JP4483213B2 - Production method of target substance by fermentation method - Google Patents
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Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、発酵工業に関し、詳しくは微生物を利用した発酵法によりＬ−アミノ酸などの目的物質を効率よく製造する方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
細菌の細胞は、様々な環境に適応するために、代謝経路や呼吸経路などを改変させてきた。エネルギー代謝において、大きな役割を果たす制御システムとして、Arc（aerobic respiration control）、Fnr（fumarate nitrate reduction）が知られている。これらは、エシェリヒア・コリとその近縁種に普遍的に存在するグローバルレギュレータータンパク質であり、前者はエシェリヒア・コリ染色体の０分の位置に存在するarcA遺伝子によりコードされ、後者は２９分の位置に存在するfnr遺伝子によりコードされ、両者はともに、嫌気的条件下において数多くの因子を制御することにより、細胞をその環境に適応させる。また、ArcAタンパク質、Fnrタンパク質は転写因子であり、嫌気的条件において、エシェリヒア・コリ染色体上のターゲット遺伝子のプロモーター領域に直接結合することにより、そのターゲット遺伝子の発現を正または負に制御することが明らかとなっている（非特許文献１）。
【０００３】
最近では、ＤＮＡマイクロアレイ技術を用いて、エシェリヒア・コリ由来ArcAタンパク質、Fnrタンパク質のようなグローバルなレギュレーターをコードする遺伝子の破壊株の発現プロファイルがデータベース化され、公開されている（非特許文献２）。
【０００４】
これまでに、ArcAタンパク質は、TCAサイクル上の遺伝子の発現を負に制御することが知られており（非特許文献１）、このデータベース上のarcA破壊株においてはTCAサイクル上の遺伝子の発現が上昇していることが明らかになっている。一方、Fnrタンパク質は嫌気的条件で機能する呼吸経路の遺伝子発現を正に調節することが知られている。
【０００５】
グローバルな因子の破壊株における発現プロファイルで、arcA破壊株と同様にTCAサイクル上の遺伝子発現が上昇する株にとしてdam破壊株が挙げられる（非特許文献３）。
【０００６】
Damタンパク質は、細胞内の制限修飾系に関与する修飾因子のメチラーゼであり、エシェリヒア・コリ染色体の76分の位置に存在するdam遺伝子によりコードされる（非特許文献４）。
【０００７】
これまでのところ、arcA遺伝子、fnr遺伝子、dam遺伝子などのグローバルな因子の発現調節を行うことによる物質生産の向上に関する報告はなされていない。
【０００８】
【非特許文献１】
S. Iuchi et al., Cell, 66, 5-7 (1991)
【非特許文献２】
http://www.genome.ad.jp/dbget-bin/get_htext?Exp_DB+-n+Bget-bin/get_htext?Exp_DB+-n+B
【非特許文献３】
2001年 日本バイオインダストリー協会資源生物変換研究会主催 シンポジウム「ゲノム時代のグリーンバイオテクノロジー」にて、奈良先端大 森浩禎 口頭発表
【非特許文献４】
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 87 (23), 9454-9458 (1990)
【０００９】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、エシェリヒア属細菌等のγ−プロテオバクテリアを用いて発酵法により有用物質を生産するに際し、生産効率を向上させることを課題とする。
【００１０】
【課題を解決するための手段】
本発明者は、上記課題を解決するために鋭意研究を行い、γ−プロテオバクテリアに普遍的に存在するレギュレータータンパク質をコードする遺伝子を改変することで、γ−プロテオバクテリアによる物質生産を改善させ得ることを見出した。すなわち、γ−プロテオバクテリアにおいてarcA遺伝子を破壊することにより、目的物質の生産能が改善されることを見出し、本発明を完成するに至った。
【００１１】
すなわち本発明は、以下のとおりである
（１）目的物質の生産能を有し、かつ、ＡｒｃＡタンパク質が正常に機能しないように改変されたγ−プロテオバクテリア。
（２）正常に機能するＡｒｃＡタンパク質が、下記（Ａ）又は（Ｂ）に記載のタンパク質である(1)のγ−プロテオバクテリア。
（Ａ）配列番号３２に示すアミノ酸配列を有するタンパク質。
（Ｂ）配列番号３２に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつ、γ−プロテオバクテリアにおいて、そのタンパク質が正常に機能する場合に比べて、同タンパク質が正常に機能しないときに目的物質の生産能を向上させるタンパク質。
（３）正常に機能するＡｒｃＡタンパク質が、配列番号３２に示すアミノ酸配列と７０％以上の相同性を有し、かつ、そのタンパク質が正常に機能する場合に比べて、同タンパク質が正常に機能しないときに目的物質の生産能を向上させるタンパク質である(1)のγ−プロテオバクテリア。
（４）正常に機能するＡｒｃＡタンパク質が、配列番号３２に示すアミノ酸配列において、２以上、かつ、２０以下のアミノ酸の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつ、γ−プロテオバクテリアにおいて、そのタンパク質が正常に機能する場合に比べて、同タンパク質が正常に機能しないときに目的物質の生産能を向上させるタンパク質である(1)のγ−プロテオバクテリア。
（５）染色体上のａｒｃＡ遺伝子が破壊されたことによりＡｒｃＡタンパク質が正常に機能しないことを特徴とする(1)〜(4)のいずれかのγ−プロテオバクテリア。
（６）前記ａｒｃＡ遺伝子が、下記（ａ）又は（ｂ）に記載のＤＮＡである(5)のγ−プロテオバクテリア。
（ａ）配列番号３１の塩基番号１０１〜８１７からなる塩基配列を含むＤＮＡ。
（ｂ）配列番号３１の塩基番号１０１〜８１７からなる塩基配列又は同塩基配列から調製され得るプローブとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、そのタンパク質が正常に機能する場合に比べて、同タンパク質が正常に機能しないときに目的物質の生産能を向上させるタンパク質をコードするＤＮＡ。
（７）前記γ−プロテオバクテリアは、エシェリヒア属細菌である(1)〜(6)のいずれかのγ−プロテオバクテリア。
（８）前記目的物質がＬ−アミノ酸である(1)〜(7)のいずれかのγ−プロテオバクテリア。
（９）前記Ｌ−アミノ酸がＬ−リジン、Ｌ−グルタミン酸、又はＬ−アルギニンである(8)のγ−プロテオバクテリア。
（１０）(1)〜(9)のいずれかのγ−プロテオバクテリアを培地で培養し、目的物質を該培地又は菌体中に生成蓄積させ、該培地又は菌体より目的物質を採取することを特徴とする目的物質の製造法。
【００１２】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を詳細に説明する。
＜１＞本発明のγ−プロテオバクテリア
本発明に用いるγ−プロテオバクテリアとしては、エシェリヒア属、エンテロバクター属、パントエア属、クレブシエラ属、セラチア属、エルビニア属、サルモネラ属、モルガネラ属など、γ−プロテオバクテリアに属する微生物であって、目的物質を生産する能力を有するものであれば、特に限定されない。具体的にはNCBI（National Center for Biotechnology Information）データベースに記載されている分類によりγ−プロテオバクテリアに属するものが利用できる（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/htbin-post/Taxonomy/wgetorg?mode=Tree&id=1236&lvl=3&keep=1&srchmode=1&unlock）。
【００１３】
エシェリヒア属細菌としては、エシェリヒア・コリ等が挙げられる。また。エンテロバクター属細菌としては、エンテロバクター・アグロメランス、エンテロバクター・アエロゲネス等が挙げられる。
【００１４】
尚、近年、エンテロバクター・アグロメランスは、１６Ｓ ｒＲＮＡの塩基配列解析などにより、パントエア・アグロメランス（Pantoea agglomerans）又はパントエア・アナナティス（P. ananatis）、パントエア・スチューアルティ（P. stewartii）アグロメランス等に再分類されているものがある。本発明においては、γ−プロテオバクテリアに分類され、かつ、arcA遺伝子を有するものであれば、エンテロバクター属又はパントエア属のいずれに属するものであってもよい。
【００１５】
エシェリヒア・コリを遺伝子工学的手法を用いて育種する場合には、E. coli K12株及びその誘導体を用いることができる。また、パントエア・アナナティスを遺伝子工学的手法を用いて育種する場合には、パントエア・アナナティスＡＪ１３３５５株（ＦＥＲＭ ＢＰ−６６１４）、ＡＪ１３３５６株（ＦＥＲＭ ＢＰ−６６１５）、ＡＪ１３６０１株（ＦＥＲＭ ＢＰ−７２０７）及びそれらの誘導体を用いることができる。これらの株は、分離された当時はエンテロバクター・アグロメランスと同定され、エンテロバクター・アグロメランスとして寄託されたが、上記のとおり、16S rRNAの塩基配列解析などにより、パントエア・アナナティスに再分類されている。
【００１６】
本発明のγ−プロテオバクテリアは、上記細菌であって、目的物質の生産能を有する細菌である。「目的物質の生産能」とは、本発明の細菌を培地に培養したときに、目的物質を細胞又は培地から回収できる程度に、細胞又は培地中に生産、蓄積する能力をいう。
【００１７】
本発明により製造される目的物質としては、γ−プロテオバクテリアによって生産され得るもので、かつ、TCAサイクルを経由して合成される物質、又はそれらの物質を基質として合成される物質であれば特に限定されない。たとえば、Ｌ−リジン、Ｌ−スレオニン、Ｌ−イソロイシン、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−グルタミン、Ｌ−アルギニン、などの種々のアミノ酸、Ｌ−ホモセリン、コハク酸などの有機酸など、従来よりγ−プロテオバクテリアにより生産されてきたものが挙げられる。また、従来γ−プロテオバクテリアにより工業的に生産されていない物質であっても、TCAサイクルを経由して合成される物質を基質として合成される得る限り、本発明を適用することができる。
【００１８】
Ｌ−リジン生産性のγ−プロテオバクテリアとしては、Ｌ−リジンアナログに耐性を有する変異株が例示できる。このＬ−リジンアナログは、Ｌ−アミノ酸生産菌の増殖を阻害するようなものであるが、その抑制はＬ−リジンが培地中に共存すれば、全体的または部分的に解除されるようなものである。たとえば、オキサリジン、リジンハイドロキサメート、Ｓ−（２−アミノエチル）−Ｌ−システイン（ＡＥＣ）、γ−メチルリジン、α−クロロカプロラクタムなどがある。これらのリジンアナログに耐性を有する変異株は、通常の人工変異操作をγ−プロテオバクテリアに施すことにより得られる。Ｌ−リジン製造に用いる菌株として、具体的にはエシェリヒア・コリAJ11442（FERM BP-1543、NRRL B-12185；特開昭56-18596号及び米国特許第4346170号参照）、エシェリヒア・コリVL611が挙げられる。これらの微生物のアスパルトキナーゼは、Ｌ−リジンによるフィードバック阻害が解除されている。
【００１９】
その他にも、たとえば後述のＬ−スレオニン生産菌が挙げられる。Ｌ−スレオニン生産菌も、一般的にはそのアスパルトキナーゼのＬ−リジンによる阻害が解除されているからである。
【００２０】
後記実施例においては、エシェリヒア・コリのＬ−リジン生産菌として、WC196株を用いた。本菌株は、エシェリヒア・コリK-12由来のW3110株にＡＥＣ耐性を付与することによって育種されたものである。同株は、エシェリヒア・コリAJ13069株と命名され、平成６年１２月６日付で工業技術院生命工学工業技術研究所（現 独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センター、〒305-8566 日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６）に受託番号FERM P-14690として寄託され、平成７年９月２９日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-5252が付与されている（WO96/17930号国際公開パンフレット参照）。
【００２１】
Ｌ−スレオニン生産性のγ−プロテオバクテリアとしては、エシェリヒア・コリVKPM B-3996（RIA 1867）（米国特許第5,175,107号参照）、MG442株（Gusyatiner et al., Genetika (in Russia), 14, 947-956 (1978)参照）などが挙げられる。
【００２２】
γ−プロテオバクテリアに属し、Ｌ−グルタミン酸生産能を有する微生物としては、たとえば、α−ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が欠損もしくは、低下した微生物が挙げられる。α-ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が欠損もしくは低下したエシェリヒア属細菌およびその取得方法は、特開平5-244970号公報及び特開平7-203980号公報に記載されている。具体的には次のような株が挙げられる。
【００２３】
エシェリヒア・コリW3110sucA::Kmr
エシェリヒア・コリAJ12624（FERM BP-3853）
エシェリヒア・コリAJ12628（FERM BP-3854）
エシェリヒア・コリAJ12949（FERM BP-4881）
エシェリヒア・コリW3110sucA::Kmrは、エシェリヒア・コリW3110のα−ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ遺伝子（以下、「sucA遺伝子」）と略す）が破壊されて得られた株であり、α−ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ完全欠損株である。
【００２４】
γ−プロテオバクテリア属に属し、α−ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が欠損もしくは低下した微生物およびその取得方法は、特開平5-244970号公報及び特開平7-203980号公報に記載されている。
【００２５】
Ｌ−アルギニン生産性のγ−プロテオバクテリアとしては、argA遺伝子を導入されたエシェリヒア・コリ（特開昭57-5693号参照）、及び、エシェリヒア・コリ２３７株（ロシア特許出願第２０００１１７６７７号）等が挙げられる。
【００２６】
Ｌ−イソロイシン生産性のγ−プロテオバクテリアとしては、エシェリヒア・コリKX141（VKPM B-4781）（欧州特許出願公開第519,113号参照）が挙げられる。
Ｌ−ホモセリン生産性のγ−プロテオバクテリアとしては、C600株（Appleyard R. K., Genetics, 39, 440-452 (1954) 参照）のLeu+復帰変異株であるNZ10株が挙げられる。
【００２７】
コハク酸生産性のγ−プロテオバクテリアとしては、エシェリヒア・コリを用いた例が知られている（Wang, X., et al., Appl. biochem. Biotech., 70-72, 919-928 (1998)）。
【００２８】
また、Ｌ−アミノ酸生産能を有するγ−プロテオバクテリアは、Ｌ−アミノ酸の生合成に関与する遺伝情報を担うDNAを遺伝子組換え技術により導入、増強することによっても、育種することができる。例えば、Ｌ−リジン生産菌においては、導入される遺伝子は、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、アスパルトキナーゼ、ジヒドロジピコリン酸合成酵素、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ、スクシニルジアミノピメリン酸トランスアミアミナーゼ、スクシニルジアミノピメリン酸デアシラーゼ等、Ｌ−リジンの生合成経路上の酵素をコードする遺伝子である。ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、又はアスパルトキナーゼ及びジヒドロピコリン酸合成酵素のようにＬ−アスパラギン酸、又はＬ−リジンによるフィードバック阻害を受ける酵素遺伝子の場合には、かかる阻害が解除された酵素をコードする変異型遺伝子を用いることが望ましい。
【００２９】
また、Ｌ−グルタミン酸生産菌においては、導入される遺伝子として、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、グルタミンシンテターゼ、グルタミン酸シンターゼ、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ、アコニット酸ヒドラターゼ、クエン酸シンターゼ、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、ピルビン酸デヒドロゲナーゼ、ピルビン酸キナーゼ、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ、エノラーゼ、ホスホグリセルムターゼ、ホスホグリセリン酸キナーゼ、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、フルトースビスリン酸アルドラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコースリン酸イソメラーゼなどがある。
