JP6295247B2 - 食後期の胃運動亢進剤 - Google Patents

Description

本発明は、食後期の胃運動亢進剤に関する。

糖尿病性胃麻痺、術後胃麻痺、機能性ディスペプシア等の疾患は、食後期における胃運動が十分でなく、食物の胃排出能が極めて低下していることが知られている。これらの疾患における食物胃排出能を亢進する薬剤としては、塩酸イトプリド、クエン酸モサプリド等が知られている。しかし、これらの薬剤は重症患者に対して十分な効果が得られるかは不明であり、さらに有効な薬剤の開発が望まれている。

グレリンは、胃から発見されたペプチドであり、主として胃内分泌細胞で産生され、摂食亢進や体重増加に関与する摂食促進ペプチドとして知られている。グレリンの食物胃排出能については、健常者や糖尿病患者において食後にグレリンを静脈内に持続注入又は多量投与すると、胃排出能を促進したとする報告がある（非特許文献１、２）。また、グレリンアゴニストであるＴＺＰ−１０２を空腹時に投与しても胃排出能は促進されなかった（非特許文献３）。

一方、モチリンは、２２個のアミノ酸からなるペプチドであり、意識下イヌやヒトにおける空腹期胃収縮の原因物質として知られている。モチリンは、空腹期に静脈内に持続注入すると胃排出能を促進することが知られている（非特許文献４）。また、モチリンアゴニストであるミテムシナル（ｍｉｔｅｍｃｉｎａｌ）の空腹期投与により胃排出能が亢進されることも報告されている（非特許文献５）。

さらに最近、スンクスの摘出胃を用いてグレリンのｉｎ ｖｉｔｒｏの胃収縮誘発の機序を検討した結果、高用量投与にもかかわらず、グレリンは単独で胃収縮を促進しなかったが、低用量のモチリンの前処置によりグレリンの感受性を回復させ、モチリンの前投与がグレリン回路のゲートを開ける可能性が示唆された（非特許文献６）。

Neurogastroenterol. Motil. 2010, 22, e192-e200 Peptides 2006, 1603-1606 Neurogastroenterol. Motil. 2013, 25, e140-e150 Gastroenterology. 1992, 102, 97-101 Aliment Pharmacol. Ther. 2007, 26, 1121-1130 Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2012, 302: G1207-G1215

本発明の課題は、新たな食後期の胃運動亢進剤を提供することにある。

そこで、本発明者は、空腹時ではなく、食後期の食物の胃排出能について種々検討してきた。モチリンは空腹期の胃収縮の原因物質であり、空腹期に投与しなければ胃収縮に作用しないと考えられていた。しかしながら、全く意外にも、グレリンとモチリンの両者を、食後期に作用するように投与したところ、グレリンとモチリンがそれぞれ単独では作用しない低用量で優れた胃運動亢進効果が得られることを見出した。また、グレリンが迷走神経を介して伝播性消化管収縮運動（Ｍｉｇｒａｔｉｎｇ ｍｏｔｏｒ ｃｏｍｐｌｅｘ；ＭＭＣ）を刺激し、迷走神経は食後期の胃収縮の開始に不可欠であり、モチリンにより誘発される食後期胃収縮は迷走神経に依存していることも見出し、本発明を完成した。

すなわち、本発明は、次の〔１〕〜〔１２〕を提供するものである。

〔１〕（Ａ）グレリン若しくはグレリンアゴニストと（Ｂ）モチリン若しくはモチリンアゴニストとの両者が食後に胃に作用するように投与して用いられることを特徴とする、成分（Ａ）と成分（Ｂ）を有効成分とする食後期の胃運動亢進剤。
〔２〕食後に胃に作用するように投与する手段が、食後に成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者が有効血中濃度に達するように投与するものである〔１〕記載の食後期の胃運動亢進剤。
〔３〕糖尿病性胃麻痺、術後胃麻痺及び機能性ディスペプシアから選ばれる疾患における食後期の胃運動亢進剤である〔１〕又は〔２〕記載の食後期の胃運動亢進剤。
〔４〕（Ａ）グレリン若しくはグレリンアゴニストと（Ｂ）モチリン若しくはモチリンアゴニストとの両者を食後に胃に作用するように投与することを特徴とする、食後期の胃運動亢進方法。
〔５〕食後に胃に作用するように投与する手段が、食後に成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者が有効血中濃度に達するように投与するものである〔４〕記載の食後期の胃運動亢進方法。
〔６〕糖尿病性胃麻痺、術後胃麻痺及び機能性ディスペプシアから選ばれる疾患における食後期の胃運動亢進方法である〔４〕又は〔５〕記載の食後期の胃運動亢進方法。
〔７〕食後期の胃運動亢進に用いるための（Ａ）グレリン若しくはグレリンアゴニストと（Ｂ）モチリン若しくはモチリンアゴニストとの組み合わせであって、成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者が食後に胃に作用するように投与して用いられることを特徴とする、成分（Ａ）と成分（Ｂ）の組み合わせ。
〔８〕食後に胃に作用するように投与する手段が、食後に成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者が有効血中濃度に達するように投与するものである〔７〕記載の成分（Ａ）と成分（Ｂ）の組み合わせ。
〔９〕糖尿病性胃麻痺、術後胃麻痺及び機能性ディスペプシアから選ばれる疾患における食後期の胃運動亢進剤に用いるためのものである〔７〕又は〔８〕記載の成分（Ａ）と成分（Ｂ）の組み合わせ。
〔１０〕（Ａ）グレリン若しくはグレリンアゴニストと（Ｂ）モチリン若しくはモチリンアゴニストとの両者が食後に胃に作用するように投与して用いられることを特徴とする、成分（Ａ）と成分（Ｂ）の組み合わせの食後期の胃運動亢進剤製造のための使用。
〔１１〕食後に胃に作用するように投与する手段が、食後に成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者が有効血中濃度に達するように投与するものである〔１０〕記載の使用。
〔１２〕糖尿病性胃麻痺、術後胃麻痺及び機能性ディスペプシアから選ばれる疾患における食後期の胃運動亢進剤の製造のための使用である〔１０〕又は〔１１〕記載の使用。

