JP5231259B2 - Ｇａｓｃ１の阻害 - Google Patents
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Description
本発明は、ＪｍｊＣドメイン含有タンパク質の活性調節剤として作用可能であり、そしてゲノムの不安定性が発症に関与する疾患の予防及び／又は治療に有用な化合物の同定方法に関する。
ヒストンテールのリジン及びアルギニン残基のメチル化は、転写活性が高いクロマチンと低いクロマチンを表す重要なエピジェネティックマーカーである。例えば、ヒストンＨ３(Ｈ３-Ｋ９)の第９番リジンのメチル化は、エピジェネティックな要因により不活性なクロマチンと関連している1-3。
アセチル化やリン酸化といった他のヒストン修飾とは対照的に、メチル化は、Ｎ-ＣＨ３結合の高い熱力学的安定性により不可逆的であると考えられてきた。しかしながら、最近において、Ｓｈｉとその同僚4は、核内のアミンオキシダーゼのホモログであるタンパク質ＬＳＤ１が、モノメチル化及びジメチル化Ｈ３-Ｋ４に非常に高い特異性を示すヒストンデメチラーゼであることを同定した。この酵素は、その基質を、アミンオキシダーゼ反応を通じて脱メチル化する。しかしながら、ＬＳＤ１は、トリメチル化リジンＨ３-Ｋ４を脱メチル化することができず、これは、最も恐らくは、酸化に必要なプロトン化窒素が存在していないことが原因であると考えられる4。本願発明に係る研究を完成する直前に、Tsukada et al.は、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のFＢＸＬ１１ (ＪＨＤＭ１ａ)が、ジメチルＨ３-Ｋ３６をＦｅ(ＩＩ)の存在下でα-ケトグルタレート依存的に特異的に脱メチル化できることを示した5。少なくとも理論上は、ＦＢＸＬ１１媒介性の脱メチル化の反応機構は、トリメチルＨ３-Ｋ３６を基質として用いることが可能であるが、このような活性は実証できていない5。ＬＳＤ１及びＦＢＸＬ１１をヒストンデメチラーゼとして同定したことは、メチル基マークの動的な制御を示しており、エピジェネティック研究に重要な軌跡を残すことになるが、彼らは、トリメチル化リジンマークの可逆性の問題は解明していない。
SUV39H1ノックアウトマウスの研究で報告されたように、Ｈ３-Ｋ９のトリメチルバリアントの喪失により、染色体異常が生じ、癌に罹患しやすくなる。故に、このマークを逆行させることが可能な酵素が長年探索されてきたが、その存在が疑問視されていた。後者の見方は、トリメチル化Ｈ３-Ｋ９が、「非常に安定な遺伝性のクロマチン状態」であるヘテロクロマチンの発生と維持に必要とされるという事実によって、更に強められた。このような酵素とその活性阻害剤の同定により、癌の予防と治療に対する新たなアプローチが提供されるであろう。
本発明は、試験化合物の、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質に結合し、そして任意にその活性を調節する能力を試験する方法であって、試験化合物をＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質、前記タンパク質の補因子、及び任意で脱メチル化の基質と共にインキュベートすることを含む方法を提供する。
本発明の現時点で好ましい態様においては、前記方法は、以下の工程：
ｉ) 鉄及びα-ケトグルタレートを含む溶液で脱メチル化の基質の懸濁液を調製すること；
ｉｉ) 前記試験化合物を、前記懸濁液に添加すること；
ｉｉｉ) ｉｉ)で得られた前記懸濁液に、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質を添加すること；
ｉｖ) 前記懸濁液をインキュベートすること；並びに
ｖ) 前記基質の脱メチル化の程度を測定すること
を含む。
ｉ) 鉄及びα-ケトグルタレートを含む溶液で脱メチル化の基質の懸濁液を調製すること；
ｉｉ) 前記試験化合物を、前記懸濁液に添加すること；
ｉｉｉ) ｉｉ)で得られた前記懸濁液に、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質を添加すること；
ｉｖ) 前記懸濁液をインキュベートすること；並びに
ｖ) 前記基質の脱メチル化の程度を測定すること
を含む。
定義
「核酸分子」という用語は、リボ核酸(ＲＮＡ)若しくはデオキシリボ核酸(ＤＮＡ)のオリゴマー又はポリマー、又はその模倣体を指す。この用語には、天然の核酸塩基、糖及びヌクレオシド間(バックボーン)の共有結合から構成される分子、並びに同様の機能を有する非天然の核酸塩基、糖及びヌクレオシド間(バックボーン)の共有結合から構成される分子、又はこれらの組合せが含まれる。このような修飾を受けた又は置換された核酸は、例えば、向上した細胞内取り込み、核酸ターゲットへの向上した親和性、並びにヌクレアーぜ及び他の酵素の存在下での増大した安定性等の所望の特性のために天然型よりも好まれる場合があり、本文においては、「核酸類似体」又は「核酸模倣体」の用語で記載される。核酸模倣体の好ましい例には、ペプチド核酸(peptide nucleic acid：PNA)、Ｌｏｃｋｅｄ核酸(Locked Nucleic Acid：LNA)、ｘｙｌｏ-ＬＮＡ、ホスホロチオエート、２'-メトキシ-、２'-メトキシエトキシ-、モルホリノ-及びホスホロアミデートを含有する分子等が挙げられる。
「核酸分子」という用語は、リボ核酸(ＲＮＡ)若しくはデオキシリボ核酸(ＤＮＡ)のオリゴマー又はポリマー、又はその模倣体を指す。この用語には、天然の核酸塩基、糖及びヌクレオシド間(バックボーン)の共有結合から構成される分子、並びに同様の機能を有する非天然の核酸塩基、糖及びヌクレオシド間(バックボーン)の共有結合から構成される分子、又はこれらの組合せが含まれる。このような修飾を受けた又は置換された核酸は、例えば、向上した細胞内取り込み、核酸ターゲットへの向上した親和性、並びにヌクレアーぜ及び他の酵素の存在下での増大した安定性等の所望の特性のために天然型よりも好まれる場合があり、本文においては、「核酸類似体」又は「核酸模倣体」の用語で記載される。核酸模倣体の好ましい例には、ペプチド核酸(peptide nucleic acid：PNA)、Ｌｏｃｋｅｄ核酸(Locked Nucleic Acid：LNA)、ｘｙｌｏ-ＬＮＡ、ホスホロチオエート、２'-メトキシ-、２'-メトキシエトキシ-、モルホリノ-及びホスホロアミデートを含有する分子等が挙げられる。
「ポリヌクレオチド配列」(例えば、核酸、ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド等)は、文脈に応じて、ヌクレオチドＡ、Ｃ、Ｔ、Ｕ、Ｇ、若しくは他の天然ヌクレオチド、若しくは人工のヌクレオチド類似体を含むヌクレオチドのポリマーであるか、又は核酸を表す文字列である。いずれかの特定のポリヌクレオチド配列から、所定の核酸又は相補的な核酸のいずれかを決定できる。
本発明に関しては、「ポリペプチド」という用語は、完全長タンパク質、オリゴペプチド、短鎖ペプチド及びこれらの断片を含み、アミノ酸残基が共有結合により結合したあらゆる長さのアミノ酸鎖を指す。本明細書及び請求項における全てのポリペプチド配列は、明確な記載がない場合には、慣習的なフォーマットに従い、N末端からC末端の方向へ記載される。
任意のアミノ酸ポリマー若しくはヌクレオチドポリマーの番号付けが、選択されたアミノ酸ポリマー若しくは核酸ポリマーの番号に「対応する」又は「関連する」のは、任意のポリマーの成分(例えば、アミノ酸、ヌクレオチド、又は一般的に「残基」と呼ばれるもの)の位置が、その任意のポリマーの成分の実際の番号順の位置ではなく、選択されたアミノ酸ポリマー又はヌクレオチドポリマーの同一又は同等の位置を参照して定められている場合である。従って、例えば、任意のポリペプチド配列の任意のアミノ酸の位置の番号付けは、参照配列として用いられる選択されたポリペプチド配列の同一又は同等のアミノ酸の位置に対応する。
「変異体」は、1又は2か所以上のアミノ酸部位において、親ポリペプチドの配列と異なる配列(アミノ酸の欠失、アミノ酸の挿入、及び/又は異なるアミノ酸へのアミノ酸の置換による)を含むポリペプチドである。変異配列は、非天然配列、即ち、自然界に見出されない配列であってもよい。
本明細書において、「合成ペプチド」という用語は、in vitroで合成された短鎖ペプチドを含むペプチドを指す。また、この用語には、通常見られないアミノ酸又は非天然アミノ酸を用いた置換により修飾されたペプチド又は短鎖ペプチドも包含される。
目的語に付される「天然」とは、その目的語にかかるものが、人間によって人工的に作製されたものとは異なるものとして自然界に見出すことができるという事実を表す。例えば、自然界の供給源から単離可能な生物(ウィルス、細菌、原生動物、昆虫、植物、又は哺乳動物の組織を含む)中に存在し、実験室において人間による意図的な修飾を受けていないポリペプチド又はポリヌクレオチドの配列は、天然のものである。目的語に付される「非天然」とは、その目的語にかかるものが天然のものではなく、即ち、人間により人工的に作製されたものと異なるものとして自然界に見出すことができないことを意味する。
「断片」又は「部分配列」とは、所定の配列のいずれかの部分を指す。配列の断片又は部分配列は、その配列自体よりも少なくとも1アミノ酸残基又は1核酸残基は短くなることが理解されるべきである。従って、断片又は部分配列は、それぞれ、より長いアミノ酸配列(例えば、ポリペプチド)又は核酸配列(例えば、ポリヌクレオチド)の一部を含むアミノ酸配列又は核酸配列を指す。
「配列同一性」という用語は、同一の長さの2つのアミノ酸配列間又は2つの核酸配列間のホモロジー度の定量的測定値を示す。比較すべき2つの配列が同一の長さにない場合、これらは、可能な限り最適な一致性を示すようにアライメントする必要があり、ギャップが挿入されたり、又はポリペプチド配列若しくはヌクレオチド配列が末端で切断されたりする。配列同一性は、以下の式によって計算可能であり
式中、Ndifは、アライメントした際の、2つの配列の同一でない残基の総数であり、Nrefは、一方の配列の残基数である。従って、AGTCAGTCというDNA配列は、AATCAATCというDNA配列と75％の配列同一性を有することになる(Ndif=2及びNref=8)。ギャップについては、具体的な残基の非同一性としてカウントされ、即ち、AGTGTCというDNA配列は、AGTCAGTCというDNA配列と75％の配列同一性を有することになる(Ndif=2及びNref=8)。
本発明に係る全てのポリペプチド又はアミノ酸に基づく態様では、１以上の配列間の配列同一性のパーセンテージは、clustalWソフトウェア(http:/www. ebi.ac.uk/clustalW/index. html)により、そのプログラムのデフォルト設定を用いて行われる個々の配列のアライメントに基づく。これらの設定は、以下の通りである：Alignment=3Dfull, Gap Open 10.00, Gap Ext. 0.20, Gap separation Dist. 4, Protein weight matrix: Gonnet。本発明に係るヌクレオチドに基づく態様に関しても、１以上の配列間の配列同一性のパーセンテージは、clustalWソフトウェアをデフォルト設定で用いて行われるアライメントに基づく。ヌクレオチド配列のアライメントにおいては、これらの設定は以下の通りである：Alignment=3Dfull, Gap Open 10.00, Gap Ext. 0.20, Gap separation Dist. 4, DNA weight matrix: identity (IUB)。
本文においては、「相補的配列」とは、ストリンジェントな条件下で、本発明の核酸分子にハイブリダイズする核酸配列を指す。「ストリンジェントな条件」は、高いストリンジェンシーを有する一般的な条件を指す。「ストリンジェンシー」という用語は、当該技術分野で良く知られており、核酸のハイブリダイゼーションが行われる条件(温度、イオン強度、及び有機溶媒等の他の化合物の存在)を参照する際に用いられる。「高ストリンジェンシー条件」では、ストリンジェンシーが「弱い」若しくは「低い」条件と比較して、高頻度に相補的な塩基配列を有する核酸フラグメント間でのみ核酸塩基のペア形成が生じる。
例えば、高ストリンジェンシーなハイブリダイゼーション条件には、以下が含まれる：(１)洗浄における低イオン強度と高温、例えば、０.１％のドデシル硫酸ナトリウム(ＳＤＳ)を含む０.０１５ＭのＮａＣｌ／０.００１５Ｍのクエン酸ナトリウム、ｐＨ７.０(０.１ｘＳＳＣ)、５０℃；(２)５×Ｄｅｎｈａｒｄｔ'ｓ溶液(０.１％(重量／体積))高純度ウシ血清アルブミン／０.１％(重量／体積)Ｆｉｃｏｌｌ／０.１％(重量／体積)ポリビニルピロリドン)を含む５０体積％のホルムアミド、５０ｍＭのリン酸ナトリウムバッファー、ｐＨ６.５及び５×ＳＳＣで４２℃でのハイブリダイゼーション；又は(３)５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ、５０ ｍＭのリン酸ナトリウム(ｐＨ６.８)、０.１％のピロリン酸ナトリウム、５×Ｄｅｎｈａｒｄｔ'ｓ溶液、超音波処理済みサケ精子ＤＮＡ(５０μｇ／ｍｌ)、０.１％のＳＤＳ、及び１０％の硫酸デキストラン中で４２℃でのハイブリダイゼーション、並びに０.２×ＳＳＣ及び０.１％ ＳＤＳで４２℃での洗浄。
「単離した核酸」という用語は、本発明の核酸が由来する生命体の天然のゲノムでは隣接している(例えば、５'末端で一端が、３'末端で一端が隣接する)両コーディング配列と隣接していない核酸(例えばＤＮＡ又はＲＮＡ)を指す場合がある。従って、この用語には、例えば、ｃＤＮＡ又はポリメラーゼ連鎖反応(ＰＣＲ)若しくは制限酵素処理により得られたゲノムＤＮＡの断片が含まれ、このようなｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡ断片が、ベクターに組み込まれているか、これらが元々取り出された生命体と同一若しくは異なる種、例えば、ウィルス等のゲノムに一体化されているか、更なるコーディング配列に連結してキメラポリペプチドをコードするハイブリッド型遺伝子を形成するか、又は他のＤＮＡ配列から独立しているかどうかは関係がない。前記ＤＮＡは、２本鎖又は１本鎖であってもよく、センス鎖又はアンチセンス鎖であってもよい。
「組換えポリヌクレオチド」又は「組換えポリペプチド」とは、それぞれ、複数の供給源である核酸若しくはポリペプチドに由来する核酸配列若しくはアミノ酸配列を含む非天然のポリヌクレオチド又はポリペプチドであり、その供給源である核酸又はポリペプチドは、天然の核酸若しくはポリペプチドであってもよく、又は、それ自体が変異導入若しくは他の種類の修飾を受けたものであってもよい。核酸又はポリペプチドは、人工物であるか若しくは組換え操作を受けている場合、又は人工物であるか若しくは組換え操作を受けたポリペプチド若しくは核酸に由来する場合には、「組換え体」とみなされる場合がある。組換え核酸(例えばＤＮＡ又はＲＮＡ)は、典型的に一緒に含まれていないか、典型的には互いに関連していないか、又は典型的には互いに分離された状態にある、少なくとも２つの配列セグメントの組合せ(例えば、人工的組合せ)により作製可能である。組換え核酸は、異なる供給源に由来する核酸セグメント及び／又は人工的に合成された核酸セグメントを一緒に連結させるか又は組み合わせることにより形成される核酸分子を含んでいてもよい。「組換えポリペプチド」(又は「組換えタンパク質」)は、しばしばクローニング又は組換え操作された核酸若しくは遺伝子から生じたポリペプチド(又はタンパク質)を指す。異なる核酸配列又はアミノ酸配列が由来する供給源であるポリヌクレオチド又はポリペプチドは、しばしば、相同的であり(即ち、同一又は類似の構造及び／又は機能を有するか、又はこれを有するポリペプチドをコードする)、例えば、しばしば、生命体の異なる単離物、血清型、株、種、又は異なる疾患状態から得られる。
「組換え」という用語は、例えば、細胞、ヌクレオチド、ベクター、タンパク質、又はポリペプチドに言及するものとして用いられる場合、典型的には、その細胞、ヌクレオチド又はベクターが、異種の(又は外来性の)核酸の導入若しくは天然の核酸の変更により修飾されていること、又はそのタンパク質若しくはポリペプチドが異種のアミノ酸の導入により修飾されていること、又はその細胞が、その様な修飾を受けた細胞に由来することを示す。組換え細胞は、その細胞の天然(非組換え)型に見出されない核酸配列(例えば、遺伝子)を発現するか、又は、異常に発現しているか、発現が抑制されているか、若しくは全く発現されていない天然の核酸配列(例えば、遺伝子)を発現する。「組換え」という用語は、細胞に言及するものとして用いられる場合、その細胞が異種の核酸を複製するか、又は異種の核酸によりコードされるペプチド若しくはタンパク質を発現することを示す。組換え細胞は、その細胞の天然(非組換え)型に見出されない遺伝子を含んでいてもよい。組換え細胞は、その細胞の天然型に見出される遺伝子を含んでいてもよいが、その場合、その遺伝子は、人工的手段により修飾されてその細胞内に再導入される。前記用語には、その細胞に内在性の核酸であって、その細胞からその核酸を取り出すことなしに修飾された核酸を含む細胞が包含される；このような修飾には、遺伝子置換、部位特異的変異導入及び関連技術により得られるものが含まれる。
「組換えにより作製された」という用語は、化学合成手段、核酸セグメントの配列組換えの繰り返し若しくはヌクレオチドの他の種々の作製方法(例えば、シャッフリング)、又は単離された核酸セグメントの、例えば当業者に知られる遺伝子組み換え技術による操作により通常達成される人為的な組換えを指す。「組換え発現された」とは、典型的にはin vitroで組換え核酸を作製し、in vivo、in vitro、又はex vivoで、その組換え核酸を、これを発現又は増幅可能な細胞内へ導入するための技術を指す。
ここで用いられる「保存的」とは、(ｉ)その変化が、可能な限り構造的に中性であること、即ち、天然タンパク質と比較して、その変異ペプチド又はポリペプチドの３次構造の変化が最小になるように設計されていることを意味する。構造的に中性であることは、生物活性を保存するために望ましい。当業者に、構造的に中性となる可能性の高い変異を作製するための手引きとなり得る法則が存在する(例えば、(７７)及び(７８)を参照)。より重要な法則のいくつかには、以下が含まれる：(１)物理化学的に類似する残基、即ち、同義の残基の置換では、置換により挿入されるアミノ酸は、置換されるアミノ酸と同様の構造的役割を果たすことが可能なので、構造変化が起こりにくい；そして(２)進化の過程で保存されている場合、その配列が機能上重要である可能性が示唆されることから、進化の過程で保存されている配列を変化させると、有害な構造上の効果を生じる恐れがある。
本明細書の本章又は以下の残りの記載において特に定義されていない限り、ここで使用する全ての科学技術用語は、本発明が属する技術分野の当業者に共通して理解される意味と同様の意味を有する。
本発明は、ＪｍｊＣドメイン含有タンパク質の活性調節剤として作用可能な化合物が、ゲノムの不安定性が発症に関与する疾患の予防及び／又は治療に有用であるという発見に基づく。特に、ＪｍｊＣドメイン含有タンパク質の調節剤は、癌の予防及び／又は治療に有用である。更に本発明は、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質；ヒストンＨ３のジメチル化及びトリメチル化リジン９(Ｈ３-Ｋ９)と相互作用できるタンパク質として、扁平上皮癌１で増幅される遺伝子(ＧＡＳＣ１)、の同定に関する。ＧＡＳＣ１は、ＪｕｍｏｎｊｉファミリーのＪＭＪＤ２サブファミリーに属する。本発明の発明者らは、ＪＭＪＤ２ファミリーのタンパク質が、トリメチル化及びジメチル化Ｈ３-Ｋ９を脱メチル化させるヒストンデメチラーゼであることを実証した。更に、本発明者らは、ＧＡＳＣ１とＪＭＪＤ２メンバーの異所発現が、ｉｎ ｖｉｖｏで、トリメチル化及びジメチル化Ｈ３-Ｋ９を劇的に減少させ、モノメチル化Ｈ３-Ｋ９を増加させ、ＨＰ１を非局在化させ、ヘテロクロマチンを減少させることも証明した。従って、最初に同定されたヒストントリメチルデメチラーゼであることに加え、ＪｕｍｏｎｊｉファミリーのＪＭＪＤサブファミリーのタンパク質も、癌の発症に関与している。従って、これらの酵素の触媒活性の阻害剤は、新規な抗ガン治療法の開発のための重要な候補となる。
従って、本発明は、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質の活性を調節可能な化合物の同定、スクリーニング、キャラクタリゼーション又は設計の方法に関する。本発明の方法を、多数の化合物のスクリーニングに用いて、特定の癌、特に前立腺癌の治療に臨床的に使用する候補化合物となる化合物群を同定することが可能である。スクリーニングアッセイで活性を示さない他の化合物については、候補化合物としての更なる検討から除外できる。従って、本発明の方法は、製薬産業において有用性を有する。
本発明によれば、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質のその基質(ヒストンペプチド、ヒストン又はヌクレオソーム)又は補因子(α-ケトグルタレート又は鉄)への結合を阻害する化合物を、競合結合アッセイにおいて同定できる。また、これとは別に、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質、又はその基質若しくは補因子への試験化合物の結合を直接測定することもできる。後者のタイプのアッセイは、直接結合アッセイと呼ばれる。競合結合アッセイと直接結合アッセイは、両方とも、当該技術分野で一般的に知られるイムノアッセイ及びレセプター結合アッセイで用いられるフォーマットと類似する種々の異なるフォーマットで使用可能である。競合結合アッセイ及び直接結合アッセイを含む結合アッセイの異なるフォーマットの記載については、Basic and Clinical Immunology 7th Edition (D. Stites and A. Terr ed.) 1991; Enzyme Immunoassay, E. T. Maggio, ed., CRC Press, Boca Raton, FIa. (1980)；及び"Practice and Theory of Enzyme Immunoassays," P. Tijssen, Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology, Elsevier Science Publishers B. V. Amsterdam (1985) を参照のこと。各参考文献は、本明細書に援用される。
例えば、競合結合アッセイでは、試験化合物は、固体表面に結合された結合物質上の特異的な結合部位について、標識された検体と競合する。この種のフォーマットでは、標識された検体は、ヒストンペプチドで標識可能であり、結合物質は、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質であってもよく、これが固相に結合されることになる。これに代わり、標識された検体が、標識されたＪＭＪＤ２タンパク質であってもよく、結合物質が、固相化されたヒストンペプチドであってもよい。捕捉物質に結合する標識検体の濃度は、結合アッセイにおいて試験化合物が競合する能力と反比例する。試験化合物による標識検体の阻害の量は、その結合アッセイの条件、並びに使用する結合物質、標識検体、及び試験化合物の濃度に依存する。具体的なアッセイ条件のもとでは、その競合結合アッセイにおいて、結合物質への標識検体の結合量が１０％以上低下した場合には、試験化合物は、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質への基質(即ち、ヒストンペプチド)又は補因子の結合を阻害できるとみなされる。直接結合アッセイを用いる場合、バックグラウンドのレベルの２倍以上のシグナルが測定される場合には、試験化合物は、ＪＭＪＤ２酵素への基質(即ち、ヒストンペプチド)又は補因子(即ち、α-ケトグルタレート)の結合を阻害しているものとみなされる。
競合結合アッセイでは、サンプル化合物は、特異的な結合物質への結合において標識タンパク質と競合する。上述した通り、結合物質を固体表面に結合させることで、結合していない標識タンパク質から結合した標識タンパク質を分離することができる。これに代わり、競合結合アッセイを液相で行い、当該技術分野で知られる種々の技術のいずれかを用いて、結合していない標識タンパク質から結合した標識タンパク質を分離することもできる。分離した後に、結合した標識タンパク質の量を測定する。サンプル中に存在するタンパク質の量は、結合した標識タンパク質の量に反比例する。
上記に代わり、相同的結合アッセイ(homogenous binding assay)を行うことも可能であり、このアッセイでは分離工程を要しない。これらの種類の結合アッセイでは、タンパク質上の標識が、タンパク質のその特異的な結合物質への結合により変化する。この標識タンパク質の変化により標識から放出されるシグナルが減少又は増加し、結合測定の終了時に標識を測定することにより、そのタンパク質を検出又は定量することが可能になる。
ここに記載される結合アッセイフォーマットは、標識されたアッセイ成分をもちいる。標識は、種々の形態をとることが可能である。標識は、当該技術分野で知られる方法に従って、アッセイの所望の成分に直接的又は間接的に結合できる。多種多様の標識を用いることができる。成分は、種々の方法のいずれによっても標識できる。
従来の方法では、3Ｈ、125Ｉ、35Ｓ、14Ｃ、又は32Ｐが組み込まれた放射性標識が用いられる。非放射性標識には、標識した抗体に結合するリガンド、フルオロフォア、化学発光剤、酵素、及び標識されたリガンドの特異的なペア形成剤として機能できる抗体が含まれる。標識の選択は、要求される感度、化合物への結合の容易性、安定性の要求、及び利用可能な機器に依存する。使用可能な種々の標識方法又はシグナル発生システムの総説については、米国特許第4,391,904号(参照により本明細書に組み込まれる)を参照。
「ヒストンペプチド」及び「基質」という用語は、ＪＭＪＤ２タンパク質に結合するヒストンの断片を指す。スクリーニングアッセイで用いるＪＭＪＤ２タンパク質とヒストンタンパク質の製造方法は、当業者に知られている。
前記方法は、特に、試験化合物がＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質に結合し、随意にその活性を調節する調節する能力の試験方法であり、試験化合物を、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質、前記タンパク質の補因子、及び場合により脱メチル化の基質と共にインキュベートすることを含む方法であってもよい。特に、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質の活性を阻害可能な化合物を同定することは、本発明の範囲に含まれる。
典型的には、前記方法では、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチド、代表的にはＧＡＳＣ１ポリペプチドを利用する。特に、前記方法では、ヒトＧＡＳＣ１ポリペプチド若しくはこのポリペプチドの断片、又はこれらの変異体を利用する。従って、本発明の重要な態様では、前記Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質が、以下の：
a)配列番号1に示すアミノ酸配列；
b)配列番号1に示すアミノ酸配列の断片；
c)a)の配列若しくはb)の配列のいずれか、又は両方と少なくとも45％の配列同一性を示すアミノ酸
を含む群から選択される方法が提供される。
a)配列番号1に示すアミノ酸配列；
b)配列番号1に示すアミノ酸配列の断片；
c)a)の配列若しくはb)の配列のいずれか、又は両方と少なくとも45％の配列同一性を示すアミノ酸
を含む群から選択される方法が提供される。
Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのクローニングされたメンバーには、ＧＡＳＣ１(Swiss-Prot accession number Q9H3R0)、並びにそのホモログであるＪＭＪＤ２a及びＪＭＪＤ２b(それぞれ、Swiss-Prot accession numbers 075164及び094953)が含まれる。
本発明の同程度に重要な態様は、前記Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質が、以下の：
ａ)配列番号１(ＧＡＳＣ-１(ＪＭＪ２Ｄｃ))、配列番号２(ＪＭＪＤ２ａ)、配列番号３(ＪＭＪＤ２ｂ)に示すアミノ酸配列；
ｂ)ａ)のいずれか１つのアミノ酸配列の断片；
ｃ)ａ)のいずれか１つの配列及び／又はｂ)のいずれか１つの配列と少なくとも４５％の配列同一性を示すアミノ酸
を含む群から選択される方法に関する。
ａ)配列番号１(ＧＡＳＣ-１(ＪＭＪ２Ｄｃ))、配列番号２(ＪＭＪＤ２ａ)、配列番号３(ＪＭＪＤ２ｂ)に示すアミノ酸配列；
ｂ)ａ)のいずれか１つのアミノ酸配列の断片；
ｃ)ａ)のいずれか１つの配列及び／又はｂ)のいずれか１つの配列と少なくとも４５％の配列同一性を示すアミノ酸
を含む群から選択される方法に関する。
当業者であれば、現時点で知られているＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのメンバーは、これらのアミノ酸配列を最適なフィットでアライメントした場合に、約４５％の配列同一性を示すことを理解するであろう。従って、本出願では、使用するアミノ酸配列は、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのいずれのメンバーの配列とも少なくとも４５％の同一性を示す。詳細には、前記配列同一性は少なくとも４５％、例えば、少なくとも４６％、４７％、４８％、４９％、５０％、５２.５％、５５％、５７.５％、６０％、６２.５％、６５％、６７.５％、７０％、７２.５％、７５％、７７.５％、８０％、８２.５％、８５％、８７.５％、９０％、９２.５％、９５％、９７.５％、９８％、９８.５％、９９％又は９９.５％であってもよい。
Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーの天然ポリペプチドメンバーの機能特性を取り込むためには、前記断片が少なくとも１００個のアミノ酸、例えば、少なくとも１０５、１１０、１１５、１２０、１２５、１３０、１３５、１４０、１４５、１５０、１５５、１６０、１６５、１７０、１７５、１８０、１８５、１９０、１９５、２００、２１０、２２０、２３０、２４０、２５０、２６０、２７０、２８０、２９０、３００、３２０、３４０、３６０、３８０、４００、４２０、４４０、４６０、４８０、５００、５２０、５４０、５６０、５８０、６００、６２０、６４０、６６０、６８０、７００、７５０、８００、８５０、９００、９５０、１０００個、又は少なくとも１０５０個のアミノ酸を有することが更に好ましい。
好ましくは、前記断片は、少なくとも１５０個のアミノ酸、例えば、少なくとも１５１、１５２、１５３、１５４、１５５、１５６、１５７、１５８、１５９、１６０、１６２、１６４、１６６、１６８、１７０、１７２、１７４、１７６、１７８、１８０、１８２、１８４、１８６、１８８、１９０、１９２、１９４、１９６、１９８又は２００個のアミノ酸を有する。
本発明は、更に、保存的アミノ酸置換により形成されるアミノ酸配列の類似体も意図している。保存的アミノ酸置換の背後にある原理は、特定のアミノ酸ペアにおいて、一方のアミノ酸を他方で置換した場合にも、そのペプチドの3次構造に最小限の変化しか生じないような相容性の側鎖が存在することである。保存的置換の法則については、以下で説明されている：Bowie et al. Science 247(1990) 1306-1310。本発明の目的の一つは、ＪＭＪＤ２サブファミリータンパク質の基質へ結合する能力を保持するポリペプチド、断片及び変異体を利用することである。いくつかの好ましい態様では、前記ポリペプチド、断片及び変異体は、ＪＭＪＤ２サブファミリータンパク質のα-ケトグルタレート等の補因子へ結合する能力を維持している。
必要とされる場合には、前記ポリペプチド、断片及び変異体のそれぞれは、精製された形態又は未精製の形態のいずれかで、例えば、細胞抽出物として、又はこのような抽出物から関連成分を精製することにより提供されてもよい。
これに代わり、前記ポリペプチド、断片及び変異体は、組換え発現技術により遺伝子操作で作製し、前記アッセイで使用するために精製することもできる。これに代わり、前記ポリペプチド、断片及び変異体は、細胞ベースのアッセイで用いるために、細胞内で組換え発現することもできる。
典型的には、関連成分をコードするポリヌクレオチドは、発現ベクターに組み込まれた状態で提供される。このような発現ベクターは、当該技術分野で通常の技術で組み立てられており、例えば、プラスミドDNA並びに必要とされる可能性のある適切なイニシエーター、プロモーター、エンハンサー及び他の構成成分、例えば、ポリアデニル化シグナルの使用を必要とする場合があり、これらは、完全なタンパク質発現を可能にするため、正しい配向で配置される。適切なベクターは、例えば、本出願の実施例により詳細に記載されるベクターのように、当業者に一瞬で明確に把握されるであろう。プロモーター配列は、選択されるアッセイフォーマットに応じた誘導プロモーター又は構成的プロモーターとなるであろう。
Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーには、数多くの共通する構造上の特徴が見出される。これらにはJmjN、JmjC、PHD及びTdrの配列が含まれ、これらの１以上は、ＪＭＪＤ２ Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質の好ましい特性である。これらの機能ドメインは、そのアミノ酸配列の要となる部位に一定の特定のアミノ酸残基が局在しているという特徴を有する。単に肉眼でタンパク質のアミノ酸を調べただけでは直ちに区別できないかもしれないが、これらのドメインは、SMARTプログラム(http:/smart.embl-heidelberg.de/smart)を用いて決定できる。SMARTプログラムの基礎となるアルゴリズムは、Letunic et al.58とSchultz et al.59に更に詳細に説明されている。
従って、本発明の好ましい態様では、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質、並びにポリペプチド、断片及び変異体は、ＪＭＪＤ２aに由来するJmjN、JmjC、PHD及びTUDORのドメインから成る群から選択される１以上のアミノ酸配列を含む：
本発明の同程度に好ましい態様では、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質並びにポリペプチド、断片及び変異体は、ＪＭＪＤ２bに由来するJmjN、JmjC、PHD及びTUDORのドメインから成る群から選択される１以上のアミノ酸配列を含む：
現時点で最も好ましい本発明の態様では、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質並びにポリペプチド、断片及び変異体は、ＪＭＪＤ２(ＧＡＳＣ１)に由来するＪｍｊＮ、ＪｍｊＣ、ＰＨＤ及びＴＵＤＯＲのドメインから成る群から選択される１以上のアミノ酸配列を含む：
これらのドメインのアミノ酸配列は、その機能を喪失させることなく置換により変更させることが可能なことが理解されるべきである。従って、本発明には、上記の配列のいずれか一つと少なくとも７５％の同一性、例えば、上記の配列のいずれかと少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９８％、９９％の同一性、又は記の配列のいずれかと少なくとも９９.５％の同一性を示す１以上のアミノ酸配列を含むＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質並びにポリペプチド、断片及び変異体が含まれる。
Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質とその活性の調節剤の候補を、その酵素活性の阻害剤の不存在下でヒストンH3のリジン9を脱メチル化させる条件下で一緒にインキュベートしてもよい。ＧＡＳＣ１は、Fe(II)及びα-ケトグルタレートに依存するデメチラーゼであるから、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質は、典型的には、補基質の存在下で基質と接触する。典型的には、α-ケトグルタレート、Fe(II)及びアスコルビン酸が補基質として用いられるが、他の補基質の使用も本発明の範囲に含まれる。
当業者はＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質、並びに上記のポリペプチド、断片及び変異体の活性を測定するにあたって、種々のアプローチを利用可能であり、これらのアプローチには、利用された基質及び／又は補基質の測定並びに形成された生成物及び／又は副生成物の測定が含まれる。従って、本発明の特定の態様では、前記方法は、以下の追加の工程：
ａ)試験サンプルの以下のいずれかのパラメーターを測定すること：
ｉ)基質のメチル化の状態；
ｉｉ)ホルムアルデヒドの放出；
ｉｉｉ)α-ケトグルタレート基質補因子のカルボキシル化の状態；
ｉｖ)酸素消費量
ｂ)工程ａ)で得られた試験サンプルについての数値を、対照サンプルについて得られた数値と比較し、それによって、その試験化合物の、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質の活性を調節する能力を測定すること
を含む。
ａ)試験サンプルの以下のいずれかのパラメーターを測定すること：
ｉ)基質のメチル化の状態；
ｉｉ)ホルムアルデヒドの放出；
ｉｉｉ)α-ケトグルタレート基質補因子のカルボキシル化の状態；
ｉｖ)酸素消費量
ｂ)工程ａ)で得られた試験サンプルについての数値を、対照サンプルについて得られた数値と比較し、それによって、その試験化合物の、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質の活性を調節する能力を測定すること
を含む。
更に、本発明の方法には、上述の要素による下流への効果の測定を組み込むこともできる。特に、GASCの作用は、特定の遺伝子の転写に影響を与える可能性があることから、GASC活性を測定するためにジーンレポーターアッセイを用いることも意図できる。このようなアッセイは、天然状態でＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質によって抑制されている遺伝子の転写活性の測定に基づくものとなるであろう。更に、メチル化を受けたプロモーターと転写物において結合されるレポーター遺伝子を含む遺伝子操作されたレポーターコンストラクトの使用に基づくin vitroアッセイも意図できる。
特定の態様では、これらのレポーターアッセイでは、蛍光レポーターをコードする遺伝子の使用を伴ってもよい；現時点で最も一般的に使用される蛍光レポーターは、緑色蛍光タンパク質(Green Fluorescent Protein：GFP)である。
測定は、定量的又は定性的なものでよい。定量的測定及び定性的測定のいずれも、上に示すように、対照の存在下で行うことができる。対照を用いる場合、使用するアッセイ方法にもよるが、以下の工程：
ａ)Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質と脱メチル化の基質を、脱メチル化が可能な条件下でインキュベートすること；
ｂ)試験サンプルの以下のパラメーター：
ｉ)基質のメチル化の状態；
ｉｉ)試験サンプル中のホルムアルデヒドの放出；
ｉｉｉ)α-ケトグルタレート基質補因子のカルボキシル化状態
ｉｖ)酸素消費量
をモニターすること
により測定を行うことができる。
ａ)Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質と脱メチル化の基質を、脱メチル化が可能な条件下でインキュベートすること；
ｂ)試験サンプルの以下のパラメーター：
ｉ)基質のメチル化の状態；
ｉｉ)試験サンプル中のホルムアルデヒドの放出；
ｉｉｉ)α-ケトグルタレート基質補因子のカルボキシル化状態
ｉｖ)酸素消費量
をモニターすること
により測定を行うことができる。
本発明のいくつかの態様では、インキュベート時間と基質のメチル化状態及び／又はホルムアルデヒドの放出を用いて脱メチル化の速度を測定し、これを比較に用いる。
ＧＡＳＣ１の天然基質がヒストンＨ３であることから、本発明のいくつかの態様においては、脱メチル化の基質には、ヒストンＨ３のリジン９に対応するメチル化部位が含まれることが理解されるであろう。本発明の特定の態様では、脱メチル化の基質は、配列番号２２に示すアミノ酸配列(ＴＡＲＫＳＴＧ)を含むペプチドである。
前記アミノ酸配列(配列番号２２)のヒストンＨ３のリジン９に対応するリジン残基はメチル化されている。本発明の大部分の態様において、前記リジン残基は、トリメチル化されていることが好ましいが、前記リジン残基が、ジメチル化又はモノメチル化されていたとしてもアッセイは行うことができる。
現時点においては、基質としては、ペプチドを用いることが好ましく、例えば、ヒストンＨ３のＮ末端残基６-１２、例えば、ヒストンＨ３の残基５-９、４-１０、３-１０、２-１１、１-１２、１-１３、１-１４、１-１５、１-２０、１-２５、１-３０、１-３５、１-４０、１-４５、１-５０、１-５５、１-６０、１-６５、１-７０、１-７５、１-８０、１-８５、１-９０、１-９５又は１-１００を含む合成ペプチド等を用いることが好ましい。本願においては、ヒストンＨ３の完全長配列が、配列番号２３に示されている。
上の脱メチル化基質の説明に従えば、前記基質は、少なくとも６個のアミノ酸残基から成るペプチド、例えば、少なくとも７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３２、３４、３６、３８、４０、４５、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１２０、１４０、１６０、１８０、２００、２５０、３００ ３５０、４００、５００、６００、７００、８００、９００個又は少なくとも１０００個のアミノ酸残基から成るペプチドであることが好ましい。８０個以下のアミノ酸残基から成るペプチドは、市販の合成サービス又は装置を用いて化学合成により簡便に入手できる。
当業者であれば、上記で特定されるようなヒストンH3のＮ末端残基と少なくとも７５％の同一性を示すペプチド、例えば、ヒストンＨ３のＮ末端残基と少なくとも７７.５％、８０％、８２.５％、８５％、８７.５％、９０％、９２.５％、９５％、９７.５％、９８％、９８.５％、９９％又は９９.５％の同一性を示すペプチドを理解するであろう。前記ペプチドは、上記に詳細に説明されるように、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質に置換が組み込まれたものであってもよい。特に、上記の同一の原理にしたがい、保存的置換が好ましくあろう。
本発明の更に好ましい態様では、最小限のものとして、前記基質は、以下から成る群から選択されるアミノ酸配列を含む：
現時点で最も好ましい態様では、ヒストンＨ３のＮ末端尾部(１-４０)を模倣した４３個のアミノ酸長の合成ペプチド、ARTKQTARKSTGGKAPRKQLATKAARKSAPATGGVKKPHR(配列番号24)が基質として用いられる。
また、バルクヒストン(bulk histone)、合成ペプチド及びヌクレオソームから成る群から選択される基質を用いることが更に好ましい場合もある。
上述したように、本発明に係る方法は、基質を用いて行うことができるが、そのメチル化部位は、モノメチル化、ジメチル化、又はトリメチル化されている。
上述したように、α-ケトグルタレートは、ＧＡＳＣ１の補因子として機能し、従って、本発明に係る方法に必要である。更に、α-ケトグルタレートの類似体を補因子として使用することも本発明の範囲に含まれる。これに加え、アスコルビン酸と、α-ケトグルタレートに加えて、Fe(II)イオンの存在によりもたらされるＧＡＳＣ１触媒活性が、補因子として重要となるであろう。従って、本発明の好ましい態様では、該化合物と、前記Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質は、Fe(II)イオン及び/又はアスコルビン酸と共にインキュベートされる。アスコルビン酸の存在は不可欠なことではないが、アスコルビン酸により反応系に存在する鉄は適切な形態であるFe(II)に変換されるので、完全な触媒活性を得るためには、アスコルビン酸が必要とされる場合もあることが理解されるべきである。
試験化合物がＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質に直接作用する場合には、無細胞系を用いることもできる。試験系を試験化合物と接触させ、その試験化合物が、前記Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質の活性を調節する能力を、基質(ヌクレオソーム、ヒストン又はヒストンペプチド)の転換をイムノアッセイを用いて測定することにより測定する。
Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質のペプチド基質、又はその触媒活性による生成物は、例えば、プレート若しくはビーズ上に固相化し、適切なメチル化部位のメチル化状態又は脱メチル化を、メチル化状態に応じて異なる親和力で前記ペプチドに結合する抗体若しくは他の結合分子を用いて検出できる。従って、トリメチル化、ジメチル化若しくはモノメチル化されたヒストンＨ３-Ｋ９のいずれかを認識する免疫結合パートナーは、試験系の一部を構成し、その活性に対する化合物の作用を迅速に測定することを可能にする。基質特異的抗体及び生成物特異的抗体を含む、このような結合パートナーは市販されている。
本発明のアッセイ方法は、in vivoアッセイの形態を取ることも可能である。in vivoでのアッセイは、細胞系、器官系、又は動物全体のアッセイを用いて行うことができる。好ましくは、in vivoアッセイは、細胞系で行われ、例えば、細胞に導入された1又は2種類以上のベクターから関連するポリペプチド若しくはペプチドが発現されるセルラインを用いて行われる。例えば、細胞は、酵母細胞又は哺乳動物由来の細胞であってもよい。
更に、本発明との関連で用いられるin vivoアッセイは、単離細胞/初代細胞又は組織切片による場合がある。特定の興味深い態様では、in vivoアッセイは、49歳の日本人女性から放射線照射(腫瘍が隣接構造に浸潤していた)の後に(頚部)食道上部から切除された、あまり分化の進んでいない食道扁平上皮癌から樹立されたヒト扁平上皮癌であるＫＹＳＥ-１５０セルラインの使用を要する；増幅されたがん遺伝子ｃ-ｅｒｂ-Ｂ(８倍)及びサイクリンＤ１(４倍)を保持し、ヒトのＡＳＴ、ＬＤＨ、ＭＤＨのＩＥＦで確認されたようにヌードマウスで腫瘍を発生させると記述される。
現時点において好ましくは、メチル化状態の測定は、フルオログラフィーによるホルムアルデヒド-3Hの放出と組み合わせてもよい。ホルムアルデヒド-デヒドロゲナーゼ一体アッセイによるホルムアルデヒド放出を測定するための類似技術も、本発明において意図されている。
本発明の好ましい態様では、基質のメチル化状態及び/又はホルムアルデヒドの放出及び/又はα-ケトグルタレート基質補因子のカルボキシル化状態及び／又は酸素消費量は、イムノアッセイ(ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡ、ＩＲＭＡ、ＴＲＩＦＭＡ)、免疫沈降、ウェスタンブロッティング、ＢＩＡｃｏｒｅ、Ｘ線結晶解析、溶液NMR、質量分析、分光技術又は蛍光技術により測定される。
本発明の現時点で好ましい態様では、基質の利用量及び/又は生成物の形成量の測定は、免疫蛍光分析、好ましくは共焦点免疫染色法により行われる。本発明の現時点で最も好ましい態様では、実施例で説明されるように、ペプチド基質は、ビオチンに結合されている。
基質特異的抗体によるアッセイでメチル化状態を測定する場合、適切な対照との比較における免疫結合パートナーの結合レベルの低下は、トリメチル化若しくはジメチル化したＨ３-Ｋ９の低下を意味しており、このことはＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質の活性の増加に対応している。免疫結合パートナーの結合は、例えば、ウェスタンブロッティング、ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡ、ＴＲＩＦＭＡ、免疫沈降又は免疫組織学的手法等、当該技術分野で一般的に知られた方法により評価できる。好ましい技術には、蛍光偏光法、時間分解-蛍光共鳴エネルギー転移法(Time Resolved Fluorescence Resonance Energy Transfer Assay：TR-FRET)、シンチレーション近接アッセイ(Scintillation Proximity Assay)及び「蛍光クエンチング」アッセイ等のハイスループットスクリーニング技術が含まれる。発現物は、容易に検出可能なレポータータンパク質、例えば、以下に限定されるものではないが、β-ガラクトシダーゼ、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーぜ(ＣＡＴ)、緑色蛍光タンパク質又はルシフェラーぜ等と連結させることもできる。
競合測定では、合成若しくは天然のヒストンペプチドが、標識型又は非標識型で提供される場合がある。抗体を、修飾有り又は無しで用いることもできる。抗体は、その抗体をレポーター分子と、共有結合的又は非共有結合的に連結させて標識できる。検出の容易化に使用可能な適切なレポーター分子又は標識には、放射性ヌクレオチド、酵素、蛍光分子、化学発光剤又は発色剤、並びに、基質、補因子、阻害剤、磁気粒子等が含まれる。キットの抗体又は合成ペプチドは、好ましくは、ＢＳＡ、チログロブリン、オボアルブミン又はキーホールリンペットヘモシアニン等の適切なタンパク質担持体と結合させることにより、マイクロタイタープレート等の固体表面に固相化させてもよい。
本発明の現時点で好ましい態様では、前記方法には、以下の工程：
ｉ) 鉄及びα-ケトグルタレートを含む溶液で請求項８ないし１３のいずれか１項に定義される脱メチル化の基質の懸濁液を調製すること；
ｉｉ) 前記試験化合物を、前記懸濁液に添加すること；
ｉｉｉ) ｉｉ)で得られた前記懸濁液に、請求項２ないし４のいずれか１項に定義されるＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質を添加すること；
ｉｖ) 前記懸濁液を、好ましくは、３５〜３８℃の温度で１０分間以上インキュベートすること；並びに
ｖ) 前記基質の脱メチル化の程度を測定すること
が含まれる。
ｉ) 鉄及びα-ケトグルタレートを含む溶液で請求項８ないし１３のいずれか１項に定義される脱メチル化の基質の懸濁液を調製すること；
ｉｉ) 前記試験化合物を、前記懸濁液に添加すること；
ｉｉｉ) ｉｉ)で得られた前記懸濁液に、請求項２ないし４のいずれか１項に定義されるＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのタンパク質を添加すること；
ｉｖ) 前記懸濁液を、好ましくは、３５〜３８℃の温度で１０分間以上インキュベートすること；並びに
ｖ) 前記基質の脱メチル化の程度を測定すること
が含まれる。
脱メチル化の程度は、リジン9がメチル化されたヒストンH3に特異的な免疫結合パートナーを用いて測定することが更に好ましい。
また、前記免疫結合パートナーは、抗トリメチル化ヒストンＨ３-Ｋ９抗体であることが好ましい。また、免疫結合パートナーとして抗ジメチル化ヒストンＨ３-Ｋ９抗体を用いることも、同程度に好ましい。
更に好ましい態様では、脱メチル化の程度は、ホルムアルデヒドの放出により評価される。更に、脱メチル化の程度は、酸素消費量を測定することによっても評価できる。
これに代わる場合、脱メチル化の程度は、α-ケトグルタレート基質補因子のカルボキシル化状態を測定することにより、評価される。
例えば、ｉ)のバッファーは、終濃度で５０ｍＭのＨｅｐｅｓ(ｐＨ７.５)、５０ｍＭのＫＣｌ、４ｍＭのＭｇＣｌ2、１ｍＭのα-ケトグルタレート、４０μＭのＦｅＳＯ4、２ｍＭのアスコルビン酸を含む。実利的な理由により、前記懸濁液は、１０-５０μｌの総量にあることが好ましい。
最後に、上記に加えて、反応系のタンパク質成分の分解を最小限に抑えるためには、１又は２種類以上のプロテアーゼ阻害剤を終濃度１-５μｇ／μｌで添加することが有用であろう。例えば、アプロチニンやロイペプチンは、プロテアーゼ阻害剤に含まれるであろう。
本発明の種々の局面と、これらの局面の具体的な態様の上記記載に関しては、本発明の一つの局面及び/又は局面の一つの態様と関連して上に記載又は言及されるいずれの特性及び特徴も、記載される本発明の他の全ての局面及び/又は態様に類推して用いるられることが理解されるべきである。
本発明の目的又はその特性若しくは特徴の一つについて単数系で言及された場合、その言及は、その目的又はその特性若しくは特徴について複数系で言及していることにもなる。例えば、「1つのペプチド」について言及している場合、１以上のペプチドについて言及していることが理解されるべきである。
本明細書を通じて、「含む(comprise)」という単語、及びその変化形である「含む(comprises)」若しくは「含んでいる(comprising)」は、記述する要素、整数若しくは工程、又は要素、整数若しくは工程の群を含むが、いずれかの他の要素、整数若しくは工程、又は要素、整数若しくは工程の群を排除するものではないことを意味することが理解されるべきである。
Ｈ３Ｋ９のトリメチル化バリアントと相互作用するタンパク質の同定を目的とする研究において、ストレプトアビジン-アガロース上に固相化されたビオチン化Ｈ３ペプチドを用いてＨｅＬａ核タンパク質をアフィニティー精製した。リジン９が非メチル化状態にあるか又はトリメチル化されている、ヒストンＨ３1-40のＮ末端尾部全体を模倣した合成４３-ｍｅｒをｉｎ ｖｉｔｒｏ結合実験に用いた。結合したタンパク質をアガロース-マトリックスから溶離し、ＳＤＳ-ＰＡＧＥで分離して銀染色し、質量分析により同定した。複数種類のタンパク質では、非メチル化Ｈ３Ｋ９と比べて、特にトリメチル化Ｈ３Ｋ９が豊富であった(補足図Ｓ１)。
これらタンパク質の中から、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＧＡＳＣ１を同定した(図１ａ)。ＪｕｍｏｎｊｉドメインのＪｍｊＮ及び関連するＪｍｊＣドメインが存在することから、このタンパク質は、ＪＭＪＤ２ｃ8,9とも呼ばれている(図１ａ)。Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質ファミリーには、α-ケトグルタレート依存的オキシゲナーゼスーパーファミリーに属する多様なタンパク質のグループが含まれる。これらのタンパク質は、細胞周期の進行及び転写調節を含む種々の細胞プロセスを調節している5,10-14。このタンパク質のグループに共通する特徴は、Ｆｅ(ＩＩ)イオンに結合する能力である。更に、これらのタンパク質の多くは、α-ケトグルタレートを補因子としてタンパク質基質をヒドロキシル化する能力を有する15。特に興味深いことに、近年、ＪｍｊＣドメインを有するタンパク質が、ヒストンデメチラーゼの候補として同定されている16。
ＧＡＳＣ１は、トリメチル化(ｍｅ３)Ｈ３Ｋ９と結合することが分かっているので、ＧＡＳＣ１が、このエピジェネティックマークの脱メチル化に関与しているかもしれないという考えは、興味深いものであった。この可能性を試すため、組換え完全長Ｈｉｓタグ化ヒトＧＡＳＣ１を作製し、バキュロウィルスで感染させた昆虫細胞から精製した(補足図Ｓ３)。アフィニティー精製したＧＡＳＣ１を、更にサイズ排除クロマトグラフィーで精製し、溶離した高純度ＧＡＳＣ１を、バルクヒストンとインキュベートすることで脱メチル化活性について試験した。図３ａに示すように、イムノブロッティング法で評価したところ、ＧＡＳＣ１は、非常に効率的にＨ３Ｋ９のトリメチル化を減少させていた。また、ＧＡＳＣ１が、関連する生理学的鋳型であるオリゴヌクレオソームを脱メチル化できることも分かった(補足図Ｓ４ａ)。
ＧＡＳＣ１の脱メチル化活性の特異性を更に分析するため、大量ないし少量のＧＡＳＣ１を示すＧＡＳＣ１のサイズ排除クロマトグラフィーの種々のフラクションをバルクヒストン及びリジンＫ９若しくはＫ２７がメチル化された合成Ｈ３ペプチドとインキュベートし、種々のエピジェネティックマークのメチル化状態を、イムノブロッティング法により評価した(図３ｂ及びＳ４ｂ)。最も高いＧＡＳＣ１濃度を有するフラクション(Ｆ９-Ｆ１２)では、ジメチル化及びトリメチル化Ｈ３Ｋ９はヒストンから完全に除去されていた。また、これに付随したモノメチル化(ｍｅ１)Ｈ３Ｋ９の増加も認められ、ＧＡＳＣ１がトリメチルＨ３Ｋ９をジメチル(ｍｅ２)型に変換し、更にモノメチルＨ３Ｋ９(ｍｅ１)に変換することと一致していた。
対照的に、ジメチル化Ｈ３Ｋ４、トリメチル化Ｈ３Ｋ４、トリメチル化Ｈ３Ｋ２７及びトリメチル化Ｈ４Ｋ２０を含む、試験した他のエピジェネティックマークのレベルは、ＧＡＳＣ１処理によって影響を受けていないようであった(図３ｂ及びＳ４ｂ)。
興味深いことに、ジメチル化Ｈ３Ｋ９は、ヒストンを、少量ないし中程度の量のＧＡＳＣ１(Ｆ６、Ｆ８、Ｆ１４及びＦ１６)と反応させた場合に増加したようであった。このことは、ジメチル化Ｈ３Ｋ９マークの見かけの増加の理由が、脱メチル化反応の初期において、このマークの安定状態のレベルに到達したことによるという可能性を示している。従って、ある程度のジメチルＨ３Ｋ９がＧＡＳＣ１による脱メチル化を通じて失われるが、反応系全体で見れば、少なくとも十分な量のトリメチルＨ３Ｋ９が存在する限りは、ＧＡＳＣ１によるトリメチルリジンの脱メチル化により、更なるジメチルＨ３Ｋ９が加わるものと考えられる。
図３ａ及びｂの結果と一致して、ＧＡＳＣ１の脱メチル化活性は、濃度依存的に変化し、ＧＡＳＣ１の熱変性により消失する場合があることから(図Ｓ４ｂ、ｃ)、この反応は酵素反応であることが示唆される。更なるｉｎ ｖｉｔｒｏ脱メチル化試験を行い、この試験では、純粋な合成トリメチル化Ｈ３Ｋ９ペプチドをＧＡＳＣ１とインキュベートした。純粋なトリメチル化Ｈ３Ｋ９とＧＡＳＣ１のインキュベートを３０分間行った後では、殆ど全てのトリメチルＨ３Ｋ９が、ジメチル及びモノメチルＨ３Ｋ９に変換されていた(図Ｓ４ｃ、ｄ)。
ＧＡＳＣ１が実際にトリメチル化及びジメチル化Ｈ３-Ｋ９を脱メチル化することを正確に証明するため、単一又はＧＡＳＣ１の存在下でインキュベートした合成ペプチドの質量分析を行った。この分析により、ＧＡＳＣ１とのインキュベート後にＨ３Ｋ９ｍｅ３ペプチドの大部分(約８０％)が、ジメチル化及びモノメチル化Ｈ３-Ｋ９に変換されたことが示された(図４ｃ-６ｆ)。
次に、ＧＡＳＣ１に近似するホモログであるＪＭＪＤ２ａ及びＪＭＪＤ２ｂ(図１ａ、図２ｂ)が、ｉｎ ｖｉｖｏでＨ３Ｋ９を脱メチル化できるかどうかについて検討した。これを調べるため、完全長のヒトＪＭＪＤ２ａ、ＪＭＪＤ２ｂをクローニングし、バキュロウィルスで感染させた細胞から組換えタンパク質を得た。両ホモログは、バルクヒストンのＨ３Ｋ９ｍｅ３とＨ３Ｋ９ｍｅ２を脱メチル化できた(補足図Ｓ５)。同様に、ＧＡＳＣ１とそのホモログＪＭＪＤ２Ａは、同程度の合成Ｈ３Ｋ９基質を脱メチル化する能力を有すると考えられた(補足図Ｓ４ｄ、ｅ)。これらの結果は、まとめると、トリメチル化及びジメチル化Ｈ３Ｋ９は両方とも、ｉｎ ｖｉｔｒｏでのＧＡＳＣ１とそのホモログの基質であることを強く示唆している。
ｉｎ ｖｉｖｏでの脱メチル化反応の特異性に対する洞察を得るため、ヒトＧＡＳＣ１を、３次元構造が解明された唯一のＪｕｍｏｎｊｉタンパク質である11,15,17-19、ＦＩＨの構造上にモデリングした。アライメント(図５及び補足図Ｓ２)と一致して、このモデリングでは、ヒスチジンＨ１９０、グルタミン酸Ｅ１９２、及びヒスチジンＨ２８８の残基が、ＧＡＳＣ１の鉄結合用溝の本質的な部分を形成することが示された(図６ｈ、ｉ)。また、ｉｎ ｓｉｌｉｃｏモデルでも、Ｔ１８７とＲ２０８の残基が、α-ケトグルタレートの結合に関与しており、ＧＡＳＣ１の脱メチル化機能に決定的なものであることが予測された。次にトリメチル化Ｈ３ヒストン尾部を、予測されたＧＡＳＣ１構造上にモデリングした。Ｋ９がトリメチル化されたＨ３ヒストン尾部は、ＧＡＳＣ１の鉄結合用溝に良好にフィットし、Ｋ９メチル基は、メチル化ヒストン尾部とＧＡＳＣ１構造間に立体障害を生じることなく、反応相手の鉄の近傍に位置することができた(図６ｈ)。このｉｎ ｓｉｌｉｃｏモデルに基づき、Ｈ１９０とＥ１９２に変異を導入するだけで、ＧＡＳＣ１の鉄結合能が喪失し、従って、その脱メチル化活性が阻害されるであろうことが予測された。
上記の仮説を試すため、バルクヒストンを、野生型のＧＡＳＣ１と、ヒスチジンＨ１９０ とグルタミン酸Ｅ１９２がそれぞれグリシンとアラニンで置換された変異型ＧＡＳＣ１(Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａ)と共にインキュベートすることにより、脱メチル化アッセイを行った。野生型ＧＡＳＣ１は、強力な脱メチル化活性を有していたが、変異体ＧＡＳＣ１は、検出可能な脱メチル化活性を示さず、予測された鉄結合残基が、ＧＡＳＣ１の脱メチル化活性に決定的であることが示された。野生型ＧＡＳＣ１と変異型ＧＡＳＣ１のサイズ排除クロマトグラフィーのプロファイルは、ほぼ同一であり、前記変異導入が、タンパク質の全体的な構造を失わせなかったことが示された(補足図Ｓ６)。
次に、Ｈ３Ｋ９のトリメチルマーク及びジメチルマークのＧＡＳＣ１媒介性脱メチル化の反応機構を検討するため、複数の実験を行った。因子阻害性ＨＩＦ１(Ｆａｃｔｏｒ Ｉｎｈｉｂｉｔｉｎｇ ＨＩＦ１：ＦＩＨ)を含むα-ケトグルタレート依存性オキシゲナーゼに関する種々の研究11,17-24では、以下の反応機構が提唱されている：最初に、酵素が、その金属結合モチーフであり、いわゆる表面の３つの分子から成るＨＸＤ／ＥＸnＨ20(ＧＡＳＣ１ではＨＸＥＸnＨ)を通じて鉄と結合する。次いで、Ｆｅ(ＩＩ)-酵素の複合体が、補因子であるα-ケトグルタレート(αＫＧ)と結合し、次いで、基質及び酸素と結合する。酸素の結合の後に、αＫＧの酸化的脱カルボキシル化が起こり、サクシネート、二酸化炭素及びフェリルが生じる。フェリルは、非常に反応性が高い基であり、リジンのメチル基中のＣ-Ｈ結合を酸化して、不安定なカルビノールアミンを形成する場合があり、このカルビノールアミンは、迅速に分解してホルムアルデヒドを生じさせ、そしてリジンはメチル基を奪われることになる(図７ａ)。
ｃｕｐｉｎスーパーファミリーに属するジオキシゲナーゼは、Ｆｅ(ＩＩ)とα-ケトグルタレートに依存する。更に、ＦＢＸＬ１１を含むいくつかのｃｕｐｉｎジヒドロゲナーゼは、完全な触媒活性のために更にアスコルビン酸を必要とする5,21,23。アスコルビン酸の作用の様式は、現時点では明確なっていないが、Ｆｅ(ＩＩＩ)をその活性状態のＦｅ(ＩＩ)に還元するか、又はフェリル(ＦｅＩＶ＝０)中間体が分離して生成された場合に「代理の還元性基質」として機能してジオキシゲナーゼ酵素を「救助する」ことが示唆されている17,22。
ＧＡＳＣ１媒介性脱メチル化が、上に記載され、図７ａに示される反応機構と一致するかどうかを試験するため、脱メチル化反応の推定上の補因子の重要性を検討した。
精製したＨｉｓタグ化ＧＡＳＣ１を、その補因子の存在下又は不存在下で基質としてのバルクヒストンとインキュベートした(図３ｂ)。全ての補因子の存在下ではＧＡＳＣ１はＨ３Ｋ９ｍｅ３をｉｎ ｖｉｔｒｏで脱メチル化するが、ＥＤＴＡ(鉄をキレート化する)の存在下でのＧＡＳＣ１のインキュベート又は補因子の不存在下でのＧＡＳＣ１のインキュベートでは、脱メチル化は著しく低下していた(図８ｂ)。補因子を添加していないにも関わらず脱メチル化反応を起こさせる能力は、恐らく、組換えＧＡＳＣ１と共に精製された補因子(鉄及びαＫＧ)によるものと考えられる。この理由により、Ｎ-オキサリルグリシン、ケルセチン、ＣｏＣｌ2及びＮｉＳＯ4が、ＧＡＳＣ１媒介性のＨ３Ｋ９ｍｅ３の脱メチル化を阻害する能力を試験することで、上記の補因子の重要性を更に探った。これら全ての化合物が、効果的に脱メチル化反応を阻害できた(図８ｃ及びデータ非開示)。Ｎ-オキサリルグリシン(図８ｄ)とケルセチンは、αＫＧ類似体であり、恐らく、ＧＡＳＣ１の鉄結合残基からαＫＧを引き離すことによりＧＡＳＣ１の活性を阻害している。同様に、ＣｏＣｌ2及びＮｉＳＯ4によるＧＡＳＣ１の阻害には、恐らく、コバルト(ＩＩ)イオン又はニッケル(ＩＩ)イオンが競合することにより、ＧＡＳＣ１の鉄結合部位からＦｅ(ＩＩ)が隔離されることが関わっている。脱メチル化反応にアスコルビン酸、αＫＧ及び鉄を必要とすること、並びにニッケル塩及びコバルト塩及びαＫＧ類似体により脱メチル化反応が阻害されることにより、ＧＡＳＣ１が、実際にジオキシゲナーゼであることが強く示唆される。
更にまた、補因子であるＦｅ（ＩＩ）及びαＫＧの存在下では、組換えＨｉｓタグ化ＧＡＳＣ１は、ホルムアルデヒドを放出し（図８ｅ）、これは、提案される図３ａの反応スキームと一致している。これらをまとめると、以上の結果は、ＧＡＳＣ１が、鉄とαＫＧを必要とするヒドロキシル化反応を通じて、ｉｎ ｖｉｔｒｏでヒストンＨ３のトリメチル化及びジメチル化リジンＫ９を直接脱メチル化し、ホルムアルデヒドとモノメチル化Ｈ３Ｋ９を生じることを示している。
ＧＡＳＣ１が、ｉｎ ｖｉｔｒｏでジメチル化及びトリメチル化Ｈ３Ｋ９を脱メチル化できることが立証されたことから、ＧＡＳＣ１が、ｉｎ ｖｉｖｏでヘテロクロマチンの形成／維持を調節できるのかどうかを検討した。この問題に取り組むため、最初に、ＧＡＳＣ１の強制発現により、ｉｎ ｖｉｖｏでＨ３Ｋ９のメチル化を調節できるかどうかを調べた。ヒトの２倍体線維芽細胞を、ヒト野生型ＧＡＳＣ１を発現するレトロウィルスで感染させ、Ｈ３Ｋ９のメチル化状態を、共焦点顕微鏡観察により検証した。ＧＡＳＣ１は、核内に局在していたことから、これは、予想上の核内局在シグナル配列が該タンパク質に存在することと一致していた。ｐＢａｂｅ−ＨＡ−ＧＡＳＣ１での感染により、Ｈ３Ｋ９トリメチルが効果的に減少し、モノメチル化Ｈ３Ｋ９が増加した（図９ａ）。対照的に、トリメチル化Ｈ３Ｋ４とトリメチル化Ｈ３Ｋ２７は、ＧＡＳＣ１過剰発現による影響を受けなかった（補足図Ｓ７）。
次に、ヒト骨肉腫セルラインＵ２ＯＳを、野生型ＧＡＳＣ１を発現するプラスミドと、ヒスチジンＨ１９０ とグルタミン酸Ｅ１９２がそれぞれグリシンとアラニンで置換された変異型ＧＡＳＣ１（Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａ）を発現するプラスミドでトランスフェクトした。野生型ＧＡＳＣ１の異所発現では、ｉｎ ｖｉｖｏでヒストンＨ３のＫ９のトリメチル化とジメチル化から効果的に消失されたが、変異型ＧＡＳＣ１では、そうではなかった（図９ｂ）。
興味深いことに、ＧＡＳＣ１の異所発現では、モノメチル化Ｈ３Ｋ９が顕著に増加しており、ＧＡＳＣ１が、ｉｎ ｖｉｖｏでトリメチル化Ｈ３Ｋ９とジメチル化Ｈ３Ｋ９の両方を脱メチル化することが示唆された。トリメチル化Ｈ３Ｋ９の減少は、ウェスタンブロッティングによりこのマークの全体的なレベルを評価した場合に、ＧＡＳＣ１でトランスフェクトされたＵ２ＯＳ細胞においても明らかであった（図１０ｃ）ことから、これらの推定上のＦｅ（ＩＩ）配位残基の決定的な重要性が確認された。
次に、ＧＡＳＣ１の近似するホモログであるＪＭＪＤ２ａとＪＭＪＤ２ｂ（図１ａ、図２ｂ）も、ｉｎ ｖｉｖｏでＨ３Ｋ９を脱メチル化できるかどうかを、これらのタンパク質をＵ２ＯＳ細胞内で過剰発現させることにより試験した。ＧＡＳＣ１と同様に、ＪＭＪＤ２ａとＪＭＪＤ２ｂの異所発現により、トリメチル化及びジメチル化Ｈ３Ｋ９が顕著に減少し、同時にモノメチル化Ｈ３Ｋ９が増加していた（図１０ｄ、ｅ）。これらの結果は、ＧＡＳＣ１が、ヒストンＨ３Ｋ９デメチラーゼのファミリーに属していることを示している。
ヘテロクロマチンの形成と維持には、トリメチル化及びジメチル化Ｈ３Ｋ９の存在と並びにＨＰ−１結合が必要とされる25-27。ＧＡＳＣ１を異所発現させることにより、Ｈ３Ｋ９のジメチル化とトリメチル化が全体的に減少したので、ＨＰ−１結合と局在性が、ＧＡＳＣ１レベルの上昇により影響を受けるかどうかを検討した。ＮＩＨ ３Ｔ３細胞を、ＨＡタグ化ＧＡＳＣ１を発現するプラスミドでトランスフェクトし、事前に抽出した細胞内の内在性のＨＰ１βの分布を共焦点顕微鏡観察により確認した。予想した通り、ＨＰ１βは、ＧＡＳＣ１を過剰発現する細胞内では非局在化しており、Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａ変異体をトランスフェクトした場合には、非局在化は認められなかった（図１１ｆ）。同様に、ＧＡＳＣ１のホモログであるＪＭＪＤ２ａ及びＪＭＪＤ２ｂの異所発現では、ＨＰ１αが非局在化した（補足図Ｓ８）。これらの結果については、ＧＡＳＣ１過剰発現細胞内でのクロマチンと結合したＨＰ１α及びＨＰ１γのレベルの低下を示すことにより更に確認した（図１１ｇ）。この目的のため、Ｍｙｃタグ化ＧＡＳＣ１をテトラサイクリン制御下で発現させるＨＥＫ２９３細胞を作製した。選択した細胞をテトラサイクリンの存在下又は不存在下で一晩インキュベートしたところ、図１１ｇに示すように、クロマチンと結合したＨＰ１α及びＨＰ１γの量は、ＧＡＳＣ１過剰発現細胞内で減少していた。これらの結果をまとめると、ＧＡＳＣ１が、ヘテロクロマチンの形成及び維持の調節において、生理学的に重要な役割を果たす可能性が示唆される。
近年に至るまで、トリメチル化リジンは、不可逆的な共有結合性のヒストン修飾であると考えられてきており28、ヒストントリメチルデメチラーゼを同定するのは、本報告が最初のものである。我々の結果は、ＧＡＳＣ１が、メチル化されたＨ３Ｋ９を特異的に脱メチル化するが、モノメチル化又はジメチル化された基質に特異的なＬＳＤ１及びＦＢＸＬ１１4,5とは対照的に、ＧＡＳＣ１は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏで、Ｈ３Ｋ９のジメチル種及びトリメチル種の両方を取り除く能力を有することを示している。
ＧＡＳＣ１は、複数のドメインを含み、恐らく、これらのドメインは、ＧＡＳＣ１タンパク質にトリメチル化及びジメチル化Ｈ３Ｋ９に対する強い特異性を与えるよう作用する（図１ａ）。ＪｕｍｏｎｊｉＣドメイン（ＪｍｊＣ）とＪｕｍｏｎｊｉＮドメイン（ＪｍｊＮ）に加え、ＧＡＳＣ１タンパク質は、２つのｐｌａｎｔ ｈｏｍｅｏｄｏｍａｉｎ（ＰＨＤ）並びにｔａｎｄｅｍ Ｔｕｄｏｒ ｄｏｍａｉｎ（Ｔｄｒ）を特徴とする。これらのドメインの機能は現時点では明らかとなっていないが、これらはすべて、クロマチンの調節に関与していると考えられている8,10,12,29,30。例えば、５３ＢＰ１のＴｕｄｏｒドメインは、ヒストンＨ３のリジン７９のトリメチル化体に結合することが報告されており31、ＰＨＤドメインは、ヌクレオソームへの結合で、Ｂｒｏｍｏドメインと強調することが実証されている30。どのドメインがＧＡＳＣ１の脱メチル化機能に必要であるのかという洞察を得るためと、どのドメインが基質特異性を決定するのかを解明するために、ＧＡＳＣ１タンパク質の変異導入試験を行った。これは、一連のＪｍＪＣ、ＪｍｊＮ及びＰＨＤドメインに欠失を有するＧＡＳＣ１発現コンストラクトを作成することで行った。これらの結果は、ＪｍｊＣドメインとＪｍｊＮドメインが、ＧＡＳＣ１の脱メチル化活性に不可欠であることを示していた（補足図Ｓ９）。対照的にＰＨＤドメインの欠失は、ＧＡＳＣ１のｉｎ ｖｉｖｏでＨ３Ｋ９ｍｅ３を脱メチル化する能力に影響していなかったと思われた（図Ｓ９）。
ＧＡＳＣ１及びＦＢＸＬ１１の類似する反応機構に照らせば、なぜＦＢＸＬ１１は、その機能を有しないのに、ＧＡＳＣ１がトリメチル化ヒストンのリジン基質を脱メチル化する能力を有するのかという疑問が生じるのが妥当である。可能性のある説明としては、鉄／基質結合用溝が、ＦＢＸＬ１１ではＧＡＳＣ１よりも小さいことが考えられる。この説明は、実験的な検証を要するが、ｉｎ ｓｉｌｉｃｏモデリングにより支持される。ＦＩＨを鋳型としてモデリングした２種類のＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のモデルを比較した場合、両者は共に、そのモデルの鉄結合用溝のエッジに位置するループ領域を有するという特徴を有することが判明した。このループ領域は、ＦＢＸＬ１１モデルで顕著に長く、これがゆらゆらと動くために、このタンパク質の鉄／基質結合用溝がより小さくなり、結果としてトリメチルリジン基質の収容を阻害しているかもしれないという可能性が考えられる。
本報告に記載され、補足図Ｓ８ｂにまとめられる脱メチル化経路は、進化の過程で保存されていると予測される。この関係において、Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅのＪｕｍｏｎｊｉタンパク質であるＥｐｅ１は、ヘテロクロマチン化をアンタゴナイズすることが報告されている10。従って、最近の報告10では、Ｅｐｅ１の強制発現が、ジメチル化Ｈ３Ｋ９を減少させ、ヘテロクロマチンにアンタゴナイズすると同時にセントロメアと交配型遺伝子座を不安定化させることが証明されている10。このＥｐｅ１媒介性表現型は、無傷のＪｍｊＣドメインに依存しており、Ｅｐｅ１のヘテロクロマチン化をアンタゴナイズする能力が脱メチル化活性に起因することは証明されていないものの、我々の本データと照らしてこのような役割の仮説を立てることは興味深い。
例えば、ＧＡＳＣ１等、類似する酵素活性を有する、密接に関連した複数のヒトホモログ（ＪＭＪＤ２ａ及びＪＭＪＤ２ｂ、図２ｂ）の存在は、機能の重複性とＨ３Ｋ９トリメチルデメチラーゼ活性の正確な調節の必要性を示唆するものである。ヘテロクロマチンの形成と維持の正確な調節が、適切な生物機能とゲノムの統合性の両方にとって決定的に重要であることから、上記のことは予測されるべきことである。例えば、セントロメアにおけるヘテロクロマチンの形成は、有糸分裂期における染色体の正確な分離に不可欠である32。同様に、マウスのＳｕｖ３９Ｈ１及びＳｕｖ３９Ｈ２（これら遺伝子の産物は、ヘテロクロマチンのＨ３Ｋ９のジメチル化及びトリメチル化に関与する）の欠失は、染色体を不安定化させ、マウスのリンパ腫の誘導において癌遺伝子と共同して機能することが示されている6。従って、ＧＡＳＣ１又はそのホモログの異常な活性は、ゲノムを不安定化させ、その結果として癌を生じさせる可能性がある。実際に、ＧＡＳＣ１は、元々、食道扁平上皮細胞（oesophageal squamous cell：ＥＳＣ）の癌で頻繁に増幅される遺伝子として同定されており22、ＧＡＳＣ１は、染色体異常を含む種々の種類の癌で過剰発現されている33,34。
ＧＡＳＣ１の癌への関与に関する更なる支持を得るため、Ｏｎｃｏｍｉｎｅデーターベースで、正常組織と腫瘍組織における異なるＧＡＳＣ１発現について探索した。ＧＡＳＣ１とそのホモログのＪＭＪＤ２ａ及びＪＭＪＤ２ｂの発現は、正常組織と比べて前立腺癌で著しく増加していることがわかった（補足図Ｓ１１）。ＧＡＳＣ１は、先に、ＥＳＣ癌腫由来の複数のセルラインで増幅されていることが示されている33。ＧＡＳＣ１遺伝子を増幅させたＥＳＣセルライン（ＫＹＳＥ−１５０）と、より緩やかに発現されているセルライン（ＫＹＳＥ−４５０）において、Ｈ３Ｋ９エピジェネティックマークのメチル化状態を試験した。ヒト骨肉腫セルラインＵ２ＯＳが、対照として含まれた。ＧＡＳＣ１増幅の重要性を試験するため、ＧＡＳＣ１及び／又はそのホモログに対するｓｉＲＮＡオリゴでトランスフェクトされた細胞におけるＨ３Ｋ９メチル化状態に対するＧＡＳＣ１ノックダウンによる効果を試験した。細胞をＬＭＰ−ＧＡＳＣ１でトランスフェクトして、その後、ピューロマイシンを用いて３日間かけてセレクションを行った。ＧＡＳＣ１ノックダウンの効果は、ＲＴ−ＱＰＣＲにより評価した（図５ａ）。ウェスタンブロッティングにより証拠付けられるように、Ｈ３Ｋ９ｍｅ３は、ＫＹＳＥ−１５０細胞内でＧＡＳＣ１ノックダウンに応じて顕著に増大していた（データ非公開）。
ジメチル化及びトリメチル化Ｈ３Ｋ９は、ＨＰ１結合に必要であり、ヘテロクロマチン形成に不可欠であり、転写抑制と関連している。更にまた、これらのエピジェネティックマークは、癌から細胞を守る要となる機構である、老化状態にある特定の遺伝子において増加している36-39。従って、ＧＡＳＣ１の増幅は、細胞が老化状態になる能力を低下させるか、又はサイレンシング状態にある癌遺伝子の抑制を解除する可能性があることが予測できる（図６ｄ）。従って、ＧＡＳＣ１の脱メチル化活性の阻害は、新たな抗腫瘍治療様式を構成する可能性がある。
興味深いことに、抗増殖特性及び抗癌特性と関連する植物フラボノイドであるケルセチン（図１２ｂ）40-42は、ｉｎ ｖｉｔｒｏで効果的にＨ３Ｋ９ｍｅ３のＧＡＳＣ１媒介性脱メチル化を阻害できた（図１２ｃ）。ケルセチンを用いてｉｎ ｖｉｖｏでＫＹＳＥ−１５０細胞を一晩処理すると、Ｈ３Ｋ９トリメチル化が驚くほど増大し、このことは、免疫蛍光とウェスタンブロッティングに裏付けられている(図１３ｄ及びデータ非開示)。Ｈ３Ｋ９ｍｅ３の増大は、増殖速度の顕著な低下、細胞形態の変化、老化関連ヘテロクロマチン病巣(senescence associated heterochromatin foci：ＳＡＨＦ)の出現及びβ−ｇａｌ染色により特徴付けられる老化状態様の表現型も伴っていた(データ非公開)。興味深いことに、ケルセチン処理は、他のセルライン(低レベル及び中レベルのＧＡＳＣ１を発現する）では、同程度の影響を及ぼさないように思われた。従って、Ｕ２ＯＳ、ＷＩ３８及びＫＹＳＥ−４５０細胞は、同程度のＨ３Ｋ９ｍｅ３の増加、又は同様の老化状態様表現型及び増殖阻害を示さなかった。この結果により、ＪＭＪＤ２酵素の発現又は活性の増大とこれに続くＨ３Ｋ９ｍｅ３／ｍｅ２の減少により特徴付けられるいくつかの癌が、この化合物による増殖阻害作用に特に高い感受性を示す可能性が示唆される。ケルセチンの生物学的効果は、従来ではトポイソメラーゼＩの阻害43、タンパク質と脂質キナーゼシグナル経路の調節44及び活性酸素種の除去45によるものであると考えられてきた。本研究の知見に照らせば、ケルセチンによる抗癌効果は、少なくとも部分的に、そのＧＡＳＣ１及びＪＭＤＭ２サブファミリーの他のメンバーに対する阻害作用により説明できるという推測が試みられる。
以上をまとめると、複数の独立した証拠を用いることで、ＧＡＳＣ１が、ｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏの両方で、抑制性のヒストンのジメチル及びトリメチルＨ３Ｋ９マークを直接脱メチル化することが実証された。本知見により、ヒストンのトリメチル化が、可逆性の修飾であることが示された。この知見は、ヒトの疾患、特に癌について、更に深い意味合いを有する可能性がある。
材料と方法
脱メチル化アッセイ
バルクヒストン、オリゴヌクレオチド又は合成ヒストンペプチドを、精製したＨｉｓ-ＧＡＳＣ１と、脱メチル化バッファー(５０ｍＭのＴｒｉｓ(ｐＨ８.０)、５０ｍＭのＫＣｌ、１０ｍＭのＭｇＣｌ2、１ｍＭのα-ケトグルタレート、４０μＭのＦｅＳＯ4、２ｍＭのアスコルビン酸、０.０１％(ｗ／ｖ)のＢＳＡ及び５％(ｖ／ｖ)のグリセロール)中で３７℃で反応させた。典型的な反応では、６μｇのバルクヒストン又は２μｇの修飾ヒストンペプチドを２０μｇのＧＡＳＣ１と１００μｌの体積で３０分間反応させた。反応混合物を、特異的抗体を用いたウェスタンブロッティングか、又はホルムアルデヒド放出アッセイのいずれかにより分析した。
脱メチル化アッセイ
バルクヒストン、オリゴヌクレオチド又は合成ヒストンペプチドを、精製したＨｉｓ-ＧＡＳＣ１と、脱メチル化バッファー(５０ｍＭのＴｒｉｓ(ｐＨ８.０)、５０ｍＭのＫＣｌ、１０ｍＭのＭｇＣｌ2、１ｍＭのα-ケトグルタレート、４０μＭのＦｅＳＯ4、２ｍＭのアスコルビン酸、０.０１％(ｗ／ｖ)のＢＳＡ及び５％(ｖ／ｖ)のグリセロール)中で３７℃で反応させた。典型的な反応では、６μｇのバルクヒストン又は２μｇの修飾ヒストンペプチドを２０μｇのＧＡＳＣ１と１００μｌの体積で３０分間反応させた。反応混合物を、特異的抗体を用いたウェスタンブロッティングか、又はホルムアルデヒド放出アッセイのいずれかにより分析した。
ホルムアルデヒド放出アッセイ
ホルムアルデヒド放出アッセイは、本質的に記載４に沿って行った。全ての反応は、石英製キュベット内で、１反応系当たり２００μｌの総量で行った。簡潔に言うと、組換えＧＡＳＣ１(典型的には４０μｇ)を１５０μｌの脱メチル化バッファー(上記参照)中で、２ｍＭのＮＡＤ＋と０.２Ｕのホルムアルデヒドデヒドロゲナーゼ(ＦＤＨ)の存在下で、３７℃にて５分間インキュベートした。次いで、基質(ヒストンペプチド)を添加して反応を開始させた。３４０ｎｍの吸光度を、Ｇｅｎｅｓｙｓ １０ＵＶ Ｔｈｅｒｍｏｓｐｅｃｔｒｏｎｉｃ ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒを用いて０.５ｍｍの間隔を開けて、３７℃で測定した(全部で１５ｍｍ)。
ホルムアルデヒド放出アッセイは、本質的に記載４に沿って行った。全ての反応は、石英製キュベット内で、１反応系当たり２００μｌの総量で行った。簡潔に言うと、組換えＧＡＳＣ１(典型的には４０μｇ)を１５０μｌの脱メチル化バッファー(上記参照)中で、２ｍＭのＮＡＤ＋と０.２Ｕのホルムアルデヒドデヒドロゲナーゼ(ＦＤＨ)の存在下で、３７℃にて５分間インキュベートした。次いで、基質(ヒストンペプチド)を添加して反応を開始させた。３４０ｎｍの吸光度を、Ｇｅｎｅｓｙｓ １０ＵＶ Ｔｈｅｒｍｏｓｐｅｃｔｒｏｎｉｃ ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒを用いて０.５ｍｍの間隔を開けて、３７℃で測定した(全部で１５ｍｍ)。
質量分析用のＨ３Ｋ９ｍｅ３ペプチドのＧＡＳＣ１による脱メチル化
６μｇの組換えＧＡＳＣ１を、終量９０μｌのＦＤＨバッファー中で、３μｇのＨ３Ｋ９ｍｅ３ペプチドと３７℃で３０分間インキュベートした。尿素を終濃度４Ｍで添加し、混合物を２０℃で１５分間インキュベートした。同量の１％ＴＦＡを添加し、サンプルを、１００μｌのチップ中にパッキングされた逆相ミニＣ８カラム(カラム容積２０μｌ)にローディングした。１％ＴＦＡで洗浄した後、結合したペプチドを２０μｌ(３０％メタノール、２５％ギ酸)で溶離させた。溶離した材料の３分の１をＳＤＳ-ＰＡＧＥと、抗Ｈ３Ｋ９ｍｅ３及びその後に抗ビオチン抗体を用いたウェスタンブロッティングで分析した(図４ｃ)。残りの材料は、質量分析により分析した(図４ｄ)。
６μｇの組換えＧＡＳＣ１を、終量９０μｌのＦＤＨバッファー中で、３μｇのＨ３Ｋ９ｍｅ３ペプチドと３７℃で３０分間インキュベートした。尿素を終濃度４Ｍで添加し、混合物を２０℃で１５分間インキュベートした。同量の１％ＴＦＡを添加し、サンプルを、１００μｌのチップ中にパッキングされた逆相ミニＣ８カラム(カラム容積２０μｌ)にローディングした。１％ＴＦＡで洗浄した後、結合したペプチドを２０μｌ(３０％メタノール、２５％ギ酸)で溶離させた。溶離した材料の３分の１をＳＤＳ-ＰＡＧＥと、抗Ｈ３Ｋ９ｍｅ３及びその後に抗ビオチン抗体を用いたウェスタンブロッティングで分析した(図４ｃ)。残りの材料は、質量分析により分析した(図４ｄ)。
質量分析(ＭＳ)
溶離物の３分の１を、１％ＴＦＡ中で、Ａｇｉｌｅｎｔ １１００ Ｎａｎｏ ＨＰ１Ｃ(Palo Alto, CA)を用いて、スプレーエミッター(内径７５μｍ、開口８μｍ、長さ７０ ｍｍ；New Objectives、米国)内にパッキングされたＣ１８カラム(Reprosil-Pur C18-AQ ３μｍ； Dr. Maisch GmbH、アメルブッフ-エントリンゲン、独国)上に注いだ。ペプチドは、１０分間でバッファーＡ(５％アセトニトリル及び０.５％酢酸)からバッファーＢ(アセトニトリル及び０.５％酢酸)へ０％ないし２０％で変化する勾配を用いて、３００ ｎＬ／分で溶離した。スペクトルをＬＴＱ-ＦＴ質量分析器(Thermoelectron、ブレーメン、独国)に記録した。
溶離物の３分の１を、１％ＴＦＡ中で、Ａｇｉｌｅｎｔ １１００ Ｎａｎｏ ＨＰ１Ｃ(Palo Alto, CA)を用いて、スプレーエミッター(内径７５μｍ、開口８μｍ、長さ７０ ｍｍ；New Objectives、米国)内にパッキングされたＣ１８カラム(Reprosil-Pur C18-AQ ３μｍ； Dr. Maisch GmbH、アメルブッフ-エントリンゲン、独国)上に注いだ。ペプチドは、１０分間でバッファーＡ(５％アセトニトリル及び０.５％酢酸)からバッファーＢ(アセトニトリル及び０.５％酢酸)へ０％ないし２０％で変化する勾配を用いて、３００ ｎＬ／分で溶離した。スペクトルをＬＴＱ-ＦＴ質量分析器(Thermoelectron、ブレーメン、独国)に記録した。
補足的方法
材料
ヒストンＨ３のＮ末端尾部(１-４０)を模倣する４３アミノ酸長の合成ペプチド：
このペプチドは、リジンとTtdsスペーサーを介してビオチンに連結された結合用のC末端部のチロシン及びシステインを用いて合成した。この実験で用いたペプチドは、非修飾型であるか、リジン27がトリメチル化されているか、又はリジンK9がモノメチル化、ジメチル化若しくはトリメチル化されており、Jerini, GMBH(独国)から購入した。ホルムアルデヒドデヒドロゲナーゼ(ＦＤＨ、Ｆ１８７９)及びニコチンアミン及びバルクヒストン(H9250)はSigma社から購入した。本試験で用いた抗体は、以下の通り：抗トリメチル化Ｈ３-Ｋ９(Upstate 07-523)、抗ジメチル化Ｈ３-Ｋ９(Upstate 07-212)、抗モノメチル化Ｈ３-Ｋ９(Abcam Ab9045-50)、抗トリメチルＨ３-Ｋ２７(Upstate 07-449)、抗トリメチルＨ４-Ｋ２０(Upstate 07-463)、抗トリメチル化Ｈ３-Ｋ４(Abcam ab8580-50)、抗ジメチル化Ｈ３-Ｋ４(Upstate 07-030)、抗ヒストンＨ３(Abcam Ab1791-100)、抗ＨＰ１α(Upstate 05-689)、抗ＨＰ１γ(upstate 05-690)、抗ビオチン-ＨＲＰ(Sigma A4541)、抗-Ｈｉｓ(Upstate 05-531)及び抗ＨＡ(CRP Inc. AFC-101P)。
材料
ヒストンＨ３のＮ末端尾部(１-４０)を模倣する４３アミノ酸長の合成ペプチド：
セルライン及び組織培養
ヒト食道扁平上皮癌セルラインKYSE-70及び150は、German Collection of Microorganisms and Cell Cultures(ブラオンシュヴァイヒ、独国)から入手した。hTert を発現する2倍体のヒト線維芽細胞(TIG-3)とマウスのエコトロピックレトロウィルスレセプターEcoRを発現するU2OS細胞を実験に用いた。293 TRex-flip-in細胞を基本的に製造元(Invitrｏｇｅｎ)による記載に従って用いて、テトラサイクリン誘導性のアミノ末端にｍｙｃタグが付いたＧＡＳＣ１を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞を作製した。ＫＹＳＥ細胞は、４９％のＲＰＭＩ １６４０、２％のウシ胎児血清(ＦＣＳ)が補充された４９％のＨａｍ'ｓ Ｆ１２中に５％ＣＯ2の下で維持した。他の全ての細胞は、１０％のウシ胎児血清(ＦＣＳ)が補充されたＤｕｌｂｅｃｃｏ'ｓ ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ'ｓ ｍｅｄｉｕｍ(ＤＭＥＭ)中に５％ＣＯ2の下で３７℃にて維持した。
ヒト食道扁平上皮癌セルラインKYSE-70及び150は、German Collection of Microorganisms and Cell Cultures(ブラオンシュヴァイヒ、独国)から入手した。hTert を発現する2倍体のヒト線維芽細胞(TIG-3)とマウスのエコトロピックレトロウィルスレセプターEcoRを発現するU2OS細胞を実験に用いた。293 TRex-flip-in細胞を基本的に製造元(Invitrｏｇｅｎ)による記載に従って用いて、テトラサイクリン誘導性のアミノ末端にｍｙｃタグが付いたＧＡＳＣ１を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞を作製した。ＫＹＳＥ細胞は、４９％のＲＰＭＩ １６４０、２％のウシ胎児血清(ＦＣＳ)が補充された４９％のＨａｍ'ｓ Ｆ１２中に５％ＣＯ2の下で維持した。他の全ての細胞は、１０％のウシ胎児血清(ＦＣＳ)が補充されたＤｕｌｂｅｃｃｏ'ｓ ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ'ｓ ｍｅｄｉｕｍ(ＤＭＥＭ)中に５％ＣＯ2の下で３７℃にて維持した。
HeLa核タンパク質のヒストンペプチドプルダウン
ＨｅＬａ細胞の核抽出物とリジン９がトリメチル化されたヒストンＨ３ペプチド
を用いてプルダウンアッセイを行った。核は、ＨｅＬａ細胞から調製し、溶解バッファー(５０ｍＭのＴｒｉｓ(ｐＨ７.２)、３００ｍＭのＮａＣｌ、０.５％のＩＧＥＰＡＬ ＣＡ-６３０、１ｍＭのＥＤＴＡ(ｐＨ８.０)、プロテアーゼ阻害剤を含む１ｍＭのＰＭＳＦ)で溶解させた。溶解物は、遊離ストレブトアビジンビーズを用いて事前除去し(図Ｓ１、事前除去１)、次いで、非修飾型Ｈ３ヒストンに結合したストレプトアビジンビーズで事前除去した(図Ｓ１、事前除去２)。次いで、事前除去した溶解物を、事前にストレプトアビジンビーズと結合させておいた、Ｋ９がトリメチル化されたＨ３ヒストンペプチド(Ｈ３Ｋ９ｍｅ３)とインキュベートした。ビーズを十分に洗浄し、続いて、2x LSBバッファー(100ｍMのTris-HCl(ｐＨ6.8)、200ｍMのDTT、4％のSDS、20％のグリセロール及び0.2％のブロモフェノールブルー)で結合したタンパク質を樹脂から溶離した(図S1、Ｈ３Ｋ９ｍｅ３)。タンパク質をSDS-PAGEで分離し、銀染色により可視化した。プルダウンされたＨ３Ｋ９ｍｅ３を豊富に含むタンパク質バンドを切り出し、ゲルのままトリプシンで処理し、Wilm et al.(Wilmｍ. (1996) Nature 379, 466-469)の記載に従って、ナノエレクトロスプレータンデム型質量分析器で分析した。
ＨｅＬａ細胞の核抽出物とリジン９がトリメチル化されたヒストンＨ３ペプチド
免疫蛍光
共焦点免疫染色法を、基本的にSorensen, CS. et al., Nat. Cell. Biol. 7, 195-201 (2005)の記載に従って行った。
共焦点免疫染色法を、基本的にSorensen, CS. et al., Nat. Cell. Biol. 7, 195-201 (2005)の記載に従って行った。
細胞溶解物の調製
細胞の全溶解物は、同数の細胞を尿素バッファー(１％のＳＤＳ、９Ｍの尿素、２５ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ６.８)、１ｍＭのＥＤＴＡ、０.７ｍのβ-メルカプトエタノール)に溶解して作製し、５分間沸騰させ、そして超音波処理した。クロマチンの分画化のため、２００μｌの事前抽出用バッファー(０.５％のＩＧＥＰＡＬ-６３０、５ＯｍＭのＮａＣｌ、３ｍＭのＭｇＣｌ2及び３００ｍＭのスクロースを含有する２ＯｍＭのＨｅｐｅｓ-ＫＯＨ(ｐＨ７.２))中の同数の細胞を氷上で３０分間インキュベートした。１００μｌを２ｘＬＳＢバッファー(１００ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ６.８)、２００ｍＭのＤＴＴ、４％のＳＤＳ、２０％のグリセロール及び０.２％のブロモフェノールブルー)と混合し、沸騰させ、超音波処理して、全溶解物として使用した。残りの１００μｌは、１３００ｘｇ、４℃で１０分間スピンダウンさせ、１ｍｌの事前抽出用バッファーで洗浄し、１００μｌの２ｘＬＳＢバッファーに再懸濁し、沸騰させ、超音波処理し、クロマチン分画として使用した。
細胞の全溶解物は、同数の細胞を尿素バッファー(１％のＳＤＳ、９Ｍの尿素、２５ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ６.８)、１ｍＭのＥＤＴＡ、０.７ｍのβ-メルカプトエタノール)に溶解して作製し、５分間沸騰させ、そして超音波処理した。クロマチンの分画化のため、２００μｌの事前抽出用バッファー(０.５％のＩＧＥＰＡＬ-６３０、５ＯｍＭのＮａＣｌ、３ｍＭのＭｇＣｌ2及び３００ｍＭのスクロースを含有する２ＯｍＭのＨｅｐｅｓ-ＫＯＨ(ｐＨ７.２))中の同数の細胞を氷上で３０分間インキュベートした。１００μｌを２ｘＬＳＢバッファー(１００ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ６.８)、２００ｍＭのＤＴＴ、４％のＳＤＳ、２０％のグリセロール及び０.２％のブロモフェノールブルー)と混合し、沸騰させ、超音波処理して、全溶解物として使用した。残りの１００μｌは、１３００ｘｇ、４℃で１０分間スピンダウンさせ、１ｍｌの事前抽出用バッファーで洗浄し、１００μｌの２ｘＬＳＢバッファーに再懸濁し、沸騰させ、超音波処理し、クロマチン分画として使用した。
ＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２ａ／ｂに対するｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡ
ＧＡＳＣ１並びにそのホモログＪＭＪＤ２ａ及びＪＭＪＤ２ｂに対する低分子干渉ＲＮＡ(ｓｉＲＮＡ)オリゴヌクレオチドは、Dharmacon Research, Inc.によって合成された。６ウェルプレート内で、Ｏｌｉｇｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ試薬(Invitrogen)を製造元のプロトコルに従って用いて、細胞(１ｘ１０5／ウェル)をｓｉＲＮＡオリゴ(０.３μｇ／ウェル)でトランスフェクトした。ｓｉＲＮＡは、例えば、ｓｉＲＮＡ ｒｅｔｒｉｅｖｅｒ；(http://katahdin.cshl.org:9331/homepage/siRNA/RNAi.cgi?type=siRNA)を用いる等、当該技術分野で知られる方法により設計できる。
ＧＡＳＣ１並びにそのホモログＪＭＪＤ２ａ及びＪＭＪＤ２ｂに対する低分子干渉ＲＮＡ(ｓｉＲＮＡ)オリゴヌクレオチドは、Dharmacon Research, Inc.によって合成された。６ウェルプレート内で、Ｏｌｉｇｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ試薬(Invitrogen)を製造元のプロトコルに従って用いて、細胞(１ｘ１０5／ウェル)をｓｉＲＮＡオリゴ(０.３μｇ／ウェル)でトランスフェクトした。ｓｉＲＮＡは、例えば、ｓｉＲＮＡ ｒｅｔｒｉｅｖｅｒ；(http://katahdin.cshl.org:9331/homepage/siRNA/RNAi.cgi?type=siRNA)を用いる等、当該技術分野で知られる方法により設計できる。
ｓｈＲＮＡコンストラクト
短鎖ヘアピンRNAコンストラクトは、Paddison et al.(2005)(Paddison PJ, Clearyｍ, Silva JM, Chang K, Sheth N, Sachidanandam R & Hannon GJ. Cloning of short hairpin RNAs for gene knockdown inｍammalian cells Natureｍethods pp163-167)の記載に従って、ＭＳＣＶ／ＬＴＲｍｉＲ３０-ＰＩＧ(ＬＭＰ)ベクター(Dickens NG et al(2005)"Probing tumor phenotypes using stable and regulated syntheticｍicroRNA precursors" Nature Genetics Vol 37, No 11 1289-1295.)内に作製した。
短鎖ヘアピンRNAコンストラクトは、Paddison et al.(2005)(Paddison PJ, Clearyｍ, Silva JM, Chang K, Sheth N, Sachidanandam R & Hannon GJ. Cloning of short hairpin RNAs for gene knockdown inｍammalian cells Natureｍethods pp163-167)の記載に従って、ＭＳＣＶ／ＬＴＲｍｉＲ３０-ＰＩＧ(ＬＭＰ)ベクター(Dickens NG et al(2005)"Probing tumor phenotypes using stable and regulated syntheticｍicroRNA precursors" Nature Genetics Vol 37, No 11 1289-1295.)内に作製した。
「ｓｈＲＮＡ ｒｅｔｒｉｅｖｅｒ」(http://katahdin.cshl.org:9331/homepage/siRNA/RNAi.cgi?type=shRNA)を用いて３種類のオリゴヌクレオチドを設計した。以下のオリゴヌクレオチド：
を鋳型として用いて１５０ ｂｐのＰＣＲ産物を増幅させ、ＸｈｏＩ及びＥｃｏＲＩで処理し、そして制限酵素処理したＬＭＰベクター内にライゲーションした。このｓｈＲＮＡコンストラクトは、上記の配列で下線が引かれたＧＡＳＣ１コーディング配列の２１１７番目の位置の２２ ｂｐの配列を標的とする。このｓｈＲＮＡｉコンストラクトが、ＧＡＳＣ１のｍＲＮＡをノックダウンする効率は、リアルタイム定量的ＲＴ-ＰＣＲで評価したところ、約８０％であると評価された。
リアルタイム定量的ＲＴ-ＰＣＲ
細胞を、表示するｓｈＲＮＡコンストラクトでトランスフェクトし、簡単なピューロマイシンセレクション(２μｇ／ｍｌ)に付した。Ｑｕｉａｇｅｎ ＲＮＡｅａｓｙミニキットを製造元の使用説明書に従って用いて全ＲＮＡをトランスフェクトした細胞から作製した。Ｔａｑｍａｎ逆転写キットとポリｄＴプライマーを製造元の使用説明書に従って用いてｃＤＮＡを作製した。このｃＤＮＡを鋳型として、ＧＡＳＣ１特異的プライマーと共に、Ａｐｐｌｉｅｄ ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ７７００でのリアルタイム定量的ＰＣＲ反応に用いた。この反応物は、Ａｐｐｌｉｅｄ ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製の２ｘＳＹＢＲ ｇｒｅｅｎ反応ミックスを用いて調製した。
細胞を、表示するｓｈＲＮＡコンストラクトでトランスフェクトし、簡単なピューロマイシンセレクション(２μｇ／ｍｌ)に付した。Ｑｕｉａｇｅｎ ＲＮＡｅａｓｙミニキットを製造元の使用説明書に従って用いて全ＲＮＡをトランスフェクトした細胞から作製した。Ｔａｑｍａｎ逆転写キットとポリｄＴプライマーを製造元の使用説明書に従って用いてｃＤＮＡを作製した。このｃＤＮＡを鋳型として、ＧＡＳＣ１特異的プライマーと共に、Ａｐｐｌｉｅｄ ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ７７００でのリアルタイム定量的ＰＣＲ反応に用いた。この反応物は、Ａｐｐｌｉｅｄ ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製の２ｘＳＹＢＲ ｇｒｅｅｎ反応ミックスを用いて調製した。
ＢｒｄＵの取り込み
ｓｉＲＮＡのトランスフェクションから３０時間後に、細胞を４ウェルチャンバースライドに分け、ＢｒｄＵを含む培養培地で１５-３０分間インキュベートした。
ｓｉＲＮＡのトランスフェクションから３０時間後に、細胞を４ウェルチャンバースライドに分け、ＢｒｄＵを含む培養培地で１５-３０分間インキュベートした。
ヒトＧＡＳＣ１のｃＤＮＡのクローニング
ヒトＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２Ａの推定上のオープンリーディングフレームをＨｅＬａのｃＤＮＡとヒト胎児脳のｃＤＮＡライブラリー(Invitrogen、カールスバッド、カリフォルニア州)のcＤＮＡからＰＣＲ増幅した。プライマー配列は、請求により入手可能である。ＰＣＲ産物をゲル精製し、ｐＣＲ８／ＧＷ(Invitrogen)にクローニングし、ＤＮＡしーケンシングにより確認した。これらのＧａｔｅｗａｙ適合性の導入クローンを用いて、ＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２ＡをｐＣＭＶ-ＨＡ、ｐＣＭＶ-ｍｙｃ及びｐＢａｂｅｐｕｒｏに導入した。標準的な変異導入方法により、ＧＡＳＣ１の保存された鉄結合ドメイン(ＨＴＥ)の、１９０-１９２番目のアミノ酸が、それぞれヒスチジン、スレオニン及びグルタミン酸からグリシン、スレオニン及びアラニンに変化した２重変異を作製した。
ヒトＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２Ａの推定上のオープンリーディングフレームをＨｅＬａのｃＤＮＡとヒト胎児脳のｃＤＮＡライブラリー(Invitrogen、カールスバッド、カリフォルニア州)のcＤＮＡからＰＣＲ増幅した。プライマー配列は、請求により入手可能である。ＰＣＲ産物をゲル精製し、ｐＣＲ８／ＧＷ(Invitrogen)にクローニングし、ＤＮＡしーケンシングにより確認した。これらのＧａｔｅｗａｙ適合性の導入クローンを用いて、ＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２ＡをｐＣＭＶ-ＨＡ、ｐＣＭＶ-ｍｙｃ及びｐＢａｂｅｐｕｒｏに導入した。標準的な変異導入方法により、ＧＡＳＣ１の保存された鉄結合ドメイン(ＨＴＥ)の、１９０-１９２番目のアミノ酸が、それぞれヒスチジン、スレオニン及びグルタミン酸からグリシン、スレオニン及びアラニンに変化した２重変異を作製した。
組換えタンパク質
Ｇａｔｅｗａｙを用いてＧＡＳＣ１のｃＤＮＡ をｐＣＲ８／ＧＷ からｐＡｃＨＬＴ-Ａ(Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ)のＧａｔｅｗａｙ修飾型に導入することにより、アミノ末端にヘキサヒスチジンタグが付いた完全長のヒトＧＡＳＣ１バキュロウィルス導入ベクターを作製した。組換えバキュロウィルスは、基本的に、先の文献に記載されたように、ＧＡＳＣ１遺伝子を含むバキュロウィルス導入ベクターと、Ｂｓｕ３６ＩでリニアライズしたＢａｋｐａｋ６バキュロウィルスＤＮＡの共トランスフェクションにより作製した。ヒスチジンタグが付いたＧＡＳＣ１とＪＭＪＤ２Ａを発現させ、基本的に先の文献(Christensen et al. Nucleic Acids Research 33, 5458-5470 (2005))に記載されたように、コバルトアフィニティークロマトグラフィーで精製した。溶離した分画を、ＳＤＳ-ＰＡＧＥで分析し、選択した分画をサイズ排除クロマトグラフィー(ＳＥＣ)により更に精製した。簡潔に述べると、ＳＥＣは、５０ｍＭ・ＮａＣｌを含有する２５ｍＭ・ＨＥＰＥＳ-ＫＯＨ(ｐＨ７.７)で平衡化させたＳｕｐｅｒｏｓｅ １２, １０／３００カラム(Ｐｈａｒｍａｃｉａ-Ａｍｅｒｓｈａｍ)上で行い、同一のバッファーを用いて、０.３ｍｌ／分の流速で溶離した。溶離した物質を、０.５ｍｌの分画で回収し、液体窒素で瞬間冷凍し、-８０℃で保存した。全ての工程は、完全にＥＤＴＡ不含のプロテアーゼ阻害剤(Boehringermannheim、独国)の存在下で、氷上又は４℃で行った。
Ｇａｔｅｗａｙを用いてＧＡＳＣ１のｃＤＮＡ をｐＣＲ８／ＧＷ からｐＡｃＨＬＴ-Ａ(Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ)のＧａｔｅｗａｙ修飾型に導入することにより、アミノ末端にヘキサヒスチジンタグが付いた完全長のヒトＧＡＳＣ１バキュロウィルス導入ベクターを作製した。組換えバキュロウィルスは、基本的に、先の文献に記載されたように、ＧＡＳＣ１遺伝子を含むバキュロウィルス導入ベクターと、Ｂｓｕ３６ＩでリニアライズしたＢａｋｐａｋ６バキュロウィルスＤＮＡの共トランスフェクションにより作製した。ヒスチジンタグが付いたＧＡＳＣ１とＪＭＪＤ２Ａを発現させ、基本的に先の文献(Christensen et al. Nucleic Acids Research 33, 5458-5470 (2005))に記載されたように、コバルトアフィニティークロマトグラフィーで精製した。溶離した分画を、ＳＤＳ-ＰＡＧＥで分析し、選択した分画をサイズ排除クロマトグラフィー(ＳＥＣ)により更に精製した。簡潔に述べると、ＳＥＣは、５０ｍＭ・ＮａＣｌを含有する２５ｍＭ・ＨＥＰＥＳ-ＫＯＨ(ｐＨ７.７)で平衡化させたＳｕｐｅｒｏｓｅ １２, １０／３００カラム(Ｐｈａｒｍａｃｉａ-Ａｍｅｒｓｈａｍ)上で行い、同一のバッファーを用いて、０.３ｍｌ／分の流速で溶離した。溶離した物質を、０.５ｍｌの分画で回収し、液体窒素で瞬間冷凍し、-８０℃で保存した。全ての工程は、完全にＥＤＴＡ不含のプロテアーゼ阻害剤(Boehringermannheim、独国)の存在下で、氷上又は４℃で行った。
レトロウィルスの形質導入
ＧＡＳＣ１とその変異体Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａを発現する組換えレトロウィルスを作製するため、ＧＡＳＣ１のオープンリーディングフレームを、Ｇａｔｅｗａｙによる組換えによりｐＢａｂｅｐｕｒｏに導入し、ｐＢａｂｅｐｕｒｏ-ＨＡ-ＧＡＳＣ１とｐＢａｂｅｐｕｒｏ-ＨＡ-Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａを作製した。Ｐｈｏｅｎｉｘ-Ｅｃｏ ２９３細胞パッキング用セルラインのトランスフェクションから２４-４８時間後に、高い力価を有するウィルス粒子が得られた。トランスフェクションは、リン酸カルシウム法により行った。ＴＩＧ３-ｈＴｅｒｔ-ＥｃｏＲ細胞又はＵ２ＯＳ-ＥｃｏＲ細胞の形質導入は、２４時間以内に、ウィルスを含むパッケージングセルラインからの上清を細胞ディッシュに４回添加することにより達成した。形質導入された細胞は、ピューロマイシンの存在下で２-５日間かけて選択した(１μｇ／μｌ)。
ＧＡＳＣ１とその変異体Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａを発現する組換えレトロウィルスを作製するため、ＧＡＳＣ１のオープンリーディングフレームを、Ｇａｔｅｗａｙによる組換えによりｐＢａｂｅｐｕｒｏに導入し、ｐＢａｂｅｐｕｒｏ-ＨＡ-ＧＡＳＣ１とｐＢａｂｅｐｕｒｏ-ＨＡ-Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａを作製した。Ｐｈｏｅｎｉｘ-Ｅｃｏ ２９３細胞パッキング用セルラインのトランスフェクションから２４-４８時間後に、高い力価を有するウィルス粒子が得られた。トランスフェクションは、リン酸カルシウム法により行った。ＴＩＧ３-ｈＴｅｒｔ-ＥｃｏＲ細胞又はＵ２ＯＳ-ＥｃｏＲ細胞の形質導入は、２４時間以内に、ウィルスを含むパッケージングセルラインからの上清を細胞ディッシュに４回添加することにより達成した。形質導入された細胞は、ピューロマイシンの存在下で２-５日間かけて選択した(１μｇ／μｌ)。
分子モデリング
α-ケトグルタレート、ＣＡＤペプチド及び鉄と複合体形成したＦＩＨの構造は、１Ｈ２Ｋのアクセス番号でＰｒｏｔｅｉｎ Ｄａｔａ Ｂａｎｋ(PDB、Brookhaven National Library、アプトン、ニューヨーク州、米国)から入手可能である。ホモロジーモジュールＩＮＳＩＧＨＴ ＩＩ (２００５) (Ａｃｃｅｌｒｙｓ、サンディエゴ)を用いて、ＧＡＳＣ１２２-349を鋳型のFIHと共にホモロジーモデリングした。ヒストン尾部(ARTKQTARKSTG)を鋳型のCADペプチドと共にモデリングした。GRID(Version 22、Molecular Discovery Ltd.、オックスフォード、英国)(Goodford, 1985)というプログラムを用いて、ＧＡＳＣ１分子の疎水性表面の外形を計算した。続いて、ＡＵＴＯＤＯＣＫ (Ver. 3.0.5、Scripps Research Institute andｍolecular Graphics Laboratory)を用いて、上記のヒストンペプチドを、ＧＡＳＣ１の疎水性表面の外形上にドッキングさせた。最後に、前記複合体の構造モデルを、Pymol(http://pymol.sourceforge.net/)で導き出した。
α-ケトグルタレート、ＣＡＤペプチド及び鉄と複合体形成したＦＩＨの構造は、１Ｈ２Ｋのアクセス番号でＰｒｏｔｅｉｎ Ｄａｔａ Ｂａｎｋ(PDB、Brookhaven National Library、アプトン、ニューヨーク州、米国)から入手可能である。ホモロジーモジュールＩＮＳＩＧＨＴ ＩＩ (２００５) (Ａｃｃｅｌｒｙｓ、サンディエゴ)を用いて、ＧＡＳＣ１２２-349を鋳型のFIHと共にホモロジーモデリングした。ヒストン尾部(ARTKQTARKSTG)を鋳型のCADペプチドと共にモデリングした。GRID(Version 22、Molecular Discovery Ltd.、オックスフォード、英国)(Goodford, 1985)というプログラムを用いて、ＧＡＳＣ１分子の疎水性表面の外形を計算した。続いて、ＡＵＴＯＤＯＣＫ (Ver. 3.0.5、Scripps Research Institute andｍolecular Graphics Laboratory)を用いて、上記のヒストンペプチドを、ＧＡＳＣ１の疎水性表面の外形上にドッキングさせた。最後に、前記複合体の構造モデルを、Pymol(http://pymol.sourceforge.net/)で導き出した。
補足的方法
材料
ヒストンＨ３のＮ末端尾部(１-４０)を模倣する４３アミノ酸長の合成ペプチド：
このペプチドは、リジンとＴｔｄｓスペーサーを介してビオチンに連結された結合用のＣ末端部のチロシン及びシステインを用いて合成した。この実験で用いたペプチドは、非修飾型であるか、リジン２７がトリメチル化されているか、又はリジンＫ９がモノメチル化、ジメチル化若しくはトリメチル化されており、Ｊｅｒｉｎｉ, ＧＭＢＨ(独国)から購入した。ホルムアルデヒドデヒドロゲナーゼ(ＦＤＨ、Ｆ１８７９)及びニコチンアミン及びバルクヒストン(Ｈ９２５０)はＳｉｇｍａ社から購入した。本試験で用いた抗体は、以下の通り：抗トリメチル化Ｈ３-Ｋ９(Upstate 07-523)、抗ジメチル化Ｈ３-Ｋ９(Upstate 07-212)、抗モノメチル化Ｈ３-Ｋ９(Abcam Ab9045-50)、抗トリメチルＨ３-Ｋ２７(Upstate 07-449)、抗トリメチルＨ４-Ｋ２０(Upstate 07-463)、抗トリメチル化Ｈ３-Ｋ４(Abcam ab8580-50)、抗ジメチル化Ｈ３-Ｋ４(Upstate 07-030)、抗ヒストンＨ３(Abcam Ab1791-100)、抗ＨＰ１α(Upstate 05-689)、抗ＨＰ１γ(upstate 05-690)、抗ビオチン-ＨＲＰ(Sigma A4541)、抗-Ｈｉｓ(Upstate 05-531)及び抗ＨＡ(CRP Inc. AFC-101P)。
材料
ヒストンＨ３のＮ末端尾部(１-４０)を模倣する４３アミノ酸長の合成ペプチド：
セルライン及び組織培養
ヒト食道扁平上皮癌セルラインKYSE-70及び150は、German Collection ofｍicroorganisms and Cell Cultures(ブラオンシュヴァイヒ、独国)から入手した。ｈＴｅｒｔ を発現する２倍体のヒト線維芽細胞(ＴＩＧ-３)とマウスのエコトロピックレトロウィルスレセプターＥｃｏＲを発現するＵ２ＯＳ細胞を実験に用いた。テトラサイクリン誘導性のアミノ末端にｍｙｃタグが付いたＧＡＳＣ１を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞を２９３ ＴＲｅｘ-ｆｌｉｐ-ｉｎ細胞を基本的に製造元(Invitrogen)による記載に従って用いて作製した。ＫＹＳＥ細胞は、４９％のＲＰＭＩ１６４０、２％のウシ胎児血清(ＦＣＳ)が補充された４９％のＨａｍ'ｓ Ｆ１２中に５％ＣＯ2の下で維持した。他の全ての細胞は、１０％のウシ胎児血清(ＦＣＳ)が補充されたＤｕｌｂｅｃｃｏ改変イーグル培地(ＤＭＥＭ)中に５％ＣＯ2の下で３７℃にて維持した。
ヒト食道扁平上皮癌セルラインKYSE-70及び150は、German Collection ofｍicroorganisms and Cell Cultures(ブラオンシュヴァイヒ、独国)から入手した。ｈＴｅｒｔ を発現する２倍体のヒト線維芽細胞(ＴＩＧ-３)とマウスのエコトロピックレトロウィルスレセプターＥｃｏＲを発現するＵ２ＯＳ細胞を実験に用いた。テトラサイクリン誘導性のアミノ末端にｍｙｃタグが付いたＧＡＳＣ１を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞を２９３ ＴＲｅｘ-ｆｌｉｐ-ｉｎ細胞を基本的に製造元(Invitrogen)による記載に従って用いて作製した。ＫＹＳＥ細胞は、４９％のＲＰＭＩ１６４０、２％のウシ胎児血清(ＦＣＳ)が補充された４９％のＨａｍ'ｓ Ｆ１２中に５％ＣＯ2の下で維持した。他の全ての細胞は、１０％のウシ胎児血清(ＦＣＳ)が補充されたＤｕｌｂｅｃｃｏ改変イーグル培地(ＤＭＥＭ)中に５％ＣＯ2の下で３７℃にて維持した。
ＨｅＬａ核タンパク質のヒストンペプチドプルダウン
ＨｅＬａ細胞の核抽出物とリジン９がトリメチル化されたヒストンＨ３ペプチド：
を用いてプルダウンアッセイを行った。核は、ＨｅＬａ細胞から調製し、溶解バッファー(５０ｍＭのＴｒｉｓ(ｐＨ７.２)、３００ｍＭのＮａＣｌ、０.５％のＩＧＥＰＡＬ ＣＡ-６３０、１ｍＭのＥＤＴＡ(ｐＨ８.０)、プロテアーゼ阻害剤を含む１ｍＭのＰＭＳＦ)で溶解させた。溶解物は、遊離ストレブトアビジンビーズを用いて事前除去し(図Ｓ１、事前除去１)、次いで、非修飾型Ｈ３ヒストンに結合したストレプトアビジンビーズで事前除去した(図Ｓ１、事前除去２)。次いで、事前除去した溶解物を、事前にストレプトアビジンビーズと結合させておいた、Ｋ９がトリメチル化されたＨ３ヒストンペプチド(Ｈ３Ｋ９ｍｅ３)とインキュベートした。ビーズを十分に洗浄し、続いて、２ｘ ＬＳＢバッファー(１００ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ６.８)、２００ｍＭのＤＴＴ、４％のＳＤＳ、２０％のグリセロール及び０.２％のブロモフェノールブルー)で結合したタンパク質を樹脂から溶離した(図Ｓ１、Ｈ３Ｋ９ｍｅ３)。タンパク質をＳＤＳ-ＰＡＧＥで分離し、銀染色により可視化した。プルダウンされたＨ３Ｋ９ｍｅ３を豊富に含むタンパク質バンドを切り出し、ゲルのままトリプシンで処理し、Wilm et al.(Wilmｍ. (1996) Nature 379, 466-469)の記載に従って、ナノエレクトロスプレータンデム型質量分析器で分析した。
ＨｅＬａ細胞の核抽出物とリジン９がトリメチル化されたヒストンＨ３ペプチド：
免疫蛍光
共焦点免疫染色法を、基本的にSorensen, CS. et al., Nat. Cell. Biol. 7, 195-201 (2005)の記載に従って行った。
共焦点免疫染色法を、基本的にSorensen, CS. et al., Nat. Cell. Biol. 7, 195-201 (2005)の記載に従って行った。
細胞溶解物の調製
細胞の全溶解物は、同数の細胞を尿素バッファー(１％のＳＤＳ、９Ｍの尿素、２５ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ６.８)、１ｍＭのＥＤＴＡ、０.７ｍのβ-メルカプトエタノール)に溶解して作製し、５分間沸騰させ、そして超音波処理した。クロマチンの分画化のため、２００μｌの事前抽出用バッファー(０.５％のＩＧＥＰＡＬ-６３０、５ＯｍＭのＮａＣｌ、３ｍＭのＭｇＣｌ2及び３００ｍＭのスクロースを含有する２ＯｍＭのＨｅｐｅｓ-ＫＯＨ(ｐＨ７.２))中の同数の細胞を氷上で３０分間インキュベートした。１００μｌを２ｘＬＳＢバッファー(１００ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ６.８)、２００ｍＭのＤＴＴ、４％のＳＤＳ、２０％のグリセロール及び０.２％のブロモフェノールブルー)と混合し、沸騰させ、超音波処理して、全溶解物として使用した。残りの１００μｌは、１３００×ｇ、４℃で１０分間スピンダウンさせ、１ｍｌの事前抽出用バッファーで洗浄し、１００μｌの２ｘＬＳＢバッファーに再懸濁し、沸騰させ、超音波処理し、クロマチン分画として使用した。
細胞の全溶解物は、同数の細胞を尿素バッファー(１％のＳＤＳ、９Ｍの尿素、２５ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ６.８)、１ｍＭのＥＤＴＡ、０.７ｍのβ-メルカプトエタノール)に溶解して作製し、５分間沸騰させ、そして超音波処理した。クロマチンの分画化のため、２００μｌの事前抽出用バッファー(０.５％のＩＧＥＰＡＬ-６３０、５ＯｍＭのＮａＣｌ、３ｍＭのＭｇＣｌ2及び３００ｍＭのスクロースを含有する２ＯｍＭのＨｅｐｅｓ-ＫＯＨ(ｐＨ７.２))中の同数の細胞を氷上で３０分間インキュベートした。１００μｌを２ｘＬＳＢバッファー(１００ｍＭのＴｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ６.８)、２００ｍＭのＤＴＴ、４％のＳＤＳ、２０％のグリセロール及び０.２％のブロモフェノールブルー)と混合し、沸騰させ、超音波処理して、全溶解物として使用した。残りの１００μｌは、１３００×ｇ、４℃で１０分間スピンダウンさせ、１ｍｌの事前抽出用バッファーで洗浄し、１００μｌの２ｘＬＳＢバッファーに再懸濁し、沸騰させ、超音波処理し、クロマチン分画として使用した。
ＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２ａ／ｂに対するｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡ
ＧＡＳＣ１並びにそのホモログＪＭＪＤ２a及びＪＭＪＤ２bに対する低分子干渉RNA(siRNA)オリゴヌクレオチドは、Dharmacon Research, Inc.によって合成された。6ウェルプレート内で、Oligofectamine試薬(Invitrogen)を製造元のプロトコルに従って用いて、細胞(1x105/ウェル)をsiRNAオリゴ(0.3μg/ウェル)でトランスフェクトした。siRNAは、例えば、siRNA retriever; (http://katahdin.cshl.org:9331/homepage/siRNA/RNAi.cgi?type=siRNA)を用いる等、当該技術分野で知られる方法により設計できる。
ＧＡＳＣ１並びにそのホモログＪＭＪＤ２a及びＪＭＪＤ２bに対する低分子干渉RNA(siRNA)オリゴヌクレオチドは、Dharmacon Research, Inc.によって合成された。6ウェルプレート内で、Oligofectamine試薬(Invitrogen)を製造元のプロトコルに従って用いて、細胞(1x105/ウェル)をsiRNAオリゴ(0.3μg/ウェル)でトランスフェクトした。siRNAは、例えば、siRNA retriever; (http://katahdin.cshl.org:9331/homepage/siRNA/RNAi.cgi?type=siRNA)を用いる等、当該技術分野で知られる方法により設計できる。
ｓｈＲＮＡコンストラクト
短鎖ヘアピンRNAコンストラクトは、Paddison et al.(2005)(Paddison PJ, Clearyｍ, Silva JM, Chang K, Sheth N, Sachidanandam R & Hannon GJ. Cloning of short hairpin RNAs for gene knockdown inｍammalian cells Natureｍethods pp163-167)の記載に従って、MSCV/LTRmiR30-PIG (LMP)ベクター(Dickens NG et al(2005)"Probing tumor phenotypes using stable and regulated syntheticｍicroRNA precursors" Nature Genetics Vol 37, No 11 1289-1295.)内に作製した。
短鎖ヘアピンRNAコンストラクトは、Paddison et al.(2005)(Paddison PJ, Clearyｍ, Silva JM, Chang K, Sheth N, Sachidanandam R & Hannon GJ. Cloning of short hairpin RNAs for gene knockdown inｍammalian cells Natureｍethods pp163-167)の記載に従って、MSCV/LTRmiR30-PIG (LMP)ベクター(Dickens NG et al(2005)"Probing tumor phenotypes using stable and regulated syntheticｍicroRNA precursors" Nature Genetics Vol 37, No 11 1289-1295.)内に作製した。
「ｓｈＲＮＡ ｒｅｔｒｉｅｖｅｒ」(http://katahdin.cshl.org:9331/homepage/siRNA/RNAi.cgi?type=shRNA)を用いて３種類のオリゴヌクレオチドを設計した。以下のオリゴヌクレオチド：
を鋳型として用いて１５０ｂｐのＰＣＲ産物を増幅させ、ＸｈｏＩ及びＥｃｏＲＩで処理し、そして制限酵素処理したＬＭＰベクター内にライゲーションした。このｓｈＲＮＡコンストラクトは、上記の配列で下線が引かれたＧＡＳＣ１コーディング配列の２１１７番目の位置の２２ｂｐの配列を標的とする。このｓｈＲＮＡｉコンストラクトが、ＧＡＳＣ１のｍＲＮＡをノックダウンする効率は、リアルタイム定量的ＲＴ-ＰＣＲで評価したところ、約８０％であると評価された。
リアルタイム定量的ＲＴ-ＰＣＲ
細胞を、表示するｓｈＲＮＡコンストラクトでトランスフェクトし、簡単なピューロマイシンセレクション(２μｇ／ｍｌ)に付した。Ｑｕｉａｇｅｎ ＲＮＡｅａｓｙミニキットを製造元の使用説明書に従って用いて全ＲＮＡをトランスフェクトした細胞から作製した。Ｔａｑｍａｎ逆転写キットとポリｄＴプライマーを製造元の使用説明書に従って用いてｃＤＮＡを作製した。このｃＤＮＡを鋳型として、ＧＡＳＣ１特異的プライマーと共に、Ａｐｐｌｉｅｄ ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ７７００でのリアルタイム定量的ＰＣＲ反応に用いた。この反応物は、Ａｐｐｌｉｅｄ ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製の２ｘＳＹＢＲ ｇｒｅｅｎ反応ミックスを用いて調製した。
細胞を、表示するｓｈＲＮＡコンストラクトでトランスフェクトし、簡単なピューロマイシンセレクション(２μｇ／ｍｌ)に付した。Ｑｕｉａｇｅｎ ＲＮＡｅａｓｙミニキットを製造元の使用説明書に従って用いて全ＲＮＡをトランスフェクトした細胞から作製した。Ｔａｑｍａｎ逆転写キットとポリｄＴプライマーを製造元の使用説明書に従って用いてｃＤＮＡを作製した。このｃＤＮＡを鋳型として、ＧＡＳＣ１特異的プライマーと共に、Ａｐｐｌｉｅｄ ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ７７００でのリアルタイム定量的ＰＣＲ反応に用いた。この反応物は、Ａｐｐｌｉｅｄ ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製の２ｘＳＹＢＲ ｇｒｅｅｎ反応ミックスを用いて調製した。
ＢｒｄＵの取り込み
ｓｉＲＮＡのトランスフェクションから３０時間後に、細胞を４ウェルチャンバースライドに分け、ＢｒｄＵを含む培養培地で１５-３０分間インキュベートした。
