JP4792134B2 - 澱粉ゲル含有食品 - Google Patents

Description

本発明は、澱粉ゲル含有食品、高粘度でかつゲル形成能がある澱粉、その澱粉を含む食品、およびその製造方法に関する。特に、本発明は、澱粉のゲル形成能を向上させることの可能な酵素を用いて澱粉ゲル含有食品を製造する方法に関する。

食品の多様化に伴い、様々な形、物性およびテクスチャーを有する食品が求められている。特に、口どけおよび食感は食品を設計する上で、重要な物性として注目されている。最近注目されている嚥下および介護の分野においても、食感は重要な物性として検討されている。

加工食品を設計する場合、食感および物性改良のために、ゲル化剤の利用が重要であり、その利用の仕方により多様な製品開発が可能となっている。

従来、食品の物性を改変する目的で、食品を調製する場合に、様々なゲル化剤を食品素材に添加してきた。

一般に、食品加工において、寒天、ゼラチン、ジェランガム、キサンタンガム、ローカストビーンガム、カラギナン、ペクチン、アルギン酸ナトリウム、タマリンドシードガム、サイリウムシードガム、微結晶セルロース、カードラン、澱粉などの天然高分子、あるいはカルボキシメチルセルロース（ＣＭＣ）またはメチルセルロースなどの合成高分子がゲル化剤として使用されている。

これらのゲル化剤を用いる場合、単独で用いる場合もあるが、より多様な特性を持ったゲルを形成させるために、例えば、ネイティブジェランガムとグアガム等、２種類以上のゲル化剤を組み合わせて用いることが検討されており、利用されている（特許文献１）。

しかし、食品のゲル強度を相乗的に変化させることができる組み合わせは少なく、相乗的に変化させることができたとしても、それによって得られるゲルの物性は満足のいくものではない。また、２種類以上のゲル化剤の混合は煩雑であり、さらに非常に高価な素材が多いという欠点がある。

さらに、例えばゼラチンは酸およびアルカリに弱く、寒天も酸に弱い、と言った、食品加工においての使用制限もつきまとう。

澱粉は、生澱粉だけではなく、酢酸澱粉、リン酸化澱粉など、澱粉を化学修飾した加工澱粉（化工澱粉とも言う）をゲル化剤として食品素材に添加されることにより、様々な物性を生み出すことに成功してきた。例えば、特許文献２、３および４に架橋澱粉を食パン、菓子類または麺類に利用した例を示す。しかし、架橋度の高い架橋澱粉を食品に添加した場合、ゲルの硬さおよび粘度を高めることができるが、最終製品は粉っぽい食感となり、また風味も劣るという欠点がある。また、架橋度の低い澱粉を食品に添加する場合は、所望の硬度を得るためには多量に使用する必要があるため、得られる食品は粉っぽい食感が強くなり、最終製品の品質の低下を招く。そのため、架橋度の低い澱粉の使用量には限界がある。加えて、化学反応を利用した澱粉の加工には、安全性を担保するために加工方法および加工程度に厳密な法的制限があること、安心安全を求める消費者のニーズに必ずしも適合していない、などの問題もある。

これら加工食品を設計する上で、様々な物性を示し、且つ安全性の高い、加工澱粉を得るための加工技術の開発が急がれている。

そこで、我々は、鋭意研究を重ねた結果、あらかじめ、澱粉粒を澱粉加水分解酵素または糖転移酵素で処理した後、食品素材及び水と混合し、それを加熱する工程をとることにより、弾力性、サクサク感などに富んだ食品を調製できることを見出した。

澱粉は、様々な目的に利用されている素材であり、その最も重要な機能はその増粘機能およびゲル形成機能である。特に食品産業においては、澱粉の増粘機能およびゲル形成機能が、食品の形、物性およびテクスチャーの形成に幅広く利用されている。澱粉の構造はその原料植物（例えば、トウモロコシ、馬鈴薯、小麦、タピオカなど）によって微妙に異なり、その結果、増粘機能およびゲル形成機能もその原料植物によって異なる。このため当業者は古くから、目的に応じて、使用する天然澱粉を選択してきた。たとえば、水産練り製品には古くから、小麦澱粉が多用されている。小麦澱粉はゲル形成機能に優れているからである。例えば、透明性が高く、もちもち感の必要な食品には一般にタピオカ澱粉が利用されている。しかしながら、昨今の食品産業で要求される特性は高度化しており、使用する天然澱粉を変更するだけでは対応できなくなってきている。そのため澱粉の増粘機能またはゲル形成機能を改変する必要が生じている。

澱粉の増粘機能またはゲル形成機能を改変するために最も汎用されている手段は、澱粉の化学修飾である。なかでも適切な化学的架橋剤を用いて澱粉分子間に新たな架橋点を導入する手法および適切な官能基を導入する手法などの化学的処理を施す手法は増粘機能またはゲル形成機能を顕著に改変するため、広く利用されるようになってきている。しかしながら、日本国では２００８年１０月より、このような化学的処理を施した澱粉が食品添加物として指定され、法規制を受けることとなった。このため、澱粉の増粘機能またはゲル形成機能を、化学的処理を伴わずに改変する技術が期待されていた。

化学的処理を伴わずに澱粉を改変する技術としては、澱粉の酵素処理技術がある。酵素は一般的に、水に溶解している基質に作用するため、通常の酵素処理は、澱粉を水に完全に溶解させてから酵素処理が行われている。水に溶解させた澱粉に加水分解酵素または糖転移酵素を作用させて澱粉を切断することにより、デキストリン、水あめ、マルトオリゴ糖、マルトース、グルコースなどのより低分子量の分子が製造されている。しかしながら、これら加水分解酵素または糖転移酵素による酵素処理では、澱粉分子が切断されて低分子量の分子になってしまうため、一般に、得られる分子の増粘機能およびゲル形成機能は澱粉の増粘機能およびゲル形成機能よりも低下するかあるいは消失すると考えられていた。

また、澱粉の物性を改変する方法として、澱粉を水に溶解させずに、水中で澱粉粒のままで酵素を作用させる技術が、特許文献５に開示されている。特許文献５は、澱粉を酵素処理する際に、従来一般には酵素処理前に水に溶解されるが、酵素処理前に澱粉を水に溶解することが必ずしも必要ではなく、水に溶解しておらず、水に懸濁した澱粉粒子に酵素処理をすることが可能であることを開示している。具体的にはα-アミラーゼ、グルコアミラーゼなどの加水分解酵素が、水に溶解しておらず、水に懸濁した澱粉粒子に作用し、還元糖を生成することが出来ることが開示されている。特許文献５にはまた、その結果として、酵素処理を受けた澱粉の粘度は酵素処理をしていない澱粉の粘度よりも低いことが開示されている。しかしながら、特許文献５は、澱粉粒子に加水分解酵素または糖転移酵素を作用させることにより、酵素処理していない澱粉よりも増粘機能またはゲル形成機能が向上した澱粉が得られることについては、示唆も開示もしていない。

特許文献６〜１０においても、不溶性の澱粉粒に加水分解酵素を作用させる技術が開示されている。これら発明は、加水分解酵素を澱粉粒に作用させることにより、澱粉粒の表面に穴を開けて、多孔性の澱粉粒を作り、多孔性澱粉粒を粉末基材または多孔性担体などとして利用する技術を開示している。しかしながら、特許文献６〜１０は、澱粉粒に加水分解酵素または糖転移酵素を作用させることにより、増粘機能およびゲル形成機能が向上した澱粉が得られることについては、示唆も開示もしていない。本発明の目的は酵素処理澱粉粒の表面に穴を開けることではなく、増粘機能およびゲル形成機能の向上と酵素処理澱粉粒の表面に穴が開くかどうかとは全く関係ない。本発明の酵素処理澱粉を使用して加熱食品を製造すると、酵素処理澱粉は加熱食品中で硬いゲルを形成する。本発明の酵素処理澱粉は加熱食品に使用可能である。それに対し、従来技術では澱粉粒の表面に穴があることが重要であって、酵素処理後の澱粉粒と水とを混合してから加熱すると澱粉粒が崩壊して穴開きの状態ではなくなってしまうため、当業者は従来技術の穴開き澱粉を加熱食品に使用しようとは考えなかった。本発明においては酵素処理の程度を調節することにより酵素処理澱粉を使用して形成されるゲルの硬さを調節することができる。ゲルの硬さは食品の食感、歯ごたえなどに影響を与える。従って、本発明の方法を用いることにより、食品の食感に影響を与えることができる。このように従来技術の酵素処理澱粉粒と本願で使用する酵素処理澱粉粒とは用途および使用方法が全く異なっている。

このように、従来、澱粉の化学修飾を利用せずに、増粘機能またはゲル形成機能に優れた澱粉を提供することはできなかった。

また、従来技術においては、酵素が、澱粉のゲル形成能を向上させるという特性を有するか否かということに一切着目されていなかった。酵素が、澱粉のゲル形成能を向上させるという特性を有することにより産業上の利点が存在するか否かも一切わかっていなかった。

特開平１０−２１５７９５号公報 特許３７２３８６０号公報 特許３３１２２２５号公報 特公平７−６３３２４号公報 特開平６−２６９２９１号公報 特開２００３−２１９８１３号公報 特許４１７００６２号公報 特開平１−１５９０４７号公報 特開平５−１１２４６９号公報 特開平８−２７７２３０公報

本発明は、上記問題点の解決を意図するものであり、所望の程度の硬さの澱粉ゲルを含む食品およびその製造方法を提供することを目的とする。本発明の特定の実施形態では、澱粉の化学修飾を利用せずに、増粘機能またはゲル形成機能に優れた澱粉を提供すること、その澱粉を含む食品を提供すること、ならびにその澱粉および食品の製造方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、澱粉のゲル形成能を向上させるという特性を有する特定の加水分解酵素または糖転移酵素を、澱粉が溶解しない条件で澱粉粒に作用させることにより、増粘機能およびゲル形成機能に優れた澱粉が得られることを見出し、これに基づいて本発明を完成させた。一般的に加水分解酵素または糖転移酵素を澱粉に作用させた場合、澱粉は切断されてより低分子となり、得られる分子の粘度およびゲル形成能は酵素処理前の澱粉の粘度およびゲル形成能力よりも低下するか、あるいは消失すると考えられる。実際、澱粉が溶解しない条件で澱粉粒に作用させた場合にこのような優れた澱粉を生成する加水分解酵素または糖転移酵素と同じ加水分解酵素または糖転移酵素を、澱粉を水に溶解させてから澱粉に作用させた場合、澱粉粘度は低下し、増粘機能またはゲル形成機能に優れた澱粉は得られない。このように本発明は、当業者が有するこれまでの一般的な知見および技術常識では予測できないものである。

澱粉粒の酵素処理条件は、酵素の特異性および澱粉粒の起源により異なり得る。例えば、まず、澱粉粒をイオン交換水または緩衝液に懸濁させて澱粉懸濁液を作製する。澱粉懸濁液のｐＨ調整が必要な場合は、酵素の適性ｐＨに調整する。この澱粉懸濁液を、澱粉粒が崩壊しない温度（好ましくは、約１０℃〜約７０℃）に加温しながら、酵素を添加し、例えば約２４時間以内（好ましくは、約１時間〜約２０時間）反応を行い得る。その後、澱粉調製の常法である洗浄及び脱水工程により、酵素および酵素分解により溶出した糖質を除去し、乾燥工程を経て、目的とする酵素処理澱粉粒が得られ得る。

本発明は、例えば、以下の通りである：
（項目１） 澱粉ゲル含有食品の製造方法であって、
澱粉粒を約１０℃以上約７０℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程；
食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程；
該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程；および
該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程
を包含し、該酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、方法。

（項目２） 前記酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、項目１に記載の方法。

（項目３） 前記酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、項目１に記載の方法。

（項目４） 前記酵素が、ノボザイムからＡＭＧとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＤＡＮＩＳＣＯからＤＩＡＺＹＭＥ Ｘ４ＮＰとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルコアミラーゼ「アマノ」ＳＤとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルクザイムＡＦ６として市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ由来のアミログルコシダーゼ、新日本化学工業からスミチームとして市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからトランスグルコシダーゼ Ｌ『アマノ』として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＴｒａｎｓｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ Ｌ−５００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、天野エンザイムからビオザイムＡとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＬとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、ダニスコからＡＭＹＬＥＸ Ａ３として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＡＳとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼ、Ｓｉｇｍａからイソアミラーゼとして市販されるＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼ、ノボザイムからＴｏｒｕｚｙｍｅとして市販されるＢａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ、および天野エンザイムからコンチザイムとして市販されるＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ）由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、項目１に記載の方法。

（項目５） 前記酵素が、（１）配列番号１、３、５、７、９または１１の塩基配列に相補的な塩基配列からなる核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされ、かつ澱粉加水分解活性を有するか、または（２）配列番号１３の塩基配列に相補的な塩基配列からなる核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされ、かつ糖転移活性を有し、ここで、該ストリンジェントな条件は、５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ（７５０ｍＭ ＮａＣｌ、７５ｍＭ クエン酸三ナトリウム）、５０ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．６）、５×デンハルト溶液（０．２％ ＢＳＡ、０．２％ Ｆｉｃｏｌｌ ４００および０．２％ポリビニルピロリドン）、１０％硫酸デキストラン、および２０μｇ／ｍｌ変性剪断サケ精子ＤＮＡを含む溶液中での６５℃でのハイブリダイゼーション、およびその後の０．１〜２倍濃度のＳＳＣ溶液（１倍濃度のＳＳＣ溶液の組成は、１５０ｍＭ 塩化ナトリウム、１５ｍＭ クエン酸ナトリウムである）での６５℃条件下での洗浄である、項目１に記載の方法。

（項目６） 前記酵素が、（１）配列番号２、４、６、８、１０または１２のアミノ酸配列に対して少なくとも９５％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有しかつ澱粉加水分解活性を有するか、または（２)配列番号１４のアミノ酸配列に対して少なくとも９５％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有しかつ糖転移活性を有する、項目１に記載の方法。

（項目７） 前記澱粉粒が、未処理澱粉、物理処理澱粉または化学修飾澱粉の澱粉粒である、項目１に記載の方法。

（項目８） 前記澱粉粒が未処理澱粉の澱粉粒であり、該澱粉粒が前記方法により澱粉ゲル含有食品を得るまでのいずれの段階においても化学修飾も、物理処理もされない、項目１に記載の方法。

（項目９） 前記澱粉粒が未処理澱粉または物理処理澱粉の澱粉粒であり、前記酵素処理澱粉を化学修飾する工程をさらに包含し、該化学修飾した酵素処理澱粉を前記食品材料および水と混合する、項目１に記載の方法。

（項目１０） 前記澱粉粒が未処理澱粉または化学修飾澱粉の澱粉粒であり、前記酵素処理澱粉を物理処理する工程をさらに包含し、該物理処理した酵素処理澱粉を前記食品材料および水と混合する、項目１に記載の方法。

（項目１１） 項目１に記載の方法によって製造される、澱粉ゲル含有食品。

（項目１２） 前記食品が高水分系の食品であり、該食品の水分量が、可食部１００ｇあたり４０ｇより高く９５ｇより低い、項目１１に記載の食品。

（項目１３） 前記食品が、和菓子類、油脂含有食品、ゲル状食品、魚肉・畜肉加工食品、たれ・ソース類および麺類からなる群より選択される、項目１１に記載の食品。

（項目１４） 前記食品が低水分系の食品であり、該食品の水分量が、可食部１００ｇあたり１ｇ以上４０ｇ以下である、項目１１に記載の食品。

（項目１５） 前記食品が、ベーカリー類、洋菓子類およびフライ食品からなる群より選択される、項目１１に記載の食品。

（項目１６） 前記酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、項目１１に記載の食品。

（項目１７） 前記酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、項目１１に記載の食品。

（項目１８） 前記澱粉がタピオカ、トウモロコシまたは小麦に由来する、項目１１に記載の食品。

特定の実施形態ではまた、本発明は、例えば、以下の通りである：
（項目１Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉を含む加熱調理済みの澱粉含有食品であって、
該澱粉含有食品は、食品材料と該酵素処理澱粉とを混合した後に加熱することを含む方法によって製造された食品であり、
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理澱粉のヤング率よりも高いヤング率または該未処理澱粉の破断応力よりも高い破断応力を有するゲルを形成することができる、食品。

（項目２Ａ） 前記未処理澱粉が未処理小麦澱粉であり、前記酵素処理澱粉は酵素処理小麦澱粉であり、
前記酵素処理小麦澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理小麦澱粉のヤング率の１１０％以上５００％以下（一つの実施形態においては１１０％以上３３０％以下）のヤング率または未処理小麦澱粉の破断応力の１１０％以上３００％以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目１Ａに記載の食品。

（項目３Ａ） 前記未処理澱粉が未処理タピオカ澱粉であり、前記酵素処理澱粉は酵素処理タピオカ澱粉であり、
前記酵素処理タピオカ澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理タピオカ澱粉のヤング率の１１０％以上５００％以下（一つの実施形態においては１１０％以上３３０％以下）のヤング率または未処理タピオカ澱粉の破断応力の１１０％以上３００％以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目１Ａに記載の食品。

（項目４Ａ） 前記未処理澱粉が未処理トウモロコシ澱粉であり、前記酵素処理澱粉は酵素処理トウモロコシ澱粉であり、
前記酵素処理トウモロコシ澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理トウモロコシ澱粉のヤング率の１１０％以上５００％以下（一つの実施形態においては１１０％以上３３０％以下）のヤング率または未処理トウモロコシ澱粉の破断応力の１１０％以上３００％以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目１Ａに記載の食品。

（項目５Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理小麦澱粉を含む加熱調理済みの澱粉含有食品であって、
該澱粉含有食品は、食品材料と該酵素処理小麦澱粉とを混合した後に加熱することを含む方法によって製造された食品であり、
該酵素処理小麦澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理小麦澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理小麦澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理小麦澱粉は、レオメータで測定した場合に５．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上８．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下のヤング率または１５０ｇ以上４５０ｇ以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、食品。

（項目６Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理タピオカ澱粉を含む加熱調理済みの澱粉含有食品であって、
該澱粉含有食品は、食品材料と該酵素処理タピオカ澱粉とを混合した後に加熱することを含む方法によって製造された食品であり、
該酵素処理タピオカ澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理タピオカ澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理タピオカ澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理タピオカ澱粉は、レオメータで測定した場合に５．２×１０^５ｄｙｎ／ｃｍ^２以上２．７×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下（一つの実施形態においては５．２×１０^５ｄｙｎ／ｃｍ^２以上１．６×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下）のヤング率または５５ｇ以上１５０ｇ以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、食品。

（項目７Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理トウモロコシ澱粉を含む加熱調理済みの澱粉含有食品であって、
該澱粉含有食品は、食品材料と該酵素処理トウモロコシ澱粉とを混合した後に加熱することを含む方法によって製造された食品であり、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理トウモロコシ澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、レオメータで測定した場合に６．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上９．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下のヤング率または２１０ｇ以上４５０ｇ以下（一つの実施形態においては２２０ｇ以上４５０ｇ以下）の破断応力を有するゲルを形成することができる、食品。

（項目８Ａ） 前記澱粉が、前記食品中でゲルを形成している、項目１Ａ〜７Ａのいずれか１項に記載の食品。

（項目９Ａ） 前記食品が高水分系の食品であり、該食品の水分量が、可食部１００ｇあたり４０ｇより高く９５ｇより低い、項目１Ａ〜８Ａのいずれか１項に記載の食品。

（項目１０Ａ） 前記食品が、和菓子類、油脂含有食品、ゲル状食品、魚肉・畜肉加工食品、たれ・ソース類および麺類からなる群より選択される、項目１Ａ〜９Ａのいずれか１項に記載の食品。

（項目１１Ａ） 前記食品が低水分系の食品であり、該食品の水分量が、可食部１００ｇあたり１ｇ以上４０ｇ以下である、項目１Ａ〜８Ａのいずれか１項に記載の食品。

（項目１２Ａ） 前記食品が、ベーカリー類、洋菓子類およびフライ食品からなる群より選択される、項目１Ａ〜８Ａおよび１１Ａのいずれか１項に記載の食品。

（項目１３Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼおよび澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼからなる群より選択される、項目１Ａ〜１２Ａのいずれか１項に記載の食品。

（項目１４Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼおよびＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属由来のα−アミラーゼからなる群より選択される、項目１３Ａに記載の食品。

（項目１５Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼおよびＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼからなる群より選択される、項目１３Ａに記載の食品。

（項目１６Ａ） 澱粉含有食品の製造方法であって、
食品材料に酵素処理澱粉を添加して混合する工程；および
該混合物を加熱調理する工程
を包含し、
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理澱粉のヤング率よりも高いヤング率または該未処理澱粉の破断応力よりも高い破断応力を有するゲルを形成することができる、方法。

（項目１７Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉であって、
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理澱粉のヤング率よりも高いヤング率または該未処理澱粉の破断応力よりも高い破断応力を有するゲルを形成することができる、澱粉。

（項目１８Ａ） 前記未処理澱粉が未処理小麦澱粉であり、前記酵素処理澱粉は酵素処理小麦澱粉であり、
前記酵素処理小麦澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理小麦澱粉のヤング率の１１０％以上５００％以下（一つの実施形態においては１１０％以上３３０％以下）のヤング率または未処理小麦澱粉の破断応力の１１０％以上３００％以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目１７Ａに記載の澱粉。

（項目１９Ａ） 前記未処理澱粉が未処理タピオカ澱粉であり、前記酵素処理澱粉は酵素処理タピオカ澱粉であり、
前記酵素処理タピオカ澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理タピオカ澱粉のヤング率の１１０％以上５００％以下（一つの実施形態においては１１０％以上３３０％以下）のヤング率または未処理タピオカ澱粉の破断応力の１１０％以上３００％以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目１７Ａに記載の澱粉。

（項目２０Ａ） 前記未処理澱粉が未処理トウモロコシ澱粉であり、前記酵素処理澱粉は酵素処理トウモロコシ澱粉であり、
前記酵素処理トウモロコシ澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理トウモロコシ澱粉のヤング率の１１０％以上５００％以下（一つの実施形態においては１１０％以上３３０％以下）のヤング率または未処理トウモロコシ澱粉の破断応力の１１０％以上３００％以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目１７Ａに記載の澱粉。

（項目２１Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理小麦澱粉であって、
該酵素処理小麦澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理小麦澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理小麦澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理小麦澱粉は、レオメータで測定した場合に５．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上８．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下のヤング率または１５０ｇ以上４５０ｇ以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、澱粉。

（項目２２Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理タピオカ澱粉であって、
該酵素処理タピオカ澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理タピオカ澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理タピオカ澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理タピオカ澱粉は、レオメータで測定した場合に５．２×１０^５ｄｙｎ／ｃｍ^２以上２．７×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下（一つの実施形態においては５．２×１０^５ｄｙｎ／ｃｍ^２以上１．６×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下）のヤング率または５５ｇ以上１５０ｇ以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、澱粉。

（項目２３Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理トウモロコシ澱粉であって、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理トウモロコシ澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、レオメータで測定した場合に６．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上９．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下のヤング率または２１０ｇ以上４５０ｇ以下（一つの実施形態においては２２０ｇ以上４５０ｇ以下）の破断応力を有するゲルを形成することができる、澱粉。

（項目２４Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼおよび澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼからなる群より選択される、項目１８Ａ〜２３Ａのいずれか１項に記載の澱粉。

（項目２５Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼおよびＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属由来のα−アミラーゼからなる群より選択される、項目２４Ａに記載の澱粉。

（項目２６Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼおよびＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼからなる群より選択される、項目２４Ａに記載の澱粉。

（項目２７Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉の製造方法であって、
未処理澱粉の澱粉粒を１０℃以上７０℃以下の温度において澱粉加水分解酵素で処理する工程を包含し、
該澱粉加水分解酵素は、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼおよび澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼからなる群より選択されるである、方法。

（項目２８Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼおよびＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属由来のα−アミラーゼからなる群より選択される、項目２７Ａに記載の方法。

（項目２９Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼおよびＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼからなる群より選択される、項目２７Ａまたは２８Ａに記載の方法。

（項目３０Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、ノボザイムからＡＭＧとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＤＡＮＩＳＣＯからＤＩＡＺＹＭＥ Ｘ４ＮＰとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルコアミラーゼ「アマノ」ＳＤとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルクザイムＡＦ６として市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ由来のアミログルコシダーゼ、新日本化学工業からスミチームとして市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからトランスグルコシダーゼ Ｌ『アマノ』として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＴｒａｎｓｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ Ｌ−５００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、天野エンザイムからビオザイムＡとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＬとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、ダニスコからＡＭＹＬＥＸ Ａ３として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＡＳとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼおよびＳｉｇｍａからイソアミラーゼとして市販されるＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼからなる群より選択される、項目２７Ａ〜２９Ａのいずれか１項に記載の方法。

