JP3996307B2

JP3996307B2 - Ｄｎａ断片の固定方法、ｄｎａチップおよび核酸断片の検出方法

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Publication number: JP3996307B2
Application number: JP31491599A
Authority: JP
Inventors: 浩篠木; 幸夫須藤; 修瀬志本
Original assignee: Fujifilm Corp
Current assignee: Fujifilm Corp
Priority date: 1999-11-05
Filing date: 1999-11-05
Publication date: 2007-10-24
Anticipated expiration: 2019-11-05
Also published as: EP1098004A3; DE60012659T2; US6664051B1; DE60012659D1; EP1098004A2; JP2001128683A; EP1098004B1

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、遺伝子の発現、変異、多型等の同時解析に非常に有用なＤＮＡチップの作製に必要な、ＤＮＡ断片の固相担体表面への固定方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
多彩な生物の全遺伝子機能を効率的に解析するための技術開発が進んでいる。ＤＮＡチップは、スライドガラス等の固相担体に多数のＤＮＡ分子を整列させたマイクロアレイであり、遺伝子の発現、変異、多型性等の同時解析に非常に有用である。このＤＮＡチップを用いるＤＮＡチップ技術は、ＤＮＡ以外の生体分子にも適用可能であり、創薬研究、疾病の診断や予防法の開発、エネルギーや環境問題対策等の研究開発に新しい手段を提供するものとして期待されている。各種チップの作製や解析システムは、米国を中心に極限られた研究機関において開発されている。
【０００３】
ＤＮＡチップ技術が具体化してきたのは、ＤＮＡの塩基配列をオリゴヌクレオチドとのハイブリダイゼーションによって決定する方法（ＳＢＨ：ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇｂｙｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ）が考案されたことに始まる（Ｄｒｍａｎａｃ，Ｒ．ｅｔａｌ．，Ｇｅｎｏｍｉｃｓ，４，ｐａｇｅ１１４（１９８９））。ＳＢＨは、ゲル電気泳動を用いる塩基配列決定法の限界を克服できる方法ではあったが、実用化には至らなかった。
【０００４】
その後、ＤＮＡチップ作製技術が開発され、遺伝子の発現、変異、多型等を短時間で効率よく調べる、いわゆるＨＴＳ（ｈｉｇｈ−ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔｓｃｒｅｅｅｎｉｎｇ）が可能となった（Ｆｏｄｏｒ，Ｓ．Ｐ．Ａ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５１，ｐａｇｅ７６７（１９９１）およびＳｃｈｅｎａ，Ｍ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２７０，ｐａｇｅ４６７（１９９５））。
【０００５】
しかし、ＤＮＡチップ作製技術を実用化するためには、多数のＤＮＡ断片やオリゴヌクレオチドを固相担体表面に整列させるためのＤＮＡチップの作製技術が必要とされる。作製されたＤＮＡチップ上のＤＮＡ断片は、一般的には、標識した試料核酸断片とのハイブリダイゼーションによって検出される。
【０００６】
ＤＮＡチップの作製方法としては、固相担体表面で直接ＤＮＡ断片を合成する方法（「オン・チップ法」という。）と、予め調製したＤＮＡ断片を固相担体表面に固定する方法とが知られている。オン・チップ法としては、光照射で選択的に除去される保護基の使用と、半導体製造に利用されるフォトリソグラフィー技術および固相合成技術とを組み合わせて、微少なマトリックスの所定の領域での選択的合成を行う方法（「マスキング技術」という。）が代表的である。
