JP5749947B2 - ネコ由来α１ミクログロブリンの測定方法および測定キット、ならびに、そのための抗体および抗体産生細胞株 - Google Patents
ネコ由来α１ミクログロブリンの測定方法および測定キット、ならびに、そのための抗体および抗体産生細胞株 Download PDFInfo
- Publication number
- JP5749947B2 JP5749947B2 JP2011054493A JP2011054493A JP5749947B2 JP 5749947 B2 JP5749947 B2 JP 5749947B2 JP 2011054493 A JP2011054493 A JP 2011054493A JP 2011054493 A JP2011054493 A JP 2011054493A JP 5749947 B2 JP5749947 B2 JP 5749947B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- antibody
- mouse
- ferm
- derived
- cell line
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
本発明は、ネコ由来のα１ミクログロブリンの測定方法および測定キット、ならびに、そのための抗体および抗体産生細胞株に関する。
近年、少子化に伴い、ペットを飼う世帯は増加の一途をたどっている。しかしながら、ペットの性質に即した飼い方がなされていないケースも少なくはない。特に、偏食の結果、ペットが糖尿病などの成人病的症状を引き起こしてしまい、ペットを獣医に通院させるケースまで見られる。
このような現状から、近年はペットの診断に関する事業が拡大しつつある。仮に、ペットの腎症を早期に発見することができれば、獣医師は、飼い主によるペットの飼い方、特に食事の与え方について改善を指導できるようになる。一般に、腎症のマーカーの１つとして、α１ミクログロブリン（α1-m）が挙げられる。
α１ミクログロブリンは、たとえばヒト由来の場合には、ヒトの全身の細胞で産生されており、細胞内外の環境変化にはほとんど影響を受けないで一定の産生量で細胞外に分泌され、近年では、糖尿病性腎症などの早期診断の指標として有用であるとする報告例がみられる。
しかしながら、ネコ由来のα１ミクログロブリンに関しては、当該タンパクに特異的な抗体が存在しないどころ、当該タンパクのアミノ酸配列すら解明されていないのが現状である。
本発明者は、ネコ由来のα１ミクログロブリンのアミノ酸配列を解明すると共に、当該タンパクに特異的に結合するモノクローナル抗体を産生することに成功し、特許出願を行っている（特願２０１０−０３３６７６、本明細書中において「先願」と呼称する）。
しかしながら、これらの抗体は、高感度でネコ由来のα１ミクログロブリンの濃度を測定するには十分ではなかった。
Journal of Veterinary Internal Medicine. 22(5):1111-1117, 2008
本発明は、上記課題を解決するためになされたものであって、その目的とするところは、より高感度でネコ由来のα１ミクログロブリンに特異的な抗体の組み合わせによる測定方法およびキット、ならびに、そのための抗体および抗体産生細胞株を提供することである。
本発明者は、鋭意研究の結果、この抗体を産生する細胞の取得における、マウスの取得箇所等により、ネコ由来のα１ミクログロブリンの抗体への結合力が異なる点を発見し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は以下のとおりである。
本発明は、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）により産生された第１の抗体と、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）により産生された第２の抗体とを用いて酵素免疫測定法（サンドイッチ法）により検体中のネコ由来α１ミクログロブリン濃度を測定する方法を提供する。
本発明は、さらに、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）により産生された第１の抗体と、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）により産生された第２の抗体とを含む、ネコ由来α１ミクログロブリン濃度を測定するキットについても提供する。
また本発明は、新規な抗体産生細胞株である細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）についても提供する。
本発明はさらに、配列番号１で表わされるアミノ酸配列を有するタンパク質を抗原とし、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）または細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）により産生されたものである、ネコ由来α１ミクログロブリンに特異的に結合する抗体についても提供する。
本発明によれば、より確実に検体中のネコ由来α１ミクログロブリン濃度を高感度で測定することができるようになる。
本発明によれば、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）により産生された第１の抗体と、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）により産生された第２の抗体とを用いて酵素免疫測定法（サンドイッチ法）により、検体中のネコ由来α１ミクログロブリン濃度を測定する方法が提供される。
ここで、検体とは、ネコ由来の血液、尿、骨髄液およびネコ由来細胞の懸濁液の他、ネコの血液透析で用いた透析液も含まれる。
また、ネコ由来α１ミクログロブリンとは、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質をいう。本発明者は、ネコの遺伝子の中でα１ミクログロブリンをコードする構造遺伝子（本明細書中において「α1-m遺伝子」と呼称する。）を初めて特定し、当該α1-m遺伝子によりネコ由来のα１ミクログロブリン（本明細書中において「α1-m」と呼称する。）のアミノ酸配列も初めて解析し、特許出願をしている（特願２０１０−０３３６７６）。配列番号１に示されるアミノ酸配列を有する本発明のタンパク質が、本発明者によって初めてアミノ酸配列が特定されたネコ由来のα1-mである。
また、本発明者は、このネコ由来α１ミクログロブリンを抗原とする抗体を産生する細胞の作製に成功し、独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに寄託を行っている（受託番号：FERM P-21910、FERM P-21911）。本発明は、上述の抗体よりもより好感度にα1-mを測定することに成功し、改めて、平成２３年１月１２日付けで独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに寄託を行ったものである（受託番号：FERM P-22051、受託番号：FERM P-22052）。本発明は、この新規な抗体産生細胞株である細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）についても提供する。
また本発明は、配列番号１で表わされるアミノ酸配列を有するタンパク質（ネコ由来のα1-m）を抗原とし、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）により産生されたものである、ネコ由来α１ミクログロブリンに特異的に結合する抗体（第１の抗体）、ならびに、配列番号１で表わされるアミノ酸配列を有するタンパク質（ネコ由来のα1-m）を抗原とし、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）により産生されたものである、ネコ由来α１ミクログロブリンに特異的に結合する抗体（第２の抗体）についても提供する。
本発明の第１の抗体および第２の抗体は、酵素免疫測定法（サンドイッチ法）、蛍光免疫測定法（サンドイッチ法）、放射性同位体免疫測定法（サンドイッチ法）、免疫比濁法およびラテックス免疫比濁法の２つの抗体として用いられる。
酵素免疫測定法（サンドイッチ法）は、タンパク定量における代表的な測定方法であり、当業者であれば容易に実践できる測定方法である。酵素免疫測定法（サンドイッチ法）は、基本的には、固相に固定する抗体（捕獲抗体）と、当該捕獲抗体に結合した抗原に対してさらに結合する抗体（一次抗体）の２種類を用いる。この上で、発色または発光反応を行うための酵素標識が一次抗体になされている。または、一次抗体に酵素標識がなされていない場合は、一次抗体にさらに結合可能な抗体であって、酵素標識がなされている抗体（二次抗体）を用いてもよい。二次抗体としては、ＩｇＧおよびＩｇＭ等が利用できる可能性がある。
