JP5080252B2 - 細胞周期を知らせる細胞系 - Google Patents

Description

本発明は、生細胞の細胞周期位置を決定するための非破壊的で動的な手段に関する。

真核細胞分裂は、Ｇ１、Ｓ、Ｇ２及びＭ期と呼ばれる連続した時期を含む高度に調節された細胞周期に沿って進行する。２つの遷移期Ｇ１及びＧ２は、細胞ＤＮＡが複製されるＤＮＡ合成（Ｓ）期と、各細胞が分裂して２つの娘細胞を形成する有糸分裂（Ｍ）期の間に介在する。

細胞周期又は細胞周期制御の破壊の結果、増殖制限細胞を、増殖の正常な制御に対して非応答性である高浸潤性細胞へと形質転換する複数の遺伝的変化から生じる、癌のような病態又は細胞異常が引き起こされうる。正常細胞の癌細胞への移行は、ＤＮＡ複製及びＤＮＡ修復機構における正しい機能の喪失によって惹起されうる。分裂中の細胞はすべて、細胞周期チェックポイントとして知られる多くの制御機構の支配下にあり、これらが異常細胞を停止させるか又は破壊を誘発することによって遺伝的な完全性を維持する。細胞周期の進行及び制御の研究は、結果的に抗癌剤の設計に非常に重要なものである（Ｆｌａｔｔ ＰＭ ａｎｄ Ｐｉｅｔｅｎｐｏｌ ＪＡ ２０００ Ｄｒｕｇ Ｍｅｔａｂ Ｒｅｖ ３２（３−４）：２８３−３０５； Ｂｕｏｌａｍｗｉｎｉ ＪＫ ２０００ Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｄｅｓｉｇｎ ６， ３７９−３９２）。

細胞周期の状態の正確な決定は、細胞周期に影響するか又は細胞周期位置に依存する細胞プロセスを研究するための重要な要件である。このような測定は、以下のような薬物スクリーニング用途で特に重要である。
ａ）細胞周期の進行を直接的又は間接的に修飾する薬物が、例えば、抗癌治療薬として望まれる場合；
ｂ）薬物が、細胞周期の進行に対する望ましくない効果についてチェックされるべき場合；
ｃ）ある薬剤が、細胞周期の特定の期で細胞に対して活性又は不活性であることが疑われる場合。

従来、細胞集団に対する細胞周期の状態は、細胞核のＤＮＡ含量を染色する蛍光染料を用い、フローサイトメトリーによって決定されている（Ｂａｒｌｏｇｉｅ Ｂ ｅｔ ａｌ． Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． １９８３ ４３（９）：３９８２−９７）。フローサイトメトリーは、細胞のＤＮＡ含量に対する定量的な情報をもたらし、従って細胞周期のＧ１、Ｓ及びＧ２＋Ｍ期にある細胞の相対数又は比率の決定が可能になる。しかし、本分析は、破壊的な非動的プロセスであり、経時的に細胞周期の状態を決定するには集団を連続的にサンプリングする必要がある。さらに、標準フローサイトメトリー技術は、試料中の細胞集団全体のみを調べるもので、個々の細胞についてのデータが得られず、このため分析試料の中に存在しうる異なる細胞型の細胞周期の状態の研究が不可能になっている。フローサイトメトリーは従って、一集団内の細胞の全体的な細胞周期分布を調べるのには好適であるが、経時的に個々の細胞の正確な細胞周期の状態をモニターするのに使用することはできない。

従って、細胞周期に対して望ましいか又は望ましくない効果を有する薬剤の効果を研究するのに必要とされるのは、同じ細胞を経時的に繰り返して調べることを可能とする非破壊的な方法によって、単一の生細胞の細胞周期の状態を正確に決定する方法である。さらに、細胞周期位置が、上述のようなＤＮＡ含有量、又はその他の細胞周期位置の間接マーカーを通じて間接的に決定されるのでなく、細胞周期制御成分によって直接制御されるプローブから決定されることが好都合であろう。