本発明によれば、（Ａ）グレリン若しくはグレリンアゴニストと（Ｂ）モチリン若しくはモチリンアゴニストの両者を、食後に作用するように投与することにより、食後期の優れた胃運動亢進効果が得られる。この結果、糖尿病性胃麻痺、術後胃麻痺、機能性ディスペプシア等における摂食障害や食後期の種々の症状を改善することができる。本発明のかかる効果は、モチリン又はモチリンアゴニストが空腹期に作用するものと考えられていた従来の常識からは全く予想できないことである。

食後期のグレリン（５０ng／kg）単独投与の効果を示す図である。 食後期のモチリン（３００ng／kg）単独投与の効果を示す図である。 食後期のモチリン（２００ng／kg）及びグレリン（５０ng／kg）共投与の効果を示す図である。 食後期のモチリン（３００ng／kg）及びグレリン（５０ng／kg）共投与の効果を示す図である。 絶食状態での偽手術スンクスの胃の自発性出縮を示す図である。 絶食状態での迷走神経切除スンクスの胃の自発性収縮を示す図である。 偽手術スンクスと迷走神経切除スンクスのＭＭＣの各フェーズの収縮時間を示す図である。 偽手術スンクスと迷走神経切除スンクスのＭＭＣのｐｈａｓｅＩＩの運動係数を示す図である。 偽手術スンクスのＭＭＣのｐｈａｓｅＩＩに対するグレリンの効果を示す図である。 迷走神経切除スンクスのＭＭＣのｐｈａｓｅＩＩに対するグレリンの効果を示す図である。 偽手術スンクスと迷走神経切除スンクスのグレリン投与中の運動係数を示す図である。 偽手術スンクスのモチリン投与による自発収縮を示す図である。 迷走神経切除スンクスのモチリン投与による自発収縮を示す図である。 偽手術スンクスと迷走神経切除スンクスのモチリン投与時の運動係数を示す図である。 偽手術スンクスと迷走神経切除スンクスのモチリン投与時の収縮時間を示す図である。 偽手術スンクスの食後のモチリン投与の胃収縮に対する作用を示す図である。 迷走神経切除スンクスの食後のモチリン投与の胃収縮に対する作用を示す図である。 偽手術スンクスと迷走神経切除スンクスの食後のモチリン投与による運動係数を示す図である。 グレリン及びモチリン共投与による食後の胃運動亢進作用を示す図である。Ｇはグレリンを、Ｍはモチリンを示し、Ｇ及びＭに記載した数値は投与量を示す。 グレリン及びモチリン共投与による食後期胃排出能を示す図である。０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳはコントロールを示し、Ｍ３００はモチリン３００ｎｇ／ｋｇ投与、Ｇ５０はグレリン５０ｎｇ／ｋｇ投与を示す。 グレリンアゴニスト（Ｚ）及びモチリン（Ｍ）共投与による食後期胃収縮に対する作用を示す図である。Ｚはグレリンアゴニストを、Ｍはモチリンを示す。Ｍ３００はモチリン３００ng／kg投与を示す。グレリンアゴニスト（Ｚ）単独投与の場合は、Ｚ１０mg、Ｚ３０mgは１０mg／kg、３０mg／kg投与を示す。グレリンアゴニスト（Ｚ）とモチリン（Ｍ）の共投与の場合は、Ｚ５０、Ｚ１００は５０μg／kg、１００μg／kg投与を示す。 グレリンアゴニスト（Ｚ）及びモチリン（Ｍ）共投与による食後期胃収縮に対する作用を示す図である。Ｚはグレリンアゴニストを、Ｍはモチリンを示す。Ｍ３００はモチリン３００mg／kg投与を示す。グレリンアゴニスト（Ｚ）単独投与の場合は、Ｚ１０mg、Ｚ３０mgは１０mg／kg、３０mg／kg投与を示す。グレリンアゴニスト（Ｚ）とモチリン（Ｍ）の共投与の場合は、Ｚ５０、Ｚ１００は５０μg／kg、１００μg／kg投与を示す。

本発明の食後期の胃運動亢進剤の有効成分は、（Ａ）グレリン若しくはグレリンアゴニストと（Ｂ）モチリン若しくはモチリンアゴニストとの組み合わせである。

ヒトグレリンは、２８アミノ酸残基からなるペプチドであり、活性型は３番目のセリンの水酸基がオクタン酸によりエステル化されている。グレリンアゴニストはグレリン受容体に対して選択性が高く、アゴニスト活性がグレリンと比べて１０倍〜１/１００倍程度のグレリン受容体に対するアゴニストであり、例えば環状ペプチド化合物、ペプチド化合物が挙げられる。環状ペプチド化合物としては、例えばＴＺＰ−１０２、ＴＺＰ−１０１等が挙げられる。ペプチド化合物としては、例えばａｎａｍｏｒｅｌｉｎ、ｉｐａｍｏｒｅｌｉｎ、ｔａｂｉｍｏｒｅｌｉｎ、ｃａｐｒｏｍｏｒｅｌｉｎ、ｍａｃｉｍｏｒｅｌｉｎ、ＣＰ−４６４７０９−１８、ＥＸ−１３１４、ＧＴＰ−２００、ＭＫ−０６７７、ＢＭＳ−３１７１８０、ＷＯ２００９／０９８９０１記載の化合物等が挙げられる。

グレリンアゴニストのうち、環状ペプチド化合物としては、次式（１）で表される化合物又はその塩が挙げられる。

（式中、Ｒ¹、Ｒ³及びＲ⁴は、アルキル基、シクロアルキル基、置換基を有していてもよいアリールアルキル基、アリール基又は複素環式基を示し、Ｒ²は水素原子、又はアルキル基を示し、Ｒ⁵は、アルキレン基、アルキル−Ｏ−アルキル基、アルキル−Ｏ−アリーレン基、又はアルキル−Ｏ−アリーレン−アルキル基を示す）

