JP6443344B2 - スクリーニングおよび薬物開発のための新規キメラポリペプチド - Google Patents
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Description
(i)上述のキメラポリペプチドを提供する工程と、
(ii)試験化合物を提供する工程と、
(iii)キメラポリペプチドに含まれるGPCRに対する試験化合物の選択的な結合を評価する工程と
を含む、方法である。
具体的な実施形態の観点で、特定の図を参照しつつ本発明を記載するが、本発明は、これらに限定されず、特許請求の範囲によって限定される。特許請求の範囲の任意の引用符号は、この範囲を限定するものと解釈すべきではない。記載される図面は、単に模式図であり、非限定的である。図面において、幾つかの要素の大きさは、強調されている場合があり、説明の目的のために、縮尺通りに描かれてはいない。「を含む(comprising)」をいう用語が本明細書および特許請求の範囲で使用される場合、他の要素または工程を除外するものではない。不定冠詞または定冠詞を使用する場合に、単数形の名詞(例えば、「1つの(a)」または「1つの(an)」、「前記(the)」)に言及するとき、他の内容が具体的に述べられていない限り、この名詞の複数形も含む。さらに、本明細書および特許請求の範囲における第1、第2、第3などの用語は、同様の要素を区別するために用いられ、必ずしも連続した順序または番号順の順序を記載するためのものではない。このように使用される用語は、適切な状況下で互いに置き換え可能であり、本明細書に記載される本発明の実施形態は、本明細書に記載または説明されている以外の他の順序で操作することができることが理解されるべきである。
キメラポリペプチド
本発明の第1の態様は、結合ドメインに融合したGタンパク質共役受容体(GPCR)を含み、前記結合ドメインが、GPCRに指向するか、および/またはGPCRに特異的に結合するキメラポリペプチドに関する。従って、本発明は、少なくとも2つの部分、特に、少なくともGPCR部分と結合ドメイン部分との融合タンパク質であり、前記結合ドメインが、GPCRに指向するか、および/またはGPCRに特異的に結合するキメラポリペプチドを提供する。
本発明のキメラポリペプチドは、少なくとも2つのポリペプチド成分を含み、この1つがGPCRである。GPCRとして、目的の任意のGPCRを使用してもよい。当業者は、意図した用途(本明細書にさらに記載されるような)に依存して、適切なGPCRを選択することができる。同じ株において、意図した用途に依存して、例えば、真菌(酵母を含む)、線虫、ウイルス、昆虫、植物、鳥(例えば、ニワトリ、シチメンチョウ)、爬虫類、または哺乳動物(例えば、マウス、ラット、ウサギ、ハムスター、アレチネズミ、イヌ、ネコ、ヤギ、ブタ、ウシ、ウマ、クジラ、サル、ラクダまたはヒト)のような任意の有機体に由来するGPCRを選択してもよい。
本発明のキメラポリペプチドは、少なくとも2つのポリペプチド成分を含み、この1つがGPCRであり(本明細書で上記で定義されるような)、他方が、GPCRに指向し、および/またはGPCRに特異的に結合する結合ドメインである。
好ましい種類の結合ドメイン、特に、本発明のキメラポリペプチドの一部を生成する免疫グロブリン一本鎖可変ドメインは、GPCRの機能的な立体構造状態に指向するか、および/またはこれに特異的に結合する(本明細書で上記で記載されるように)。立体構造選択的な結合ドメイン、特に、免疫グロブリン一本鎖可変ドメインは、幾つかの様式で特定することができ、VHHのための非限定的な様式で、本明細書に以下に示す。好ましくは、立体構造選択的な結合ドメインは、機能的な立体構造状態の(場合により、受容体リガンドに結合した)GPCRを用いてラクダを免疫化する工程の後、GPCR(例えば、活性な立体構造状態のGPCRに指向する抗体を高めるようなアゴニストが結合したGPCR)に固有の立体的エピトープを動物の免疫系にさらすために選択されてもよい。場合により、特定のリガンドを、化学的架橋によって目的のGPCRにカップリングしてもよい。従って、本明細書でさらに記載されるように、このようなVHH配列は、好ましくは、ラクダ種をGPCR、好ましくは、機能的な立体構造状態のGPCRで適切に免疫化する(即ち、免疫応答を上げるか、および/または前記GPCRに指向する重鎖のみの抗体を高めるように)ことによって、前記ラクダ由来の適切な生体サンプル(例えば、血液サンプルまたは任意のB細胞のサンプル)を得ることによって、前記サンプルから出発して、前記GPCRに指向するVHH配列を得ることによって、作られるか、または得ることができる。このような技術は、当業者には明確であろう。望ましいVHH配列を得るためのさらに別の技術は、重鎖のみの抗体を発現する(即ち、免疫応答を上げるか、および/または機能的な立体構造状態のGPCRに指向する重鎖のみの抗体を高める。)ことができるトラスジェニック哺乳動物を適切に免疫化し、前記トランスジェニック哺乳動物からの適切な生体サンプル(例えば、血液サンプル、または任意のB細胞のサンプル)を得て、次いで、これ自体既知の任意の適切な技術を用い、前記サンプルから出発し、前記GPCRに指向するVHH配列を作製することを含む。例えば、この目的のために、WO02085945およびWO04049794に記載される重鎖抗体を発現するマウスおよびさらなる方法および技術を使用することができる。