【００３０】
さらに、目的とするＬ−アミノ酸の生合成経路から分岐して他の化合物を生成する反応を触媒する酵素の活性が低下または欠損していてもよい。たとえば、Ｌ−リジンの生合成経路から分岐してＬ−リジン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素としては、ホモセリンデヒドロゲナーゼがある（WO95/23864号国際公開パンフレット参照）。また、Ｌ−グルタミン酸の生合成経路から分岐してＬ−グルタミン酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素としては、αケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ、イソクエン酸リアーゼ、リン酸アセチルトランスフェラーゼ、酢酸キナーゼ、アセトヒドロキシ酸シンターゼ、アセト乳酸シンターゼ、ギ酸アセチルトランスフェラーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、グルタミン酸デカルボキシラーゼ、１−ピロリンデヒドロゲナーゼなどがある。
【００３１】
上記のような目的物質産生能を有するγ−プロテオバクテリアの育種において、γ−プロテオバクテリアに遺伝子を導入、増強するには、γ−プロテオバクテリア細胞内で自律複製可能なベクターに遺伝子を連結して組換えDNAを作製し、それでγ−プロテオバクテリアを形質転換する方法がある。その他にトランスダクション、トランスポゾン（Berg, D. E. and Berg, C. M., Bio/Technol. 1, 417 (1983)）、Muファージ（特開平2-109985号）または相同組換え（Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. (1972)）を用いた方法で宿主染色体に目的遺伝子を組み込むこともできる。また、PCR反応により生成した直鎖上DNAを用いて遺伝子を破壊する方法によっても目的遺伝子を導入することができる（Kirill A. Datsenko et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 97 (12), 6640-6645 (2000) ）。
【００３２】
上記のように組換えＤＮＡ技術により育種されたγ−プロテオバクテリアとしては、例えば、Ｌ−リジンによるフィードバック阻害が解除される変異を有するジヒドロジピコリン酸合成酵素、Ｌ−リジンによるフィードバック阻害が解除されたアスパルトキナーゼ、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ等の活性が増強され、Ｌ−リジン生産能を有するエシェリヒア属細菌（米国特許第6,040,160号）、あるいは、クエン酸シンターゼ、フォスフォエノールピルベートカルボキシラーゼ、又はグルタミン酸デヒドロゲナーゼの活性が高められ、Ｌ−グルタミン酸生産能を有するエンテロバクター属（パントエア属）細菌が挙げられる（EP 0 952 221 A2、EP 0 999 282 A2、EP 1 078 989 A2）。
【００３３】
本発明に用いるγ−プロテオバクテリアは、上記のような目的物質を産生する能力を有し、かつ、細胞内でArcAタンパク質が正常に機能しないように改変された細菌である。「ArcAタンパク質が正常に機能しないように改変された」とは、ArcAタンパク質の機能が全く消失するか、あるいは、エシェリヒア属細菌の非改変株、例えば野生株に比べて該機能が低下するように改変されたことを意味する。ArcAタンパク質が正常に機能しない状態としては、例えば、arcA遺伝子の転写又は翻訳が妨げられ、同遺伝子産物であるArcAタンパク質が産生されないか、あるいは産生が低下した状態であってもよいし、産生されるArcAタンパク質に変異が起こり、ArcAタンパク質の本来の機能が低下又は消失した状態であってもよい。ArcAタンパク質が正常に機能しないγ−プロテオバクテリアとして、典型的には、染色体上のarcA遺伝子が遺伝子組換え技術により破壊された遺伝子破壊株、及び、染色体上のarcA遺伝子の発現調節配列又はコード領域に変異が生じたことにより、機能を有するArcAタンパク質が産生されないようになった変異株が挙げられる。
【００３４】
本発明の細菌の育種に用いられる野生株又は非改変株が保持するArcAタンパク質としては、例えば、配列番号３２に示すアミノ酸配列を有するタンパク質が挙げられる。また、arcA遺伝子としては、例えば、配列番号３１に示す塩基配列を有するＤＮＡが挙げられる。また、同塩基配列において、各々のコドンを他の等価のコドンに置換した配列であってもよい。なお、本発明において「タンパク質をコードするＤＮＡ」とは、ＤＮＡが二本鎖の場合にはそのいずれか一方の鎖がタンパク質をコードすることを意味する。
【００３５】
また、野生株又は非改変株が保持するArcAタンパク質は、野生型タンパク質には限られず、ArcAタンパク質の活性を有している限り、１若しくは複数の位置での１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入又は付加等を含んでいてもよい。ここで、「数個」とは、アミノ酸残基のタンパク質の立体構造における位置や種類によっても異なるが、具体的には２から３０個、好ましくは、２から２０個、より好ましくは２から１０個である。
【００３６】
前記「ArcAタンパク質の活性」とは、同タンパク質が正常に機能している場合に比べて、正常に機能しないときに目的物質の生産能を向上させる活性である。言い換えれば、ArcAタンパク質の活性とは、同タンパク質が正常に機能しないように改変されたγ−プロテオバクテリアが、γ−プロテオバクテリアの非改変株、例えば野生株よりも多量に目的物質を培地中に生産蓄積することを意味する。エシェリヒア・コリの野生株としては、例えばK12株又はその誘導体、例えばE. coli MG1655株（ATCC No.47076）、及びW3110株（ATCC No.27325）が挙げられる。また、パントエア・アナナティス（エンテロバクター・アグロメランス）の非改変株としては、ＡＪ１３３５５株（ＦＥＲＭ ＢＰ−６６１４）、ＡＪ１３３５６株（ＦＥＲＭ ＢＰ−６６１５）株、ＡＪ１３６０１株（ＦＥＲＭ ＢＰ−７２０７）が挙げられる。
【００３７】
上記のようなアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、付加、または逆位等には、ArcAタンパク質を保持する微生物の個体差、種や株の違いに基づく場合などの天然に生じる変異（mutationまたはvariation）も含まれる。
【００３８】
上記のようなａｒｃＡ遺伝子の変異体又はバリアントとしては、配列番号３１の塩基番号１０１〜８１７からなる塩基配列又は同塩基配列から調製され得るプローブとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつＡｒｃＡと同様の活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡが挙げられる。ここでいう「ストリンジェントな条件」とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。
【００３９】
プローブとして、配列番号３１の塩基配列の一部の配列を用いることもできる。そのようなプローブは、配列番号３１の塩基配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとし、配列番号３１の塩基配列を含むＤＮＡ断片を鋳型とするＰＣＲによって作製することができる。プローブとして、３００ｂｐ程度の長さのＤＮＡ断片を用いる場合には、ハイブリダイゼーションの洗いの条件は、５０℃、２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳが挙げられる。
【００４０】
以下、arcA遺伝子又はArcAタンパク質というときは、配列番号３１又は配列番号３２に示す塩基配列又はアミノ酸配列を有するものに限られず、これらの変異体又はホモログも含まれる。このようなホモログの一例として、パントエア・アナナティスのarcA遺伝子の塩基配列及びArcAタンパク質のアミノ酸配列を、配列番号１９及び配列番号２０に示す。
【００４１】
本発明の細菌は、ArcAタンパク質が正常に機能しないように改変された細菌であり、具体的には、例えば、arcA遺伝子が破壊されたγ−プロテオバクテリアである。このような細菌は、例えば、遺伝子組換え法を用いた相同組換え法（Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Laboratory press (1972); Matsuyama, S. and Mizushima, S., J. Bacteriol., 162, 1196(1985)）により、染色体上のarcA遺伝子を、正常に機能しないarcA遺伝子（以下、「破壊型arcA遺伝子」ということがある）で置換することによって行うことができる。
【００４２】
相同組換えの機構は以下のとおりである。染色体上の配列と相同性を有する配列を持つプラスミド等が菌体内に導入されると、ある頻度で相同性を有する配列の箇所で組換えを起こし、導入されたプラスミド全体が染色体上に組み込まれる。この後さらに染色体上の相同性を有する配列の箇所で組換えを起こすと、再びプラスミドが染色体上から抜け落ちるが、この時組換えを起こす位置により破壊された遺伝子の方が染色体上に固定され、元の正常な遺伝子がプラスミドと一緒に染色体上から抜け落ちることもある。このような菌株を選択することにより、破壊型arcA遺伝子が、染色体上の正常なarcA遺伝子と置換された菌株を取得することができる。
【００４３】
このような相同組換えによる遺伝子破壊技術は既に確立しており、直鎖ＤＮＡを用いる方法、温度感受性プラスミドを用いる方法等が利用できる。また、薬剤耐性等のマーカー遺伝子が内部に挿入されたarcA遺伝子を含み、かつ、目的とする微生物細胞内で複製できないプラスミドを用いることによっても、arcA遺伝子の破壊を行うことができる。すなわち、前記プラスミドで形質転換され、薬剤耐性を獲得した形質転換体は、染色体ＤＮＡ中にマーカー遺伝子が組み込まれている。このマーカー遺伝子は、その両端のarcA遺伝子配列と染色体上のこれらの遺伝子との相同組換えによって組み込まれる可能性が高いため、効率よく遺伝子破壊株を選択することができる。
【００４４】
エシェリヒア属細菌で機能する温度感受性プラスミドとしては、pMAN997（WO 99/03988号国際公開パンフレット）、pHSG415、pHSG422（Hashimoto-Gotoh, T. et al, Gene, 16, 227-235 (1981)）等が挙げられる。
【００４５】
遺伝子破壊に用いる破壊型arcA遺伝子は、具体的には、制限酵素消化及び再結合によるこれらの遺伝子の一定領域の欠失、これらの遺伝子への他のＤＮＡ断片（マーカー遺伝子等）の挿入、または部位特異的変異法（Kramer, W. and Frits, H. J., Methods in Enzymology, 154, 350 (1987)）や次亜硫酸ナトリウム、ヒドロキシルアミン等の化学薬剤による処理（Shortle, D. and Nathans, D., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 75, 270(1978)）によって、arcA遺伝子のコーディング領域またはプロモーター領域等の塩基配列の中に１つまたは複数個の塩基の置換、欠失、挿入、付加または逆位を起こさせることにより、コードされるリプレッサーの活性を低下又は消失させるか、又はarcA遺伝子の転写を低下または消失させることにより、取得することができる。これらの態様の中では、制限酵素消化及び再結合によりarcA遺伝子の一定領域を欠失させる方法、又はこれらの遺伝子へ他のＤＮＡ断片を挿入する方法が、確実性及び安定性の点から好ましい。
【００４６】
arcA遺伝子は、配列自体が公知であり、それらの配列に基づいて、PCR法又はハイブリダイゼーション法等によって容易に取得することができる。尚、遺伝子破壊に用いるarcA遺伝子は、目的とする細菌が保持するarcA遺伝子と相同組換えが生じる程度の相同性を有していればよく、具体的には、通常７０％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上の相同性を有していればよい。
【００４７】
目的とする遺伝子が破壊されたことは、サザンブロッティングやPCR法により、染色体上の遺伝子を解析することによって、確認することができる。
本発明に用いる各種遺伝子の取得、ハイブリダイゼーション、ＰＣＲ、プラスミドＤＮＡの調製、ＤＮＡの切断及び連結、形質転換等の方法は、Sambrook, J., Fritsch, E. F., Maniatis, T., Molecular Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1.21 (1989)に記載されている。
【００４８】
また、機能を有するArcAタンパク質が産生されないようになった変異株は、γ−プロテオバクテリアを紫外線照射またはN-メチル-N’-ニトロソグアニジン（NTG）もしくは亜硝酸などの通常変異処理に用いられる変異剤によって処理することによって、取得することができる。
【００４９】
上記のようにして得られる、目的物質生産能を有し、かつ、細胞内でArcAタンパク質が正常に機能しないように改変されたγ−プロテオバクテリアを培地に培養し、該培地又は菌体中に目的物質を生成蓄積させ、該培地又は菌体より目的物質を採取することにより、目的物質を製造することができる。本発明において、上記の性質を有するγ−プロテオバクテリアを用いることにより、目的物質の生産効率を向上させることができる。これは、arcA遺伝子に関するγ−プロテオバクテリア野生株は、培養のarcA遺伝子が発現し、TCAサイクル上の遺伝子の発現を抑制するのに対し、ArcAタンパク質が正常に機能しない株では、TCAサイクル上の遺伝子の発現抑制が解除されるためであると推測される。
【００５０】
本発明に用いる培地は、炭素源、窒素源、無機イオンおよび必要に応じその他の有機成分を含有する通常の培地でよい。炭素源としては、グルコース、スクロース、ラクトース、ガラクトース、フラクトース、アラビノース、マルトース、キシロース、トレハロース、リボースや澱粉の加水分解物などの糖類、グリセロール、マンニトールやソルビトールなどのアルコール類、グルコン酸、フマール酸、クエン酸やコハク酸等の有機酸類を用いることができる。窒素源としては、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機アンモニウム塩、大豆加水分解物などの有機窒素、アンモニアガス、アンモニア水等を用いることができる。有機微量栄養素としては、ビタミンB1等のビタミン類、アデニンやRNA等の核酸類などの要求物質または酵母エキス等を適量含有させることが望ましい。これらの他に、必要に応じて、リン酸カルシウム、硫酸マグネシウム、鉄イオン、マンガンイオン等が少量添加される。
【００５１】
培養は、使用する菌株に応じて従来より用いられてきた周知の条件で行ってかまわない。たとえば、好気的条件下で１６〜７２時間程度実施するのがよく、培養温度は３０℃〜４５℃に、培養中pHは４．５〜８に制御する。なお、pH調整には無機あるいは有機の酸性あるいはアルカリ性物質、さらにアンモニアガス等を使用することができる。
【００５２】
培地又は菌体からの目的物質の採取は、本願発明において特別な方法が必要とされることはない。すなわち、目的物質の採取は、従来より周知となっているイオン交換樹脂法、沈殿法その他の方法を、目的物質の種類に応じて組み合わせることにより実施できる。また、菌体中に蓄積した目的物質の採取は、菌体を物理的又は酵素的に破壊し、目的物質に応じて菌体抽出液又は膜画分から採取することができる。尚、目的物質によっては、目的物質を菌体中に存在したままの状態で、微生物触媒等として利用することもできる。
【００５３】
【実施例】
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。
【００５４】
【実施例１】
エシェリヒア・コリのarcA, dam, fnr遺伝子の破壊
エシェリヒア・コリ（E. coli）K-12株のゲノムDNAの全塩基配列は既に明らかにされている（Blattner F.R., Plunkett G., Bloch C.A. et al., Science, 227, 1453-1474 (1997); ftp://ftp.genetics.wisc.edu/pub/sequence/ecolim52.seq.gz）。既知のarcA、dam、fnr遺伝子の塩基配列に基づいて、arcA、dam、fnrの各遺伝子破壊株を作製した。以下の操作において、ゲノムDNAの抽出は、QIAGEN-Genomic-tip System（キアゲン社製）を用いた。
【００５５】
（１）エシェリヒア・コリのarcA遺伝子の破壊
報告されているarcAの塩基配列に基づいてプライマーを合成し、エシェリヒア・コリMG1655株のゲノムDNAを鋳型として、arcA遺伝子のN末およびC末断片をPCR法により増幅した。PCRは、Pyrobest DNA Polymerase（宝酒造社製）を用い、添付説明書にしたがって行った。N末端断片増幅用PCR用プライマーにはプライマー１、２を、C末端断片増幅用PCR用プライマーにはプライマー３、４を用いた。プライマー１にはHindIIIサイトが、プライマー４にはXbaIサイトがそれぞれデザインされている。
【００５６】
プライマー１：cccaagcttaaagccctttacttagctta（GenBankのaccession No. AE000510の塩基配列の塩基番号5482-5501に相補的な配列の5’末にcccおよびHindIIIサイトを付加した配列：配列番号１）
プライマー２：tccgcgccatctgtcgcttc（GenBankのaccession No. AE000510の塩基配列の塩基番号4851-4870の配列：配列番号２）
プライマー３：gaagcgacagatggcgcggaaaagctacaagttcaatggt（GenBankのaccession No. AE000510の塩基配列の4541-4560に相補的な配列の5’末にGenBankのaccession No. AE000510の塩基配列の塩基番号4851-4870に相補的な配列を付加した配列：配列番号３）
プライマー４：gggtctagaggttgaaaaataaaaacggc（GenBankのaccession No. AE000510の塩基配列の塩基番号4188-4207の配列に5’末にgggおよびXbaIサイトを付加した配列：配列番号４）
【００５７】
PCR後の増幅DNA断片は、それぞれ、QIAquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）にて精製し、精製したN末端DNA断片およびC末端DNA断片、プライマー１、４を用いて、クロスオーバーPCR法（A. J. Link, D. Phillips, G. M. Church, Journal of Bacteriology, 179, 6228-6237 (1997)）により、破壊型arcA断片を得た。精製したDNA断片を、HindIII及びXbaI（宝酒造社製）にて切断した後、フェノール／クロロホルム処理、及びエタノール沈殿を行った。同様にHindIII及びXbaIで切断した温度感受性プラスミドpMAN997（WO 99/03988号国際公開パンフレット）と前記DNA断片とをDNA ligation Kit Ver.2（宝酒造社製）を用いて連結した。この連結反応液にて、JM109コンピテント細胞（宝酒造社製）を形質転換し、アンピシリン（シグマ社製）を25μg/mL含むLB寒天プレート（LB＋アンピシリンプレート）に塗布した。30℃で１日培養後、生育したコロニーを25μg/mLのアンピシリンを含むLB培地で30℃にて試験管培養し、自動プラスミド抽出機PI-50（クラボウ社製）を用いてプラスミド抽出を行った。得られたプラスミドをHindIII及びXbaIで切断し、アガロースゲル電気泳動を行って、目的断片が挿入されているプラスミドをarcA破壊用プラスミドpMAN_ΔarcAとした。尚、前記pMAN997は、pMAN031(S．Matsuyama and S. Mizushima, J. Bacteriol., 162, 1196 (1985))とpUC19（宝酒造社製）のそれぞれのVspI-HindIII断片を繋ぎ換えたものである。
【００５８】
プラスミドpMAN_ΔarcAでエシェリヒア・コリWC196株をC. T. Chungらの方法により形質転換し、LB＋アンピシリンプレートで30℃でコロニーを選択した。選択したクローンを30℃で一晩液体培養した後、培養液を10-3希釈してLB＋アンピシリンプレートにまき、42℃でコロニーを選択した。選択したクローンをLB＋アンピシリンプレートに塗り広げて30℃で培養した後、プレートの1/8の菌体をLB培地 2 mLに懸濁し、42℃で4〜5時間振とう培養した。10-5希釈した培養液をLBプレートにまき、得られたコロニーのうち数百コロニーをLBプレートとLB＋アンピシリンプレートに植菌し、生育を確認することで、アンピシリン感受性株を選択した。アンピシリン感受性株の数株についてコロニーPCRを行い、arcA遺伝子の欠失を確認した。こうしてE. coliWC196由来のarcA破壊株WC196ΔarcAを得た。
【００５９】
（２）エシェリヒア・コリのdam遺伝子の破壊
（１）と同様の方法を用い、WC196よりdam遺伝子破壊株を作製した。
報告されているdam遺伝子の塩基配列に基づいてプライマーを合成し、エシェリヒア・コリMG1655株のゲノムDNAを鋳型として、dam遺伝子のN末およびC末断片をPCR法により増幅した。N末端断片増幅用PCR用プライマーにはプライマー５、６を、C末端断片増幅用PCR用プライマーにはプライマー７、８を用いた。プライマー５にはHindIIIサイトが、プライマー８にはXbaIサイトがそれぞれデザインされている。
【００６０】
プライマー５：cccaagcttccgtggtatgtcctggtttc（GenBankのaccession No. AE000414の塩基配列の塩基番号5150-5169に相補的な配列の5’末にcccおよびHindIIIサイトを付加した配列：配列番号５）
プライマー６：agactgatcaggtcgctatt（GenBankのaccession No. AE000414の塩基配列の塩基番号4741-4760の配列：配列番号６）
プライマー７：aatagcgacctgatcagtctgccttatgcaccgctgtctg（GenBankのaccession No. AE000414の塩基配列の4361-4380に相補的な配列の5’末にGenBankのaccession No. AE000414の塩基配列の塩基番号4741-4760に相補的な配列を付加した配列：配列番号７）
プライマー８：gggtctagacgtcagattgggaacatagt（GenBankのaccession No. AE000414の塩基配列の塩基番号3931-3950の配列に5’末にgggおよびXbaIサイトを付加した配列：配列番号８）
【００６１】
PCR後の増幅DNA断片は、それぞれ、QIAquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）にて精製し、精製したN末端DNA断片およびC末端DNA断片、プライマー５、８を用いて、クロスオーバーPCR法により、欠損型dam断片を得た。後の操作は（１）と同様に行い、dam破壊型WC196Δdamを得た。
【００６２】
（３）エシェリヒア・コリのfnr遺伝子の破壊
（１）と同様の方法を用い、WC196よりfnr遺伝子破壊株を作製した。
報告されているfnr遺伝子の塩基配列に基づいてプライマーを合成し、エシェリヒア・コリMG1655株のゲノムDNAを鋳型として、fnr遺伝子のN末およびC末断片をPCR法により増幅した。
【００６３】
N末端断片増幅用PCR用プライマーにはプライマー９、１０を、C末端断片増幅用PCR用プライマーにはプライマー１１、１２を用いた。プライマー９にはHindIIIサイトが、プライマー１２にはXbaIサイトがそれぞれデザインされている。（１）と同様の方法を用い、WC196よりfnr破壊株を得た。
【００６４】
プライマー９：cccaagcttgcaattgggccgtcctggcg（GenBankのaccession No. AE000231の塩基配列の塩基番号7981-8000に相補的な配列の5’末にcccおよびHindIIIサイトを付加した配列：配列番号９）
プライマー１０：tcaagctgatcaagctcatg（GenBankのaccession No. AE000231の塩基配列の塩基番号7501-7520の配列：配列番号１０）
プライマー１１：caggagttgatcagcttgagaaaaatgccgaggaacgtc（GenBankのaccession No. AE000231の塩基配列の7121-7140に相補的な配列の5’末にGenBankのaccession No. AE000231の塩基配列の塩基番号7501-7520に相補的な配列を付加した配列：配列番号１１）
プライマー１２：gggtctagattggtcgtcctggttaggat（GenBankのaccession No. AE000231の塩基配列の塩基番号6671-6690の配列に5’末にgggおよびXbaIサイトを付加した配列：配列番号１２）
【００６５】
PCR後の増幅DNA断片は、それぞれ、QIAquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）にて精製し、精製したN末端DNA断片およびC末端DNA断片、プライマー９、１２を用いて、クロスオーバーPCR法により、破壊型fnr断片を得た。後の操作は（１）と同様に行い、fnr破壊株WC196Δfnrを得た。
【００６６】
【実施例２】
エシェリヒア・コリarcA破壊株のＬ−リジン生産への効果
arcA遺伝子破壊株WC196ΔarcA株、dam遺伝子破壊株WC196Δdam株およびfnr遺伝子破壊株WC196Δfnr株、ならびにそれらの親株であるWC196を培養し、Ｌ−リジン生産量を測定した。以下に、そのための培地および培養方法ならびに分析方法を示す。
【００６７】
〔培養方法〕
リフレッシュ(refresh)培養；保存状態の菌を接種
LB寒天培地（必要に応じて薬剤添加）、37℃、24時間
種(seed)培養；リフレッシュ培養した菌を2ml LB培地に接種
LB培地（必要に応じて薬剤添加）、37℃、一晩
主(main)培養；種培養菌体プレートの1/16を接種
E-100培地（必要に応じて、薬剤添加）、37℃、20ml/500ml容坂口フラスコ
【００６９】
〔分析方法〕
培養液500μlを経時的にサンプリングし、培養液中のグルコース濃度、Ｌ−リジン蓄積を測定した。グルコース濃度、及びＬ−リジン濃度は、15,000rpmで5分間遠心し、その上清液を適当倍率に水で希釈した培養液をバイオテックアナライザー（サクラ精器）により測定した。結果を図１に示す。
【００７０】
その結果、fnr遺伝子破壊株は対照株と同等のＬ−リジン蓄積を示し、dam遺伝子破壊株は対照株と比較して蓄積が減少することが観察された。一方、arcA遺伝子破壊株のＬ−リジン蓄積が対照株と比較して向上することが認められた。
【００７１】
【実施例３】
エシェリヒア・コリarcA破壊株のＬ−グルタミン酸生産への効果
実施例２において、arcA遺伝子破壊によりＬ−リジン蓄積向上効果が認められたため、ここでは、arcA遺伝子のＬ−グルタミン酸発酵への効果を検討した。
【００７２】
Ｌ−グルタミン酸生産に対するエシェリヒア・コリMG1655におけるarcA遺伝子の欠損効果を確認するため、エシェリヒア・コリMG1655由来のsucA欠損株（MG1655ΔsucA）及びエシェリヒア・コリMG1655由来のsucA、arcA二重欠損株（MG1655ΔsucAΔarcA）を構築した。
【００７３】
（１）エシェリヒア・コリのsucA遺伝子の破壊
実施例１と同様の方法を用い、MG1655よりsucA遺伝子破壊株を作製した。
報告されているsucA遺伝子の塩基配列に基づいてプライマーを合成し、エシェリヒア・コリMG1655株のゲノムDNAを鋳型として、sucA遺伝子のN末およびC末断片をPCR法により増幅した。
【００７４】
N末端断片増幅用PCR用プライマーにはプライマー１３、１４を、C末端断片増幅用PCR用プライマーにはプライマー１５、１６を用いた。プライマー１３はHindIIIサイトが、プライマー１６にはXbaIサイトがそれぞれデザインされている。（１）と同様の方法を用い、MG1655よりsucA遺伝子破壊株を得た。
【００７５】
プライマー１３：cccaagcttctgcccctgacactaagaca（GenBankのaccession No. AE000175の塩基配列の塩基番号10721-10740の配列の5’末にcccおよびHindIIIサイトを付加した配列：配列番号１３）
プライマー１４：cgaggtaacgttcaagacct（GenBankのaccession No. AE000175の塩基配列の塩基番号11501-11520に相補的な配列：配列番号１４）
プライマー１５：aggtcttgaacgttacctcgatccataacgggcagggcgc（GenBankのaccession No. AE000175の塩基配列の12801-12820の配列の5’末にGenBankのaccession No. AE000175の塩基配列の塩基番号10501-11520の配列を付加した配列：配列番号１５）
プライマー１６：gggtctagaccactttgtcagtttcgatt（GenBankのaccession No. AE000175の塩基配列の塩基番号13801-13820に相補的な配列に5’末にgggおよびXbaIサイトを付加した配列：配列番号１６）
【００７６】
PCR後の増幅DNA断片は、それぞれ、QIAquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）にて精製し、精製したN末端DNA断片およびC末端DNA断片、プライマー１３、１６を用いて、クロスオーバーPCR法により、欠損型sucA断片を得た。後の操作は（１）と同様に行い、sucA破壊株MG1655ΔsucAを得た。
【００７７】
（２）エシェリヒア・コリのsucA、arcA遺伝子二重欠損株の作製
実施例１と同様の方法を用い、MG1655ΔsucAよりarcA遺伝子を破壊し、sucA、arcA二重欠損株を作製した（MG1655ΔsucAΔarcA）。
【００７８】
同様にして、sucA、dam二重欠損株（MG1655ΔsucAΔdam）、及びsucA、fnr二重欠損株を作製した（MG1655ΔsucAΔfnr）。
arcA遺伝子破壊のＬ−グルタミン酸発酵への効果を検討するため、各遺伝子二重欠損株MG1655ΔsucAΔarcA株、MG1655ΔsucAΔdam、及びMG1655ΔsucAΔfnrを、sucA遺伝子欠損株MG1655ΔsucAを対照として培養し、Ｌ−グルタミン酸生産量を測定した。以下に、そのための培地および培養方法ならびに分析方法を示す。
【００７９】
〔培養方法〕
リフレッシュ(refresh)培養；保存状態の菌を接種
LB寒天培地（必要に応じて薬剤添加）、37℃、24時間
種(seed)試験管培養；リフレッシュ培養した菌を接種
LB液体培地（必要に応じて薬剤添加）、37℃、16時間
主(main)培養；種培養液体培地から10％接種
MS液体培地（必要に応じて薬剤添加）、37℃
20ml/500ml容坂口フラスコ
【００８１】
〔分析方法〕
培養液500μlを経時的にサンプリングし、培養液中のグルコース濃度、Ｌ−グルタミン酸蓄積を測定した。グルコース濃度、及びＬ−グルタミン酸濃度は、15,000rpmで5分間遠心し、その上清液を適当倍率に水で希釈した培養液をバイオテックアナライザー（サクラ精器）により測定した。残糖がなくなった時点でのＬ−グルタミン酸蓄積と収率を表１に示した。
【００８２】
【表１】
その結果、sucA, dam遺伝子破壊株のグルタミン酸蓄積、収率ともに対照株よりやや劣り、sucA, fnr遺伝子破壊株においては対照株と同程度であった。一方、sucA, arcA遺伝子破壊株のＬ−グルタミン酸蓄積、収率はともに対照株と比較して向上することが認められた。
【００８４】
【実施例４】
パントエア・アナナティスのarcA遺伝子の破壊
＜１＞パントエア・アナナティスのarcA遺伝子の取得
（１）低ｐＨ環境下でＬ−グルタミン酸を生産するパントエア・アナナティス菌株の構築
ArcAはエシェリヒア・コリとその近縁種に普遍的に存在するグローバルレギュレータである。ここでは、既知のエシェリヒア・コリのarcA遺伝子配列に基づき、エシェリヒア・コリの近縁種であるパントエア属細菌パントエア・アナナティスAJ13601を用いて、パントエア・アナナティスのarcA遺伝子を取得した。AJ13601は、以下のようにして取得された株である（EP 1 078 989 A2参照）。静岡県磐田市の土壌から、低ｐＨでＬ−グルタミン酸及び炭素源を含む培地で増殖できる株として、AJ13355株が分離された。AJ13355株から、粘液低生産性の変異株であり、かつ、生育良好な株としてSC17株が選択され、このSC17株から、α−ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ（αKGDH）遺伝子破壊株として、SC17sucAが構築された。SC17sucAに、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム由来のクエン酸シンターゼ遺伝子（gltA）を含むプラスミド（pSTVCB）、及びエシェリヒア・コリ由来のgltA、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子（ppc）、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子（gdhA）の各遺伝子を含むプラスミド（RSFCPG）が導入された形質転換株から、低ｐＨ環境下で高濃度のＬ−グルタミン酸に対する耐性が向上した菌株として、AJ13601株が選択された。AJ13601株は、平成11年8月18日付で工業技術院生命工学工業技術研究所（現 独立法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センター、〒305-8566 日本国茨城県つくば市東1丁目1番地1 中央第６）に受託番号RERM P-17516として寄託され、平成12年7月6日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-7207が付与されている（EP 1 078 989 A2参照）。