（項目３１Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、配列番号１、３、５、７、９または１１の塩基配列の相補配列を有する核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされ、かつ澱粉加水分解活性を有し、該ストリンジェントな条件は、５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ（７５０ｍＭ ＮａＣｌ、７５ｍＭ クエン酸三ナトリウム）、５０ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．６）、５×デンハルト溶液（０．２％ ＢＳＡ、０．２％ Ｆｉｃｏｌｌ ４００および０．２％ポリビニルピロリドン）、１０％硫酸デキストラン、および２０μｇ／ｍｌ変性剪断サケ精子ＤＮＡを含む溶液中での６５℃でのハイブリダイゼーション、およびその後の０．１〜２倍濃度のＳＳＣ溶液（１倍濃度のＳＳＣ溶液の組成は、１５０ｍＭ 塩化ナトリウム、１５ｍＭ クエン酸ナトリウムである）での６５℃条件下での洗浄である、項目２７Ａ〜３０Ａのいずれか１項に記載の方法。

（項目３２Ａ） 前記澱粉加水分解酵素が、配列番号２、４、６、８、１０または１２のアミノ酸配列に対して少なくとも９５％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有しかつ澱粉加水分解活性を有する、項目２７Ａ〜３０Ａのいずれか１項に記載の方法。

（項目３３Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉であって、
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該澱粉加水分解酵素が、ノボザイムからＡＭＧとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＤＡＮＩＳＣＯからＤＩＡＺＹＭＥ Ｘ４ＮＰとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルコアミラーゼ「アマノ」ＳＤとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルクザイムＡＦ６として市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ由来のアミログルコシダーゼ、新日本化学工業からスミチームとして市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからトランスグルコシダーゼ Ｌ『アマノ』として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＴｒａｎｓｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ Ｌ−５００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、天野エンザイムからビオザイムＡとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＬとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、ダニスコからＡＭＹＬＥＸ Ａ３として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＡＳとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼおよびＳｉｇｍａからイソアミラーゼとして市販されるＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼからなる群より選択される、澱粉。

（項目３４Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉であって、
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該澱粉加水分解酵素は、配列番号１、３、５、７、９または１１の塩基配列の相補配列を有する核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされ、かつ澱粉加水分解活性を有し、該ストリンジェントな条件は、５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ（７５０ｍＭ ＮａＣｌ、７５ｍＭ クエン酸三ナトリウム）、５０ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．６）、５×デンハルト溶液（０．２％ ＢＳＡ、０．２％ Ｆｉｃｏｌｌ ４００および０．２％ポリビニルピロリドン）、１０％硫酸デキストラン、および２０μｇ／ｍｌ変性剪断サケ精子ＤＮＡを含む溶液中での６５℃でのハイブリダイゼーション、およびその後の０．１〜２倍濃度のＳＳＣ溶液（１倍濃度のＳＳＣ溶液の組成は、１５０ｍＭ 塩化ナトリウム、１５ｍＭ クエン酸ナトリウムである）での６５℃条件下での洗浄である、澱粉。

（項目３５Ａ） 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉であって、
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、
該澱粉加水分解酵素は、配列番号２、４、６、８、１０または１２のアミノ酸配列に対して少なくとも９５％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有しかつ澱粉加水分解活性を有する、澱粉。

本発明によれば、澱粉のゲル形成能を向上させるという特性を有する酵素を用いることにより、従来の澱粉にない「ゲル形成能が強く、かつ高粘度を有する」澱粉を開発することに成功した。

従来のゲル形成能が強い澱粉は、通常の加熱温度帯では十分に膨潤および糊化できないために、食品に添加した場合、粉っぽさが残りやすい。従来のゲル形成能が強い澱粉を十分に膨潤および糊化させるためには、通常の食品での加熱温度帯以上の加熱を必要とする。酸処理した澱粉およびアミロース画分を高めた澱粉に至っては、全く粘度が出ないか、或はほとんど粘度が出ないために、ゲル形成能には優れているがその用途は限定されていた。このような酸処理した澱粉などであっても、本発明の方法によって酵素処理することにより、ある程度の粘度を保持しながらも、従来よりもゲル形成能を向上させることができる。

さらには、ワラビモチ向けに化学処理された澱粉がよく使用されているが、アセチル化処理とリン酸架橋化処理といった併用処理を必要としている。

今回開発した澱粉はこれらの欠点を改良した澱粉であり、原料として未処理澱粉、物理処理澱粉または漂白澱粉を使用し、製造工程のどの段階においても化学修飾をしない条件下で製造した場合、通常の食品への添加、或は澱粉を主原料とする食品において、用途が限定されることなく、「食品扱い」として全ての食品への使用は可能である。

原料として未処理澱粉、物理処理澱粉または漂白澱粉を使用し、製造工程のどの段階においても化学修飾をしない条件下で製造した場合、澱粉加水分解酵素または糖転移酵素を用いて調製した本発明の酵素処理澱粉は、食品添加物の化学修飾された加工澱粉には該当しない。よって、澱粉加水分解酵素または糖転移酵素を用いて調製した本発明の酵素処理澱粉を用いれば、食品添加物未添加にて食品を調製することが可能である。

原料として未処理澱粉を使用し、製造工程のどの段階においても化学修飾も物理処理をしない条件下で酵素処理澱粉を製造した場合、本発明に使用する酵素処理澱粉は、未処理の澱粉よりも高いゲル形成能を有しながら、強制的な結合がされていないために、通常の加熱温度でも十分な糊化に至り、粘度を発現させることが可能である。さらに、得られた糊液は、十分に糊化されているにも関わらず、曳糸性が少ない。本発明の澱粉を高濃度で使用して得られるゲルは、非常に弾力に富んでいる。すなわち、本発明の澱粉を高水分系の食品に添加した場合、ボディを付与することができ、強いゲル形成能により自然な弾力を付与することもできる。一方、本発明の澱粉を低水分系の食品に添加した場合、食品に口解けの良い食感を付与することが可能である。さらに、作業工程上においても、その糊化特性上、制約は少ない。

原料として加工澱粉または物理処理澱粉を使用するか、または食品の製造工程のいずれかの段階において化学修飾もしくは物理処理をする条件下で食品を製造した場合であっても、本発明の食品は、酵素処理をしないで製造された対応する澱粉を使用して製造された場合と比較してゲルが硬くなっており、異なった食感を有する。そのため、本発明により、従来と異なった食感の食品を提供することができる。

以下、本発明を詳細に説明する。

（１．材料）
（１．１ 澱粉粒）
本明細書中では、用語「澱粉粒」とは、結晶状の澱粉分子をいう澱粉粒は、未処理の澱粉粒であってもよく、未処理の澱粉粒を化学修飾または物理処理することによって得られる澱粉粒であってもよい。食品として分類される酵素処理澱粉を使用することが好ましい場合には、使用される澱粉粒は、植物から得られた未処理の澱粉粒である。植物は、アミロプラスト内に澱粉分子を顆粒として（すなわち、大きな結晶として）貯蔵する。この顆粒は澱粉粒と呼ばれる。澱粉粒内では、澱粉分子どうしが水素結合などによって結合している。そのため、澱粉粒はそのままでは水に溶けにくく、消化もされにくい。澱粉粒を水とともに加熱すると膨潤し、分子がほぐれてコロイド状になる。この変化は「糊化」と呼ばれる。澱粉粒の大きさおよび形態は、その澱粉粒が得られた植物によって異なる。例えば、トウモロコシの澱粉粒（コーンスターチ）の平均粒径は約１２μｍ〜約１５μｍであり、他の澱粉粒と比べて小さめで大きさはそろっている。コムギおよびオオムギの澱粉粒は、粒径約２０μｍ〜約４０μｍの大型の澱粉粒と粒径数μｍの小型の澱粉粒の２種の大きさに分かれる。コメではアミロプラスト内に直径数μｍの角ばった澱粉小粒が多数蓄積される複粒構造となる。バレイショの澱粉粒は平均粒径約４０μｍであり、澱粉原料として一般に利用されているものの中では最も大きい。本発明においては、市販されている各種の澱粉粒を使用することが可能である。植物などから澱粉粒を精製するなどの方法により澱粉粒を調製して本発明に使用してもよい。

澱粉粒の状態では澱粉分子どうしが強く結合しているため、酵素が作用しにくい。食品として扱われる酵素処理澱粉を得るための特定の実施形態では、本発明で使用される澱粉粒は、植物から単離または精製されているが、酸処理、化学修飾処理および熱処理を受けていないものである。本明細書中では、用語「未処理」の澱粉粒とは、天然で生成される澱粉粒であって、自然状態で共存している他の成分（例えば、タンパク質、脂質など）から澱粉粒を分離するために必要な処理以外の処理が施されていない澱粉粒をいう。したがって、植物などから不純物を除去して澱粉を精製する工程などの、澱粉粒を調製する方法における各工程は、本明細書中においては、澱粉粒の処理には含まれない。澱粉粒としては、通常市販されている澱粉粒であればどのような澱粉粒でも使用され得る。

別の特定の実施形態では、本発明で使用される澱粉粒は、未処理の澱粉粒に対して化学修飾または物理処理を行うことによって処理された澱粉粒であってもよい。化学修飾された澱粉粒の例としては、アセチル化アジピン酸架橋澱粉、アセチル化酸化澱粉、アセチル化リン酸架橋澱粉、オクテニルコハク酸澱粉ナトリウム、酢酸澱粉、酸化澱粉、漂白澱粉、ヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉、ヒドロキシプロピル澱粉、リン酸架橋澱粉、リン酸化澱粉およびリン酸化モノエステル化リン酸架橋澱粉が挙げられる。「アセチル化アジピン酸架橋澱粉」とは、澱粉を無水酢酸および無水アジピン酸でエステル化して得られたものをいう。「アセチル化酸化澱粉」とは、澱粉を次亜塩素酸ナトリウムで処理した後、無水酢酸でエステル化して得られたものをいう。「アセチル化リン酸架橋澱粉」とは、澱粉をトリメタリン酸ナトリウムまたはオキシ塩化リンおよび無水酢酸または酢酸ビニルでエステル化して得られたものをいう。「オクテニルコハク酸澱粉ナトリウム」とは、澱粉を無水オクテニルコハク酸でエステル化して得られたものをいう。「酢酸澱粉」とは、澱粉を無水酢酸または酢酸ビニルでエステル化して得られたものをいう。「酸化澱粉」とは、澱粉を次亜塩素酸ナトリウムで処理して得られたものであって、厚生労働省告示４８５号記載の純度試験法に準じて試料澱粉中のカルボキシ基（カルボキシル基ともいう）の分析を行った場合にカルボキシ基が１．１％以下であるものをいう。ただし、カルボキシ基の量がこの範囲にあっても「漂白澱粉」は「酸化澱粉」の定義には含まれない。「漂白澱粉」とは、澱粉を次亜塩素酸ナトリウムで処理して得られたものであって、厚生労働省告示４８５号記載の純度試験法に準じて試料澱粉中のカルボキシ基の分析を行った場合にカルボキシ基が０．１％以下であるものであって、厚生労働省告示４８５号記載の酸化澱粉の「確認試験（３）」による試験結果が陰性でかつ粘度等の澱粉の性質に生じた変化が酸化によるものでないことを合理的に説明できるものをいう。カルボキシ基の量が０．１％以下であっても粘度等の澱粉の性質が天然澱粉から変化しているものは酸化澱粉に分類され、日本では食品としては取り扱われず、食品添加物として取り扱われる。「ヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉」とは、澱粉をトリメタリン酸ナトリウムまたはオキシ塩化リンでエステル化し、酸化プロピレンでエーテル化して得られたものをいう。「ヒドロキシプロピル澱粉」とは、澱粉を酸化プロピレンでエーテル化して得られたものをいう。「リン酸架橋澱粉」とは、澱粉をトリメタリン酸ナトリウムまたはオキシ塩化リンでエステル化して得られたものをいう。「リン酸化澱粉」とは、澱粉をオルトリン酸、そのカリウム塩もしくはナトリウム塩またはトリポリリン酸ナトリウムでエステル化して得られたものをいう。「リン酸モノエステル化リン酸架橋澱粉」とは、澱粉をオルトリン酸、そのカリウム塩もしくはナトリウム塩またはトリポリリン酸ナトリウムでエステル化し、トリメタリン酸ナトリウムまたはオキシ塩化リンでエステル化して得られたものをいう。

物理処理された澱粉粒の種類の例としては、湿熱処理澱粉および熱抑制澱粉が挙げられる。

本発明において使用される澱粉粒の種類は、地上澱粉であっても地下澱粉であってもよい。地下澱粉の例としては、タピオカ澱粉、馬鈴薯澱粉、甘藷澱粉、くず澱粉などが挙げられる。地上澱粉の例としては、小麦澱粉、コーンスターチ（例えば、通常のコーンスターチおよびワキシーコーンスターチ）、米澱粉（例えば、もち米澱粉および粳米澱粉）、豆類澱粉（例えば、緑豆澱粉、エンドウ豆澱粉、小豆澱粉およびソラマメ澱粉）、アマランサス澱粉などが挙げられる。本発明において使用される澱粉粒は、好ましくはタピオカ、トウモロコシまたは小麦由来の澱粉である。澱粉粒として未処理の澱粉を使用する場合には、未処理のタピオカ澱粉、未処理のトウモロコシ澱粉または未処理の小麦澱粉を使用することが好ましい。澱粉粒として化工澱粉を使用する場合には、タピオカ澱粉、トウモロコシ澱粉または小麦澱粉の、アセチル化アジピン酸架橋澱粉、アセチル化酸化澱粉、アセチル化リン酸架橋澱粉、オクテニルコハク酸澱粉ナトリウム、酢酸澱粉、酸化澱粉、漂白澱粉、ヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉、ヒドロキシプロピル澱粉、リン酸架橋澱粉、リン酸化澱粉またはリン酸モノエステル化リン酸架橋澱粉を使用することが好ましい。物理処理澱粉を使用する場合には、タピオカ澱粉、トウモロコシ澱粉または小麦澱粉の、湿熱処理澱粉または熱抑制澱粉であることが好ましい。

澱粉は、その由来によって構造が微妙に異なるため、由来によって物性の特徴が異なる。例えば、未処理の小麦澱粉は、ゲル形成能が高いが、糊液の粘度は低く、糊液は不透明である。未処理のタピオカ澱粉は、ゲル形成能は低いが糊液の粘度は高く、糊液の透明感も高く、さらに老化性は中程度である。未処理のタピオカ澱粉は特に、安価でかつ糊液が透明であるので添加しやすいという利点があるが、ゲル形成能が低いため用途が限定される。また、未処理の天然の小麦澱粉は糊液の粘度が低いために粘度を必要とする用途には使用できなかった。未処理のコーンスターチは、ゲル形成能は高いが、糊液の粘度はやや低く、糊液は不透明であり、老化性が高い。

化学修飾は、未処理の澱粉粒の物性を改変する。例えば、リン酸架橋、アジピン酸架橋などの架橋は、一般に、得られる澱粉粒を使用して形成されるゲルを、未処理の澱粉粒を使用して形成されるゲルよりも硬くし、濁りを増すことが多い。ヒドロキシプロピル化、アセチル化および酸化処理は、一般に、得られる澱粉粒を使用して形成されるゲルを、未処理の澱粉粒を使用して形成されるゲルよりも透明度を向上させ、ゲルを軟らかくすることが多い。オクテニルコハク酸処理は、一般に、得られる澱粉粒を使用して形成されるゲルが油を含むことを可能にすることができる。

物理処理もまた、未処理の澱粉粒の物性を改変する。例えば、湿熱処理は、一般に、得られる澱粉粒を使用して形成されるゲルを、未処理の澱粉粒を使用して形成されるゲルよりも硬くすることが多く、糊液粘度を減少させることが多い。例えば、熱抑制処理は、一般に、得られる澱粉粒を使用して形成されるゲルを、未処理の澱粉粒を使用して形成されるゲルよりも硬くすることが多い。また、ドライ加熱処理時間が長いものは、高架橋澱粉のような、低い糊液粘度を示すことが多い。

本発明において使用される澱粉粒は、なるべく不純物を含まないことが好ましい。澱粉粒中の不純物の含有量は、好ましくは約１０重量％以下、より好ましくは約５重量％以下、さらに好ましくは約１重量％以下である。

（１．２ 酵素）
本発明で使用可能な酵素は澱粉加水分解酵素または糖転移酵素である。澱粉加水分解酵素はα−アミラーゼ、β−アミラーゼ、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、プルラナーゼおよびα−グルコシダーゼに大別される。しかし、同じ酵素（たとえばα−アミラーゼ）に分類される酵素であっても、その生産菌が異なる場合、酵素の反応特異性や基質特異性などの特徴は異なると考えられている。これら澱粉加水分解酵素および糖転移酵素は、動物、微生物、植物に非常に広く分布しているので、澱粉加水分解酵素および糖転移酵素の種類は無限にあるといえる。

本発明の澱粉の製造に使用可能な澱粉加水分解酵素は、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼおよび澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼからなる群より選択される澱粉加水分解酵素である。本明細書中では、「澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼ」とは、下記に記載の判定方法で測定した場合に、酵素処理後の澱粉のヤング率または破断応力が、酵素処理前の澱粉のヤング率または破断応力よりも１０％以上高いα−アミラーゼである。本発明で使用される澱粉加水分解酵素は、好ましくはα−アミラーゼ、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、またはα−グルコシダーゼに分類される酵素である。β−アミラーゼまたはプルラナーゼに分類される酵素は好ましくない。アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼまたはα−グルコシダーゼに分類される酵素であれば、澱粉粒に作用させた場合に高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉を生成できると考えられる。しかしながら、α−アミラーゼに分類される酵素の場合、すべての酵素が好適に利用できるわけではなく、澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼを選択する必要があり、この活性を有さないα−アミラーゼを用いても、本発明の澱粉を製造することはできない。

α−アミラーゼに分類される酵素が、澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼであるかどうかの判断は、以下の判定方法により判別することが出来る。

本発明の澱粉の製造に使用可能な糖転移酵素の例は、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼである。

（１．２．１ 澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼの判定方法）
澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼは、以下の方法により判別することが出来る。小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え懸濁し、ここに各酵素を添加する。反応により懸濁液中に遊離される還元糖量を測定して分解率を求め、分解率が１５％に達したところで澱粉粒をろ過で回収し、水洗し、そして乾燥する。このようにして得られた酵素処理澱粉を用い、レオメータ分析にてヤング率及び破断応力を求める。酵素処理後の澱粉のヤング率または破断応力が、酵素処理前の澱粉のヤング率または破断応力よりも１０％以上上昇している場合、当該酵素は澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼと判定される。例として、以下の表１Ａに各種澱粉加水分解酵素の判定結果を示す。

このように、多種類のα−アミラーゼについて澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するか否かを容易に決定することができる。なお、レオメータ分析の具体的方法は以下の１．２．２に記載の通りである。

（１．２．２ レオメータ分析の具体方法）
乾物換算で２０重量％濃度となるように、澱粉糊液を作製し、折幅４５ｍｍのクレハロンケーシングに充填する。これを９０℃まで１℃／ｍｉｎで昇温し、３０分間９０℃で保持する。その後、２０℃の恒温水槽にて３０分間放冷し、続いて冷蔵庫にて５℃まで冷却した。冷却後、５℃で１６時間冷蔵保管し、その後室温（約２５℃）で４時間放置して室温に戻した後に、レオテック社製レオメータ（ＲＴ−２０１０Ｊ−ＣＷ）で測定する。レオメータの測定条件は、試験項目として破断試験、試料の高さを２５ｍｍとし、粘性用球Φ５（直径５ｍｍ、面積１９．６３５ｍｍ^２）のアダプターを用い、試料の移動速度（破断速度）を６ｃｍ／ｍｉｎで測定する。この時、澱粉ゲルの硬さを破断応力（ｇ）およびヤング率（ｄｙｎ／ｃｍ^２）で評価する。

（１．２．３ 本願で使用される酵素の好適な例）
本発明の澱粉を製造するためには、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼ、およびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される酵素が使用される。

特定の実施形態では、酵素は、アミログルコシダーゼ；イソアミラーゼ；α−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される。

特定の実施形態では、酵素は、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される。

好ましい実施形態では、酵素は、ノボザイムからＡＭＧとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＤＡＮＩＳＣＯからＤＩＡＺＹＭＥ Ｘ４ＮＰとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルコアミラーゼ「アマノ」ＳＤとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルクザイムＡＦ６として市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ由来のアミログルコシダーゼ、新日本化学工業からスミチームとして市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからトランスグルコシダーゼ Ｌ『アマノ』として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＴｒａｎｓｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ Ｌ−５００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、天野エンザイムからビオザイムＡとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＬとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、ダニスコからＡＭＹＬＥＸ Ａ３として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＡＳとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼ、Ｓｉｇｍａからイソアミラーゼとして市販されるＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼ、ノボザイムからＴｏｒｕｚｙｍｅとして市販されるＢａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ、および天野エンザイムからコンチザイムとして市販されるＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ）由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される。

特定の好ましい実施形態では、酵素は澱粉加水分解酵素であり、この澱粉加水分解酵素は、配列番号１、３、５、７、９または１１の塩基配列の相補配列を有する核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされ、かつ澱粉加水分解活性を有し、該ストリンジェントな条件は、５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ（７５０ｍＭ ＮａＣｌ、７５ｍＭ クエン酸三ナトリウム）、５０ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．６）、５×デンハルト溶液（０．２％ ＢＳＡ、０．２％ Ｆｉｃｏｌｌ ４００および０．２％ポリビニルピロリドン）、１０％硫酸デキストラン、および２０μｇ／ｍｌ変性剪断サケ精子ＤＮＡを含む溶液中での６５℃でのハイブリダイゼーション、およびその後の０．１〜２倍濃度のＳＳＣ溶液（１倍濃度のＳＳＣ溶液の組成は、１５０ｍＭ 塩化ナトリウム、１５ｍＭ クエン酸ナトリウムである）での６５℃条件下での洗浄である。

好ましい実施形態では、澱粉加水分解酵素は、配列番号２、４、６、８、１０または１２のアミノ酸配列に対して少なくとも９５％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有しかつ澱粉加水分解活性を有する。

（１．２．４ α−アミラーゼ）
α−アミラーゼは多くの微生物、動物および植物に存在する。α−アミラーゼを産生する微生物の例としては、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属（例えば、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ａｗａｍｏｒｉ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｆｌａｖｕｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｋａｗａｃｈｉｉ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍなど）、；Ｂａｃｉｌｌｕｓ属（例えば、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｃａｌｄａｒｉｕｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓなど）；Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ属（例えば、Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ、Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｔｈｅｒｍｏｄｅｎｉｔｒｉｆｉｃａｎｓ、Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｔｈｅｒｍｏｄｅｎｉｔｒｉｆｉｃａｎｓなど）；Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属（例えばＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｖｏｒｕｓ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｌｌｏｂｉｏｓｕｓ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｎｉｈｏｔｉｖｏｒａｎｓなど）；他に、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｐ．、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ｆｕｒｉｏｓｕｓ、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｍｉｃｒｏｓｐｏｒｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ ｍａｒｉｔｉｍａ、Ｖｉｂｒｉｏ ｓｐ．などが挙げられる。その他に、動物由来のα−アミラーゼは、ヒト膵臓、ヒト唾液、ヒト尿、豚膵臓、ウシ膵臓、コイ腸管などで、植物由来のα−アミラーゼは、大麦、イネ、小麦、オート麦、ライ麦、大豆、ソラマメ中に存在することが確認されている。α−アミラーゼを産生する生物はこれらに限定されない。

α−アミラーゼは、市販のものであっても、当該分野で公知の方法によりこれらの生物から調製されてもよく、またはこれらの生物のα−アミラーゼのアミノ酸配列もしくは塩基配列に基づいて遺伝子組換え法により調製されてもよく、化学合成されてもよい。α−１，４−グルコシド結合をエンド型で分解するという性質を有する限り、当該分野で公知の任意のα−アミラーゼが使用され得る。

本発明で使用されるα−アミラーゼは、好ましくは、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属のα−アミラーゼであり、最も好ましくは、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来またはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼである。

Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来の代表的なα−アミラーゼをコードするヌクレオチド配列を配列番号１に示し、そのアミノ酸配列を配列番号２に示す。Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来の代表的なα−アミラーゼをコードするヌクレオチド配列を配列番号３に示し、そのアミノ酸配列を配列番号４に示す。近縁種の間でのα−アミラーゼは非常に高い相同性を有し、同様の酵素活性を示すと考えられる。そのため、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼは、配列番号２と非常に相同性の高いアミノ酸配列を有し、同様の酵素活性を示すと考えられる。市販のＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼが澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有することが示されているため、配列番号２のアミノ酸配列を有するα−アミラーゼおよびそれに対して相同性が高いアミノ酸配列を有するα−アミラーゼについても澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有すると考えられる。同様に、市販のＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼが澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有することが示されているため、配列番号２のアミノ酸配列を有するα−アミラーゼおよびそれに対して相同性が高いアミノ酸配列を有するα−アミラーゼについても澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有すると考えられる。

本発明で使用されるα−アミラーゼは、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ由来のアミラーゼではない。Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ由来のアミラーゼは、高粘度でかつゲル形成能を有する澱粉を製造することができないからである。

多数のα−アミラーゼが市販されている。市販のα−アミラーゼの例を以下に記載する：ビオザイムＦ１ＯＳＤ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；天野エンザイム（株））、ビオザイムＡ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；天野エンザイム（株））、コクラーゼ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；三菱化学フーズ（株））、スミチームＬ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；新日本化学工業（株））、ＡＭＹＬＥＸ Ａ３（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；ダニスコジャパン（株））、グリンドアミルＡ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；ダニスコジャパン（株））、ＶＥＲＯＮ ＡＸ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；（株）樋口商会）、ＶＥＲＯＮ ＧＸ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；（株）樋口商会）、ＶＥＲＯＮ Ｍ４（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；（株）樋口商会）、ＶＥＲＯＮ ＥＬＳ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；（株）樋口商会）、スミチーム ＡＳ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；新日本化学工業（株））、ベイクザイムＰ５００（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；日本シイベルヘグナー（株））、α−Ａｍｙｌａｓｅ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ；シグマアルドリッチ）。

このような市販のα−アミラーゼをアミノ酸分析してそのアミノ酸配列を決定し、そのアミノ酸配列に基づいてＤＮＡ配列を設計し、そのＤＮＡ配列を大腸菌などに導入して市販のα−アミラーゼと同じアミノ酸配列を有するα−アミラーゼを生産することが可能である。

（１．２．５ アミログルコシダーゼ）
アミログルコシダーゼとは、澱粉などの糖鎖の非還元末端の１，４−α結合を加水分解してβ−Ｄ−グルコースを生成する酵素をいう。アミログルコシダーゼは、α−１，４−グルコシド鎖を非還元末端から加水分解し、α−１，６−グルコシド鎖も速度は遅いが分解する。アミログルコシダーゼは系統名をグルカン１，４−α−グルコシダーゼという。アミログルコシダーゼは別名を、エキソ−１，４−α−Ｄ−グルコシダーゼ、１，４−α−Ｄ−グルカングルコヒドロラーゼ、グルコアミラーゼ、γ−アミラーゼ、リソソーマルα−グルコシダーゼまたは酸性マルターゼという。アミログルコシダーゼは、ＥＣ３．２．１．３に分類される。

アミログルコシダーゼは多くの微生物、動物および植物に存在する。アミログルコシダーゼを産生する微生物の例としては、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属（例えば、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｃａｎｄｉｄｕｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｔｅｒｒｅｕｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ａｗａｍｏｒｉ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｐｈｏｅｎｉｃｉｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓａｉｔｏｉなど）；Ｃａｎｄｉｄａ属（例えば、Ｃａｎｄｉｄａ ａｎｔａｒｃｔｉｃａ、Ｃａｎｄｉｄａ ｔｓｕｋｕｂａｅｎｓｉｓなど）；Ｒｈｉｚｏｐｕｓ属（例えば、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｍａｒ、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｊａｖａｎｉｃｕｓ、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｏｌｉｇｏｓｐｏｒｕｓ、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅなど）；Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属（例えばＳａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｄｉａｓｔａｔｉｃｕｓ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｄｉａｓｔａｔｉｃｕｓ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｆｉｂｕｌｉｇｅｒａ）；他にはＣｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｔｈｅｒｍｏａｍｙｌｏｌｙｔｉｃｕｍ、Ｃｌａｄｏｓｐｏｒｉｕｍ ｒｅｓｉｎａｅ、Ｌｅｎｔｉｎｕｓ ｅｄｏｄｅｓ、Ｍｕｃｏｒ ｒｏｕｘｉａｎｕｓ、Ｍａｇｎａｐｏｒｔｈｅ ｇｒｉｓｅａ、Ｍｏｎａｓｃｕｓ ｋａｏｌｉａｎｇ、Ｐａｅｃｉｌｏｍｙｃｅｓ ｖａｒｉｏｔｉ、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｏｘａｌｉｃｕｍ、Ｔｈｅｒｍｏｍｙｃｅｓ ｌａｎｕｇｉｎｏｓｕｓ、Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉなどが挙げられる。その他に、動物由来のアミログルコシダーゼは、ヒト、ラット、マウスの小腸粘膜内に、植物由来のアミログルコシダーゼでは、ビートなどに存在することが確認されている。アミログルコシダーゼを産生する生物はこれらに限定されない。

アミログルコシダーゼは、市販のものであっても、当該分野で公知の方法によりこれらの生物から調製されてもよく、またはこれらの生物のアミログルコシダーゼのアミノ酸配列もしくは塩基配列に基づいて遺伝子組換え法により調製されてもよく、化学合成されてもよい。α−１，４−グルコシド結合及びα−１，６−グルコシド結合をエキソ型で非還元末端側からグルコース単位で分解し、β−グルコースを生成する性質を有する限り、当該分野で公知の任意のアミログルコシダーゼが使用され得る。

本発明で使用されるアミログルコシダーゼは、好ましくは、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属のアミログルコシダーゼ、またはＲｉｚｏｐｕｓ属のアミログルコシダーゼであり、最も好ましくはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、またはＲｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ由来のアミログルコシダーゼである。

Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来の代表的なアミログルコシダーゼをコードするヌクレオチド配列を配列番号５に示し、そのアミノ酸配列を配列番号６に示す。近縁種の間でのα−アミラーゼは非常に高い相同性を有し、同様の酵素活性を示すと考えられる。そのため、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼは、配列番号６と非常に相同性の高いアミノ酸配列を有し、同様の酵素活性を示すと考えられる。市販のＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼが澱粉加水分解活性を有することが示されているため、配列番号６のアミノ酸配列を有するアミログルコシダーゼおよびそれに対して相同性が高いアミノ酸配列を有するアミログルコシダーゼについても澱粉加水分解活性を有すると考えられる。

本発明で使用されるアミログルコシダーゼは、Ｃａｎｄｉｄａ ｔｓｕｋｕｂａｅｎｓｉｓ由来のアミログルコシダーゼではない。Ｃａｎｄｉｄａ ｔｓｕｋｕｂａｅｎｓｉｓ由来のアミログルコシダーゼは、高粘度でかつゲル形成能を有する澱粉を製造することができないからである。

多数のアミログルコシダーゼが市販されている。市販のアミログルコシダーゼの例を以下に記載する：グルクＳＧ（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ；天野エンザイム（株））、グルクザイムＡＦ６（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ；天野エンザイム（株））、グルクザイムＮＬ４．２（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；天野エンザイム（株））、酒造用グルコアミラーゼ「アマノ」ＳＤ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；天野エンザイム（株））、ＧＯＤＯ−ＡＮＧＨ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；合同酒精（株））、ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；ジェネンコア協和（株））、ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；ジェネンコア協和（株））、スミチーム（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅ；新日本化学工業（株））、スミチームＳＧ（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｓｐ．；新日本化学工業（株））、スミチームＨＧ（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅ；新日本化学工業（株））、グルコチーム＃２００００（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｓｐ．；ナガセケムテックス（株））、ＡＭＧ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；ノボザイムズジャパン（株））、グルターゼＡＮ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；エイチビイアイ（株））、ユニアーゼＫ，２Ｋ（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｓｐ．；ヤクルト薬品工業（株））、ユニアーゼ３０（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｓｐ．；ヤクルト薬品工業（株））、ユニアーゼ６０Ｆ（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｓｐ．；ヤクルト薬品工業（株））、マグナックスＪＷ−２０１（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｓｐ．；洛東化成工業（株））、グリンドアミルＡＧ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｐ．；ダニスコジャパン（株））、ＤＩＡＺＹＭＥ Ｘ４ＮＰ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；ダニスコジャパン（株））、ベイクザイムＡＧ８００（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；日本シイベルヘグナー（株））、Ａｍｙｌｏｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；シグマアルドリッチ）、Ａｍｙｌｏｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｓｐ．；シグマアルドリッチ）、Ｇｌｕｃｏａｍｙｌａｓｅ（起源Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｓｐ．；東洋紡績株式会社）。

このような市販のアミログルコシダーゼをアミノ酸分析してそのアミノ酸配列を決定し、そのアミノ酸配列に基づいてＤＮＡ配列を設計し、そのＤＮＡ配列を大腸菌などに導入して市販のアミログルコシダーゼと同じアミノ酸配列を有するアミログルコシダーゼを生産することが可能である。

（１．２．６ イソアミラーゼ）
イソアミラーゼとは、アミロペクチン、グリコーゲンなどの分岐点のα−１，６−グルコシド結合を分解してアミロース様直鎖多糖類を生成する酵素をいう。イソアミラーゼは別名を、グリコーゲン６−グルカノヒドロラーゼという。イソアミラーゼは、ＥＣ３．２．１．６８に分類される。イソアミラーゼは、イソアミラーゼを産生する任意の生物由来であり得る。

イソアミラーゼは多くの微生物、動物および植物に存在する。イソアミラーゼを産生する微生物の例としては、Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．；Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．；他に、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ、Ｓｕｌｆｏｌｏｂｕｓ ｓｏｌｆａｔａｒｉｃｕｓなどが挙げられる。その他に、動物由来のイソアミラーゼは、ヒト膵臓などに、植物由来のイソアミラーゼは、イネ（Ｏｒｙｚａ ｓａｔｉｖａ）、バレイショ塊茎（Ｓｏｌａｎｕｍ ｔｕｂｅｒｏｓｕｍ）、シロイヌナズナ（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ）などに存在することが確認されている。イソアミラーゼを産生する生物はこれらに限定されない。

イソアミラーゼは、市販のものであっても、当該分野で公知の方法によりこれらの生物から調製されてもよく、またはこれらの生物のイソアミラーゼのアミノ酸配列もしくは塩基配列に基づいて遺伝子組換え法により調製されてもよく、化学合成されてもよい。アミロペクチンのα−１，６−グルコシド結合をエンド型で分解するという性質を有する限り、当該分野で公知の任意のイソアミラーゼが使用され得る。

本発明で使用されるイソアミラーゼは、好ましくは、Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属、又はＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ属のイソアミラーゼであり、より好ましくはＦｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来のイソアミラーゼ、又はＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼである。

Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来の代表的なイソアミラーゼをコードするヌクレオチド配列を配列番号７に示し、そのアミノ酸配列を配列番号８に示す。Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来の代表的なイソアミラーゼをコードするヌクレオチド配列を配列番号９に示し、そのアミノ酸配列を配列番号１０に示す。近縁種の間でイソ−アミラーゼは非常に高い相同性を有し、同様の酵素活性を示すと考えられる。そのため、Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来のイソアミラーゼは、配列番号８と非常に相同性の高いアミノ酸配列を有し、同様の酵素活性を示すと考えられる。市販のＦｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来のイソアミラーゼが澱粉加水分解活性を有することが示されているため、配列番号８のアミノ酸配列を有するイソアミラーゼおよびそれに対して相同性が高いアミノ酸配列を有するイソアミラーゼについても澱粉加水分解活性を有すると考えられる。同様に、市販のＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼが澱粉加水分解活性を有することが示されているため、配列番号１０のアミノ酸配列を有するイソアミラーゼおよびそれに対して相同性が高いアミノ酸配列を有するイソアミラーゼについても澱粉加水分解活性を有すると考えられる。

多数のイソアミラーゼが市販されている。市販のイソアミラーゼの例を以下に記載する：ＧＯＤＯ−ＦＩＡ（起源Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｏｄｏｒａｔｕｍ；合同酒精（株））、Ｉｓｏａｍｙｌａｓｅ（起源Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｐ．；シグマアルドリッチ）。

このような市販のイソアミラーゼをアミノ酸分析してそのアミノ酸配列を決定し、そのアミノ酸配列に基づいてＤＮＡ配列を設計し、そのＤＮＡ配列を大腸菌などに導入して市販のイソアミラーゼと同じアミノ酸配列を有するイソアミラーゼを生産することが可能である。

（１．２．７ α−グルコシダーゼ）
α−グルコシダーゼとは、非還元末端のα−１，４−グルコシド結合を加水分解してα−グルコースを生成する酵素をいう。α−グルコシダーゼは系統名をα−Ｄ−グルコシドグルコヒドロラーゼという。α−グルコシダーゼは別名をマルターゼ、グルコインベルターゼまたはグルコシドスクラーゼという。α−Ｄ−グルコシダーゼは、ＥＣ３．２．１．２０に分類される。

α−グルコシダーゼは多くの微生物、動物および植物に存在する。α−グルコシダーゼを産生する微生物の例としては、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属（例えば、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕs ａｗａｍｏｒｉ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｆｕｍｉｇａｔｕｓ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｄｕｌａｎｓ、など）；Ｂａｃｉｌｌｕｓ属（例えば、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｙｔｉｃｕｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃａｌｄｏｖｅｌｏｘ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｔｈｅｒｍｏｇｌｕｃｏｓｉｄｉｕｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｂｒｅｖｉｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ；Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ属（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｂｒｅｖｉｓなど）；Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ属（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｂｒｅｖｉｃｏｍｐａｃｔｕｍ、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｃｉｔｒｉｎｕｍ、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｏｘａｌｉｃｕｍ、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｐｕｒｐｕｒｏｇｅｎｕｍ）；Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属（Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ｆｕｒｉｏｓｕｓ、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ｗｏｅｓｅｉなど）、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃａｒｌｓｂｅｒｇｅｎｓｉｓ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｆｉｂｕｌｉｇｅｒａ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｏｖｉｆｏｒｍｉｓ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃａｒｌｓｂｅｒｇｅｎｓｉｓ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｌｏｇｏｓ、など）；他に、Ｃａｎｄｉｄａ ｔｒｏｐｉｃａｌｉｓ、Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ、Ｓｕｌｆｏｌｏｂｕｓ ｓｏｌｆａｔａｒｉｃｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ ｍａｒｉｔｉｍａ、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉなどが挙げられる。動物由来のα−グルコシダーゼは、軟体動物、甲殻類、昆虫などの無脊椎動物から魚類、両棲類、爬虫類、鳥類、哺乳類などの脊椎動物に至るまで広く存在し、植物類由来のα−グルコシダーゼは、豆類、イネ、ソバ、トウモロコシ、テンサイ種子などに存在することが確認されている。なお、α−グルコシダーゼを産生する生物はこれらに限定されない。

α−グルコシダーゼは、市販のものであっても、当該分野で公知の方法によりこれらの生物から調製されてもよく、またはこれらの生物のα−グルコシダーゼのアミノ酸配列もしくは塩基配列に基づいて遺伝子組換え法により調製されてもよく、化学合成されてもよい。α−１，４−及びα−１，６−グルコシド結合をエキソ型で非還元末端側からグルコース単位で分解し、αグルコースを生成する性質を有する限り、当該分野で公知の任意のα−グルコシダーゼが使用され得る。

本発明で使用されるα−グルコシダーゼは、好ましくは、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属のα−グルコシダーゼであり、より好ましくはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼである。

Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来の代表的なα−グルコシダーゼをコードするヌクレオチド配列を配列番号１１に示し、そのアミノ酸配列を配列番号１２に示す。近縁種の間でのα−アミラーゼは非常に高い相同性を有し、同様の酵素活性を示すと考えられる。そのため、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼは、配列番号１２と非常に相同性の高いアミノ酸配列を有し、同様の酵素活性を示すと考えられる。市販のＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−グルコシダーゼが澱粉加水分解活性を有することが示されているため、配列番号１２のアミノ酸配列を有するα−グルコシダーゼおよびそれに対して相同性が高いアミノ酸配列を有するα−グルコシダーゼについても澱粉加水分解活性を有すると考えられる。

多数のα−グルコシダーゼが市販されている。市販のα−グルコシダーゼの例を以下に記載する：トランスグルコシダーゼＬ ５００（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ；ジェネンコア協和（株））、トランスグルコシダーゼＬ『アマノ』（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；天野エンザイム（株））、α−Ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ（起源Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ；シグマアルドリッチ）、α−Ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ（起源ｒｉｃｅ；シグマアルドリッチ）、α−Ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ（起源Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ；シグマアルドリッチ）、α−Ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ（起源Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ；シグマアルドリッチ）、α−Ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ（起源Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍ；東洋紡績株式会社）。

このような市販のα−グルコシダーゼをアミノ酸分析してそのアミノ酸配列を決定し、そのアミノ酸配列に基づいてＤＮＡ配列を設計し、そのＤＮＡ配列を大腸菌などに導入して市販のα−グルコシダーゼと同じアミノ酸配列を有するα−グルコシダーゼを生産することが可能である。

（１．２．８ サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ）
サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼは、ＣＧＴａｓｅとも呼ばれており、ＥＣ２．４．１．１９に分類される。ＣＧＴａｓｅは、マルトオリゴ糖の糖転移反応（すなわち、不均一化反応）を触媒し得る酵素である。ＣＧＴａｓｅは、供与体分子の非還元末端の６〜８個のグルコース鎖を認識してこの部分を環状化させるように転移反応を行い、重合度６〜８個のシクロデキストリンと非環状リミットデキストリンとを生成する酵素である。本発明で使用され得るＣＧＴａｓｅの例としては、周知の微生物由来のＣＧＴａｓｅ、あるいは市販のＣＧＴａｓｅが用いられ得る。ＣＧＴａｓｅは、好ましくは、ノボザイムからＴｏｒｕｚｙｍｅとして市販されるＢａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ、および天野エンザイムからコンチザイムとして市販されるＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓとも分類される）由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ（至適ｐＨ６．０）からなる群より選択される。

ＣＧＴａｓｅは、市販のものであっても、当該分野で公知の方法によりＣＧＴａｓｅ産生生物から調製されてもよく、またはＣＧＴａｓｅ産生生物のＣＧＴａｓｅのアミノ酸配列もしくは塩基配列に基づいて遺伝子組換え法により調製されてもよく、化学合成されてもよい。糖転移活性を有し、かつ澱粉のゲル形成能を向上させる活性を有する限り、当該分野で公知の任意のＣＧＴａｓｅが使用され得る。

（１．２．９ 酵素の併用）
本発明の澱粉を製造する際には、複数種類の澱粉加水分解酵素または糖転移酵素を組み合わせて作用させてもよい。特にα−グルコシダーゼは、単独では澱粉粒と反応しにくいために、α−アミラーゼと併用することが好ましい。

（１．２．１０ 酵素についての共通の説明）
本明細書中では、酵素がある生物に「由来する」とは、その生物から直接単離したことのみを意味するのではなく、その生物が持っている酵素のアミノ酸配列またはそれをコードする塩基配列に基づいて同じアミノ酸配列を有する酵素を別の生物で作製することも意味する。例えば、その生物から入手したその酵素をコードする遺伝子を大腸菌に導入して、その大腸菌から酵素を単離する場合も、その酵素はその生物に「由来する」という。

本明細書においては、澱粉粒に対して酵素を大過剰に添加する。そのため、酵素の量が重量％で表される。単位（Ｕ）で表す必要はない。

多数のα−アミラーゼ、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼおよびシクロデキストリングルカノトランスフェラーゼが公知であり、従って、これらの酵素について多数の天然の塩基配列およびアミノ酸配列が公知である。天然の配列とはわずかに異なる配列を有する改変体（いわゆる、対立遺伝子改変体）が天然に存在し得ることも公知である。本発明の方法においては、上記に例示した酵素以外にも、所望の活性を有する限り、このような、天然に存在する改変体および天然の酵素に対して人工的に変異を導入した改変体も用い得る。改変体酵素は、改変を導入する前の酵素と同等以上の活性を有することが好ましい。例えば、本発明で用いられる澱粉加水分解酵素のアミノ酸配列は、本願の実施例で使用した澱粉加水分解酵素のアミノ酸配列または配列番号２、４、６、８、１０もしくは１２のアミノ酸配列（すなわち、対照アミノ酸配列）と同一、すなわち、１００％同一であってもよく、別の実施形態では、このアミノ酸配列は、対照アミノ酸配列と比較してある一定の数までアミノ酸が変化していてもよい。このような変化は、少なくとも１個（好ましくは１または数個；上限は特にないが、例えば、約５０個以下、約４０個以下、約３０個以下、約２０個以下、約１０個以下など）のアミノ酸の欠失、置換（保存的置換および非保存的置換を含む）または挿入からなる群より選択され得る。この変化は対照アミノ酸配列のアミノ末端もしくはカルボキシ末端の位置で生じてもよく、またはこれら末端以外のどの位置で生じてもよい。アミノ酸残基の変化は、１残基ずつ点在していてもよく、数残基連続していてもよい。当業者は、所望の性質を有する目的の酵素を容易に選択することができる。あるいは、目的の酵素をコードする遺伝子を直接化学合成してもよい。そのような化学合成の方法は、当該分野において周知である。

酵素の改変は、当該分野で周知の方法を用いて、例えば、部位特異的変異誘発法、変異原を用いた変異誘発法（対象遺伝子を亜硝酸塩などの変異剤で処理すること、紫外線処理を行うこと）、エラープローンＰＣＲを行うことなどによって行われ得る。目的の変異を得やすい点から、部位特異的変異誘発を用いることが好ましい。部位特異的変異誘発を用いれば、目的とする部位で目的とする改変を導入することができるからである。あるいは、目的とする配列をもつ核酸分子を直接合成してもよい。そのような化学合成の方法は、当該分野において周知である。部位特異的変異誘発の手法は、例えば、Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｖｏｌ．１０，ｐｐ．６４８７−６５００（１９８２）に記載される。

上記のような改変を設計する際に、アミノ酸の疎水性指数が考慮され得る。タンパク質における相互作用的な生物学的機能を与える際の疎水性アミノ酸指数の重要性は、一般に当該分野で認められている（Ｋｙｔｅ．ＪおよびＤｏｏｌｉｔｔｌｅ，Ｒ．Ｆ．Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１５７（１）：１０５−１３２，１９８２）。アミノ酸の疎水的性質は、生成したタンパク質の二次構造に寄与し、次いでそのタンパク質と他の分子（例えば、澱粉加水分解酵素または糖転移酵素、基質、レセプター、ＤＮＡ、抗体、抗原など）との相互作用を規定する。各アミノ酸は、それらの疎水性および電荷の性質に基づく疎水性指数を割り当てられる。それらは：イソロイシン（＋４．５）；バリン（＋４．２）；ロイシン（＋３．８）；フェニルアラニン（＋２．８）；システイン／シスチン（＋２．５）；メチオニン（＋１．９）；アラニン（＋１．８）；グリシン（−０．４）；スレオニン（−０．７）；セリン（−０．８）；トリプトファン（−０．９）；チロシン（−１．３）；プロリン（−１．６）；ヒスチジン（−３．２）；グルタミン酸（−３．５）；グルタミン（−３．５）；アスパラギン酸（−３．５）；アスパラギン（−３．５）；リジン（−３．９）；およびアルギニン（−４．５）である。

あるアミノ酸を、同様の疎水性指数を有する他のアミノ酸により置換して、そして依然として実質的に同様の生物学的機能を有するタンパク質（例えば、酵素活性において実質的に等価なタンパク質）を生じさせ得ることは、当該分野で周知である。このようなアミノ酸置換において、疎水性指数が±２以内であることが好ましく、±１以内であることがより好ましく、および±０．５以内であることがさらにより好ましい。疎水性に基づくこのようなアミノ酸の置換は効率的であることが当該分野において理解される。米国特許第４，５５４，１０１号に記載されるように、以下の親水性指数がアミノ酸残基に割り当てられている：アルギニン（＋３．０）；リジン（＋３．０）；アスパラギン酸（＋３．０±１）；グルタミン酸（＋３．０±１）；セリン（＋０．３）；アスパラギン（＋０．２）；グルタミン（＋０．２）；グリシン（０）；スレオニン（−０．４）；プロリン（−０．５±１）；アラニン（−０．５）；ヒスチジン（−０．５）；システイン（−１．０）；メチオニン（−１．３）；バリン（−１．５）；ロイシン（−１．８）；イソロイシン（−１．８）；チロシン（−２．３）；フェニルアラニン（−２．５）；およびトリプトファン（−３．４）。アミノ酸が同様の親水性指数を有しかつ依然として生物学的等価体を与え得る別のものに置換され得ることが理解される。このようなアミノ酸置換において、親水性指数が±２以内であることが好ましく、±１以内であることがより好ましく、および±０．５以内であることがさらにより好ましい。

本発明において、「保存的置換」とは、アミノ酸置換において、元のアミノ酸と置換されるアミノ酸との親水性指数または／および疎水性指数が上記のように類似している置換をいう。保存的置換の例は、当業者に周知であり、例えば、次の各グループ内での置換が挙げられるがこれらに限定されない：アルギニンおよびリジン；グルタミン酸およびアスパラギン酸；セリンおよびスレオニン；グルタミンおよびアスパラギン；ならびにバリン、ロイシン、およびイソロイシン。

本発明の方法において使用する酵素は、上記の目的の酵素を産生する天然の微生物から単離されてもよい。例えば、最初に、目的の酵素を産生する微生物を適切な培地（例えば、Ｌブロス（１％ Ｂａｃｔｔｏ−Ｔｒｙｐｔｏｎｅ（Ｄｉｆｃｏ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｄｅｔｒｏｉｔ，Ｍｉｃｈ．，ＵＳＡ）、０．５％ Ｂａｃｔｏ−Ｙｅａｓｔ Ｅｘｔｒａｃｔ（Ｄｉｆｃｏ）、０．５％ ＮａＣｌ、ｐＨ７．３））中に接種し、振盪させながら適切な温度（例えば、約３０℃〜約４０℃）で一晩培養する。次いで、この培養液を遠心分離して、菌体を沈殿させ、培養上清を得る。得られた培養上清をＵＦ膜で濃縮し、目的の酵素液とする。さらなる精製を必要とする場合、必要に応じて、Ｑ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅなどを用いたイオン交換クロマトグラフィーによる分画、Ｓｅｐｈａｃｒｙｌ Ｓ−２００ＨＲ（ファルマシア社製）などを用いたゲルフィルトレーションクロマトグラフィーによる分画、Ｐｈｅｎｙｌ−ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ ６５０Ｍ（東ソー社製）などを用いた疎水クロマトグラフィーによる分画を組み合わせることにより、精製された目的の酵素を含有する溶液を得ることができる。

あるいは、本発明の方法において使用する酵素は、目的の酵素をコードする塩基配列を含む核酸分子を適切な宿主細胞に導入して酵素を発現させ、この発現された酵素をこの宿主細胞またはその培養液から精製することによって入手され得る。

天然の酵素をコードする塩基配列を含む核酸分子（遺伝子ともいう）は、上記のようにして得た精製酵素をトリプシン処理し、得られるトリプシン処理断片をＨＰＬＣにより分離し、分離されたいずれかのペプチド断片のＮ末端のアミノ酸配列を、ペプチドシークエンサーにより同定し、次いで、同定したアミノ酸配列をもとに作製した合成オリゴヌクレオチドプローブを用いて、適切なゲノムライブラリーまたはｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることにより、入手され得る。オリゴヌクレオチドプローブおよびＤＮＡライブラリーを調製するための、ならびに核酸のハイブリダイゼーションによりそれらをスクリーニングするための基本的な戦略は、当業者に周知である。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ（１９８９）；ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ，第ＩおよびＩＩ 巻（Ｄ．Ｎ．Ｇｌｏｖｅｒ編 １９８５）；Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（Ｍ．Ｊ．Ｇａｉｔ編 １９８４）；Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（Ｂ．Ｄ．Ｈａｍｅｓ ＆ Ｓ．Ｊ．Ｈｉｇｇｉｎｓ編 １９８４）を参照のこと。

あるいは、既知の酵素遺伝子の塩基配列に対する相同性に基づいて、この塩基配列の少なくとも一部を含む核酸プローブを用いたハイブリダイゼーションによってスクリーニングして、別種の酵素遺伝子を含む核酸分子を獲得することもできる。このような方法は当該分野で公知である。

あるいは、種々の酵素のアミノ酸配列において保存された領域に対応する縮重プライマーを作製して、ＰＣＲによって酵素の塩基配列を獲得することも可能である。このような方法は当該分野で公知である。

ゲノムライブラリーをスクリーニングする場合、得られた核酸分子は、当業者に周知の方法を用いてサブクローニングされ得る。例えば、目的の遺伝子を含むλファージと、適切な大腸菌と、適切なヘルパーファージとを混合することにより、容易に目的の遺伝子を含有するプラスミドを得ることができる。その後、プラスミドを含有する溶液を用いて、適切な大腸菌を形質転換することにより、目的の遺伝子をサブクローニングし得る。得られた形質転換体を培養して、例えばアルカリＳＤＳ法によりプラスミドＤＮＡを得、目的の遺伝子の塩基配列を決定し得る。塩基配列を決定する方法は、当業者に周知である。さらに、ＤＮＡフラグメントの塩基配列を基に合成されたプライマーを用い、Ａｑｕｉｆｅｘ ａｅｏｌｉｃｕｓ、Ｒｈｏｄｏｔｈｅｒｍｕｓ ｏｂａｍｅｎｓｉｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃａｌｄｏｖｅｌｏｘ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｔｈｅｒｍｏｃａｔｅｎｕｌａｔｕｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃａｌｄｏｌｙｔｉｃｕｓなどのゲノムＤＮＡなどを鋳型に、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を用いて直接酵素遺伝子を増幅することもできる。

あるいは、公知の塩基配列に基づいて化学合成されてもよい。

本発明の方法で用いられる酵素のアミノ酸配列をコードする塩基配列は、上記の対照アミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列（すなわち、対照塩基配列）と比較してある一定の数まで変化していてもよい。このような変化は、少なくとも１個のヌクレオチドの欠失、トランジションおよびトランスバージョンを含む置換、または挿入からなる群より選択され得る。この変化は対照塩基配列の５’末端もしくは３’末端の位置で生じてもよく、またはこれら末端以外のどの位置で生じてもよい。塩基の変化は、１塩基ずつ点在していてもよく、数塩基連続していてもよい。

塩基の変化は、そのコード配列において、ノンセンス、ミスセンスまたはフレームシフト変異を生じ得、このような変化をした後の塩基配列によりコードされる酵素に変化をもたらし得る。

本発明で使用される酵素が澱粉加水分解酵素である場合、この酵素は、例えば、実施例で使用した澱粉加水分解酵素のアミノ酸配列に対して、または配列番号２、４、６、８、１０もしくは１２のアミノ酸配列に対して少なくとも約２０％、好ましくは少なくとも約３０％、より好ましくは少なくとも約４０％、さらに好ましくは少なくとも約５０％、特に好ましくは少なくとも約６０％、約７０％、約８０％、約９０％、約９５％、約９６％、約９７％、約９８％または約９９％の同一性を有し、かつ澱粉加水分解活性（特定の場合には澱粉のゲル形成能を向上させる特性）を有することが好ましい。

本発明で使用される酵素が糖転移酵素である場合、この酵素は、例えば、実施例で使用した糖転移酵素のアミノ酸配列に対して、または配列番号１４のアミノ酸配列に対して少なくとも約２０％、好ましくは少なくとも約３０％、より好ましくは少なくとも約４０％、さらに好ましくは少なくとも約５０％、特に好ましくは少なくとも約６０％、約７０％、約８０％、約９０％、約９５％、約９６％、約９７％、約９８％または約９９％の同一性を有し、かつ糖転移活性（特定の場合には澱粉のゲル形成能を向上させる特性）を有することが好ましい。

本明細書では配列の同一性は、ＧＥＮＥＴＹＸ−ＷＩＮ Ｖｅｒ．４．０（株式会社ゼネティックス）のマキシマムマッチングを用いて算出される。このプログラムは、解析対象となる配列データに対して、比較対照となる配列データを置き換えおよび欠損を考慮しながら、配列間で一致するアミノ酸対が最大になるように並べ替え、その際、一致（Ｍａｔｃｈｅｓ）、不一致（Ｍｉｓｍａｔｃｈｅｓ）、ギャップ（Ｇａｐｓ）についてそれぞれ得点を与え合計を算出して最小となるアライメントを出力しその際の同一性を算出する（参考文献：Ｔａｋａｓｈｉ，Ｋ．，およびＧｏｔｏｈ，Ｏ．１９８４．Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａｍｏｎｇ Ｖａｒｉｏｕｓ ４．５ Ｓ ＲＮＡ Ｓｐａｃｉｅｓ Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．９２：１１７３−１１７７）。本明細書では配列の同一性は、ＧＥＮＥＴＹＸ−ＷＩＮ Ｖｅｒ．４．０のマキシマムマッチングをＭａｔｃｈｅｓ＝−１；Ｍｉｓｍａｔｃｈｅｓ＝１；Ｇａｐｓ＝１；＊Ｎ＋＝２の条件で用いて算出される。

天然の酵素または核酸分子としてはまた、酵素のアミノ酸配列または酵素をコードする塩基配列に対して同一ではないが相同性のある配列を有するものもまた使用され得る。天然の酵素または核酸分子に対して相同性を有するそのような酵素または核酸分子としては、例えば、ＧＥＮＥＴＹＸ−ＷＩＮ Ｖｅｒ．４．０のマキシマムマッチングにおいて、上記の条件で用いて比較した場合に、比較対象の配列に対して、核酸の場合、少なくとも約３０％、約３５％、約４０％、約４５％、約５０％、約５５％、約６０％、約６５％、約７０％、約７５％、約８０％、約８５％、約９０％、約９５％、または約９９％の同一性を有する塩基配列を含む核酸分子が挙げられ、そして酵素の場合、少なくとも約４０％、約４５％、約５０％、約５５％、約６０％、約６５％、約７０％、約７５％、約８０％、約８５％、約９０％、約９５％または約９９％の同一性を有するアミノ酸配列を有する酵素が挙げられるがそれらに限定されない。

天然で公知の澱粉加水分解酵素をコードする塩基配列（例えば、配列番号１、３、５、７、９または１１）の相補配列を有する核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされる澱粉加水分解酵素は、澱粉加水分解活性（特定の場合には澱粉のゲル形成能を向上させる特性）を有する限り、本発明の方法において使用され得る。天然で公知の澱粉加水分解酵素をコードする塩基配列の相補配列を有する核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子に対して改変を行って得られる改変塩基配列を含む核酸分子によってコードされる澱粉加水分解酵素もまた、高粘度でゲル形成能を有する澱粉を生産する能力を有する限り、本発明の方法において使用され得る。当業者は、所望の澱粉加水分解酵素遺伝子を容易に選択することができる。

天然で公知の糖転移酵素をコードする塩基配列（例えば、配列番号１３）の相補配列を有する核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされる糖転移酵素は、糖転移活性（特定の場合には澱粉のゲル形成能を向上させる特性）を有する限り、本発明の方法において使用され得る。天然で公知の糖転移酵素をコードする塩基配列の相補配列を有する核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子に対して改変を行って得られる改変塩基配列を含む核酸分子によってコードされる糖転移酵素もまた、高粘度でゲル形成能を有する澱粉を生産する能力を有する限り、本発明の方法において使用され得る。当業者は、所望の糖転移酵素遺伝子を容易に選択することができる。

本明細書中で使用する用語「ストリンジェントな条件」とは、特異的な配列にはハイブリダイズするが、非特異的な配列にはハイブリダイズしない条件をいう。ストリンジェントな条件の設定は、当業者に周知であり、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌｅｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、前出）に記載される。「ストリンジェントな条件」は、例えば、５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ（７５０ｍＭ ＮａＣｌ、７５ｍＭ クエン酸三ナトリウム）、５０ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．６）、５×デンハルト溶液（０．２％ ＢＳＡ、０．２％ Ｆｉｃｏｌｌ ４００および０．２％ポリビニルピロリドン）、１０％硫酸デキストラン、および２０μｇ／ｍｌ変性剪断サケ精子ＤＮＡを含む溶液中での６５℃でのハイブリダイゼーション、およびその後の０．１〜２倍濃度のＳＳＣ（ｓａｌｉｎｅ−ｓｏｄｉｕｍ ｃｉｔｒａｔｅ）溶液（１倍濃度のＳＳＣ溶液の組成は、１５０ｍＭ 塩化ナトリウム、１５ｍＭ クエン酸ナトリウムである）での６５℃条件下での洗浄である。それゆえ、ストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチドは、具体的には、例えば、コロニーあるいはプラーク由来のＤＮＡを固定化したフィルターを用いて、５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ（７５０ｍＭ ＮａＣｌ、７５ｍＭ クエン酸三ナトリウム）、５０ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．６）、５×デンハルト溶液（０．２％ ＢＳＡ、０．２％ Ｆｉｃｏｌｌ ４００および０．２％ポリビニルピロリドン）、１０％硫酸デキストラン、および２０μｇ／ｍｌ変性剪断サケ精子ＤＮＡを含む溶液中での６５℃でハイブリダイゼーションを行った後、０．１〜２倍濃度のＳＳＣ（ｓａｌｉｎｅ−ｓｏｄｉｕｍ ｃｉｔｒａｔｅ）溶液（１倍濃度のＳＳＣ溶液の組成は、１５０ｍＭ 塩化ナトリウム、１５ｍＭ クエン酸ナトリウムである）を用い、６５℃条件下でフィルターを洗浄するという条件を用いることにより同定できるポリヌクレオチドを意味する。

本発明の方法で用いられる酵素を製造するために用いられる核酸分子は、天然の酵素をコードする塩基配列を含む核酸分子に対して保存的に改変された核酸分子であってもよい。「天然の酵素をコードする塩基配列を含む核酸分子に対して保存的に改変された核酸分子」とは、天然の酵素のアミノ酸配列と同一または本質的に同一のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含む核酸分子をいう。「天然の酵素のアミノ酸配列と本質的に同一のアミノ酸配列」とは、天然の酵素と本質的に同じ酵素活性を有するアミノ酸配列をいう。遺伝コードの縮重のため、機能的に同一な多数の塩基配列が任意の所定のアミノ酸配列をコードする。例えば、コドンＧＣＡ、ＧＣＣ、ＧＣＧおよびＧＣＵはすべて、アミノ酸アラニンをコードする。したがって、ＧＣＡコドンによってアラニンが特定される全ての位置で、そのコドンは、コードされたアラニンを変更することなく、ＧＣＣ、ＧＣＧまたはＧＣＵに変更され得る。同様に、複数のコドンによってコードされ得るアミノ酸に関しては、コドンによってそのアミノ酸が特定される全ての位置で、そのコドンは、コードされた特定のアミノ酸を変更することなく、そのアミノ酸をコードする任意の別のコドンに変更され得る。このような塩基配列の変動は、保存的に改変された変異の１つの種である「サイレント変異」である。ポリペプチドをコードする本明細書中のすべての塩基配列はまた、その核酸の可能なすべてのサイレント変異を包含する。サイレント変異は、コードするアミノ酸が変化しない「サイレント置換」と、そもそも核酸がアミノ酸をコードしない場合（例えば、イントロン部分での変異、他の非翻訳領域での変異など）を包含する。ある核酸がアミノ酸をコードする場合、サイレント変異は、サイレント置換と同義である。本明細書において「サイレント置換」とは、塩基配列において、あるアミノ酸をコードする塩基配列を、同じアミノ酸をコードする別の塩基配列に置換することをいう。遺伝コード上の縮重という現象に基づき、あるアミノ酸をコードする塩基配列が複数ある場合（例えば、グリシンなど）、このようなサイレント置換が可能である。したがって、サイレント置換により生成した塩基配列によってコードされるアミノ酸配列を有するポリペプチドは、もとのポリペプチドと同じアミノ酸配列を有する。当該分野において、核酸中の各コドン（通常メチオニンをコードする唯一のコドンであるＡＵＧ、および通常トリプトファンをコードする唯一のコドンであるＴＧＧを除く）が、機能的に同一な分子を産生するために改変され得ることが理解される。したがって、ポリペプチドをコードする核酸の各サイレント変異は、記載された各配列において暗黙に含まれる。好ましくは、そのような改変は、ポリペプチドの高次構造に多大な影響を与えるアミノ酸であるシステインの置換を回避するようになされ得る。

本発明で用いられる酵素をコードする塩基配列は、発現のために導入される生物におけるコドンの使用頻度にあわせて変更され得る。コドン使用頻度は、その生物において高度に発現される遺伝子での使用頻度を反映する。例えば、大腸菌において発現させることを意図する場合、公開されたコドン使用頻度表（例えば、Ｓｈａｒｐら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ １６ 第１７号，８２０７頁（１９８８））に従って大腸菌での発現のために最適にすることができる。

上記のようにして改変された塩基配列を含む核酸分子を用いて、発現ベクターが作製され得る。特定の核酸配列を用いて発現ベクターを作製する方法は、当業者に周知である。

本明細書において核酸分子について言及する場合、「ベクター」とは、目的の塩基配列を目的の細胞へと移入させることができる核酸分子をいう。そのようなベクターとしては、目的の細胞において自律複製が可能であるか、または目的の細胞の染色体中への組込みが可能で、かつ改変された塩基配列の転写に適した位置にプロモーターを含有しているものが例示される。本明細書において、ベクターはプラスミドであり得る。

本明細書において、「発現ベクター」とは、改変された塩基配列（すなわち、改変された酵素をコードする塩基配列）を目的の細胞中で発現し得るベクターをいう。発現ベクターは、改変された塩基配列に加えて、その発現を調節するプロモーターのような種々の調節エレメント、および必要に応じて、目的の細胞中での複製および組換え体の選択に必要な因子（例えば、複製起点（ｏｒｉ）、および薬剤耐性遺伝子のような選択マーカー）を含む。発現ベクター中では、改変された塩基配列は、転写および翻訳されるように作動可能に連結されている。調節エレメントとしては、プロモーター、ターミネーターおよびエンハンサーが挙げられる。また、発現された酵素を細胞外へ分泌させることが意図される場合は、分泌シグナルペプチドをコードする塩基配列が、改変された塩基配列の上流に正しいリーディングフレームで結合される。特定の生物（例えば、細菌）に導入するために使用される発現ベクターのタイプ、その発現ベクター中で使用される調節エレメントおよび他の因子の種類が、目的の細胞に応じて変わり得ることは、当業者に周知の事項である。

本明細書において使用される「ターミネーター」は、タンパク質コード領域の下流に位置し、塩基配列がｍＲＮＡに転写される際の転写終結、ポリＡ配列の付加に関与する配列である。ターミネーターは、ｍＲＮＡの安定性に関与して遺伝子の発現量に影響を及ぼすことが知られている。

本明細書において使用される「プロモーター」とは、遺伝子の転写の開始部位を決定し、また転写頻度を直接的に調節するＤＮＡ上の領域をいい、ＲＮＡポリメラーゼが結合して転写を始める塩基配列である。プロモーターの領域は、通常、推定タンパク質コード領域の第１エキソンの上流約２ｋｂｐ以内の領域であることが多いので、ＤＮＡ解析用ソフトウェアを用いてゲノム塩基配列中のタンパク質コード領域を予測すれば、プロモーター領域を推定することはできる。推定プロモーター領域は、構造遺伝子ごとに変動するが、通常構造遺伝子の上流にあるが、これらに限定されず、構造遺伝子の下流にもあり得る。好ましくは、推定プロモーター領域は、第一エキソン翻訳開始点から上流約２ｋｂｐ以内に存在する。

本明細書において使用される「エンハンサー」は、目的遺伝子の発現効率を高めるために用いられ得る。そのようなエンハンサーは当該分野において周知である。エンハンサーは複数個用いられ得るが１個用いられてもよいし、用いなくともよい。

本明細書において使用される「作動可能に連結された（る）」とは、所望の塩基配列が、発現（すなわち、作動）をもたらす転写翻訳調節配列（例えば、プロモーター、エンハンサーなど）または翻訳調節配列の制御下に配置されることをいう。プロモーターが遺伝子に作動可能に連結されるためには、通常、その遺伝子のすぐ上流にプロモーターが配置されるが、必ずしも隣接して配置される必要はない。

改変した核酸配列を、上記調節エレメントに作動可能に連結するために、酵素遺伝子を加工すべき場合がある。例えば、プロモーターとコード領域との間が長すぎて転写効率の低下が予想される場合、またはリボゾーム結合部位と翻訳開始コドンとの間隔が適切でない場合などである。加工の手段としては、制限酵素による消化、Ｂａｌ３１、ＥｘｏＩＩＩなどのエキソヌクレアーゼによる消化、あるいはＭ１３などの一本鎖ＤＮＡまたはＰＣＲを使用した部位特異的変異の導入が挙げられる。

次いで、上記のようにして作製された発現ベクターを細胞に導入して目的の酵素が発現される。

本明細書において酵素の「発現」とは、その酵素をコードする塩基配列が、インビボまたはインビトロで転写および翻訳されて、コードされる酵素が生産されることをいう。

発現ベクターを導入する細胞（宿主ともいう）としては、原核生物および真核生物が挙げられる。発現ベクターを導入する細胞は、目的の酵素の発現の容易さ、培養の容易さ、増殖の速さ、安全性などの種々の条件を考慮して容易に選択され得る。例えばこのような細胞の例としては、細菌、真菌などの微生物が挙げられる。より好ましい細胞の例としては、中温性微生物（例えば、酵母、カビ、大腸菌、枯草菌）が挙げられる。細胞は、微生物細胞であってもよいが、植物、動物などの細胞であってもよい。用いる細胞によっては、澱粉加水分解酵素は、翻訳後プロセシングを受けたものであり得る。

本発明の方法において、発現ベクターを細胞に導入する技術は、当該分野で公知の任意の技術であり得る。このような技術の例としては、例えば、形質転換、形質導入、トランスフェクションなどが挙げられる。そのような核酸分子の導入技術は、当該分野において周知であり、かつ、繁用されるものであり、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌ Ｆ．Ａ．ら編（１９８８）、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｗｉｌｅｙ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、ＮＹ；Ｓａｍｂｒｏｏｋ Ｊら（１９８７）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ、別冊実験医学「遺伝子導入＆発現解析実験法」羊土社、１９９７などに記載される。

（１．３ 他の材料）
酵素処理澱粉粒の製造においては、酵素の作用を妨害しない限り、酵素処理において通常用いられる任意の材料が用いられ得る。このような他の材料の例としては、塩、緩衝剤などが挙げられる。一般的に、各酵素に適切な特定の塩を添加することにより酵素反応の速度が飛躍的に向上することが公知であるので、そのような特定の塩を添加することが好ましい。このような各酵素に適切な塩を添加することにより、処理時間の短縮が可能である。このような酵素と塩との組み合わせの例としては、アミログルコシダーゼと金属イオン（例えば、ナトリウムイオン、カリウムイオン、カルシウムイオンまたはマグネシウムイオン）との組み合わせが挙げられる。例えば、本発明者らが実験したところ、未処理の天然のタピオカ澱粉をアミログルコシダーゼ（例えば、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」）で処理する際に、塩化ナトリウム、または硫酸ナトリウム、または塩化カリウム、または塩化カルシウム、または塩化マグネシウムを、金属イオンとして１００ｐｐｍ添加する系は、添加しない系と比較して澱粉の分解速度が１．５〜２倍速まった。

（２．酵素処理澱粉粒の製造方法）
澱粉粒を澱粉加水分解酵素または糖転移酵素によって処理することにより酵素処理澱粉粒が製造される。それぞれの工程の詳細について以下で説明する。

（２．１ 懸濁液の調製）
本発明の製造方法では、例えば、澱粉粒と、澱粉加水分解酵素または糖転移酵素と、緩衝剤と、それを溶かしている溶媒とを主な材料として用いる。これらの材料は通常、反応開始時に全て添加されるが、反応の途中でこれらのうちの任意の材料を追加してもよい。本発明の製造方法に用いる溶媒は、使用される酵素の酵素活性を損なわない溶媒であれば任意の溶媒であり得る。代表的な溶媒は、水（例えば、イオン交換水、精製水、水道水など）である。溶媒は、酵素を調製する際に酵素に付随して得られる細胞破砕液のうちの水分であってもよい。

本発明の製造方法においては、まず、反応溶液を調製する。反応溶液は、例えば、適切な溶媒に、澱粉粒と澱粉加水分解酵素または糖転移酵素とを添加することにより調製され得る。例えば、澱粉粒を溶媒（例えば、水または緩衝液）に懸濁させて澱粉懸濁液を作製した後に酵素を添加してもよい。あるいは、反応溶液は、澱粉粒を含む懸濁液と酵素を含む溶液とを混合することによって調製してもよい。この反応溶液には、酵素反応を阻害しない限り、必要に応じて、ｐＨを調整する目的で任意の緩衝剤を加えてもよい。なお、反応溶液中で澱粉粒は懸濁しており溶解していないが、酵素などの他の成分を溶解しているため、反応溶液と呼ぶ。