本発明の文脈で、結合ドメイン部分およびGPCR部分(または本明細書でさらに記載されるように、最終的にはさらに他の部分に)は、互いに直接的または間接的に融合してもよく、これによって、間接的なカップリングは、通常は、介在するアミノ酸配列またはリンカー部分の使用を介して起こる。好ましい「リンカー分子」または「リンカー」は、1から200アミノ酸長のペプチドであり、典型的には、必須ではないが、組織化されておらず、柔軟性を有するように選択されるか、または設計される。例えば、特定の二次構造を生成しないアミノ酸を選択することができる。または、アミノ酸は、安定な三次構造を生成しないように選択することができる。または、アミノ酸リンカーは、ランダムコイルを生成してもよい。このようなリンカーとしては、限定されないが、Gly、Ser、Thr、Gln、Gluまたは天然タンパク質の組織化されていない領域と関係があることが多いさらなるアミノ酸を豊富に含む合成ペプチドが挙げられる(Dosztanyi,Z.、Csizmok,V.、Tompa,P.、&Simon,I.(2005).IUPred:web server for the prediction of intrinsically unstructured regions of proteins based on estimated energy content.Bioinformatics(Oxford、England)、21(16)、3433−4)。非限定例としては、(GS)5または(GS)10が挙げられる。適切なリンカー配列の他の非限定例も、実施例の章に記載される。
本発明のキメラポリペプチドは、さらに改変されてもよく、および/または本明細書でさらに記載するように、他の部分を含んでいてもよい(またはさらに他の部分に融合していてもよい。)。改変の例、および改変可能な(即ち、タンパク質の骨格のいずれかで、好ましくは側鎖で)本発明のキメラポリペプチド内のアミノ酸残基、このような改変を導入するために使用可能な方法および技術、およびこのような改変の潜在的な用途および利点の例は、当業者には明らかであろう。例えば、このような改変は、1つ以上の官能基、残基または部分を、キメラポリペプチドの内部または表面に、特に、結合ドメイン部分の内部または表面に、またはGPCR部分の内部または表面に、および/または場合によりリンカー部分の内部または表面に(例えば、共有結合または別の適切な様式で)導入することを含んでいてもよい。このような官能基およびこのような官能基を導入する技術の例は、当業者には明らかであると思われ、一般的に、当該技術分野で述べられるすべての官能基および技術、および医薬タンパク質の改変のため、特に、抗体または抗体フラグメント(ScFvおよび一本鎖ドメイン抗体を含む)の改変のためのこれ自体が既知の官能基および技術を含み、例えば、Remington’s Pharmaceutical Sciences、第16版、Mack Publishing Co.、Easton、PA(1980)が参照される。このような官能基は、これも当業者に明らかなように、例えば、キメラポリペプチドに直接的に(例えば、共有結合によって)接続してもよく、または場合により、適切なリンカーまたはスペーサーを介して接続してもよい。通常のあまり好ましくない改変は、本発明のキメラポリペプチドを発現するために用いられる宿主細胞に依存して、通常は翻訳と同時および/または翻訳後の改変の一部としてのN接続したグリコシル化またはO接続したグリコシル化である。さらに別の改変は、ラベルが付されたキメラポリペプチドの意図した使用に依存して、1つ以上の検出可能なラベルまたは他のシグナルを生成する基または部分の導入を含んでいてもよい。適切なラベル、およびラベルを接続し、用い、検出するための技術は、当業者に明らかであると思われ、例えば、限定されないが、蛍光ラベル(例えば、フルオレセイン、イソチオシアネート、ローダミン、フィコエリトリン、フィコシアニン、アロフィコシアニン、o−フタルアルデヒドおよびフルオレスカミンおよび蛍光金属、例えば、Euまたはランタノイド族からのその他の金属)、燐光ラベル、化学発光ラベルまたは生物発光ラベル(例えば、ルミナール、イソルミノール、発光性アクリジニウムエステル、イミダゾール、アクリジニウム塩、シュウ酸エステル、ジオキセタンまたはGFPおよびこの類似体)、放射性同位体、金属、金属キレートまたは金属カチオン、またはin vivo、in vitroまたはin situでの検出およびイメージングに使用するのに特に適した他の金属または金属カチオン、および発色団および酵素(例えば、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ、ブドウ球菌ヌクレアーゼ、デルタ−V−ステロイドイソメラーゼ、酵母アルコールデヒドロゲナーゼ、アルファ−グリセロリン酸デヒドロゲナーゼ、トリオースホスフェートイソメラーゼ、ビオチンアビジンペルオキシダーゼ、セイヨウワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、アスパラギナーゼ、グルコースオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、リボヌクレアーゼ、ウレアーゼ、カタラーゼ、グルコース−VI−リン酸デヒドロゲナーゼ、グルコアミラーゼおよびアセチルコリンエステラーゼ)が挙げられる。他の適切なラベルは、当業者に明らかであると思われ、例えば、NMRまたはESR分光法を用いて検出可能な部分が挙げられる。特定のラベルの選択肢に依存して、このようなラベルが付された本発明のキメラポリペプチドを、例えば、in vitro、in vivoまたはin situのアッセイ(これ自体が知られているイムノアッセイ、例えば、ELISA、RIA、EIAおよび他の「サンドイッチアッセイ」など)およびin vivoターゲティングおよびイメージングの目的で使用してもよい。当業者には明らかなように、別の改変は、例えば、上記で言及された金属または金属カチオンのいずれかをキレート化するためのキレート化基の導入を含んでいてもよい。適切なキレート化基としては、例えば、限定されないが、ジエチル−エントリアミン五酢酸(DTPA)またはエチレンジアミン四酢酸(EDTA)が挙げられる。さらに別の改変は、特定の結合対(例えば、ビオチン−(ストレプト)アビジン結合対)の一部である官能基の導入を含んでいてもよい。このような官能基を使用し、結合対の片方の半分に結合する(即ち、結合対の生成によって)別のタンパク質、ポリペプチドまたは化学化合物に対し、本発明のキメラポリペプチドを接続してもよい。例えば、本発明のキメラポリペプチドは、ビオチンにコンジュゲート化してもよく、アビジンまたはストレプトアビジンにコンジュゲート化した別のタンパク質、ポリペプチド、化合物または担体に接続してもよい。例えば、このようなコンジュゲート化したキメラポリペプチドを、例えば、検出可能なシグナルを生成する薬剤がアビジンまたはストレプトアビジンにコンジュゲート化される検出可能な系において、レポーターとして使用してもよい。例えば、このような結合対を使用し、本発明のキメラポリペプチドを担体(医薬用途に適切な担体)に結合してもよい。ある非限定的な例は、CaoおよびSuresh、Journal of Drug Targeting、8、4、257(2000)に記載されるリポソーム配合物である。このような結合対を使用し、本発明のキメラポリペプチドに治療に活性な薬剤を接続してもよい。
本発明のキメラポリペプチドは、他の分子(特に、受容体リガンド(例えば、全アゴニスト、パーシャルアゴニスト、アンタゴニスト、インバースアゴニスト、バイアスアゴニスト、天然結合パートナーなど)を含め、リガンド)を含んでいてもよい(または、これらに融合していてもよい。)。従って、一態様によれば、本発明は、本明細書で上記したようなキメラポリペプチドと、受容体リガンドとを含む複合体も想定する。非限定的な例として、安定な複合体をサイズ排除クロマトグラフィーによって精製してもよい。好ましい実施形態において、本発明の複合体は、可溶化した形態、例えば、洗剤に可溶化した形態である。代替的な好ましい実施形態において、本発明の複合体は、固体支持材に固定化される。固体支持材および固定化のための方法および技術の非限定例は、詳細な説明にさらに記載される。さらに別の実施形態において、本発明の複合体は、有機体、組織、細胞、細胞株、または膜組成物、または前記有機体、組織、細胞または細胞株から誘導されるリポソーム組成物を含む、細胞組成物である。膜またはリポソーム組成物の例としては、限定されないが、細胞小器官、膜調製物、ウイルス、ウイルス様の脂質粒子(VLP)などが挙げられる。細胞組成物、または膜またはリポソーム組成物が、天然または合成の脂質を含んでいてもよいことが理解されるであろう。さらに別の好ましい実施形態において、複合体は、結晶性である。このため、複合体の結晶および前記結晶を製造する方法も提供され、以下にもっと詳細に記載される。好ましくは、本発明のキメラポリペプチドと受容体リガンドとを含む複合体の結晶性形態が想定される。
別の態様において、本発明は、本明細書で上記されるような本発明のキメラポリペプチドをコードする核酸配列を含む核酸分子に関する。特定の実施形態によれば、本発明は、本発明のキメラポリペプチドをコードする核酸配列を含む核酸分子に関し、核酸は、5’から3’にかけて、
・シグナルペプチド、
・エピトープタグ、
・プロテアーゼ開裂部位、
・目的のGPCR、
・目的のGPCRを標的とする立体構造選択的な結合ドメイン
をコードする。
・シグナルペプチド、
・エピトープタグ、
・プロテアーゼ開裂部位、
・目的のGPCRを標的とする立体構造選択的な結合ドメイン、
・目的のGPCR
をコードする。
(a)適切な細胞発現系(本明細書で上記で定義されるような)中、本発明のキメラポリペプチドをコードする核酸を発現する工程と、任意選択により、
(b)前記キメラポリペプチドを単離し、および/または精製する工程と
を含む。
本明細書に記載するキメラポリペプチドおよびこれをコードする核酸、複合体、細胞およびこれらから誘導される細胞組成物を、種々の文脈および用途で使用することができ、例えば、限定されないが、(1)一本鎖タンパク質としてのキメラポリペプチドの直接的な分離および/または精製、ここで、目的のGPCRは、目的の立体構造で恒常的な様式で安定化される、(2)本発明のキメラポリペプチドを利用することによる、GPCRの結晶化研究および高解像度構造分析のため、(3)リガンドスクリーニングおよび(構造に基づく)薬物開発のため、(4)細胞表面または別の細胞膜フラクション中、目的の立体構造で一本鎖融合タンパク質としてGPCRを安定に恒常的に発現するために使用することができ、これらはすべて、本明細書にさらに詳細に記載される。
本発明の鍵となる利点の1つは、GPCRを、GPCRと結合ドメインの化学量論量が定義される1:1で、目的の立体構造で分離し、精製することができることである。本発明の特定の利点は、キメラポリペプチド中の結合ドメインを、非常に高い有効分子内濃度で、リガンドが存在しない状態であっても、特定の受容体立体構造で安定化することができることである。これに加え、当業者は、折り畳まれた状態のGPCRに選択的に結合する結合ドメインが、このGPCRを化学物質または熱による変性から保護し、このため、立体構造安定性および/または熱安定性が高まることを認識するであろう。従って、キメラポリペプチドを、混合物から分離し、場合により、一本鎖タンパク質として精製することができ、受容体は、結合ドメインによって安定化される立体構造に適合する。この分離され、精製されたキメラポリペプチドは、非常に有用であり、特に、その後の結晶化、リガンドの特性決定および化合物スクリーニング、免疫化のための直接的なツールである。
本発明の一態様は、GPCRのX線結晶学における本発明のキメラポリペプチドの有用性および構造に基づく薬物設計におけるこの適用に関する。
(a)本発明のキメラポリペプチドを提供する工程と、
(b)キメラポリペプチドを結晶化する工程と
を含む。
他の用途は、特に、本発明のキメラポリペプチドを利用することによって、または、有利には、本発明のキメラポリペプチドを含む宿主細胞または細胞培養物を直接利用することによって、またはこれらから誘導される膜調製物を使用することによって、化合物スクリーニングおよび免疫化を含め、想定され、本明細書にさらに記載される。
(i)本発明のキメラポリペプチドを提供する工程と、
(ii)試験化合物を提供する工程と、
(iii)キメラポリペプチドに含まれるGPCRに対する試験化合物の選択的な結合を評価する工程と、
(iv)立体構造選択的な化合物を選択する工程と
を含む。
β2AR−ナノボディ融合タンパク質構築物の生成
この実施例に記載するGPCR−ナノボディ融合物は、ペプチドリンカーと接続した2種類の異なるタンパク質を含むキメラポリペプチドであり(GPCR β2AR、リンカーGGGGSGGGS(配列番号51)およびナノボディ)、アミノ酸末端からカルボキシ末端に向けて、すべてがこの順序で融合している。これらのタンパク質をコードする遺伝子は、以下に記載したように融合し(図2)、pFastBac1ベクター(Invitrogen、カタログ番号10359−016)にクローン化された。
バキュロウイルスに感染したSf9細胞におけるβ2AR−ナノボディ融合物の発現
β2AR−ナノボディ融合物をコードするバクミドを産生するために、製造業者の指示に従って、Bac−to−Bac(R)バキュロウイルス発現系(Invitrogen、カタログ番号10359−016)を用い、1ngの各pFastBac β2AR365N−ナノボディ融合物をDH10Bac(商標)細胞内で形質変換し、50μg/mlのカナマイシン、7μg/mlのゲンタマイシン、10μg/mlのテトラサイクリン、100μg/mlのX−galおよび40μg/mlのIPTGを含む新鮮なLB寒天プレートに一晩接種した。白色コロニーを取り出し、バクミドを精製し、β2AR−ナノボディオープンリーディングフレームの配列を確認した。β2ARオープンリーディングフレームをコードし、リンカーおよびナノボディ(pFastBac β2AR365N)を含まないプラスミドも、DH10Bac(商標)細胞内で形質転換し、コントロールとして、融合していない受容体をコードするバクミドを産生した。β2AR−ナノボディバクミドおよびβ2AR365NバクミドをSf9細胞内でトランスフェクションすることによって、組み換えバキュロウイルスを産生した。
蛍光顕微鏡によるβ2AR−ナノボディ融合タンパク質の発現の確認
異なるβ2AR365N−Nb融合物の発現を監視するために、感染していないSf9細胞、およびP1組み換えバキュロウイルスストックで感染したSf9細胞(感染72時間後に集めた。)を、蛍光顕微鏡を用い、受容体の発現について分析した。この目的のために、15μlの各細胞培養物を8ウェルのマイクロスライド(Ibidi、カタログ番号80821)中、1μgのマウス抗Flag(M2)モノクローナル抗体(Sigma、カタログ番号F3165)および1μgのFITCにコンジュゲート化したラット抗マウス−IgG(ebioscience、カタログ番号11−4011)を含む200μlのPBSで希釈し、暗状態で15分間インキュベーションした。細胞が表面接着したら、過剰な染色溶液を注意深く除去した。感染した細胞および感染していない細胞の画像を、Eclipse TE2000(Nikon)倒立顕微鏡を用いて撮影した。透過型顕微鏡法を用い、およびFITCフィルタを用いた蛍光透過型顕微鏡法を用い、画像を撮影した。すべての蛍光測定を、同じ露光設定を用いて行った。
β2AR−ナノボディ融合物を発現する昆虫細胞からの膜の調製
組み換えβ2AR−Nb融合物を発現するSf9細胞の新鮮な50ml培養物の遠心分離によって得られる細胞ペレットを、プロテアーゼ阻害剤(10mMのTris/HCl pH7.4、1mMのEDTA、10μg/mlのロイペプチン、0.2mMのPMSF)を含有する8mlの溶解バッファーに懸濁させた。小さなガラスグラインダおよびテフロン乳棒を用い、再び懸濁させたペレットを十分に砕くことによって、細胞を溶解させた。26000gでの遠心分離によって、膜を回収した。膜ペレットを、1.5mlの保存バッファー(10mMのトリス/HCl pH7.4、1mMのEDTA、10%のサッカロース)に再懸濁させ、小分けして80℃で保存した。合計タンパク質濃度を、BCAタンパク質アッセイキット(Thermo Scientific Pierce、カタログ番号23225)を用い、製造業者の指示に従って測定した。バキュロウイルスに感染したSf9細胞におけるGPCR−ナノボディハイブリッドの発現は、ウェスタンブロット分析によってこれらのSf9膜のタンパク質含有量を分析することによって確認した(実施例5)。これらのGPCR−ナノボディハイブリッドの薬理特性を、放射性リガンド競争アッセイによって分析した(実施例6)。
ウェスタンブロットによって確認したβ2AR−ナノボディ融合タンパク質の発現
異なるバキュロウイルスに感染したSf9細胞の膜調製物(合計タンパク質25μg)を12.5%のSDS−PAGEゲルに乗せた。電気泳動の後、タンパク質をニトロセルロースシートに移し、4%の脱脂乳で膜をブロッキングした。この組み換えタンパク質の発現は、抗flag M2(Sigma、カタログ番号F3165)を一次抗体として用い、ブロットを発色させるために抗マウスアルカリホスファターゼコンジュゲート(Sigma、カタログ番号A3562)をNBTおよびBCIPと組み合わせて用いて検出した(図3)。適切な分子量を有するバンド(それぞれ、ナノボディに融合したβ2ARおよび融合していないβ2ARについて、約57kDaおよび43kDa)の検出によって、生成したすべての構築物の融合タンパク質の発現を確認する。