【０００７】
予め調製したＤＮＡ断片を固相担体表面に固定する方法は、ＤＮＡ断片の種類や固相担体の種類に応じて下記の方法がある。
（１）固定するＤＮＡ断片がｃＤＮＡ（ｍＲＮＡを鋳型にして合成した相補的ＤＮＡ）やＰＣＲ産物（ｃＤＮＡをＰＣＲ法によって増幅させたＤＮＡ断片）の場合には、これらをＤＮＡチップ作製装置に備えられたスポッター装置を用いて、ポリ陽イオン（ポリリシン、ポリエチレンイミン等）で表面処理した固相担体表面に点着し、ＤＮＡの荷電を利用して固相担体に静電結合させるのが一般的である。また、固相担体表面の処理方法として、アミノ基、アルデヒド基、エポキシ基等を有するシランカップリング剤を用いる方法も利用されている（Ｇｅｏ，Ｚ．ｅｔａｌ．，ＮｕｌｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓｅａｒｃｈ，２２，５４５６−５４６５（１９９４））。この場合には、アミノ基、アルデヒド基等は、共有結合により固相担体表面に導入されるため、ポリ陽イオンによる場合と比較して安定に固相担体表面に存在する。
【０００８】
ＤＮＡの荷電を利用する方法の変法として、アミノ基で修飾したＰＣＲ産物をＳＳＣ（標準食塩−クエン酸緩衝液）に懸濁させ、これをシリル化したスライドガラス表面に点着し、インキュベートした後、水素化ホウ素ナトリウムによる処理および加熱処理を順に行う方法が報告されている（Ｓｃｈｅｎａ，Ｍ．ｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９３，１０６１４−１０６１９（１９９６））。しかし、この固定方法では必ずしも充分な安定度が得られ難いという問題がある。ＤＮＡチップ技術では、検出限界が重要となる。そのため、固相担体表面に充分な量で安定にＤＮＡが固定されることは、ＤＮＡと標識した試料核酸断片とのハイブリダイゼーションの検出限界の向上に直接繋がる。
【０００９】
（２）固定するＤＮＡ断片が合成オリゴヌクレオチドの場合には、反応活性基を導入したオリゴヌクレオチドを合成し、表面処理した固相担体表面に該オリゴヌクレオチドを点着し、共有結合させる（「蛋白質・核酸・酵素」、４３巻、（１９９８）、２００４−２０１１、Ｌａｍｔｕｒｅ，Ｊ．Ｂｅｔａｌ．，Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．，２２，２１２１−２１２５，１９９４、およびＧｕｏ，Ｚ．，ｅｔａｌ．，Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．，２２，５４５６−５４６５，１９９４）。例えば、アミノ基を導入したスライドガラスに、ＰＤＣ（ｐ−フェニレンジイソチオシアネート）存在下、アミノ基導入オリゴヌクレオチドを反応させる方法、および該スライドガラスに、アルデヒド基導入オリゴヌクレオチドを反応させる方法が知られている。上記の二つの方法は、前記（１）のＤＮＡの荷電を利用する方法と比べて、オリゴヌクレオチドが固相担体表面に安定に固定される。しかし、ＰＤＣを存在させる方法は、ＰＤＣとアミノ基導入オリゴヌクレオチドとの反応が遅く、アルデヒド基導入オリゴヌクレオチドを用いる方法は、反応生成物であるシッフ塩基の安定性が低いという問題点を有する。
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、固相担体表面に、予め調製したＤＮＡ断片を迅速かつ安定に結合させる固定方法、ＤＮＡチップおよび核酸断片の検出方法を提供することを、その課題とする。
【００１１】
【課題を解決するための手段】
本発明は、反応活性基（アミノ基）が導入された固相担体に、一方の末端に反応活性基（グルタミン残基のγ−アミド基）を有するＤＮＡ断片、および固相担体表面あるいはＤＮＡ断片が有する反応活性基の転移反応を触媒する酵素（Ｄ−グルタミルトランスフェラーゼ）を接触させることにより、ＤＮＡ断片が有する反応活性基と固相担体表面の反応活性基との間に共有結合を形成させることを特徴とする固相担体表面にＤＮＡ断片を固定する方法にある。