ここで、Ｒ¹、Ｒ³及びＲ⁴で示される基としては、Ｃ₁−Ｃ₆の直鎖又は分岐鎖アルキル基、Ｃ₃−Ｃ₇シクロアルキル基、フェニル−Ｃ_1-6アルキル基（ハロゲン、Ｃ_1-6アルコキシ、Ｃ_1-6アルキル等が置換していてもよい）、Ｃ₆−Ｃ₁₀アリール基、インドリル基、イミダゾリル基が好ましい。Ｒ²としてはＣ₁−Ｃ₆アルキル基が好ましい。Ｒ⁵としては、直鎖又は分岐鎖のＣ₅−Ｃ₈アルキレン基、Ｃ₂−Ｃ₆−アルキル−Ｏ−Ｃ₂−Ｃ₆アルキル基、Ｃ₂−Ｃ₆アルキル−Ｏ−フェニレン基、Ｃ₂−Ｃ₆アルキル−Ｏ−フェニレン−Ｃ₂−Ｃ₆アルキル基が好ましい。ここでアルキルやアルキレンは分岐していてもよい。

グレリンアゴニストのうち、ペプチド化合物としては、次式（２）又は式（３）で表される化合物又はその塩が挙げられる。

（式中、Ｒ⁶及びＲ⁷は、同一又は異なって、水素原子、又は炭素数１〜６のアルキル基を示し；
Ｒ⁸及びＲ⁹は、同一又は異なって、水素原子、炭素数１〜６の直鎖状、分岐状若しくは環状のアルキル基、（ここでアルキル基にはハロゲン原子、水酸基、炭素数１〜６のアルコキシ基、フェニル基、ベンジルオキシ基又はヒドロキシフェニル基が置換していてもよい）を示すか、あるいは、Ｒ⁸又はＲ⁹とＲ^６又はＲ^７が隣接する窒素原子と一緒になってピロリジン環若しくはピペリジン環（ここでピロリジン環若しくはピペリジン環には水酸基が置換してもよい）を形成してもよく；
Ｒ^１0及びＲ^1２は、同一又は異なって、水素原子又はメチル基を示し；
Ｒ¹¹は、炭素数１〜６のアルキル基（ここでアルキル基には、メチルチオ又はベンジルオキシ基が置換していてもよい）、フェニル基、フェニル−Ｃ_１−４アルキル基、ナフチル−Ｃ_1-4アルキル基又はインドリルＣ_１−４アルキル基（ここで、フェニル基又はインドリル基には炭素数１〜６のアルキル基、ハロゲン原子、水酸基及び炭素数１〜６のアルコキシ基から選ばれる１〜４個の基が置換していてもよい）を示し；
ｎは、０又は１の数を示し；
Ａは、単結合、炭素数１〜４のアルキレン基又は炭素数２〜４のアルケニレン基を示し；
Ｒ¹³は、式（ａ）、（ｂ）又は（ｃ）を示し；
Ｒ¹⁴は、式（ｃ）を示す。）

（式（ａ）、（ｂ）中、Ｒ¹⁵及びＲ¹⁶は、同一又は異なって、フェニルＣ₁−Ｃ₄アルキル基又はナフチルＣ₁−Ｃ₄アルキル基を示し；
Ｒ¹⁷は、水素原子、炭素数１〜６の直鎖若しくは分岐鎖のアルキル基、又はアミノ−Ｃ_1-6アルキル基を示し；
Ｒ¹⁸は、水素原子、又は−ＣＨ₂Ａｒ（ここで、Ａｒは、フェニル基、ナフチル基、Ｓ、Ｎ及びＯから選ばれる１個若しくは２個を含む５員環若しくは６員環の芳香族複素環式基、又はベンゼン環とＳ、Ｎ及びＯから選ばれる１個若しくは２個を含む５員環若しくは６員環の複素環とが縮合した芳香族複素環式基（ここで、これらのフェニル、ナフチル又は芳香族複素環式基には、１〜３個のハロゲン原子、炭素数１〜６のアルキル基又は炭素数１〜６のアルコキシ基が置換していてもよい）を示す）を示し；
Ｒ¹⁹は、水素原子、炭素数１〜６のアルキル基、炭素数１〜６のアルキルスルホニル基（ここで、アルキル基又はアルキルスルホニル基のアルキル基には、ヒドロキシ基、ヒドロキシアルキルカルバメート基、ハロゲン原子及びカルバモイルアルキルカルバメート基から選ばれる基が置換していてもよい）、又は

（ここで、Ｒ²⁰及びＲ²¹は、同一又は異なって、水素原子、炭素数１〜６のアルキル基、ホルミル基又は１〜３個のハロゲン原子が置換していてもよい炭素数２〜６のアルカノイル基を示すか、Ｒ²⁰とＲ²¹が隣接する窒素原子と一緒になって窒素原子を１個含む５員環又は６員環の複素環を形成してもよい）を示し；
Ｈｅｔで示される環は、イミダゾリル基、テトラゾリル基、インドリル−ピペラジン−スピロ環基、ピラゾロピリジン環基、１，２，３，４−テトラヒドロキノリン−２−オン環基、ピペリジン環基及びトリアゾロピリジン環基から選ばれる環を示す）

ここで、Ｈｅｔで示される環としては、次の環がより好ましい、

（式中、Ｒ²²は、Ｃ_1-4アルキル基が１〜３個置換してもよいヒドラジド基を示し、Ｒ¹⁸〜Ｒ²¹、Ａｒは前記と同じ）

式（ｈ）中、次の（ｈ−１）がさらに好ましい。

（式中、ＸはＣＨ_２、Ｃ＝Ｏ、ＣＨ−ＯＲ²³、ＣＨ−ＳＲ²³又はＣＨ−ＮＲ²³Ｒ²⁴を示し、ｌは１又は２の数を示し、Ｒ²³及びＲ²⁴は、同一又は異なって水素原子、又は炭素数１〜６の直鎖状、分岐状若しくは環状のアルキル基を示し、Ａｒは前記と同じ。）

ヒトモチリンは、２２アミノ酸残基からなるペプチドである。モチリンアゴニストはモチリン受容体に対して選択性が高く、アゴニスト活性がモチリンと比べて１０倍〜１/１００倍程度のモチリン受容体に対するアゴニストであり、マクロライド系化合物、例えばミテムシナルフマル酸塩、エリスロマイシン、ＥＭ−５２３、ＧＳＫ−９６２０４０、ＧＳＫ−１３２２８８８、ＡＢＴ−２２９、ａｔｉｌｍｏｔｉｎ、ＲＱ−００２０１８９４、ＳＫ−８９６、ｉｄｒｅｍｃｉｎａｌ等が挙げられる。

モチリンアゴニストのうち、エリスロマイシン誘導体としては、次式（４）の化合物が挙げられる。

（式中、Ｒ²⁵及びＲ²⁶は、水素原子、ヒドロキシ基又はメチル基を示すか、一緒になってオキソ基を形成し；
Ｒ²⁷及びＲ²⁸は、水素原子、ヒドロキシ基又はメチル基を示し；
Ｒ²⁹は水素原子又はメチル基を示し；
Ｒ³⁰及びＲ³¹は、炭素数１〜４のアルキル基を示し；
点線は二重結合があってもよいことを示す）

本発明においては、成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者を、食後に胃に作用するように投与して用いる点に特徴がある。成分（Ａ）は、通常食後に投与すると、食物胃排出能を亢進させることが知られているが、成分（Ｂ）は空腹時にのみ作用することが知られていた。ところが、後記実施例に示すように、成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者を、食後に投与したところ、成分（Ａ）単独でも、成分（Ｂ）単独でも胃運動を亢進させない用量で、優れた胃運動亢進効果が得られた。

ここで、食後に胃に作用するように投与するとは、食後、すなわち、胃に食物が入った後に、成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者の作用が発揮されるように投与することを意味し、例えば、食後に、成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者が有効血中濃度に達するように投与することである。有効血中濃度に達する時間は、投与経路によって異なり、例えば経口投与の場合には投与後２０分〜６０分位であり、静脈内投与の場合には投与後〜１０分位である。従って、投与経路を考慮し、成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者が食後に有効血中濃度に達するように投与すればよい。

一方、本発明において、「食後」とは、食事摂取直後から約３０分経過までをいう。

成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者が、同一投与経路である場合は、同時に投与すればよいが、異なる投与経路である場合は投与時期が相違する。例えば、成分（Ａ）が経口投与製剤、成分（Ｂ）が静脈内投与製剤の場合は、成分（Ａ）は食事摂取直前〜３０分前くらいに投与し、成分（Ｂ）は食後すぐに投与するのが望ましい。

本発明においては、成分（Ａ）と成分（Ｂ）は、一つの製剤中に配合してもよいし、別々の製剤にそれぞれ配合してもよい。また、成分（Ａ）を含有する製剤と成分（Ｂ）を含有する製剤とは、それぞれ投与経路が異なる製剤であってもよい。また、成分（Ａ）を含有する製剤と成分（Ｂ）を含有する製剤とは、組み合わせ製剤（キット）の形態で販売されてもよい。

本発明の医薬の投与形態としては特に制限は無く、治療目的に応じて適宜選択でき、具体的には経口剤（錠剤、被覆錠剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤、液剤など）、注射剤、坐剤、貼付剤、軟膏剤等が例示できる。グレリン、モチリンは注射剤が好ましく、グレリンアゴニスト、モチリンアゴニストは、経口剤又は注射剤が好ましい。

本発明の医薬は、その投与形態に応じて、薬学的に許容される担体を用いて、通常公知の方法により調製することができる。斯かる担体としては、通常の薬剤に汎用される各種のもの、例えば賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、希釈剤、溶解補助剤、懸濁化剤、等張化剤、pH調整剤、緩衝剤、安定化剤、着色剤、矯味剤、矯臭剤等を例示できる。

本発明における成分（Ａ）及び成分（Ｂ）の投与量は、本来成分（Ａ）及び成分（Ｂ）が単独で作用すると考えられている量よりも低用量でよい。例えば、成分（Ａ）の場合には、通常単独で作用すると考えられている量の１／５０〜１／５００で十分であり、成分（Ｂ）の場合には、通常単独で作用すると考えられている量の１／３〜１／３０で十分である。

本発明におけるグレリンの投与量は、静脈内投与の場合、成分１回あたり１．５〜２０μｇが好ましく、２〜６μｇがより好ましい。また、モチリンの投与量は静脈内投与の場合、成人１回あたり６〜４０μｇが好ましく、９〜２０μｇがより好ましい。また、グレリンアゴニスト、モチリンアゴニストの投与量は、投与経路、成分などによって相違するが、前記グレリン及びモチリンの投与量を参考にして、その成分のグレリン様作用、モチリン様作用に基づいて決定することができる。

本発明によれば、食後の胃運動が亢進されるので、食後の胃内の食物排出が促進される。従って、糖尿病性胃麻痺、術後胃麻痺、機能性ディスペプシア等により胃の食物排出能が低下している症状を改善することができる。