比較放射性リガンド競争アッセイによる、β2AR−ナノボディ融合物の薬理特性の分析
異なるβ2AR365N−ナノボディ融合物の薬理特性を分析するために、本願発明者らは、天然アゴニストであるエピネフリン(Sigmaカタログ番号E4250)、(−)−イソプロテレノール塩酸塩(全アゴニスト、Sigmaカタログ番号I6504)、サルブタモール(パーシャルアゴニスト、Sigmaカタログ番号S8260)、ICI−118,551塩酸塩(インバースアゴニスト、Sigmaカタログ番号I127)またはアルプレノロール塩酸塩(ニュートラルアンタゴニスト、Sigmaカタログ番号A8676)およびカルベジロール(アンタゴニスト、Sigmaカタログ番号C3993)を競争剤として、ニュートラルアンタゴニスト[3H]−ジヒドロアルプレノロールを放射性リガンドとして使用し、比較放射性リガンド競争実験を行った。異なるリガンドの薬理効果は、Kahsaiら.(2011)による。
β2AR−ナノボディ融合物の立体構造の熱安定性
GPCRの安定化のための1つの戦略は、即ち、改良された熱安定性を有する変異体についてスクリーニングするための、(放射性)リガンド存在下、熱安定性アッセイと組み合わせた全体的な突然変異に基づくGPCRの熱安定化である(Tate 2012)。残念なことに、アゴニスト存在下で熱安定化される受容体は、それぞれのアゴニストに対する顕著なアフィニティの増加を示さず(Serrano−Vegaら、2008、Shibataら、2009、Lebonら、2011)、このことは、これらの熱安定化された受容体が、この受容体の完全に活性な立体構造を採用していないことを示す。
β2AR−ナノボディ融合物の薬理特性と、外から加えられたナノボディとの複合体において、融合していないβ2ARの薬理特性との比較
融合したNb80と、融合していないNb80とが、β2ARの活性な状態を安定化する有効性を比較するために、β2AR365N−Nb80融合物の薬理特性を、外から加えられたNb80との複合体において、融合していないβ2AR365Nと比較した。本願発明者らは、実施例6に記載したのと同様の比較放射性リガンド競争実験を行った。天然アゴニストであるエピネフリン(Sigmaカタログ番号E4250)を競争剤として、[3H]−ジヒドロアルプレノロールを放射性リガンドとして使用した。β2AR365N−Nb69融合物と、外から加えられたNb69との複合体におけるβ2AR365Nをコントロールとして並行してアッセイした。
M2R−ナノボディ融合タンパク質構築物の作製
この実施例で記載されるGPCR−ナノボディ融合物は、ペプチドリンカーと接続した2種類の異なるタンパク質を含むキメラポリペプチドであり(GPCR M2ムスカリン性アセチルコリン受容体(M2R)、このリンカーGGGSGGGGSGGGGSGGGGSGGGS(配列番号49)およびナノボディ)、すべてがアミノ末端からカルボキシ末端までこの順序で融合した。これらのタンパク質をコードする遺伝子を、以下に記載するように融合し(図9)、pFastBac1ベクター内でクローン化した。
バキュロウイルスに感染したSf9細胞におけるM2Δi3R−ナノボディ融合物およびM2Δi3Rの発現
M2Δi3R−ナノボディ融合物をコードするバクミドを産生するために、1ngのpFastBac1−M2Δi3R−Nb9−1を、Bac−to−Bac(R)バキュロウイルス発現系を用い、製造業者の指示に従って、DH10Bac(商標)細胞内でトランスフェクションし、実施例2に記載するように一晩接種した。白色コロニーを取り出し、バクミドを精製し、オープンリーディングフレームの配列を再確認した。M2Δi3R−ナノボディ9−1バクミドおよびM2Δi3Rバクミドをトランスフェクションすることによって、組み換えバキュロウイルスをSf9細胞中で産生した。
M2Δi3RまたはM2Δi3R−Nb融合物を発現する昆虫細胞からの膜の調製)
組み換えM2Δi3RまたはM2Δi3R−Nb融合物を発現するSf9細胞の新鮮な50ml培養物の遠心分離によって得られる細胞ペレットを、実施例4に記載するように膜抽出物へと処理し、実際に保存した。合計タンパク質濃度を、BCAタンパク質アッセイキットを用い、製造業者の指示に従って測定した。これらのGPCR−ナノボディハイブリッドの薬理特性を放射性リガンド競争アッセイによって分析した(実施例12)。
比較放射性リガンド競争アッセイによる、M2Δi3R−ナノボディ融合物の薬理特性の分析
M2Δi3R−ナノボディ融合物の薬理特性を分析するために、本願発明者らは、カルバコール(全アゴニスト、Sigmaカタログ番号C4382)およびオキソトレモリンM(アゴニスト、Sigmaカタログ番号O100)を競争剤として、[3H]−Nメチルスコポラミン(Perkin Elmerカタログ番号NET636001MC)を放射性リガンドとして用い、比較放射性リガンド競争実験を行った。
β1AR−ナノボディ融合タンパク質構築物の生成
この実施例に記載されるGPCR−ナノボディ融合物は、ペプチドリンカーと接続した2種類の異なるタンパク質を含むキメラポリペプチドであり(β1アドレナリン作動性受容体(β1AR)、リンカーGGGGSGGGGSGGGGSGGGGSGGGS(配列番号60)およびナノボディ)、すべてがアミノ末端からカルボキシ末端までこの順序で融合した。これらのタンパク質をコードする遺伝子(図F11A)を、以下に記載するように融合した。
バキュロウイルスに感染したSf9細胞におけるβ1AR−ナノボディ融合物の発現
β1AR−ナノボディ融合物の1つをコードするバクミドを産生するために、1ngのpFastBac−hβ1AR−Nb80またはpFastBac−β1AR−Nb69を、製造業者の指示に従って、Bac−to−Bac(R)バキュロウイルス発現系を用い、DH10Bac(商標)細胞内で形質転換し、実施例2に記載されるように一晩接種した。白色コロニーを取り出し、バクミドを精製しオープンリーディングフレームの配列を再確認した。β1AR−Nb80バクミドおよびβ1AR−Nb69バクミドをトランスフェクションすることによって、組み換えバキュロウイルスをSf9細胞中で産生した。