【００１２】
本発明の固定方法の好ましい態様は、以下の通りである。
（１）アミノ基が、固相担体表面にアミノ基を有するシランカップリング剤を接触させることによって導入されたものである。
（２）ＤＮＡ断片として、その塩基配列が既知であるものを用いる。
【００１３】
本発明のＤＮＡ断片の固定方法により製造されたＤＮＡチップは、当該ＤＮＡ断片に対して相補性を有する核酸断片の検出方法に有利に用いることができる。
【００１４】
すなわち、本発明のＤＮＡ断片の固定方法により製造されたＤＮＡチップに、蛍光物質で標識した核酸断片試料を溶解あるいは分散してなる水性液を点着した後、インキュベートして、該ＤＮＡチップに固定されているＤＮＡ断片と核酸断片試料とで形成されたハイブリッドＤＮＡを検出することにより、該ＤＮＡチップに固定されているＤＮＡ断片に対して相補性を有する核酸断片を検出することが可能である。
【００１５】
【発明の実施の形態】
図１に、本発明のＤＮＡ断片の固定方法を模式的に示す。本発明のＤＮＡ断片の固定方法は、以下に示す二通りの方法；
（１）固相担体１に反応活性基（以下「受容体反応性基」という。）（Ｘ）が導入された固相担体（Ａ１）に、反応活性基（以下「供与体反応性基」という。）（Ｙ）を一方の末端に有するＤＮＡ断片、および供与体反応性基（Ｙ）の転移反応を触媒する酵素（ＴＦ）を接触させることにより、供与体反応性基（Ｙ）を受容体反応性基（Ｘ）に転移させ、供与体反応性基（Ｙ）と受容体反応性基（Ｘ）との間に共有結合を形成させて、ＤＮＡ断片を固相担体表面に固定する方法、および
（２）固相担体１に供与体反応性基（Ｘ）が導入された固相担体（Ａ２）に、一方の末端に受容体反応性基（Ｙ）を有するＤＮＡ断片、および供与体反応性基（Ｘ）の転移反応を触媒する酵素（ＴＦ）を接触させることにより、供与体反応性基（Ｘ）を受容体反応性基（Ｙ）に転移させ、供与体反応性基（Ｘ）と受容体反応性基（Ｙ）との間に共有結合を形成させて、ＤＮＡ断片を固相担体表面に固定する方法である。図１において、−リン酸エステル基−ＮＮＮＮ・・・ＮＮは、ＤＮＡ断片を表し、連結基（Ｚ）は、供与体反応性基（Ｘ）と受容体反応性基（Ｙ）との反応により形成される基である。
【００１６】
以下、図１の（１）に示す固定方法について詳述する（図１の（２）に示す固定方法については、（１）の場合と同様である）。転移酵素（ＴＦ）は、供与体反応性基（Ｙ）を認識し、供与体反応性基（Ｙ）の転移反応を触媒する。従って、転移酵素（ＴＦ）の種類は、供与体反応性基（Ｙ）によって決定される。
【００１７】
固相担体としては、疎水性、あるいは親水性の低い担体であることが好ましい。また、その表面が凹凸を有する平面性の低いものであっても好ましく用いることができる。固相担体の材質としては、ガラス、セメント、陶磁器等のセラミックスもしくはニューセラミックス、ポリエチレンテレフタレート、酢酸セルロース、ビスフェノールＡのポリカーボネート、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート等のポリマー、シリコン、活性炭、多孔質ガラス、多孔質セラミックス、多孔質シリコン、多孔質活性炭、織編物、不織布、濾紙、短繊維、メンブレンフィルター等の多孔質物質などを挙げることができる。多孔質物質の細孔の大きさは、２乃至１０００ｎｍの範囲にあることが好ましく、２乃至５００ｎｍの範囲にあることが特に好ましい。固相担体の材質は、ガラスもしくはシリコンであることが特に好ましい。これは、表面処理の容易さや電気化学的方法による解析の容易さによるものである。固相担体の厚さは、１００乃至２０００μｍの範囲にあることが好ましい。
【００１８】