【００８５】
（２）パントエア・アナナティスAJ13601株のarcA遺伝子の取得
前記パントエア・アナナティスAJ13601のゲノムDNAを、QIAGEN-Genomic-tip System（キアゲン社製）を用いて抽出した。このゲノムDNAを鋳型とし、下記オリゴヌクレオチドをプライマーとするPCRにより、arcA遺伝子のORFを含む759bpのDNA断片を取得した。PCRはPyrobest DNA Polymerase（宝酒造製）を用い、添付説明書にしたがって行った。増幅用PCRプライマーはプライマー１７、１８を用いた。プライマー１７にはEcoRIサイトが、プライマー１８にはSphIサイトがそれぞれデザインされている。
【００８６】
プライマー１７：cccgaattccctgtttcgatttagttggc（GenBankのaccession No. AE000510の塩基配列の4980-4999に相補的な配列の5'末にEcoRI配列を付加した配列：配列番号１７）
プライマー１８：cccgcatgcgattaatcttccagatcacc（GenBankのaccession No. AE000510の塩基配列の4245-4264の配列の5'末にSphI配列を付加した配列：配列番号１８）
【００８７】
取得したDNA断片を、両プライマーに設計しておいたEcoRIおよびSphIサイトを利用してクローニングベクターpSTV29（宝酒造社製）のEcoRIおよびSphIサイトに、lacZ遺伝子の転写方向に対して順方向となるように挿入し、pSTV29_EaarcAを作製した。配列番号１９にpSTV29にクローニングした配列を示す。また、配列番号２０にこのORFによってコードされる予想アミノ酸配列を示した。ここで取得したORFは、エシェリヒア・コリのarcA遺伝子とDNA配列で約81.2％、アミノ酸配列で約92.1％の高い相同性を有することから、パントエア・アナナティスのarcA遺伝子をコードしていると考えられる。
【００８８】
＜２＞パントエア・アナナティスのarcA遺伝子の破壊
パントエア・アナナティスにおけるarcA遺伝子の破壊株作製は、パントエア・アナナティスG106S株を使用した。本菌株は、前記のAJ13601が保有している２つのプラスミドRSFCPGおよびpSTVCBのうち、RSFCPGのみを保有し、pSTVCBが脱落した株である。G106SよりarcA遺伝子の破壊株を作製し、得られた破壊株にpSTVCBを導入することにより、AJ13601のarcA遺伝子破壊株を作製した。以下に詳細を説明する。
【００８９】
（１）arcA遺伝子破壊のための接合伝達用プラスミドの構築
これまでに行われてきた温度感受性プラスミドを用いた染色体上組み換えによる育種は、42℃ではほとんど生育できないパントエア・アナナティスの特徴から、組み換え手順上、その利用は簡便ではない。したがってここでは、接合伝達法を使用した染色体上組み換えによる手法を採用した。接合伝達法の場合、パントエア・アナナティスの複製開始起点（ori）を持たない、すなわちパントエア・アナナティスでは複製できないプラスミドを構築する必要がある。そこで、まずプライマー２１、２２を用い、Tn5転移用プラスミドであるpUT/miniTn5-Cm（Lorenzo V., et al., Journal of Bacteriology, 172, 6568- (1990)、およびHerrero M., et al., Journal of Bacteriology, 172, 6557 (1990)）を鋳型として、oriR6KおよびmobRP4部分をPCRで増幅した。また、プライマー２３、２４を用いて、pHSG399を鋳型として、マルチクローニングサイトおよびクロラムフェニコール耐性遺伝子部分をPCRで増幅した。得られた各々の増幅断片をBglII（宝酒造社製）処理し、DNA ligation Kit ver.2（宝酒造社製）を用いて、両断片を結合させた。
【００９０】
次に、この結合反応液にて、E. coli S17-1 λpir株（R. Simon., et al., BIO/TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)）を形質転換し、クロラムフェニコール30μg/ml含むLB寒天プレートに塗布した。37℃で1日培養後、生育したコロニーを30μg/mlのクロラムフェニコールを含むLB培地で37℃で試験管培養し、QIAprep Mini Spin column Kit（QIAGEN社製）を用いてプラスミドを取得した。取得したプラスミドをBglII処理し、1ヶ所消化されるプラスミドを取得し、接合伝達用のプラスミドpUT399Cmとした。
【００９１】
プライマー２１：tcatagatcttttagattgatttatggtgc（配列番号２１）
プライマー２２：ccacagatctaattcccatgtcagccgtta（配列番号２２）
プライマー２３：ataaagatctgtgtccctgttgataccggg（配列番号２３）
プライマー２４：ggggagatcttgcaaggcgattaagttggg（配列番号２４）
【００９２】
次に下記の手法によりpUT399にカナマイシン耐性遺伝子を導入し、クロラムフェニコール耐性遺伝子を除去した。pMW219（ニッポンジーン社製）を鋳型とし、プライマー２５、プライマー２６を用いてPCR法によりカナマイシン耐性遺伝子を増幅した。PCRはPyrobest DNA Polymerase（宝酒造社製）を用い、添付説明書にしたがって行った。プライマー２５およびプライマー２６の配列の5'末端にはBglIIサイトを付加している。得られたDNA断片およびpUT399を制限酵素BglII（宝酒造社製）で消化し、DNA ligation Kit ver.2（宝酒造社製）を用いて結合した。この連結反応液にて、E. coli S17-1 λpir株（R. Simon., et al., BIO/TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)）を形質転換し、カナマイシン25μg/ml含むLB寒天プレート（LB+カナマイシンプレート）に塗布した。37℃で一日培養後、生育したコロニーをカナマイシン25μg/ml含むLB培地で37℃にて試験管培養し、QIAprep Spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いてプラスミドを抽出した。得られたプラスミドをBglIIで切断し、アガロースゲル電気泳動を行って、目的断片が挿入されているプラスミドをpUT399CmKmとした。
【００９３】
プライマー２５：cccagatctagttttcgccccgaagaacg（配列番号２５）
プライマー２６：cccagatctccagagtcccgctcagaaga（配列番号２６）
【００９４】
次に下記の手法により、pUT399CmKmよりクロラムフェニコール耐性遺伝子を除去した。pUT399CmKmを制限酵素HindIII（宝酒造社製）で消化し、DNA ligation Kit ver.2（宝酒造社製）を用いて結合した。この連結反応液にて、E. coli S17-1 λpir株（R. Simon., et al., BIO/TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)）を形質転換し、カナマイシン25μg/ml含むLB寒天プレート（LB+カナマイシンプレート）に塗布した。37℃で一日培養後、生育したコロニーをカナマイシン25μg/ml含むLBプレートおよびクロラムフェニコール（シグマ社製）30μg/ml含むLB寒天プレートで37℃にて培養し、クロラムフェニコール感受性となった株を取得した。この株をカナマイシン25μg/ml含むLB 培地にて37℃で1日培養し、QIAprep Spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いてプラスミドを抽出した。得られたプラスミドをpUT399Kmとした。
【００９５】
＜１＞において取得したパントエア・アナナティスのarcA遺伝子の塩基配列に基づいてプライマーを合成し、pSTV29_EaarcAを鋳型として、arcA遺伝子のN末端およびC末端断片を、各々PCR法により増幅した。PCRはPyrobest DNA Polymerase（宝酒造社製）を用い、添付説明書にしたがって行った。N末断片増幅用PCR用プライマーにはプライマー２７、２８を、C末断片増幅用PCR用プライマーには２９、３０を用いた。プライマー２７にはEcoRIサイトが、プライマー３０にはSphIサイトがそれぞれデザインされている。
【００９６】
プライマー２７：cccgaattcgcgaccgatggtgcagagat（配列番号２７）
プライマー２８：aaggcaaattcatggtgcgc（配列番号２８）
プライマー２９：gcgcaccatgaatttgccttacccaatgaagagcgtcgcc（配列番号２９）
プライマー３０：cccgcatgcaccttcgccgtgaatggtgg（配列番号３０）
【００９７】
PCR後の増幅DNA断片は、それぞれ、QIAquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）にて精製し、精製したN末端DNA断片およびC末端DNA断片、プライマー２７、３０を用いて、クロスオーバーPCR法（A. J. Link, D. Phillips, G. M. Church, Journal of Bacteriology, 179, 6228-6237 (1997)）により、破壊型arcA断片を得た。精製したDNA断片を、EcoRI及びSphI（宝酒造社製）にて切断した後、フェノール／クロロホルム処理、及びエタノール沈殿を行った。同様にEcoRI及びSphIで切断したプラスミドpUT399Kmと前記DNA断片とをDNA ligation Kit Ver.2（宝酒造社製）を用いて連結した。この連結反応液にて、E. coli S17-1 λpir株（R. Simon., et al., BIO/TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)）を形質転換し、カナマイシン25μg/ml含むLB寒天プレートに塗布した。37℃で１日培養後、生育したコロニーを25μg/mlのカナマイシンを含むLB培地で37℃にて試験管培養し、QIAprep Spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いてプラスミドを抽出した。得られたプラスミドをEcoRI及びSphIで切断し、アガロースゲル電気泳動を行って、目的断片が挿入されているプラスミドをarcA破壊用プラスミドpUT399Km_ΔarcAとした。
【００９８】
（２）接合伝達法を用いたパントエア・アナナティスarcA遺伝子の破壊
続いて、上記pUT399Km_ΔarcAを用いて、相同組み換えを利用した遺伝子破壊を行った。プラスミド受容菌はG106S株を用い、スクリーニングはグルコース5g/L（純正化学製）、酵母エキス5g/L（Difco社製）、トリプトンペプトン10g/L（Difco社製）、塩化ナトリウム10g/L（純正化学社製）、リン酸水素二ナトリウム6g/L、リン酸二水素カリウム3g/L、塩化アンモニウム1g/L、塩化カルシウム2水塩1.5g/Lを含む培地（以下、「LBG-M9培地」と記載）にテトラサイクリン25μg/ml、カナマイシン25μg/ml、及び寒天を添加した寒天培地（以下、「LBG-M9＋Tet＋Kmプレート」と記載）で行った。pUT399由来のプラスミドは前述のとおりパントエア・アナナティス中では複製できないため、この寒天培地上ではpUT399Km_ΔarcAが染色体に組み込まれたG106S株のみ1回組み換え体、すなわち、arcA遺伝子の破壊株として選抜できる。pUT399Km_ΔarcAでE. coli S17-1 λpir株（R. Simon., et al., BIO/TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)）を形質転換し、カナマイシン25μg/ml含むLB寒天プレートに塗布した。培養後、得られた形質転換体E. coli S17-1 λpir/pUT399Km_ΔarcA をカナマイシン25μg/ml含むLB培地を用い37℃で1晩培養した。また、G106S株を、テトラサイクリン25μg/ml含むLBG-M9培地で34℃で1晩培養した。それぞれの培養液を遠心して集菌し、LB培地50μlで懸濁した。それぞれ25μlを混合し、LBG-M9寒天培地上で室温にて1時間培養し、その後34℃で3時間培養することで接合伝達を行った。10-1、10-2、10-3希釈した菌体を、LBG-M9＋Tet＋Kmプレートに塗布し、テトラサイクリン、カナマイシン耐性株を選択した。得られた株の数株についてコロニーPCRを行い、arcA遺伝子の欠失を確認した。こうしてG106S由来のarcA破壊株G106SΔarcAを得た。
【００９９】
（３）106SΔarcAへのpSTVCBの導入およびＬ−グルタミン酸の製造
pSTVCBを用いてG106SΔarcAを形質転換した。得られた形質転換体G106SΔarcA/pSTVCBは、前記AJ13601のarcA遺伝子欠損株（AJ13601ΔarcA）と同等である。同菌株、及び対照としてAJ13601をそれぞれ培養し、Ｌ−グルタミン酸生産量を測定した。以下に、そのための培地および培養方法ならびに分析方法を示す。
【０１００】
〔培養方法〕
種(seed)試験管培養；保存状態の菌を接種
LBG-M9寒天培地（必要に応じて薬剤添加）、34℃、24時間
主(main)培養；種培養菌体を３白金耳接種
基本培地（必要に応じて薬剤添加）、34℃、24時間
5ml/試験管
【０１０２】
〔分析方法〕
培養液400μlを経時的にサンプリングし、培養液中のスクロース濃度、Ｌ−グルタミン酸蓄積を測定した。スクロース濃度、及びＬ−グルタミン酸濃度は、15,000rpmで5分間遠心し、その上清液を適当倍率に水で希釈した培養液をバイオテックアナライザー（サクラ精器）により測定した。残糖がなくなった時点でのＬ−グルタミン酸蓄積と収率を表２に示した。
【０１０３】
【表２】
その結果、パントエア・アナナティスのarcA遺伝子破壊株のＬ−グルタミン酸蓄積、収率は、ともに対照と比較して向上することが認められた。
【０１０５】
【実施例５】
エシェリヒア・コリarcA破壊株のＬ−アルギニン生産への効果
実施例２においてsucA, arcA遺伝子破壊株のＬ−グルタミン酸蓄積、収率はともに対照株であるsucA遺伝子破壊株と比較して向上することが認められた。ここで、グルタミン酸を基質として生成されるアルギニン生産への効果について検討した。エシェリヒア・コリ アルギニン生産菌２３７株を使用した。２３７株は、2000年4月10日にRussian National Collection of Industrial Microorganisms (VKPM)にVKPM B-7925の番号で寄託され、2001年5月18日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管されている。
【０１０６】
（１）エシェリヒア・コリ２３７株のarcA遺伝子破壊株の作製
実施例１と同様の方法を用い、２３７株よりarcA遺伝子を破壊し、arcA破壊株237ΔarcAを作製した。
【０１０７】
（２）Ｌ−アルギニンの製造
arcA遺伝子破壊のＬ−アルギニン発酵への効果を検討するため、237arcA欠損株237ΔarcAを、237を対照として培養し、Ｌ−アルギニン生産量を測定した。以下に、そのための培地および培養方法ならびに分析方法を示す。
【０１０８】
〔培養方法〕
種(seed)試験管培養；保存状態の菌を接種
LB寒天培地（必要に応じて薬剤添加）、32℃、24時間
主(main)培養；種(seed)試験管培養から１白金耳接種
アルギニン評価培地（必要に応じて薬剤添加）、32℃、3日間
2ml/試験管
【０１１０】
〔分析方法〕
培養液500μlを経時的にサンプリングし、培養液中のグルコース濃度、Ｌ−アルギニン蓄積を測定した。グルコース濃度、及びＬ−アルギニン濃度は、15,000rpmで5分間遠心し、その上清液を適当倍率に水で希釈した培養液をバイオテックアナライザー（サクラ精器）およびアミノ酸アナライザーL-8500（日立計測器サービス社製）により測定した。残糖がなくなった時点でのＬ−アルギニン蓄積と収率を表３に示した。
【０１１１】
【表３】
arcA遺伝子破壊株のＬ−アルギニン蓄積、収率はともに対照株と比較して向上することが認められた。
【０１１３】
【発明の効果】
本発明により、γ−プロテオバクテリアを用いて、Ｌ−アミノ酸などの有用物質を生産する際に、生産効率を向上させることができる。
【０１１４】
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】 WC196、WC196ΔarcA、WC196Δdam、WC196Δfnrの蓄積パターンを示す図。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to the fermentation industry, and more particularly to a method for efficiently producing a target substance such as an L-amino acid by fermentation using a microorganism.