反応溶液のｐＨは、使用する酵素が活性を発揮し得るｐＨであれば任意に設定され得る。反応溶液のｐＨは、使用する酵素の至適ｐＨ付近であることが好ましい。反応溶液のｐＨは、代表的には約２以上であり、好ましくは約３以上であり、さらに好ましくは約４以上であり、特に好ましくは約５以上であり、特に好ましくは約６以上であり、最も好ましくは約７以上である。反応溶液のｐＨは、代表的には約１３以下であり、好ましくは約１２以下であり、さらに好ましくは約１１以下であり、特に好ましくは約１０以下であり、特に好ましくは約９以下であり、最も好ましくは約８以下である。１つの実施形態では、反応溶液のｐＨは、代表的には、使用する酵素の至適ｐＨの±３以内であり、好ましくは至適ｐＨの±２以内であり、さらに好ましくは至適ｐＨの±１以内であり、最も好ましくは至適ｐＨの±０．５以内である。

反応溶液中の澱粉粒の量は、酵素反応が可能な量である限り、任意に設定され得る。反応溶液中の澱粉粒の量は、好ましくは約５重量％以上であり、より好ましくは約１０重量％以上であり、さらに好ましくは約２０重量％以上であり、最も好ましくは約３０重量％以上である。反応溶液中の澱粉粒の量は、好ましくは約６０重量％以下であり、より好ましくは約５０重量％以下であり、さらに好ましくは約４０重量％以下であり、最も好ましくは約３５重量％以下である。

反応溶液中の酵素の量は、酵素反応が可能な量である限り、任意に設定され得る。酵素の量は、合理的な時間内に反応を行うに充分な量であることが好ましい。酵素量が多いほど反応に要する時間は短くなり、酵素量が少ないほど反応に要する時間は長くなる。酵素量が多すぎると、コストが非常に高くなり、さらに、酵素が凝集して沈澱物を形成する場合もあるので、適切に設定することが好ましい。

反応溶液中の酵素の量は、澱粉粒固形分に対して、好ましくは約０．０１重量％以上であり、より好ましくは約０．０５重量％以上であり、さらに好ましくは約０．１重量％以上である。反応溶液中の酵素の量は、澱粉粒固形分に対して、好ましくは約１０重量％以下であり、より好ましくは約５重量％以下であり、さらに好ましくは約１重量％以下である。反応溶液中の酵素の量は、酵素反応が進行するのに充分な量であればよいので、酵素の活性（ユニット数）について詳細に検討する必要はない。

（２．２ 酵素反応）
次いで、反応溶液を、当該分野で公知の方法によって必要に応じて加熱することにより、反応させる。反応工程における溶液温度は、澱粉粒が実質的に崩壊しない温度である限り、任意の温度であり得る。反応温度は、使用する酵素が活性を十分に発揮し得、かつ活性を十分に保持する（すなわち、失活しにくい）温度であることが好ましい。この反応工程における溶液の温度は、所定の反応時間後に反応前のこの溶液に含まれる酵素の活性の約５０％以上、より好ましくは約８０％以上の活性が残る温度であることが好ましい。例えば、この温度は、使用する酵素の至適温度±１０℃であり得、至適温度±５であることがより好ましく、至適温度±１℃であることがさらに好ましく、至適ｐＨ±０．５℃であることが最も好ましい。反応温度は、好ましくは約１０℃以上であり、より好ましくは約１０℃以上であり、さらに好ましくは約１５℃以上であり、さらにより好ましくは約２０℃以上であり、特に好ましくは約３０℃以上であり、そして最も好ましくは４０℃以上である。反応温度は、好ましくは約７０℃以下であり、より好ましくは約６５℃以下であり、特に好ましくは約６０℃以下であり、最も好ましくは５５℃以下である。

反応時間は、反応温度、澱粉粒に対する酵素量などを考慮して、任意に設定することができる。反応時間は、好ましくは約１時間以上であり、例えば、約２時間以上、約３時間以上、約６時間以上、約１２時間以上などであり得る。反応時間に特に上限はないが、好ましくは約７２時間以下、より好ましくは約４８時間以下、さらにより好ましくは約３６時間以下、特に好ましくは約２４時間以下、最も好ましくは約２０時間以下である。

（２．３ 後処理）
酵素処理を行った澱粉粒は、用途によってはそのまま使用することも可能であるが、酵素処理された澱粉粒を洗浄し、脱水することによって、使用した酵素および酵素分解により溶出した糖質を除去することが好ましい。酵素処理された澱粉粒の洗浄および脱水は、当該分野で公知の任意の方法によって行われ得る。澱粉粒の洗浄および脱水は澱粉調製の常法であり、一般的に行われている。さらに、脱水後の澱粉を乾燥して、目的とする酵素処理澱粉粒を得ることが好ましい。脱水後の澱粉の乾燥は、当該分野で公知の任意の方法によって行われ得る。

（２．４ 化学修飾）
酵素処理を行った澱粉粒は、所望により化学修飾され得る。酵素処理に使用した澱粉粒が未処理の澱粉粒または物理処理した澱粉粒の場合だけでなく、何らかの化工澱粉の澱粉粒を使用した場合にも、その化工澱粉に施された種類の化学修飾とは異なる種類の化学修飾を施すことができる。化学修飾の例としては、アセチル化、アジピン酸架橋、酸化、漂白、リン酸架橋、オクテニルコハク酸処理、ヒドロキシプロピル化、リン酸化およびリン酸モノエステル化が挙げられる。これらの化学修飾の方法は当該分野で周知である。これらの化学修飾は、日本国の食品衛生法で許容される範囲内であれば任意の程度まで行われ得る。日本では、化学修飾された加工澱粉が食品添加物として認められるためには、厚生労働省告示４８５号記載の純度試験法に準じて試料澱粉中の各種化学物質の分析を行って、下記の基準を満たすことが必須である：
（ａ）アセチル化アジピン酸架橋デンプン：アジピン酸基が０．１３５％以下であってかつアセチル基が２．５％以下であること；
（ｂ）アセチル化酸化デンプン：アセチル基が２．５％以下であってかつカルボキシ基が１．３％以下であること；
（ｃ）アセチル化リン酸架橋デンプン：アセチル基が２．５％以下であってかつリンがＰとして０．１４％以下であること；
（ｄ）オクテニルコハク酸デンプンナトリウム：オクテニルコハク酸基が３．０％以下であること；
（ｅ）酢酸デンプン：アセチル基が２．５％以下であること；
（ｆ）酸化デンプン：カルボキシ基が１．１％以下であること；
（ｇ）ヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉：ヒドロキシプロピル基が７．０％以下であってかつリンがＰとして０．１４％以下であること；
（ｈ）ヒドロキシプロピルデンプン：ヒドロキシプロピル基が７．０％以下であること；
（ｉ）リン酸架橋澱粉：リンがＰとして０．５％以下であること；
（ｊ）リン酸化デンプン：リンがＰとして０．５％以下であること；
（ｋ）リン酸モノエステル化リン酸架橋デンプン：リンがＰとして０．５％以下であること；
（ｌ）漂白デンプン；カルボキシ基が０．１％以下であり、厚生労働省告示４８５号記載の酸化澱粉の「確認試験（３）」による試験結果が陰性で、かつ、粘度等の澱粉の性質に生じた変化が酸化によるものでないことを合理的に説明できること。日本以外の国についてはその国で許容される範囲内であれば任意の程度の化学処理が行われ得る。化学修飾は何種類か組み合わせて使用することができる。

（２．５ 物理処理）
酵素処理を行った澱粉粒は、所望により物理処理され得る。酵素処理に使用した澱粉粒が未処理の澱粉粒または化工澱粉の場合だけでなく、何らかの物理処理をした澱粉粒を使用した場合にも、その物理処理とは異なる種類の物理処理を施すことができる。物理処理の例としては、湿熱処理および熱抑制処理が挙げられる。

「湿熱処理」とは、澱粉を糊化させない程度の低水分状態で、密閉容器内で相対湿度約１００％の条件下で約９５〜約１２５℃に加熱することをいう。「澱粉を糊化させない程度の低水分状態」は、例えば水分含量約５０％以下を示す。澱粉を糊化させない程度の低水分状態は、例えば水分含量約３５％以下、約３０％以下、約２５％以下または約２０％以下であってもよい。湿熱処理の加熱時間は、湿熱処理の方法によって変化し得る。例えば、特開平６−１４５２０３号公報に記載の方法に従って湿熱処理される場合、まず約０〜５００トール（約０〜６６．６６１ｋＰａ）に減圧し、その後加圧蒸気を導入して約１００℃〜約１５０℃にて約２分〜約１２０分間保持することにより加熱処理される。湿熱処理は、種々の文献に記載されており、当該分野で公知の任意の湿熱処理方法に従って行われ得る。湿熱処理は例えば、特開平６−１４５２０３号公報、特開平４−１３０１０２号公報および月刊フードケミカル ２０１０−２（Ｐ．３７−４２）等に記載されている。湿熱処理の温度、時間などは目的とする澱粉およびその物性によって適切に設定され得る。

「熱抑制処理」とは、極めて低水分に乾燥した澱粉粒を、ドライ加熱処理することにより澱粉粒の結晶構造を強化することをいう。「極めて低水分に乾燥した澱粉粒」とは、水分含量が約１％未満の澱粉粒をいう。熱抑制処理される澱粉粒の水分含量は好ましくは約０％である。澱粉粒を極めて低水分に乾燥する方法は、例えば、特開２００８−２２３０３２号公報に記載され、例えば、澱粉粒のｐＨを７．０以上のｐＨに調整してから、水分含量が約１％未満になるまで脱水する方法であり得る。この低水分に乾燥する場合のｐＨは好ましくはｐＨ７以上であり、より好ましくはｐＨ８より大きく、好ましくはｐＨ７．５〜１０．５であり、より好ましくはｐＨ８〜９．５である。脱水は熱的脱水であってもよく、非熱的脱水であってもよい。ドライ加熱処理の際には、澱粉を抑制するのに充分な時間にわたって充分な温度で熱処理する。好ましくは、澱粉を非凝集性にするのに充分な時間にわたって充分な温度で熱処理する。熱抑制処理のための好ましい加熱温度は、約１００℃よりも高い。熱処理温度は好ましくは約２００℃以下である。熱抑制処理のための加熱温度は、より好ましくは約１２０℃〜約１８０℃であり、特に好ましくは約１４０℃〜約１６０℃であり、最も好ましくは約１６０℃である。抑制のレベルはｐＨ、加熱温度および加熱時間に依存する。ｐＨが高いほど、より高度に抑制された澱粉が得られる。熱処理温度が高いほど、より高度に抑制された澱粉が得られる。熱処理時間が長いほど、より高度に抑制された澱粉が得られる。熱抑制処理のための熱処理時間は、例えば約３時間以上であり得、好ましくは約２０時間以下である。熱抑制処理は、種々の文献に記載されており、当該分野で公知の任意の熱抑制処理方法に従って行われ得る。熱抑制処理は、例えば、米国特許第６，２２１，４２０号公報、国際公開第９５／０４０８２号パンフレットおよび特開２００８−２２３０３２号公報に記載されている。熱抑制処理の温度、時間などは目的とする澱粉およびその物性によって適切に設定され得る。物理処理は当該分野で周知の方法に従って実施され得る。

湿熱処理澱粉の例としては、例えば、三和澱粉工業株式会社製の「デリカスター・シリーズ」、「ナチュラスター・シリーズ」、「アミロジェル」および日本食品化工株式会社製の「ロードスター」が挙げられる。熱抑制澱粉の例としては、例えば、ナショナルスターチ社製「ノベーション・シリーズ」が挙げられる。

（３．本発明の酵素処理澱粉粒の特性）
特定の実施形態では、本発明の酵素処理澱粉は、高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉であって、該酵素処理澱粉は、澱粉粒を約１０℃以上約７０℃以下の温度において酵素で処理することにより得られた酵素処理澱粉である。

別の特定の実施形態では、本発明の酵素処理澱粉は、高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉であって、該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、該酵素処理澱粉は、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されておらず、該酵素処理澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理澱粉のヤング率よりも高いヤング率または該未処理澱粉の破断応力よりも高い破断応力を有するゲルを形成することができる。

（３．１ 粘度）
澱粉は、通常、所定以上の水分と共に加熱すると、澱粉粒が膨潤し、透明度の増大、及び粘度上昇という糊化現象を起こすことはよく知られている。そして、さらに加熱を続けることにより、澱粉粒は崩壊する。これら一連の事象にともなう粘度変化を測定するために、いくつかの方法があるが、ブラベンダー社のアミログラフが実用的で広く使用されている。アミログラフは、対象物を所定の速度で加熱し、温度と対象物の粘度との関係を記録するものである。すなわち、加熱とともに澱粉粒は膨潤するが、アミログラフでは粘度の発現および粘度の増大が起こる。やがて、澱粉粒の膨潤が最大になる時に粘度もピークに達する。この粘度を最高粘度という。さらに加熱を続けると、澱粉粒は崩壊し、同時に粘度も低下していく。この粘度低下の度合いをブレイクダウンという。このアミログラフでの粘度曲線は澱粉の起源および製法によって異なり、澱粉の特徴を示す測定法である。

アミログラフでの測定は、例えば以下のように行われる。所定量の酵素処理澱粉粒（例えば、乾物換算で小麦澱粉は８．５重量％濃度、コーンスターチは７．０重量％濃度、タピオカ澱粉は６．０重量％濃度）となるように、４５０ｍｌの水で、澱粉懸濁液を調製し、試料容器に投入後、それらを回転させながら５０℃まで加温する。その後１．５℃／ｍｉｎで９５℃まで昇温し、９５℃で１５分間保持する。続いて１．５℃／ｍｉｎで冷却する。アミログラフはブラベンダー社製のＶＩＳＣＯＧＲＡＰＨ−Ｅ、また試料容器の回転数は７５ｒｐｍ、測定カートリッジは７００ｃｍｇで測定する。この時、粘度がピークに達した時の粘度を最高粘度とし、そして、この最高粘度と９５℃にて１５分間保持した時の粘度の差をブレイクダウンとする。この差をブレイクダウン粘度ともいう。最高粘度と９５℃にて１５分間保持した時の粘度の差が１００ＢＵ未満の場合、その澱粉は「ブレイクダウンを有さない」という。

本発明の酵素処理澱粉粒が未処理の澱粉から調製されかつ化学修飾も物理処理もされていない場合、本発明の酵素処理澱粉粒は、上記条件下にてアミログラフで測定した場合に未処理の澱粉の最高粘度の約５０％以上（より好ましくは約６０％以上、特に好ましくは約７０％以上、最も好ましくは約８０％以上、約９０％以上または約１００％以上）の最高粘度を有することが好ましい。本発明の酵素処理澱粉の最高粘度に特に上限はないが、例えば、上記条件下にてアミログラフで測定した場合に未処理の澱粉の最高粘度の約３００％以下、約２５０％以下、約２００％以下、約１５０％以下、約１１０％以下、約１００％以下などであり得る。例えば、酵素処理小麦澱粉は、未処理小麦澱粉の粘度の７０％以上２００％以下（さらに好ましくは８０％以上２００％以下）の粘度を有するゲルを形成することができることが好ましい。

例えば、小麦澱粉については、上記条件下にてアミログラフで測定した場合の天然の小麦澱粉の最高粘度は約５５０ＢＵ〜約６５０ＢＵである。他方、本発明の酵素処理澱粉粒が未処理の小麦澱粉から調製されかつ化学修飾も物理処理もされていない場合、上記条件下にてアミログラフで測定した場合の本発明の酵素処理小麦澱粉粒の最高粘度は、好ましくは約４００ＢＵ以上であり、より好ましくは約４２０ＢＵ以上であり、特に好ましくは約４５０ＢＵ以上であり、最も好ましくは約５００ＢＵ以上であり、例えば、約５５０ＢＵ以上、約５７０ＢＵ以上、約６００ＢＵ以上または約６５０ＢＵ以上などであってもよい。特定の実施形態では、上記条件下にてアミログラフで測定した場合の本発明の酵素処理小麦澱粉粒の最高粘度を、約６６０ＢＵ以上、約６７０ＢＵ以上または約７００ＢＵ以上とすることができる。上記条件下にてアミログラフで測定した場合の本発明の酵素処理小麦澱粉粒の最高粘度は、例えば、約９００ＢＵ以下、約８５０ＢＵ以下、約８００ＢＵ以下または約７５０ＢＵ以下であり得る。

例えば、コーンスターチについては、上記条件下にてアミログラフで測定した場合の天然のコーンスターチの最高粘度は約４００ＢＵ〜約５００ＢＵである。他方、本発明の酵素処理澱粉粒が未処理のコーンスターチから調製されかつ化学修飾も物理処理もされていない場合、上記条件下にてアミログラフで測定した場合の本発明の酵素処理コーンスターチ粒子の最高粘度は、好ましくは約２５０ＢＵ以上であり、より好ましくは約２７０ＢＵ以上であり、特に好ましくは約３００ＢＵ以上であり、最も好ましくは約３５０ＢＵ以上であり、例えば、約４００ＢＵ以上、約４２０ＢＵ以上、約４４０ＢＵ以上または約４５０ＢＵ以上などであってもよい。上記条件下にてアミログラフで測定した場合の本発明の酵素処理コーンスターチ粒子の最高粘度は、例えば、約６００ＢＵ以下、約５５０ＢＵ以下、約５２０ＢＵ以下または約５００ＢＵ以下であり得る。

例えば、タピオカ澱粉については、上記条件下にてアミログラフで測定した場合の天然のタピオカ澱粉の最高粘度は約７００ＢＵ〜約８００ＢＵである。他方、本発明の酵素処理澱粉粒が未処理のタピオカ澱粉から調製されかつ化学修飾も物理処理もされていない場合、上記条件下にてアミログラフで測定した場合の本発明の酵素処理タピオカ澱粉粒の最高粘度は、好ましくは約５００ＢＵ以上であり、より好ましくは約５２０ＢＵ以上であり、特に好ましくは約５３０ＢＵ以上であり、最も好ましくは約５５０ＢＵ以上であり、例えば、約６００ＢＵ以上、約６２０ＢＵ以上、約６３０ＢＵ以上または約６５０ＢＵ以上などであってもよい。上記条件下にてアミログラフで測定した場合の本発明の酵素処理タピオカ澱粉粒の最高粘度は、例えば、約９００ＢＵ以下、約８５０ＢＵ以下、約８００ＢＵ以下または約７７０ＢＵ以下であり得る。

本発明の酵素処理澱粉粒が未処理の澱粉から調製されかつ化学修飾も物理処理もされていない場合、本発明の酵素処理澱粉粒は、アミログラフで測定した場合にブレイクダウンを有する。従来の澱粉ではブレイクダウンを有さないものもあるのに対し、本発明の酵素処理澱粉粒はブレイクダウンを有する。

例えば、未処理澱粉が小麦澱粉、コーンスターチまたはタピオカ澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉は約１００ＢＵ以上のブレイクダウン粘度を有する。

未処理澱粉が小麦澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のブレイクダウン粘度は、好ましくは約１００ＢＵ以上であり、より好ましくは約１２０ＢＵ以上であり、更に好ましくは約１３０ＢＵ以上であり、最も好ましくは約１５０ＢＵ以上である。未処理澱粉が小麦澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のブレイクダウン粘度に特に上限はないが、例えば、約５００ＢＵ以下、約４５０ＢＵ以下、約４００ＢＵ以下、約３５０ＢＵ以下、または約３００ＢＵ以下などであり得る。

未処理澱粉がコーンスターチであって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のブレイクダウン粘度は、好ましくは約１００ＢＵ以上であり、より好ましくは約１１０ＢＵ以上であり、更に好ましくは約１２０ＢＵ以上であり、最も好ましくは約１５０ＢＵ以上である。未処理澱粉がコーンスターチであって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のブレイクダウン粘度に特に上限はないが、例えば、約３００ＢＵ以下、約２９０ＢＵ以下、約２８０ＢＵ以下、２００ＢＵ以下、約１９０ＢＵ以下、または約１８０ＢＵ以下などであり得る。

未処理澱粉がタピオカ澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のブレイクダウン粘度は、好ましくは約３００ＢＵ以上であり、より好ましくは約３２０ＢＵ以上であり、更に好ましくは約３３０ＢＵ以上であり、最も好ましくは約３５０ＢＵ以上である。未処理澱粉がタピオカ澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のブレイクダウン粘度に特に上限はないが、例えば、約５５０ＢＵ以下、約５４０ＢＵ以下、約５３０ＢＵ以下、約５００ＢＵ以下、約４８０ＢＵ以下、または約４７０ＢＵ以下などであり得る。

（３．２ ゲル形成能）
一般に澱粉糊液は所定濃度以上になると、冷却することにより澱粉ゲルを形成することがよく知られている。この澱粉ゲルの物性は粘度同様、澱粉の起源、製法によって異なっており、このゲル化物性の特徴を考慮した上で、様々な食品に使用されている。このゲル物性を測定する方法はいくつか実用化されているが、その１つにレオメータを用いて測定する方法がある。レオメータによるゲル形成能の測定は、例えば、澱粉糊液をケーシングに充填し、加熱後、例えば１６時間または２１日間（例えば、約５℃で）冷蔵保存し、室温（例えば、約２５℃）に戻した後、レオメータでそのゲル物性を測定することにより行われ得る。

レオメータでの具体的な測定方法は、上記１．２．２で記載したとおりである。本発明の酵素処理澱粉粒が未処理の小麦澱粉から調製されかつ化学修飾も物理処理もされていない場合、酵素処理小麦澱粉は、未処理小麦澱粉の破断応力の１１０％以上３００％以下の破断応力を有するかまたは未処理小麦澱粉のヤング率の１１０％以上５００％以下（一つの実施形態においては１１０％以上３３０％以下）のヤング率を有することが好ましい。

本発明の酵素処理澱粉粒が未処理のトウモロコシ澱粉から調製されかつ化学修飾も物理処理もされていない場合、酵素処理トウモロコシ澱粉は、未処理トウモロコシ澱粉の破断応力の１１０％以上３００％以下の破断応力を有するかまたは未処理トウモロコシ澱粉のヤング率の１１０％以上５００％以下（一つの実施形態においては３３０％以下）のヤング率を有することが好ましい。

本発明の酵素処理澱粉粒が未処理のタピオカ澱粉から調製されかつ化学修飾も物理処理もされていない場合、酵素処理タピオカ澱粉は、未処理タピオカ澱粉の破断応力の１１０％以上３００％以下の破断応力を有するかまたは未処理タピオカ澱粉のヤング率の１１０％以上５００％以下（一つの実施形態においては３３０％以下）のヤング率を有することが好ましい。

本発明の酵素処理澱粉粒が未処理の小麦澱粉から調製されかつ化学修飾も物理処理もされていない場合、未処理澱粉が小麦澱粉である場合、得られる酵素処理澱粉の破断応力は、好ましくは約１５０ｇ以上であり、より好ましくは約１６０ｇ以上であり、更に好ましくは約１７０ｇ以上であり、特に好ましくは約１８０ｇ以上であり、最も好ましくは約２００ｇ以上である。未処理澱粉が小麦澱粉である場合、得られる酵素処理澱粉の破断応力に特に上限はないが、例えば、約４５０ｇ以下、約４４０ｇ以下、約４３０ｇ以下、約４２０ｇ以下、約４１０ｇ以下または約４００ｇ以下などであり得る。

未処理澱粉がトウモロコシ澱粉（コーンスターチ）であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉の破断応力は、好ましくは約２１０ｇ以上であり、より好ましくは約２２０ｇ以上であり、更に好ましくは約２３０ｇ以上であり、最も好ましくは約２４０ｇ以上であり、一つの実施形態においては２５０ｇ以上である。未処理澱粉がトウモロコシ澱粉（コーンスターチ）であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉の破断応力に特に上限はないが、例えば、約４５０ｇ以下、約４４０ｇ以下、約４３０ｇ以下、約４２０ｇ以下、約４１０ｇ以下または約４００ｇ以下などであり得る。

未処理澱粉がタピオカ澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉の破断応力は、好ましくは約５５ｇ以上であり、より好ましくは約６０ｇ以上であり、更に好ましくは約６５ｇ以上であり、最も好ましくは約７０ｇ以上である。未処理澱粉がタピオカ澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉の破断応力に特に上限はないが、例えば、約１５０ｇ以下、約１４０ｇ以下、約１３０ｇ以下、約１２０ｇ以下、約１１０ｇ以下または約１００ｇ以下などであり得る。