固相担体の表面には、ＤＮＡ断片の固定のための受容体反応活性基（Ｘ）を導入するため、固相担体を表面処理する。表面処理は、受容体反応活性基（Ｘ）を有するシランカップリング剤によって接触処理を行うことが好ましい。受容体供与体反応活性基（Ｘ）は、供与体反応活性基（Ｙ）と転移酵素（ＴＦ）によって決定される。固相担体表面への受容体反応活性基（Ｘ）としては、アミノ基が用いられる。アミノ基は、ポリ陽イオン（例えば、ポリ−Ｌ−リシン、ポリエチレンイミン、ポリアルキルアミン等であることが好ましく、ポリ−Ｌ−リシンであることがさらに好ましい）によって固相担体を被覆処理し、固相担体表面に導入することも好ましい。ポリ陽イオンによる場合には、アミノ基が静電結合によって固相担体表面に導入されるのに対して、シランカップリング剤による場合には、共有結合によって導入されるため、アミノ基が固相担体表面に安定に存在する。よって、シランカップリング剤による方法を用いることが特に好ましい。
【００１９】
シランカップリング剤としては、γ−アミノプロピルトリエトキシシラン、Ｎ−β（アミノエチル）γ−アミノプロピルトリメトキシシランあるいはＮ−β（アミノエチル）γ−アミノプロピルメチルジメトキシシランを用いることが好ましく、γ−アミノプロピルトリエトキシシランを用いることが特に好ましい。
【００２０】
ポリ陽イオンを用いる処理に、シランカップリング剤による処理を組み合わせて行ってもよい。疎水性、あるいは親水性の低い固相担体とＤＮＡ断片との静電的相互作用を促進することができる。表面処理がされた固相担体表面上に、さらに、電荷を有する親水性高分子等からなる層や架橋剤からなる層を設けてもよい。このような層を設けることによって表面処理がされた固相担体の凹凸を軽減することができる。固相担体の種類によっては、その担体中に親水性高分子等を含有させることも可能であり、このような処理を施した固相担体も好ましく用いることができる。
【００２１】
ＤＮＡ断片は、目的によって二通りに分けることができる。遺伝子の発現を調べるためには、ｃＤＮＡ、ｃＤＮＡの一部、ＥＳＴ等のポリヌクレオチドを使用することが好ましい。これらのポリヌクレオチドは、その機能が未知であってもよいが、一般的にはデータベースに登録された配列を基にしてｃＤＮＡのライブラリー、ゲノムのライブラリーあるいは全ゲノムをテンプレートとしてＰＣＲ法によって増幅して調製する（以下、「ＰＣＲ産物」という。）。ＰＣＲ法によって増幅しないものも好ましく使用することができる。また、遺伝子の変異や多型を調べるには、標準となる既知の配列をもとにして、変異や多型に対応する種々のオリゴヌクレオチドを合成し、これを使用することが好ましい。さらに、塩基配列分析の場合には、４ⁿ（ｎは、塩基の長さ）種のオリゴヌクレオチドを合成したものを使用することが好ましい。ＤＮＡ断片の塩基配列は、一般的な塩基配列決定法によって予めその配列が決定されていることが好ましい。ＤＮＡ断片は、２乃至５０量体であることが好ましく、１０乃至２５量体であることが特に好ましい。
【００２２】
ＤＮＡ断片の一方の末端には、固相担体表面の受容体反応活性基（Ｘ）に転移する供与体反応活性基（Ｙ）を導入する。供与体反応活性基（Ｙ）は、実際に転移する反応活性基そのものであってもよいし、転移酵素（ＴＦ）が認識する基の一部であって、実際に転移する反応活性基であってもよい。供与体反応活性基（Ｙ）としては、グルタミン残基のγ−アミド基が用いられる。
【００２３】
供与体反応活性基（Ｙ）とリン酸エステル基との間には、末端に供与体反応活性基（Ｙ）を有するＤＮＡ断片の調製上、一般的に、クロスリンカー（Ｌ）を存在させることが好ましい。クロスリンカー（Ｌ）としては、アルキレン基あるいはＮ−アルキルアミノ−アルキレン基であることが好ましく、ヘキシレン基あるいはＮ−メチルアミノ−ヘキシレン基であることが特に好ましい。
【００２４】
転移酵素（ＴＦ）としては、Ｄ−グルタミルトランスフェラーゼ（ＧＴ）が用いられる。
【００２５】
Ｄ−グルタミルトランスフェラーゼ（ＧＴ）は、動物由来、植物由来あるいは微生物由来のものを用いることができる。例えば、動物由来のものとしては、哺乳類の臓器（好ましくはモルモットの肝臓）(Connellan, et al., Journal of Biological Chemistry,246,4,1093-1098)、哺乳類の血液(Folk et al., Advances in Protein Chemistry,311-133(1977))、あるいは、ほや（マボヤ、学名：Ｈａｌｏｃｙｎｔｈｉａｒｏｒｅｔｚｉ）の筋膜体（特開平６−３０７７０号）より抽出されたものを用いることが好ましい。植物由来のものとしては、えんどう豆の茎頂分裂部位から精製されたものを用いることが好ましい。微生物由来のものとしては、Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓから精製されたものを用いることが好ましい。アスパルチルトランスフェラーゼは、Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓから精製されたものを用いることが好ましい。
【００２６】
転移酵素（ＴＦ）としてＤ−グルタミルトランスフェラーゼ（ＧＴ）を用いる場合には、図１の（１）におけるＹは、Ｄ−グルタミルトランスフェラーゼ（ＧＴ）が認識するグルタミン残基であり、そのグルタミン残基のγ−アミド基のアミノ基が転移する。
【００２７】
ＤＮＡ断片の点着は、ＤＮＡ断片を水性媒体に溶解あるいは分散した水性液を、９６穴もしくは３８４穴プラスチックプレートに分注し、分注した水性液をスポッター装置等を用いて固相担体表面上に滴下して行うことが好ましい。
【００２８】
点着後のＤＮＡ断片の乾燥を防ぐために、ＤＮＡ断片が溶解あるいは分散してる水性液中に、高沸点の物質を添加してもよい。高沸点の物質としては、ＤＮＡ断片が溶解あるいは分散してなる水性液に溶解し得るものであって、試料核酸断片とのハイブリダイゼーションを妨げることがなく、かつ粘性の大きくない物質であることが好ましい。このような物質としては、グリセリン、エチレングリコール、ジメチルスルホキシドおよび低分子の親水性ポリマーを挙げることができる。親水性ポリマーとしては、ポリアクリルアミド、ポリエチレングリコール、ポリアクリル酸ナトリウム等を挙げることができる。ポリマーの分子量は、１０³乃至１０⁶の範囲にあることが好ましい。高沸点の物質としては、グリセリンあるいはエチレングリコールを用いることがさらに好ましく、グリセリンを用いることが特に好ましい。高沸点の物質の濃度は、ＤＮＡ断片の水性液中、０．１乃至２容量％の範囲にあることが好ましく、０．５乃至１容量％の範囲にあることが特に好ましい。
また、同じ目的のために、ＤＮＡ断片を点着した後の固相担体を、９０％以上の湿度および２５乃至５０℃の温度範囲の環境に置くことも好ましい。
【００２９】
ＤＮＡ断片を点着後、紫外線、水素化ホウ素ナトリウムあるいはシッフ試薬による後処理を施してもよい。これらの後処理は、複数の種類を組み合わせて行ってもよく、加熱処理と紫外線処理を組み合わせて行うことが特に好ましい。これらの後処理は、ポリ陽イオンのみによって固相担体表面を処理した場合には特に有効である。点着後は、インキュベーションを行うことも好ましい。インキュベート後、未点着のＤＮＡ断片を洗浄して除去することが好ましい。
【００３０】
ＤＮＡ断片は、固相担体表面に対して、１０²乃至１０⁵種類／ｃｍ²の範囲にあることが好ましい。ＤＮＡ断片の量は、１乃至１０^-15モルの範囲にあり、重量としては数ｎｇ以下であることが好ましい。点着によって、ＤＮＡ断片の水性液は、固相担体表面にドットの形状で固定される。ドットの形状は、ほとんど円形である。形状に変動がないことは、遺伝子発現の定量的解析や一塩基変異を解析するために重要である。ドット間の距離は、０乃至１．５ｍｍの範囲にあることが好ましく、１００乃至３００μｍの範囲にあることが特に好ましい。１つのドットの大きさは、直径が５０乃至３００μｍの範囲にあることが好ましい。点着する量は、１００ｐＬ乃至１μＬの範囲にあることが好ましく、１乃至１００ｎＬの範囲にあることが特に好ましい。
【００３１】
上記の工程によって作製されたＤＮＡチップの寿命は、ｃＤＮＡが固定されてなるｃＤＮＡチップで数週間、オリゴＤＮＡが固定されてなるオリゴＤＮＡチップではさらに長期間である。これらのＤＮＡチップは、遺伝子発現のモニタリング、塩基配列の決定、変異解析、多型解析等に利用される。検出原理は、後述する標識した試料核酸断片とのハイブリダーゼーションである。