hβ1AR−Nb80またはhβ1AR−Nb69融合物を発現する昆虫細胞からの膜の調製
組み換えhβ1AR−Nb80またはhβ1AR−Nb69融合物を発現するSf9細胞の新鮮な50ml培養物の遠心分離によって得られる細胞ペレットを、実施例4に記載するように膜抽出物へと処理し、実際に保存した。合計タンパク質濃度を、BCAタンパク質アッセイキットを用い、製造業者の指示に従って測定した。これらのGPCR−ナノボディハイブリッドの薬理特性を放射性リガンド競争アッセイによって分析した(実施例16)。
比較放射性リガンド競争アッセイによる、hβ1AR−ナノボディ融合物の薬理特性の分析
異なるhβ1AR−ナノボディ融合物の薬理特性を分析するために、本願発明者らは、天然アゴニストであるエピネフリン、次いで、インバースアゴニストICI−118,551塩酸塩またはニュートラルアンタゴニストアルプレノロール塩酸塩を競争剤として、ニュートラルアンタゴニスト[3H]−ジヒドロアルプレノロールを放射性リガンドとして用い、比較放射性リガンド競争実験を行った。異なるリガンドの薬理特性は、Kahsaiら(2011)に従う。
β2AR−Nb60融合構築物の生成
この実施例に記載されるGPCR−ナノボディ融合物は、ペプチドリンカーと接続した2種類の異なるタンパク質を含むキメラポリペプチドであり(GPCR β2AR、リンカーGGGGSGGGS(配列番号51)およびNb60)、すべてがアミノ末端からカルボキシ末端までこの順序で融合した。これらのタンパク質をコードする遺伝子を、最低限調節しつつ実施例1に記載するように融合した。
バキュロウイルスに感染したSf9細胞におけるβ2AR−Nb60の発現およびβ2AR−Nb60融合物を発現する昆虫細胞からの膜の調製
Sf9細胞においてβ2AR365N−Nb60融合物を発現するために、β2AR−Nb60融合物をコードするバクミドを作製し、Sf9細胞を実施例2に記載するように感染させた。β2AR−Nb60融合物を発現する昆虫細胞からの膜を、実施例4に記載するように調製した。これらのGPCR−ナノボディハイブリッドの薬理特性を、放射性リガンド競争アッセイによって分析した(実施例19)。
比較放射性リガンド競争アッセイによるβ2AR−Nb60融合物の薬理特性の分析
β2AR365N−Nb60融合物の薬理特性を分析するために、本願発明者らは、天然アゴニストであるエピネフリン、(−)−イソプロテレノール塩酸塩(全アゴニスト)およびICI−118,551塩酸塩(インバースアゴニスト)を競争剤として、ニュートラルアンタゴニスト[3H]−ジヒドロアルプレノロールを放射性リガンドとして用い、比較放射性リガンド競争実験を行った。異なるリガンドの薬理特性は、Kahsaiら.(2011)に従う。
ミューオピオイド受容体−ナノボディ融合構築物の作製
Mor1 AA配列は、異なる哺乳動物種間で高度に保存されている。さらに具体的には、予想される細胞内トポロジカルドメイン(ICL+C末端)についてのマウス、ウシ、ブタおよびヒトMor1の間の交差種の配列同一性は、90%を超える。Nb33が、マウスMor1の細胞内エピトープと相互作用することが知られており、本願発明者らは、ICL2にたった1つの保存された置換(図14の「:」によって示される。)、C末端に1つの半保存された置換(図14で「.」によって示される。)が存在する場合、Nb33が、hMor1の活性な立体構造も安定化させることが予測される。
バキュロウイルスに感染したSf9細胞におけるミューオピオイド受容体−ナノボディ融合物の発現
Mor1−ナノボディ融合物をコードするバクミドを産生するために、5ngのpFastBac1::hMOR1−34GS−Nb33またはpFastBac1::hMOR1−34GS−Nb10を、DH10Bac(商標)細胞内で形質転換した。Sf9細胞中、Mor1−ナノボディバクミドをトランスフェクションすることによって、組み換えバキュロウイルスを産生した。P1組み換えバキュロウイルスを、Nb10融合物についてはトランスフェクションから72時間後、Nb33融合物については48時間後に集める以外は、実施例2に記載するように、セルフェクチンIIが介在するSf9トランスフェクションのために各バクミドを使用した。P1ウイルスストックを、液体窒素で凍結させた5%(最終濃度)のウシ胎児血清(FCS)を加えた培地上澄みを小分け分として−80℃で保存した。P1を新しいSf9培地で、1×106細胞/mlの密度で50から1000倍に希釈し、27℃、130rpmで培養することによって、P2組み換えバキュロウイルスストックを作製した。P2ウイルスストックを感染から48時間後および72時間後に遠心分離によって集め、さらに使用するまで、上述のように−80℃で保存した。細胞ペレットを、1.5mM EDTAを追加した氷冷PBS(Life Technologies、カタログ番号10010−023)で2回洗浄し、−80℃で保存し、膜を調製した。異なるMor1−Nb融合物の組み換え発現は、新しく成長させたSf9細胞を、2e6細胞/mlの密度で、50倍、200倍および1000倍に希釈したP2バキュロウイルスストックで感染させることによって達成した。ネガティブコントロール発現として、Sf9細胞を、Flagタグ付けした無関係なM2RのP2と並行して感染させた。感染した細胞を27℃(130rpm)で48時間培養した後、集めた。細胞ペレットを、氷冷PBS(pH7.4、1.5mMのEDTA)で2回洗浄し、膜を調製するまで−80℃で保存した。GPCR−ナノボディキメラの過剰発現は、フローサイトメトリーによって確認された(データは示さない。)。