なお、ここでいう酵素標識とは、発色または発光反応に利用可能な酵素を直接一次抗体に標識する態様の他、ある特定の結合様式を介して反応時に間接的に酵素を修飾する態様も含むことは、当業者であれば常識である。特定の結合様式としては、例えば、アビジン−ビオチン結合が代表的である。より詳しく説明すると、ビオチンを修飾の一次抗体と、アビジン修飾ペルオキシダーゼの組み合わせがこの態様に該当し、アビジン−ビオチン結合という結合様式を介してペルオキシダーゼは間接的に一次抗体に修飾している。
一次抗体等に標識される酵素は、当業者が適宜選択することができ、ペルオキシダーゼの他、アルカリホスファターゼ、ルシフェラーゼおよびβ−ガラクトシダーゼ等を用いることができる。酵素に用いる基質についても、用いる酵素の種類に応じて当業者が適宜選択することができ、例えば、酵素がペルオキシダーゼの場合、テトラメチルベンジリン、２，２’−アジノビス（３−エチルベゾチアゾリン−６−スルホン酸）アンモニウム塩、４−アミノアンチピリン、４−アミノアンチピリン塩酸塩、５−アミノサリチル酸、２，４−ジクロロフェノール、Ｎ，Ｎ−ジメチル−ｍ−トルイジンおよびＮ，Ｎ−ジメチルアニリン等が挙げられ、酵素がアルカリフォスファターゼの場合、ブルーテトラゾリウム、５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリルリン酸２ナトリウム塩、５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリルリン酸ｐ−トルイジン塩およびニトロブルーテトラゾリウム等が挙げられる、酵素がルシフェラーゼの場合、Ｄ−（−）−ルシフェリンが挙げられ、酵素がβ−ガラクトシダーゼの場合、５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリルβ−Ｄ−ガラクトシダーゼ、５−ブロモ−６−クロロ−３−インドリルβ−Ｄ−ガラクトシダーゼ、５−ブロモ−３−インドリルβ−Ｄ−ガラクトシダーゼおよび６−クロロ−３−インドリルβ−Ｄ−ガラクトシダーゼ等が挙げられる。
本発明の第１の抗体は、捕獲抗体、一次抗体のいずれとして用いられてもよく、限定されるものではない。換言すれば、第２の抗体は、第１の抗体が捕獲抗体である場合は一次抗体であり、第１の抗体が一次抗体である場合は捕獲抗体となる。この点は後述する実施例においても実証されている。
また、本発明の第１の抗体および第２の抗体が酵素免疫測定法（サンドイッチ法）で測定できるということは、当業者であれば、蛍光免疫測定法（サンドイッチ法）、放射性同位体免疫測定法（サンドイッチ法）、免疫比濁法およびラテックス免疫比濁法にも応用することができる。例えば、測定法として、蛍光免疫測定法（サンドイッチ法）を用いる場合は、上述の酵素免疫測定法（サンドイッチ法）における酵素標識の代わりに蛍光標識を、また、放射性同位体免疫測定法（サンドイッチ法）を用いる場合は、上述の酵素免疫測定法（サンドイッチ法）における酵素標識の代わりに放射性同位体標識を適用すればよい。また、免疫比濁法およびラテックス免疫比濁法に至っては、反応系においてこれら２つの抗体を用いればよいだけのことである。ラテックス免疫比濁法におけるラテックスの材料も、当業者であれば適宜選択できるものであるが、一般的に用いられているポリスチレンを用いればよい。
本発明は、さらに上述した本発明の第１の抗体、第２の抗体を利用した測定診断キットについても提供するものである。本発明の診断キットは、上述の測定法に応じて、当該測定が利用できる内容で組み合わされるものであり、例えば、測定法として酵素免疫測定法（サンドイッチ法）を選択する場合、本発明の抗体以外に、ウェル、色原性基質溶液、反応停止液、洗浄液、標準溶液などを含むよう設計される。
以下、参考例、実施例および実験例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
＜参考例＞
以下、参考例としてネコ由来α1-mの合成と、当該α1-mを用いた抗体産生ハイブリドーマの作製、ならびに本発明の抗体の作製を示す。これら参考例は、実質的に先願の手法と同一である。
以下、参考例としてネコ由来α1-mの合成と、当該α1-mを用いた抗体産生ハイブリドーマの作製、ならびに本発明の抗体の作製を示す。これら参考例は、実質的に先願の手法と同一である。
＜参考例１：ネコ由来α1-mの合成＞
（１）プライマーの設計
シグナルペプチド領域と考えられる部分および複合タンパクであるビクニンを除いた、ネコ由来のα1-mタンパク領域のみの核酸を増幅するためにPCRを行った。プライマーは、上流側プライマーは5’末端にEcoRIの制限酵素サイトを付加し、下流側プライマーは3’末端にXhoIの制限酵素サイトおよびHis−Tagを付加し、それぞれ以下の塩基配列を有するように設計した。
（１）プライマーの設計
シグナルペプチド領域と考えられる部分および複合タンパクであるビクニンを除いた、ネコ由来のα1-mタンパク領域のみの核酸を増幅するためにPCRを行った。プライマーは、上流側プライマーは5’末端にEcoRIの制限酵素サイトを付加し、下流側プライマーは3’末端にXhoIの制限酵素サイトおよびHis−Tagを付加し、それぞれ以下の塩基配列を有するように設計した。
・上流側プライマー：5'-CACGGATCCAGCCCCGTGCTGACGCCGCCCGATGACATCCAAGTGCAAGAGAACTT-3'（配列番号２）
・下流側プライマー：5'-CACCTCGAGTTAGTGGTGGTGGTGGTGATGCGTGAGTGGAGAGGGCTCTGGTTCC-3'（配列番号３）
（２）PCR法
上述したような上流側プライマーおよび下流側プライマーを用いて、95℃2分1サイクル、95℃1分、75℃1分、72℃1分30サイクル、72℃10分1サイクルの条件でPCRを行った。PCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、アガロースゲルからDNA抽出した。DNA抽出溶液をフェノールと等量混合した後、15700×gで5分間遠心分離後、核酸が含まれる水層を分離した。分離した水層にクロロホルムを等量混合し、15700×gで5分間遠心分離した後、上清を分離した。次に、分離後の溶液に2.5倍量の100％エタノールを添加し、−80℃で30分静置し、その後15700×gで5分間遠心分離した後、上清を除去し、沈渣を得た。沈渣に70％エタノールを添加し、15700×gで5分間遠心分離後、上清を除去し、PCR産物の濃縮試料を得た。PCR産物の濃縮試料に、5μlのEcoRI（タカラバイオ株式会社）、5μlのXhoI（タカラバイオ株式会社）、5μlのH.Buffer（500mM Tris-HCl, pH7.5、100mM MgCl2、10mM Dithiothreitol、1000mM NaCl）および35μlのRNase free H2Oを混和した。また、5μl（2.5μg）のpGEX6P-1（GEヘルスケアバイオサイエンス）を、5μlのEcoRI、5μlのXhoI、5μlのH.Bufferおよび30μlのRNase free H2Oと混和した。各溶液を37℃で1晩インキュベートすることで制限酵素処理した後、アガロースゲル電気泳動を行い、QIAquick Gel Extraction Kit（QIAGEN）を使用して、各DNAバンドの抽出を行った。DNA Ligation Kit（タカラバイオ株式会社）を用いてライゲーションを行った。すなわち、5μlのLigation Mix、1μlの制限酵素処理されたα1-mのcDNA溶液および4μlのpGEX6P-1を混和し、16℃で1晩静置し、α1-mのcDNAをライゲーションさせたplasmid vector（pGEX-α1-m）が作出された。さらに、このpGEX-α1-m溶液2.5μlを、E.coli JM109 Competent Cells（タカラバイオ株式会社）25μlに添加し、氷上で30分間静置し、次に42℃の恒温槽で45秒間Heat Shockを与え、直ちに2分間氷冷後SOC培地（2％ tryptone、0.5％ Yeast extract、10mM NaCl、2.5mM KCl、10mM MgSO4、10mM MgCl2、20mM glucose）250μlを緩やかに加え、37℃1時間保温した。pGEX-α1-mがトランスフェクトされた大腸菌溶液100μlをアンピシリン加LB培地にそれぞれ塗布し、37℃で1晩静置後、コロニーを釣菌し、アンピシリン加LB液体培地1.2mlに混和後、37℃で1晩培養した。培養後の液体培地は、13400×gで1分間遠心分離後、上清を完全に除去し、得られた沈渣から、QIAPrep Spin Mini Kit50（QIAGEN）を用いて、pGEX-α1-mの抽出を行った。このpGEX-α1-mを、アガロースゲル電気泳動法により確認した。また、pGEX-α1-mのサブクローニングの成否は、T7プライマーを用いてDye Deoxy Terminator Cycle Sequencing kit（Applied Biosystems）およびApplied Biosystems 3130xl Genetic Analyzer（Applied Biosystems）を使用した塩基配列解析により行った。