[0002]
[Prior art]
Bacterial cells have been altered in metabolic pathways and respiratory pathways in order to adapt to various environments. Arc (aerobic respiration control) and Fnr (fumarate nitrate reduction) are known as control systems that play a major role in energy metabolism. These are global regulator proteins that are ubiquitous in Escherichia coli and its related species. The former is encoded by the arcA gene located at the 0 minute position of the Escherichia coli chromosome, and the latter is located at the 29 minute position. Encoded by the existing fnr gene, both adapt cells to their environment by controlling a number of factors under anaerobic conditions. ArcA and Fnr proteins are transcription factors that can directly or negatively regulate the expression of target genes by binding directly to the promoter region of the target gene on the Escherichia coli chromosome under anaerobic conditions. It has become clear (Non-Patent Document 1).
[0003]
Recently, using DNA microarray technology, expression profiles of disrupted strains of genes encoding global regulators such as Escherichia coli-derived ArcA protein and Fnr protein have been databased and published (Non-patent Document 2). .
[0004]
So far, ArcA protein is known to negatively control the expression of genes on the TCA cycle (Non-patent Document 1), and the expression of genes on the TCA cycle is not observed in the arcA-disrupted strain on this database. It is clear that it is rising. On the other hand, Fnr protein is known to positively regulate gene expression of respiratory pathways that function under anaerobic conditions.
[0005]
A dam-disrupted strain is an example of a strain in which the gene expression on the TCA cycle increases in the expression profile of a global factor-disrupted strain, as in the arcA-disrupted strain (Non-patent Document 3).
[0006]
Dam protein is a methylase which is a modifying factor involved in the intracellular restriction modification system, and is encoded by the dam gene located at the 76-minute position of the Escherichia coli chromosome (Non-patent Document 4).
[0007]
So far, there has been no report on the improvement of substance production by regulating the expression of global factors such as the arcA gene, fnr gene, and dam gene.
[0008]
[Non-Patent Document 1]
S. Iuchi et al., Cell, 66, 5-7 (1991)
[Non-Patent Document 2]
http://www.genome.ad.jp/dbget-bin/get_htext?Exp_DB+-n+Bget-bin/get_htext?Exp_DB+-n+B
[Non-Patent Document 3]
2001 Oral presentation of Hiroaki Mori, Nara Institute of Technology at the Symposium “Green Biotechnology in the Genome Era” sponsored by the Japan Bioindustry Association
[Non-Patent Document 4]
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 87 (23), 9454-9458 (1990)
[0009]
[Problems to be solved by the invention]
An object of the present invention is to improve production efficiency when producing a useful substance by fermentation using γ-proteobacteria such as Escherichia bacteria.
[0010]
[Means for Solving the Problems]
The present inventor has conducted intensive research to solve the above-mentioned problems, and can improve substance production by γ-proteobacteria by modifying a gene encoding a regulator protein that is universally present in γ-proteobacteria I found out. That is, it has been found that the ability to produce the target substance is improved by disrupting the arcA gene in γ-proteobacteria, and the present invention has been completed.
[0011]
That is, the present invention is as follows.
(1) A γ-proteobacterium having an ability to produce a target substance and modified so that the ArcA protein does not function normally.
(2) The γ-proteobacteria according to (1), wherein the normally functioning ArcA protein is the protein described in (A) or (B) below.
(A) A protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 32.
(B) The amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 32 has an amino acid sequence containing one or several amino acid substitutions, deletions, insertions, or additions, and the protein functions normally in γ-proteobacteria A protein that improves the ability to produce the target substance when the protein does not function normally.
(3) The normally functioning ArcA protein has 70% or more homology with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 32, and the protein does not function normally compared to the case where the protein functions normally (1) γ-proteobacteria which are proteins that sometimes improve the ability to produce target substances.
(4) A normally functioning ArcA protein has an amino acid sequence containing substitution, deletion, insertion or addition of 2 or more and 20 or less amino acids in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 32, and γ The γ-proteobacterium according to (1), which is a protein that improves the ability to produce a target substance when the protein does not function normally compared to when the protein functions normally in proteobacteria.
(5) The γ-proteobacterium according to any one of (1) to (4), wherein the ArcA protein does not function normally due to disruption of the arcA gene on the chromosome.
(6) The γ-proteobacterium according to (5), wherein the arcA gene is the DNA described in (a) or (b) below.
(A) DNA comprising a base sequence consisting of base numbers 101 to 817 of SEQ ID NO: 31.
(B) Compared to a base sequence consisting of base numbers 101 to 817 of SEQ ID NO: 31 or a probe that can be prepared from the base sequence under stringent conditions and the protein functions normally, DNA encoding a protein that improves the production ability of a target substance when the protein does not function normally.
(7) The γ-proteobacterium according to any one of (1) to (6), wherein the γ-proteobacterium is an Escherichia bacterium.
(8) The γ-proteobacterium according to any one of (1) to (7), wherein the target substance is an L-amino acid.
(9) The γ-proteobacterium according to (8), wherein the L-amino acid is L-lysine, L-glutamic acid, or L-arginine.
(10) culturing the γ-proteobacteria of any one of (1) to (9) in a medium, producing and accumulating the target substance in the medium or cells, and collecting the target substance from the medium or cells A method for producing a target substance characterized by
[0012]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Hereinafter, the present invention will be described in detail.
<1> γ-proteobacteria of the present invention
Examples of γ-proteobacteria used in the present invention include microorganisms belonging to γ-proteobacteria such as Escherichia, Enterobacter, Pantoea, Klebsiella, Serratia, Erbinia, Salmonella, Morganella, and the like. As long as it has the ability to produce, there is no particular limitation. Specifically, those belonging to γ-proteobacteria can be used according to the classification described in the NCBI (National Center for Biotechnology Information) database (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/htbin-post/Taxonomy / wgetorg? mode = Tree & id = 1236 & lvl = 3 & keep = 1 & srchmode = 1 & unlock).
[0013]
Examples of Escherichia bacteria include Escherichia coli and the like. Also. Examples of Enterobacter bacteria include Enterobacter agglomerans, Enterobacter aerogenes, and the like.
[0014]
In recent years, Enterobacter agglomerans has been reclassified as Pantoea agglomerans, P. ananatis, P. stewartii agglomerans, etc., by 16S rRNA nucleotide sequence analysis. There is something that has been. In the present invention, any substance belonging to the genus Enterobacter or Pantoea may be used as long as it is classified as γ-proteobacteria and has an arcA gene.
[0015]
When Escherichia coli is bred using genetic engineering techniques, the E. coli K12 strain and its derivatives can be used. In addition, when pantoea ananatis is bred using genetic engineering techniques, pantoea ananatis AJ13355 strain (FERM BP-6614), AJ13356 strain (FERM BP-6615), AJ13601 strain (FERM BP-7207) and the like Derivatives of can be used. These strains were identified as Enterobacter agglomerans when they were isolated, and deposited as Enterobacter agglomerans, but as described above, they have been reclassified as Pantoea Ananatis by 16S rRNA sequence analysis, etc. .
[0016]
The γ-proteobacterium of the present invention is the bacterium described above and has the ability to produce a target substance. “Production ability of target substance” refers to the ability to produce and accumulate in a cell or medium to such an extent that the target substance can be recovered from the cell or medium when the bacterium of the present invention is cultured in the medium.
[0017]
The target substance produced by the present invention is particularly a substance that can be produced by γ-proteobacteria and is synthesized via the TCA cycle, or a substance synthesized using these substances as a substrate. It is not limited. For example, various amino acids such as L-lysine, L-threonine, L-isoleucine, L-glutamic acid, L-glutamine, and L-arginine, and organic acids such as L-homoserine and succinic acid have been conventionally used in γ-proteobacteria. That have been produced by Moreover, even if it is a substance which has not been produced industrially by γ-proteobacteria, the present invention can be applied as long as it can be synthesized using a substance synthesized via the TCA cycle as a substrate.
[0018]
Examples of L-lysine-producing γ-proteobacteria include mutants having resistance to L-lysine analogs. This L-lysine analog is such that it inhibits the growth of L-amino acid-producing bacteria, but its suppression is such that it is completely or partially released if L-lysine coexists in the medium. It is. For example, there are oxalysine, lysine hydroxamate, S- (2-aminoethyl) -L-cysteine (AEC), γ-methyllysine, α-chlorocaprolactam and the like. Mutants having resistance to these lysine analogs can be obtained by subjecting γ-proteobacteria to ordinary artificial mutation operations. Specific examples of strains used in the production of L-lysine include Escherichia coli AJ11442 (FERM BP-1543, NRRL B-12185; see JP-A-56-18596 and US Pat. No. 4,346,170), and Escherichia coli VL611. It is done. Aspartokinase of these microorganisms is desensitized to feedback inhibition by L-lysine.
[0019]
In addition, for example, L-threonine-producing bacteria described later can be mentioned. This is because L-threonine-producing bacteria are generally released from inhibition of aspartokinase by L-lysine.
[0020]
In Examples described later, the WC196 strain was used as an L-lysine-producing bacterium of Escherichia coli. This strain was bred by imparting AEC resistance to the W3110 strain derived from Escherichia coli K-12. This strain was named Escherichia coli AJ13069, and on December 6, 1994, the National Institute of Biotechnology, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (now the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Depositary Center, 305-8566 Japan) The deposit was made under the deposit number FERM P-14690 in Tsukuba City, Higashi 1-chome, 1-chome, Central Ibaraki, Japan, and transferred to the international deposit under the Budapest Treaty on September 29, 1995. The deposit number FERM BP-5252 (See WO96 / 17930 international pamphlet).
[0021]
Examples of L-threonine-producing γ-proteobacteria include Escherichia coli VKPM B-3996 (RIA 1867) (see US Pat. No. 5,175,107), MG442 strain (Gusyatiner et al., Genetika (in Russia), 14, 947 -956 (1978)).
[0022]
Examples of microorganisms belonging to γ-proteobacteria and capable of producing L-glutamic acid include microorganisms that are deficient in or reduced in α-ketoglutarate dehydrogenase activity. A bacterium belonging to the genus Escherichia in which α-ketoglutarate dehydrogenase activity is deficient or reduced and methods for obtaining the same are described in JP-A-5-244970 and JP-A-7-203980. Specifically, the following strains are listed.
[0023]
Escherichia coli W3110sucA :: Kmr
Escherichia coli AJ12624 (FERM BP-3853)
Escherichia coli AJ12628 (FERM BP-3854)
Escherichia coli AJ12949 (FERM BP-4881)
Escherichia coli W3110sucA :: KmrIs a strain obtained by disrupting the α-ketoglutarate dehydrogenase gene (hereinafter abbreviated as “sucA gene”) of Escherichia coli W3110, and is a strain completely deficient in α-ketoglutarate dehydrogenase.
[0024]
Microorganisms belonging to the genus γ-proteobacteria and having a deficient or reduced α-ketoglutarate dehydrogenase activity and methods for obtaining the same are described in JP-A-5-244970 and JP-A-7-203980.
[0025]
Examples of L-arginine-producing γ-proteobacteria include Escherichia coli into which the argA gene has been introduced (see Japanese Patent Application Laid-Open No. 57-5693), Escherichia coli 237 strain (Russian Patent Application No. 20000176777), and the like. Can be mentioned.
[0026]
Examples of L-isoleucine-producing γ-proteobacteria include Escherichia coli KX141 (VKPM B-4781) (see European Patent Application Publication No. 519,113).
As L-homoserine-producing γ-proteobacteria, Leu of C600 strain (see Appleyard R. K., Genetics, 39, 440-452 (1954)).+NZ10 strain, which is a reversion mutant.
[0027]
Examples of succinic acid-producing γ-proteobacteria using Escherichia coli are known (Wang, X., et al., Appl. Biochem. Biotech., 70-72, 919-928 (1998). )).
[0028]
In addition, γ-proteobacteria having L-amino acid-producing ability can also be bred by introducing and enhancing DNA carrying genetic information involved in L-amino acid biosynthesis by gene recombination techniques. For example, in L-lysine producing bacteria, the introduced genes are phosphoenolpyruvate carboxylase, aspartokinase, dihydrodipicolinate synthase, dihydrodipicolinate reductase, succinyldiaminopimelate transaminase, succinyldiaminopimerin. It is a gene encoding an enzyme on the biosynthetic pathway of L-lysine such as acid deacylase. Enzyme genes that undergo feedback inhibition by L-aspartate or L-lysine, such as phosphoenolpyruvate carboxylase, or aspartokinase and dihydropicolinate synthase, encode an enzyme that has been desensitized to such inhibition. It is desirable to use a mutant gene.
[0029]
In L-glutamic acid-producing bacteria, the introduced genes include glutamate dehydrogenase, glutamine synthetase, glutamate synthase, isocitrate dehydrogenase, aconite hydratase, citrate synthase, phosphoenolpyruvate carboxylase, pyruvate dehydrogenase, and pyruvate kinase. Phosphoenol pyruvate synthase, enolase, phosphoglycerum mutase, phosphoglycerate kinase, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, triose phosphate isomerase, furtose bisphosphate aldolase, phosphofructokinase, glucose phosphate isomerase, etc. is there.
[0030]
Furthermore, the activity of an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthetic pathway of the target L-amino acid to produce another compound may be reduced or deficient. For example, there is homoserine dehydrogenase as an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthetic pathway of L-lysine to produce a compound other than L-lysine (see WO95 / 23864 International Publication Pamphlet). Examples of enzymes that catalyze a reaction that branches from the biosynthetic pathway of L-glutamic acid to produce compounds other than L-glutamic acid include α-ketoglutarate dehydrogenase, isocitrate lyase, phosphate acetyltransferase, acetate kinase, acetohydroxyacid Examples include synthase, acetolactate synthase, formate acetyltransferase, lactate dehydrogenase, glutamate decarboxylase, and 1-pyrroline dehydrogenase.
[0031]
In the breeding of γ-proteobacteria having the ability to produce the target substance as described above, in order to introduce and enhance genes in γ-proteobacteria, the gene is linked to a vector capable of autonomous replication in γ-proteobacteria cells. There are methods of producing recombinant DNA and transforming γ-proteobacteria with it. In addition, transduction, transposon (Berg, DE and Berg, CM, Bio / Technol. 1, 417 (1983)), Mu phage (JP-A-2-109985) or homologous recombination (Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor) Lab. (1972)) can be used to incorporate the gene of interest into the host chromosome. The target gene can also be introduced by a method of disrupting a gene using linear DNA generated by PCR reaction (Kirill A. Datsenko et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 97 (12), 6640-6645 (2000)).
[0032]
Examples of γ-proteobacteria bred by recombinant DNA technology as described above include, for example, dihydrodipicolinate synthase having a mutation that cancels feedback inhibition by L-lysine, and feedback inhibition by L-lysine has been released. Escherichia bacterium (US Pat. No. 6,040,160) having enhanced activity such as aspartokinase and dihydrodipicolinate reductase and having L-lysine producing ability, or citrate synthase, phosphoenolpyruvate carboxylase, or glutamate dehydrogenase Examples include Enterobacter (pantoea) bacteria with enhanced activity and L-glutamic acid-producing ability (
[0033]
The γ-proteobacterium used in the present invention is a bacterium that has the ability to produce the target substance as described above and has been modified so that the ArcA protein does not function normally in the cell. “ArcA protein has been modified so that it does not function normally” means that the function of ArcA protein is completely lost, or that the function is reduced compared to an unmodified strain of the genus Escherichia, such as a wild strain. Means modified. The state in which the ArcA protein does not function normally may be, for example, a state where the transcription or translation of the arcA gene is prevented and the ArcA protein, which is the same gene product, is not produced, or the production is reduced or produced. The ArcA protein may be mutated to reduce or eliminate the original function of the ArcA protein. As γ-proteobacteria in which the ArcA protein does not function normally, typically, a gene-disrupted strain in which the arcA gene on the chromosome is disrupted by a gene recombination technique, and an expression regulatory sequence or coding region of the arcA gene on the chromosome A mutant strain in which a functional ArcA protein is no longer produced due to the occurrence of a mutation is mentioned.
[0034]
Examples of the ArcA protein retained by the wild strain or the unmodified strain used for breeding the bacterium of the present invention include a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 32. Moreover, as an arcA gene, DNA which has a base sequence shown to sequence number 31, for example is mentioned. In the same base sequence, each codon may be replaced with another equivalent codon. In the present invention, “DNA encoding a protein” means that when the DNA is double-stranded, one of the strands encodes the protein.
[0035]
Moreover, the ArcA protein retained by the wild strain or the unmodified strain is not limited to the wild-type protein, and as long as the ArcA protein has activity, substitution of one or several amino acids at one or a plurality of positions, Deletions, insertions or additions may be included. Here, “several” differs depending on the position and type of the protein in the three-dimensional structure of amino acid residues, but specifically 2 to 30, preferably 2 to 20, and more preferably 2 to 10 It is a piece.
[0036]
The “activity of the ArcA protein” is an activity that improves the ability to produce a target substance when the protein does not function normally compared to when the protein functions normally. In other words, the activity of the ArcA protein means that γ-proteobacteria modified so that the protein does not function normally can contain the target substance in the medium in a larger amount than an unmodified strain of γ-proteobacteria such as a wild strain. It means accumulating production. Examples of wild strains of Escherichia coli include the K12 strain or derivatives thereof, such as the E. coli MG1655 strain (ATCC No. 47076), and the W3110 strain (ATCC No. 27325). Examples of non-modified strains of Pantoea ananatis (Enterobacter agglomerans) include AJ13355 strain (FERM BP-6614), AJ13356 strain (FERM BP-6615) strain, and AJ13601 strain (FERM BP-7207).
[0037]
For amino acid residue substitutions, deletions, insertions, additions, or inversions as described above, naturally occurring mutations (mutation) based on individual differences in microorganisms holding ArcA protein, differences in species or strains, etc. Or variation).
[0038]
As a mutant or variant of the arcA gene as described above, the base sequence consisting of base numbers 101 to 817 of SEQ ID NO: 31 or a probe that can be prepared from the base sequence is hybridized under stringent conditions, and ArcA and Examples thereof include DNA encoding a protein having the same activity. The term “stringent conditions” as used herein refers to conditions under which so-called specific hybrids are formed and non-specific hybrids are not formed..
[0039]
As a probe, a partial sequence of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 31 can also be used. Such a probe can be prepared by PCR using an oligonucleotide prepared based on the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 31 as a primer and a DNA fragment containing the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 31 as a template. When a DNA fragment having a length of about 300 bp is used as a probe, hybridization washing conditions include 50 ° C., 2 × SSC, and 0.1% SDS.
[0040]
Hereinafter, the arcA gene or ArcA protein is not limited to those having the nucleotide sequence or amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 31 or SEQ ID NO: 32, but also includes mutants or homologues thereof. As an example of such a homolog, the nucleotide sequence of the arcA gene of Pantoea ananatis and the amino acid sequence of the ArcA protein are shown in SEQ ID NO: 19 and SEQ ID NO: 20.
[0041]
The bacterium of the present invention is a bacterium modified so that the ArcA protein does not function normally. Specifically, for example, a γ-proteobacterium having a disrupted arcA gene. Such bacteria are, for example, homologous recombination methods using genetic recombination methods (Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Laboratory press (1972); Matsuyama, S. and Mizushima, S., J. Bacteriol., 162 1196 (1985)), the arcA gene on the chromosome can be replaced with an arcA gene that does not function normally (hereinafter sometimes referred to as “disrupted arcA gene”).
[0042]
The mechanism of homologous recombination is as follows. When a plasmid or the like having a sequence homologous to the sequence on the chromosome is introduced into the microbial cell, recombination occurs at a certain frequency at the sequence having the homology, and the entire introduced plasmid is incorporated into the chromosome. . After this, when recombination occurs at the position of the homologous sequence on the chromosome, the plasmid falls off from the chromosome again, but at this time the gene destroyed by the position where recombination occurs is fixed on the chromosome, The original normal gene may fall off the chromosome along with the plasmid. By selecting such a strain, a strain in which the disrupted arcA gene is replaced with a normal arcA gene on the chromosome can be obtained.
[0043]
Such a gene disruption technique by homologous recombination has already been established, and a method using linear DNA, a method using a temperature-sensitive plasmid, and the like can be used. The arcA gene can also be disrupted by using a plasmid containing an arcA gene into which a marker gene such as drug resistance is inserted and which cannot be replicated in the target microorganism cell. That is, a transformant that has been transformed with the plasmid and has acquired drug resistance has a marker gene incorporated in the chromosomal DNA. Since this marker gene is highly likely to be incorporated by homologous recombination between the arcA gene sequences at both ends thereof and these genes on the chromosome, a gene-disrupted strain can be efficiently selected.
[0044]
Examples of temperature-sensitive plasmids that function in bacteria belonging to the genus Escherichia include pMAN997 (WO 99/03988 international publication pamphlet), pHSG415, pHSG422 (Hashimoto-Gotoh, T. et al, Gene, 16, 227-235 (1981)). Can be mentioned.
[0045]
Specifically, the disrupted arcA gene used for gene disruption specifically includes deletion of certain regions of these genes by restriction enzyme digestion and recombination, insertion of other DNA fragments (such as marker genes) into these genes, or Site-directed mutagenesis (Kramer, W. and Frits, HJ, Methods in Enzymology, 154, 350 (1987)) and treatment with chemical agents such as sodium hyposulfite and hydroxylamine (Shortle, D. and Nathans, D., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75, 270 (1978)), substitution, deletion, insertion, or addition of one or more bases in the base sequence of the arcA gene coding region or promoter region. Alternatively, it can be obtained by reducing or eliminating the activity of the encoded repressor by causing inversion, or by reducing or eliminating transcription of the arcA gene. Among these embodiments, a method of deleting a certain region of the arcA gene by restriction enzyme digestion and recombination, or a method of inserting another DNA fragment into these genes is preferable from the viewpoint of certainty and stability.
[0046]
The arcA gene has a known sequence, and can be easily obtained by the PCR method or the hybridization method based on the sequence. The arcA gene used for gene disruption only needs to have homology to the extent that homologous recombination occurs with the arcA gene held by the target bacterium. Specifically, it is usually 70% or more, preferably 80%. % Or more, more preferably 90% or more of homology.
[0047]
The destruction of the target gene can be confirmed by analyzing the gene on the chromosome by Southern blotting or PCR.
Methods such as acquisition of various genes used in the present invention, hybridization, PCR, preparation of plasmid DNA, DNA cleavage and ligation, transformation and the like are Sambrook, J., Fritsch, EF, Maniatis, T., Molecular Cloning, Cold. It is described in Spring Harbor Laboratory Press, 1.21 (1989).
[0048]
In addition, mutant strains that are no longer able to produce functional ArcA protein are those that are normally used for mutation treatment of γ-proteobacteria such as UV irradiation or N-methyl-N'-nitrosoguanidine (NTG) or nitrous acid. It can be obtained by treating with an agent.
[0049]
The γ-proteobacteria obtained as described above and capable of producing a target substance and modified so that the ArcA protein does not function normally in cells are cultured in a medium, and the medium or cells are The target substance can be produced by accumulating the target substance and collecting the target substance from the medium or cells. In the present invention, the production efficiency of the target substance can be improved by using γ-proteobacteria having the above properties. This is because the wild-type γ-proteobacterial strain for the arcA gene expresses the arcA gene in culture and suppresses the expression of the gene on the TCA cycle, whereas the strain where the ArcA protein does not function normally is on the TCA cycle. This is presumed to be because the suppression of gene expression is released.
[0050]
The medium used in the present invention may be a normal medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic ions, and other organic components as required. Carbon sources include glucose, sucrose, lactose, galactose, fructose, arabinose, maltose, xylose, trehalose, sugars such as ribose and starch hydrolysates, alcohols such as glycerol, mannitol and sorbitol, gluconic acid, fumaric acid, Organic acids such as citric acid and succinic acid can be used. As the nitrogen source, inorganic ammonium salts such as ammonium sulfate, ammonium chloride and ammonium phosphate, organic nitrogen such as soybean hydrolysate, ammonia gas, aqueous ammonia and the like can be used. As organic micronutrients, it is desirable to contain appropriate amounts of required substances such as vitamins such as vitamin B1, nucleic acids such as adenine and RNA, or yeast extract. In addition to these, a small amount of calcium phosphate, magnesium sulfate, iron ion, manganese ion or the like is added as necessary.
[0051]
The culture may be performed under well-known conditions conventionally used according to the strain to be used. For example, it is good to carry out for about 16 to 72 hours under aerobic conditions, and the culture temperature is controlled to 30 ° C. to 45 ° C., and the pH during culture is controlled to 4.5 to 8. In addition, an inorganic or organic acidic or alkaline substance, ammonia gas or the like can be used for pH adjustment.
[0052]
The collection of the target substance from the medium or cells does not require a special method in the present invention. That is, the target substance can be collected by combining conventionally known ion exchange resin method, precipitation method and other methods according to the type of target substance. The target substance accumulated in the microbial cells can be collected from the microbial cell extract or the membrane fraction according to the target substance after the microbial cells are physically or enzymatically destroyed. Depending on the target substance, the target substance can be used as a microbial catalyst or the like in a state where the target substance is still present in the cells.
[0053]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples.
[0054]
[Example 1]
Disruption of Escherichia coli arcA, dam, fnr genes
The complete nucleotide sequence of the genomic DNA of Escherichia coli K-12 strain has already been clarified (Blattner FR, Plunkett G., Bloch CA et al., Science, 227, 1453-1474 (1997) ; ftp://ftp.genetics.wisc.edu/pub/sequence/ecolim52.seq.gz). Based on the known nucleotide sequences of the arcA, dam, and fnr genes, arcA, dam, and fnr gene-disrupted strains were prepared. In the following operation, genomic DNA was extracted using QIAGEN-Genomic-tip System (manufactured by Qiagen).
[0055]
(1) Disruption of Escherichia coli arcA gene
Primers were synthesized based on the reported base sequence of arcA, and the N-terminal and C-terminal fragments of the arcA gene were amplified by PCR using the genomic DNA of Escherichia coli MG1655 strain as a template. PCR was performed using Pyrobest DNA Polymerase (Takara Shuzo) according to the attached instructions. Primers 1 and 2 were used as PCR primers for N-terminal fragment amplification, and primers 3 and 4 were used as PCR primers for C-terminal fragment amplification. Primer 1 has a HindIII site and primer 4 has an XbaI site.
[0056]
Primer 1: cccaagcttaaagccctttacttagctta (sequence with ccc and HindIII sites added to the 5 'end of the sequence complementary to base numbers 5482-5501 of the base sequence of GenBank accession No. AE000510: SEQ ID NO: 1)
Primer 2: tccgcgccatctgtcgcttc (base number 4851-4870 of the base sequence of GenBank accession No. AE000510: SEQ ID NO: 2)
Primer 3: gaagcgacagatggcgcggaaaagctacaagttcaatggt (addition of a sequence complementary to nucleotide numbers 4851-4870 of GenBank accession No. AE000510 at the 5 'end of the sequence complementary to 4541-4560 of GenBank accession No. AE000510 Sequence: SEQ ID NO: 3)
Primer 4: gggtctagaggttgaaaaataaaaacggc (sequence obtained by adding ggg and XbaI sites at the 5 'end to the sequence of base numbers 4188-4207 of the base sequence of GenBank accession No. AE000510: SEQ ID NO: 4)
[0057]
The amplified DNA fragments after PCR were purified by QIAquick PCR Purification Kit (Qiagen), respectively, and the purified N-terminal and C-terminal DNA fragments and primers 1 and 4 were used for crossover PCR (AJ Destructive arcA fragments were obtained by Link, D. Phillips, GM Church, Journal of Bacteriology, 179, 6228-6237 (1997)). The purified DNA fragment was cleaved with HindIII and XbaI (Takara Shuzo), followed by phenol / chloroform treatment and ethanol precipitation. Similarly, a temperature sensitive plasmid pMAN997 (WO 99/03988 international publication pamphlet) cut with HindIII and XbaI and the DNA fragment were ligated using DNA ligation Kit Ver.2 (Takara Shuzo). In this ligation reaction solution, JM109 competent cells (Takara Shuzo) were transformed and applied to an LB agar plate (LB + ampicillin plate) containing 25 μg / mL of ampicillin (Sigma). After culturing at 30 ° C for 1 day, the grown colonies were cultured in a test tube at 30 ° C in LB medium containing 25 µg / mL ampicillin, and plasmid extraction was performed using an automated plasmid extractor PI-50 (Kurabo). It was. The obtained plasmid was cleaved with HindIII and XbaI and subjected to agarose gel electrophoresis, and the plasmid into which the target fragment had been inserted was designated as an arcA disrupting plasmid pMAN_ΔarcA. The pMAN997 is obtained by recombination of the VspI-HindIII fragments of pMAN031 (S. Matsuyama and S. Mizushima, J. Bacteriol., 162, 1196 (1985)) and pUC19 (Takara Shuzo).