未処理澱粉が小麦澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のヤング率は、好ましくは約５．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上であり、より好ましくは約５．２×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上であり、更に好ましくは約５．４×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上であり、最も好ましくは約５．６×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上である。未処理澱粉が小麦澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のヤング率に特に上限はないが、例えば、約８．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約７．５×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約７．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約６．９×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約６．８×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下または約６．７×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下などであり得る。

未処理澱粉がトウモロコシ澱粉（コーンスターチ）であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のヤング率は、好ましくは約６．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上であり、より好ましくは約６．２×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上であり、更に好ましくは約６．３×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上であり、最も好ましくは約６．５×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以上である。未処理澱粉がトウモロコシ澱粉（コーンスターチ）であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のヤング率に特に上限はないが、例えば、約９．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約８．９×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約８．８×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約８．７×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約８．６×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下または約８．５×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下などであり得る。

未処理澱粉がタピオカ澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のヤング率は、好ましくは約５．２×１０^５ｄｙｎ／ｃｍ^２以上であり、より好ましくは約５．４×１０^５ｄｙｎ／ｃｍ^２以上であり、更に好ましくは約５．６×１０^５ｄｙｎ／ｃｍ^２以上であり、最も好ましくは約５．８×１０^５ｄｙｎ／ｃｍ^２以上である。未処理澱粉がタピオカ澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉のヤング率に特に上限はないが、例えば、約２．７×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約２．５×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約２．４×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約２．３×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約２．２×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約２．０×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約１．８×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約１．６×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約１．５×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約１．４×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約１．３×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下、約１．２×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下または約１．１×１０^６ｄｙｎ／ｃｍ^２以下などであり得る。

特定の実施形態では、未処理澱粉が小麦澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉は、ブレイクダウンを有し（約１００ＢＵ以上）、且つ破断応力約１５０〜約４５０（ｇ）もしくはヤング率約５，０００，０００〜約８，０００，０００（ｄｙｎ／ｃｍ^２）を有する。

特定の実施形態では、未処理澱粉がコーンスターチであって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉は、ブレイクダウンを有し（約１００ＢＵ以上）、且つ破断応力約２１０〜約４５０（ｇ）（一つの実施形態においては約２２０〜約４５０（ｇ））もしくはヤング率約６，０００，０００〜約９，０００，０００（ｄｙｎ／ｃｍ^２）を有する。

特定の実施形態では、未処理澱粉がタピオカ澱粉であって、かつ化学修飾も物理処理もされない場合、得られる酵素処理澱粉は、ブレイクダウンを有し（約１００ＢＵ以上）、且つ破断応力約５５〜約１５０（ｇ）もしくはヤング率約５２０，０００〜約２，７００，０００（ｄｙｎ／ｃｍ^２）（一つの実施形態においては約５２０，０００〜約１，６００，０００（ｄｙｎ／ｃｍ^２））を有する。

澱粉粒として化工澱粉もしくは物理処理澱粉を用いる場合、または酵素処理後に化学修飾もしくは物理処理を行った場合も上記と同様にゲル形成能の向上が得られる。

（３．３ グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されていない酵素処理澱粉）
本発明の酵素処理澱粉粒が未処理の澱粉、物理処理澱粉または漂白澱粉から調製されかつ化学修飾がされていない場合、本発明の酵素処理澱粉は、人為的な化学処理をされていないため、天然の澱粉（すなわち、未処理澱粉）と比較して、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されていない。グルコース残基の２位、３位及び６位の水酸基が修飾されている澱粉とは、工業的なプロセスによりいわゆる化学修飾を受けた加工澱粉（化工デンプンともいう）のことである。平成２０年１０月１日の厚生労働省告示第４８５号で告示された食品衛生法施行規則の一部を改正する省令によれば、次の加工デンプン１１品目が添加物として取り扱われることになった：
・アセチル化アジピン酸架橋デンプン；
・アセチル化酸化デンプン；
・アセチル化リン酸架橋デンプン；
・オクテニルコハク酸デンプンナトリウム；
・酢酸デンプン；
・酸化デンプン；
・ヒドロキシプロピル化リン酸架橋デンプン；
・ヒドロキシプロピルデンプン；
・リン酸架橋デンプン；
・リン酸化デンプン；
・リン酸モノエステル化リン酸架橋デンプン。厚生労働省告示第４８５号には、これらのデンプンについての純度試験法が記載されている。よって、例えば、平成２０年１０月１日の厚生労働省告示第４８５号記載の上記各種加工澱粉の純度試験方法に準じ、試料澱粉中のアジピン酸基、アセチル基、カルボキシル基などの各種化学物質の分析を行い、比較対象として実施した原料生澱粉での分析結果と比較し、対応する各種化学物質の含有量の増加が見られないことを確認することにより、試料澱粉が化学修飾を受けた澱粉ではないことを判断できる。特に、アジピン酸基の含量、アセチル基の有含量、カルボキシル基の含有量、酢酸ビニルの含有量、オクテニルコハク酸基の含有量、ヒドロキシプロピル基の含有量およびプロピレンクロロヒドリン類の含有量を測定し、これらの含有量が原料生澱粉についてのこれらの含有量よりも増加していないことを確認することにより、試料澱粉が化学修飾を受けた澱粉ではないことを判断できる。アジピン酸基の含量、アセチル基の有含量、カルボキシル基の含有量、オクテニルコハク酸基の含有量、ヒドロキシプロピル基の含有量と、プロピレンクロロヒドリン類の含有量を判断基準とすることが好ましい。また、次亜塩素酸ナトリウムを用いて漂白処理を行った漂白デンプンについては、食品として流通することが認められている。この漂白デンプンも、上記酸化デンプンと同様の純度試験方法にて、カルボキシル基の含有量を測定し、判断することが可能である。上記の１１品目の加工デンプン以外の化学修飾加工デンプンについては食品衛生法で認められていないため、食品に使用することができない。そのため、上記１１品目以外の化学修飾デンプンは基本的に日本では使用されておらず、流通していない。従って、実用上、本願発明の澱粉についてグルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されていないか否かを確認する際に、上記の化学修飾以外による化学修飾がされていないかを確認する必要はない。

本明細書中で「グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基が修飾されていない」という場合、グルコース残基の全ての２位、３位および６位の水酸基が修飾されていないことが好ましいが、天然の状態で何らかの修飾を受けている場合は多少の修飾を含んでも良い。この場合、グルコース残基の２位、３位および６位の水酸基の数の合計のうち、好ましくは約７０％以上、より好ましくは約８０％以上、さらにより好ましくは約９０％以上、特に好ましくは約９５％以上、約９６％以上、約９７％以上、約９８％以上、約９９％以上または約９９．５％、最も好ましくは約１００％が修飾されていない。

（４．本発明の食品）
特定の実施形態では、本発明の食品は、澱粉粒を約１０℃以上約７０℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程；食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程；該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程；および該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程を包含する方法によって製造された食品である。

別の特定の実施形態では、本発明の食品は、高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉を含む加熱調理済みの澱粉含有食品である。別の特定の実施形態では、本発明の澱粉含有食品は、食品材料と該酵素処理澱粉とを混合した後に加熱することを含む方法によって製造された食品である。

本明細書中で、澱粉ゲル含有食品とは、澱粉ゲルを含有する食品をいう。澱粉ゲルを含有していれば、その食品が全体としてゲルの形態である必要はない。例えば、カスタードプディングなどのゲル状食品、くず餅、ういろうなどのゲル状和菓子などは食品全体がゲルを形成している。ホイップクリーム、アイスクリームなどの油脂含有食品、ミートソースなどのソース類は食品全体としてはゲル状ではないが、微小な澱粉ゲルを含有しているため、本発明の澱粉ゲル含有食品に含まれる。また、ベーカリー類、洋菓子類なども、製造工程中に一旦ゲルを形成し、焼成などにより、水分が減少した澱粉ゲルを含有しているため、本発明の澱粉ゲル含有食品に含まれる。

特定の実施形態では、本発明の食品は、酵素処理澱粉粒を使用して調製され得る。本発明の方法によって製造された澱粉は、従来の澱粉と同様の用途に利用され得る。本発明の酵素処理澱粉を食品に利用することにより、食品の物性および食感が改変される。本発明の酵素処理澱粉は、従来澱粉を利用して調製されているほとんど全ての飲食用組成物または食品添加物用組成物に使用することが可能である。本発明の食品においては、酵素処理澱粉粒によって得られる優れた効果を妨害しない限り、目的とする組成物および食品において通常用いられる任意の材料が用いられ得る。好ましい実施形態では、本発明の澱粉は、本発明の食品中でゲルを形成している。

本発明の酵素処理澱粉は、高水分系の食品に利用した場合、ボディを付与し、強いゲル形成能による自然な弾力を付与し、且つ適度な口溶け感をも与える。高水分系の食品とは、摂食時の状態で可食部１００ｇあたりの水分量が４０ｇよりも多い食品をいう。高水分系の食品の例としては、例えば、和菓子類、油脂含有食品、ゲル状食品、魚肉・畜肉加工食品、たれ・ソース類、麺類などが挙げられる。

本発明の酵素処理澱粉は、低水分系の食品に利用した場合、口解けの良い、滑らかな食感を付与したりすることが可能である。低水分系の食品とは、摂食時の状態で可食部１００ｇあたりの水分量が４０ｇ以下の食品をいう。低水分系の食品の例としては、例えば、ベーカリー類、洋菓子類、フライ食品、ゼリーキャンデー類などが挙げられる。

このように、高水分系の食品と低水分系の食品とは、可食部１００ｇあたりの水分量が４０ｇよりも高いかまたは４０ｇ以下であるかによって分類される。ただし、可食部１００ｇあたりの水分量が４０ｇ付近（３５〜５０ｇ）の食品に関しては、同じ水分量であっても、形態により、相反する物性を示す場合がある。また、フライ食品などの場合、中身の具材を除いた、衣部分に対する水分量で判断する。

種々の食品の可食部１００ｇあたりの水分量を以下に例示する（五訂増補日本食品標準成分表より；カッコ内が水分量）：
（１）ベーカリー類：食パン（３８．０ｇ）、ハードビスケット（２．６ｇ）、パイ生地（３２．０ｇ）、衛生ボーロ（４．５ｇ）；
（２）和菓子類：ういろう（５４．５ｇ）、くずまんじゅう（４５．０ｇ）、大福餅（４１．５ｇ）；
（３）洋菓子類：スポンジケーキ（３２．０ｇ）、カステラ（２５．６ｇ）、ホットケーキ（４０．０ｇ）；
（４）油脂含有食品：ホイップクリーム（乳脂肪タイプ、４２．１ｇ）、ホイップクリーム（植物性脂肪タイプ、４１．２ｇ）、アイスクリーム類（アイスミルク：６５．６ｇ、ラクトアイス：６０．４ｇ）；
（５）ゲル状食品：カスタードプディング（７４．１ｇ）；
（６）魚肉、畜肉加工食品：す巻かまぼこ（７５．８ｇ）、焼きぬきかまぼこ（７２．８ｇ）、ウィンナー（５３．０ｇ）；
（７）たれ、ソース類：ウスターソース（６１．７ｇ）、ミートソース（７８．８ｇ）、サウザンアイランドドレッシング（４４．１ｇ）；および
（８）ゼリーキャンデー類：ゼリーキャンデー（１６ｇ）、ゼリービーンズ（９．５ｇ）。

このような食品に本発明の酵素処理澱粉を使用することにより、従来の澱粉を使用した場合と比較して、例えば以下の物性が改善される：
（１）ベーカリー類において、ソフトで、口溶けの良好な食感を付与する。ベーカリー類の例としては、パン、クッキー、ビスケット、ピザ生地、パイ生地、アイスクリームのコーンカップ、モナカの皮、シュークリームの皮などが挙げられる。

（２）和菓子類において、適度な硬さ、脆さを有し、且つ、適度な粘弾性、もちっとした食感を付与する。和菓子類の例としては、くず餅、ういろう、饅頭などが挙げられる。

（３）洋菓子類において、焼成後の膨らみが良好でボリュームがあり、ふわっとした良好な食感を付与する。洋菓子類の例としては、スポンジケーキ、シフォンケーキ、カステラ、マドレーヌ、フィナンシェ、パウンドケーキ、ロールケーキなどが挙げられる。

（４）油脂含有食品において、適度なボディ感、保形性を有しつつ、且つ、口溶け良好で滑らかな食感を付与する。油脂含有食品の例としては、カスタードクリーム、フラワーペースト、フィリング、ホイップクリーム、アイスクリーム類（例えば、アイスミルク、ラクトアイス）などが挙げられる。

（５）ゲル状食品において、もちっとして、ぷるっとした良好な弾力を有しつつ、口溶けも良好で滑らかな食感を付与する。ゲル状食品の例としては、ゼリー、プリン、ムース、ヨーグルト、ごま豆腐などが挙げられる。

（６）魚肉・畜肉加工食品において、良好な歯ごたえを持つ弾力を有し、かつ経時的な変化も少ない効果を付与する。魚肉・畜肉加工食品の例としては、蒲鉾、ソーセージなどが挙げられる。

（７）たれ・ソース類において、良好なボディ感、保形性を有し、食品へののりが良く滴り落ちにくく、且つ、粘りや糸曳き感も小さく、滑らかな食感を付与する。たれ・ソース類の例としては、蒲焼きのたれ、みたらし団子のたれ、フルーツソース、ホワイトソース、ドレッシングなどが挙げられる。

（８）フライ食品において、サクッとした軽い食感を付与する。フライ食品の例としては、天ぷら、エビフライなどが挙げられる。

（９）麺類において、歯ごたえに富むモチモチとした食感を付与する。麺類の例としては、うどん、そうめん、冷麦、中華麺、そば、マカロニ、スパゲティーなどが挙げられる。

（１０)ゼリーキャンデー類において、適度な弾力を有しつつ、口溶けも良好で滑らかな食感を付与する。ゼリーキャンデー類の例としては、ゼリーキャンデー、ゼリービーンズなどが挙げられる。

本発明の食品において、本発明の酵素処理澱粉は、従来その食品に用いられる澱粉量と同量で使用することができる。一部を従来の澱粉を使用し、残りを本発明の酵素処理澱粉に置換してもよい。本発明の酵素処理澱粉は、好ましくは通常の澱粉使用量の約５０重量％以上であり、より好ましくは約６０重量％以上であり、さらに好ましくは約７０重量％以上であり、ことに好ましくは約８０重量％以上であり、特に好ましくは約９０重量％以上であり、最も好ましくは１００重量％である。すなわち、本発明の酵素処理澱粉で従来の澱粉の全量を置換することが最も好ましい。

（５．澱粉ゲル含有食品の製造方法）
特定の実施形態では、本発明の澱粉ゲル含有食品の製造方法は、澱粉粒を約１０℃以上約７０℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程；食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程；該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程；および該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程を包含する。従来の食品製造においては、食品製造過程で澱粉粒に酵素処理を施して使用することはない。

澱粉粒を約１０℃以上約７０℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程は、上記「２．２ 酵素反応」において詳述した通りに行われ得る。上述のように、この澱粉粒は、未処理澱粉、物理処理澱粉または化学修飾澱粉の澱粉粒であり得る。食品として扱われる酵素処理澱粉を得ることが好ましい場合には、澱粉粒は未処理澱粉、物理処理澱粉または漂白澱粉の澱粉粒であり、この澱粉粒を使用して澱粉ゲル含有食品を得るまでのいずれの段階においても、この澱粉粒は化学修飾がされない。特定の実施形態では、澱粉粒は未処理澱粉または物理処理澱粉の澱粉粒であり、酵素処理澱粉を化学修飾する工程をさらに包含し、この化学修飾した酵素処理澱粉を食品材料および水と混合する。別の特定の実施形態では、澱粉粒は未処理澱粉または化学修飾澱粉の澱粉粒であり、酵素処理澱粉を物理処理する工程をさらに包含し、この物理処理した酵素処理澱粉を食品材料および水と混合する。

次いで、食品材料とこの酵素処理澱粉と水とを混合して混合物が得られる。食品材料と酵素処理澱粉と水との混合方法およびその混合比率は、目的の食品の通常の製造方法での混合方法および混合比率に従って行われ得る。

次いで、この混合物を加熱してこの混合物中のこの酵素処理澱粉が糊化される。この加熱は、加熱調理であり得る。加熱は、目的の食品の通常の製造方法での加熱調理と同じ条件で行われ得る。

次いで、この糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品が得られる。冷却は、加熱後の混合物を室温に放置することによって行われてもよく、冷蔵庫などで冷却することによって行われてもよい。

本発明の酵素処理澱粉を使用する実施形態では、本発明の食品は、酵素処理澱粉を使用すること以外は、通常の澱粉を使用する場合と同様の方法で製造することができる。本発明の澱粉含有食品の製造方法は、食品材料に酵素処理澱粉を添加して混合する工程；および該混合物を加熱調理する工程を包含する。

本発明の酵素処理澱粉は、従来の未処理澱粉に比べて優れた粘度およびゲル形成能を有する。そのため、本発明の酵素処理澱粉を食品材料に添加して混合し、その混合物を加熱調理することによりこの酵素処理澱粉は糊化し、その後冷却することによりゲルを形成する。そのため、得られる加熱調理物は従来の未処理澱粉を使用した加熱調理物よりも優れた物性（例えば、優れたボディ感、自然な弾力、良好な口溶け、滑らかな食感、もちっとした食感、ふわっとした食感など）を付与する。本明細書中では、食品は、飲料であってもよい。

本明細書中では、「加熱調理」とは、食品材料と澱粉との混合物を加熱することをいう。好ましくは、加熱調理は、澱粉粒の崩壊温度以上で加熱することであり得る。例えば、食品材料と澱粉との混合物は、約７０℃以上、約８０℃以上、約９０℃以上、または約９５℃以上で加熱され得る。好ましくは、加熱調理は、食品素材と澱粉との過度の変性を引き起こさない温度で行われる。例えば、食品材料と澱粉との混合物は、約２００℃以下、約１５０℃以下、約１３０℃以下、または約１１０℃以下で加熱され得る。加熱調理の時間は、目的とする食品の通常の調理時間で調理され得る。

加熱調理は、好ましくはある程度の水分の存在下で行われる。澱粉粒は、通常、所定以上の水の存在下で加熱されると膨潤し、透明度が増大し、粘度が上昇する。食品素材が必要以上の水分を含む場合、食品素材と澱粉との混合物に水を添加する必要はないが、食品素材の水分が少ない場合、食品素材と澱粉との混合物に水を添加することが好ましい。なお、無糖のくず湯のような、水と澱粉以外の食品素材を含まない食品の場合には、水を食品素材とみなす。

加熱調理は、目的とする食品の製造方法の一部であり得る。例えば、ゼリーなどのゲル状食品の場合、加熱調理した後で例えば約５〜１０℃の温度で冷却され得る。

（６．配列の説明）
配列番号１は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼをコードするヌクレオチド配列である；
配列番号２は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼのアミノ酸配列である；
配列番号３は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼをコードするヌクレオチド配列である；
配列番号４は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼのアミノ酸配列である；
配列番号５は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼをコードするヌクレオチド配列である；
配列番号６は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼのアミノ酸配列である；
配列番号７は、Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来のイソアミラーゼをコードするヌクレオチド配列である；
配列番号８は、Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来のイソアミラーゼのアミノ酸配列である；
配列番号９は、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼをコードするヌクレオチド配列である；
配列番号１０は、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼのアミノ酸配列である；
配列番号１１は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼをコードするヌクレオチド配列である；
配列番号１２は、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼのアミノ酸配列である；
配列番号１３は、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓとも分類される)由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列である；
配列番号１４は、Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓとも分類される）由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼのアミノ酸配列である。

次に、本発明を実施例により詳しく説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。なお、実施例において、粘度の測定は、ブラベンダー社のアミログラフで測定し、ゲル物性についてはレオテック社のレオメータで測定した。

（１．粘度の測定方法）
粘度を以下の方法で測定した。乾物換算で小麦澱粉は８．５重量％濃度、コーンスターチは７．０重量％濃度、タピオカ澱粉は６．０重量％濃度となるように、４５０ｍｌの水で、澱粉懸濁液を調整し、試料容器に投入後、それらを回転させながら５０℃まで加温した。その後１．５℃／ｍｉｎで９５℃まで昇温し、９５℃で１５分間保持した。続いて１．５℃／ｍｉｎで冷却した。アミログラフはブラベンダー社製のＶＩＳＣＯＧＲＡＰＨ−Ｅ、また試料容器の回転数は７５ｒｐｍ、測定カートリッジは７００ｃｍｇで測定した。この時、粘度がピークに達した時の粘度を最高粘度とし、そして、この最高粘度と９５℃にて１５分間保持した時の粘度の差をブレイクダウンとした。

（２．ゲル物性の測定方法）
ゲル物性を以下の方法で測定した。乾物換算で２０重量％濃度となるように、澱粉糊液を作成し、折幅４５ｍｍのクレハロンケーシングに充填した。これを９０℃まで１℃／ｍｉｎで昇温し、３０分間９０℃で保持した。その後、２０℃の恒温水槽にて３０分間放冷し、続いて冷蔵庫にて５℃まで冷却した。冷却後、５℃で１６時間冷蔵保管し、その後室温（約２５℃）で４時間放置して室温に戻した後に、レオテック社製レオメータ（ＲＴ−２０１０Ｊ−ＣＷ）でゲル物性を測定した。また、レオメータの測定条件は、試験項目として破断試験、試料の高さを２５ｍｍとし、粘性用球Φ５（直径５ｍｍ、面積１９．６３５ｍｍ^２）のアダプターを用い、試料の移動速度（破断速度）を６ｃｍ／ｍｉｎで測定した。この時、澱粉ゲルの硬さを破断応力（ｇ）、ヤング率（ｄｙｎ／ｃｍ^２）で評価した。

（３．澱粉粒の分解率の測定方法）
澱粉粒の分解率を以下の方法で測定した。酵素反応後の澱粉分解懸濁液を遠心分離（３０００ｒｐｍ、５分間）して得た上清液に含まれる遊離した還元糖の量（ｇ）をフェノール‐硫酸法により測定した。遊離した還元糖の量の、酵素反応前の澱粉総量（ｇ）に対する百分率を求めた。

（試験例１：液体反応と固体反応との比較）
１．液体反応
未処理の天然の小麦澱粉１５ｇ（乾燥重量）にイオン交換水２５０ｇ加え、ｐＨ５．０に調整後、沸騰湯浴にて加温し、完全に澱粉が溶解した糊液を調製した。この糊液に、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ起源）を０．１重量％（対澱粉固形分）添加し、総重量３００ｇに調整し、５０℃で撹拌することにより酵素反応を行った。３０分後、沸騰湯浴中に１０分間放置し、酵素を失活させ、試料１とした。得られた試料１を用い、ゲル物性を測定し、破断応力とヤング率で評価した。

２．固体反応
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇ（乾燥重量）にイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調製した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ起源）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。この酵素処理澱粉１５ｇ（乾燥重量）にイオン交換水を加え、総重量３００ｇに調整した。これを、沸騰湯浴にて加温し、完全に澱粉が溶解した糊液、試料２を調製した。得られた試料２を用い、ゲル物性を測定し、破断応力とヤング率で評価した。

澱粉を糊化した後に酵素を作用させた場合、得られた試料１は顕著な粘度の低下が確認され、もはや澱粉の粘度物性を保持しておらずゲルを形成しなかった。他方、澱粉粒のままで酵素を反応させた場合、得られた試料２は澱粉の粘度物性を保持し、固いゲルを形成することが確認された。

（比較例１）
未処理の天然の小麦澱粉に酵素処理を施さずに、アミログラフ及びレオメータにより粘度特性を分析した。結果を表２−２に示す。

（実施例１−１、１−２）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｓａｅ由来、天野エンザイム（株）製「ビオザイムＡ」；至適ｐＨ５．０）を０．１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１時間撹拌し、酵素反応を行い、分解率５％前後（実施例１−１）の試料を調製した。また、同様の酵素量を用い、５０℃で３時間撹拌し、分解率１０％前後（実施例１−２）の試料を調製した。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液を使用して分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例１−３）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｓａｅ由来、天野エンザイム（株）製「ビオザイムＡ」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液を使用して分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例２Ａ）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例２Ｂ）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、新日本化学工業（株）製「スミチーム ＡＳ」；至適ｐＨ４．５）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（比較例２、３、４−３、５〜６）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ由来、ＨＢＩ社製「α−アミラーゼ３Ａ」；至適ｐＨ５．９；比較例２）、α−アミラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ由来、Ｎｏｖｏ社製「ノバミル」；至適ｐＨ５．０；比較例３）、α−アミラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ由来、シグマアルドリッチ社製「αアミラーゼ」；至適ｐＨ６．０；比較例４−３）、α−アミラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ由来、Ｎｏｖｏ社製「ターマミル１２０Ｌ」；至適ｐＨ６．０；比較例５）、またはα−アミラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．由来、Ｎｏｖｏ社製「マルトゲナーゼ Ｌ」；至適ｐＨ５．０；比較例６）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（比較例４−１、４−２）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ由来、シグマアルドリッチ社製「αアミラーゼ」；至適ｐＨ６．０）を０．０１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で３０分間撹拌し、分解率５％前後の試料を調製した。また、同様の酵素量を用い、５０℃で１．５時間撹拌し、分解率１０％前後の試料を調製した。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。結果を表２−２に示す。