細胞増殖状態を分析又は活用する手順をもたらす細胞周期制御機構の特定の成分を利用する、数多くの方法が報告されている。

米国特許第６０４８６９３号には、細胞周期調節タンパク質に影響を及ぼす化合物をスクリーニングするための方法が記載されており、この方法では、レポーター遺伝子の発現が、サイクリン又はその他の細胞周期制御タンパク質による作用を受ける制御エレメントに結び付けられる。この方法において、レポーター遺伝子産物の一時的な発現が細胞周期特異的に駆動され、１以上の細胞周期制御成分に作用する化合物が発現レベルを増減しうる。そのアッセイシステムは、レポーター遺伝子産物の破壊に備えたエレメントも、レポーター遺伝子から生じる何らかのシグナルの破壊に備えたエレメントも含んでいないので、その方法ではアッセイ中の何れの細胞の細胞周期位置についても情報を与えることができず、細胞周期制御機構の一般摂動について知らせるにすぎないものである。

国際公開第０３／０３１６１２号には、細胞周期に特異的な発現制御エレメント及び破壊制御エレメントによる哺乳類生細胞の細胞周期位置を決定するためのＤＮＡレポーター構築物、及び方法が記載されている。一実施形態では、細胞周期のＧ２及びＭ期にわたる細胞性移行を知らせる緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）分子の発現及び分解を制御するために、細胞周期制御タンパク質サイクリンＢ１の充分に特徴付けされたエレメントが使用される。この構築物はサイクリンＢ１プロモーターの制御下にあるので、Ｇ１及びＳの間はＧＦＰ発現がなく、このため細胞周期のこれらの期にある細胞の分析が妨げられる。

ヒトヘリカーゼＢ相同体が報告されて、特徴付けがなされている（Ｔａｎｅｊａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， （２００２）， ２７７， ４０８５３−４０８６１）。この報告では、Ｇ１／Ｓ移行を促進するにはＧ１の間にヘリカーゼ活性が必要であることが示されている。

Ｇｕ他（Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． Ｃｅｌｌ．， （２００４）， １５， ３３２０−３３３２）は、リン酸化依存性細胞内局在化ドメイン（ＰＳＬＤ）と命名されたヘリカーゼＢ遺伝子の小さなＣ末端領域が、Ｃｄｋ２／サイクリンＥによってリン酸化され、ＮＬＳ及びＮＥＳ配列を含むことを示している。Ｇｕ他（Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． Ｃｅｌｌ．， （２００４）， １５， ３３２０−３３３２）は、ＣＭＶプロモーターから発現されるＥＧＦＰ−βＧａｌ−ＰＳＬＤ融合体（融合タンパク質全体のサイズが完全体のヘリカーゼＢと同様になるよう、ベータ−ガラクトシダーゼ（βＧａｌ）が不活性基として構築物に含められたもの）をコードするプラスミドで一過性にトランスフェクトされた細胞の研究を行った。Ｇ１の細胞は、主に核でＥＧＦＰシグナルを呈したが、細胞周期の他の期の細胞は、主に細胞質のＥＧＦＰシグナルを呈した。これらの研究者らは、ＰＳＬＤが細胞周期のＧ１／Ｓ期移行のあたりで、核から細胞質へとレポーターの転位置を指向すると結論付けた。
米国特許第６０４８６９３号明細書 国際公開第０３／０３１６１２号パンフレット Ｆｌａｔｔ ＰＭ ａｎｄ Ｐｉｅｔｅｎｐｏｌ ＪＡ ２０００ Ｄｒｕｇ Ｍｅｔａｂ Ｒｅｖ ３２（３−４）：２８３−３０５ Ｂｕｏｌａｍｗｉｎｉ ＪＫ ２０００ Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｄｅｓｉｇｎ ６， ３７９−３９２ Ｂａｒｌｏｇｉｅ Ｂ ｅｔ ａｌ． Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ． １９８３ ４３（９）：３９８２−９７ Ｔａｎｅｊａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， （２００２）， ２７７， ４０８５３−４０８６１ Ｇｕ ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． Ｃｅｌｌ．， （２００４）， １５， ３３２０−３３３２