ｓｉＲＮＡのトランスフェクションから３０時間後に、細胞を４ウェルチャンバースライドに分け、ＢｒｄＵを含む培養培地で１５-３０分間インキュベートした。
ヒトＧＡＳＣ１のｃＤＮＡのクローニング
ヒトＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２Ａの推定上のオープンリーディングフレームをＨｅＬａのｃＤＮＡとヒト胎児脳のｃＤＮＡライブラリー(Invitrogen、カールスバッド、カリフォルニア州)のｃＤＮＡからＰＣＲ増幅した。プライマー配列は、請求により入手可能である。ＰＣＲ産物をゲル精製し、ｐＣＲ８／ＧＷ(Invitrogen)にクローニングし、ＤＮＡシーケンシングにより確認した。これらのＧａｔｅｗａｙ適合性の導入クローンを用いて、ＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２ＡをｐＣＭＶ-ＨＡ、ｐＣＭＶ-ｍｙｃ及びｐＢａｂｅｐｕｒｏに導入した。標準的な変異導入方法により、ＧＡＳＣ１の保存された鉄結合ドメイン(ＨＴＥ)の、１９０-１９２番目のアミノ酸が、それぞれヒスチジン、スレオニン及びグルタミン酸からグリシン、スレオニン、アラニンに変化した２重変異を作製した。
ヒトＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２Ａの推定上のオープンリーディングフレームをＨｅＬａのｃＤＮＡとヒト胎児脳のｃＤＮＡライブラリー(Invitrogen、カールスバッド、カリフォルニア州)のｃＤＮＡからＰＣＲ増幅した。プライマー配列は、請求により入手可能である。ＰＣＲ産物をゲル精製し、ｐＣＲ８／ＧＷ(Invitrogen)にクローニングし、ＤＮＡシーケンシングにより確認した。これらのＧａｔｅｗａｙ適合性の導入クローンを用いて、ＧＡＳＣ１及びＪＭＪＤ２ＡをｐＣＭＶ-ＨＡ、ｐＣＭＶ-ｍｙｃ及びｐＢａｂｅｐｕｒｏに導入した。標準的な変異導入方法により、ＧＡＳＣ１の保存された鉄結合ドメイン(ＨＴＥ)の、１９０-１９２番目のアミノ酸が、それぞれヒスチジン、スレオニン及びグルタミン酸からグリシン、スレオニン、アラニンに変化した２重変異を作製した。
組換えタンパク質
Ｇａｔｅｗａｙを用いてＧＡＳＣ１のｃＤＮＡ をｐＣＲ８／ＧＷ からｐＡｃＨＬＴ-Ａ(Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ)のＧａｔｅｗａｙ修飾型に導入することにより、アミノ末端にヘキサヒスチジンタグが付いた完全長のヒトＧＡＳＣ１バキュロウィルス導入ベクターを作製した。組換えバキュロウィルスは、基本的に、先の文献に記載されたように、ＧＡＳＣ１遺伝子を含むバキュロウィルス導入ベクターと、Ｂｓｕ３６ＩでリニアライズしたＢａｋｐａｋ６バキュロウィルスＤＮＡの共トランスフェクションにより作製した。ヒスチジンタグが付いたＧＡＳＣ１とＪＭＪＤ２Ａを発現させ、基本的に先の文献(Christensen et al. Nucleic Acids Research 33, 5458-5470 (2005))に記載されたように、コバルトアフィニティークロマトグラフィーにより精製した。溶離した分画を、ＳＤＳ-ＰＡＧＥで分析し、選択した分画をサイズ排除クロマトグラフィー(ＳＥＣ)により更に精製した。簡潔に述べると、ＳＥＣは、５０ｍＭ・ＮａＣｌを含有する２５ｍＭ・ＨＥＰＥＳ-ＫＯＨ(ｐＨ７.７)で平衡化させたＳｕｐｅｒｏｓｅ１２、１０／３００カラム(Pharmacia-Amersham)上で行い、同一のバッファーを用いて、0.3ｍl/分の流速で溶離した。溶離した物質を、０.５ｍｌの分画で回収し、液体窒素で瞬間冷凍し、-８０℃で保存した。全ての工程は、完全にＥＤＴＡ不含のプロテアーゼ阻害剤(Boehringerｍannheim、独国)の存在下で、氷上又は４℃で行った。
Ｇａｔｅｗａｙを用いてＧＡＳＣ１のｃＤＮＡ をｐＣＲ８／ＧＷ からｐＡｃＨＬＴ-Ａ(Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ)のＧａｔｅｗａｙ修飾型に導入することにより、アミノ末端にヘキサヒスチジンタグが付いた完全長のヒトＧＡＳＣ１バキュロウィルス導入ベクターを作製した。組換えバキュロウィルスは、基本的に、先の文献に記載されたように、ＧＡＳＣ１遺伝子を含むバキュロウィルス導入ベクターと、Ｂｓｕ３６ＩでリニアライズしたＢａｋｐａｋ６バキュロウィルスＤＮＡの共トランスフェクションにより作製した。ヒスチジンタグが付いたＧＡＳＣ１とＪＭＪＤ２Ａを発現させ、基本的に先の文献(Christensen et al. Nucleic Acids Research 33, 5458-5470 (2005))に記載されたように、コバルトアフィニティークロマトグラフィーにより精製した。溶離した分画を、ＳＤＳ-ＰＡＧＥで分析し、選択した分画をサイズ排除クロマトグラフィー(ＳＥＣ)により更に精製した。簡潔に述べると、ＳＥＣは、５０ｍＭ・ＮａＣｌを含有する２５ｍＭ・ＨＥＰＥＳ-ＫＯＨ(ｐＨ７.７)で平衡化させたＳｕｐｅｒｏｓｅ１２、１０／３００カラム(Pharmacia-Amersham)上で行い、同一のバッファーを用いて、0.3ｍl/分の流速で溶離した。溶離した物質を、０.５ｍｌの分画で回収し、液体窒素で瞬間冷凍し、-８０℃で保存した。全ての工程は、完全にＥＤＴＡ不含のプロテアーゼ阻害剤(Boehringerｍannheim、独国)の存在下で、氷上又は４℃で行った。
レトロウィルスの形質導入
ＧＡＳＣ１とその変異体Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａを発現する組換えレトロウィルスを作製するため、ＧＡＳＣ１のオープンリーディングフレームを、Ｇａｔｅｗａｙによる組換えによりｐＢａｂｅｐｕｒｏに導入し、ｐＢａｂｅｐｕｒｏ-ＨＡ-ＧＡＳＣ１とｐＢａｂｅｐｕｒｏ-ＨＡ-Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａを作製した。Ｐｈｏｅｎｉｘ-Ｅｃｏ ２９３細胞パッキングセルラインのトランスフェクションから２４-４８時間後に、高い力価を有するウィルス粒子が得られた。トランスフェクションは、リン酸カルシウム法により行った。ＴＩＧ３-ｈＴｅｒｔ-ＥｃｏＲ細胞又はＵ２ＯＳ-ＥｃｏＲ細胞の形質導入は、２４時間以内に、ウィルスを含むパッケージングセルラインからの上清を細胞ディッシュに４回添加することにより達成した。形質導入された細胞は、ピューロマイシンの存在下で２-５日間かけて選択した(1μg/μl)。
ＧＡＳＣ１とその変異体Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａを発現する組換えレトロウィルスを作製するため、ＧＡＳＣ１のオープンリーディングフレームを、Ｇａｔｅｗａｙによる組換えによりｐＢａｂｅｐｕｒｏに導入し、ｐＢａｂｅｐｕｒｏ-ＨＡ-ＧＡＳＣ１とｐＢａｂｅｐｕｒｏ-ＨＡ-Ｈ１９０Ｇ／Ｅ１９２Ａを作製した。Ｐｈｏｅｎｉｘ-Ｅｃｏ ２９３細胞パッキングセルラインのトランスフェクションから２４-４８時間後に、高い力価を有するウィルス粒子が得られた。トランスフェクションは、リン酸カルシウム法により行った。ＴＩＧ３-ｈＴｅｒｔ-ＥｃｏＲ細胞又はＵ２ＯＳ-ＥｃｏＲ細胞の形質導入は、２４時間以内に、ウィルスを含むパッケージングセルラインからの上清を細胞ディッシュに４回添加することにより達成した。形質導入された細胞は、ピューロマイシンの存在下で２-５日間かけて選択した(1μg/μl)。
分子モデリング
α-ケトグルタレート、CADペプチド及び鉄と複合体形成したＦＩＨの構造は、１Ｈ２Ｋのアクセス番号でProtein Data Bank(PDB、Brookhaven National Library、アプトン、ニューヨーク州、米国)から入手可能である。ホモロジーモジュールＩＮＳＩＧＨＴ ＩＩ (２００５) (Ａｃｃｅｌｒｙｓ、サンディエゴ)を用いて、ＧＡＳＣ１２２-３４９を鋳型のＦＩＨと共にホモロジーモデリングした。ヒストン尾部(ARTKQTARKSTG)を鋳型のCADペプチドと共にモデリングした。ＧＲＩＤ(Version 22、Molecular Discovery Ltd.、オックスフォード、英国)(Goodford, 1985)というプログラムを用いて、ＧＡＳＣ１分子の疎水性表面の外形を計算した。続いて、ＡＵＴＯＤＯＣＫ(Ver. 3.0.5、Scripps Research Institute andｍolecular Graphics Laboratory)を用いて、上記のヒストンペプチドを、ＧＡＳＣ１の疎水性表面の外形上にドッキングさせた。最後に、前記複合体の構造モデルを、Pymol(http://pymol.sourceforge.net/)で導き出した。
α-ケトグルタレート、CADペプチド及び鉄と複合体形成したＦＩＨの構造は、１Ｈ２Ｋのアクセス番号でProtein Data Bank(PDB、Brookhaven National Library、アプトン、ニューヨーク州、米国)から入手可能である。ホモロジーモジュールＩＮＳＩＧＨＴ ＩＩ (２００５) (Ａｃｃｅｌｒｙｓ、サンディエゴ)を用いて、ＧＡＳＣ１２２-３４９を鋳型のＦＩＨと共にホモロジーモデリングした。ヒストン尾部(ARTKQTARKSTG)を鋳型のCADペプチドと共にモデリングした。ＧＲＩＤ(Version 22、Molecular Discovery Ltd.、オックスフォード、英国)(Goodford, 1985)というプログラムを用いて、ＧＡＳＣ１分子の疎水性表面の外形を計算した。続いて、ＡＵＴＯＤＯＣＫ(Ver. 3.0.5、Scripps Research Institute andｍolecular Graphics Laboratory)を用いて、上記のヒストンペプチドを、ＧＡＳＣ１の疎水性表面の外形上にドッキングさせた。最後に、前記複合体の構造モデルを、Pymol(http://pymol.sourceforge.net/)で導き出した。
参考文献
Claims (24)
- Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドの脱メチル化活性を調節する試験化合物の能力を試験する方法であって、当該方法が、試験化合物を、ヒストンＨ３のトリ及びジメチル化リジン９（Ｈ３−Ｋ９）を脱メチル化できるＪｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチド、当該ポリペプチドの補因子、及び脱メチル化の基質とインキュベートすることを含み、ここで当該Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドが、ＪｍｊＮドメイン及びＪｍｊＣドメインを含み、かつ以下の：
ａ)配列番号１に示すアミノ酸配列；
ｂ）配列番号１に示すアミノ酸配列のＪｍｊＮドメイン及びＪｍｊＣドメインに対応する少なくとも２２０個のアミノ酸の断片；
ｃ)ａ)の配列若しくはｂ)の配列のいずれか、又は両方と少なくとも９０％の配列同一性を示すアミノ酸、
を含む群から選択される、請求項１に記載の方法。 - 前記Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドが、以下の：
ａ)配列番号１(ＧＡＳＣ-１(ＪＭＪＤ２ｃ))、配列番号２(ＪＭＪＤ２ａ)、配列番号３(ＪＭＪＤ２ｂ)に示すアミノ酸配列；
ｂ)ａ)のいずれか１つのアミノ酸配列のＪｍｊＮドメイン及びＪｍｊＣドメインに対応する合計で少なくとも２２０個のアミノ酸の断片；
ｃ)ａ)のいずれか１つの配列及び／又はｂ)のいずれか１つの配列と少なくとも９０％の配列同一性を示すアミノ酸、
を含む群から選択される、請求項１に記載の方法。 - 前記Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドが、以下の：
ａ） 配列番号４、１０及び１６(ＪｍｊＮ)、配列番号５、１１及び１７(ＪｍｊＣ)、配列番号６、７、１２、１３、１８及び１９(ＰＨＤ)、並びに配列番号８、９、１４、１５、２０及び２１(Ｔｄｒ／ＴＵＤＯＲ)；
ｂ） ａ）の配列のいずれか１つに少なくとも９０％同一であるアミノ酸配列
から成る群から選択される、２以上のアミノ酸配列(ドメイン)を含む、請求項１又は２のいずれか１項に記載の方法。 - 前記方法が、以下の追加のステップ：
ａ)試験サンプルの以下のいずれかのパラメーター：
ｉ)基質のメチル化の状態；
ｉｉ)ホルムアルデヒドの放出；
ｉｉｉ)α-ケトグルタレート基質補因子のカルボキシル化の状態；
ｉｖ)酸素消費量
をモニターし、
ｂ)ステップａ)で得られた試験サンプルについての数値を、対照サンプルについて得られた数値と比較し、それによって、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドの活性を調節する前記試験化合物の能力を測定すること、
を含む、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。 - 以下のステップ：
ａ)Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドと脱メチル化の基質を、脱メチル化が可能な条件下でインキュベートすること；
ｂ)試験サンプルの以下のいずれかのパラメーター：
ｉ)基質のメチル化の状態；
ｉｉ)試験サンプル中のホルムアルデヒドの放出；
ｉｉｉ)α-ケトグルタレート基質補因子のカルボキシル化状態；
ｉｖ)酸素消費量
をモニターすること
により、前記対照が提供される、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。 - Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドが、配列番号４に記載されるアミノ酸配列及び配列番号５に記載されるアミノ酸配列を含む、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
- Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドが、配列番号１０に記載されるアミノ酸配列及び配列番号１１に記載されるアミノ酸配列を含む、請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
- Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドが、配列番号１６に記載されるアミノ酸配列及び配列番号１７に記載されるアミノ酸配列を含む、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
- 前記インキュベートの時間並びに基質のメチル化状態及び／又はホルムアルデヒドの放出を用いて、脱メチル化の速度を測定し、この脱メチル化の速度を比較に用いる、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
- 前記脱メチル化の基質が、ヒストンＨ３のリジン９に対応するメチル化された部位を含む、請求項１〜９のいずれか１項に記載の方法。
- 前記脱メチル化の基質が、配列番号２５に示すアミノ酸配列(ＴＡＲＫＳＴＧ)を含むペプチドであり、前記アミノ酸配列中のリジン残基がメチル化されている、請求項１〜１０のいずれか１項に記載の方法。
- 前記脱メチル化の基質が、少なくとも１５個のアミノ酸残基のペプチドである、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の方法。
- 前記脱メチル化の基質が、少なくとも２０個のアミノ酸残基のペプチドである、請求項１〜１２のいずれか１項に記載の方法。
- 前記基質が、バルクヒストン、合成ペプチド、及びヌクレオソームから成る群から選択される、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の方法。
- 前記メチル化された部位が、モノメチル化、ジメチル化又はトリメチル化されている、請求項１０に記載の方法。
- 前記化合物と前記Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドが、Ｆｅ(ＩＩ)イオン、α-ケトグルタレート及び／又はアスコルビン酸とインキュベートされる、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の方法。
- ステップａ)が、イムノブロッティング又は質量分析により行われる、請求項４に記載の方法。
- 以下のステップ：
ｉ) 鉄及びα-ケトグルタレートを含む溶液中の脱メチル化の基質の懸濁液を調製し；
ｉｉ) 前記試験化合物を、前記懸濁液に添加し；
ｉｉｉ) 上記ｉｉ)の懸濁液に、Ｊｕｍｏｎｊｉタンパク質のＪＭＪＤ２サブファミリーのポリペプチドを添加し；
ｉｖ) 前記懸濁液をインキュベートし；そして
ｖ) 前記基質の脱メチル化の程度を測定すること、
を含む、請求項１〜１７のいずれか１項に記載の方法。 - 前記脱メチル化の程度が、リジン９がメチル化されたヒストンＨ３に特異的な免疫結合パートナーを用いて評価される、請求項１８に記載の方法。
- 前記免疫結合パートナーが、抗トリメチル化ヒストンＨ３-Ｋ９抗体である、請求項１８又は１９に記載の方法。
- 前記免疫結合パートナーが、抗ジメチル化ヒストンＨ３-Ｋ９抗体である、請求項１８又は１９に記載の方法。
- 前記脱メチル化の程度が、ホルムアルデヒドの放出を用いて評価される、請求項１８に記載の方法。
- 前記脱メチル化の程度が、酸素消費量を用いて評価される、請求項１８に記載の方法。
- 前記脱メチル化の程度が、α-ケトグルタレート基質補因子のカルボキシル化状態を用いて評価される、請求項１８に記載の方法。
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