（実施例３Ａ−１、３Ａ−２）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ノボザイムズ社製「ＡＭＧ」；至適ｐＨ４．５）を０．１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃２時間撹拌し、分解率５％前後（実施例３Ａ−１）の試料を調製した。また同様の酵素を０．５重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で３時間撹拌し、分解率１０％前後（実施例３Ａ−２）の試料を調製した。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。

（実施例３Ａ−３）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ノボザイムズ社製「ＡＭＧ」；至適ｐＨ４．５）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例３Ｂ）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例３Ｃ）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＤＩＡＺＹＭＥ Ｘ４ＮＰ」；至適ｐＨ４．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例３Ｄ）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、天野エンザイム株式会社製「グルコアミラーゼ『アマノ』ＳＤ」；至適ｐＨ４．５）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例３Ｅ）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ由来、天野エンザイム社製「グルクザイムＡＦ６」；至適ｐＨ４．５）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例３Ｆ）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０にｐＨを調整した後、アミログルコシダーゼ（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来、新日本化学工業株式会社製「スミチーム」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（比較例８）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ｃａｎｄｉｄａ ｔｓｕｋｕｂａｅｎｓｉｓ由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」；至適ｐＨ２．５）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例４）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、イソアミラーゼ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来、シグマアルドリッチ製「試薬」；至適ｐＨ３．０）を０．１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例５Ａ）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−グルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、天野エンザイム株式会社製「トランスグルコシダーゼＬ『アマノ』」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例５Ｂ）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−グルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「Ｔｒａｎｓｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ Ｌ−５００」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（比較例１０、１１）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、β−アミラーゼ（大麦由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＭＡＬＴ ＢＢＡ」；至適ｐＨ５．０）またはプルラナーゼ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来、天野エンザイム株式会社製「プルラナーゼ」；至適ｐＨ６．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（比較例１２）
コーンスターチに酵素処理を施さずに、アミログラフ及びレオメータにより粘度特性を分析した。結果を表３−２に示す。

（実施例６）
未処理の天然のコーンスターチ４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０にｐＨを調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｓａｅ由来、天野エンザイム（株）製「ビオザイムＡ」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。

（比較例１３−１、１３−２）
未処理の天然のコーンスターチ４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」；至適ｐＨ６．０）を０．０１重量％（対澱粉固形分）（比較例１３−１）添加し、５０℃で３０分間撹拌したか、または１重量％（対澱粉固形分）（比較例１３−２）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。

（実施例７−１、７−２）
未処理の天然のコーンスターチ４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ノボザイムズ社製「ＡＭＧ」；至適ｐＨ４．５）を０．５重量％（対澱粉固形分）（実施例７−２）添加し、５０℃で３時間撹拌したか、または１重量％（対澱粉固形分）（実施例７−２）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。

（比較例１４）
未処理の天然のコーンスターチ４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、β−アミラーゼ（大麦由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ社製「ＯＰＴＩＭＡＬＴ ＢＢＡ」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。

（実施例８Ａ）
未処理の天然のコーンスターチ４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、イソアミラーゼ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」；至適ｐＨ３．０）を０．１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。

（実施例８Ｂ）
未処理の天然のコーンスターチ４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。

（実施例８Ｃ）
未処理の天然のコーンスターチ４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−グルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、天野エンザイム株式会社製「トランスグルコシダーゼＬ『アマノ』」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。

（比較例１５）
未処理の天然のタピオカ澱粉に酵素処理を施さずに、アミログラフ及びレオメータにより粘度特性を分析した。結果を表４−２に示す。

（実施例９）
未処理の天然のタピオカ澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｓａｅ由来、天野エンザイム（株）製「ビオザイムＡ」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表４−２に示す。

（比較例１６−１、１６−２）
未処理の天然のタピオカ澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」；至適ｐＨ６．０）を０．０１重量％（対澱粉固形分）（比較例１６−１）添加し、５０℃で３０分間撹拌したか、または１．０重量％（対澱粉固形分）（比較例１６−２）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表４−２に示す。

（実施例１０−１、１０−２）
未処理の天然のタピオカ澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ノボザイムズ社製「ＡＭＧ」；至適ｐＨ４．５）を０．５重量％（対澱粉固形分）（実施例１０−１）添加し、５０℃で３時間撹拌、または１重量％（対澱粉固形分）（実施例１０−２）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表４−２に示す。

（比較例１７）
未処理の天然のタピオカ澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、β−アミラーゼ（大麦由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ社製「ＯＰＴＩＭＡＬＴ ＢＢＡ」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表４−２に示す。

（実施例１１Ａ）
未処理の天然のタピオカ澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、イソアミラーゼ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」；至適ｐＨ３．０）を０．１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表４−２に示す。

（実施例１１Ｂ）
未処理の天然のタピオカ澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。

（実施例１１Ｃ）
未処理の天然のタピオカ澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−グルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、天野エンザイム株式会社製「トランスグルコシダーゼＬ『アマノ』」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。

その結果、実施例１〜１１Ｃにおいて、酵素処理することにより、高い粘度と強いゲル特性を併せ持つ新規澱粉を調製できることが確認された。また、比較例４−１および４−２、１３−１、１３−２、１６−１、１６−２に用いたＢａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ由来α−アミラーゼでは、分解率４０％以下で、本発明者らの目的とする高い粘度と強いゲル特性をもつ澱粉を調製することはできなかった。よって、本発明者らの開発した澱粉は、特許第２６１５３９８号で調製される澱粉とは異なる物質であることが証明された。

（実施例１２Ａ）
（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼの調製方法）
配列表の配列番号１の塩基配列の両末端にＥｃｏＲＩ認識部位（ＧＡＡＴＴＣ）を加えて、２本鎖ＤＮＡを化学合成した。この合成ＤＮＡを制限酵素ＥｃｏＲＩで完全分解した後、あらかじめＥｃｏＲＩで完全分解したｐＹＣＤＥ１（Ｍｅｔｈｏｄ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１０１，ｐｐ．１９２〜２０１（１９８３））と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌ＴＧ１を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドｐＹＡＭＹ１を調製した。

ｐＹＡＭＹ１をＩｔｏ等の方法（Ｊ．ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，Ｖｏｌ．１５３，１６３〜１６８（１９８３））に従って酵母宿主ＤＢＹ７４６に導入し、トリプトファン要求性が相補されたことにより、トリプトファンを含まない培地において生育可能な形質転換体を得た。この形質転換体を、２％グルコース、０．６７％イーストニトロゲンペース、２４ｍｇ／１Ｌ−ウラシル、２４ｍｇ／１Ｌ−ヒスチジン、３６ｍｇ／１Ｌ−ロイシン、ｐＨ５．７からなる合成培地１００ｍｌに接種し、３０℃、１２０時間、振とう培養した。

培養液を遠心分離（５０００ｒｐｍ、１０分間）した上清を、分子量１万カットの中空糸型ＵＦ膜モジュールを用いて濃縮し、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼを調製した。このα−アミラーゼは配列番号２のアミノ酸配列を有する。

（実施例１２Ｂ）
（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼの調製方法）
配列表の配列番号３の塩基配列の両末端にＥｃｏＲＩ認識部位（ＧＡＡＴＴＣ）を加えて、２本鎖ＤＮＡを化学合成した。この合成ＤＮＡを制限酵素ＥｃｏＲＩで完全分解した後、あらかじめＥｃｏＲＩで完全分解したｐＹＣＤＥ１（Ｍｅｔｈｏｄ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１０１，ｐｐ．１９２〜２０１（１９８３））と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌ＴＧ１を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドｐＹＡＭＹ２を調製した。

ｐＹＡＭＹ２をＩｔｏ等の方法（Ｊ．ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，Ｖｏｌ．１５３，１６３〜１６８（１９８３））に従って酵母宿主ＤＢＹ７４６に導入し、トリプトファン要求性が相補されたことにより、トリプトファンを含まない培地において生育可能な形質転換体を得た。この形質転換体を、２％グルコース、０．６７％イーストニトロゲンペース、２４ｍｇ／１Ｌ−ウラシル、２４ｍｇ／１Ｌ−ヒスチジン、３６ｍｇ／１Ｌ−ロイシン、ｐＨ５．７からなる合成培地１００ｍｌに接種し、３０℃、１２０時間、振とう培養した。

培養液を遠心分離（５０００ｒｐｍ、１０分間）した上清を、分子量１万カットの中空糸型ＵＦ膜モジュールを用いて濃縮し、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼを調製した。このα−アミラーゼは配列番号４のアミノ酸配列を有する。

（実施例１２Ｃ）
（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来アミログルコシダーゼの調製方法）
配列表の配列番号５の塩基配列の両末端にＥｃｏＲＩ認識部位（ＧＡＡＴＴＣ）を加えて、２本鎖ＤＮＡを化学合成した。この合成ＤＮＡを制限酵素ＥｃｏＲＩで完全分解した後、あらかじめＥｃｏＲＩで完全分解したｐＹＣＤＥ１（Ｍｅｔｈｏｄ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１０１，ｐｐ．１９２〜２０１（１９８３））と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌ＴＧ１を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドｐＹＧＬＵ１を調製した。

ｐＹＧＬＵ１をＩｔｏ等の方法（Ｊ．ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，Ｖｏｌ．１５３，１６３〜１６８（１９８３））に従って酵母宿主ＤＢＹ７４６に導入し、トリプトファン要求性が相補されたことにより、トリプトファンを含まない培地において生育可能な形質転換体を得た。この形質転換体を、２％グルコース、０．６７％イーストニトロゲンペース、２４ｍｇ／１Ｌ−ウラシル、２４ｍｇ／１Ｌ−ヒスチジン、３６ｍｇ／１Ｌ−ロイシン、ｐＨ５．７からなる合成培地１００ｍｌに接種し、３０℃、１２０時間、振とう培養した。

培養液を遠心分離（５０００ｒｐｍ、１０分間）した上清を、分子量１万カットの中空糸型ＵＦ膜モジュールを用いて濃縮し、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来アミログルコシダーゼを調製した。このアミログルコシダーゼは配列番号６のアミノ酸配列を有する。

（実施例１２Ｄ）
（Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来イソアミラーゼの調製方法）
配列表の配列番号７の塩基配列の両末端にＥｃｏＲＩ認識部位（ＧＡＡＴＴＣ）を加えて、２本鎖ＤＮＡを化学合成した。この合成ＤＮＡを制限酵素ＥｃｏＲＩで完全分解した後、あらかじめＥｃｏＲＩで完全分解したｐＹＣＤＥ１（Ｍｅｔｈｏｄ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１０１，ｐｐ．１９２〜２０１（１９８３））と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌ＴＧ１を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドｐＹＩＳＯ１を調製した。

ｐＹＩＳＯ１をＩｔｏ等の方法（Ｊ．ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，Ｖｏｌ．１５３，１６３〜１６８（１９８３））に従って酵母宿主ＤＢＹ７４６に導入し、トリプトファン要求性が相補されたことにより、トリプトファンを含まない培地において生育可能な形質転換体を得た。この形質転換体を、２％グルコース、０．６７％イーストニトロゲンペース、２４ｍｇ／１Ｌ−ウラシル、２４ｍｇ／１Ｌ−ヒスチジン、３６ｍｇ／１Ｌ−ロイシン、ｐＨ５．７からなる合成培地１００ｍｌに接種し、３０℃、１２０時間、振とう培養した。

培養液を遠心分離（５０００ｒｐｍ、１０分間）した上清を、分子量１万カットの中空糸型ＵＦ膜モジュールを用いて濃縮し、Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来イソアミラーゼを調製した。このイソアミラーゼは配列番号８のアミノ酸配列を有する。

（実施例１２Ｅ）
（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来イソアミラーゼの調製方法）
配列表の配列番号９の塩基配列の両末端にＥｃｏＲＩ認識部位（ＧＡＡＴＴＣ）を加えて、２本鎖ＤＮＡを化学合成した。この合成ＤＮＡを制限酵素ＥｃｏＲＩで完全分解した後、あらかじめＥｃｏＲＩで完全分解したｐＹＣＤＥ１（Ｍｅｔｈｏｄ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１０１，ｐｐ．１９２〜２０１（１９８３））と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌ＴＧ１を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドｐＹＩＳＯ２を調製した。

ｐＹＩＳＯ２をＩｔｏ等の方法（Ｊ．ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，Ｖｏｌ．１５３，１６３〜１６８（１９８３））に従って酵母宿主ＤＢＹ７４６に導入し、トリプトファン要求性が相補されたことにより、トリプトファンを含まない培地において生育可能な形質転換体を得た。この形質転換体を、２％グルコース、０．６７％イーストニトロゲンペース、２４ｍｇ／１Ｌ−ウラシル、２４ｍｇ／１Ｌ−ヒスチジン、３６ｍｇ／１Ｌ−ロイシン、ｐＨ５．７からなる合成培地１００ｍｌに接種し、３０℃、１２０時間、振とう培養した。

培養液を遠心分離（５０００ｒｐｍ、１０分間）した上清を、分子量１万カットの中空糸型ＵＦ膜モジュールを用いて濃縮し、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来イソアミラーゼを調製した。このイソアミラーゼは配列番号１０のアミノ酸配列を有する。

（実施例１２Ａ−１）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、実施例１２Ａにて調製したα−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｓａｅ由来）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液を使用して分解率を求めた。結果を以下の表５−２に示す。

（実施例１２Ｂ−１）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、実施例１２Ｂにて調製したα−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を以下の表５−２に示す。

（実施例１２Ｃ−１）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、実施例１２Ｃにて調製したアミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を以下の表５−２に示す。

（実施例１２Ｄ−１）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、実施例１２Ｄにて調製したイソアミラーゼ（Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を以下の表５−２に示す。

（実施例１２Ｅ−１）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、実施例１２Ｅにて調製したイソアミラーゼ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を以下の表５−２に示す。

（試作例）
次に、本発明を試作例により詳しく説明するが、本発明はこれらの試作例によって限定されるものではない。また、特に記載のない限り、「部」とは「質量部」を意味するものとする。

（試作例１：クッキーの調製）
下記表１０に掲げる処方の内、ミキサーに、無塩バター、ショートニングを加えよく混ぜ合わせた。更に、上白糖、食塩を加えよく混ぜ合わせた後、予め水に溶解した炭酸水素アンモニウムを加えよく混ぜ合わせた。最後に、予め混合した薄力粉及び澱粉及び重曹（炭酸水素ナトリウム）の粉体試料を加え、生地の塊（ドウ）が形成されるまでよく混ぜ合わせた。生地の塊（ドウ）を麺棒で薄く伸ばし、型抜きをして、オーブンにて（２００℃下１５分間）焼成し、クッキーを調製した。

得られたクッキーについて、実施例９および１０−２で調製した澱粉のいずれかを添加した試作例１−１及び１−２は共に、比較例１〜４の硬くてガリガリとした口溶けの悪い食感に比べ、ソフトで、口溶けの良好な食感を有する結果となった。特に、試作例１−１および１−２は非常に軽い食感を有し、食べやすかった。また、成型時の生地について、試作例１−１及び１−２は共に、試作比較例１−１〜１−４に比べ、非常にドライでサラッとしており、手や麺棒等への付着が無く、作業性も非常に良好な結果となった。

（試作例２：スポンジケーキの調製）
下記表１１に掲げる処方の内、全卵とグラニュー糖をハンドミキサーで混ぜ合わせながら、人肌程度にまで温めた。更に、粘度が出、且つ、気泡が細かく全体が白っぽい状態になるまでハンドミキサーで撹拌した。そこへ、予め混合した薄力粉及び澱粉及び小麦グルテンの粉体試料を篩い入れ、へらで混ぜ合わせた。最後に、溶かしバターと牛乳の混合したものを混ぜ合わせた。型に流し込み、オーブンにて（２００℃下１５分間、加えて１９０℃下１８分間）焼成し、スポンジケーキを調製した。

得られたスポンジケーキについて、実施例１−３、２Ａ、３Ａ−３及び５Ａにて調製した澱粉のいずれかを添加した試作例２−１〜２−４は全て、試作比較例２−１及び試作比較例２−２に比べ、焼成後の膨らみが良好でボリュームがあり、ソフトでふわっとした良好な食感を有する結果となった。

（試作例３：カスタードクリームの調製）
下記表１２に掲げる処方の内、泡立て器でよくすり混ぜた卵黄に、グラニュー糖を加え、更に泡立て器で混ぜ合わせた。そこへ、予め混合した薄力粉及び澱粉の粉体試料を篩い入れ、混ぜ合わせた。更に温めた牛乳を加え混ぜ合わせたら、鍋に濾し入れ、加熱した。粘度が出て滑らかな状態になるまで、木べらで掻き混ぜた。最後に、バター、色素、バニラエッセンスを加え、混ぜ合わせて、カスタードクリームを調製した。

得られたカスタードクリームについて、実施例１−３および３Ａ−３にて調製した澱粉のいずれかを添加した試作例３−１及び３−２は共に、適度なボディ感、保形性を有しつつ、且つ、口溶け良好で滑らかな食感を有する結果となった。これに対し、試作比較例３−１は、ゲル状の物性で、食感も重たく、加えて口溶けも悪く、なめらかさも無く、また、試作比較例３−２は、ボディ感、保形性は弱く、粘りのある食感で、口溶けも悪い結果となった。

（試作例４：ミルクプリンの調製）
下記表１３に掲げる処方の内、牛乳にグラニュー糖を加え、木べらでよく混ぜ合わせグラニュー糖を溶かした。そこへ澱粉試料を加え、木べらでよく混ぜ合わせた。木べらで掻き混ぜながら、粘度が出て滑らかな状態になるまで加熱した。ゼリーカップに充填し、氷浴にて急冷し、ミルクプリンを調製した。

得られたミルクプリンについて、実施例１−３および３Ａ−３で調製した澱粉のいずれかを添加した試作例４−１及び４−２は共に、もちっとして、ぷるっとした良好な弾力を有しつつ、口溶けも良好で滑らかな食感を有する結果となった。これに対し、試作比較例４−１は、もちっとしているものの、ハードヨーグルト様の硬さのある食感で、口溶け、滑らかさともに試作例に劣り、また、試作比較例４−２は、しっかりとゲル化せず、粘りのある食感で、口溶けも悪い結果となった。

（試作例５：くず餅の調製）
下記表１４に掲げる処方の内、澱粉試料と上白糖の混合物を水に加え、木べらでよく混ぜ合わせ上白糖を溶かした。木べらで掻き混ぜながら、粘度が出て糊状になり、かつ、透明感のある状態になるまで加熱した。型に流し入れ、氷浴にて急冷し、くず餅を調製した。

得られたくず餅について、実施例１−３、２Ａ、３Ａ−３及び５Ａで調製した澱粉のいずれかを添加した試作例５−１〜５−４は全て、適度な硬さ、脆さを有し、且つ、適度な粘弾性、もちっとした食感を有する結果となった。試作比較例５−１として、長期間、例えば１年以上もの間発酵させて得られる発酵小麦澱粉を用いた、いわゆる関東地方で言うくず餅と比べ、試作例は長期間の発酵を要せずとも同等の食感のくず餅を調製することができ、更には、発酵小麦澱粉由来の独特の風味、発酵臭もなく、良好な風味を有する結果となった。これに対し、試作比較例５−２は、硬くて脆く、口中でねちゃつきを感じる食感であり、また、試作比較例５−３は、軟らかくて脆い食感で、試作比較例５−２及び試作比較例５−３ともに、いわゆる関東地方で言うくず餅の食感には程遠い結果となった。

（試作例６：ごま豆腐の調製）
下記表１５に掲げる処方の内、澱粉試料を水に加え、木べらで掻き混ぜながら、粘度が出て糊状になり、かつ、透明感のある状態になるまで加熱した。練りごまを加えてよく混ぜ合わせた。容器に充填し、冷却し、ごま豆腐を調製した。

得られたごま豆腐について、実施例１−３および３Ａ−３で調製した澱粉のいずれかを添加した試作例６−１及び６−２は共に、適度にもっちりした食感と、本葛粉を添加したような弾力性に富んだ食感ではなく、適度なサクみを有し、口中での粘り、付着が少なく、食べ易い食感であり、例えば、高齢者向け食品などへの展開も期待できる結果となった。これに対し、試作比較例６−１は、軟らかく粘りの強い食感を有し、また、試作比較例６−２は、硬くて脆い食感で、弾力はなく、もっちりした食感もなく、試作比較例６−１及び試作比較例６−２ともにおいしさ、食べ易さに劣る結果となった。

（試作例７：かまぼこの調製）
下記表１６に掲げる処方の内、（サイレント）ミキサーに、すり身、食塩、砂糖、グルタンミン酸ナトリウム、ソルビン酸カリウムを加え、粘りが出るまでよく混ぜ合わせた。すり身の温度上昇抑制のため、氷水半量を入れ、混ぜ合わせ、卵白、味醂、予め残りの氷水で溶いておいた澱粉を加え均一になるまで、よく混ぜ合わせた。混ぜ合わせ後のすり身の温度は１０〜１５℃が目安であった。混ぜ合わせたすり身を脱気し、ケージに充填した。充填後、殺菌工程（９０℃４０分間）を取り、冷却し、かまぼこを調製した。

得られたかまぼこについて、製造翌日、及び１週間後に官能検査を実施した。試作比較例７−１はやや弾力に乏しい食感であり歯ごたえも良好とはいえない。また試作比較例７−２については、硬さはあるが、ゴツゴツとした食感となり、かつ１週間冷蔵保存した後の官能検査においては、澱粉の老化が起こり、ボソボソとしたやや離水を起こした食感となっていた。試作比較例７−３については、その澱粉の構造上、老化による経時変化は起こりにくいが、弾力に乏しいベタついた食感となっていた。これらの試作比較例に対して、実施例１−３および３Ａ−３で調製した澱粉のいずれかを添加した試作例７−１及び７−２は共に、良好な歯ごたえを持つ弾力を有し、かつ経時的な変化も少ない結果となった。

（試作例８：みたらし団子のたれの調製）
下記表１７に掲げる処方の内、澱粉試料を予め水の一部に溶いておいた。鍋に、上白糖、濃口醤油、味醂、水飴、残りの水を全量加え、木べらでよく混ぜ合わせた。更に、予め水溶きしておいた澱粉試料を加え、木べらで掻き混ぜながら加熱した。粘度が出て糊状になり、かつ、透明感のある状態になるまで加熱し、みたらし団子のたれを調製した。

得られたみたらし団子のたれについて、実施例９および１０−２にて調製した澱粉のいずれかを添加した試作例８−１及び８−２は共に、良好なボディ感、保形性を有し、団子へののりが良く滴り落ちにくく、且つ、粘りや糸曳き感も小さく、滑らかな食感を有する結果となった。これに対し、試作比較例８−１は、ゲル状の物性で、食感も重たく、加えて口溶けも悪く、なめらかさも無く、また、試作比較例８−２は、ボディ感、保形性が弱く、団子へののりが悪く滴り落ちる上、粘りのある食感で、口溶けも悪い結果となった。また、例えば、うなぎの蒲焼きの冷凍流通において、解凍時に蒲焼きのたれが滴り落ちるのを防止するために、焼きの最終工程において、粘度が高く、ボディ感、保形性の良好なたれを使用する場合もあるが、通常、粘度の高いたれは、粘りも強く、あるいはゲルっぽく、煮凝り様の物性で、食感も重たいといった課題がある。本発明における酵素処理澱粉の使用により、うなぎなどへののりが良く滴り落ちにくく、且つ、粘りや糸曳き感も小さく、滑らかな食感を有する蒲焼きを調製することができるようになる。

（試作例９：フルーツソースの調製）
下記表１８に掲げる処方の内、澱粉試料を予め水の一部に溶いておいた。鍋に、フルーツピューレ、上白糖、レモン果汁及び残りの水を全量加えた。木べらで掻き混ぜながら加熱し、予め水溶きしておいた澱粉試料を加えた。粘度が出て糊状になり、かつ、透明感のある状態になるまで加熱し、フルーツソースを調製した。