・下流側プライマー：5'-CACCTCGAGTTAGTGGTGGTGGTGGTGATGCGTGAGTGGAGAGGGCTCTGGTTCC-3'（配列番号３）
（２）PCR法
上述したような上流側プライマーおよび下流側プライマーを用いて、95℃2分1サイクル、95℃1分、75℃1分、72℃1分30サイクル、72℃10分1サイクルの条件でPCRを行った。PCR産物をアガロースゲル電気泳動した後、アガロースゲルからDNA抽出した。DNA抽出溶液をフェノールと等量混合した後、15700×gで5分間遠心分離後、核酸が含まれる水層を分離した。分離した水層にクロロホルムを等量混合し、15700×gで5分間遠心分離した後、上清を分離した。次に、分離後の溶液に2.5倍量の100％エタノールを添加し、−80℃で30分静置し、その後15700×gで5分間遠心分離した後、上清を除去し、沈渣を得た。沈渣に70％エタノールを添加し、15700×gで5分間遠心分離後、上清を除去し、PCR産物の濃縮試料を得た。PCR産物の濃縮試料に、5μlのEcoRI（タカラバイオ株式会社）、5μlのXhoI（タカラバイオ株式会社）、5μlのH.Buffer（500mM Tris-HCl, pH7.5、100mM MgCl2、10mM Dithiothreitol、1000mM NaCl）および35μlのRNase free H2Oを混和した。また、5μl（2.5μg）のpGEX6P-1（GEヘルスケアバイオサイエンス）を、5μlのEcoRI、5μlのXhoI、5μlのH.Bufferおよび30μlのRNase free H2Oと混和した。各溶液を37℃で1晩インキュベートすることで制限酵素処理した後、アガロースゲル電気泳動を行い、QIAquick Gel Extraction Kit（QIAGEN）を使用して、各DNAバンドの抽出を行った。DNA Ligation Kit（タカラバイオ株式会社）を用いてライゲーションを行った。すなわち、5μlのLigation Mix、1μlの制限酵素処理されたα1-mのcDNA溶液および4μlのpGEX6P-1を混和し、16℃で1晩静置し、α1-mのcDNAをライゲーションさせたplasmid vector（pGEX-α1-m）が作出された。さらに、このpGEX-α1-m溶液2.5μlを、E.coli JM109 Competent Cells（タカラバイオ株式会社）25μlに添加し、氷上で30分間静置し、次に42℃の恒温槽で45秒間Heat Shockを与え、直ちに2分間氷冷後SOC培地（2％ tryptone、0.5％ Yeast extract、10mM NaCl、2.5mM KCl、10mM MgSO4、10mM MgCl2、20mM glucose）250μlを緩やかに加え、37℃1時間保温した。pGEX-α1-mがトランスフェクトされた大腸菌溶液100μlをアンピシリン加LB培地にそれぞれ塗布し、37℃で1晩静置後、コロニーを釣菌し、アンピシリン加LB液体培地1.2mlに混和後、37℃で1晩培養した。培養後の液体培地は、13400×gで1分間遠心分離後、上清を完全に除去し、得られた沈渣から、QIAPrep Spin Mini Kit50（QIAGEN）を用いて、pGEX-α1-mの抽出を行った。このpGEX-α1-mを、アガロースゲル電気泳動法により確認した。また、pGEX-α1-mのサブクローニングの成否は、T7プライマーを用いてDye Deoxy Terminator Cycle Sequencing kit（Applied Biosystems）およびApplied Biosystems 3130xl Genetic Analyzer（Applied Biosystems）を使用した塩基配列解析により行った。
（３）His−Tag付きGST融合タンパク発現の確認
pGEX-α1-mがトランスフェクトされた大腸菌を、37℃、1晩LB培地で培養後、100μlをIsopropyl-β-D-thiogalactopyranoside（IPTG：0.1mM）20μlと混和し、30℃で約2時間振盪培養（BR40-LF、TAITEC）した。振盪培養後の大腸菌溶液を、15700×gで1分間遠心分離後、上清を除去し、沈渣に可溶化液（50μlの50mM Tris-Hcl、100μlの1×RIPA Lysis Buffer（Up State）、140μlのProtease Inhibitor、710μlのH2O）30μlを加え可溶化後、15700×gで5分遠心分離し、上清と沈渣とに分けた。上清30μlに、30μlの2×SB溶液(2％ SDS、40％ Glycerol、0.6％ BPB、25mM Tris-HCl Buffer（pH6.8、20℃））および1μlの2MEを加え、95℃で3分間加温した。沈渣にSB溶液20μlを加え、超音波破砕機（UR-20P、TOMY SEIKO CO,LTD）で5秒間破砕後、95℃で3分間加温した。その後、上清および沈渣について、SDS-PAGEにてHis−Tag付きGST融合タンパク発現の確認およびHis−Tag付きGST融合タンパクの大腸菌での可溶性を確認した。
pGEX-α1-mがトランスフェクトされた大腸菌を、37℃、1晩LB培地で培養後、100μlをIsopropyl-β-D-thiogalactopyranoside（IPTG：0.1mM）20μlと混和し、30℃で約2時間振盪培養（BR40-LF、TAITEC）した。振盪培養後の大腸菌溶液を、15700×gで1分間遠心分離後、上清を除去し、沈渣に可溶化液（50μlの50mM Tris-Hcl、100μlの1×RIPA Lysis Buffer（Up State）、140μlのProtease Inhibitor、710μlのH2O）30μlを加え可溶化後、15700×gで5分遠心分離し、上清と沈渣とに分けた。上清30μlに、30μlの2×SB溶液(2％ SDS、40％ Glycerol、0.6％ BPB、25mM Tris-HCl Buffer（pH6.8、20℃））および1μlの2MEを加え、95℃で3分間加温した。沈渣にSB溶液20μlを加え、超音波破砕機（UR-20P、TOMY SEIKO CO,LTD）で5秒間破砕後、95℃で3分間加温した。その後、上清および沈渣について、SDS-PAGEにてHis−Tag付きGST融合タンパク発現の確認およびHis−Tag付きGST融合タンパクの大腸菌での可溶性を確認した。
（４）SDS−PAGE法
SDS−PAGEは、コンパクトPAGE（AE-7300、ATTO）を用いてLaemmliの方法に準拠し、これに以下に示す修正を加え実施した。すなわち、分離ゲルの組成は、15％ Acrylamide、0.2％ N,N-Methylene-bis-Acrylamide、0.1％ SDS、375mM Tris-HCl buffer（pH8.8、20℃）とした。ゲルは2・4連ゲル作製器（AE-7344、ATTO）を用いて作製した。電極緩衝液の組成は、0.1％ SDS、129mM glycine、25mM Tris（pH8.3、20℃）とした。泳動用試料（SB）の組成は、1％ SDS、20％ Glycerol、0.3％ BPB、12.5mM Tris-HCl Buffer（pH6.8、20℃）とした。また、マーカーとして、プレステインドSDS−PAGEスタンダード（Broad）マーカー（BIO-RAD）もしくはSDS−PAGEスタンダード（Broad）マーカー（BIO-RAD）を用いた。泳動は、Tris-Gly／PAGE Highモードで30分泳動した後、Tris-Gly／PAGE Lowモードにして、下部イオン界面がゲル下端から1〜2mm上方の位置に移動したときに終了した。SDS−PAGE終了後のゲルについて、Oakle法に準拠した銀染色法を実施した。具体的には、ゲルを30％ ethanol、10％ acetic acid溶液にて固定後、洗浄し、20％ ethanolに5分間2回浸漬した。20％ ethanol除去後、5％ glutaraldehyde溶液にて4分間反応させ、純水で洗浄後、20％ ethanolに4分間2回浸漬した。その後、純水で洗浄し、アンモニア性硝酸銀溶液にて5分間反応させ、純水で洗浄後、0.005％ citric acid、0.019％ formaldehyde溶液で発色させた。発色確認後のゲルについて、20％ ethanol、10％ acetic acid溶液にて5分間固定し、20％ ethanolに5分間2回浸漬後、写真を撮影した。なお、銀染色法はすべて遮光条件下にて実施した。