【００３２】
標識方法としては、ＲＩ法と非ＲＩ法（蛍光法、ビオチン法、化学発光法等）とが知られているが、本発明では蛍光法を用いる。蛍光物質としては、核酸の塩基部分と結合できるものであれば何れも用いることができるが、シアニン色素（例えば、ＣｙＤｙｅ^TMシリーズのＣｙ３、Ｃｙ５等）、ローダミン６Ｇ試薬、Ｎ−アセトキシ−Ｎ²−アセチルアミノフルオレン（ＡＡＦ）あるいはＡＡＩＦ（ＡＡＦのヨウ素誘導体）を使用することができる。
【００３３】
試料核酸断片としては、その配列や機能が未知であるＤＮＡ断片試料あるいはＲＮＡ断片試料を用いることが好ましい。
試料核酸断片は、遺伝子発現を調べる目的では、真核生物の細胞や組織サンプルから単離することが好ましい。試料がゲノムならば、赤血球を除く任意の組織サンプルから単離することが好ましい。赤血球を除く任意の組織は、抹消血液リンパ球、皮膚、毛髪、精液等であることが好ましい。試料がｍＲＮＡならば、ｍＲＮＡが発現される組織サンプルから抽出することが好ましい。ｍＲＮＡは、逆転写反応により標識ｄＮＴＰ（「ｄＮＴＰ」は、塩基がアデニン（Ａ）、シトシン（Ｃ）、グアニン（Ｇ）もしくはチミン（Ｔ）であるデオキシリボヌクレオチドを意味する。）を取り込ませて標識ｃＤＮＡとすることが好ましい。ｄＮＴＰとしては、化学的な安定性のため、ｄＣＴＰを用いることが好ましい。１回のハイブリダイゼーションに必要なｍＲＮＡ量は、液量や標識方法によって異なるが、数μｇ以下であることが好ましい。尚、ＤＮＡチップ上のＤＮＡ断片がオリゴＤＮＡである場合には、試料核酸断片は低分子化しておくことが望ましい。原核生物の細胞では、ｍＲＮＡの選択的な抽出が困難なため、全ＲＮＡを標識することが好ましい。
試料核酸断片は、遺伝子の変異や多型を調べる目的では、標識プライマーもしくは標識ｄＮＴＰを含む反応系で標的領域のＰＣＲを行って得ることが好ましい。
【００３４】
ハイブリダイゼーションは、９６穴もしくは３８４穴プラスチックプレートに分注しておいた、標識した試料核酸断片が溶解あるいは分散してなる水性液を、上記で作製したＤＮＡチップ上に点着することによって実施することが好ましい。点着の量は、１乃至１００ｎＬの範囲にあることが好ましい。ハイブリダイゼーションは、室温乃至７０℃の温度範囲で、そして６乃至２０時間の範囲で実施することが好ましい。ハイブリダイゼーション終了後、界面活性剤と緩衝液との混合溶液を用いて洗浄を行い、未反応の試料核酸断片を除去することが好ましい。界面活性剤としては、ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）を用いることが好ましい。緩衝液としては、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液等を用いることができるが、トリス緩衝液を用いること特にが好ましい。
【００３５】
ＤＮＡチップを用いるハイブリダイゼーションの特徴は、標識した試料核酸断片の使用量が非常に少ないことである。そのため、固相担体に固定するＤＮＡ断片の鎖長や標識した試料核酸断片の種類により、ハイブリダーゼーションの最適条件を設定する必要がある。遺伝子発現の解析には、低発現の遺伝子も十分に検出できるように、長時間のハイブリダイゼーションを行うことが好ましい。一塩基変異の検出には、短時間のハイブリダイゼーションを行うことが好ましい。また、互いに異なる蛍光物質によって標識した試料核酸断片を二種類用意し、これらを同時にハイブリダイゼーションに用いることにより、同一のＤＮＡチップ上で発現量の比較や定量ができる特徴もある。
【００３６】
【実施例】
［実施例１］ＤＮＡチップの作製およびＤＮＡ断片の固定量の測定
本発明の固定方法を、ＤＮＡ断片の反応経路によって表すこととし、その反応経路を図２に示す。図中、１はスライドガラスを、ＧＴはＤ−グルタミルトランスフェラーゼを表す。
【００３７】