細胞周期制御機構の成分を用いる以上の方法のいずれも、全細胞周期にわたって、個々の細胞又は細胞の一集団の細胞周期の状態を容易かつ正確に決定するための手段を提供するものではない。従って、細胞周期調節機構の主要なエレメントを、規定の組み合わせで使用し、二重の独立した細胞性レポーターを駆動して、個々の生細胞における細胞周期のすべての期での細胞周期の状態を決定する新規手段を提供する方法を開発し、本明細書に記載するものである。

本発明の第一の特徴によれば、
ｉ）１以上の細胞周期依存性の位置制御エレメントに連結した第一の検出可能な生細胞レポーター分子を含む第一ポリペプチド構築物であって、その構築物の哺乳類細胞内での位置が、細胞周期位置を示すものである構築物；及び
ｉｉ）破壊制御エレメントに連結した第二の検出可能な生細胞レポーター分子を含む第二ポリペプチド構築物であって、当該第二のレポーターは、哺乳類細胞において細胞周期の所定の位置で検出可能なものである構築物、を発現する安定細胞系が提供され、
第一及び第二のレポーター分子は互いに識別可能であり、安定細胞系は、細胞周期位置を決定するために使用できる。

本発明は、細胞周期成分の一時的で空間的な発現、局在化、及び破壊とのレポーターシグナルの直接的な連関により、検出可能なレポーター分子の細胞周期特異的活性化、転位置、又は破壊を呈するポリペプチド構築物を含む細胞系を提供する。これにより、細胞周期状態の決定の精度が大幅に改善され、個々の細胞において細胞周期進行を継続的にモニターできるようになる。さらに、本発明者らは、これらの主要な制御エレメントが、細胞周期制御機構の機能性エレメントから単離及び抽出できることを発見しており、動的に調節され、しかも内在性細胞周期制御成分と連携するが別々に作動する細胞周期レポーターを設計することができ、このため、細胞周期の自然な進行に影響を及ぼしたり妨げたりすることなく、細胞周期の状態をモニターするための手段を提供することが可能になる。

好適には、細胞周期依存性の位置制御エレメントは、Ｒａｇ２、Ｃｈａｆ１Ｂ、Ｆｅｎ１、ＰＰＰ１Ｒ２、ヘリカーゼＢ、ｓｇｋ、ＣＤＣ６、又はそれらの中に存在するヘリカーゼＢのＣ末端の特殊な制御領域のリン酸化依存性細胞内局在化ドメイン（ＰＳＬＤ）のようなモチーフからなるペプチドの群から選択される。

好適には、破壊制御エレメントはサイクリンＢ１ Ｄ−ｂｏｘを含む。

好適には、第一及び第二生細胞レポーター分子は、蛍光タンパク質及び酵素レポーターからなる群から選択される。

好ましくは、前記蛍光タンパク質は、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、増強型緑色蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）、Ｅｍｅｒａｌｄ、及びＪ−Ｒｅｄからなる群から選択される。好ましくは、前記酵素レポーターはハロ−タグ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）である．
好ましくは、第一のレポーター分子がＥＧＦＰで第二のレポーター分子がＪ−Ｒｅｄであり、又は第一のレポーター分子がＪ−Ｒｅｄで第二のレポーター分子がＥＧＦＰである。さらに好ましくは、第一のレポーター分子はＪ−Ｒｅｄであって第二のレポーター分子はＥＧＦＰである。

本発明の好ましい一実施形態において、第一ポリペプチド構築物は、赤色蛍光タンパク質（ＲＦＰ）に結合したヘリカーゼＢのＣ末端の空間制御領域のリン酸化依存性細胞内局在化ドメイン（ＰＳＬＤ）を含み、第二ポリペプチド構築物は、サイクリンＢ１プロモーターの制御下に発現される緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）に結合したサイクリンＢ１のアミノ末端の１７１アミノ酸を含む。

