JP4170743B2 - 新規遺伝子ａｓｂ４及びその形質転換体と遺伝子産物の利用法 - Google Patents
新規遺伝子ａｓｂ４及びその形質転換体と遺伝子産物の利用法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP4170743B2 JP4170743B2 JP2002348752A JP2002348752A JP4170743B2 JP 4170743 B2 JP4170743 B2 JP 4170743B2 JP 2002348752 A JP2002348752 A JP 2002348752A JP 2002348752 A JP2002348752 A JP 2002348752A JP 4170743 B2 JP4170743 B2 JP 4170743B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- gene
- ferrichrome
- amino acid
- asb4
- biosynthesis
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
- Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
- Y02P20/52—Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ蛋白質、該蛋白質をコードする遺伝子、該遺伝子を含有する組み換えベクター、該組み換えベクターを含有する形質転換体、該遺伝子を含有する組み換え麹菌、該形質転換体を用いるフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ蛋白質を生産させることによってフェリクローム高生産麹菌を育種する方法、蛋白質の発現を麹菌菌体内で抑制させフェリクローム非生産麹菌を育種する方法、蛋白質を麹菌以外の生物で発現させフェリクローム類を生産する方法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
鉄イオンは一部の乳酸菌を除く、ほとんどすべての生物にとって必須の原子である。鉄は、生体内ではＦｅ（II）やＦｅ（III）の形態で利用され、主に酸化還元に関与する酵素群の補欠因子として機能する。しかしながら、一般的に鉄は自然界において鉄鉱石として存在し、可溶化されたイオン状態としてはほとんど存在しない。さらに鉄鉱石から微生物の働きにより可溶化された鉄イオンも、すぐに不溶性の酸化物や水酸化物となるため、生物が利用できる鉄イオンはきわめて微量である。細菌や放線菌、真核微生物は、このような微量な鉄イオンを効率的に獲得するために、シデロフォアと呼ばれる分子量１５００以下の低分子の鉄イオンキレート物質を生産する。このシデロフォアに鉄イオンをキレートすることにより、貴重な鉄イオンの不溶化を防ぎ、鉄イオンを優先的に利用することを図っている。また鉄イオンは生物にとって必須のイオンであるが、過剰に存在すると遊離のラジカルの発生を促し、逆に生体に危害を加える。シデロフォアは鉄イオンの獲得と同時に、このような鉄イオンの無害化にも大きく寄与している。シデロフォアは非キレート状態では無色であるが、鉄イオンをキレートすると、赤色を示し、可視光の吸収を示すことが知られている。
【０００３】
現在までに様々なシデロフォアが同定されているが、糸状菌が生産するシデロフォアはhydroxamates familyと呼ばれ、一般に構成アミノ酸誘導体としてＮ−ヒドロキシオルニチンを含む。研究用モデル糸状菌、工業用微生物、病原性糸状菌として幅広く研究が進められているアスペルギルス属糸状菌は、hydroxamates familyの中でもヘキサペプチドであるフェリクローム類とフザリニン類と呼ばれるシデロフォアを生産する。前者は、Ｎ−ヒドロキシオルニチンのトリペプチドにグリシン、セリン、アラニンが環状ペプチドを形成している。一方、後者では一部のＮ−ヒドロキシオルニチンのＮ位が無水メバロン酸によってアシル化されている特徴を有する。糸状菌はこのような多種多様なシデロフォアを生産することにより、鉄イオンを優先的に獲得し、自然界での生存競争に活用しているものと考えられる。
【０００４】
一方、清酒醸造では、アスペルギルス・オリゼを蒸米上に生育させて「麹」を作成し、清酒醸造の副原料として利用している。この麹造りにおいてアスペルギルス・オリゼが大量のフェリクローム類（中でも主成分はフェリクリシン）を生産し、これが酒造用水の鉄イオンをキレートし、清酒が着色することが知られている。従って、清酒醸造においては、シデロフォアであるフェリクローム類が、品質劣化の原因であり、できるだけフェリクローム類を生産しない菌株の育種が進められてきた（例えば、非特許文献１参照）。
【０００５】
このように、麹菌（Ａ．ｏｒｙｚａｅ）はフェリクローム類を大量に生産することが古くから知られているが、その生合成系に関しては、２００１年までにはほとんど明らかになっていない。よって、フェリクローム低生産菌の育種は主に、スクリーニング法や変異法に頼っていた。また、清酒醸造とは別の側面からは、近年、このシデロフォアの鉄キレート力は、貧血症の医薬としても利用される可能性が指摘されている。麹菌が産生するフェリクロームも鉄イオン結合能力については非常に優れているが、その生産性の向上が困難で工業レベルでの生産の対象とはなっていない。よって、フェリクローム類の生合成遺伝子の同定は、麹菌によるフェリクローム類の生産を自由に調節できる可能性を与える。すなわち、清酒醸造においては、フェリクリシン生合成に関与する遺伝子の発現が抑制できれば、全くフェリクリシンを生産しない株の育種が可能となる。また、医薬品製造においては、生合成系をより活発に誘導させることにより、大量のフェリクリシン生産が可能となる。さらに麹菌が生産するフェリクリシンは清酒や酒粕として長年摂取されており、極めて安全性の高い物質である。麹菌によりフェリクリシンが大量に生産できれば、医薬品から食品まで幅広い応用が可能となる。
【０００６】
現在までに我々は、麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群として、フェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特願２００１−８３６４０）とフェリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５−オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）がクローニングされている。
【０００７】
しかし、フェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２にはｐｆａｍによるドメイン構造解析（例えば、非特許文献２参照）から２つのアミノ酸活性化領域しかコードされておらず、６アミノ酸からなるフェリクロームを合成するためには別のペプチドシンテターゼ遣伝子の存在が示唆されていた。２００２年度に一部公開された麹菌のゲノム遺伝子配列から、上記のフェリクローム生合成に関与する新規なペプチドシンテターゼ遺伝子を探索することにより、有意な遺伝子のクローニングが可能であるとの新規着想を得た。
【０００８】
【非特許文献１】
蔭山公雄編、「灘の酒用語集」、灘酒研究会、昭和５４年１０月１日、Ｐ．１４５
【非特許文献２】
ベイトマン他（Ｂａｔｅｍａｎ ｅｔ ａｌ．）、「ニュークレイック アシッズ リサーチ（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．」、３０（１）、２００２、ｐ．２７６−２８０。
【０００９】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのフェリクローム生産を自由に制御するために、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子を提供することにある。本発明の他の目的は、本遺伝子を含有する組み換えベクターとこの組み換えベクターを含有する形質転換体を提供することにある。
【００１０】
現在までに麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特願２００１−８３６４０）、フェリクローム生合成の第−段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）がクローニングされている。しかし、フェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２にはｐｆａｍによるドメイン構造解析から、２つのアミノ酸活性化領域しかコードされておらず、６アミノ酸からなるフェリクロームを合成するためには別のペプチドシンテターゼ遺伝子の存在が示唆されていた。
【００１１】
しかしながら、従来、このようなフェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与する新規なペプチドシンテターゼ遺伝子が取得できていないために、麹菌のフェリクローム生産についてはさまざまな分野に応用が期待されるがいまだに効率的な活用がなされていない。従って、２００２年度に一部公開された麹菌のゲノム遺伝子配列から新規なペプチドシンテターゼ遺伝子が取得できれば麹菌でのフェリクローム生合成メカニズムがすべて解明され、フェリクローム生産抑制や高生産が容易に制御できるといった有用な用途への途が拓ける。
【００１２】
このような観点から、本発明の目的の一つは、上記形質転換体を用いるペプチドシンテターゼ蛋白質の麹菌体内での発現を抑制することによって、米麹を用いた固体培養でフェリクロームを生産しない麹菌を提供することにある。その結果、該麹菌を清酒、味噌、醤油、味醂などの我が国独自の醸造産業へ利用することが可能となる。もう一つの目的は、該遺伝子の発現を遺伝子工学的手法を用いて高めることによって、あらゆる培養条件下でフェリクロームを高生産する麹菌を提供することにある。またこうして生産されたフェリクロームを鉄キレート剤としての試薬、ならびに貧血の改善効果が期待できる機能性食品への添加に提供することが可能となる。
【００１３】
【課題を解決するための手段】
本発明は、上記目的を達成するためになされたものであって、先ずはじめに、麹菌について検討を行った。
麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅは清酒、醤油、味噌などの我が国の伝統的酵素産業で使用されてきた糸状菌である。本菌株の特徴は、上記発酵産業で有用な蛋白質や低分子成分を非常に大量に生産することである。本菌株が持つ高い蛋白質生産能と醸造微生物としての安全性から、異種蛋白質生産の宿主として注目されている（Biotechnology, 6, 1419 (1988)、特開昭６２−２７２９８８）。本発明者らの研究から、Ａ．ｏｒｙｚａｅを用いた異種蛋白質生産においては、アスペルギルス属などの近種の遺伝子であれば、その生産能はさらに増大することが認められた。特に、Ａ．ｏｒｙｚａｅの遺伝子を、Ａ．ｏｒｙｚａｅの高発現プロモーター制御下で発現させた場合、非常に大量の蛋白質が生産されることを見出した（特開平１１−１５４２７１、特願２０００−３６７５４）。また、Ａ．ｏｒｙｚａｅは、上記のような蛋白質、酵素のみならず、産業的にも非常に貴重な低分子成分の生産も報告されている。なかでも、麹菌が固体培養で生産するフェリクロームも貧血などの鉄欠乏症用の機能性成分としても非常に注目されている物質である。
【００１４】
この麹菌のフェリクロームを医薬・食品に利用するためには、生産性をさらに向上させる必要があるが、変異法などの既存の菌株育種方法では、工業生産レベルにまで生産性が向上した変異株の取得はできなかった。そこで、フェリクローム生合成に関与する遺伝子を単離し、これらの遺伝子の発現能を強化することによりフェリクロームの大量生産が可能であると考えた。麹菌におけるフェリクローム生合成経路については、その生合成の第一段階はオルニチンＮ５−オキシゲナーゼによるオルニチンのヒドロキシル化であり、続いてペプチドシンテターゼによるＮ−ヒドロキシオルニチンのトリペプチドにグリシン、セリン、アラニンの環状ペプチド化であると考えられる。
【００１５】
現在までに菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特願２００１−８３６４０）、フニリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）がクローニングされている。しかし、フェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２にはｐｆａｍによるドメイン構造解析から２つのアミノ酸活性化領城しかコードされておらず、６アミノ酸からなるフェリクロームを合成するためには別のペプチドシンテターゼ遺伝子の存在が示唆されていた。このようなフェリクローム合成に関与する新規のペプチドシンテターゼ遺伝子が取得できていないために、麹菌のフェリクローム生産についてはさまざまな分野に応用が期待されるがいまだに効率的な活用がなされていない。そこでこの新規なペプチドシンテターゼの遺伝子が取得できれば、フェリクローム生合成メカニズムの分子レベルでの全容が解明され、フェリクロームの生産を自由に制御できる遺伝子組み換え麹菌を育種でき、フェリクロームの工業生産が可能になるとの新規着想を得た。
【００１６】
以下は麹菌が生産するフェリクローム類の中でも、最も含有量の多いフェリクリシンの生産を中心に記述するが、本発明は全てのフェリクローム類に応用が可能な技術であり、フェリクリシンだけに限定するものではない。
【００１７】
本発明において、清酒醸造において清酒の着色を起こす鉄イオンキレート低分子フェリクリシンを貧血改善用の機能性成分などとして大量生産させるために、フェリクリシン生合成に関与する新規なペプチドシンテターゼ蛋白質の遺伝子クローニングを行い、フェリクリシンの工業生産に適した遺伝子組み換え麹菌を育種することを試みた。
【００１８】
まず、２００２年度に一部公開された麹菌のゲノム遺伝子配列から上記のフェリクローム生合成に関与する新規なペプチドシンテターゼ遺伝子の探索が可能であると考えた。麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、多機能性合成酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。その中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１３４１＿ｈ＿７１４とＣｏｎ１３４１＿ｍｉｄ−Ｃｏｎ１３４１＿２７２４−ｒ１は、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓとＡｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓのフェリクローム生合成ペプチドシンテターゼ遺伝子と高い相同性を示した。両遺伝子は同じコンティグ上に存在し、さらに塩基配列の確認とＢｌａｔ、ＦＡＳＴＡによる相同性検索から１本のポリペプチドをコードする１つの連続した遺伝子をコードする事が判明した。さらに相同性からＮ末端に１つのイントロンの存在が示唆された。鉄制限培養した麹菌菌体から調製したポリＡ＋ＲＮＡを鋳型にＮ末端付近のｃＤＮＡ解析から１つのイントロンの位置を決定した。
【００１９】
その結果、本遺伝子は、４７６０アミノ酸残基からなる蛋白質をコードしており、イントロンを１つ含んでいた。また、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓのｓｉｄ２遺伝子産物とアミノ酸レベルで２７％の相同性を有していた。得られた遺伝子をａｓｂ４と命名した。ａｓｂ４はノザン解析の結果、他のフェリクローム生合成遺伝子であるａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｓｂＲ同様に鉄制限培養条件下で発現が認められ、鉄存在下でその発現の抑制が認められた。
【００２０】
次に、ａｓｂ４の機能を同定するために、本遺伝子の麹菌での大量発現を試みた。フェリローム生合成遺伝子であるａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３をｍｅｌＯプロモーター（特願平１１−１５４２７１）支配下で高発現させた麹菌のａｓｂ４の５’非翻訳領域１−ｋｂを、ピリチミン耐性遺伝子（Ｋｕｂｏｄｅｒａ Ｔｅｔａｌ．Ｂｉｏｓｃｉ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ、６４（７）、ｐｐ１４１６−１４２１、２０００）をマーカーとして、ｍｅｌＯプロモーターと置換した。得られた形質転換体は、親株の１．４倍のフェリクローム量を生産し、最大０．７ｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈのフェリクロームの菌体外生産を示した。本菌株を用いることによって、鉄制限培養条件下で大量の麹菌フェリクロームを提供することが可能である。
【００２１】
このように単離した遺伝子は、単独であるいはｍｅｌ０やｇｌａＢ遺伝子プロモーター（特願平１１−１５４２７１、特開平１１−２４３９６５）のような高発現プロモーターと共に、Ａ．ｏｒｙｚａｅにて発現させて、フェリクリシンの生産を制御しうるものである。遺伝子導入方法は、例えば、宿主としてｎｉａＤ変異株を用いる公知方法により、目的遺伝子とマーカー遺伝子であるｎｉａＤ遺伝子を同時に導入する。（Ｓ．ＵｎｋｌｅらＭｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．，２１８，ｐ．９９−１０４、１９８９）この遺伝子導入の際に、ベクター配列などの異種遺伝子を排除することにより、異種遺伝子を全く含まないセルフクローニング株の形質転換体を得ることができる。ｎｉａＤ変異株は、硝酸を資化できない麹菌変異株（Ｎｉｔｒａｔｅ Ｒｅｄｕｃｔａｓｅ欠損株）であって、例えばＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ１０１３−ｎｉａＤ（ＦＥＲＭ Ｐ−１７７０７）が挙げられる。
【００２２】
以下に、本発明の詳細について述べる。
【００２３】
既にクローニングした麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）の１９２４アミノ酸残基には、ｐｆａｍ解析から、２つのアミノ酸活性化領域（８２−４９０アミノ酸残基と９８０−１３６７アミノ酸残基）しか同定されていない。しかし、ペプチドシンテターゼは、−般に生合成されるペプチドの構成アミノ酸数とアミノ酸活性化領域数は一致している。よって、６アミノ酸残基からなる麹菌のフェリクロームの合成には、ａｓｂ２以外に理論上４つのアミノ酸活性化領域をもつペプチドシンテターゼが必要と考えられる。
【００２４】
しかし、フェリクロームクラスター遺伝子内の６０−ｋｂにはａｓｂ２以外のペプチドシンテターゼ遺伝子は存在しなかった。そこで、麹菌のゲノム遺伝子コンティグ中に新規なフェリクローム合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子が存在することが示唆されているとの新規着想を得た。そして麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、多機能性合成酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。その中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１３４１＿ｈ＿７１４とＣｏｎ１３４＿ｍｉｄ−Ｃｏｎ１３４１−２７２４−ｒ１は、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓとＡｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓのフェリクローム生合成ペプチドシンテターゼ遺伝子と高い相同性を示した。両遺伝子は同じコンティグ上に存在し、さらに塩基配列の確認とＢｌａｓｔ、ＦＡＳＴＡによる相同性検索から、１本のポリペプチドをコードする１つの連続した遺伝子をコードする事が判明した。さらに、相同性からＮ末端１−ｋｂ中に１つのイントロンの存在が示唆された。
【００２５】
鉄制限培養した麹菌菌体から調製したポリＡ＋ＲＮＡを鋳型にＮ末端１−ｋｂのｃＤＮＡ解析を取得し、塩基配列を決定した結果、１つのイントロンの位置を決定した。本遺伝子は、配列番号１（図５〜７）に示す４７６０アミノ酸残基からなる蛋白質をコードしており、イントロンを１つ含んでいた。コーディング領域は配列番号２（図８〜１５）の１から１４３４１ｂｐであり、イントロンは５３８−５９５ｂｐである。また、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓのｓｉｄ２遺伝子産物とアミノ酸レベルで２７％の相同性を有していた。得られた遺伝子をａｓｂ４と命名した。
【００２６】