SDS−PAGEは、コンパクトPAGE（AE-7300、ATTO）を用いてLaemmliの方法に準拠し、これに以下に示す修正を加え実施した。すなわち、分離ゲルの組成は、15％ Acrylamide、0.2％ N,N-Methylene-bis-Acrylamide、0.1％ SDS、375mM Tris-HCl buffer（pH8.8、20℃）とした。ゲルは2・4連ゲル作製器（AE-7344、ATTO）を用いて作製した。電極緩衝液の組成は、0.1％ SDS、129mM glycine、25mM Tris（pH8.3、20℃）とした。泳動用試料（SB）の組成は、1％ SDS、20％ Glycerol、0.3％ BPB、12.5mM Tris-HCl Buffer（pH6.8、20℃）とした。また、マーカーとして、プレステインドSDS−PAGEスタンダード（Broad）マーカー（BIO-RAD）もしくはSDS−PAGEスタンダード（Broad）マーカー（BIO-RAD）を用いた。泳動は、Tris-Gly／PAGE Highモードで30分泳動した後、Tris-Gly／PAGE Lowモードにして、下部イオン界面がゲル下端から1〜2mm上方の位置に移動したときに終了した。SDS−PAGE終了後のゲルについて、Oakle法に準拠した銀染色法を実施した。具体的には、ゲルを30％ ethanol、10％ acetic acid溶液にて固定後、洗浄し、20％ ethanolに5分間2回浸漬した。20％ ethanol除去後、5％ glutaraldehyde溶液にて4分間反応させ、純水で洗浄後、20％ ethanolに4分間2回浸漬した。その後、純水で洗浄し、アンモニア性硝酸銀溶液にて5分間反応させ、純水で洗浄後、0.005％ citric acid、0.019％ formaldehyde溶液で発色させた。発色確認後のゲルについて、20％ ethanol、10％ acetic acid溶液にて5分間固定し、20％ ethanolに5分間2回浸漬後、写真を撮影した。なお、銀染色法はすべて遮光条件下にて実施した。
（５）His−Tag付きGST融合タンパクの発現誘導と単離
His−Tag付きGST融合タンパクの発現が確認された大腸菌を、アンピシリン加LB寒天培地に塗布し、コロニーを釣菌後、3mlのアンピシリン加LB液体培地に加え1晩37℃で振盪培養した。続いて、その培養液3mlを、アンピシリン加LB液体培地250mlに加え、37℃で約150分振盪培養後、2.5mlの0.1mM IPTGを添加し、約2時間、25℃で振盪培養した。His−Tag付きGST融合タンパク発現誘導後の培養液を6000×gで15分間遠心分離した沈渣を、20mlの0.5mM EDTA、0.4M NaCl、5mM MgCl2、5％グリセロール、0.5mM Phenylmethylsulfonyl fluoride（PMSF）、1mM Dithiothreito（DTT）および1mg／mlリゾチーム加50mM Tris-HCl（pH8.0）に懸濁し、4℃で1時間静置後、凍結融解を2回行った。続いて、Nonidet P-40を0.5％添加し、超音波破砕機で20秒間×5回破砕後、9300×gで20分間遠心分離し、上清と沈渣をSDS−PAGEにて分析した。泳動の結果、His−Tag付きGST融合タンパクは上清に含まれていることが分かった（図１）。
His−Tag付きGST融合タンパクの発現が確認された大腸菌を、アンピシリン加LB寒天培地に塗布し、コロニーを釣菌後、3mlのアンピシリン加LB液体培地に加え1晩37℃で振盪培養した。続いて、その培養液3mlを、アンピシリン加LB液体培地250mlに加え、37℃で約150分振盪培養後、2.5mlの0.1mM IPTGを添加し、約2時間、25℃で振盪培養した。His−Tag付きGST融合タンパク発現誘導後の培養液を6000×gで15分間遠心分離した沈渣を、20mlの0.5mM EDTA、0.4M NaCl、5mM MgCl2、5％グリセロール、0.5mM Phenylmethylsulfonyl fluoride（PMSF）、1mM Dithiothreito（DTT）および1mg／mlリゾチーム加50mM Tris-HCl（pH8.0）に懸濁し、4℃で1時間静置後、凍結融解を2回行った。続いて、Nonidet P-40を0.5％添加し、超音波破砕機で20秒間×5回破砕後、9300×gで20分間遠心分離し、上清と沈渣をSDS−PAGEにて分析した。泳動の結果、His−Tag付きGST融合タンパクは上清に含まれていることが分かった（図１）。
（６）アフイニティークロマトグラフィー法
上記で得られた上清をニッケルアフィニティーカラム（Bio-Scale Mini IMAC Profinity, Bio Rad）の結合buffer（20mMリン酸ナトリウム、0.5M NaCl、10mMイミダゾール、pH7.4）にて透析後、カラムに添加され結合バッファーでよく洗浄し、溶出バッファー（20mMリン酸ナトリウム、0.5M NaCl、300mMイミダゾール、pH7.4）で溶出した。溶出はペリスタポンプ（SJ-1211L、ATTO）を用いて流速0.5ml／minで行った。また、溶出液の吸光度は紫外部吸光度モニター（AC-5100L、ATTO）を用いて吸光波長220nmでモニターし、記録計（R-01A、RIKADENKI）で記録した。溶出液のSDS−PAGE像は図１に示されたとおり、His−Tag付きGST融合タンパクをメインバンドとして複数のバンドが確認された。得られたHis−Tag付きGST融合タンパク溶出液2mlを、濃度が1mMになるようにDTTを添加し混和後、分子量13kDaカットの透析膜（UC30-32-100、三光純薬株式会社）に入れられ150mM NaCl、1mM EDTA加50mM Tris-HCl（pH7.5）2 Lを用いて約6時間透析した。透析後のHis−Tag付きGST融合タンパク溶出液は、DC Protein Assay（Bio-Rad）を用いてタンパク定量後、タンパク量200μgに対し、PreScission Protease（GE ヘルスケアバイオサイエンス）が1μlを添加して混和後、4℃で6時間以上反応させた。酵素切断後のSDS−PAGE像では、切断されたGSTとネコの組み替え型α1-mが確認された。さらに、この溶液を高速液体クロマトグラフィー（HPLC）用の試料とした。
上記で得られた上清をニッケルアフィニティーカラム（Bio-Scale Mini IMAC Profinity, Bio Rad）の結合buffer（20mMリン酸ナトリウム、0.5M NaCl、10mMイミダゾール、pH7.4）にて透析後、カラムに添加され結合バッファーでよく洗浄し、溶出バッファー（20mMリン酸ナトリウム、0.5M NaCl、300mMイミダゾール、pH7.4）で溶出した。溶出はペリスタポンプ（SJ-1211L、ATTO）を用いて流速0.5ml／minで行った。また、溶出液の吸光度は紫外部吸光度モニター（AC-5100L、ATTO）を用いて吸光波長220nmでモニターし、記録計（R-01A、RIKADENKI）で記録した。溶出液のSDS−PAGE像は図１に示されたとおり、His−Tag付きGST融合タンパクをメインバンドとして複数のバンドが確認された。得られたHis−Tag付きGST融合タンパク溶出液2mlを、濃度が1mMになるようにDTTを添加し混和後、分子量13kDaカットの透析膜（UC30-32-100、三光純薬株式会社）に入れられ150mM NaCl、1mM EDTA加50mM Tris-HCl（pH7.5）2 Lを用いて約6時間透析した。透析後のHis−Tag付きGST融合タンパク溶出液は、DC Protein Assay（Bio-Rad）を用いてタンパク定量後、タンパク量200μgに対し、PreScission Protease（GE ヘルスケアバイオサイエンス）が1μlを添加して混和後、4℃で6時間以上反応させた。酵素切断後のSDS−PAGE像では、切断されたGSTとネコの組み替え型α1-mが確認された。さらに、この溶液を高速液体クロマトグラフィー（HPLC）用の試料とした。
（７）HPLC法
HPLCシステムは、システムコントローラー（SCL-10A VP、Shimadzu）、送液ユニット（LC-10AD VP、Shimadzu）、紫外部分光高度計（SPD-10A VP、Shimadzu）、カラムオーブン（CTO-10A VP、Shimadzu）および脱気ユニット（DGU-14A、Shimadzu）から構成され、カラムはMightysilRP-18 GP250-4.6（関東化学）を使用した。HPLCの分離条件は、移動相の流速を1ml／min、試料添加量を400μlとし0.1％ trifluoroacetic Acid（TFA）溶液で平衡化させたカラムに、0.1％TFA加acetonitrile溶液を用いてacetonitrile濃度0〜80％のライナーグラジエントにして行った。なお、溶出液は、吸光波長220nmで吸光度をモニターし、検出されたピークを分取し、濃縮遠心機（CC-181、TOMY）にて1時間遠心分離後、凍結乾燥機（FDU-540、EYELA）にて乾燥させた後-20℃で保存した。クロマトパターンは、図２に示すとおりで、だいたい8個のピークに分離され、それぞれの溶出された分画のタンパク組成は、SDS−PAGE法により分析された。分析の結果、f分画に単独で溶出された。このタンパクを組み替え型ネコα1-m（rFeα1-m）の抗原としてモノクローナル抗体の作成を行った。