哺乳類細胞で発現される場合、これらの構築物は、ＧＦＰ構築物の細胞周期特異的発現及び破壊と、ＲＦＰ構築物の転位置とを呈し、ＧＦＰ構築物は内在性のサイクリンＢ１の発現及び分解と平行し、そしてＲＦＰ構築物は内在性のヘリカーゼＢの転位置と平行する。よって、ＧＦＰ及びＲＦＰ双方の蛍光強度及び局在化の測定により、細胞周期のＧ１、Ｓ、Ｇ２及びＭ期にある細胞の同定が可能となる。一集団の中の各細胞の蛍光特性の経時的な分析の結果、各細胞の細胞周期の状態についての動的な情報が得られる。

本発明の更なる特徴において、培養細胞の細胞周期分布を分析して、細胞周期分布に対する被検薬剤の効果を決定するための方法が提供される。「被検薬剤」なる用語は、電磁放射線の一形態として、又は化学成分として解釈されるべきである。好ましくは、被検薬剤は、薬物、核酸、ホルモン、タンパク質、及びペプチドからなる群から選択される化学成分である。被検薬剤は、細胞に外因的に適用されてもよいし、又は研究対象の細胞において発現されるペプチド若しくはタンパク質であってもよい。

従って、本発明の第二の特徴では、哺乳類細胞の細胞周期位置を決定するための方法が提供され、この方法は、
ａ）上述の安定細胞系を培養し；
ｂ）第一及び第二のレポーター分子が発生するシグナルをモニターすることによって、細胞周期位置を決定する工程を含む。

本発明の第三の特徴では、哺乳類細胞の細胞周期位置に対する被検薬剤の効果を決定する方法が提供され、この方法は、
ａ）上述の安定細胞系を培養し；
ｂ）第一及び第二のレポーター分子が発生するシグナルをモニターすることによって、細胞周期位置を決定する工程を含み、ここで、前記被検薬剤の非存在下及び存在下に測定された発生シグナルの差が、細胞の細胞周期位置に対する被検薬剤の効果の指標となる。

本発明の第四の特徴では、哺乳類細胞の細胞周期位置に対する被検薬剤の効果を決定する方法が提供され、この方法は、
ａ）上述の安定細胞系を培養し；
ｂ）第一及び第二のレポーター分子が発生するシグナルをモニターすることによって、細胞周期位置を決定し；
ｃ）被検薬剤の存在下に発生するシグナルを、被検薬剤の非存在下に発生するシグナルに対する既知の数値と比較する工程を含み、
ここで、被検薬剤の存在下に測定された発生シグナルと、被検薬剤の非存在下での前記既知の数値との差が、細胞の細胞周期位置に対する被検薬剤の効果の指標となる。

本発明のさらに別の特徴では、細胞周期位置を知らせる細胞プロセスを細胞内でモニターする手段によって、細胞プロセスの細胞周期依存性を決定するための方法が提供される。

そこで、本発明の第五の特徴によれば、被検薬剤に応答して変動することが知られているプロセスレポーターによってモニターされる細胞プロセスに対する哺乳類細胞周期の効果を決定する方法が提供され、この方法は、
ａ）上述の安定細胞系を培養し；
ｂ）第一及び第二のレポーター分子が発生するシグナルをモニターすることによって細胞周期位置を決定し；並びに
ｃ）プロセスレポーターが発生するシグナルをモニターする工程を含み、
ここで、プロセスレポーターは、第一及び第二のレポーター分子から識別可能であり、
工程ｂ）で決定された細胞周期位置と、プロセスレポーターが発生するシグナルとの関係は、細胞プロセスが細胞周期依存性であるか否かの指標となる。

図面の簡単な説明
配列番号１は、ＰＳＬＤ−ＪＲＥＤ融合タンパク質のアミノ酸配列である。

配列番号２は、ｐＣＯＲＯＮ１０２２−ＪＲｅｄ−Ｃ１−ＰＳＬＤの核酸配列である。

配列番号３は、ｐＣＯＲＯＮ１０２０−ＪＲｅｄ−Ｃ１−ＰＳＬＤの核酸配列である。

図１は、ｐＣＯＲＯＮ１００２−ＥＧＦＰ−Ｃ１−ＰＳＬＤのベクターマップである。

図２は、ｐＣＯＲＯＮ１０２２−ＪＲｅｄ−Ｃ１−ＰＳＬＤ（図２ａ）及びｐＣＯＲＯＮ１０２０−ＪＲｅｄ−Ｃ１−ＰＳＬＤ（図２ｂ）のベクターマップである。

図３は、ＩＮ Ｃｅｌｌ Ａｎａｌｙｚｅｒ １０００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）画像化システムを用いた、サイクリンＢ１−ＥＧＦＰ及びＰＳＬＤ−ＪＲｅｄ蛍光タンパク質を発現するＵ２ＯＳ細胞の画像である。細胞は、文字／数字の「Ｓ」、「Ｇ１」及び「Ｇ２」によって表記するように、それらの細胞周期の変動する段階にあることがわかる。Ｈｏｅｃｈｓｔ染料の存在は図３ａで青色蛍光によって示され、図３ｂではＧ２／ＭサイクリンＢ１緑色蛍光タンパク質レポーターの発現、図３ｃではＧ１／Ｓ ＰＳＬＤ赤色蛍光タンパク質レポーターの発現を示す。

ＰＳＬＤ−ＲＦＰ構築物
全長のヒトＤＮＡヘリカーゼＢ（ＨＤＨＢ）ｃＤＮＡを、ＢｇｌＩＩ／ＮｏｔＩ断片（Ｔａｎｅｊａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， （２００２）， ２７７， ４０８５３−４０８６１）として、ｐＥＧＦＰ−Ｃ１ベクター（クロンテック）のＮｏｔＩ部位に挿入した。３９０塩基対のＰＳＬＤ領域のＰＣＲ増幅と、ＰＳＬＤ断片への５’ＮｈｅＩ及び３’ＳａｌＩ制限酵素部位の導入を使用して、ベクターｐＣＯＲＯＮ１００２−ＥＧＦＰ−Ｃ１（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）へサブクローニングした。この結果得られた６７０４塩基対のＤＮＡ構築物ｐＣＯＲＯＮ１００２−ＥＧＦＰ−Ｃ１−ＰＳＬＤ（図１）は、ユビキチンＣプロモーター、細菌アンピシリン抵抗性遺伝子、及び哺乳類ネオマイシン抵抗性遺伝子を含んでいる。このベクターの更なる修飾を、標準ＰＣＲ及びクローニング技術（Ｓａｍｂｒｏｏｋ， Ｊ． ｅｔ ａｌ （１９８９））を用いて行い、ＥＧＦＰを蛍光タンパク質Ｊ−Ｒｅｄ（Ｅｖｒｏｇｅｎ社）に置換して、プラスミドをネオマイシン抵抗性からハイグロマイシン抵抗性に変換させ（図２ａ）、またユビキチンＣプロモーターをＣＭＶ ＩＥ／プロモーターに置換した（図２ｂ）。

二重構築安定細胞系
サイクリンＢ１−ＥＧＦＰ細胞周期レポーター（国際公開第０３／０３１６１２号に記載の通りであり、Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＵＫ Ｌｉｍｉｔｅｄ／ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社から製品コード番号２５−８０−１０「Ｇ２Ｍ細胞周期フェーズマーカー」で供給されている）を安定に発現しているＵ２ＯＳ細胞系を、供給業者の説明書に従って培養した。製造業者の説明書に従ってＦｕｇｅｎｅ（Ｒｏｃｈｅ社）を用い、ＰＳＬＤ−ＲＦＰ融合タンパク質（配列番号１）をコードするプラスミド（図２ａ及び２ｂ）で細胞をトランスフェクトした。細胞をハイグロマイシン（１２５μｇ／ｍｌ）及びネオマイシン（５００μｇ／ｍｌ）選択下に置き、生存クローンを更なる増殖用に選択した。

Ｇ１／Ｓ及びＧ２／Ｍセンサを発現している安定細胞系の画像化
サイクリンＢ１−ＥＧＦＰ及びＰＳＬＤ−Ｊ Ｒｅｄ蛍光融合タンパク質を発現している安定なＵ２ＯＳ細胞系を、９６ウェルプレートにおいて、１０％血清を追加したＭｃＣｏｙｓ培地中で標準組織培養条件下に生育した。細胞を２％パラホルムアルデヒドで固定し、Ｈｏｅｃｈｓｔで染色して、青色（Ｈｏｅｃｈｓｔ）、緑色（サイクリンＢ１−ＥＧＦＰ）及び赤色（ＰＳＬＤ−Ｊ Ｒｅｄ）蛍光に対する適切な励起及び発光フィルターを備えたＩＮセルアナライザー１０００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）を用いて画像化した。

実施例１
サイクリンＢ１−ＥＧＦＰ及びＰＳＬＤ−Ｊ Ｒｅｄを発現している安定細胞系の画像（図３）で、細胞周期の異なる期の細胞間で、緑色及び赤色融合タンパク質の差次的な発現及び局在化が示される。各々の細胞の細胞質及び核内の緑色及び赤色蛍光融合タンパク質の有無の決定によって、以下のスキームに従い細胞周期位置を指摘することが可能になった。

１以上の細胞周期依存性の位置制御エレメントに連結した第一の検出可能な生細胞レポーター分子を含むポリペプチド構築物であって、その構築物の哺乳類細胞内での位置が、細胞周期位置を示すものである構築物を発現している安定細胞系の生産に関連する実験の詳細は、「細胞周期フェーズマーカー」の名称の、出願人による同時係属米国仮特許出願第ＵＳ６０／６４５９６８号に記載されており、これを引用することによりその開示全体を本明細書で援用する。

以上に記載したのは本発明の例示であり、本発明を限定するものとして解釈されるべきではない。本発明の例証的ないくつかの実施形態を記載しているが、当業者であれば、本発明の新規教示及び利点を実質的に逸脱することなく、これら例証的な実施形態に多くの修飾を施すことが可能であると容易に理解するであろう。よって、このような修飾のすべてが、特許請求の範囲で定義した本発明の範囲に含まれることを意図する。従って、以上に記載したのは本発明の例示であり、開示された具体的な実施形態に限定されるものと解釈されるべきでなく、また開示された実施形態への修正や、その他の実施形態が、添付の特許請求の範囲の範囲に含まれるように意図されることは、理解されるべきである。本発明は、以下の特許請求の範囲によって定義され、特許請求の範囲の均等物もその中に含まれる。

ｐＣＯＲＯＮ１００２−ＥＧＦＰ−Ｃ１−ＰＳＬＤのベクターマップ。 ｐＣＯＲＯＮ１０２２−ＪＲｅｄ−Ｃ１−ＰＳＬＤ（図２ａ）及びｐＣＯＲＯＮ１０２０−ＪＲｅｄ−Ｃ１−ＰＳＬＤ（図２ｂ）のベクターマップ。 ＩＮ Ｃｅｌｌ Ａｎａｌｙｚｅｒ １０００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）画像化システムを用いた、サイクリンＢ１−ＥＧＦＰ及びＰＳＬＤ−ＪＲｅｄ蛍光タンパク質を発現するＵ２ＯＳ細胞の画像。細胞は、文字／数字の「Ｓ」、「Ｇ１」及び「Ｇ２」によって表記するように、それらの細胞周期の変動する段階にあることがわかる。Ｈｏｅｃｈｓｔ染料の存在は図３ａで青色蛍光によって示され、図３ｂではＧ２／ＭサイクリンＢ１緑色蛍光タンパク質レポーターの発現、図３ｃではＧ１／Ｓ ＰＳＬＤ赤色蛍光タンパク質レポーターの発現を示す。

Claims (8)