次に実施例を挙げて本発明を詳細に説明する。

実施例１
スンクスの食後期胃運動に対するグレリン、モチリン及びグレリンとモチリンの共投与の影響について検討した。

（１）材料及び方法
ア．薬物
スンクスモチリン（Ｓｃｒｕｍ Ｉｎｃ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）及びヒトグレリン（Ａｓｕｂｉｏ Ｐｈａｒｍａ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．，Ｈｙｏｇｏ，Ｊａｐａｎ）は、０．１％牛血清アルブミンを含むＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩液）に溶解した。
イ．動物
実験には、スンクス（オス、非近交系ＫＡＴ株、８−９週齢、７３−９０ｇ）を使用した。スンクスは、巣箱として空き缶を備えたプラスチックゲージで、２３±２℃、照明時間８：００〜２０：００、商用の鱒の餌（ＳＰ，Ｎｉｐｐｏｎ Ｆｏｒｍｕｌａ Ｆｅｅｄ Ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｉｎｇ，Ｙｏｋｏｈａｍａ，Ｊａｐａｎ）の自由摂餌条件下で飼育した。
ウ．手術（フォーストランスデューサの縫着及び頸静脈カテーテルの装着）
３時間絶食したスンクスにペントバルビタールナトリウム（５０ｍｇ／ｋｇ）を腹腔内投与し、麻酔した。正中切開後、胃を体外に露出し、胃体部の輪走筋方向にフォーストランスデューサを縫着した。フォーストランスデューサからのワイヤは、腹壁を通し、皮下を経由して首筋の後ろ側に露出した。
静脈内カテーテルを右頸静脈に挿入後、背部の体外に固定した。カテーテルは、凝固を防ぐために、ヘパリン化生食液（１００ｕｎｉｔｓ／ｍＬ）で満たした。
手術を施したスンクスは数日間、回復させた。
エ．胃運動の測定
投与及び胃運動の測定は、意識下、無麻酔及び無拘束の条件下で行った。
オ．投与
絶食したスンクス（８〜１０時間）に、餌２ｇを給餌し、１０分間摂食させた。１０分間摂食後に頸静脈カテーテルから、グレリン（５０ｎｇ／ｋｇ）、モチリン（３００ｎｇ／ｋｇ）又はグレリン及びモチリン（グレリン：５０ｎｇ／ｋｇ、モチリン：１００、２００、３００ｎｇ／ｋｇ）の混合液を急速静脈内投与した。
カ．胃運動の測定
増幅されたアナログ信号をアナログデジタル変換器（ＡＤＣ−２０，Ｐｉｃｏ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｌｔｄ，Ｓｔ Ｎｅｏｔｓ，ＵＫ）により変換し、デジタル信号をコンピュータにより記録した。
意識下スンクスにおけるＭＭＣのｐｈａｓｅIII収縮は、イヌ及びヒトのＭＭＣのｐｈａｓｅIII収縮に基づき定義した（すなわち、８ｇ以上の振幅を伴う収縮群で、５分以上続くこと）。
キ．データ解析
胃運動を運動係数（ＭＩ）により定量化した。薬物による運動係数（ＭＩ）は以下の式から算出した。
ＭＩ（％）＝Ａ／Ｂ×１００
Ａ：薬物を投与している１０分間の収縮のＡＵＣ
Ｂ：薬物投与前に出現した自発性ｐｈａｓｅIII収縮１０分間のＡＵＣ
ク．統計解析
Ｏｎｅ-ｗａｙ ＡＮＯＶＡ後、Ｔｕｋｅｙ法による多重比較検定を行った。０．０５以下のｐ値を統計学的有意とした。

（２）結果
ア．グレリン単独の作用
５０ｎｇ／ｋｇのグレリン（Ｇ）は、胃体部収縮を誘発しなかった（図１）。
イ．モチリン単独の作用
３００ｎｇ／ｋｇのモチリン（Ｍ）は、胃体部収縮を誘発しなかった（図２）。
ウ．グレリン（Ｇ）及びモチリン（Ｍ）共投与の作用
Ｇ ５０ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ２００ｎｇ／ｋｇ：自発性ｐｈａｓｅIII収縮よりも小さいｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した（図３）。
（運動係数：約４５％）
Ｇ ５０ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した（図４）。
（運動係数：約８５％）

実施例２
（１）材料及び方法
ア．薬物
スンクスモチリン（Ｓｃｒｕｍ Ｉｎｃ．，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）及びヒトのグレリン（Ａｓｕｂｉｏ Ｐｈａｒｍａ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．，Ｈｙｏｇｏ，Ｊａｐａｎ）は、０．１％牛血清アルブミンを含むＰＢＳに溶解した。
イ．動物
実験にはスンクス（オス、非近交系ＫＡＴ株、７−１５週齢、６０−１００ｇ）を使用した。スンクスは、巣箱として空き缶を備えたプラスチックゲージで、２３±２℃、照明時間８：００〜２０：００、商用の鱒の餌（ＳＰ，Ｎｉｐｐｏｎ Ｆｏｒｍｕｌａ Ｆｅｅｄ Ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｉｎｇ，Ｙｏｋｏｈａｍａ，Ｊａｐａｎ）の自由摂餌条件下で飼育した。
ウ．手術（フォーストランスデューサの縫着、迷走神経切除及び頸静脈カテーテルの装着）
３時間絶食したスンクスにペントバルビタールナトリウム（５０ｍｇ／ｋｇ）を腹腔内投与し、麻酔した。正中切開後、胃を体外に露出し、胃体部の輪走筋方向にフォーストランスデューサを縫着した。フォーストランスデューサからのワイヤは、腹壁を通し、皮下を経由して首筋の後ろ側に露出した。その後、全迷走神経切除術を実施した。食道下部を露出し、迷走神経の両枝を単離後、肝枝及び腹腔枝の上で、約３ｍｍの迷走神経を切除した。擬手術のスンクスでは、迷走神経を露出させたが、切断しなかった。静脈内カテーテルを右頸静脈に挿入後、背部の体外に固定した。カテーテルは、凝固を防ぐために、ヘパリン化生食液（１００ｕｎｉｔｓ／ｍＬ）で満たした。
手術の２日後から、胃運動を記録した。
エ．空腹及び食後期でのモチリン及びグレリンの投与
空腹期
モチリンの投与は、自発性ｐｈａｓｅIIIが終了したｌ０分後に開始した。合成スンクスモチリンは、５０ｎｇ／ｋｇ／ｍｉｎで１０分間持続注入し、持続注入量は、５０μＬ／１００ｇ ＢＷ／ｍｉｎとした。グレリンの投与は、自発性ｐｈａｓｅIIが終了したｌ０分後に開始した。アシルグレリンは、０．１、０．３、１、３μｇ／ｋｇ／ｍｉｎで１０分間持続注入した。
食後期
食後期収縮を観察するために、ｐｈａｓｅＩの間に１ｇの餌をスンクスに給餌した。摂食が終了した２０分後にモチリンを５０ｎｇ／ｋｇ／ｍｉｎで１０分間持続注入した。
オ．胃運動の測定
増幅されたアナログ信号をアナログデジタル変換器（ＡＤＣ−２０，Ｐｉｃｏ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｌｔｄ，Ｓｔ Ｎｅｏｔｓ，ＵＫ）により変換し、デジタル信号をコンピュータにより記録した。意識下スンクスにおけるＭＭＣのｐｈａｓｅIII収縮は、イヌ及びヒトのＭＭＣのｐｈａｓｅIII収縮に基づき定義した（すなわち、８ｇ以上の振幅を伴う収縮群で、５分以上続くこと）。
カ．データ
胃運動を運動係数（ＭＩ）により定量化した。薬物による運動係数（ＭＩ）は以下の式から算出した。
ＭＩ（％）＝Ａ／Ｂ×１００
Ａ：薬物を投与している１０分間の収縮のＡＵＣ
Ｂ：薬物投与前に出現した自発性ｐｈａｓｅIII収縮１０分間のＡＵＣ
ク．統計解析
ＡＮＯＶＡ後、Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓのｔ検定で行った。０．０５以下のｐ値を統計学的有意とした。

（２）結果
ア．絶食状態での自発性収縮
絶食状態の偽手術（Ｓｈａｍ）及び迷走神経切除（Ｖａｇｏｔｏｍｙ）スンクスの両方において、ｐｈａｓｅＩ、II及びIIIから成る周期的な伝播性消化管収縮運動（ＭＭＣ）が明らかに観察された（図５Ａ及び５Ｂ）。しかし、迷走神経切除スンクスのｐｈａｓｅIIの期間（５７±９分）は、偽手術スンクスのｐｈａｓｅIIの期間（１３９±１６分）よりも有意に短く、そして迷走神経切除スンクスのｐｈａｓｅＩの期間は増加した（２３８±７６分 ｖｓ ６０±６分）。ＭＭＣの全期間及びｐｈａｓｅIIIの期間は、偽手術と迷走神経切除スンクスでは有意な差はなかった（図５Ｃ）。迷走神経切除スンクスにおけるｐｈａｓｅIIの運動係数（ＭＩ）（１３％±３％）は、偽手術スンクスのｐｈａｓｅIIのＭＩ（２９％±５％）より有意に低かった（図５Ｄ）。
イ．ＭＭＣのｐｈａｓｅIIにおけるグレリンの効果
ｐｈａｓｅII収縮が開始した１０分後に、生理食塩水またはグレリン（０．１、０．３、１、３又は１０μｇ／ｋｇ／ｍｉｎ）を１０分間静脈内に注入した。偽手術スンクスでは、グレリンは自発性ｐｈａｓｅII収縮の振幅を増幅した（図６Ａ）。しかし、グレリンは、迷走神経切除スンクスの自発性ｐｈａｓｅII収縮の振幅を変化させなかった（図６Ｂ）。
偽手術スンクスにおけるグレリン投与中のＭＩは、迷走神経切除スンクスのグレリン投与中のＭＩよりも高かった（図６Ｃ）。
ウ．ＭＭＣのｐｈａｓｅIにおけるモチリンの効果
自発性ｐｈａｓｅIII収縮の１０分後、モチリン（５０ｎｇ／ｋｇ／ｍｉｎ）を静脈内に１０分間注入した。モチリン誘発性ｐｈａｓｅIII様収縮が偽手術及び迷走神経切除スンクスの両方で観察された（図７Ａ及び７Ｂ）。モチリン投与中の運動係数（ＭＩ）及びモチリンによる収縮時間は有意な差が認められなかった（図７Ｃ及び７Ｄ）。
エ．食後の胃運動及び食後状態でのモチリンの効果
摂食後、偽手術スンクスにおいて、ＭＭＣのｐｈａｓｅIは非周期的な食後期収縮に変わり、モチリン（５０ｎｇ／ｋｇ／ｍｉｎ）の１０分間投与は、ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発しなかった（図８Ａ）。対照的に、迷走神経切除スンクスにおいて、摂食はＭＭＣのｐｈａｓｅＩを中断せず、外因性モチリンは、絶食状態の時のモチリンの作用と同様に、強力なｐｈａｓｅIII収縮を誘導した（図８Ｂ）。摂食開始後１０分間のＭｌは、偽手術スンクスよりも迷走神経切除スンクスで有意に低く、食後のモチリン誘発性収縮のＭｌは、偽手術スンクスよりも迷走神経切除スンクスで有意に高かった（図８Ｃ）。
これらの結果から、スンクスにおいて、グレリンは迷走神経を介してＭＭＣのｐｈａｓｅIIを刺激すること、迷走神経は食後期収縮の開始に不可欠であること、モチリンにより誘発されるｐｈａｓｅIII収縮の阻害は迷走神経に依存していることが判明した。