比較放射性リガンド競争アッセイによる、hMOR1−Nb融合物の薬理特性の分析
天然のMor1の折り畳みおよびNb33による活性な立体構造異性体の安定化を確認するために、Sf9細胞におけるhMOR1−34GS−Nb33またはhMOR1−34GS−Nb10の過剰発現を、膜(P2)に対する放射性リガンドアッセイによって評価した。膜を調製するために、1E7 hMor1 Sf9細胞を小分けしたものを、プロテアーゼ阻害剤を含む氷冷却した溶解バッファー1mlに再懸濁させた(実施例4)。細胞懸濁物を、低容積Ultraturrax細胞混合機(IKA)を用い、6回の10秒のパルスを加え、氷上で均質化した。あらかじめ冷却しておいた遠心分離機において、細胞均質物を15000×gで35分間遠心分離処理した。上澄みを捨て、膜ペレットを75mMのTris HCl pH7.4、1mMのEDTA、5mMのMgCl2、10%のスクロースで再び懸濁させ、さらなる使用まで−80℃で保存した。膜調製物の合計タンパク質含有量は、BCAタンパク質アッセイキットを用い、製造業者の指示に従って決定された。
β2AR−Nb融合物に対する比較放射性リガンド置き換えアッセイを用いたフラグメントライブラリースクリーニング)
実施例6は、2AR365N−Nb80融合物の薬理特性が、β2AR365N−Nb69融合物と比較して、基本的に異なっていることを示し、Nb80融合物は、天然アゴニストおよび合成アゴニストに優先的に結合し、一方、インバースアゴニストに対する低いアフィニティを示す。実施例12、16、19は、さらに、特定のGPCR−Nb融合物の改変された薬理特性を示す。この知識に基づいて、本願発明者らは、これらの薬理学的違いを薬物開発に活用することができるか否かを試験した。
比較放射性リガンド競争アッセイによって選択されたフラグメントの活性プロフィールの分析
12がアゴニスト活性プロフィールを有し、3がアンタゴニスト活性プロフィールを有し、3がインバースアゴニスト活性プロフィールを有する、選択された18フラグメントヒットのプロフィールを、その後、実施例6に記載するように、β2AR365N−Nb69融合物に対するβ2AR365N−Nb80融合物の用量応答曲線を比較することによって確認した。簡単に説明すると、異なる組み換え融合タンパク質を発現するSf9細胞の膜を、結合バッファー中、4×10−7Mから4×10−4Mの範囲の濃度でそれぞれの18フラグメントヒットと混合し、放射性リガンド[3H]−ジヒドロアルプレノロールをそれぞれの混合物に加え、振とうプラットフォームでサンプルを室温で2時間インキュベートした。実施例6に記載するように、受容体が結合した放射性リガンドを遊離の放射性リガンドから分離した。データは、3回ずつ行われた各実験の平均±SD(平均の標準偏差)で表す。グラフは、Prism(GraphPad Software、サンディエゴ、CA)を用い、非線形回帰分析によって作成された。β2AR365N−Nb69融合物(受容体の主要な立体構造)に対し、活性な状態で安定化されたβ2AR365N−Nb80融合物の用量応答曲線は、実施例23で選択された18フラグメントの活性プロフィールを確認する。驚くべきことに、アゴニストプロフィールに属する12の特定されたフラグメントのうち、11が、アゴニスト活性を有するβ2ARリガンドに全く関係がなかった。(それぞれの活性プロフィール(アゴニスト、アンタゴニスト、インバースアゴニスト)についての2フラグメントの用量応答曲線の代表例を図18に示す。)フラグメントAC23506、CC56213は、明らかに、β2AR365N−Nb69融合物よりも、活性な状態で安定化されたβ2AR365N−Nb80融合物に高いアフィニティで結合する(図18A)。フラグメントKM08985、AW00189について、本願発明者らは、この反対であることがわかり(図18C)、一方、アンタゴニストプロフィールを有するフラグメントCC46746、CC44914は、同じアフィニティで両方の立体構造に結合する(図18B)。
比較放射性リガンドアッセイによる精巧なフラグメントの薬理特性の分析
比較放射性リガンドアッセイが、アゴニストプロフィールを有するフラグメントの精巧さを導くことができることを示すために、フラグメントCC56213は、精巧にするために用量応答曲線に基づいて選択された。その後、実施例6に記載するように、(図19)のように、複数の化学改変体を比較放射性リガンドアッセイで試験した。簡単に説明すると、β2AR365N−Nb80融合物またはβ2AR365N−Nb69融合タンパク質を発現するSf9細胞の膜を、それぞれの精巧なフラグメント(化合物8、9、10と呼ばれる。)および元々のフラグメントCC56213と、結合バッファー中、10−9Mから10−3Mの範囲の濃度で混合し、放射性リガンド[3H]−ジヒドロアルプレノロールをそれぞれの混合物に加え、振とうプラットフォームでサンプルを室温で2時間インキュベートした。受容体が結合した放射性リガンドを実施例6に記載するように遊離放射性リガンドから分離した。データは、3回ずつ行われた各実験の平均±SEM(平均の標準誤差)で表す。グラフは、Prism(GraphPad Software、サンディエゴ、CA)を用い、非線形回帰分析によって作成された。
ADRB2 cAMP Biosensor Assays(HitHunter−DiscoveRx)を用いたアゴニズムのためのプロフィール
「アゴニストプロフィール」を有するフラグメント(実施例23および24に記載される12フラグメント)が、β2ARシグナル伝達を誘発することができるか否かを試験するために、実施例23からの18フラグメントを、細胞アッセイにおいて2種類の濃度(2mMおよび100μM)で、DiscoveRx装置で試験し、Gタンパク質が介在するβ2ARの活性化を測定する。HitHunterアッセイ中のDMSO%は1%以下であり、この濃度は、使用したβ2AR細胞では毒性でないことが示された。コントロールとして、エピネフリン(1μMおよび50nM)およびアルプレノロール(0.1μMおよび5nM)がこのアッセイに含まれていた。HitHunter(R)cAMPアッセイ(DiscoveRx)は、セカンドメッセンジャーcAMP蓄積によるGPCRの活性化を監視する。コントロールアゴニストイソプロテレノールによって生じるcAMPの最大合成を100%に設定し、試験した化合物のアゴニスト挙動を、イソプロテレノールアゴニズムに対して表した(データは示さない。)。顕著なことに、試験した濃度で、HitHunterバイオアッセイは、CC56213を含む3種類のフラグメントのみを特定し、検出可能で用量依存性のβ2ARシグナル伝達活性を生じる。多くのフラグメントが、mM濃度で細胞にとって毒性であり、細胞アッセイで特定されないことは、フラグメントライブラリーのよく知られた特徴である。従って、本願発明者らは、現時点でフラグメントスクリーニングおよびHTSに使用される細胞アッセイで特定することができない特定の生体活性プロフィールを有する複数のフラグメントを特定することができるようである。
Claims (25)
- 立体構造選択的な結合ドメインに融合したGPCRを含むキメラポリペプチドであって、前記結合ドメインは、免疫グロブリンの一本鎖可変ドメインであり、前記結合ドメインは、前記GPCRに指向するか、及び/又はGPCRに特異的に結合することができ、前記GPCRは、前記結合ドメインが結合すると、活性な立体構造又は不活性な立体構造で安定化され、前記活性な立体構造又は不活性な立体構造で安定化された前記GPCRは、対応する融合していないGPCRと比較して、立体構造選択的なリガンドに対するアフィニティが増加している、キメラポリペプチド。
- 前記結合ドメインが、直接的に、又はリンカーを介してGPCRに融合する、請求項1に記載のキメラポリペプチド。
- 前記活性な立体構造は、アゴニスト立体構造、パーシャルアゴニスト立体構造、バイアスアゴニスト立体構造である、請求項1又は2に記載のキメラポリペプチド。
- 前記不活性な立体構造は、インバースアゴニスト立体構造である、請求項1又は2に記載のキメラポリペプチド。
- 前記結合ドメインは、GPCRの細胞内エピトープに結合する、請求項1〜4のいずれかに記載のキメラポリペプチド。
- 前記細胞内エピトープは、下流のシグナル伝達タンパク質のための結合部位に含まれる、請求項5に記載のキメラポリペプチド。
- 前記細胞内エピトープは、Gタンパク質結合部位に含まれる、請求項5に記載のキメラポリペプチド。
- 前記免疫グロブリン一本鎖可変ドメインが、重鎖抗体に由来する、請求項1〜7のいずれかに記載のキメラポリペプチド。
- 前記免疫グロブリン一本鎖可変ドメインが、VHH配列又はナノボディ配列を含む、請求項1〜7のいずれかに記載のキメラポリペプチド。
- GPCRは、天然に生じるGPCRである、請求項1〜9のいずれかに記載のキメラポリペプチド。
- GPCRは、天然に生じるGPCRの改変体、又は天然に生じるGPCRからトランケーションされた形態である、請求項1〜10のいずれかに記載のキメラポリペプチド。
- GPCRは、GPCRグルタメートファミリーのGPCR、GPCRロドプシンファミリーのGPCR、GPCR接着ファミリーのGPCR、GPCRのFrizzled/Taste2ファミリーのGPCR及びGPCRのセクレチンファミリーのGPCRを含む群から選択される、請求項1〜11のいずれかに記載のキメラポリペプチド。
- 請求項1〜12のいずれかに記載のキメラポリペプチドと、受容体リガンドとを含む複合体。
- 結晶性である、請求項1〜12のいずれかに記載のキメラポリペプチド、又は請求項13に記載の複合体。
- 請求項1〜12のいずれかに記載のキメラポリペプチドをコードする核酸配列を含む核酸分子。
- 請求項15に記載の核酸配列を含む宿主細胞。
- 細菌細胞、酵母細胞、哺乳動物細胞、昆虫細胞である、請求項16に記載の宿主細胞。
- 請求項1〜12のいずれかに記載のキメラポリペプチド又は請求項13に記載の複合体を含む膜組成物。
- 結合ドメインに融合したGPCRを含むキメラポリペプチドを製造するための方法であって、適切な条件で請求項16又は17に記載の宿主細胞を培養する工程と、任意選択により、キメラポリペプチドを単離する工程とを含む、方法。
- 細胞表面に活性な立体構造又は不活性な立体構造で、又は宿主細胞の特定の細胞膜フラクション中に、GPCRを表出させるための方法であって、請求項16又は17に記載の宿主細胞を提供する工程と、適切な条件で前記細胞を培養し、キメラポリペプチドを発現する工程とを含む、方法。
- 立体構造選択的な化合物を特定する方法であって、
(i)請求項1〜12のいずれかに記載のキメラポリペプチドを提供する工程と、
(ii)試験化合物を提供する工程と、
(iii)キメラポリペプチドに含まれるGPCRに対する試験化合物の選択的な結合を評価する工程と
を含む、方法。 - 特定される立体構造選択的な化合物が、アゴニスト化合物、例えば、アゴニスト低分子又は抗体である、請求項21に記載の方法。
- GPCRを結晶化し、及び/又はGPCRの構造を解明するための請求項1〜12のいずれかに記載のキメラポリペプチド又は請求項13に記載の複合体の使用。
- 機能的な立体構造状態のGPCRを捕捉するための請求項1〜12のいずれかに記載のキメラポリペプチド又は請求項13に記載の複合体の使用。
- 請求項1〜12のいずれかに記載のキメラポリペプチド又は請求項16又は17に記載の宿主細胞を含むキット。
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