1. 細胞周期位置の決定に使用できる安定細胞系であって、当該安定細胞系が、
   ｉ）ヘリカーゼＢのＣ末端の特殊制御領域のリン酸化依存性細胞内局在化ドメイン（ＰＳＬＤ）に第一の蛍光タンパク質を連結してなる第一ポリペプチド構築物であって、哺乳類細胞内での位置が、細胞周期位置の指標となる第一ポリペプチド構築物と、
   ｉｉ）サイクリンＢ１プロモーターの制御下に発現される第二の蛍光タンパク質に結合したサイクリンＢ１のアミノ末端の１７１アミノ酸を含む第二ポリペプチド構築物であって、第二の蛍光タンパク質が哺乳類細胞内で細胞周期の所定位置で検出できる第二ポリペプチド構築物と、
   を発現し、第一及び第二の蛍光タンパク質分子が互いに識別可能である、安定細胞系。
2. 前記蛍光タンパク質が緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、増強型緑色蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）、Ｅｍｅｒａｌｄ及びＪ−Ｒｅｄからなる群から選択される、請求項１記載の安定細胞系。
3. 第一の蛍光タンパク質がＥＧＦＰであって第二の蛍光タンパク質がＪ−Ｒｅｄであるか、或いは第一の蛍光タンパク質がＪ−Ｒｅｄであって第二の蛍光タンパク質がＥＧＦＰである、請求項１又は請求項２記載の安定細胞系。
4. 第一ポリペプチド構築物の第一の蛍光タンパク質が赤色蛍光タンパク質（ＲＦＰ）であり、第二ポリペプチド構築物が、サイクリンＢ１プロモーターの制御下に発現される緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）に結合したサイクリンＢ１のアミノ末端の１７１アミノ酸を含む、請求項１乃至請求項３のいずれか１項記載の安定細胞系。
5. 哺乳類細胞の細胞周期位置を決定する方法であって、
   ａ）請求項１乃至請求項４のいずれか１項記載の安定細胞系を培養し、
   ｂ）第一及び第二の蛍光タンパク質が発生するシグナルをモニターすることによって細胞周期位置を決定する工程
   を含む方法。
6. 哺乳類細胞の細胞周期位置に対する被検薬剤の効果を決定する方法であって、
   ａ）請求項１乃至請求項４のいずれか１項記載の安定細胞系を培養し、
   ｂ）第一及び第二の蛍光タンパク質が発生するシグナルをモニターすることによって、細胞周期位置を決定する工程を含み、前記被検薬剤の非存在下及び存在下で測定された発生シグナルの差が、前記細胞の細胞周期位置に対する前記被検薬剤の効果の指標となる方法。
7. 哺乳類細胞の細胞周期位置に対する被検薬剤の効果を決定する方法であって、
   ａ）請求項１乃至請求項４のいずれか１項記載の安定細胞系を培養し、
   ｂ）第一及び第二の蛍光タンパク質が発生するシグナルをモニターすることによって、細胞周期位置を決定し、
   ｃ）前記被検薬剤の存在下で発生するシグナルを、前記被検薬剤の非存在下で発生するシグナルの既知の数値と比較する工程を含み、
   前記被検薬剤の存在下で測定された発生シグナルと、前記被検薬剤の非存在下での前記既知の数値との差が、前記細胞の細胞周期位置に対する前記被検薬剤の効果の指標となる方法。
8. 被検薬剤に応答して変動することが知られているプロセスレポーターによってモニターされる細胞プロセスに対する哺乳類細胞周期の効果を決定する方法であって、
   ａ）請求項１乃至請求項４のいずれか１項記載の安定細胞系を培養し、
   ｂ）第一及び第二の蛍光タンパク質が発生するシグナルをモニターすることによって、細胞周期位置を決定し、
   ｃ）前記プロセスレポーターが発生するシグナルをモニターする工程を含み、
   前記プロセスレポーターは、第一及び第二の蛍光タンパク質から識別可能であり、
   工程ｂ）で決定された細胞周期位置と、前記プロセスレポーターが発生するシグナルとの関係は、前記細胞プロセスが細胞周期依存性であるか否かの指標となる方法。