２重量％アミノプロピルエトキシシラン（信越化学工業（株）製）のエタノール溶液に、スライドガラス（２５ｍｍ×７５ｍｍ）を１０分間浸した後取り出し、エタノールで洗浄後、１１０℃で１０分間乾燥して、シラン化合物被覆スライド（Ａ）を作成した。
次いで、３’末端および５’末端がそれぞれ、Ｌ−グルタミルグリシン、蛍光標識試薬（ＦｌｕｏｒｏＬｉｎｋＣｙ５−ｄＣＴＰ、アマシャム・ファルマシア・バイオテック社製）で修飾された２２量体のＤＮＡ断片（３’−ＣＴＡＧＴＣＴＧＴＧＡＡＧＴＧＴＣＴＧＡＴＣ−５’）、およびＤ−グルタミルトランスフェラーゼ（オリエンタル酵母（株）製）（１ＩＵ）をトリスアセテート緩衝液（３００ｍＭ、ｐＨ６．０）に分散してなる水性液（１×１０^-6Ｍ、１μＬ）を、上記で得たシラン化合物被覆スライド（Ａ）に点着した。直ちに、点着後のスライドを２５℃、湿度９０％にて１時間放置した後、このスライドを０．１重量％ＳＤＳ（ドデシル硫酸ナトリウム）と２×ＳＳＣ（２×ＳＳＣ：ＳＳＣの原液を２倍に希釈した溶液、ＳＳＣ：標準食塩−クエン酸緩衝液）との混合溶液で２回、０．２×ＳＳＣ水溶液で１回、および蒸留水で順次洗浄し、室温で乾燥させ、ＤＮＡチップ（Ｂ）を得た。このＤＮＡチップ（Ｂ）表面の蛍光強度を蛍光スキャニング装置で測定したところ、９２３であった。本発明の固定化方法により、ＤＮＡ断片が効率よくスライドガラスに固定されたことが分かる。
【００３８】
［実施例２］試料ＤＮＡ断片の検出
（１）ＤＮＡチップの作成
５’末端が蛍光標識試薬で修飾されていないＤＮＡ断片を用いる以外は実施例１と同様にして、ＤＮＡ断片が固定されたスライド（Ｂ’）を得た。
（２）試料ＤＮＡ断片の検出
５’末端にＣｙ５が結合した２２量体の試料ＤＮＡ断片（ＧＡＴＣＡＧＡＣＡＣＴＴＣＡＣＡＧＡＣＴＡＧ−５’）をハイブリダイゼーション用溶液（４×ＳＳＣおよび１０重量％のＳＤＳの混合溶液）（２０μＬ）に分散させたものを、上記（１）で得たスライド（Ｂ’）に点着し、表面を顕微鏡用カバーガラスで保護した後、モイスチャーチャンバー内にて６０℃で２０時間インキュベートした。次いで、このものを０．１重量％ＳＤＳと２×ＳＳＣとの混合溶液、０．１重量％ＳＤＳと０．２×ＳＳＣとの混合溶液、および０．２×ＳＳＣ水溶液で順次洗浄した後、６００ｒｐｍで２０秒間遠心し、室温で乾燥した。スライドガラス表面の蛍光強度を蛍光スキャニング装置で測定したところ、５６８であった。本発明の固定化方法によって作成されたＤＮＡチップを用いることによって、ＤＮＡチップ上に固定されているＤＮＡ断片と相補性を有する試料ＤＮＡ断片を検出できることが分かる。
【００３９】
【発明の効果】
本発明のＤＮＡ断片の固定化方法は、転移酵素を利用してＤＮＡ断片を固相担体表面に共有結合させるものであり、酵素を利用する点で、簡便にかつ安定にＤＮＡ断片を固定することができる。ＤＮＡ断片の安定な固定は、遺伝子解析等に有効に利用することができる高い検出限界を有するＤＮＡチップの作製に繋がるものである。その一つの例として、本発明によって作製されたＤＮＡチップを用いて、ＤＮＡチップに固定されたＤＮＡ断片と試料ＤＮＡ断片とのハイブリダイゼーションを行うことにより、ＤＮＡチップに固定されたＤＮＡ断片に相補性を有する試料ＤＮＡ断片を感度よく検出することができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明の代表的な固定方法および本発明の代表的なＤＮＡチップを示す模式図である。
【図２】実施例１の固定方法を示す模式図である。

Claims

アミノ基が導入された固相担体に、一方の末端にグルタミン残基のγ−アミド基を有するＤＮＡ断片、およびＤ−グルタミルトランスフェラーゼを接触させることにより、ＤＮＡ断片が有するグルタミン残基のγ−アミド基と固相担体表面のアミノ基との間に共有結合を形成させることを特徴とする固相担体表面にＤＮＡ断片を固定する方法。
アミノ基が、固相担体表面にアミノ基を有するシランカップリング剤を接触させることによって導入されたものであることを特徴とする請求項１に記載のＤＮＡ断片の固定方法。
ＤＮＡ断片として、その塩基配列が既知であるものを用いることを特徴とする請求項１もしくは２に記載のＤＮＡ断片の固定方法。