[0058]
Escherichia coli WC196 strain was transformed with the plasmid pMAN_ΔarcA by the method of C. T. Chung et al., And colonies were selected at 30 ° C. on LB + ampicillin plates. Liquid culture of selected clones at 30 ° C overnight,-3After dilution, the cells were plated on LB + ampicillin plates and colonies were selected at 42 ° C. The selected clone was spread on an LB + ampicillin plate and cultured at 30 ° C. Then, 1/8 cells of the plate were suspended in 2 mL of LB medium and cultured with shaking at 42 ° C. for 4 to 5 hours. Ten-FiveThe diluted culture solution was spread on an LB plate, and several hundred colonies out of the obtained colonies were inoculated on an LB plate and an LB + ampicillin plate, and growth was confirmed to select an ampicillin sensitive strain. Colony PCR was performed on several ampicillin sensitive strains to confirm the deletion of the arcA gene. Thus, an arcA-disrupted strain WC196ΔarcA derived from E. coli WC196 was obtained.
[0059]
(2) Destruction of the dam gene of Escherichia coli
A dam gene-disrupted strain was prepared from WC196 using the same method as in (1).
Primers were synthesized based on the reported nucleotide sequence of the dam gene, and the N-terminal and C-terminal fragments of the dam gene were amplified by PCR using the genomic DNA of Escherichia coli MG1655 strain as a template.
[0060]
Primer 5: cccaagcttccgtggtatgtcctggtttc (sequence having ccc and HindIII sites added to the 5 'end of the sequence complementary to base numbers 5150-5169 of the base sequence of GenBank accession No. AE000414: SEQ ID NO: 5)
Primer 6: agactgatcaggtcgctatt (base number 4741-4760 of the base sequence of GenBank accession No. AE000414: SEQ ID NO: 6)
Primer 7: aataggcgacctgatcagtctgccttatgcaccgctgtctg (addition of a complementary sequence to base numbers 4741-4760 of GenBank accession No. AE000414 at the 5 ′ end of the sequence complementary to base sequence 4361-4380 of GenBank accession No. AE000414 Sequence: SEQ ID NO: 7)
Primer 8: gggtctagacgtcagattgggaacatagt (Sequence obtained by adding ggg and XbaI sites at the 5 'end to the sequence of base numbers 3931-3950 of the base sequence of GenBank accession No. AE000414: SEQ ID NO: 8)
[0061]
The amplified DNA fragments after PCR were purified by QIAquick PCR Purification Kit (Qiagen), respectively, and the purified N-terminal DNA fragments and C-terminal DNA fragments,
[0062]
(3) Disruption of Escherichia coli fnr gene
Using the same method as in (1), an fnr gene disruption strain was prepared from WC196.
Primers were synthesized based on the reported nucleotide sequence of the fnr gene, and the N-terminal and C-terminal fragments of the fnr gene were amplified by PCR using the genomic DNA of Escherichia coli MG1655 strain as a template.
[0063]
[0064]
Primer 9: cccaagcttgcaattgggccgtcctggcg (sequence in which ccc and HindIII sites are added to the 5 'end of the sequence complementary to base number 7981-8000 of the base sequence of GenBank accession No. AE000231: SEQ ID NO: 9)
Primer 10: tcaagctgatcaagctcatg (base number 7501-7520 of the base sequence of GenBank accession No. AE000231: SEQ ID NO: 10)
Primer 11: caggagttgatcagcttgagaaaaatgccgaggaacgtc (addition of a sequence complementary to base numbers 7501-7520 of GenBank accession No. AE000231 at the 5 'end of sequence complementary to 7121-7140 of GenBank accession No. AE000231 Sequence: SEQ ID NO: 11)
Primer 12: gggtctagattggtcgtcctggttaggat (sequence obtained by adding ggg and XbaI sites at the 5 'end to the sequence of base numbers 6671-6690 of the base sequence of GenBank accession No. AE000231: SEQ ID NO: 12)
[0065]
The amplified DNA fragments after PCR were purified by QIAquick PCR Purification Kit (Qiagen), respectively, and the purified N-terminal DNA fragments and C-terminal DNA fragments, primers 9 and 12, were used by the crossover PCR method. A destructive fnr fragment was obtained. Subsequent operations were performed in the same manner as in (1) to obtain the fnr-disrupted strain WC196Δfnr.
[0066]
[Example 2]
Effect of Escherichia coli arcA disruption strain on L-lysine production
The arcA gene-disrupted strain WC196ΔarcA strain, the dam gene-disrupted strain WC196Δdam strain, the fnr gene-disrupted strain WC196Δfnr strain, and their parent strain WC196 were cultured, and L-lysine production was measured. The medium, culture method and analysis method for this purpose are shown below.
[0067]
[Culture method]
Refresh culture; inoculate preserved bacteria
LB agar medium (with chemicals added if necessary), 37 ° C, 24 hours
Seed culture; 2 ml LB medium inoculated with refreshed bacteria
LB medium (with drug if necessary), 37 ° C, overnight
Main culture; inoculate 1/16 of seed culture cell plate
E-100 medium (add drug if necessary), 37 ° C, 20ml / 500ml Sakaguchi flask
[0069]
[Analysis method]
500 μl of the culture solution was sampled over time, and the glucose concentration and L-lysine accumulation in the culture solution were measured. The glucose concentration and the L-lysine concentration were centrifuged at 15,000 rpm for 5 minutes, and the culture solution obtained by diluting the supernatant with water at an appropriate magnification was measured with a Biotech Analyzer (Sakura Seiki). The results are shown in FIG.
[0070]
As a result, it was observed that the fnr gene-disrupted strain showed L-lysine accumulation equivalent to that of the control strain, and that the dam gene-disrupted strain had a decrease in accumulation compared to the control strain. On the other hand, it was confirmed that the L-lysine accumulation of the arcA gene disrupted strain was improved as compared with the control strain.
[0071]
[Example 3]
Effect of Escherichia coli arcA-disrupted strain on L-glutamic acid production
In Example 2, since the effect of improving L-lysine accumulation was confirmed by disruption of the arcA gene, the effect of the arcA gene on L-glutamic acid fermentation was examined here.
[0072]
In order to confirm the deletion effect of the arcA gene in Escherichia coli MG1655 on L-glutamic acid production, a sucA-deficient strain derived from Escherichia coli MG1655 (MG1655ΔsucA) and a sucA derived from Escherichia coli MG1655, an arcA double-deficient strain (MG1655ΔsucAΔarcA) It was constructed.
[0073]
(1) Disruption of Escherichia coli sucA gene
Using the same method as in Example 1, a sucA gene disrupted strain was prepared from MG1655.
Primers were synthesized based on the reported nucleotide sequence of the sucA gene, and the N-terminal and C-terminal fragments of the sucA gene were amplified by PCR using the genomic DNA of Escherichia coli MG1655 strain as a template.
[0074]
Primers 13 and 14 were used as PCR primers for N-terminal fragment amplification, and
[0075]
Primer 13: cccaagcttctgcccctgacactaagaca (sequence in which ccc and HindIII sites are added to the 5 'end of the nucleotide sequence 10721-10740 of the nucleotide sequence of GenBank accession No. AE000175: SEQ ID NO: 13)
Primer 14: cgaggtaacgttcaagacct (sequence complementary to base numbers 11501-11520 of the base sequence of GenBank accession No. AE000175: SEQ ID NO: 14)
Primer 15: agggtcttgaacgttacctcgatccataacgggcagggcgc (sequence obtained by adding the sequence of base numbers 10501-11520 of the base sequence of GenBank accession No. AE000175 to the 5 ′ end of the sequence of 12801-12820 of the base sequence of GenBank accession No. AE000175: SEQ ID NO: 15 )
Primer 16: gggtctagaccactttgtcagtttcgatt (sequence obtained by adding ggg and XbaI sites at the 5 'end to a sequence complementary to base numbers 13801-13820 of the base sequence of GenBank accession No. AE000175: SEQ ID NO: 16)
[0076]
Amplified DNA fragments after PCR were purified by QIAquick PCR Purification Kit (Qiagen), respectively, and using purified N-terminal DNA fragments and C-terminal DNA fragments, primers 13 and 16, by crossover PCR method, A defective sucA fragment was obtained. Subsequent operations were performed in the same manner as (1) to obtain a sucA-disrupted strain MG1655ΔsucA.
[0077]
(2) Construction of a sucA and arcA gene double-deficient strain of Escherichia coli
Using the same method as in Example 1, the arcA gene was disrupted from MG1655ΔsucA to produce a sucA, arcA double-deficient strain (MG1655ΔsucAΔarcA).
[0078]
Similarly, sucA, dam double deficient strain (MG1655ΔsucAΔdam), and sucA, fnr double deficient strain (MG1655ΔsucAΔfnr) were prepared.
In order to examine the effect of arcA gene disruption on L-glutamic acid fermentation, each gene double-deficient strain MG1655ΔsucAΔarcA strain, MG1655ΔsucAΔdam, and MG1655ΔsucAΔfnr were cultured using sucA gene-deficient strain MG1655ΔsucA as a control, and L-glutamic acid production was measured. . The medium, culture method and analysis method for this purpose are shown below.
[0079]
[Culture method]
Refresh culture; inoculate preserved bacteria
LB agar medium (with chemicals added if necessary), 37 ° C, 24 hours
Seed tube culture; inoculated with refreshed bacteria
LB liquid medium (drug added if necessary), 37 ° C, 16 hours
Main culture; 10% inoculation from seed culture liquid medium
MS liquid medium (drug added if necessary), 37 ° C
20ml / 500ml Sakaguchi flask
[0081]
[Analysis method]
500 μl of the culture solution was sampled over time, and the glucose concentration and L-glutamic acid accumulation in the culture solution were measured. The glucose concentration and the L-glutamic acid concentration were centrifuged at 15,000 rpm for 5 minutes, and the culture solution obtained by diluting the supernatant with water at an appropriate magnification was measured with a Biotech Analyzer (Sakura Seiki). Table 1 shows the accumulation and yield of L-glutamic acid at the time when residual sugar disappeared.
[0082]
[Table 1]
As a result, the glutamic acid accumulation and yield of the sucA and dam gene-disrupted strains were slightly inferior to those of the control strain, and the sucA and fnr gene-disrupted strains were similar to the control strain. On the other hand, L-glutamic acid accumulation and yield of the sucA and arcA gene disrupted strains were both improved compared to the control strain.
[0084]
[Example 4]
Pantoea ananatis arcA gene disruption
<1> Acquisition of arcA gene of Pantoea ananatis
(1) Construction of Pantoea ananatis strain producing L-glutamic acid under low pH environment
ArcA is a global regulator that exists universally in Escherichia coli and related species. Here, based on the known archa gene sequence of Escherichia coli, the arcA gene of Pantoea ananatis was obtained using the Pantoea genus Pantoea ananatis AJ13601, which is a related species of Escherichia coli. AJ13601 is a strain obtained as follows (see EP 1 078 989 A2). AJ13355 strain was isolated as a strain capable of growing in a medium containing L-glutamic acid and a carbon source at low pH from the soil of Iwata City, Shizuoka Prefecture. SC17 strain was selected as a strain with low mucus productivity and good growth from AJ13355 strain, and SC17sucA was constructed as an α-ketoglutarate dehydrogenase (αKGDH) gene disruption strain from this SC17 strain. . SC17sucA contains plasmid (pSTVCB) containing citrate synthase gene (gltA) derived from Brevibacterium lactofermentum, gltA derived from Escherichia coli, phosphoenolpyruvate carboxylase gene (ppc), glutamate dehydrogenase gene (gdhA) The AJ13601 strain was selected as a strain having improved resistance to a high concentration of L-glutamic acid in a low pH environment from the transformed strain into which the plasmid (RSFCPG) containing each of the genes was introduced. The AJ13601 stock was issued on August 18, 1999 at the Institute of Biotechnology, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (currently the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Depositary Center, 1-1 1-1 Higashi, Tsukuba City, Ibaraki, Japan, 305-8566, Japan Deposited under No. 6 RERM P-17516 in the center 6)7Transferred to the international deposit under the Budapest Treaty on the 6th of June and given the accession number FERM BP-7207 (see EP 1 078 989 A2).
[0085]
(2) Acquisition of arcA gene from Pantoea ananatis AJ13601
The genomic DNA of Pantoea ananatis AJ13601 was extracted using QIAGEN-Genomic-tip System (Qiagen). A 759 bp DNA fragment containing the ORF of the arcA gene was obtained by PCR using the genomic DNA as a template and the following oligonucleotide as a primer. PCR was performed using Pyrobest DNA Polymerase (Takara Shuzo) according to the attached instructions. Primers 17 and 18 were used as PCR primers for amplification. The primer 17 is designed with an EcoRI site, and the primer 18 is designed with a SphI site.
[0086]
Primer 17: cccgaattccctgtttcgatttagttggc (Sequence in which an EcoRI sequence is added to the 5 ′ end of a sequence complementary to 4980-4999 of the base sequence of GenBank accession No. AE000510: SEQ ID NO: 17)
Primer 18: cccgcatgcgattaatcttccagatcacc (Sequence in which the SphI sequence is added to the 5 'end of the 4245-4264 sequence of the base sequence of GenBank accession No. AE000510: SEQ ID NO: 18)
[0087]
Using the EcoRI and SphI sites designed for both primers, the obtained DNA fragment is forwarded to the EcoRI and SphI sites of cloning vector pSTV29 (Takara Shuzo) with respect to the transcription direction of the lacZ gene. Into pSTV29_EaarcA. SEQ ID NO: 19 shows the sequence cloned into pSTV29. SEQ ID NO: 20 shows the predicted amino acid sequence encoded by this ORF. The ORF obtained here has a high homology of about 81.2% in DNA sequence and about 92.1% in amino acid sequence with the Escherichia coli arcA gene, and is therefore considered to encode the Pantoea ananatis arcA gene. .
[0088]
<2> Disruption of pantoea ananatis arcA gene
Pantoea ananatis G106S strain was used for preparation of the arcA gene disruption strain in Pantoea ananatis. This strain is a strain in which only RSFCPG is retained and pSTVCB is omitted from the two plasmids RSFCPG and pSTVCB possessed by AJ13601. An arcA gene-disrupted strain was prepared from G106S, and pSTVCB was introduced into the obtained disrupted strain to prepare an arcJ gene-disrupted strain of AJ13601. Details will be described below.
[0089]
(1) Construction of conjugation transfer plasmid for arcA gene disruption
Conventionally, breeding by chromosomal recombination using a temperature-sensitive plasmid is not easy to use in the recombination procedure due to the characteristics of Pantoea ananatis that can hardly grow at 42 ° C. Therefore, here, a method by recombination on the chromosome using the junction transfer method was adopted. In the case of the junction transfer method, it is necessary to construct a plasmid that does not have the origin of replication (ori) of Pantoea ananatis, that is, cannot be replicated by Pantoea ananatis. Therefore, first, primers 21 and 22 were used, and pUT / miniTn5-Cm (Lorenzo V., et al., Journal of Bacteriology, 172, 6568- (1990), and Herrero M., et al. , Journal of Bacteriology, 172, 6557 (1990)), and the oriR6K and mobRP4 moieties were amplified by PCR. In addition, primers 23 and 24 were used to amplify the multicloning site and the chloramphenicol resistance gene portion by PCR using pHSG399 as a template. Each obtained amplified fragment was treated with BglII (Takara Shuzo), and both fragments were bound using DNA ligation Kit ver. 2 (Takara Shuzo).
[0090]
Next, E. coli S17-1 λpir strain (R. Simon., Et al., BIO / TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)) was transformed with this binding reaction solution, and chloramphenicol. The LB agar plate containing 30 μg / ml was applied. After culturing at 37 ° C for 1 day, the grown colonies were cultured in a test tube at 37 ° C in LB medium containing 30 µg / ml chloramphenicol, and a plasmid was obtained using QIAprep Mini Spin column Kit (QIAGEN). . The obtained plasmid was treated with BglII, and a plasmid digested at one place was obtained to obtain a plasmid pUT399Cm for conjugation transfer.
[0091]
Primer 21: tcatagatcttttagattgatttatggtgc (SEQ ID NO: 21)
Primer 22: cccagatctaattcccatgtcagccgtta (SEQ ID NO: 22)
Primer 23: ataaagatctgtgtccctgttgataccggg (SEQ ID NO: 23)
Primer 24: ggggagatcttgcaaggcgattaagttggg (SEQ ID NO: 24)
[0092]
Next, the kanamycin resistance gene was introduced into pUT399 by the following method, and the chloramphenicol resistance gene was removed. A kanamycin resistance gene was amplified by PCR using pMW219 (manufactured by Nippon Gene) as a template and using primers 25 and 26. PCR was performed using Pyrobest DNA Polymerase (Takara Shuzo) according to the attached instructions. A BglII site is added to the 5 ′ end of the primer 25 and primer 26 sequences. The obtained DNA fragment and pUT399 were digested with restriction enzyme BglII (Takara Shuzo) and ligated using DNA ligation Kit ver.2 (Takara Shuzo). In this ligation reaction solution, E. coli S17-1 λpir strain (R. Simon., Et al., BIO / TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)) was transformed and LB agar containing 25 μg / ml kanamycin. It applied to the plate (LB + kanamycin plate). After culturing at 37 ° C. for one day, the grown colonies were cultured in a test tube at 37 ° C. in LB medium containing 25 μg / ml kanamycin, and the plasmid was extracted using QIAprep Spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN). The obtained plasmid was cleaved with BglII and subjected to agarose gel electrophoresis, and the plasmid into which the target fragment was inserted was designated as pUT399CmKm.
[0093]
Primer 25: cccagatctagttttcgccccgaagaacg (SEQ ID NO: 25)
Primer 26: cccagatctccagagtcccgctcagaaga (SEQ ID NO: 26)
[0094]
Next, the chloramphenicol resistance gene was removed from pUT399CmKm by the following procedure. pUT399CmKm was digested with restriction enzyme HindIII (Takara Shuzo) and ligated using DNA ligation Kit ver.2 (Takara Shuzo). In this ligation reaction solution, E. coli S17-1 λpir strain (R. Simon., Et al., BIO / TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)) was transformed and LB agar containing 25 μg / ml kanamycin. It applied to the plate (LB + kanamycin plate). After culturing at 37 ° C for one day, the grown colonies were cultured at 37 ° C on an LB plate containing 25 µg / ml kanamycin and an LB agar plate containing 30 µg / ml chloramphenicol (manufactured by Sigma). Acquired stock. This strain was cultured at 37 ° C. for 1 day in an LB medium containing 25 μg / ml kanamycin, and a plasmid was extracted using QIAprep Spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN). The obtained plasmid was designated as pUT399Km.
[0095]
Primers were synthesized based on the base sequence of the Pantoea ananatis arcA gene obtained in <1>, and the N-terminal and C-terminal fragments of the arcA gene were each amplified by PCR using pSTV29_EaarcA as a template. PCR was performed using Pyrobest DNA Polymerase (Takara Shuzo) according to the attached instructions. Primers 27 and 28 were used as PCR primers for N-terminal fragment amplification, and 29 and 30 were used as PCR primers for C-terminal fragment amplification. The primer 27 is designed with an EcoRI site, and the primer 30 is designed with a SphI site.
[0096]
Primer 27: cccgaattcgcgaccgatggtgcagagat (SEQ ID NO: 27)
Primer 28: aagggcaaattcatggtgcgc (SEQ ID NO: 28)
Primer 29: gcgcaccatgaatttgccttacccaatgaagagcgtcgcc (SEQ ID NO: 29)
Primer 30: cccgcatgcaccttcgccgtgaatggtgg (SEQ ID NO: 30)
[0097]
The amplified DNA fragments after PCR were purified by QIAquick PCR Purification Kit (Qiagen), respectively, and purified N-terminal and C-terminal DNA fragments and primers 27 and 30 were used for crossover PCR (AJ Destructive arcA fragments were obtained by Link, D. Phillips, GM Church, Journal of Bacteriology, 179, 6228-6237 (1997)). The purified DNA fragment was cleaved with EcoRI and SphI (Takara Shuzo), followed by phenol / chloroform treatment and ethanol precipitation. Similarly, the plasmid pUT399Km digested with EcoRI and SphI and the DNA fragment were ligated using DNA ligation Kit Ver. 2 (Takara Shuzo). In this ligation reaction solution, E. coli S17-1 λpir strain (R. Simon., Et al., BIO / TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)) was transformed and LB agar containing 25 μg / ml kanamycin. It was applied to the plate. After culturing at 37 ° C. for 1 day, the grown colonies were cultured in a test tube at 37 ° C. in LB medium containing 25 μg / ml kanamycin, and the plasmid was extracted using QIAprep Spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN). The obtained plasmid was cleaved with EcoRI and SphI and subjected to agarose gel electrophoresis, and the plasmid into which the target fragment had been inserted was designated as an arcA disrupting plasmid pUT399Km_ΔarcA.
[0098]
(2) Disruption of Pantoea ananatis arcA gene using the junction transfer method
Subsequently, gene disruption using homologous recombination was performed using the pUT399Km_ΔarcA. G106S strain is used as a plasmid recipient, and screening is performed with glucose 5 g / L (manufactured by Junsei), yeast extract 5 g / L (manufactured by Difco), tryptone peptone 10 g / L (manufactured by Difco), sodium chloride 10 g / L ( Junsei Chemical Co., Ltd.), medium containing disodium hydrogen phosphate 6g / L, potassium dihydrogen phosphate 3g / L, ammonium chloride 1g / L, calcium chloride dihydrate 1.5g / L (hereinafter referred to as "LBG-M9 medium") In the agar medium (hereinafter referred to as “LBG-M9 + Tet + Km plate”) supplemented with 25 μg / ml tetracycline, 25 μg / ml kanamycin, and agar. Since the plasmid derived from pUT399 cannot be replicated in Pantoea ananatis as described above, only the G106S strain in which pUT399Km_ΔarcA is integrated into the chromosome can be selected as a single recombinant, that is, a disrupted strain of the arcA gene on this agar medium. E. coli S17-1 λpir strain (R. Simon., et al., BIO / TECHNOLOGY NOVEMBER 1983, 784-791 (1983)) was transformed with pUT399Km_ΔarcA and applied to an LB agar plate containing 25 μg / ml kanamycin. After the culturing, the obtained transformant E. coli S17-1 λpir / pUT399Km_ΔarcA was cultured overnight at 37 ° C. using an LB medium containing 25 μg / ml kanamycin. In addition, the G106S strain was cultured overnight at 34 ° C. in LBG-M9 medium containing 25 μg / ml of tetracycline. Each culture broth was collected by centrifugation and suspended in 50 μl of LB medium. 25 μl of each was mixed, cultured on LBG-M9 agar medium at room temperature for 1 hour, and then cultured at 34 ° C. for 3 hours to perform conjugation transfer. Ten-1,Ten-2,Ten-3The diluted cells were applied to an LBG-M9 + Tet + Km plate, and tetracycline and kanamycin resistant strains were selected. Colony PCR was performed on several of the obtained strains to confirm the deletion of the arcA gene. Thus, an arcA-disrupted strain G106SΔarcA derived from G106S was obtained.
[0099]
(3) Introduction of pSTVCB into 106SΔarcA and production of L-glutamic acid
G106SΔarcA was transformed with pSTVCB. The obtained transformant G106SΔarcA / pSTVCB is equivalent to the AJ13601 arcA gene-deficient strain (AJ13601ΔarcA). The same strain and AJ13601 were cultured as controls, and L-glutamic acid production was measured. The medium, culture method and analysis method for this purpose are shown below.
[0100]
[Culture method]
Seed tube culture; inoculated with preserved bacteria
LBG-M9 agar medium (addition of drugs as necessary), 34 ° C, 24 hours
Main culture; 3 platinum ear inoculation of seed culture cells
Basic medium (with chemicals added if necessary), 34 ° C, 24 hours
5ml / test tube
[0102]
[Analysis method]
400 μl of the culture solution was sampled over time, and the sucrose concentration and L-glutamic acid accumulation in the culture solution were measured. The sucrose concentration and L-glutamic acid concentration were centrifuged at 15,000 rpm for 5 minutes, and the culture solution obtained by diluting the supernatant with water at an appropriate magnification was measured with a Biotech Analyzer (Sakura Seiki). Table 2 shows the accumulation and yield of L-glutamic acid at the time when the residual sugar disappeared.
[0103]
[Table 2]
As a result, it was confirmed that the L-glutamic acid accumulation and yield of the arcA gene-disrupted strain of Pantoea ananatis both improved compared to the control.
[0105]
[Example 5]
Effect of Escherichia coli arcA disruption strain on L-arginine production
In Example 2, it was confirmed that both L-glutamic acid accumulation and yield of the sucA, arcA gene-disrupted strain were improved as compared with the control strain sucA gene-disrupted strain. Here, the effect on production of arginine produced using glutamic acid as a substrate was examined. Escherichia coli Arginine producing strain 237 was used. The 237 shares were deposited at the Russian National Collection of Industrial Microorganisms (VKPM) on April 10, 2000 under the number VKPM B-7925, and transferred to the international deposit under the Budapest Treaty on May 18, 2001.
[0106]
(1) Preparation of arcA gene disruption strain of Escherichia coli 237 strain
Using the same method as in Example 1, the arcA gene was disrupted from 237 strains to produce an arcA disrupted strain 237ΔarcA.
[0107]
(2) Production of L-arginine
In order to examine the effect of arcA gene disruption on L-arginine fermentation, 237arcA-deficient strain 237ΔarcA was cultured using 237 as a control, and L-arginine production was measured. The medium, culture method and analysis method for this purpose are shown below.
[0108]
[Culture method]
Seed tube culture; inoculated with preserved bacteria
LB agar medium (with chemicals added if necessary), 32 ° C, 24 hours
Main culture; seed platinum tube inoculation from seed tube culture
Arginine evaluation medium (drug added if necessary), 32 ° C, 3 days
2ml / test tube
[0110]
[Analysis method]
500 μl of the culture solution was sampled over time, and the glucose concentration and L-arginine accumulation in the culture solution were measured. Glucose concentration and L-arginine concentration were centrifuged at 15,000 rpm for 5 minutes, and the supernatant was diluted with water at an appropriate magnification. Biotech Analyzer (Sakura Seiki) and Amino Acid Analyzer L-8500 (Hitachi Measurement) Measured by a device service company). Table 3 shows the accumulation and yield of L-arginine at the time when the residual sugar disappeared.
[0111]
[Table 3]
It was confirmed that both the L-arginine accumulation and the yield of the arcA gene disruption strain were improved as compared with the control strain.
[0113]
【The invention's effect】
According to the present invention, production efficiency can be improved when a useful substance such as an L-amino acid is produced using γ-proteobacteria.
[0114]
[Sequence Listing]
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a diagram showing accumulation patterns of WC196, WC196ΔarcA, WC196Δdam, and WC196Δfnr.
Claims (5)
（Ａ）配列番号３２に示すアミノ酸配列を有するタンパク質。
（Ｂ）配列番号３２に示すアミノ酸配列において、１〜１０個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつ、γ−プロテオバクテリアにおいて、そのタンパク質が産生される場合に比べて、同タンパク質が産生されないときに前記目的物質の生産能を向上させるタンパク質。
（Ｃ）配列番号２０に示すアミノ酸配列を有するタンパク質。
（Ｄ）配列番号２０に示すアミノ酸配列において、１〜１０個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつ、γ−プロテオバクテリアにおいて、そのタンパク質が産生される場合に比べて、同タンパク質が産生されないときに前記目的物質の生産能を向上させるタンパク質。The production method according to claim 1, wherein the ArcA protein is a protein according to any one of the following (A) to (D).
(A) A protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 32.
(B) The amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 32 has an amino acid sequence containing 1 to 10 amino acid substitutions, deletions, insertions or additions, and the protein is produced in γ-proteobacteria Compared with the case, the protein which improves the productivity of the said target substance when the protein is not produced.
(C) A protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 20.
(D) The amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 20 has an amino acid sequence containing 1 to 10 amino acid substitutions, deletions, insertions or additions, and the protein is produced in γ-proteobacteria Compared with the case, the protein which improves the productivity of the said target substance when the protein is not produced.
（ａ）配列番号３１の塩基番号１０１〜８１７または配列番号１９の塩基番号４１〜７５７からなる塩基配列を含むＤＮＡ。
（ｂ）配列番号３１の塩基番号１０１〜８１７または配列番号１９の塩基番号４１〜７５７からなる塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、そのタンパク質が産生される場合に比べて、同タンパク質が産生されないときに前記目的物質の生産能を向上させるタンパク質をコードするＤＮＡ。The production method according to any one of claims 1 to 3, wherein the arcA gene is the DNA described in (a) or (b) below.
(A) DNA comprising a base sequence consisting of base numbers 101 to 817 of SEQ ID NO: 31 or base numbers 41 to 757 of SEQ ID NO: 19;
(B) hybridizes to the nucleotide numbers 101-817 or nucleotide sequence under stringent conditions of the nucleotide numbers 41 to 757 of SEQ ID NO: 19 SEQ ID NO: 31, and, as compared with the case where the protein is produced DNA encoding a protein that improves the ability to produce the target substance when the protein is not produced.
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