実施例３（グレリン及びモチリン共投与の食後期運動に対する作用）
（１）材料及び方法
ア．薬物
スンクスモチリン（Ｓｃｒｕｍ Ｉｎｃ．，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）及びヒトグレリン（Ａｓｕｂｉｏ Ｐｈａｒｍａ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．，Ｈｙｏｇｏ，Ｊａｐａｎ）は、０．１％牛血清アルブミンを含むＰＢＳに溶解した。
イ．動物
実験には、スンクス（オス、非近交系ＫＡＴ株、７−３９週齢、５６−９１ｇ）を使用した。スンクスは、巣箱として空き缶を備えたプラスチックゲージで、２３±２℃、照明時間８：００〜２０：００、商用の鱒の餌（ＳＰ，Ｎｉｐｐｏｎ Ｆｏｒｍｕｌａ Ｆｅｅｄ Ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｉｎｇ，Ｙｏｋｏｈａｍａ，Ｊａｐａｎ）の自由摂餌条件下で飼育した。
ウ．手術（フォーストランスデューサの縫着及び頸静脈カテーテルの装着）
３時間絶食したスンクスにペントバルビタールナトリウム（５０ｍｇ／ｋｇ）を腹腔内投与し、麻酔した。正中切開後、胃を体外に露出し、胃体部の輪走筋方向にフォーストランスデューサを縫着した。フォーストランスデューサからのワイヤは、腹壁を通し、皮下を経由して首筋の後ろ側に露出した。
静脈内カテーテルを右頸静脈に挿入後、背部の体外に固定した。カテーテルは、凝固を防ぐために、ヘパリン化生食液（１００ ｕｎｉｔｓ／ｍＬ）で満たした。
手術を施したスンクスは数日間、回復させた。
エ．胃運動の測定
投与及び胃運動の測定は、意識下、無麻酔及び無拘束の条件下で行った。
オ．投与
絶食したスンクス（８〜１０時間）に、餌２ｇを給餌し、１０分間摂食させた。１０分間摂食後に頸静脈カテーテルから、グレリン（５０、１０００、３０００ｎｇ／ｋｇ）、モチリン（３００、５００、１０００、３０００ｎｇ／ｋｇ）又はグレリン及びモチリン（グレリン：１５、５０ｎｇ／ｋｇ、モチリン：１００、２００、３００ｎｇ／ｋｇ）の混合液を急速静脈内投与した。
カ．胃運動の測定
増幅されたアナログ信号をアナログデジタル変換器（ＡＤＣ−２０，Ｐｉｃｏ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｌｔｄ，Ｓｔ Ｎｅｏｔｓ，ＵＫ）により変換し、デジタル信号をコンピュータにより記録した。
意識下スンクスにおけるＭＭＣのｐｈａｓｅIII収縮は、イヌ及びヒトのＭＭＣのｐｈａｓｅIII収縮に基づき定義した（すなわち、８ｇ以上の振幅を伴う収縮群で、５分以上続くこと）。
キ．データ解析
胃運動を運動係数（ΔＭＩ）により定量化した。薬物による運動係数（ΔＭＩ）は以下の式から算出した。
ΔＭＩ（％）＝（Ａ−Ｃ）／Ｂ×１００
Ａ：薬物を投与している１０分間の収縮のＡＵＣ
Ｂ：薬物投与前に出現した自発性ｐｈａｓｅIII収縮１０分間のＡＵＣ
Ｃ：給餌後５〜１０分の５分間に出現した収縮のＡＵＣ×２

（２）結果（図９）。
ア．グレリン単独の作用
５０ｎｇ／ｋｇのグレリン（Ｇ）は、胃体部収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約２．８％）
１０００ｎｇ／ｋｇのグレリン（Ｇ）は、胃体部収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約７．６％）
３０００ｎｇ／ｋｇのグレリン（Ｇ）は、胃体部収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約０．０３％）
イ．モチリン単独の作用
３００ｎｇ／ｋｇのモチリン（Ｍ）は、胃体部収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約４．９％）
５００ｎｇ／ｋｇのモチリン（Ｍ）は、胃体部収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約６．８％）
１０００ｎｇ／ｋｇのモチリン（Ｍ）は、ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約４９．５％）
３０００ｎｇ／ｋｇのモチリン（Ｍ）は、ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約４８．３％）
ウ．グレリン（Ｇ）及びモチリン（Ｍ）共投与の作用
Ｇ ５０ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ１００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約１３．５％）
Ｇ １００ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ１００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約１２．１％）
Ｇ ２００ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ１００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約４．８％）
Ｇ ３００ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ１００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約３．５％）
Ｇ ２５ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ２００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約１９．４％）
Ｇ ５０ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ２００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約２４．４％）
Ｇ １００ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ２００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約７．９％）
Ｇ ２００ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ２００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約１．２％）
Ｇ ３００ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ２００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約２．１％）
Ｇ １２．５ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約６３．５％）
Ｇ ２５ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約７０．７％）
Ｇ ５０ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約５５．０％）
Ｇ １００ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約６１．３％）
Ｇ ２００ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約６７．３％）
Ｇ ３００ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約５７．０％）

実施例４（グレリン及びモチリン共投与の食後の胃排出に対する作用）
（１）材料及び方法
ア．薬物
スンクスモチリン（Ｓｃｒｕｍ Ｉｎｃ．，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）及びヒトグレリン（Ａｓｕｂｉｏ Ｐｈａｒｍａ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．，Ｈｙｏｇｏ，Ｊａｐａｎ）は、０．１％牛血清アルブミンを含むＰＢＳ（以下０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳ）に溶解した。
イ．動物
実験にはスンクス（オス、非近交系ＫＡＴ株、７−１４週齢、６０−９１ｇ）を使用した。スンクスは、巣箱として空き缶を備えたプラスチックゲージで、２３±２℃、照明時間８：００〜２０：００、商用の鱒の餌（ＳＰ，Ｎｉｐｐｏｎ Ｆｏｒｍｕｌａ Ｆｅｅｄ Ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｉｎｇ，Ｙｏｋｏｈａｍａ，Ｊａｐａｎ）の自由摂餌条件下で飼育した。
ウ．手術（頸静脈カテーテルの装着）
３時間絶食したスンクスにペントバルビタールナトリウム（５０ｍｇ／ｋｇ）を腹腔内投与し、麻酔した。静脈内カテーテルを右頸静脈に挿入後、背部の体外に固定した。カテーテルは、凝固を防ぐために、ヘパリン化生食液（１００ ｕｎｉｔｓ／ｍＬ）で満たした。
手術を施したスンクスは数日間、回復させた。
エ．胃排出の測定
１１〜１２時間絶食したｐｈａｓｅI期のスンクスに餌を１．５ｇ与え、摂食開始１０分後に溶媒である０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳ溶液又はｐｈａｓｅIII様の強収縮を惹起するグレリン及びモチリン（グレリン：５０ｎｇ／ｋｇ、モチリン：３００ｎｇ／ｋｇ）の混合液を急速静脈内投与した。投与２０分後にペントバルビタールナトリウムの腹腔内過剰投与によりスンクスを安楽死させ、幽門部及び噴門部を縫合糸で結紮し、胃を摘出した。続いて胃を大彎に沿って開き、胃内の食物をシャーレ内に集めた。胃内に残っていた食物は３７℃に設定したインキュベーター内で乾燥させ、４８時間後に電子天秤を用いて乾燥重量を測定した。胃内残存率（％）を（胃から取り出した餌の乾燥重量／食べた餌の重量）×１００で算出し、評価した。
オ．統計解析
Ｕｎ−ｐａｉｒｄ Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓのｔ検定で行った。０．０５以下のｐ値を統計学的有意とした。

（２）結果（図１０）。
ア．０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳ投与の作用
０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳ：胃内残存率は、４３．４％であった。
イ．グレリン（Ｇ）及びモチリン（Ｍ）共投与の作用
Ｇ５０ｎｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：胃内残存率は、２２．３％であった。

実施例５（グレリンアゴニストとモチリン共投与の食後の食後期運動に対する作用）
（１）材料及び方法
ア．薬物
スンクスモチリン（Ｓｃｒｕｍ Ｉｎｃ．，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）は、０．１％牛血清アルブミンを含むＰＢＳに溶解した。グレリンアゴニスト（ＷＯ２００９／０９８９０１の実施例３４（ａ）の化合物は生理食塩水に溶解した。
イ．動物
実験には、スンクス（オス、非近交系ＫＡＴ株、８−１０週齢、７６−８４ｇ）を使用した。スンクスは、巣箱として空き缶を備えたプラスチックゲージで、２３±２℃、照明時間８：００〜２０：００、商用の鱒の餌（ＳＰ，Ｎｉｐｐｏｎ Ｆｏｒｍｕｌａ Ｆｅｅｄ Ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｉｎｇ，Ｙｏｋｏｈａｍａ，Ｊａｐａｎ）の自由摂餌条件下で飼育した。
ウ．手術（フォーストランスデューサの縫着及び頸静脈カテーテルの装着）
３時間絶食したスンクスにペントバルビタールナトリウム（５０ｍｇ／ｋｇ）を腹腔内投与し、麻酔した。正中切開後、胃を体外に露出し、胃体部の輪走筋方向にフォーストランスデューサを縫着した。フォーストランスデューサからのワイヤは、腹壁を通し、皮下を経由して首筋の後ろ側に露出した。
静脈内カテーテルを右頸静脈に挿入後、背部の体外に固定した。カテーテルは、凝固を防ぐために、ヘパリン化生食液（１００ｕｎｉｔｓ／ｍＬ）で満たした。
手術を施したスンクスは数日間、回復させた。
エ．胃運動の測定
投与及び胃運動の測定は、意識下、無麻酔及び無拘束の条件下で行った。
オ．投与
絶食したスンクス（８〜１０時間）に、餌２ｇを給餌し、１０分間摂食させた。１０分間摂食後に頸静脈カテーテルから、グレリンアゴニスト（１０、３０ｍｇ／ｋｇ）又はグレリンアゴニスト及びモチリン（グレリンアゴニスト：５０、１００μｇ／ｋｇ、モチリン：３００ｎｇ／ｋｇ）の混合液を急速静脈内投与した。
カ．胃運動の測定
増幅されたアナログ信号をアナログデジタル変換器（ＡＤＣ−２０，Ｐｉｃｏ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｌｔｄ，Ｓｔ Ｎｅｏｔｓ，ＵＫ）により変換し、デジタル信号をコンピュータにより記録した。
意識下スンクスにおけるＭＭＣのｐｈａｓｅIII収縮は、イヌ及びヒトのＭＭＣのｐｈａｓｅIII収縮に基づき定義した（すなわち、８ｇ以上の振幅を伴う収縮群で、５分以上続くこと）。
キ．データ解析
胃運動を運動係数（ΔＭＩ）により定量化した。薬物による運動係数（ΔＭＩ）は以下の式から算出した。
ΔＭＩ（％）＝（Ａ−Ｃ）／Ｂ×１００
Ａ：薬物を投与している１０分間の収縮のＡＵＣ
Ｂ：薬物投与前に出現した自発性ｐｈａｓｅIII収縮１０分間のＡＵＣ
Ｃ：給餌後５〜１０分の５分間に出現した収縮のＡＵＣ×２

（２）結果（図１１Ａ、Ｂ）
ア．グレリンアゴニスト単独の作用
１０ｍｇ／ｋｇのグレリンアゴニスト（Ｚ）は、胃体部収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約５．７％）
３０ｍｇ／ｋｇのグレリンアゴニスト（Ｚ）は、胃体部収縮を誘発しなかった。
（運動係数：約３．７％）
イ．グレリンアゴニスト（Ｚ）及びモチリン（Ｍ）共投与の作用
Ｚ ５０μｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約６５．９％）
Ｚ １００μｇ／ｋｇ＋Ｍ３００ｎｇ／ｋｇ：ｐｈａｓｅIII様収縮を誘発した。
（運動係数：約５９．１％）

Claims (3)

1. （Ａ）グレリン若しくはグレリンアゴニストと（Ｂ）モチリン若しくはモチリンアゴニストとの両者が食後に胃に作用するように投与して用いられることを特徴とする、成分（Ａ）と成分（Ｂ）を有効成分とする食後期の胃運動亢進剤。
2. 食後に胃に作用するように投与する手段が、食後に成分（Ａ）と成分（Ｂ）の両者が有効血中濃度に達するように投与するものである請求項１記載の食後期の胃運動亢進剤。
3. 糖尿病性胃麻痺、術後胃麻痺及び機能性ディスペプシアから選ばれる疾患における食後期の胃運動亢進剤である請求項１又は２記載の食後期の胃運動亢進剤。