ａｓｂ４にコードされる４７６０アミノ酸残基のｐｆａｍ解析から、３つのアミノ酸活性化領域（３０５−８１５アミノ酸残基、１４６６−１９５７アミノ酸残基、２５８２−３０６６アミノ酸残基）、５つの縮合領域（９７３−１２７０アミノ酸残基、２１２１−２３８７アミノ酸残基、３２０５−３４９３アミノ酸残基、３７５２−４０３５アミノ酸残基、４３０５−４５９３アミノ酸残基）、５つのアシルキャリアー蛋白質（８５８−９２０アミノ酸残基、１９８５−２０４７アミノ酸残基、３１０２−３１６３アミノ酸残基、３６４９−３７１３アミノ酸残基、４２０６−４２６８アミ残基）からなるという新規な予測を得た。
【００２７】
次にａｓｂ４の発現条件の解析を行うためにノザン解析を行った。本遺伝子は他のフェリクローム生合成遺伝子であるａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｓｂＲ同様に鉄制限培養条件下で発現が認められ、鉄存在下でその発現の抑制が認められた。
【００２８】
さらに、ａｓｂ４の麹菌での発現解析を行った。先ず、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３をｍｅｌＯプロモーター支配下で高発現させた形質転換体を作製した。本菌株は、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３を液体培養で高発現しており、３０℃７日間の鉄制限の液体培養で対照株の約１７倍に相当する０．５ｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈのフェリクローム生産量を示した。次に、本形質転換体のａｓｂ４遺伝子の高発現を試みた。すなわち、上記形質転換体のａｓｂ４の５’非翻訳領域１−ｋｂを、ピリチミン耐性遺伝子（Ｋｕｂｏｄｅｒａ Ｔ ｅｔ ａｌ．Ｂｉｏｓｃｉ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ、６４（７）、ｐｐ１４１６−１４２１、２０００）をマーカーとしてｍｅｌＯプロモーターと置換した。得られた形質転換体３株は、親株の１．４倍のフェリクローム量を生産し、最大０．７ｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈのフェリクロームの菌体外生産を示した。本菌株を用いることによって、麹菌のフェリクロームの大量生産が可能となることが確認された。
【００２９】
プラスミドｐＵＣ１１９にＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのｎｉａＤ、ｍｅｌＯプロモーター、ａｓｂ３、ｍｅｌＯプロモーター、ａｓｂ１を組み込んでプラスミドｐＮＩＡ１３を構築した。また、プラスミドｐＵＣ１１８にＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのＳＣ、ａｓｂ２、ｍｅｌＯプロモーターを組み込んでプラスミドｐＳＣ２を構築した。このようにして構築したプラスミドｐＳＣ２、ｐＮＩＡ１３の順にＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４（ｎｉａＤ、ＳＣ）に形質転換した。この形質転換体は、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３遺伝子を含んでおり、ｍｅｌＯプロモーター支配下で高発現することが上記のように確認された。
【００３０】
また、プラスミドｐＵＣ１１８に、ａｓｂ４のプロモーターの一部、Ａ．ｏｒｙｚａｅのピリチアミン耐性遺伝子（ＰＴ）、ｍｅｌＯプロモーター、ａｓｂ４のコード領域の一部を組み込んだプラスミドｐＰＴ４を構築した。
【００３１】
上記によって得たａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３で形質転換した形質転換体と組み換えプラスミドｐＰＴ４を混合して、該形質転換体にｐＰＴ４を形質転換した。得られた形質転換体は、これをＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ ＡＳＢ１−４と命名した。この新規形質転換体は、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂ４を含有した新規組換えベクターｐＡＳＢ１−４を含有するものであった。ｐＳＣ２、ｐＮＩＡＢ、ｐＰＴ４の宿主であるA．oryzae Ｍ−ＮＳ４（niaＤ、sＣ）は、独立行政法人酒類総合研究所より申請により分譲してもらった株である。（参考文献：Yamada．Ｏet al．Bioeci Biotechnol Biochem． 61，pp 1367-1369，1997）また、上記プラスミドの形質転換は、公知方法に従った。予って本形質転換体は、当業者に容易に育種できる。
【００３２】
以上の結果より、クローニングした遺伝子断片ａｓｂ４には、フェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼがコードされていることが確認できた。また、この遺伝子を用いて、麹菌のフェリクローム生合成を鉄制限下で高生産あるいは非生産させることが可能であり、用途に応じたフェリクローム生産の改変が分子レベルで可能となり、様々な産業分野に応用が可能であることも確認した。
以下、本発明の実施例について述べる。
【００３３】
【実施例１】
麹菌ゲノム配列コンティグからの新規なペプチドシンテターゼ遺伝子のクローニング
麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅのフェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与する新規なペプチドシンテターゼの遺伝子クローニングを行うために、麹菌ゲノム配列コンティグの検索を行った。麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中で、Ｂｌａｓｔ検索結果から、多機能性合成酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。その中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１３４１＿ｈ＿７１４とＣｏｎ１３４１−ｍｉｄ−Ｃｏｎ１３４１−２７２４−ｒ１は、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓとＡｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓのフェリクローム生合成ペプチドシンテターゼ遺伝子と高い相同性を示した。両遺伝子は同じコンティグ上に存在し、さらに塩基配列の確認とＢｌａｓｔ、ＦＡＳＴＡによる相同性検索から１本のポリペプチドをコードする１つの連続した遺伝子をコードする事が判明した。さらに相同性からＮ末端１−ｋｂ中に１つのイントロンの存在が示唆された。
【００３４】
この１−ｋｂの領域のｃＤＮＡを得るためにＲＴ−ＰＣＲを行った。３０℃、４日間鉄制限培地（２％グルコース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、ｐＨ６．０）で液体培養した麹菌菌体からニッポンジーン社ＩＳＯＧＥＮを利用して全ＲＮＡを抽出した。その全ＲＮＡから宝酒造Ｏｌｉｇｏｔｅｘ−ｄＴ３０＜Ｓｕｐｅｒ＞ｍＲＮＡ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いてｍＲＮＡを抽出した。得られたｍＲＮＡ０．５μｇをもとに宝酒造のＴａｋａｒａ ＲＮＡ ＬＡ ＰＣＲ ｋｉｔ（ＡＭＶ） ｖｅｒ．１．１によりＲＴ−ＰＣＲを試みた。プライマーはＰ１：配列番号３（図１６）とＰ２：配列番号４（図１７）を利用した。反応条件は、以下に従った。
【００３５】
ＰＣＲ条件
・３０℃（１０分）、４２℃（６０分）、９９℃（５分）、５℃（５分）、９６℃（５分）、１サイクル
・９６℃（２０秒）、４５℃（３０秒）、７２℃（３分）、３０サイクル
・７２℃（７分）、１サイクル
【００３６】
反応液をアガロースゲル電気泳動で解析を行っ結果、約１−ｋｂのフラグメントの増幅が認められた。本増輻産物の塩基配列を決定した結果、１つのイントロンの位置を決定した。本遺伝子は配列番号１に示す４７６０アミノ酸残基からなる蛋白質をコードしており、イントロンを１つ含んでいた。コーディング領域は配列番号２の１から１４３４１ｂｐであり、イントロンは５３８−５９５ｂｐである。また、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓのｓｉｄ２遺伝子産物とアミノ酸レベルで２７％の相同性を有していた。得られた遺伝子をａｓｂ４と命名した。
【００３７】
【実施例２】
ａｓｂ４遺伝子産物のｐｆａｍによる蛋白質モチーフ解析
フェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼａｓｂ２、ａｓｂ４は多機能ドメインからなる蛋白質をコードする。これらのドメイン解析をＰｆａ（Ｂａｔｅｍａｎ ｅｔ ａｌ，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ，３０（１），ｐｐ２７６−２８０，２００２）により同定した。その結果、図１（図中、ＡＭＰはアミノ酸活性化ドメイン、四角はアシルキャリアー蛋白質、ＣＯＮＤＥＮＳＡＴＩＯＮは縮合ドメイン、数字はアミノ酸残基の位置をそれぞれ示す。）に示すようなドメイン構造を有することが明らかとなった。以下の表１に詳細なドメイン情報を示した。
【００３８】
（表１）
ａｓｂ２、ａｓｂ４遺伝子産物のドメイン構造
ａｓｂ２
─────────────────────────
８２−４９０ アミノ酸活性化ドメイン
９８０−１３６７ アミノ酸活性化ドメイン
６０２−６６７ アシルキャリアー蛋白質
１４０６−１４９９ アシルキャリアー蛋白質
７０６−９７８ 縮合ドメイン
１５１２−１７８７ 縮合ドメイン
ａｓｂ４
─────────────────────────
３０５−８１５ アミノ酸活性化ドメイン
１４６６−１９５７ アミノ酸活性化ドメイン
２５８２−３０６６ アミノ酸活性化ドメイン
８５８−９２０ アシルキャリアー蛋白質
１９８５−２０４７ アシルキャリアー蛋白質
３１０２−３１６３ アシルキャリアー蛋白質
３６４９−３７１３ アシルキャリアー蛋白質
４２０６−４２６８ アシルキャリアー蛋白質
９７３−１２７０ 縮合ドメイン
２１２１−２３８７ 縮合ドメイン
３２０５−３４９３ 縮合ドメイン
３７５２−４０３５ 縮合ドメイン
４３０５−４５９３ 縮合ドメイン
─────────────────────────
【００３９】
【実施例３】
ａｓｂ４遺伝子のノザン解析
ａｓｂ４遺伝子の発現条件を検討するためにノザン解析を行った。実施例１のＰ１、Ｐ２プライマーを用いたＲＴ−ＰＣＲで得られた１−ｋｂのｃＤＮＡをプローブとした。培養は月桂冠保存株である麹歯Ａ．ｏｒｙｚａｅ ＯＳＩ１０１３株を鉄含有と鉄制限培地で３０℃、４日間行った。鉄制限培地の組成は（２％グルロース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、ｐＨ６．０）で、鉄含有培地の組成は（２％グルコース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、０．０１％硫酸鉄、ｐＨ６．０）である。
【００４０】
両培地で液体培養した麹菌菌体からニッポンジーン社ＩＳＯＧＥＮを利用して全ＲＮＡを抽出した。得られた全ＲＮＡを１％ホルムアルデヒド変性アガロースゲルで電気泳動後、アマシャムファルマシア社製のハイボンドＮ＋ヘアルカリトランスファーを行った。ハイブリダイゼーションは、アマシャムファルマシア社製のＧｅｎｅ Ｉｍａｇｅ Ｌａｂｅｌｉｎｇ ａｎｄ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｋｉｔを使用した。
【００４１】
得られた結果を図２（図面代用写真）に示した。図中、−（左側のパターン）は鉄制限培地、＋（右側のパターン）は鉄含有培地を示す。図２に示すように、ａｓｂ４は、鉄制限条件下でのみ約１５−ｋｂの巨大トランスクリプトが確認された。本遺伝子は他のフェリクローム生合成遺伝子であるａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｓｂＲ同様に鉄制限培養条件下で発現が認められ、鉄存在下でその発現の抑制が認められた。
【００４２】
【実施例４】
ａｓｂ４遺伝子の麹菌での高発現
麹菌でのａｓｂ４の機能を決定するために高発現を試みた。まず図３に示した各種プラスミドを構築した。ｐＮＩＡ１３は、ｐＵＣ１１９のＰｓｔＩ−ＨｉｎｄIIIにＡ．ｏｒｙｚａｅの４．５−ｋｂ ｎｉａＤ、ｍｅＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ３１ １−ｋｂのＰｓｔＩ、ｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ１ １．５−ｋｂのＳａｌＩの順にサブクローニングした。ｐＳＣ２は、ｐＵＣ１１８のＢａｍＨＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの３−ｋｂ ｓＣ、ｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ２ ６−ｋｂのＢａｍＨＩの順にサブクローニングした。ｐＰＴ４は、ｐＵＣ１１８のＢａｍＨＩにａｓｂ４のプロモーター４７００から−３０００の領城（ａｓｂ４−ｕｐ１）、ＰｓｔＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの２−ｋｂピリチアミン耐性遺伝子（ＰＴ）、ＨｉｎｄIIIにｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ４の開始コドンから２０００ｂｐ（ａｓｂ４−ｕｐ２）を組み込んだ。この組み換えプラスミドｐＰＴ４には、ａｓｂ４のプロモーター、コーディーング領域部分を含有している。
【００４３】
形質転換は、Ａ、ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４（ｎｉａＤ、ｓＣ）にｐＳＣ２、ｐＮＩＡ１３の順に形質転換した。得られた形質転換体にｐＰＴ４を形質転換し、相同組み換えによりゲノム中のａｓｂ４の開始コドン上流１０００ｂｐをｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂに置換した。この新規形質転換体は、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂ４を組み込んだ新規組換えベクターｐＡＳＢ１−４を含有するものであり、その発現も以下により確認された。
【００４４】
得られた形質転換体を鉄制限培地にて、３０℃、７日間の液体培養を行った。得られた結果を図４（図面代用写真）に示す。図４（Ａ）に示すように、ｐＳＣ２、ｐＮＩＡ１３の形質転換体（ａｓｂ１〜３：＋、ａｓｂ４：−）は、０．５２ｇ／１Ｌ−ブロスのフェリクロームを菌体外に分泌し、一方、本発明に係る形質転換体Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ ＡＳＢ１−４、すなわちｐＳＣ２、ｐＮＩＡ１３、ｐＰＴ４の形質転換体（ａｓｂ１〜４：＋）は、０．７４ｇ／１Ｌ−ブロスという著量のフェリクロームを菌体外に分泌した。
【００４５】
培養液に最終１０００ｐｐｍの三塩化鉄溶液を添加した結果、図４（Ｂ）に示すように著量のフェリクロームが観察された。よって、ａｓｂ４は、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子であることが証明された。
【００４６】
【発明の効果】
本発明により、クローニングした遺伝子断片ａｂｓ４には、フェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与する新規なペプチドシンテターゼがコードされていることが確認できた。またこの遺伝子を用いて、麹菌のフェリクローム類生合成を鉄制限下で高生産あるいは非生産させることが可能であり、用途に応じたフェリクローム類生産の改変が分子レベルで可能となり、様々な産業分野に応用が可能であることも確認した。
【００４７】
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】ａｓｂ４及びａｓｂ２のドメイン構造を示す。
【図２】ａｓｂ４の鉄制限培養条件下でのノザン解析の結果を示す図面代用写真である。
【図３】麹菌フェリクローム生合成遺伝子高発現プラスミドを示す。
【図４】麹菌フェリクローム生合成遺伝子高発現形質転換体のフェリクローム生産を示す図面代用写真である。
【図５】本ペプチドシンテターゼ蛋白質のアミノ酸配列を示す。
【図６】同上続きを示す。
【図７】同上続きを示す。
【図８】本ペプチドシンテターゼ遺伝子の塩基配列を示す。
【図９】同上続きを示す。
【図１０】同上続きを示す。
【図１１】同上続きを示す。
【図１２】同上続きを示す。
【図１３】同上続きを示す。
【図１４】同上続きを示す。
【図１５】同上続きを示す。
【図１６】プライマーＰ１を示す。
【図１７】プライマーＰ２を示す。
【発明の属する技術分野】
本発明は、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ蛋白質、該蛋白質をコードする遺伝子、該遺伝子を含有する組み換えベクター、該組み換えベクターを含有する形質転換体、該遺伝子を含有する組み換え麹菌、該形質転換体を用いるフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ蛋白質を生産させることによってフェリクローム高生産麹菌を育種する方法、蛋白質の発現を麹菌菌体内で抑制させフェリクローム非生産麹菌を育種する方法、蛋白質を麹菌以外の生物で発現させフェリクローム類を生産する方法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
鉄イオンは一部の乳酸菌を除く、ほとんどすべての生物にとって必須の原子である。鉄は、生体内ではＦｅ（II）やＦｅ（III）の形態で利用され、主に酸化還元に関与する酵素群の補欠因子として機能する。しかしながら、一般的に鉄は自然界において鉄鉱石として存在し、可溶化されたイオン状態としてはほとんど存在しない。さらに鉄鉱石から微生物の働きにより可溶化された鉄イオンも、すぐに不溶性の酸化物や水酸化物となるため、生物が利用できる鉄イオンはきわめて微量である。細菌や放線菌、真核微生物は、このような微量な鉄イオンを効率的に獲得するために、シデロフォアと呼ばれる分子量１５００以下の低分子の鉄イオンキレート物質を生産する。このシデロフォアに鉄イオンをキレートすることにより、貴重な鉄イオンの不溶化を防ぎ、鉄イオンを優先的に利用することを図っている。また鉄イオンは生物にとって必須のイオンであるが、過剰に存在すると遊離のラジカルの発生を促し、逆に生体に危害を加える。シデロフォアは鉄イオンの獲得と同時に、このような鉄イオンの無害化にも大きく寄与している。シデロフォアは非キレート状態では無色であるが、鉄イオンをキレートすると、赤色を示し、可視光の吸収を示すことが知られている。
【０００３】
現在までに様々なシデロフォアが同定されているが、糸状菌が生産するシデロフォアはhydroxamates familyと呼ばれ、一般に構成アミノ酸誘導体としてＮ−ヒドロキシオルニチンを含む。研究用モデル糸状菌、工業用微生物、病原性糸状菌として幅広く研究が進められているアスペルギルス属糸状菌は、hydroxamates familyの中でもヘキサペプチドであるフェリクローム類とフザリニン類と呼ばれるシデロフォアを生産する。前者は、Ｎ−ヒドロキシオルニチンのトリペプチドにグリシン、セリン、アラニンが環状ペプチドを形成している。一方、後者では一部のＮ−ヒドロキシオルニチンのＮ位が無水メバロン酸によってアシル化されている特徴を有する。糸状菌はこのような多種多様なシデロフォアを生産することにより、鉄イオンを優先的に獲得し、自然界での生存競争に活用しているものと考えられる。
【０００４】
一方、清酒醸造では、アスペルギルス・オリゼを蒸米上に生育させて「麹」を作成し、清酒醸造の副原料として利用している。この麹造りにおいてアスペルギルス・オリゼが大量のフェリクローム類（中でも主成分はフェリクリシン）を生産し、これが酒造用水の鉄イオンをキレートし、清酒が着色することが知られている。従って、清酒醸造においては、シデロフォアであるフェリクローム類が、品質劣化の原因であり、できるだけフェリクローム類を生産しない菌株の育種が進められてきた（例えば、非特許文献１参照）。
【０００５】
このように、麹菌（Ａ．ｏｒｙｚａｅ）はフェリクローム類を大量に生産することが古くから知られているが、その生合成系に関しては、２００１年までにはほとんど明らかになっていない。よって、フェリクローム低生産菌の育種は主に、スクリーニング法や変異法に頼っていた。また、清酒醸造とは別の側面からは、近年、このシデロフォアの鉄キレート力は、貧血症の医薬としても利用される可能性が指摘されている。麹菌が産生するフェリクロームも鉄イオン結合能力については非常に優れているが、その生産性の向上が困難で工業レベルでの生産の対象とはなっていない。よって、フェリクローム類の生合成遺伝子の同定は、麹菌によるフェリクローム類の生産を自由に調節できる可能性を与える。すなわち、清酒醸造においては、フェリクリシン生合成に関与する遺伝子の発現が抑制できれば、全くフェリクリシンを生産しない株の育種が可能となる。また、医薬品製造においては、生合成系をより活発に誘導させることにより、大量のフェリクリシン生産が可能となる。さらに麹菌が生産するフェリクリシンは清酒や酒粕として長年摂取されており、極めて安全性の高い物質である。麹菌によりフェリクリシンが大量に生産できれば、医薬品から食品まで幅広い応用が可能となる。
【０００６】
現在までに我々は、麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群として、フェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特願２００１−８３６４０）とフェリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５−オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）がクローニングされている。
【０００７】
しかし、フェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２にはｐｆａｍによるドメイン構造解析（例えば、非特許文献２参照）から２つのアミノ酸活性化領域しかコードされておらず、６アミノ酸からなるフェリクロームを合成するためには別のペプチドシンテターゼ遣伝子の存在が示唆されていた。２００２年度に一部公開された麹菌のゲノム遺伝子配列から、上記のフェリクローム生合成に関与する新規なペプチドシンテターゼ遺伝子を探索することにより、有意な遺伝子のクローニングが可能であるとの新規着想を得た。
【０００８】
【非特許文献１】
蔭山公雄編、「灘の酒用語集」、灘酒研究会、昭和５４年１０月１日、Ｐ．１４５
【非特許文献２】
ベイトマン他（Ｂａｔｅｍａｎ ｅｔ ａｌ．）、「ニュークレイック アシッズ リサーチ（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．」、３０（１）、２００２、ｐ．２７６−２８０。
【０００９】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのフェリクローム生産を自由に制御するために、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子を提供することにある。本発明の他の目的は、本遺伝子を含有する組み換えベクターとこの組み換えベクターを含有する形質転換体を提供することにある。
【００１０】
現在までに麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特願２００１−８３６４０）、フェリクローム生合成の第−段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）がクローニングされている。しかし、フェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２にはｐｆａｍによるドメイン構造解析から、２つのアミノ酸活性化領域しかコードされておらず、６アミノ酸からなるフェリクロームを合成するためには別のペプチドシンテターゼ遺伝子の存在が示唆されていた。
【００１１】
しかしながら、従来、このようなフェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与する新規なペプチドシンテターゼ遺伝子が取得できていないために、麹菌のフェリクローム生産についてはさまざまな分野に応用が期待されるがいまだに効率的な活用がなされていない。従って、２００２年度に一部公開された麹菌のゲノム遺伝子配列から新規なペプチドシンテターゼ遺伝子が取得できれば麹菌でのフェリクローム生合成メカニズムがすべて解明され、フェリクローム生産抑制や高生産が容易に制御できるといった有用な用途への途が拓ける。
【００１２】
このような観点から、本発明の目的の一つは、上記形質転換体を用いるペプチドシンテターゼ蛋白質の麹菌体内での発現を抑制することによって、米麹を用いた固体培養でフェリクロームを生産しない麹菌を提供することにある。その結果、該麹菌を清酒、味噌、醤油、味醂などの我が国独自の醸造産業へ利用することが可能となる。もう一つの目的は、該遺伝子の発現を遺伝子工学的手法を用いて高めることによって、あらゆる培養条件下でフェリクロームを高生産する麹菌を提供することにある。またこうして生産されたフェリクロームを鉄キレート剤としての試薬、ならびに貧血の改善効果が期待できる機能性食品への添加に提供することが可能となる。
【００１３】
【課題を解決するための手段】
本発明は、上記目的を達成するためになされたものであって、先ずはじめに、麹菌について検討を行った。
麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅは清酒、醤油、味噌などの我が国の伝統的酵素産業で使用されてきた糸状菌である。本菌株の特徴は、上記発酵産業で有用な蛋白質や低分子成分を非常に大量に生産することである。本菌株が持つ高い蛋白質生産能と醸造微生物としての安全性から、異種蛋白質生産の宿主として注目されている（Biotechnology, 6, 1419 (1988)、特開昭６２−２７２９８８）。本発明者らの研究から、Ａ．ｏｒｙｚａｅを用いた異種蛋白質生産においては、アスペルギルス属などの近種の遺伝子であれば、その生産能はさらに増大することが認められた。特に、Ａ．ｏｒｙｚａｅの遺伝子を、Ａ．ｏｒｙｚａｅの高発現プロモーター制御下で発現させた場合、非常に大量の蛋白質が生産されることを見出した（特開平１１−１５４２７１、特願２０００−３６７５４）。また、Ａ．ｏｒｙｚａｅは、上記のような蛋白質、酵素のみならず、産業的にも非常に貴重な低分子成分の生産も報告されている。なかでも、麹菌が固体培養で生産するフェリクロームも貧血などの鉄欠乏症用の機能性成分としても非常に注目されている物質である。
【００１４】
この麹菌のフェリクロームを医薬・食品に利用するためには、生産性をさらに向上させる必要があるが、変異法などの既存の菌株育種方法では、工業生産レベルにまで生産性が向上した変異株の取得はできなかった。そこで、フェリクローム生合成に関与する遺伝子を単離し、これらの遺伝子の発現能を強化することによりフェリクロームの大量生産が可能であると考えた。麹菌におけるフェリクローム生合成経路については、その生合成の第一段階はオルニチンＮ５−オキシゲナーゼによるオルニチンのヒドロキシル化であり、続いてペプチドシンテターゼによるＮ−ヒドロキシオルニチンのトリペプチドにグリシン、セリン、アラニンの環状ペプチド化であると考えられる。
【００１５】
現在までに菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特願２００１−８３６４０）、フニリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）がクローニングされている。しかし、フェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２にはｐｆａｍによるドメイン構造解析から２つのアミノ酸活性化領城しかコードされておらず、６アミノ酸からなるフェリクロームを合成するためには別のペプチドシンテターゼ遺伝子の存在が示唆されていた。このようなフェリクローム合成に関与する新規のペプチドシンテターゼ遺伝子が取得できていないために、麹菌のフェリクローム生産についてはさまざまな分野に応用が期待されるがいまだに効率的な活用がなされていない。そこでこの新規なペプチドシンテターゼの遺伝子が取得できれば、フェリクローム生合成メカニズムの分子レベルでの全容が解明され、フェリクロームの生産を自由に制御できる遺伝子組み換え麹菌を育種でき、フェリクロームの工業生産が可能になるとの新規着想を得た。
【００１６】
以下は麹菌が生産するフェリクローム類の中でも、最も含有量の多いフェリクリシンの生産を中心に記述するが、本発明は全てのフェリクローム類に応用が可能な技術であり、フェリクリシンだけに限定するものではない。
【００１７】
本発明において、清酒醸造において清酒の着色を起こす鉄イオンキレート低分子フェリクリシンを貧血改善用の機能性成分などとして大量生産させるために、フェリクリシン生合成に関与する新規なペプチドシンテターゼ蛋白質の遺伝子クローニングを行い、フェリクリシンの工業生産に適した遺伝子組み換え麹菌を育種することを試みた。
【００１８】
まず、２００２年度に一部公開された麹菌のゲノム遺伝子配列から上記のフェリクローム生合成に関与する新規なペプチドシンテターゼ遺伝子の探索が可能であると考えた。麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、多機能性合成酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。その中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１３４１＿ｈ＿７１４とＣｏｎ１３４１＿ｍｉｄ−Ｃｏｎ１３４１＿２７２４−ｒ１は、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓとＡｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓのフェリクローム生合成ペプチドシンテターゼ遺伝子と高い相同性を示した。両遺伝子は同じコンティグ上に存在し、さらに塩基配列の確認とＢｌａｔ、ＦＡＳＴＡによる相同性検索から１本のポリペプチドをコードする１つの連続した遺伝子をコードする事が判明した。さらに相同性からＮ末端に１つのイントロンの存在が示唆された。鉄制限培養した麹菌菌体から調製したポリＡ＋ＲＮＡを鋳型にＮ末端付近のｃＤＮＡ解析から１つのイントロンの位置を決定した。
【００１９】
その結果、本遺伝子は、４７６０アミノ酸残基からなる蛋白質をコードしており、イントロンを１つ含んでいた。また、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓのｓｉｄ２遺伝子産物とアミノ酸レベルで２７％の相同性を有していた。得られた遺伝子をａｓｂ４と命名した。ａｓｂ４はノザン解析の結果、他のフェリクローム生合成遺伝子であるａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｓｂＲ同様に鉄制限培養条件下で発現が認められ、鉄存在下でその発現の抑制が認められた。
【００２０】
次に、ａｓｂ４の機能を同定するために、本遺伝子の麹菌での大量発現を試みた。フェリローム生合成遺伝子であるａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３をｍｅｌＯプロモーター（特願平１１−１５４２７１）支配下で高発現させた麹菌のａｓｂ４の５’非翻訳領域１−ｋｂを、ピリチミン耐性遺伝子（Ｋｕｂｏｄｅｒａ Ｔｅｔａｌ．Ｂｉｏｓｃｉ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ、６４（７）、ｐｐ１４１６−１４２１、２０００）をマーカーとして、ｍｅｌＯプロモーターと置換した。得られた形質転換体は、親株の１．４倍のフェリクローム量を生産し、最大０．７ｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈのフェリクロームの菌体外生産を示した。本菌株を用いることによって、鉄制限培養条件下で大量の麹菌フェリクロームを提供することが可能である。
【００２１】
このように単離した遺伝子は、単独であるいはｍｅｌ０やｇｌａＢ遺伝子プロモーター（特願平１１−１５４２７１、特開平１１−２４３９６５）のような高発現プロモーターと共に、Ａ．ｏｒｙｚａｅにて発現させて、フェリクリシンの生産を制御しうるものである。遺伝子導入方法は、例えば、宿主としてｎｉａＤ変異株を用いる公知方法により、目的遺伝子とマーカー遺伝子であるｎｉａＤ遺伝子を同時に導入する。（Ｓ．ＵｎｋｌｅらＭｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．，２１８，ｐ．９９−１０４、１９８９）この遺伝子導入の際に、ベクター配列などの異種遺伝子を排除することにより、異種遺伝子を全く含まないセルフクローニング株の形質転換体を得ることができる。ｎｉａＤ変異株は、硝酸を資化できない麹菌変異株（Ｎｉｔｒａｔｅ Ｒｅｄｕｃｔａｓｅ欠損株）であって、例えばＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ１０１３−ｎｉａＤ（ＦＥＲＭ Ｐ−１７７０７）が挙げられる。
【００２２】
以下に、本発明の詳細について述べる。
【００２３】
既にクローニングした麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）の１９２４アミノ酸残基には、ｐｆａｍ解析から、２つのアミノ酸活性化領域（８２−４９０アミノ酸残基と９８０−１３６７アミノ酸残基）しか同定されていない。しかし、ペプチドシンテターゼは、−般に生合成されるペプチドの構成アミノ酸数とアミノ酸活性化領域数は一致している。よって、６アミノ酸残基からなる麹菌のフェリクロームの合成には、ａｓｂ２以外に理論上４つのアミノ酸活性化領域をもつペプチドシンテターゼが必要と考えられる。
【００２４】
しかし、フェリクロームクラスター遺伝子内の６０−ｋｂにはａｓｂ２以外のペプチドシンテターゼ遺伝子は存在しなかった。そこで、麹菌のゲノム遺伝子コンティグ中に新規なフェリクローム合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子が存在することが示唆されているとの新規着想を得た。そして麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、多機能性合成酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。その中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１３４１＿ｈ＿７１４とＣｏｎ１３４＿ｍｉｄ−Ｃｏｎ１３４１−２７２４−ｒ１は、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓとＡｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓのフェリクローム生合成ペプチドシンテターゼ遺伝子と高い相同性を示した。両遺伝子は同じコンティグ上に存在し、さらに塩基配列の確認とＢｌａｓｔ、ＦＡＳＴＡによる相同性検索から、１本のポリペプチドをコードする１つの連続した遺伝子をコードする事が判明した。さらに、相同性からＮ末端１−ｋｂ中に１つのイントロンの存在が示唆された。
【００２５】
鉄制限培養した麹菌菌体から調製したポリＡ＋ＲＮＡを鋳型にＮ末端１−ｋｂのｃＤＮＡ解析を取得し、塩基配列を決定した結果、１つのイントロンの位置を決定した。本遺伝子は、配列番号１（図５〜７）に示す４７６０アミノ酸残基からなる蛋白質をコードしており、イントロンを１つ含んでいた。コーディング領域は配列番号２（図８〜１５）の１から１４３４１ｂｐであり、イントロンは５３８−５９５ｂｐである。また、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓのｓｉｄ２遺伝子産物とアミノ酸レベルで２７％の相同性を有していた。得られた遺伝子をａｓｂ４と命名した。
【００２６】
ａｓｂ４にコードされる４７６０アミノ酸残基のｐｆａｍ解析から、３つのアミノ酸活性化領域（３０５−８１５アミノ酸残基、１４６６−１９５７アミノ酸残基、２５８２−３０６６アミノ酸残基）、５つの縮合領域（９７３−１２７０アミノ酸残基、２１２１−２３８７アミノ酸残基、３２０５−３４９３アミノ酸残基、３７５２−４０３５アミノ酸残基、４３０５−４５９３アミノ酸残基）、５つのアシルキャリアー蛋白質（８５８−９２０アミノ酸残基、１９８５−２０４７アミノ酸残基、３１０２−３１６３アミノ酸残基、３６４９−３７１３アミノ酸残基、４２０６−４２６８アミ残基）からなるという新規な予測を得た。
【００２７】
次にａｓｂ４の発現条件の解析を行うためにノザン解析を行った。本遺伝子は他のフェリクローム生合成遺伝子であるａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｓｂＲ同様に鉄制限培養条件下で発現が認められ、鉄存在下でその発現の抑制が認められた。
【００２８】
さらに、ａｓｂ４の麹菌での発現解析を行った。先ず、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３をｍｅｌＯプロモーター支配下で高発現させた形質転換体を作製した。本菌株は、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３を液体培養で高発現しており、３０℃７日間の鉄制限の液体培養で対照株の約１７倍に相当する０．５ｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈのフェリクローム生産量を示した。次に、本形質転換体のａｓｂ４遺伝子の高発現を試みた。すなわち、上記形質転換体のａｓｂ４の５’非翻訳領域１−ｋｂを、ピリチミン耐性遺伝子（Ｋｕｂｏｄｅｒａ Ｔ ｅｔ ａｌ．Ｂｉｏｓｃｉ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ、６４（７）、ｐｐ１４１６−１４２１、２０００）をマーカーとしてｍｅｌＯプロモーターと置換した。得られた形質転換体３株は、親株の１．４倍のフェリクローム量を生産し、最大０．７ｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈのフェリクロームの菌体外生産を示した。本菌株を用いることによって、麹菌のフェリクロームの大量生産が可能となることが確認された。
【００２９】
プラスミドｐＵＣ１１９にＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのｎｉａＤ、ｍｅｌＯプロモーター、ａｓｂ３、ｍｅｌＯプロモーター、ａｓｂ１を組み込んでプラスミドｐＮＩＡ１３を構築した。また、プラスミドｐＵＣ１１８にＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのＳＣ、ａｓｂ２、ｍｅｌＯプロモーターを組み込んでプラスミドｐＳＣ２を構築した。このようにして構築したプラスミドｐＳＣ２、ｐＮＩＡ１３の順にＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４（ｎｉａＤ、ＳＣ）に形質転換した。この形質転換体は、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３遺伝子を含んでおり、ｍｅｌＯプロモーター支配下で高発現することが上記のように確認された。
【００３０】
また、プラスミドｐＵＣ１１８に、ａｓｂ４のプロモーターの一部、Ａ．ｏｒｙｚａｅのピリチアミン耐性遺伝子（ＰＴ）、ｍｅｌＯプロモーター、ａｓｂ４のコード領域の一部を組み込んだプラスミドｐＰＴ４を構築した。
【００３１】
上記によって得たａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３で形質転換した形質転換体と組み換えプラスミドｐＰＴ４を混合して、該形質転換体にｐＰＴ４を形質転換した。得られた形質転換体は、これをＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ ＡＳＢ１−４と命名した。この新規形質転換体は、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂ４を含有した新規組換えベクターｐＡＳＢ１−４を含有するものであった。ｐＳＣ２、ｐＮＩＡＢ、ｐＰＴ４の宿主であるA．oryzae Ｍ−ＮＳ４（niaＤ、sＣ）は、独立行政法人酒類総合研究所より申請により分譲してもらった株である。（参考文献：Yamada．Ｏet al．Bioeci Biotechnol Biochem． 61，pp 1367-1369，1997）また、上記プラスミドの形質転換は、公知方法に従った。予って本形質転換体は、当業者に容易に育種できる。
【００３２】
以上の結果より、クローニングした遺伝子断片ａｓｂ４には、フェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼがコードされていることが確認できた。また、この遺伝子を用いて、麹菌のフェリクローム生合成を鉄制限下で高生産あるいは非生産させることが可能であり、用途に応じたフェリクローム生産の改変が分子レベルで可能となり、様々な産業分野に応用が可能であることも確認した。
以下、本発明の実施例について述べる。
【００３３】
【実施例１】
麹菌ゲノム配列コンティグからの新規なペプチドシンテターゼ遺伝子のクローニング
麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅのフェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与する新規なペプチドシンテターゼの遺伝子クローニングを行うために、麹菌ゲノム配列コンティグの検索を行った。麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中で、Ｂｌａｓｔ検索結果から、多機能性合成酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。その中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１３４１＿ｈ＿７１４とＣｏｎ１３４１−ｍｉｄ−Ｃｏｎ１３４１−２７２４−ｒ１は、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓとＡｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓのフェリクローム生合成ペプチドシンテターゼ遺伝子と高い相同性を示した。両遺伝子は同じコンティグ上に存在し、さらに塩基配列の確認とＢｌａｓｔ、ＦＡＳＴＡによる相同性検索から１本のポリペプチドをコードする１つの連続した遺伝子をコードする事が判明した。さらに相同性からＮ末端１−ｋｂ中に１つのイントロンの存在が示唆された。
【００３４】
この１−ｋｂの領域のｃＤＮＡを得るためにＲＴ−ＰＣＲを行った。３０℃、４日間鉄制限培地（２％グルコース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、ｐＨ６．０）で液体培養した麹菌菌体からニッポンジーン社ＩＳＯＧＥＮを利用して全ＲＮＡを抽出した。その全ＲＮＡから宝酒造Ｏｌｉｇｏｔｅｘ−ｄＴ３０＜Ｓｕｐｅｒ＞ｍＲＮＡ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いてｍＲＮＡを抽出した。得られたｍＲＮＡ０．５μｇをもとに宝酒造のＴａｋａｒａ ＲＮＡ ＬＡ ＰＣＲ ｋｉｔ（ＡＭＶ） ｖｅｒ．１．１によりＲＴ−ＰＣＲを試みた。プライマーはＰ１：配列番号３（図１６）とＰ２：配列番号４（図１７）を利用した。反応条件は、以下に従った。
【００３５】
ＰＣＲ条件
・３０℃（１０分）、４２℃（６０分）、９９℃（５分）、５℃（５分）、９６℃（５分）、１サイクル
・９６℃（２０秒）、４５℃（３０秒）、７２℃（３分）、３０サイクル
・７２℃（７分）、１サイクル
【００３６】
反応液をアガロースゲル電気泳動で解析を行っ結果、約１−ｋｂのフラグメントの増幅が認められた。本増輻産物の塩基配列を決定した結果、１つのイントロンの位置を決定した。本遺伝子は配列番号１に示す４７６０アミノ酸残基からなる蛋白質をコードしており、イントロンを１つ含んでいた。コーディング領域は配列番号２の１から１４３４１ｂｐであり、イントロンは５３８−５９５ｂｐである。また、Ｕｓｔｉｌａｇｏ ｍａｙｄｉｓのｓｉｄ２遺伝子産物とアミノ酸レベルで２７％の相同性を有していた。得られた遺伝子をａｓｂ４と命名した。
【００３７】
【実施例２】
ａｓｂ４遺伝子産物のｐｆａｍによる蛋白質モチーフ解析
フェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼａｓｂ２、ａｓｂ４は多機能ドメインからなる蛋白質をコードする。これらのドメイン解析をＰｆａ（Ｂａｔｅｍａｎ ｅｔ ａｌ，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ，３０（１），ｐｐ２７６−２８０，２００２）により同定した。その結果、図１（図中、ＡＭＰはアミノ酸活性化ドメイン、四角はアシルキャリアー蛋白質、ＣＯＮＤＥＮＳＡＴＩＯＮは縮合ドメイン、数字はアミノ酸残基の位置をそれぞれ示す。）に示すようなドメイン構造を有することが明らかとなった。以下の表１に詳細なドメイン情報を示した。
【００３８】
（表１）
ａｓｂ２、ａｓｂ４遺伝子産物のドメイン構造
ａｓｂ２
─────────────────────────
８２−４９０ アミノ酸活性化ドメイン
９８０−１３６７ アミノ酸活性化ドメイン
６０２−６６７ アシルキャリアー蛋白質
１４０６−１４９９ アシルキャリアー蛋白質
７０６−９７８ 縮合ドメイン
１５１２−１７８７ 縮合ドメイン
ａｓｂ４
─────────────────────────
３０５−８１５ アミノ酸活性化ドメイン
１４６６−１９５７ アミノ酸活性化ドメイン
２５８２−３０６６ アミノ酸活性化ドメイン
８５８−９２０ アシルキャリアー蛋白質
１９８５−２０４７ アシルキャリアー蛋白質
３１０２−３１６３ アシルキャリアー蛋白質
３６４９−３７１３ アシルキャリアー蛋白質
４２０６−４２６８ アシルキャリアー蛋白質
９７３−１２７０ 縮合ドメイン
２１２１−２３８７ 縮合ドメイン
３２０５−３４９３ 縮合ドメイン
３７５２−４０３５ 縮合ドメイン
４３０５−４５９３ 縮合ドメイン
─────────────────────────
【００３９】
【実施例３】
ａｓｂ４遺伝子のノザン解析
ａｓｂ４遺伝子の発現条件を検討するためにノザン解析を行った。実施例１のＰ１、Ｐ２プライマーを用いたＲＴ−ＰＣＲで得られた１−ｋｂのｃＤＮＡをプローブとした。培養は月桂冠保存株である麹歯Ａ．ｏｒｙｚａｅ ＯＳＩ１０１３株を鉄含有と鉄制限培地で３０℃、４日間行った。鉄制限培地の組成は（２％グルロース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、ｐＨ６．０）で、鉄含有培地の組成は（２％グルコース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、０．０１％硫酸鉄、ｐＨ６．０）である。
【００４０】
両培地で液体培養した麹菌菌体からニッポンジーン社ＩＳＯＧＥＮを利用して全ＲＮＡを抽出した。得られた全ＲＮＡを１％ホルムアルデヒド変性アガロースゲルで電気泳動後、アマシャムファルマシア社製のハイボンドＮ＋ヘアルカリトランスファーを行った。ハイブリダイゼーションは、アマシャムファルマシア社製のＧｅｎｅ Ｉｍａｇｅ Ｌａｂｅｌｉｎｇ ａｎｄ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｋｉｔを使用した。
【００４１】
得られた結果を図２（図面代用写真）に示した。図中、−（左側のパターン）は鉄制限培地、＋（右側のパターン）は鉄含有培地を示す。図２に示すように、ａｓｂ４は、鉄制限条件下でのみ約１５−ｋｂの巨大トランスクリプトが確認された。本遺伝子は他のフェリクローム生合成遺伝子であるａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｓｂＲ同様に鉄制限培養条件下で発現が認められ、鉄存在下でその発現の抑制が認められた。
【００４２】
【実施例４】
ａｓｂ４遺伝子の麹菌での高発現
麹菌でのａｓｂ４の機能を決定するために高発現を試みた。まず図３に示した各種プラスミドを構築した。ｐＮＩＡ１３は、ｐＵＣ１１９のＰｓｔＩ−ＨｉｎｄIIIにＡ．ｏｒｙｚａｅの４．５−ｋｂ ｎｉａＤ、ｍｅＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ３１ １−ｋｂのＰｓｔＩ、ｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ１ １．５−ｋｂのＳａｌＩの順にサブクローニングした。ｐＳＣ２は、ｐＵＣ１１８のＢａｍＨＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの３−ｋｂ ｓＣ、ｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ２ ６−ｋｂのＢａｍＨＩの順にサブクローニングした。ｐＰＴ４は、ｐＵＣ１１８のＢａｍＨＩにａｓｂ４のプロモーター４７００から−３０００の領城（ａｓｂ４−ｕｐ１）、ＰｓｔＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの２−ｋｂピリチアミン耐性遺伝子（ＰＴ）、ＨｉｎｄIIIにｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ４の開始コドンから２０００ｂｐ（ａｓｂ４−ｕｐ２）を組み込んだ。この組み換えプラスミドｐＰＴ４には、ａｓｂ４のプロモーター、コーディーング領域部分を含有している。
【００４３】
形質転換は、Ａ、ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４（ｎｉａＤ、ｓＣ）にｐＳＣ２、ｐＮＩＡ１３の順に形質転換した。得られた形質転換体にｐＰＴ４を形質転換し、相同組み換えによりゲノム中のａｓｂ４の開始コドン上流１０００ｂｐをｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂに置換した。この新規形質転換体は、ａｓｂ１、ａｓｂ２、ａｓｂ３、ａｓｂ４を組み込んだ新規組換えベクターｐＡＳＢ１−４を含有するものであり、その発現も以下により確認された。
【００４４】
得られた形質転換体を鉄制限培地にて、３０℃、７日間の液体培養を行った。得られた結果を図４（図面代用写真）に示す。図４（Ａ）に示すように、ｐＳＣ２、ｐＮＩＡ１３の形質転換体（ａｓｂ１〜３：＋、ａｓｂ４：−）は、０．５２ｇ／１Ｌ−ブロスのフェリクロームを菌体外に分泌し、一方、本発明に係る形質転換体Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ ＡＳＢ１−４、すなわちｐＳＣ２、ｐＮＩＡ１３、ｐＰＴ４の形質転換体（ａｓｂ１〜４：＋）は、０．７４ｇ／１Ｌ−ブロスという著量のフェリクロームを菌体外に分泌した。
【００４５】
培養液に最終１０００ｐｐｍの三塩化鉄溶液を添加した結果、図４（Ｂ）に示すように著量のフェリクロームが観察された。よって、ａｓｂ４は、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子であることが証明された。
【００４６】
【発明の効果】
本発明により、クローニングした遺伝子断片ａｂｓ４には、フェリクローム生合成におけるペプチド結合の合成に関与する新規なペプチドシンテターゼがコードされていることが確認できた。またこの遺伝子を用いて、麹菌のフェリクローム類生合成を鉄制限下で高生産あるいは非生産させることが可能であり、用途に応じたフェリクローム類生産の改変が分子レベルで可能となり、様々な産業分野に応用が可能であることも確認した。
【００４７】
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】ａｓｂ４及びａｓｂ２のドメイン構造を示す。
【図２】ａｓｂ４の鉄制限培養条件下でのノザン解析の結果を示す図面代用写真である。
【図３】麹菌フェリクローム生合成遺伝子高発現プラスミドを示す。
【図４】麹菌フェリクローム生合成遺伝子高発現形質転換体のフェリクローム生産を示す図面代用写真である。
【図５】本ペプチドシンテターゼ蛋白質のアミノ酸配列を示す。
【図６】同上続きを示す。
【図７】同上続きを示す。
【図８】本ペプチドシンテターゼ遺伝子の塩基配列を示す。
【図９】同上続きを示す。
【図１０】同上続きを示す。
【図１１】同上続きを示す。
【図１２】同上続きを示す。
【図１３】同上続きを示す。
【図１４】同上続きを示す。
【図１５】同上続きを示す。
【図１６】プライマーＰ１を示す。
【図１７】プライマーＰ２を示す。
Claims (5)
- 配列番号１で表されるアミノ酸配列からなり、かつフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ蛋白質。
- 配列番号１で表されるアミノ酸配列において、アミノ酸が１個もしくは数個欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ蛋白質。
- 配列番号２の塩基配列で示される、請求項１記載の蛋白質をコードする遺伝子、または、該遺伝子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする請求項２に記載の蛋白質をコードする遺伝子。
- 請求項３に記載の遺伝子を含有する組換えベクター。
- 麹菌のフェリクローム類生産の改変が分子レベルで可能な、請求項３に記載の遺伝子のプロモーター及びコーディング領域部分を含有する組換えベクターｐＰＴ４。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2002348752A JP4170743B2 (ja) | 2002-11-29 | 2002-11-29 | 新規遺伝子ａｓｂ４及びその形質転換体と遺伝子産物の利用法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2002348752A JP4170743B2 (ja) | 2002-11-29 | 2002-11-29 | 新規遺伝子ａｓｂ４及びその形質転換体と遺伝子産物の利用法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2004180534A JP2004180534A (ja) | 2004-07-02 |
| JP4170743B2 true JP4170743B2 (ja) | 2008-10-22 |
Family
ID=32751580
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2002348752A Expired - Fee Related JP4170743B2 (ja) | 2002-11-29 | 2002-11-29 | 新規遺伝子ａｓｂ４及びその形質転換体と遺伝子産物の利用法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP4170743B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP4901372B2 (ja) * | 2006-08-31 | 2012-03-21 | 月桂冠株式会社 | デフェリフェリクリシン高生産変異株、シデロフォア生産用の液体培地、シデロフォアの製造方法 |
-
2002
- 2002-11-29 JP JP2002348752A patent/JP4170743B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2004180534A (ja) | 2004-07-02 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| TW403785B (en) | Bacillus-derived transglutaminase | |
| EP4039695B1 (en) | Expression constructs and methods of genetically engineering methylotrophic yeast | |
| EP2024501B1 (en) | Improved production of sphingoid bases using genetically engineered microbial strains | |
| KR101952467B1 (ko) | 변경된 점성 표현형을 갖는 사상균 | |
| CN119082055B (zh) | 一种重组改造人铜/锌超氧化物歧化酶及其制备和应用 | |
| JPWO1997000944A1 (ja) | Ｐｆ１０２２物質を産生する形質転換体、及び糸状菌綱に属する菌の形質転換方法 | |
| JP4170743B2 (ja) | 新規遺伝子ａｓｂ４及びその形質転換体と遺伝子産物の利用法 | |
| AU2003275658B2 (en) | Method of degrading hardly degradable protein | |
| JP3961306B2 (ja) | 黒麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子 | |
| JP3838421B2 (ja) | 麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子 | |
| WO2004053111A1 (ja) | 外来遺伝子高発現大腸菌株の選択方法、その方法により選択される大腸菌変異株及びそれを用いる酵素及び化合物の製造方法 | |
| US11739311B2 (en) | Gene recombinant vector, genetically engineered strain and preparation method of collagenase | |
| JPH0851982A (ja) | ヒト血清アルブミンをコードする改変された遺伝子 | |
| JP3493400B2 (ja) | 新規なアミノ末端保護基遊離酵素 | |
| WO2001083787A1 (fr) | Nouveaux promoteurs et methode d'expression genique reposant sur l'utilisation desdits promoteurs | |
| JP2020522999A (ja) | グルコースオキシダーゼＣｎＧＯＤＡ及びその遺伝子ならびに使用 | |
| JP3855097B2 (ja) | フコース特異的レクチン遺伝子 | |
| CN114181288A (zh) | 制备l-缬氨酸的方法及其所用的基因与该基因编码的蛋白质 | |
| JP3864303B2 (ja) | 麹菌のフェリクローム又はそのデフェリ体生合成に関与するオルニチンｎ５−オキシゲナーゼ遺伝子 | |
| JP5247112B2 (ja) | 溶菌酵素阻害剤、溶菌抑制剤及びポリ−ガンマ−グルタミン酸の分解抑制剤及びポリ−ガンマ−グルタミン酸の製造方法 | |
| JP2002272477A (ja) | 麹菌のフェリクローム生合成遺伝子の発現を抑制する転写因子をコードする遺伝子 | |
| JP2006109848A (ja) | 麹菌のフェリクローム又はそのデフェリ体生合成に関与するオルニチンｎ５−オキシゲナーゼ遺伝子 | |
| JPH0856663A (ja) | 新規セルラーゼおよびその遺伝子 | |
| JP2961143B2 (ja) | アミノペプチダーゼ遺伝子、該遺伝子を含むプラスミドベクターおよび形質転換体 | |
| JP2003250586A (ja) | 新規タンパク質分解酵素 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20050927 |
|
| RD02 | Notification of acceptance of power of attorney |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7422 Effective date: 20050927 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20080318 |
|
| RD02 | Notification of acceptance of power of attorney |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7422 Effective date: 20080512 |
|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20080516 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20080805 |
|
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20080807 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110815 Year of fee payment: 3 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 4170743 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110815 Year of fee payment: 3 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120815 Year of fee payment: 4 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120815 Year of fee payment: 4 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130815 Year of fee payment: 5 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| S533 | Written request for registration of change of name |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313533 |
|
| R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |