、新生児型Fc受容体(FcRn)の結合部位を含み、前記キメラポリペプチドがTNFαに特異的に結合してTNFα活性を阻害する、
経口投与用に製剤化された医薬組成物。 - 前記キメラポリペプチドが小胞体保留シグナルを含む第3のドメインをさらに含み、前記第1のドメイン、第2のドメインおよび第3のドメインがそれぞれN末端からC末端へと順次、翻訳的に融合している、請求項1記載の医薬組成物。
- 前記TNFαポリペプチド阻害剤は前記第1のドメインとN末端で翻訳的に融合した小胞体シグナルペプチドをコードするさらなるドメインを含む、請求項1または2に記載の医薬組成物。
- 前記シグナルペプチドが植物シグナルペプチドである、請求項3に記載の医薬組成物。
- 前記植物シグナルペプチドが配列番号4に示される通りである、請求項4に記載の医薬組成物。
- 前記TNFαポリペプチド阻害剤は、前記第2のドメインと、C末端で翻訳的に融合した小胞体保留シグナルをコードするさらなるドメインを含む、請求項3から5のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記小胞体保留シグナルがSEKDEL(配列番号16)である、請求項6に記載の医薬組成物。
- 前記キメラポリペプチドが配列番号7に示される通りである、請求項1から7のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記キメラポリペプチドが配列番号6、7、204または205に示される通りである、請求項2に記載の医薬組成物。
- 前記キメラポリペプチドがTNFα誘導アポトーシスを阻害することができる、請求項1から9のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記TNFαポリペプチド阻害剤は植物特異的グリカンを含む、請求項1から10のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記植物特異的グリカンがコアキシロースおよびコアα−(1,3)フコースからなる群から選択される、請求項11に記載の医薬組成物。
- 前記TNFαポリペプチド阻害剤はシアル酸残基を欠く、請求項1から12のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記TNFαポリペプチド阻害剤はTNFα誘導アポトーシスを阻害することができる、請求項1から13のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記植物細胞はタバコ(Nicotiana tabacum)植物細胞である、請求項1から14のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記タバコ(Nicotiana tabacum)植物細胞がブライトイエロー(BY−2)細胞である、請求項15記載の医薬組成物。
- 前記植物細胞は凍結乾燥されている、請求項1から16のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記TNFα関連の医学的状態は炎症性疾患である、請求項1から17のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記TNFα関連の医学的状態は自己免疫疾患である、請求項1から17のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記TNFα関連の医学的状態は、
炎症性腸疾患、敗血症、内毒素ショック、AIDS、子宮内膜症、乾癬、心血管疾患、がん、白斑、関節炎、強直性脊椎炎、ウェゲナー病(肉芽腫症)、短腸症候群、慢性閉塞性肺疾患(COPD)、C型肝炎、喘息、悪液質、アトピー性皮膚炎、アルツハイマー病、肝性脳症、ADHD、慢性疲労症候群、疱疹状皮膚炎(デューリング病)、接触性皮膚炎、蕁麻疹(慢性突発性蕁麻疹を含む)、尋常性天疱瘡、水泡性類天疱瘡、重症筋無力症、サルコイドーシス、強皮症、高IgE症候群、多発性硬化症、突発性好酸球増加症候群およびアレルギーからなる群から選択される、請求項1から17のいずれか一項に記載の医薬組成物。 - 前記TNFα関連の医学的状態は、
関節リウマチ、炎症性腸疾患、骨関節炎、強直性脊椎炎、尋常性乾癬、若年性特発性関節炎、クローン病、大腸炎からなる群から選択される、請求項1から17のいずれか一項に記載の医薬組成物。
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