得られたフルーツソースについて、実施例９および１０−２にて調製した澱粉のいずれかを添加した試作例９−１及び９−２は共に、良好なボディ感、保形性を有し、デザートなど食品へののりが良く、且つ、粘りや糸曳き感も小さく、滑らかな食感を有する結果となった。これに対し、試作比較例９−１は、ゲル状の物性で、食感も重たく、加えて口溶けも悪く、なめらかさも無く、また、試作比較例９−２は、ボディ感、保形性が弱く、デザートなど食品へののりが悪く滴り落ちる上、粘りのある食感で、口溶けも悪い結果となった。

（試作例１０：ドレッシングの調製）
下記表１９に掲げる処方の内、予め粉体混合しておいた上白糖及び澱粉試料を水に加え、９０℃で１０分間加熱撹拌した。醸造酢、食塩、レモン果汁、グルタミン酸ナトリウム他調味料を加え、更に５分間加熱撹拌した。室温にまで冷却した後、卵黄を加えよく混ぜ合わせた。特殊機化工業（現：プライミクス）社製のホモミキサーを使用し、８，０００ｒｐｍで撹拌混合しながらサラダ油をゆっくりと滴下し、全量滴下後、続けて８，０００ｒｐｍで５分間撹拌混合し、ドレッシングを調製した。

得られたドレッシングについて、実施例９および１０−２にて調製した澱粉を添加した試作例１０−１及び１０−２は共に、良好なボディ感、保形性を有し、野菜などへののりが良く滴り落ちにくく、且つ、粘りや糸曳き感も小さく、滑らかな食感を有する結果となった。これに対し、試作比較例１０−１は、ゲルっぽい物性で、食感も重たく、加えて口溶けも悪く、なめらかさも無く、また、試作比較例１０−２は、ボディ感、保形性が弱く、野菜などへののりが悪く滴り落ちる上、粘りのある食感で、口溶けも悪い結果となった。

（試作例１１：揚げ物用バッターの調製）
下記表２０に掲げる処方の内、予め粉体混合しておいた薄力粉及び澱粉試料を冷水に溶き、よく混ぜ合わせ、揚げ物用バッターを調製した。

得られた揚げ物用バッターについて、実施例９または１０−２にて調製した澱粉を添加した試作例１１−１及び１１−２に、海老などの具材を漬けて衣付けし油調した天ぷら、あるいは、実施例９または１０−２にて調製した澱粉を添加した試作例１１−１及び１１−２に、海老などの具材を漬けて衣付けし、更にパン粉付けした後に油調したフライ食品は、いずれもサクッとした軽い食感となった。これに対し、試作比較例１１−１及び試作比較例１１−２の揚げ物用バッターを使用した天ぷら及びフライ食品は、サクッとした食感が弱く、軽さを感じにくい結果となった。

（試作例１２：ソーセージの調製）
下記表２１に掲げる処方の内、豚うで肉をサイレントカッターに入れ、高速でカッティングしながら、カゼインナトリウム、食塩、上白糖、調味料、総合塩漬剤、ポークパウダー、香辛料、ソルビン酸カリウム、ｐＨ調整剤、色素を加え、よく混ぜ合わせた。ペースト状になれば、氷水及び豚脂を加え、カッティングを続けた。最後に、澱粉試料を加え、よく混ぜ合わせ、均一なペーストにした。ケーシングに充填し、８０℃にて４０分間殺菌を行なった。流水で冷却しソーセージを調製した。

得られたソーセージについて、製造翌日、及び１週間後に官能検査を実施した。試作比較例１２−１はやや弾力に乏しい食感であり歯ごたえも良好とはいえない。また試作比較例１２−２については、硬さはあるが、ゴツゴツとした食感となり、かつ１週間冷蔵保存した後の官能検査においては、澱粉の老化が起こり、ボソボソとしたやや離水を起こした食感となっていた。これらの試作比較例に対して、実施例９または１０−２にて調製した澱粉を添加した試作例１２−１及び１２−２は共に、良好な歯ごたえを持つ弾力を有し、かつ経時的な変化も少ない結果となった。

（試作例１３：生うどんの調製）
下記表２２に掲げる処方に準じ、澱粉、中力小麦粉と粉末グルテンを下記の割合で混合した粉に、食塩２部を水４０部に溶解した捏ね水を加え、真空ミキサーで１２分間混練した。その後製麺機を用いて複合・圧延を行い麺帯とし、切り歯１０番を用いて裁断し生うどんを得た。

得られた生うどんを沸騰水中で１０分間茹でた後、熱いスープに入れ食感を評価した。試作比較例１３−１及び試作比較例１３−２については、弾力に乏しく、食感改良には程遠い。試作比較例１３−３については、若干の弾力付与効果は認められるが、剛的な硬さ付与にすぎず、むしろ麺においては、悪い改良効果の余地がある。一方、試作例１３−１については、歯ごたえに富むモチモチとした食感改良効果が認められた。

（試作例１４：ゼリーキャンデーの調製）
下記表２３に掲げる処方に準じ、砂糖、水飴、澱粉と水を下記の割合で撹拌混合しながら、Ｂｘ（ブリックス）７５まで加熱溶解した。得られた溶液を鋳型に充填し、常温で２４時間放置する。固化を確認後、鋳型から取り出し、ゼリーキャンデーを得た。

得られたゼリーキャンデーについて、試作例１４−１及び１４−２は両者ともに、適度な粘弾性と、且つ口解け感が良い結果となった。一方、試作比較例１４−１は弾力感が強く、また試作比較例１４−２はもちもち感が強いが、共に糊感が強く口解けが悪かった。

（試作例１５：冷菓の調製）
下記表２４に掲げる処方に準じ、原料と水を下記の割合で撹拌混合しながら、Ｂｘ（ブリックス）４０まで加熱溶解した。得られた溶液をアイスクリーマー装置に投入し、３５分間冷却撹拌を行った。得られた生地を、容器に移し、冷凍保存し、冷菓を得た。

得られた冷菓について、試作例１５−１及び１５−２は両者ともに、適度な粘弾性と、もちもちした食感を有し、且つ口解け感が良い結果となった。一方、試作比較例１５−１は、もち感を有し、試作比較例１５−２も、もち感と糸引き性を有するが、両者共に糊感が強く、口の中での溶解性が悪かった。

（実施例１３−１）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ由来、Ｎｏｖｏ社製「Ｔｏｒｕｚｙｍｅ ３．０Ｌ」；至適ｐＨ６．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。この結果、セットバック粘度は、７．０（ＢＵ）であった。

（実施例１３−２）
未処理の天然の小麦澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ６．０に調整した後、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ（Ｐａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ）由来、天野エンザイム製「コンチザイム」）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表２−２に示す。

（実施例１４）
未処理の天然のコーンスターチ４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ由来、Ｎｏｖｏ社製「Ｔｏｒｕｚｙｍｅ ３．０Ｌ」；至適ｐＨ６．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表３−２に示す。この結果、セットバック粘度は、０（ＢＵ）であった。

（実施例１５）
未処理の天然のタピオカ澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ由来、Ｎｏｖｏ社製「Ｔｏｒｕｚｙｍｅ ３．０Ｌ」；至適ｐＨ６．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表４−２に示す。この結果、セットバック粘度は、２（ＢＵ）であった。

（比較例１８）
未処理の天然のタピオカ澱粉５００ｇに、６．７％（ｗ／ｗ）硫酸ナトリウム水溶液７５０ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ８．５に調整した後、酢酸ビニルモノマー７．３６ｇを添加し、３０℃で４０分間撹拌することにより反応を行った。４０分後、懸濁液のｐＨを６．０に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酢酸澱粉を回収した。得られた酢酸澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。

（比較例１９）
未処理の天然のタピオカ澱粉５００ｇに、１１％（ｗ／ｗ）硫酸ナトリウム水溶液７８５ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ１１．０に調整した後、プロピレンオキサイド２４ｇを添加し、４２℃で１６時間撹拌することにより反応を行った。１６時間後、懸濁液のｐＨを６．０に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、ヒドロキシプロピル澱粉を回収した。得られたヒドロキシプロピル澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。

（比較例２０）
未処理の天然のタピオカ澱粉５００ｇに、６．７％（ｗ／ｗ）硫酸ナトリウム水溶液７５０ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ１１．０に調整した後、オキシ塩化リン１０μlを添加し、３０℃で１時間撹拌することにより反応を行った。１時間後、懸濁液のｐＨを６．０に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、リン酸架橋澱粉を回収した。得られたリン酸架橋澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。

（比較例２１）
未処理の天然のタピオカ澱粉５００ｇに、１０％（ｗ／ｗ）硫酸ナトリウム水溶液９１０ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ１１．０に調整した後、プロピレンオキサイド１６ｇを添加し、４２℃で１６時間撹拌することによりエーテル化反応を行った。１６時間後、懸濁液の澱粉懸濁液を３０℃に調整し、オキシ塩化リン５μｌ添加し、３０℃で１時間撹拌することにより架橋反応を行った。１時間後、ｐＨを６．０に調整し、全ての反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、ヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉を回収した。得られたヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。

（実施例１６）
未処理の天然のタピオカ澱粉４ｋｇにイオン交換水９ｋｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。なお、本試料の分解率は、21％であった。

（実施例１７）
比較例１８で調製した酢酸澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例１８）
比較例１８で調製した酢酸澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例１９）
比較例１９で調製したヒドロキシプロピル澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例２０）
比較例１９で調製したヒドロキシプロピル澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例２１）
比較例２０で調製したリン酸架橋澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例２２）
比較例２０で調製したリン酸架橋澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例２３）
比較例２１で調製したヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例２４）
比較例２１で調製したヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例２５）
実施例１６で調製した酵素処理澱粉５００ｇに、６．７％（ｗ／ｗ）硫酸ナトリウム水溶液７５０ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ８．５に調整した後、酢酸ビニルモノマー７．３６ｇを添加し、３０℃で４０分間撹拌することにより反応を行った。４０分後、懸濁液のｐＨを６．０に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酢酸酵素処理澱粉を回収した。得られた酢酸酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例２６）
実施例１６で調製した酵素処理澱粉５００ｇに、１１％（ｗ／ｗ）硫酸ナトリウム水溶液７８５ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ１１．０に調整した後、プロピレンオキサイド２４ｇを添加し、４２℃で１６時間撹拌することにより反応を行った。１６時間後、懸濁液のｐＨを６．０に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、ヒドロキシプロピル酵素処理澱粉を回収した。得られたヒドロキシプロピル酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例２７）
実施例１６で調製した酵素処理澱粉５００ｇに、６．７％（ｗ／ｗ）硫酸ナトリウム水溶液７５０ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ１１．０に調整した後、オキシ塩化リン１０μｌを添加し、３０℃で１時間撹拌することにより反応を行った。１時間後、懸濁液のｐＨを６．０に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、リン酸架橋酵素処理澱粉を回収した。得られたリン酸架橋酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例２８）
実施例１６で調製した酵素処理澱粉５００ｇに、１０％（ｗ／ｗ）硫酸ナトリウム水溶液９１０ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ１１．０に調整した後、プロピレンオキサイド１６ｇを添加し、４２℃で１６時間撹拌することによりエーテル化反応を行った。１６時間後、澱粉懸濁液を３０℃に調整し、オキシ塩化リンを５μl添加し、３０℃で１時間撹拌することによりし、架橋反応を行った。１時間後、懸濁液のｐＨを６．０に調整し、全ての反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、ヒドロキシプロピル化リン酸架橋酵素処理澱粉を回収した。得られたヒドロキシプロピル化リン酸架橋酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

比較例１８〜２１および実施例１７〜２８の測定結果を表２５−２に示す。なお、本化学修飾と酵素処理を併用した澱粉のレオメータ分析においては、５℃で１６時間冷蔵保管ではゲルが測定に充分な硬さにならないため、ゲル物性を比較することが困難である。そこで、５℃で２１日間冷蔵保管後、確認を行った。詳細は以下の通りである。

乾物換算で２０重量％濃度となるように、澱粉糊液を作製し、折幅４５ｍｍのクレハロンケーシングに充填する。これを９０℃まで１℃／ｍｉｎで昇温し、３０分間９０℃で保持する。その後、２０℃の恒温水槽にて３０分間放冷し、続いて冷蔵庫にて５℃まで冷却した。冷却後、５℃で２１日間冷蔵保管し、その後室温（約２５℃）で４時間放置して室温に戻した後に、レオテック社製レオメータ（ＲＴ−２０１０Ｊ−ＣＷ）で測定する。レオメータの測定条件は、試験項目として破断試験、試料の高さを２５ｍｍとし、粘性用球Φ５（直径５ｍｍ、面積１９．６３５ｍｍ^２）のアダプターを用い、試料の移動速度（破断速度）を６ｃｍ／ｍｉｎで測定する。この時、澱粉ゲルの硬さを破断応力（ｇ）およびヤング率（ｄｙｎ／ｃｍ^２）で評価する。

化学修飾と酵素処理とを併用すると、特に、リン酸架橋澱粉に酵素処理すると、最高粘度を保持したまま、ゲル形成能を高めることができることが確認された。これは、従来の化学修飾においてリン酸架橋を高めると、ゲルは硬くなるが、最高粘度が著しく低下してしまい、粉っぽさの原因となることに比較して極めて優れた利点である。また、リン酸架橋澱粉に限らず、他の化学修飾澱粉についても、酵素処理を行うことにより、従来の化学修飾澱粉と比較して粘度は比較的維持しながらもゲル形成能を高めることができることが確認された。

（比較例２２：酸化澱粉）
未処理の天然のタピオカ澱粉５００ｇに、イオン交換水７５０ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ１０．０に調整した後、有効塩素量１０％の次亜塩素酸ナトリウムを２．５ｇ添加し、懸濁液のｐＨをｐＨ１０．０に保持しながら、３０℃で２時間撹拌することにより反応を行った。２時間後、懸濁液のｐＨを６．０に調整し、続いて、亜硫酸水素ナトリウムを２ｇ添加し、攪拌後、直ちに懸濁液のｐＨをｐＨ６．０に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酸化澱粉を回収した。得られた酸化澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。

（比較例２３：漂白澱粉）
未処理の天然のタピオカ澱粉５００ｇに、イオン交換水７００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ１１．０に調整した後、有効塩素量１０％の次亜塩素酸ナトリウムを２．５ｇ添加し、懸濁液のｐＨをｐＨ１１に保持しながら、３０℃で５分間撹拌し、続いて、メタ重亜硫酸ナトリウムを０．２５ｇ添加し、１０分間攪拌し、その後懸濁液のｐＨを６．０に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、漂白澱粉を回収した。得られた漂白澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。

（実施例２９：酸化澱粉をアミログルコシダーゼ処理した場合）
比較例２２で調製した酸化澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例３０：酸化澱粉をα−アミラーゼ処理した場合）
比較例２２で調製した酸化澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例３１：漂白澱粉をアミログルコシダーゼ処理した場合）
比較例２３で調製した漂白澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例３２：漂白澱粉をα−アミラーゼ処理した場合）
比較例２３で調製した漂白澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。比較例２２〜２３および実施例２９〜３２の測定結果を表２５−２に示す。

（比較例２４）
未処理の天然のコーンスターチ２ｋｇにイオン交換水を加え、水分含量２１％に調整し、それをできる限り空所の無い状態で３Ｌガラスビーカーに詰め、上部をアルミ箔で覆った後、１２０℃で１５分間加熱することにより湿熱処理を行った。湿熱処理終了後、送風乾燥し、湿熱処理澱粉を回収した。

（実施例３３）
未処理の天然のコーンスターチ４ｋｇにイオン交換水９ｋｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。なお、本試料の分解率は、３４％であった。

（実施例３４）
未処理の天然のコーンスターチ４ｋｇにイオン交換水９ｋｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。なお、本試料の分解率は、２８％であった。

（実施例３５）
比較例２４で調製した湿熱処理澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、アミログルコシダーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｇｅｎｅｎｃｏｒ製「ＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００」；至適ｐＨ４．４）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、湿熱酵素処理澱粉を回収した。得られた湿熱酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例３６）
比較例２４で調製した湿熱処理澱粉４００ｇにイオン交換水９００ｇを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のｐＨをｐＨ５．０に調整した後、α−アミラーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、ＤＡＮＩＳＣＯ社製「ＡＭＹＬＥＸ Ａ３」；至適ｐＨ５．０）を１重量％（対澱粉固形分）添加し、５０℃で１８時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、湿熱酵素処理澱粉を回収した。得られた湿熱酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例３７）
実施例３３で調製した酵素処理澱粉４００ｇにイオン交換水を加え、水分含量２１％に調整し、それをできる限り空所の無い状態で１Ｌガラスビーカーに詰め、上部をアルミ箔で覆った後、１２０℃で１５分間加熱することにより湿熱処理を行った。湿熱処理終了後、送風乾燥し、湿熱酵素処理澱粉を回収した。得られた湿熱酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。

（実施例３８）
実施例３４で調製した酵素処理澱粉４００ｇにイオン交換水を加え、水分含量２０％に調整し、それをできる限り空所の無い状態で１Ｌガラスビーカーに詰め、上部をアルミ箔で覆った後、１２０℃で１５分間加熱することにより湿熱処理を行った。湿熱処理終了後、送風乾燥し、湿熱酵素処理澱粉を回収した。得られた湿熱酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。比較例２４および実施例３５〜３８の測定結果を表２６−２に示す。

以上のように、本発明の好ましい実施形態を用いて本発明を例示してきたが、本発明は、この実施形態に限定して解釈されるべきものではない。本発明は、特許請求の範囲によってのみその範囲が解釈されるべきであることが理解される。当業者は、本発明の具体的な好ましい実施形態の記載から、本発明の記載および技術常識に基づいて等価な範囲を実施することができることが理解される。本明細書において引用した特許、特許出願および文献は、その内容自体が具体的に本明細書に記載されているのと同様にその内容が本明細書に対する参考として援用されるべきであることが理解される。

上述したとおり、澱粉の最高粘度を上昇させるという特性を有する酵素を使用することにより、本発明は、様々な産業上の利点を提供する。

本発明により、従来の未化工澱粉や化工澱粉では得られなかった、新しい食感の食品を提供することができるようになる。例えば、本発明における酵素処理タピオカ澱粉の使用により、非常に軽く、ソフトで、口溶けの良好な食感を有するクッキーを調製することができ、高齢者や幼児にも適した食べ易い食感のクッキーを提供することができるようになる。加えて、クッキー成型時の生地は、非常にドライでサラッとしていることからも、生地調製時の加水量を更に増やすこともでき、その結果、歩留まりを向上させることができるようになる。また、いわゆる関東地方で言うくず餅のように、原料の小麦澱粉の調製に、例えば１年以上という長期間の発酵過程を経なければならず、これまで多大な時間と労力を要してきた食品に対して、例えば、本発明における酵素処理小麦澱粉の使用により、このような時間と労力を要せずして、いわゆる関東地方で言うくず餅を容易に調製することができ、且つ、発酵小麦澱粉由来の発酵臭もなく、良好な風味のくず餅を調製することができるようになる。

また、麺類、例えば生うどんについて、本発明における酵素処理タピオカ澱粉の使用により、歯ごたえに富むモチモチとした食感改良効果が認められ、麺の品質のファクターである「つるみ」、「伸び」などについては何ら悪影響を与えなかった。よって、この酵素処理澱粉の添加により、容易に日本人が好む麺の食感に改良されることがわかった。

Claims (14)

1. 澱粉ゲル含有食品の製造方法であって、
   澱粉粒を約１０℃以上約７０℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程；
   酵素分解により溶出した糖質を、該酵素処理澱粉から除去する工程；
   食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程；
   該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程；および
   該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程
   を包含し、該酵素が、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来、Ｒｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ由来、またはＲｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のアミログルコシダーゼ、Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．由来、またはＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来またはＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼ、およびＢａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ由来、またはＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ）由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択され、ただし、該澱粉粒はアミロース３０％以上を含有する高アミロース澱粉の澱粉粒ではない、方法。
2. 前記酵素が、ノボザイムからＡＭＧとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＯＰＴＩＤＥＸ Ｌ−４００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、ＤＡＮＩＳＣＯからＤＩＡＺＹＭＥ Ｘ４ＮＰとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルコアミラーゼ「アマノ」ＳＤとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルクザイムＡＦ６として市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ由来のアミログルコシダーゼ、新日本化学工業からスミチームとして市販されるＲｈｉｚｏｐｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからトランスグルコシダーゼ Ｌ『アマノ』として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、ＧｅｎｅｎｃｏｒからＴｒａｎｓｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ Ｌ−５００として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−グルコシダーゼ、天野エンザイムからビオザイムＡとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＬとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ由来のα−アミラーゼ、ダニスコからＡＭＹＬＥＸ Ａ３として市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームＡＳとして市販されるＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ由来のα−アミラーゼ、Ｓｉｇｍａからイソアミラーゼとして市販されるＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｍｙｌｏｄｅｒａｍｏｓａ由来のイソアミラーゼ、ノボザイムからＴｏｒｕｚｙｍｅとして市販されるＢａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ、および天野エンザイムからコンチザイムとして市販されるＰａｅｎｉｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍａｃｅｒａｎｓ）由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、請求項１に記載の方法。
3. 澱粉ゲル含有食品の製造方法であって、
   澱粉粒を約１０℃以上約７０℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程；
   酵素分解により溶出した糖質を、該酵素処理澱粉から除去する工程；
   食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程；
   該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程；および
   該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程
   を包含し、該酵素が、（１）配列番号１、３、５、７、または９の塩基配列に相補的な塩基配列からなる核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされ、かつ澱粉加水分解活性を有し、ここで、該ストリンジェントな条件は、５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ（７５０ｍＭ ＮａＣｌ、７５ｍＭ クエン酸三ナトリウム）、５０ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．６）、５×デンハルト溶液（０．２％ ＢＳＡ、０．２％ Ｆｉｃｏｌｌ ４００および０．２％ポリビニルピロリドン）、１０％硫酸デキストラン、および２０μｇ／ｍｌ変性剪断サケ精子ＤＮＡを含む溶液中での６５℃でのハイブリダイゼーション、およびその後の０．１〜２倍濃度のＳＳＣ溶液（１倍濃度のＳＳＣ溶液の組成は、１５０ｍＭ 塩化ナトリウム、１５ｍＭ クエン酸ナトリウムである）での６５℃条件下での洗浄であり、ただし、該澱粉粒はアミロース３０％以上を含有する高アミロース澱粉の澱粉粒ではない、方法。
4. 澱粉ゲル含有食品の製造方法であって、
   澱粉粒を約１０℃以上約７０℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程；
   酵素分解により溶出した糖質を、該酵素処理澱粉から除去する工程；
   食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程；
   該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程；および
   該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程
   を包含し、該酵素が、（１）配列番号２、４、６、８、または１０のアミノ酸配列に対して少なくとも９５％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有しかつ澱粉加水分解活性を有し、ただし、該澱粉粒はアミロース３０％以上を含有する高アミロース澱粉の澱粉粒ではない、方法。
5. 前記澱粉粒が、未処理澱粉、物理処理澱粉または化学修飾澱粉の澱粉粒である、請求項１、３または４に記載の方法。
6. 前記澱粉粒が未処理澱粉の澱粉粒であり、該澱粉粒が前記方法により澱粉ゲル含有食品を得るまでのいずれの段階においても化学修飾も、物理処理もされない、請求項１、３または４に記載の方法。
7. 前記澱粉粒が未処理澱粉または物理処理澱粉の澱粉粒であり、前記酵素処理澱粉を化学修飾する工程をさらに包含し、該化学修飾した酵素処理澱粉を前記食品材料および水と混合する、請求項１、３または４に記載の方法。
8. 前記澱粉粒が未処理澱粉または化学修飾澱粉の澱粉粒であり、前記酵素処理澱粉を物理処理する工程をさらに包含し、該物理処理した酵素処理澱粉を前記食品材料および水と混合する、請求項１、３または４に記載の方法。
9. 請求項１、３または４に記載の方法によって製造される、澱粉ゲル含有食品。
10. 前記食品が高水分系の食品であり、該食品の水分量が、可食部１００ｇあたり４０ｇより高く９５ｇより低い、請求項９に記載の食品。
11. 前記食品が、和菓子類、油脂含有食品、ゲル状食品、魚肉・畜肉加工食品、たれ・ソース類および麺類からなる群より選択される、請求項９に記載の食品。
12. 前記食品が低水分系の食品であり、該食品の水分量が、可食部１００ｇあたり１ｇ以上４０ｇ以下である、請求項９に記載の食品。
13. 前記食品が、ベーカリー類、洋菓子類およびフライ食品からなる群より選択される、請求項９に記載の食品。
14. 前記澱粉がタピオカ、トウモロコシまたは小麦に由来する、請求項９に記載の食品。