HPLCシステムは、システムコントローラー（SCL-10A VP、Shimadzu）、送液ユニット（LC-10AD VP、Shimadzu）、紫外部分光高度計（SPD-10A VP、Shimadzu）、カラムオーブン（CTO-10A VP、Shimadzu）および脱気ユニット（DGU-14A、Shimadzu）から構成され、カラムはMightysilRP-18 GP250-4.6（関東化学）を使用した。HPLCの分離条件は、移動相の流速を1ml／min、試料添加量を400μlとし0.1％ trifluoroacetic Acid（TFA）溶液で平衡化させたカラムに、0.1％TFA加acetonitrile溶液を用いてacetonitrile濃度0〜80％のライナーグラジエントにして行った。なお、溶出液は、吸光波長220nmで吸光度をモニターし、検出されたピークを分取し、濃縮遠心機（CC-181、TOMY）にて1時間遠心分離後、凍結乾燥機（FDU-540、EYELA）にて乾燥させた後-20℃で保存した。クロマトパターンは、図２に示すとおりで、だいたい8個のピークに分離され、それぞれの溶出された分画のタンパク組成は、SDS−PAGE法により分析された。分析の結果、f分画に単独で溶出された。このタンパクを組み替え型ネコα1-m（rFeα1-m）の抗原としてモノクローナル抗体の作成を行った。
＜参考例２：抗体産生ハイブリドーマ、抗rFeα1-m抗体の作製＞
参考例１で合成したタンパクを組み替え型ネコα1-m（rFeα1-m）の抗原としてモノクローナル抗体を作製するにあたり、まずは抗体産生ハイブリドーマを作製した。
参考例１で合成したタンパクを組み替え型ネコα1-m（rFeα1-m）の抗原としてモノクローナル抗体を作製するにあたり、まずは抗体産生ハイブリドーマを作製した。
（１）抗体産生ハイブリドーマの作製
（１−１）免疫法
免疫法は、精製rFeα1-mを抗原としてBalb／cマウスの後肢肉球（footpad）の皮下に注射することにより行った。免疫は5日間隔で4回行い、初回から第3回目までの免疫は抗原溶液100μl（1mg／ml）とアジュバントを等量混合させてエマルジョン化させた抗原液200μl（50μg／foot）を、また、最終免疫では抗原溶液20μl（10μg／foot）のみを用いて行った。また、アジュバントは初回免疫ではAdjuvant Complete Freund（和光純薬工業株式会社）を、第2回目から第3回目の免疫ではAdjuvant Incomplete Freund（和光純薬工業株式会社）を用いた。
（１−１）免疫法
免疫法は、精製rFeα1-mを抗原としてBalb／cマウスの後肢肉球（footpad）の皮下に注射することにより行った。免疫は5日間隔で4回行い、初回から第3回目までの免疫は抗原溶液100μl（1mg／ml）とアジュバントを等量混合させてエマルジョン化させた抗原液200μl（50μg／foot）を、また、最終免疫では抗原溶液20μl（10μg／foot）のみを用いて行った。また、アジュバントは初回免疫ではAdjuvant Complete Freund（和光純薬工業株式会社）を、第2回目から第3回目の免疫ではAdjuvant Incomplete Freund（和光純薬工業株式会社）を用いた。
（１−２）細胞融合
最終免疫から3日後、膝窩リンパ節を摘出し、リンパ球を回収後、GenomONE-CF（石原産業株式会社）を用いて、細胞融合を行った。また、ミエローマ細胞としてはP3X63-Ag8.653（大日本住友製薬株式会社）を用いた。融合方法は添付のプロトコールに従って行った。具体的には、まず、リンパ球とミエローマ細胞とを細胞数が5:1の比率になるように混合し、1000rpm、4℃で5分間遠心した後、上清を除去した。そこに、氷冷した融合用緩衝液をリンパ球108cellsあたり1ml添加し、均一に懸濁した後、氷冷したHVJ-Envelope懸濁液を細胞混合液1mlあたり25μl添加した。細胞懸濁液を氷上で5分間静置した後、1000rpm、4℃5分間遠心し、上清を除去せずに細胞がペレット化した状態のまま37℃で15分間インキュベートした。
最終免疫から3日後、膝窩リンパ節を摘出し、リンパ球を回収後、GenomONE-CF（石原産業株式会社）を用いて、細胞融合を行った。また、ミエローマ細胞としてはP3X63-Ag8.653（大日本住友製薬株式会社）を用いた。融合方法は添付のプロトコールに従って行った。具体的には、まず、リンパ球とミエローマ細胞とを細胞数が5:1の比率になるように混合し、1000rpm、4℃で5分間遠心した後、上清を除去した。そこに、氷冷した融合用緩衝液をリンパ球108cellsあたり1ml添加し、均一に懸濁した後、氷冷したHVJ-Envelope懸濁液を細胞混合液1mlあたり25μl添加した。細胞懸濁液を氷上で5分間静置した後、1000rpm、4℃5分間遠心し、上清を除去せずに細胞がペレット化した状態のまま37℃で15分間インキュベートした。
インキュベート終了後、37℃に加温した増殖用培地をリンパ球108cells当たり50ml加え、懸濁後、96穴プレート（96 Well Cell Culture Plate：Greiner bio-one）に100μl／wellで播種した。なお、増殖用培地としてRPMI1640（Invitrogen）にペニシリンG（PG；明治製薬株式会社）10万IU／ml、ストレプトマイシン（SM；明治製薬株式会社）100mg／ml、7.5％ Bri Clone（IL-6、ヒト、ブライクローン；Cat. No. BR-001、大日本住友製薬株式会社）、10％ 非働化ウシ胎仔血清（FBS；株式会社ニチレイ）を加えたものを用い、添加、懸濁の際は穏やかに操作した。24時間培養後、培養培地を上記の増殖用培地に2％ HAT（Invitrogen）を添加したHAT培地に交換した。
（２）抗体産生ハイブリドーマのスクリーニング
得られたハイブリドーマについて、細胞融合から1週間後にELISA法を用いた一次スクリーニングを行い、この結果、反応陽性となったwellのハイブリドーマのみをWestern blotting法を用いた二次スクリーニングで確認した。
得られたハイブリドーマについて、細胞融合から1週間後にELISA法を用いた一次スクリーニングを行い、この結果、反応陽性となったwellのハイブリドーマのみをWestern blotting法を用いた二次スクリーニングで確認した。
（２−１）一次スクリーニング
rFeα1-mを抗原としたELISA法を用いて、抗体産生ハイブリドーマの一次スクリーニングを行った。ELISAプレートとしては、96 Well ELISA Microplate（Greiner bio-one）を使用した。また、プレートの洗浄には自動洗浄機（Auto Mini Washer AMW-8、バイオテック株式会社）を用い、洗浄液としてはPBS（1.37M NaCl、27mM KCl、100mM Na2HPO4、18mM KH2PO4、pH7.4、25℃）を使用した。固相として、PBSで3μg／mlに調整したrFeα1-mを50μl／wellでプレートに添加し、4℃で一晩反応させた。固相反応終了後、プレートの抗原液を捨て、ブロッキング液として0.5％ Bovine Serum Albumin（BSA；和光純薬工業株式会社）を添加したPBSを150μl／wellで加え、37℃で60分間反応させた。ブロッキング反応終了後、プレートを1回洗浄し、一次抗体として各ハイブリドーマ培養の培養上清を50μl／wellで加え、37℃で60分間反応させた。一次抗体反応終了後、プレートを1回洗浄し、二次抗体として0.1％ BSAを添加したPBSで1000倍に希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG抗体（SIGMA-ALDRICH）を50μl／wellで加え、37℃で60分間反応させた。二次抗体反応終了後、プレートを3回洗浄し、基質液として0.04％ o-フェニレンジアミン、0.04％ H2O2を添加したPBSを150μl／wellで加え、室温、遮光下で30〜60分間反応された。基質反応終了後、3M H2SO4を反応停止液として50μl／wellで加え、1分間振盪後、Microplate Reader（Model 550、BIO-RAD）で波長490nmにおける吸光度を測定した。吸光度の高かった陽性wellの細胞を、24穴プレート（24 Well Cell Culture Plate；Greiner bio-one）に移して培養した。
rFeα1-mを抗原としたELISA法を用いて、抗体産生ハイブリドーマの一次スクリーニングを行った。ELISAプレートとしては、96 Well ELISA Microplate（Greiner bio-one）を使用した。また、プレートの洗浄には自動洗浄機（Auto Mini Washer AMW-8、バイオテック株式会社）を用い、洗浄液としてはPBS（1.37M NaCl、27mM KCl、100mM Na2HPO4、18mM KH2PO4、pH7.4、25℃）を使用した。固相として、PBSで3μg／mlに調整したrFeα1-mを50μl／wellでプレートに添加し、4℃で一晩反応させた。固相反応終了後、プレートの抗原液を捨て、ブロッキング液として0.5％ Bovine Serum Albumin（BSA；和光純薬工業株式会社）を添加したPBSを150μl／wellで加え、37℃で60分間反応させた。ブロッキング反応終了後、プレートを1回洗浄し、一次抗体として各ハイブリドーマ培養の培養上清を50μl／wellで加え、37℃で60分間反応させた。一次抗体反応終了後、プレートを1回洗浄し、二次抗体として0.1％ BSAを添加したPBSで1000倍に希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG抗体（SIGMA-ALDRICH）を50μl／wellで加え、37℃で60分間反応させた。二次抗体反応終了後、プレートを3回洗浄し、基質液として0.04％ o-フェニレンジアミン、0.04％ H2O2を添加したPBSを150μl／wellで加え、室温、遮光下で30〜60分間反応された。基質反応終了後、3M H2SO4を反応停止液として50μl／wellで加え、1分間振盪後、Microplate Reader（Model 550、BIO-RAD）で波長490nmにおける吸光度を測定した。吸光度の高かった陽性wellの細胞を、24穴プレート（24 Well Cell Culture Plate；Greiner bio-one）に移して培養した。
（２−２）二次スクリーニング
rFeα1-mを抗原としたWestern blotting法で確認し、抗体産生ハイブリドーマの二次スクリーニングを行った。Lowryの方法に基づき、DC Protein Assay Kit（BIO-RAD）を用いて、Microplate Readerで波長655nmにおける吸光度を測定し、タンパク質を定量した。検量線はBSAを用いて作製した。Western blotting法はTowbinらの方法に準拠し、以下のように実施した。転写膜はポリビニリデンジフルオリド（PVDF）膜（BIO-RAD）を使用した。PVDF膜は100％ methanolに10秒間、さらに転写用電極buffer（25mM Tris-HCl（pH8.3、20℃）、192mM glycine、5％ methanol）に30分間浸潤し、泳動に供した。転写装置の組み立ては、陽極電極板上に下から順に濾紙（BIO-RAD）、PVDF膜、SDS−PAGE終了後のゲル、濾紙を重層し、その上に陰極電極板を固定した。なお、濾紙は予め電極bufferに2〜3分浸しておいた。転写条件は1.9mA／cm2の定電流で60分間とした。転写終了後のPVDF膜は10mM Tris-HCl（pH7.5、20℃）、140mM NaCl、0.01％ Tween20（TBST）に0.5％ BSAを加え、室温で60分間振盪し、ブロッキング操作を行った。ブロッキング終了後、TBSTで5分間、2回振盪洗浄し、一次抗体として細胞の培養上清を用い、室温で90分振盪反応させた。一次抗体反応終了後、TBSTで5分間、2回振盪洗浄した後、TBSTで1000倍希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG抗体を、室温で60分間振盪反応させた。二次抗体反応終了後、TBSTで5分間、2回振盪洗浄し、0.06％ 3,3-diaminobenzidine tetra-hydrochloride、0.03％ H2O2、50mM Tris-HCl（pH7.6、20℃）を基質反応液として使用し、1〜5分間反応させた。基質反応終了後、水洗し反応を停止させた後、乾燥して保存した。反応陽性を示したハイブリドーマについては後述する限界希釈法によりクローニングを行った。
rFeα1-mを抗原としたWestern blotting法で確認し、抗体産生ハイブリドーマの二次スクリーニングを行った。Lowryの方法に基づき、DC Protein Assay Kit（BIO-RAD）を用いて、Microplate Readerで波長655nmにおける吸光度を測定し、タンパク質を定量した。検量線はBSAを用いて作製した。Western blotting法はTowbinらの方法に準拠し、以下のように実施した。転写膜はポリビニリデンジフルオリド（PVDF）膜（BIO-RAD）を使用した。PVDF膜は100％ methanolに10秒間、さらに転写用電極buffer（25mM Tris-HCl（pH8.3、20℃）、192mM glycine、5％ methanol）に30分間浸潤し、泳動に供した。転写装置の組み立ては、陽極電極板上に下から順に濾紙（BIO-RAD）、PVDF膜、SDS−PAGE終了後のゲル、濾紙を重層し、その上に陰極電極板を固定した。なお、濾紙は予め電極bufferに2〜3分浸しておいた。転写条件は1.9mA／cm2の定電流で60分間とした。転写終了後のPVDF膜は10mM Tris-HCl（pH7.5、20℃）、140mM NaCl、0.01％ Tween20（TBST）に0.5％ BSAを加え、室温で60分間振盪し、ブロッキング操作を行った。ブロッキング終了後、TBSTで5分間、2回振盪洗浄し、一次抗体として細胞の培養上清を用い、室温で90分振盪反応させた。一次抗体反応終了後、TBSTで5分間、2回振盪洗浄した後、TBSTで1000倍希釈したペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG抗体を、室温で60分間振盪反応させた。二次抗体反応終了後、TBSTで5分間、2回振盪洗浄し、0.06％ 3,3-diaminobenzidine tetra-hydrochloride、0.03％ H2O2、50mM Tris-HCl（pH7.6、20℃）を基質反応液として使用し、1〜5分間反応させた。基質反応終了後、水洗し反応を停止させた後、乾燥して保存した。反応陽性を示したハイブリドーマについては後述する限界希釈法によりクローニングを行った。
（３）クローニング
ハイブリドーマのクローニングには限界希釈法を用いた。具体的には、スクリーニング後のハイブリドーマを2cells／100μlとなるようにHAT培地で希釈し、100μl／wellで96穴プレートに播種した。ハイブリドーマはセミコンフルエントになったところで24穴プレートに拡大培養し、再びセミコンフルエントになるまで培養した後、二次スクリーニングと同様にrFeα1-mを抗原としたWestern blotting法で確認した。このクローニング操作を2回行った。また、ハイブリドーマを長期間継代培養することにより抗体産生能が減少するのを防ぐため、クローニング毎に細胞凍結保存液（セルバンカー（BLC-1）、十慈フィールド株式会社）を用いて保存した。
ハイブリドーマのクローニングには限界希釈法を用いた。具体的には、スクリーニング後のハイブリドーマを2cells／100μlとなるようにHAT培地で希釈し、100μl／wellで96穴プレートに播種した。ハイブリドーマはセミコンフルエントになったところで24穴プレートに拡大培養し、再びセミコンフルエントになるまで培養した後、二次スクリーニングと同様にrFeα1-mを抗原としたWestern blotting法で確認した。このクローニング操作を2回行った。また、ハイブリドーマを長期間継代培養することにより抗体産生能が減少するのを防ぐため、クローニング毎に細胞凍結保存液（セルバンカー（BLC-1）、十慈フィールド株式会社）を用いて保存した。
（４）抗体産生ハイブリドーマの大量培養および抗rFeα1-m・mAbの採取と精製
クローニングが終了したハイブリドーマを、浮遊細胞培養フラスコ（フィルタートップSCフラスコ250ml 75cm2；Greiner bio-one）を用いて大量培養した。なお、培養は37℃、5％ CO2、5日間、CO2インキュベーター（十慈フィールド株式会社）で行い、培地としてはHAT培地を用いた。大量培養されたハイブリドーマを無血清RPMIで懸濁し、ヌードマウス（Balb／c-nu）の腹腔内に2×107cells／headで投与した。投与してから10〜20日後、腹水を採取した。ヌードマウスから採取した腹水を室温で1時間、あるいは4℃で一晩静置した後、3000rpm、4℃で5分間遠心し、腹水中のフィブリン、ハイブリドーマ、赤血球などを除去した。分離した上清を50％の硫安で塩析させた。具体的には、氷上で撹拌しながら上清と等量の飽和硫酸アンモニウム溶液を徐々に滴下し、滴下後さらに1時間撹拌した。これを10000rpm、4℃で10分間遠心し、沈殿物を20mM リン酸ナトリウムbuffer（pH7.0）に溶解した。塩析後のグロブリン溶液を、20mM リン酸ナトリウムbuffer（pH7.0）で平衡化したSephadex G-25 Fine（GEヘルスケアバイオサイエンス）カラム（内径1.5cm、長さ30cm）を用いて脱塩した。クロマトグラフィーの流速をペリスタポンプ（SJ-1211L、ATTO）で0.5ml／minに調節した。脱塩後のグロブリン溶液を、エコカラム（内径2.5cm、長さ10.0cm：BIO-RAD）に充填したProtein G Sepharose 4 Fast Flow（GEヘルスケアバイオサイエンス）を用いたアフィニティークロマトグラフィー法により精製した。具体的には、脱塩後のグロブリン溶液を20mM リン酸ナトリウムbuffer（pH7.0）で平衡化されたカラムに流速0.5ml／minで添加し、その後カラムを100mM glycine（pH3.0）で溶出させた。溶出液は直ちに10分の1量の1M Tris-HCl（pH9.0）で中和した。精製後の溶出液を50mM 酢酸アンモニウム（pH7.0）で平衡化させたSephadex G-25 Fineカラム（内径2cm、長さ30cm）で脱塩させた後、Freeze Dryer（FDU540、EYELA東京理化器械株式会社）を用いて凍結乾燥し、−20℃で保存した。
クローニングが終了したハイブリドーマを、浮遊細胞培養フラスコ（フィルタートップSCフラスコ250ml 75cm2；Greiner bio-one）を用いて大量培養した。なお、培養は37℃、5％ CO2、5日間、CO2インキュベーター（十慈フィールド株式会社）で行い、培地としてはHAT培地を用いた。大量培養されたハイブリドーマを無血清RPMIで懸濁し、ヌードマウス（Balb／c-nu）の腹腔内に2×107cells／headで投与した。投与してから10〜20日後、腹水を採取した。ヌードマウスから採取した腹水を室温で1時間、あるいは4℃で一晩静置した後、3000rpm、4℃で5分間遠心し、腹水中のフィブリン、ハイブリドーマ、赤血球などを除去した。分離した上清を50％の硫安で塩析させた。具体的には、氷上で撹拌しながら上清と等量の飽和硫酸アンモニウム溶液を徐々に滴下し、滴下後さらに1時間撹拌した。これを10000rpm、4℃で10分間遠心し、沈殿物を20mM リン酸ナトリウムbuffer（pH7.0）に溶解した。塩析後のグロブリン溶液を、20mM リン酸ナトリウムbuffer（pH7.0）で平衡化したSephadex G-25 Fine（GEヘルスケアバイオサイエンス）カラム（内径1.5cm、長さ30cm）を用いて脱塩した。クロマトグラフィーの流速をペリスタポンプ（SJ-1211L、ATTO）で0.5ml／minに調節した。脱塩後のグロブリン溶液を、エコカラム（内径2.5cm、長さ10.0cm：BIO-RAD）に充填したProtein G Sepharose 4 Fast Flow（GEヘルスケアバイオサイエンス）を用いたアフィニティークロマトグラフィー法により精製した。具体的には、脱塩後のグロブリン溶液を20mM リン酸ナトリウムbuffer（pH7.0）で平衡化されたカラムに流速0.5ml／minで添加し、その後カラムを100mM glycine（pH3.0）で溶出させた。溶出液は直ちに10分の1量の1M Tris-HCl（pH9.0）で中和した。精製後の溶出液を50mM 酢酸アンモニウム（pH7.0）で平衡化させたSephadex G-25 Fineカラム（内径2cm、長さ30cm）で脱塩させた後、Freeze Dryer（FDU540、EYELA東京理化器械株式会社）を用いて凍結乾燥し、−20℃で保存した。
＜実施例１および２＞
後述する実験例に用いる実施例１および２の抗体の組み合わせを表１に示す。
後述する実験例に用いる実施例１および２の抗体の組み合わせを表１に示す。
表１中、α1-m mAb3産生抗体は、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）により産生された抗体を指し、α1-m mAb4産生抗体は、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）により産生された抗体を指す。
＜実験例＞
酵素免疫測定法（サンドイッチ法）により、実施例１および２の評価を行った。具体的には、1匹の健常なネコの尿中のα1-mの測定を行った。具体的には、捕捉抗体を0.5mg/wellで固相し、ブロッキングした後、1匹の健常なネコの尿を2時間反応させた。洗浄後、ビオチン標識した一次抗体を2時間反応させた後、アビジンペルオキシダーゼを1時間反応させ、tetramethylbenzidineを用いて基質反応を行い、450nmにおける吸光度の測定を行った。図３はその結果を示すグラフであり、縦軸は吸光度である。図３から明らかなように、実施例１、２の抗体の組み合わせによる吸光度は、十分高かった。この結果から、本発明の抗体の組み合わせは、ネコα1-mに対してより高い結合力を示すことが明らかであり、高感度のネコα1-mの測定が可能であることを示した。
酵素免疫測定法（サンドイッチ法）により、実施例１および２の評価を行った。具体的には、1匹の健常なネコの尿中のα1-mの測定を行った。具体的には、捕捉抗体を0.5mg/wellで固相し、ブロッキングした後、1匹の健常なネコの尿を2時間反応させた。洗浄後、ビオチン標識した一次抗体を2時間反応させた後、アビジンペルオキシダーゼを1時間反応させ、tetramethylbenzidineを用いて基質反応を行い、450nmにおける吸光度の測定を行った。図３はその結果を示すグラフであり、縦軸は吸光度である。図３から明らかなように、実施例１、２の抗体の組み合わせによる吸光度は、十分高かった。この結果から、本発明の抗体の組み合わせは、ネコα1-mに対してより高い結合力を示すことが明らかであり、高感度のネコα1-mの測定が可能であることを示した。
今回開示された実施の形態および実験例はすべての点で例示であって制限的なものではないと考えられるべきである。本発明の範囲は上記した説明ではなくて特許請求の範囲によって示され、特許請求の範囲と均等の意味および範囲内でのすべての変更が含まれることが意図される。
Claims (6)
- 細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）により産生された第１の抗体と、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）により産生された第２の抗体とを用いて、酵素免疫測定法（サンドイッチ法）、蛍光免疫測定法（サンドイッチ法）、放射性同位体免疫測定法（サンドイッチ法）、免疫比濁法およびラテックス免疫比濁法からなる群より選択されるいずれかの方法により、検体中のネコ由来α１ミクログロブリン濃度を測定する方法。
- 細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）により産生された第１の抗体と、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）により産生された第２の抗体とを含む、ネコ由来α１ミクログロブリン濃度測定用キット。
- 細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）。
- 細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）。
- 配列番号１で表わされるアミノ酸配列を有するタンパク質を抗原とし、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb3（受託番号：FERM P-22051）により産生されたものである、ネコ由来α１ミクログロブリンに特異的に結合する抗体。
- 配列番号１で表わされるアミノ酸配列を有するタンパク質を抗原とし、細胞株Mouse-Mouse hybridoma α1-m mAb4（受託番号：FERM P-22052）により産生されたものである、ネコ由来α１ミクログロブリンに特異的に結合する抗体。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2011054493A JP5749947B2 (ja) | 2011-03-11 | 2011-03-11 | ネコ由来α１ミクログロブリンの測定方法および測定キット、ならびに、そのための抗体および抗体産生細胞株 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2011054493A JP5749947B2 (ja) | 2011-03-11 | 2011-03-11 | ネコ由来α１ミクログロブリンの測定方法および測定キット、ならびに、そのための抗体および抗体産生細胞株 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2012189503A JP2012189503A (ja) | 2012-10-04 |
| JP5749947B2 true JP5749947B2 (ja) | 2015-07-15 |
Family
ID=47082834
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2011054493A Active JP5749947B2 (ja) | 2011-03-11 | 2011-03-11 | ネコ由来α１ミクログロブリンの測定方法および測定キット、ならびに、そのための抗体および抗体産生細胞株 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP5749947B2 (ja) |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE4024919A1 (de) * | 1990-08-06 | 1992-02-13 | Boehringer Mannheim Gmbh | Peptide mit fuer (alpha)1-mikroglobulin charakteristischer antigener determinante |
| JP5370799B2 (ja) * | 2006-09-28 | 2013-12-18 | 株式会社ジェイ・エム・エス | Ｄ／ｐクレアチニンマーカー、ｄ／ｐクレアチニン決定方法およびその用途 |
| EP2180318B1 (en) * | 2007-07-20 | 2012-08-29 | Incorporated National University Iwate University | Diagnostic agent for urinary protein of cat |
| WO2011074651A1 (ja) * | 2009-12-17 | 2011-06-23 | 学校法人北里研究所 | シスタチンＣ、β２ミクログロブリン、α１ミクログロブリンおよびそれらの遺伝子、抗体、ならびに、ネコ腎症の診断用キット、診断方法 |
-
2011
- 2011-03-11 JP JP2011054493A patent/JP5749947B2/ja active Active
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2012189503A (ja) | 2012-10-04 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| WO2007077934A1 (ja) | 抗ペリオスチン抗体およびそれを含有するペリオスチンが関与する疾患の予防または治療用医薬組成物 | |
| JP2007537705A (ja) | 従来の低免疫原性の抗原に特異的なモノクローナル抗体の開発、及び使用のための方法、キット、及び組成物 | |
| JP2019536006A (ja) | 診断アッセイに使用するためのタンパク質抗原としてのｒｅｐタンパク質 | |
| KR100855299B1 (ko) | 인간 ｉｌ-32 특이 항원결정기를 갖는 단일클론항체,특이항체분비 융합 세포주 및 항체들을 이용한 ｉｌ-32측정법 | |
| EP2514821B1 (en) | Cystatin C, antibody | |
| JP6976566B2 (ja) | イヌアトピー性皮膚炎の治療及び診断のために用いる抗イヌｔａｒｃ抗体 | |
| JP5749948B2 (ja) | ネコ由来β２ミクログロブリンの測定方法および測定キット、ならびに、そのための抗体および抗体産生細胞株 | |
| JP5749947B2 (ja) | ネコ由来α１ミクログロブリンの測定方法および測定キット、ならびに、そのための抗体および抗体産生細胞株 | |
| JP5580582B2 (ja) | シスタチンｃおよびその遺伝子、抗シスタチンｃ抗体、ならびに、ネコ腎症の診断用キット、診断方法 | |
| JP5580583B2 (ja) | β２ミクログロブリンおよびその遺伝子、抗β２ミクログロブリン抗体、ならびに、ネコ腎症の診断用キット、診断方法 | |
| JP6815632B2 (ja) | 抗硫酸フェニル誘導体抗体 | |
| JP5580618B2 (ja) | α１ミクログロブリンおよびその遺伝子、抗α１ミクログロブリン抗体、ならびに、ネコ腎症の診断用キット、診断方法 | |
| EP2737318B1 (en) | A2m fragments and applications thereof | |
| WO2019230874A1 (ja) | ヒト由来サンプルにおける可溶型ｔｌｒ７の分析 | |
| US11174310B2 (en) | Disulfide-type HMGB1-specific antibody, method for measuring disulfide-type HMGB1 and kit for said measurement, and measurement method capable of quantitating all of HMGB1 molecules including reduced HMGB1, disulfide-type HMGB1 and thrombin-cleavable HMGB1 and kit for said measurement | |
| US10308716B2 (en) | Method for producing polyclonal antibodies using an antigenic composition comprising protein-containing membrane vesicles | |
| JP4651495B2 (ja) | Ｉｓｇ１５タンパク質と特異的に反応するモノクローナル抗体及びそれを産生するハイブリドーマ並びに癌およびウイルス感染の検出方法 | |
| CN114516916B (zh) | 一种抗gpr65的单克隆抗体、分泌该抗体的杂交瘤细胞株及应用 | |
| KR102358642B1 (ko) | 한국형 낭충봉아부패병 바이러스에 특이적으로 결합하는 단클론항체 및 이의용도 | |
| WO2004040302A1 (ja) | ＲＡＰＬ・Ｒａｐ１相互作用制御 | |
| JP3849001B2 (ja) | 抗−２′−デオキシシチジン抗体並びにその製造及び使用 | |
| WO2023223796A1 (ja) | コリバクチン産生大腸菌結合性抗体 | |
| JPH08157500A (ja) | Ｆａｓ抗原の定量法 | |
| JP5626681B2 (ja) | 癌の検出方法 | |
| KR100477898B1 (ko) | 인간 ＣａｃｙＢＰ／ＳＩＰ에 대한 단일클론 항체 및 이를생산하는 융합세포주 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20140213 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20140213 |
|
| A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20140910 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20141014 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20141210 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20141210 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20150421 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20150515 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 5749947 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |