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JP3488767B2 - Monoclonal antibody, fusion cell producing the same, and method and kit for immunoassay of protein kinase activity using the same - Google Patents

Monoclonal antibody, fusion cell producing the same, and method and kit for immunoassay of protein kinase activity using the same

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Publication number
JP3488767B2
JP3488767B2 JP22417995A JP22417995A JP3488767B2 JP 3488767 B2 JP3488767 B2 JP 3488767B2 JP 22417995 A JP22417995 A JP 22417995A JP 22417995 A JP22417995 A JP 22417995A JP 3488767 B2 JP3488767 B2 JP 3488767B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
monoclonal antibody
peptide
phosphorylated
labeling
labeled
Prior art date
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Expired - Lifetime
Application number
JP22417995A
Other languages
Japanese (ja)
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JPH0968527A (en
Inventor
竹男 矢野
昌夫 柴田
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Medical and Biological Laboratories Co Ltd
Original Assignee
Medical and Biological Laboratories Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Medical and Biological Laboratories Co Ltd filed Critical Medical and Biological Laboratories Co Ltd
Priority to JP22417995A priority Critical patent/JP3488767B2/en
Publication of JPH0968527A publication Critical patent/JPH0968527A/en
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Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、リン酸化PSペプ
チドと特異的に結合するモノクローナル抗体、これを産
生する融合細胞、並びに、これを利用した蛋白質リン酸
化酵素活性の免疫学的測定方法及び測定キットに関す
る。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a monoclonal antibody that specifically binds to a phosphorylated PS peptide, a fused cell producing the same, and an immunological assay method and assay for protein kinase activity using the monoclonal antibody. Regarding the kit.

【0002】[0002]

【従来の技術】高等生物は多様に分化した細胞の集まり
であり、細胞はそれぞれ周囲の状況を認識しながら自ら
の行動を律している。それは、他の細胞が分泌する物質
や他の細胞の表面に表現される物質がそれぞれに特異的
な受容体に結合し、その情報が細胞内に伝えられること
によって行われていると考えられる。
2. Description of the Related Art Higher organisms are a group of cells that are diversely differentiated, and each cell regulates its own behavior by recognizing surrounding conditions. It is thought that this is because substances secreted by other cells or substances expressed on the surface of other cells bind to their specific receptors, and the information is transmitted into the cells.

【0003】増殖因子の刺激によって細胞が増殖を始め
る場合には、細胞外からの情報が細胞膜を通って細胞内
へ伝達され、さらにそれが細胞質から核に伝えられるこ
とによって新たな蛋白質の合成が始まる。このように細
胞外の情報が細胞核に伝えられる過程を細胞内情報伝達
と呼び、細胞内情報伝達には蛋白質のリン酸化と脱リン
酸化が大きな役割を担っていることが知られている。
When cells start to grow by stimulation of growth factors, information from the outside is transmitted to the inside of the cell through the cell membrane, and further, it is transmitted from the cytoplasm to the nucleus to synthesize a new protein. Begins. The process of transmitting extracellular information to the cell nucleus is called intracellular signal transduction, and it is known that protein phosphorylation and dephosphorylation play a major role in intracellular signal transduction.

【0004】プロテインキナーゼC(PKC)、サイク
リックAMP依存性プロテイン(PKA)も、このよう
な細胞内情報伝達を担う蛋白質リン酸化酵素であり、細
胞内情報伝達の研究に欠くことのできないものとなって
いる。即ち、細胞内の情報伝達は蛋白質のリン酸化のカ
スケードによって行われているため、細胞内における蛋
白質のリン酸化を測定することは細胞内の情報伝達機構
の解明に不可欠なのである。一方、癌や一部の糖尿病等
の疾患は細胞内における情報伝達機構の異常として捉え
られることから、具体的にはこれらの疾患の原因解明の
手段としてPKA、PKCの酵素活性の測定が行われ
る。
[0004] Protein kinase C (PKC) and cyclic AMP-dependent protein (PKA) are also protein kinases responsible for such intracellular signal transduction, and are indispensable for studies of intracellular signal transduction. Has become. That is, since intracellular signal transduction is carried out by a cascade of protein phosphorylation, measuring the intracellular protein phosphorylation is indispensable for elucidating the intracellular signal transduction mechanism. On the other hand, since cancer and some diseases such as diabetes are regarded as abnormalities of intracellular signal transduction mechanism, specifically, the enzyme activity of PKA and PKC is measured as a means for clarifying the cause of these diseases. .

【0005】従来、PKA、PKCの酵素活性測定は、
ヒストンH2BあるいはヒストンIIISを用い、[γ-
32P]ATPをトレーサーとして使う方法が知られていた
(バイオケミストリー(Biochemistry)第23巻, P503
6-5041, 1984、 Proc. Natl.Acad. Sci. USA, Vol.80,
P36-40, 1983)。また、PKC活性測定試薬としては
「PKCアッセイシステム」がアメルシャム社より販売
されていた。しかし、この方法ではRIA施設を使うた
め一般の施設で測定することはできなかった。
Conventionally, the enzyme activity of PKA and PKC has been measured by
Using histone H2B or histone IIIS, [γ-
A method of using 32 P] ATP as a tracer was known (Biochemistry, Vol. 23, P503.
6-5041, 1984, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, Vol.80,
P36-40, 1983). As a PKC activity measuring reagent, "PKC assay system" was sold by Amersham. However, since this method uses an RIA facility, it could not be measured at a general facility.

【0006】一方、放射性物質を用いない方法として、
本発明者らは既に抗リン酸化ペプチド抗体YC−10を
用いたELISA法による測定を報告し(B. B. R. C.,
Vol.175, P1144-1151, 1991)、株式会社医学生物学研
究所においてこの測定キットの製品化がなされ、既に販
売されている。
On the other hand, as a method that does not use radioactive materials,
The present inventors have already reported the measurement by the ELISA method using the anti-phosphorylated peptide antibody YC-10 (BBRC,
Vol.175, P1144-1151, 1991), this measurement kit was commercialized by the Medical and Biological Research Institute, Inc. and is already on sale.

【0007】[0007]

【発明が解決しようとする課題】しかしながら、上記試
薬は放射性物質を用いず一度に大量の検体を処理できる
ものの実際の細胞を検体として細胞内のリン酸化酵素の
活性を測定するには感度として不十分なものであった。
このため、上記試薬は、精製した分画についてリン酸化
酵素活性を測定することは可能であったが、生きた細胞
そのものを使って測定することは実質的に不可能であっ
た。
However, although the above-mentioned reagent can treat a large amount of a sample at a time without using a radioactive substance, it is not sensitive enough to measure the activity of intracellular phosphatase using actual cells as a sample. It was enough.
Therefore, the above-mentioned reagent was able to measure the phosphorylase activity of the purified fraction, but it was substantially impossible to measure it using living cells themselves.

【0008】本発明は、上記課題に鑑みなされたもので
あり、リン酸化ペプチドに対する新たなモノクローナル
抗体を提供するとともに、このモノクローナル抗体を産
生する細胞、該モノクローナル抗体を用いてPKA、P
KCの酵素活性を感度よく測定する免疫学的測定キット
及び測定方法を提供するものである。
The present invention has been made in view of the above problems, and provides a new monoclonal antibody against a phosphorylated peptide, cells producing the monoclonal antibody, and PKA and P using the monoclonal antibody.
The present invention provides an immunological measurement kit and a measurement method for sensitively measuring the enzyme activity of KC.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】上記課題を解決するた
め、本発明の第1であるモノクローナル抗体は、請求項
1に記載したように、リン酸化PSペプチド(配列番号
1で表されるPSペプチドのアミノ酸番号7のセリンが
リン酸化されたもの)と特異的に結合することを特徴と
する。
In order to solve the above problems, the monoclonal antibody according to the first aspect of the present invention is a phosphorylated PS peptide (PS peptide represented by SEQ ID NO: 1 as described in claim 1. In which the serine of amino acid No. 7 is phosphorylated).

【0010】本発明の第2である融合細胞は、請求項2
に記載したように、請求項1のモノクローナル抗体を産
生することを特徴とする。かかる融合細胞としては、請
求項3に記載したように、リン酸化PSペプチドを免疫
感作させた哺乳動物から取得される抗体産生細胞と哺乳
動物骨髄腫系細胞との融合により得られるものが好まし
い。また、請求項4に記載したように、融合細胞クロー
ン2B9(受託番号FERM P−15133)又は融
合細胞クローン2G3(受託番号FERM P−151
34)であることが好ましい。
The fused cell which is the second aspect of the present invention is the second aspect.
The monoclonal antibody of claim 1 is produced as described in 1. Such fused cells are preferably those obtained by fusing antibody-producing cells obtained from a mammal immunized with a phosphorylated PS peptide and mammalian myeloma cells as described in claim 3. . Further, as described in claim 4, the fused cell clone 2B9 (accession number FERM P-15133) or the fused cell clone 2G3 (accession number FERM P-151).
34) is preferred.

【0011】本発明の第3である蛋白質リン酸化酵素活
性の免疫学的測定方法は、請求項5に記載したように、
下記a)〜c)及びd)〜f)の工程を含むことを特徴
とする。即ち、 a)配列番号1で表されるPSペプチドを不溶性支持体
に結合せしめてなる固相化PSペプチドに標準物質とし
てのPKA又はPKCを反応せしめた後、 b)請求項1記載のモノクローナル抗体を標識物質によ
り標識化した標識モノクローナル抗体を反応させ、 c)この反応生成物の標識量を測定することにより検量
線を作成する工程、及び d)前記固相化PSペプチドに検体を反応せしめた後、 e)請求項1記載のモノクローナル抗体を標識物質によ
り標識化した標識モノクローナル抗体を反応させ、 f)この反応生成物の標識量を測定し、前記検量線から
検体中に含まれるPKA又はPKCの酵素活性を測定す
る工程。
A third aspect of the present invention, which is an immunological method for measuring protein kinase activity, is as described in claim 5.
It is characterized by including the following steps a) to c) and d) to f). That is, a) after reacting PKA or PKC as a standard substance with a solid-phased PS peptide obtained by binding the PS peptide represented by SEQ ID NO: 1 to an insoluble support, and b) the monoclonal antibody according to claim 1. Is reacted with a labeled monoclonal antibody labeled with a labeling substance, and c) a step of preparing a calibration curve by measuring the labeling amount of the reaction product, and d) reacting the sample with the immobilized PS peptide. After that, e) a labeled monoclonal antibody obtained by labeling the monoclonal antibody according to claim 1 with a labeling substance is reacted, and f) the labeled amount of this reaction product is measured, and PKA or PKC contained in the sample is obtained from the calibration curve. Measuring the enzyme activity of.

【0012】ここで、請求項6に記載したように、標識
モノクローナル抗体は、請求項2〜4のいずれかに記載
の融合細胞により産生されるモノクローナル抗体を標識
物質により標識化したものが好ましい。また、請求項7
に記載したように、標識物質は、ビオチン、ペルオキシ
ダーゼ、β−D−ガラクトシダーゼ、アルカリフォスフ
ァターゼ及びマイクロペルオキシダーゼからなる群から
選ばれたものが好ましい。
Here, as described in claim 6, the labeled monoclonal antibody is preferably a monoclonal antibody produced by the fused cell according to any one of claims 2 to 4, which is labeled with a labeling substance. In addition, claim 7
As described above, the labeling substance is preferably selected from the group consisting of biotin, peroxidase, β-D-galactosidase, alkaline phosphatase and microperoxidase.

【0013】本発明の第4である蛋白質リン酸化酵素活
性の免疫学的測定キットは、請求項8に記載したよう
に、配列番号1で表されるPSペプチドを不溶性支持体
に結合せしめてなる固相化PSペプチドと、請求項1記
載のモノクローナル抗体を標識物質により標識化した標
識モノクローナル抗体とを備えたことを特徴とする。こ
こで、請求項9に記載したように、標識モノクローナル
抗体は、請求項2〜4のいずれかに記載の融合細胞によ
り産生されるモノクローナル抗体を標識物質により標識
化されたものが好ましい。また、請求項10に記載した
ように、標識物質は、ビオチン、ペルオキシダーゼ、β
−D−ガラクトシダーゼ、アルカリフォスファターゼ及
びマイクロペルオキシダーゼからなる群から選ばれたも
のが好ましい。
An immunological assay kit for protein phosphatase activity, which is the fourth aspect of the present invention, comprises the PS peptide represented by SEQ ID NO: 1 bound to an insoluble support, as described in claim 8. It is characterized by comprising a solid-phased PS peptide and a labeled monoclonal antibody obtained by labeling the monoclonal antibody according to claim 1 with a labeling substance. Here, as described in claim 9, the labeled monoclonal antibody is preferably one obtained by labeling the monoclonal antibody produced by the fused cell according to any one of claims 2 to 4 with a labeling substance. Further, as described in claim 10, the labeling substance is biotin, peroxidase, β
Preferred is one selected from the group consisting of -D-galactosidase, alkaline phosphatase and microperoxidase.

【0014】[0014]

【発明の実施の形態】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

[本発明の第1であるモノクローナル抗体及び本発明の
第2である融合細胞]蛋白質リン酸化酵素の酵素活性
は、一般に、蛋白質リン酸化酵素によってリン酸化され
た蛋白質を検出することによって測定することができ
る。本発明者らは、当初、グリア細胞に存在する中間系
フィラメントであるグリアフィラメントの構成蛋白質で
あるグリア繊維酸性蛋白質(GFAP)がPKA、PK
Cのよい基質蛋白質であることから、これら蛋白質のリ
ン酸化部位を含むペプチド(G1ペプチド)を合成し、
リン酸化G1ペプチドに対するモノクローナル抗体であ
るYC−10を用いて蛋白質リン酸化酵素の活性を測定
する方法を発明した。しかし、今回PKCのアイソタイ
プに広く認められる偽基質配列(配列番号2)のアミノ
酸番号7のアラニンをセリンに置換したペプチド(PS
ペプチド、配列番号1)がPKCの非常によい基質であ
ることが報告された(サイエンス(SCIENCE)第238巻P172
6-(1990))ことから、リン酸化PSペプチドに対するモ
ノクローナル抗体を作製することにより新たな測定系の
発明に至った。
[Monoclonal antibody of the first aspect of the present invention and fused cell of the second aspect of the present invention] The enzyme activity of protein phosphatase is generally measured by detecting a protein phosphorylated by protein phosphatase. You can The present inventors initially confirmed that glial fiber acidic protein (GFAP), which is a constituent protein of glial filament which is an intermediate filament existing in glial cells, is PKA and PK.
Since it is a substrate protein with good C, peptides (G1 peptide) containing phosphorylation sites of these proteins were synthesized,
A method for measuring the activity of protein kinase was invented using YC-10 which is a monoclonal antibody against phosphorylated G1 peptide. However, a peptide in which alanine at amino acid number 7 of the pseudo substrate sequence (SEQ ID NO: 2) widely recognized in the PKC isotype was replaced with serine (PS
Peptide, SEQ ID NO: 1) was reported to be a very good substrate for PKC (SCIENCE Vol. 238, P172).
6- (1990)), the inventors have invented a new assay system by preparing a monoclonal antibody against phosphorylated PS peptide.

【0015】このモノクローナル抗体の作製について以
下に説明する。 A.抗原 抗原としてはリン酸化PSペプチド(配列番号1で表さ
れるPSペプチドのアミノ酸番号7のセリンがリン酸化
されたもの)を合成し、免疫原として使用した。当該ペ
プチドは比較的低分子であり、このものをそのまま免疫
しても抗体ができにくいため、通常、KLH(スカシガ
イヘモシアニン)やアルブミンのようなキャリアー蛋白
質と結合させることにより免疫原として使用する。 B.上記抗原による免疫 免疫動物としては哺乳動物であるマウスのほかラット、
ハムスターなども用いることができる。通常マウスが最
も汎用され、BALB/cマウス、その他の系(str
ain)のマウスを用いることができる。この際、免疫
計画及び抗原の濃度は十分な量の抗原刺激を受けたリン
パ球が形成されるよう選ばれるべきである。例えばマウ
ス1匹に25μgの抗原を2週間間隔で腹腔に3回免疫
後、さらに25μgを静脈に投与する。最終免疫の数日
後に融合のための脾臓細胞を取り出す。 C.細胞融合 上記のごとく免疫した哺乳動物の個体から脾臓を無菌的
に取り出し、そこから単細胞懸濁液を調製する。この脾
臓細胞(抗体産生細胞)を適当な骨髄腫細胞と適当な融
合促進剤の使用により細胞融合させる。骨髄腫細胞とし
ては免疫動物と同種の哺乳動物に由来するものが望まし
いが、ラット、ハムスター等の脾臓細胞とマウスの骨髄
腫細胞を融合させることもできる。脾臓細胞と骨髄腫細
胞の好ましい比率は約20:1〜約2:1の範囲であ
る。約108個の脾細胞について0.5〜1.5mlの
融合媒体の使用が適当である。好ましい融合促進剤とし
ては、例えば平均分子量1000〜4000のポリエチ
レングリコールを有利に使用できるが、この分野で知ら
れている他の融合促進剤(例えばセンダイウイルス(別
名HVJ))を用いることもできる。また、これら融合
促進剤を用いた方法以外に電気ショックを用いる方法に
より細胞融合を行ってもよい。 D.目的とするモノクローナル抗体を産生する融合細胞
の選択 別の容器(例えばマイクロタイタープレート)で未融合
の脾細胞、未融合の骨髄腫細胞及び融合した融合細胞の
混合物を未融合の骨髄腫細胞を支持しない選択培地で希
釈し、未融合の細胞を死滅させるのに十分な時間(約1
時間)培養する。倍地は薬物抵抗性(例えば8−アザグ
アニン抵抗性)で未融合の骨髄腫細胞を支持しないもの
(例えばHAT培地)が使用される。この選択培地中で
は未融合の骨髄腫細胞は死滅する。この未融合の脾細胞
は非腫瘍性細胞なので、ある一定期間(1週間後)死滅
する。これに対して融合した細胞は、骨髄腫の親細胞の
腫瘍性と親脾細胞の性質を合わせ持つため、選択培地中
で生存できる。
The production of this monoclonal antibody will be described below. A. Antigen As the antigen, a phosphorylated PS peptide (a serine of amino acid number 7 of the PS peptide represented by SEQ ID NO: 1 was phosphorylated) was synthesized and used as an immunogen. Since the peptide is a relatively small molecule and it is difficult to form an antibody by immunizing this peptide as it is, it is usually used as an immunogen by binding it to a carrier protein such as KLH (keyhole limpet hemocyanin) or albumin. B. As the animal immunized with the above-mentioned antigen, a mouse as well as a rat,
Hamsters and the like can also be used. Usually, the mouse is the most commonly used, and the BALB / c mouse and other strains (str
ain) mice can be used. At this time, the immunization regimen and the concentration of the antigen should be selected so that a sufficient amount of antigen-stimulated lymphocytes are formed. For example, one mouse is immunized with 25 μg of the antigen 3 times in the abdominal cavity at intervals of 2 weeks, and then 25 μg is intravenously administered. A few days after the final immunization, spleen cells for fusion are removed. C. Cell Fusion Spleens are aseptically removed from the mammalian individuals immunized as described above, and single cell suspensions are prepared therefrom. The spleen cells (antibody-producing cells) are fused with appropriate myeloma cells by using an appropriate fusion promoter. As the myeloma cells, those derived from a mammal of the same species as the immunized animal are preferable, but spleen cells of rats, hamsters and the like and mouse myeloma cells can also be fused. The preferred ratio of spleen cells to myeloma cells is in the range of about 20: 1 to about 2: 1. The use of 0.5-1.5 ml of fusion medium is suitable for about 10 8 splenocytes. As a preferable fusion promoter, for example, polyethylene glycol having an average molecular weight of 1000 to 4000 can be advantageously used, but other fusion promoters known in this field (for example, Sendai virus (also known as HVJ)) can also be used. Further, cell fusion may be performed by a method using electric shock other than the method using these fusion promoters. D. Selection of fused cells producing the desired monoclonal antibody Supporting unfused myeloma cells with a mixture of unfused splenocytes, unfused myeloma cells and fused fused cells in another container (eg, microtiter plate) Diluted in selective medium for sufficient time to kill unfused cells (about 1
Time) incubate. The medium used is a drug resistant (eg 8-azaguanine resistant) and does not support unfused myeloma cells (eg HAT medium). Unfused myeloma cells die in this selective medium. Since these unfused splenocytes are non-neoplastic cells, they die for a certain period of time (after 1 week). On the other hand, the fused cells have the tumorigenic properties of myeloma parental cells and the properties of parental splenocytes, and thus can survive in the selective medium.

【0016】かくして、融合細胞が検出された後、前記
のPSペプチドに対する抗体について酵素免疫測定法(E
nzyme Linked Immunosorbent Assay)によりスクリーニ
ングを行い、リン酸化PSペプチドと特異的に結合する
モノクローナル抗体を産生する融合細胞だけを選択す
る。このような融合細胞として、例えば融合細胞クロー
ン2B9(受託番号FERM P−15133)又は融
合細胞クローン2G3(受託番号FERM P−151
34)が挙げられる。 F.目的とするモノクローナル抗体の取得 目的とするモノクローナル抗体を産生する融合細胞を適
当な方法(例えば限界希釈法)でクローン化した後、抗
体は2つの異なった方法で産生することができる。その
第1の方法によれば、融合細胞を一定期間、適当な培地
で培養することにより、その培養上清からその融合細胞
の産生するモノクローナル抗体を得ることができる。第
2の方法によれば、融合細胞は同質遺伝子、または半同
質遺伝子を持つ免疫動物の腹腔に注射することができ
る。一定時間後の宿主動物の血液中および腹水中より、
その融合細胞の産生するモノクローナル抗体を得ること
ができる。 [本発明の第3である免疫学的測定方法] A.固相化PSペプチド 蛋白質リン酸化酵素の活性は、当該酵素によってリン酸
化された蛋白質の量を測定することによって行われる。
リン酸化基質としては各種の蛋白質、ペプチドが考えら
れるが、PKCに広く見いだされる偽基質配列(配列番
号2)のアミノ酸番号7のアラニンをセリンに置換した
PSペプチド(配列番号1)がPKCに対するKm値
(ミカエリス常数)が最も小さいことから、これを基質
として選択し、リン酸化PSペプチドに対するモノクロ
ーナル抗体との組み合わせで測定した場合に高い感度を
得ることができる。PSペプチドの不溶性支持体への結
合はPSペプチドの溶液と不溶性支持体を接触させるこ
とにより不溶性支持体の表面にPSペプチドを吸着させ
て行うほか、共有結合等の化学的な方法によっても結合
させることができる。
Thus, after the fused cells have been detected, an enzyme immunoassay (E
Screening is performed by nzyme Linked Immunosorbent Assay), and only fused cells producing a monoclonal antibody that specifically binds to the phosphorylated PS peptide are selected. Examples of such fused cells include fused cell clone 2B9 (accession number FERM P-15133) or fused cell clone 2G3 (accession number FERM P-151).
34). F. Obtaining the Monoclonal Antibody of Interest After cloning the fused cells producing the monoclonal antibody of interest by an appropriate method (eg, the limiting dilution method), the antibody can be produced by two different methods. According to the first method, the fused cells are cultured for a certain period of time in an appropriate medium, whereby the monoclonal antibody produced by the fused cells can be obtained from the culture supernatant. According to the second method, the fused cells can be injected into the abdominal cavity of an immunized animal having an isogenic gene or a semi-isogenic gene. From the blood and ascites of the host animal after a certain time,
The monoclonal antibody produced by the fused cells can be obtained. [The third immunological assay method of the present invention] A. The activity of the immobilized PS peptide protein phosphatase is determined by measuring the amount of protein phosphorylated by the enzyme.
Various proteins and peptides can be considered as phosphorylation substrates, but the PS peptide (SEQ ID NO: 1) obtained by substituting serine for alanine at amino acid number 7 of the pseudo substrate sequence (SEQ ID NO: 2) widely found in PKC has a Km for PKC. Since the value (Michaelis constant) is the smallest, high sensitivity can be obtained when this is selected as a substrate and measured in combination with a monoclonal antibody against the phosphorylated PS peptide. The PS peptide is bound to the insoluble support by contacting the solution of the PS peptide with the insoluble support to adsorb the PS peptide on the surface of the insoluble support, or by a chemical method such as covalent bonding. be able to.

【0017】不溶性担体としては、例えばポリスチレ
ン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリエステル、ポ
リアクリルニトリル、フッ素樹脂、架橋デキストラン、
ポリサッカライドなどの高分子、その他紙、ガラス、金
属、アガロースおよびこれらの組み合わせなどを例示す
ることができる。また、不溶性担体の形状としては、ト
レイ状、球状、棒状、繊維状、盤状、容器状、セル、試
験管など種々の形状であることができる。 B.標識モノクローナル抗体 リン酸化PSペプチドに対するモノクローナル抗体は、
リン酸化PSペプチドを免疫感作させた哺乳動物から取
得される抗体産生細胞と哺乳動物骨髄腫系細胞との融合
により得られる融合細胞から産生することができる。例
えば、融合細胞クローン2B9(受託番号FERM P
−15133)または融合細胞クローン2G3(受託番
号FERM P−15134)から産生されるモノクロ
ーナル抗体を用いることができるが、クローン2B9よ
り産生されるモノクローナル抗体を用いた場合、より高
い感度を得ることができる。抗体は、完全抗体であって
もよく、FabまたはF(ab)’2等のフラグメント
であってもよい。
Examples of the insoluble carrier include polystyrene, polyethylene, polypropylene, polyester, polyacrylonitrile, fluororesin, crosslinked dextran,
Examples thereof include polymers such as polysaccharides, paper, glass, metal, agarose, and combinations thereof. Further, the shape of the insoluble carrier can be various shapes such as a tray shape, a spherical shape, a rod shape, a fiber shape, a disk shape, a container shape, a cell, a test tube and the like. B. Labeled monoclonal antibody The monoclonal antibody against the phosphorylated PS peptide is
The phosphorylated PS peptide can be produced from a fused cell obtained by fusing an antibody-producing cell obtained from a mammal immunized with a mammalian myeloma cell line. For example, fused cell clone 2B9 (accession number FERM P
15133) or the fused cell clone 2G3 (accession number FERM P-15134) can be used, but higher sensitivity can be obtained when the monoclonal antibody produced from clone 2B9 is used. . The antibody may be a whole antibody or a fragment such as Fab or F (ab) ′ 2 .

【0018】標識物質としては、通常の免疫学的測定方
法に使用し得るものであれば特に限定されるものではな
いが、酵素、アビジン、蛍光物質、発光物質及び放射性
物質等を使用するのが好ましい。酵素としてはペルオキ
シダーゼ、β−D−ガラクトシダーゼ、アルカリフォス
ファターゼ、マイクロペルオキシダーゼ、蛍光物質とし
てはフルオレッセインイソチオシアネート、フィコビリ
プロテイン、フィコエリスリン等、発光物質としてはイ
ソルシノール、ルシゲニン等、そして放射性物質として
125I、131I、14C、3H等を用いることができる。
標識物質としてビオチンを用いた場合にはさらに酵素標
識アビジンを用いることにより高い感度を得ることがで
きるので、より好ましい。この場合の標識酵素としては
抗体に標識した場合の酵素と同様の酵素を用いることが
できるが、ペルオキシダーゼは特に好ましい。
The labeling substance is not particularly limited as long as it can be used in a usual immunological measuring method, but an enzyme, avidin, a fluorescent substance, a luminescent substance, a radioactive substance and the like are used. preferable. As enzymes, peroxidase, β-D-galactosidase, alkaline phosphatase, microperoxidase, as fluorescent substances fluorescein isothiocyanate, phycobiliprotein, phycoerythrin, etc., as luminescent substances, isorcinol, lucigenin, etc., and as radioactive substances Can be 125 I, 131 I, 14 C, 3 H, and the like.
When biotin is used as the labeling substance, high sensitivity can be obtained by using enzyme-labeled avidin, which is more preferable. As the labeling enzyme in this case, an enzyme similar to the enzyme used for labeling the antibody can be used, but peroxidase is particularly preferable.

【0019】酵素を標識物質として用いた場合にはその
活性を測定するために基質、必要により発色剤が用いら
れる。酵素としてペルオキシダーゼを用いる場合には、
基質としてH22を用い、発色剤として2,2’−アジ
ノ−ジ−[3−エチルベンズチアゾリンスルホン酸]ア
ンモニウム塩(ABTS)、5−アミノサリチル酸、o
−フェニレンジアミン(OPD)、4−アミノアンチピ
リン、3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジン
等、酵素にアルカリフォスファターゼを用いる場合は基
質としてo−ニトロフェニルフォスフェート等、酵素に
β−D−ガラクトシダーゼを用いる場合は基質としてフ
ルオロセイン−ジ−(β−D−ガラクトピラノシド)、
4−メチルウンベリフェリル−β−D−ガラクトピラノ
シド等を用いることができる。 C.検量線の作成 固相化PSペプチドに標準物質としてのPKA又はPK
Cを反応せしめる。このときに用いる標準物質の量に応
じてPSペプチドはリン酸化され、リン酸化PSペプチ
ドとなる。次に、生成したリン酸化PSペプチドに、標
識モノクローナル抗体を反応させる。すると、リン酸化
PSペプチドに標識モノクローナル抗体が特異的に結合
する。その後、リン酸化PSペプチドに結合した標識モ
ノクローナル抗体の標識量を測定する。これにより、標
準物質(PKA又はPKC)の量に対する標識量の関
係、即ち検量線が得られる。
When an enzyme is used as a labeling substance, a substrate and optionally a color-developing agent are used to measure its activity. When using peroxidase as the enzyme,
H 2 O 2 was used as a substrate, and 2,2′-azino-di- [3-ethylbenzthiazolinesulfonic acid] ammonium salt (ABTS), 5-aminosalicylic acid, o was used as a color-developing agent.
-Phenylenediamine (OPD), 4-aminoantipyrine, 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine, etc. When alkaline phosphatase is used as the enzyme, o-nitrophenyl phosphate is used as the substrate, and β-D is used as the enzyme. -When using galactosidase, fluoroscein-di- (β-D-galactopyranoside) as a substrate,
4-Methylumbelliferyl-β-D-galactopyranoside and the like can be used. C. Preparation of calibration curve PKA or PK as a standard substance for immobilized PS peptide
React C. The PS peptide is phosphorylated according to the amount of the standard substance used at this time to become a phosphorylated PS peptide. Next, the phosphorylated PS peptide produced is reacted with a labeled monoclonal antibody. Then, the labeled monoclonal antibody specifically binds to the phosphorylated PS peptide. Then, the labeled amount of the labeled monoclonal antibody bound to the phosphorylated PS peptide is measured. As a result, the relationship between the amount of the standard substance (PKA or PKC) and the labeling amount, that is, the calibration curve is obtained.

【0020】この免疫学的測定方法において用いられる
反応用媒体としては、例えばリン酸緩衝液、トリス塩酸
緩衝液、酢酸緩衝液などを含んだpH6.0〜8.0の
範囲のものが示されるが、PKA活性を測定する場合に
はcAMP、PKC活性を測定する場合にはカルシウム
イオンを含んでいることが好ましい。 D.検体のリン酸化酵素活性の測定 固相化PSペプチドに検体を反応せしめる。このときに
用いる検体中に含まれるリン酸化酵素の量に応じてPS
ペプチドはリン酸化され、リン酸化PSペプチドとな
る。次に、生成したリン酸化PSペプチドに、標識モノ
クローナル抗体を反応させる。すると、リン酸化PSペ
プチドに標識モノクローナル抗体が特異的に結合する。
そして、リン酸化PSペプチドに結合した標識モノクロ
ーナル抗体の標識量を測定する。この測定値を検量線に
照らすことにより、検体中のリン酸化酵素活性が測定さ
れる。尚、反応用媒体については、上記C.で述べた通
りである。 [本発明の第4である免疫学的測定キット]免疫学的測
定キットは、少なくとも、(1)不溶性担体に結合され
たPSペプチド、(2)リン酸化PSペプチドに特異的
に結合するモノクローナル抗体を標識物質で標識化した
標識モノクローナル抗体を含み、その他に、反応用媒体
を含んでいてもよいし、あるいは、標準物質(PKA又
はPKC)を含んでいてもよい。尚、標識モノクローナ
ル抗体の標識物質が酵素の場合には、通常、酵素の活性
を測定するための基質及び反応停止液を含む。また、不
溶性担体、標識物質については上述したので詳細は省略
する。
The reaction medium used in this immunological assay method is, for example, one having a pH range of 6.0 to 8.0 containing a phosphate buffer solution, a Tris hydrochloric acid buffer solution, an acetate buffer solution and the like. However, when measuring PKA activity, it is preferable to contain cAMP, and when measuring PKC activity, calcium ion is preferably contained. D. Measurement of the phosphorylase activity of the sample The sample is reacted with the immobilized PS peptide. PS depending on the amount of phosphorylase contained in the sample used at this time
The peptide is phosphorylated to a phosphorylated PS peptide. Next, the phosphorylated PS peptide produced is reacted with a labeled monoclonal antibody. Then, the labeled monoclonal antibody specifically binds to the phosphorylated PS peptide.
Then, the labeled amount of the labeled monoclonal antibody bound to the phosphorylated PS peptide is measured. The phosphorylase activity in the sample is measured by comparing this measured value with a calibration curve. The reaction medium is described in the above C. As described in. [Fourth Immunological Assay Kit of the Present Invention] The immunological assay kit comprises at least (1) a PS peptide bound to an insoluble carrier and (2) a monoclonal antibody that specifically binds to a phosphorylated PS peptide. Labeled monoclonal antibody labeled with a labeling substance, and may further include a reaction medium, or may include a standard substance (PKA or PKC). When the labeling substance of the labeled monoclonal antibody is an enzyme, it usually contains a substrate for measuring the activity of the enzyme and a reaction stop solution. Since the insoluble carrier and the labeling substance have been described above, the details are omitted.

【0021】この免疫学的測定キットによれば、まずP
Sペプチドと検体とを反応させ、次いでその反応生成物
と標識モノクローナル抗体とを反応させ、その後、標識
物質の量を測定することにより、リン酸化酵素活性を測
定することができる。検量線によりリン酸化酵素活性を
定量的に測定する本発明の第3の免疫学的測定方法の
他、例えばリン酸化酵素活性を定性的に測定する場合に
もこのキットを用いることができる。
According to this immunological assay kit, the P
The phosphorylase activity can be measured by reacting the S peptide with the sample, then reacting the reaction product with the labeled monoclonal antibody, and then measuring the amount of the labeling substance. In addition to the third immunological measurement method of the present invention in which the phosphatase activity is quantitatively measured by a calibration curve, this kit can also be used for qualitatively measuring the phosphatase activity, for example.

【0022】[0022]

【実施例】以下に、本発明の好適な実施例を説明する。
尚、本発明の実施の形態は、下記の実施例に何ら限定さ
れるものではなく、本発明の技術的範囲に属する限り種
々の形態を採り得ることはいうまでもない。 [実施例1] 免疫原の作製 リン酸化PSペプチド(配列番号1のPSペプチドのア
ミノ酸番号7のセリンがリン酸化されたもの)は通常の
ペプチド合成機(例えば、(株)パーキンエルマージャパ
ン製のA431)を用い、予めリン酸化したセリンを使
用して合成することにより得た。その他に、ペプチド合
成機を用いて合成したPSペプチドをPKC又はPKA
を用いてセリンをリン酸化することによっても得ること
ができる。
The preferred embodiments of the present invention will be described below.
It is needless to say that the embodiment of the present invention is not limited to the following examples, and various forms can be adopted as long as they are within the technical scope of the present invention. [Example 1] Preparation of immunogen Phosphorylated PS peptide (PS peptide of SEQ ID NO: 1 in which serine at amino acid number 7 is phosphorylated) was used as an ordinary peptide synthesizer (for example, manufactured by Perkin Elmer Japan Co., Ltd.). It was obtained by synthesizing A431) using serine which was phosphorylated in advance. In addition, PSC synthesized using a peptide synthesizer is used as PKC or PKA.
It can also be obtained by phosphorylating serine with.

【0023】このリン酸化PSペプチドをMBS法によ
ってKLHに結合させ免疫原とした。即ち、4mgのK
LHを0.25mlの10mMリン酸バッファー(pH
7.2)に溶解し、この溶液に、20μlのジメチルフ
ォルムアミド(DMF)に溶解した0.7mgの3−マ
レイミドベンゾイックアシド−N−ヒドロキシサクシニ
ミドエステル(MBS)を加え、室温で30分間反応さ
せた。反応後、セファデックスG25を充填したカラム
(1.5×10cm)を用いてゲルろ過を行い、KLH
−MB複合体と遊離のKLHを分離し、KLH−MB複
合体を集めた。そして、リン酸化PSペプチド5mgを
1mlの0.1Mホウ酸バッファー(pH9.0)に溶
解し、この液とKLH−MB複合体溶液を混合し、pH
を7.0〜7.5に調整して室温で3時間放置して反応
させた。反応後、PBSに十分透析した後、PBSで
0.5mg/mlの濃度に調整し、100μlづつ分注
して−20℃に凍結して保存した。 [実施例2] マウスの免疫 実施例1で凍結保存した合成ペプチド結合KLH溶液1
00μlと完全フロインドアジュバント100μlとを
よく混合して懸濁液を作製し、この懸濁液を2匹のマウ
ス(雌、BALB/c)の腹腔に1匹あたり抗原として
25μgずつ投与した。さらに1週間おきに同量の抗原
を5回投与し、その3日後に脾臓を取り出し実施例3に
示すように細胞融合を行った。 [実施例3] 細胞融合及び目的とするモノクローナル
抗体を産生する融合細胞の選択と取得 摘出したマウスの脾臓細胞と、同系マウスの骨髄腫細胞
(SP−2/0−Ag−14)とを約10:1の割合で
混合し、50%ポリエチレングリコール4000を融合
促進剤として細胞融合を行った。融合後の細胞は1×1
6cells/mlの細胞濃度となるように10%牛
血清を含むHAT培地に懸濁し、96ウエルのマイクロ
タイタープレート(ヌンク社製マキシソープ、以下同
じ)に1ウエルあたり100μlずつ分注した。
This phosphorylated PS peptide was bound to KLH by the MBS method to prepare an immunogen. That is, 4 mg of K
LH was added to 0.25 ml of 10 mM phosphate buffer (pH
7.2), and to this solution was added 0.7 mg of 3-maleimidobenzic acid-N-hydroxysuccinimide ester (MBS) dissolved in 20 μl of dimethylformamide (DMF), and the mixture was stirred at room temperature for 30 minutes. Let react for minutes. After the reaction, gel filtration was performed using a column (1.5 × 10 cm) packed with Sephadex G25 to obtain KLH.
-MB complex and free KLH were separated and KLH-MB complex was collected. Then, 5 mg of the phosphorylated PS peptide was dissolved in 1 ml of 0.1 M borate buffer (pH 9.0), and this solution was mixed with the KLH-MB complex solution to adjust the pH.
Was adjusted to 7.0 to 7.5 and left to react at room temperature for 3 hours. After the reaction, the mixture was thoroughly dialyzed against PBS, adjusted to a concentration of 0.5 mg / ml with PBS, dispensed in 100 µl aliquots, frozen at -20 ° C and stored. [Example 2] Immunization of mouse Synthetic peptide-bonded KLH solution 1 cryopreserved in Example 1
A suspension was prepared by thoroughly mixing 00 μl and 100 μl complete Freund's adjuvant, and this suspension was administered to the abdominal cavity of two mice (female, BALB / c) at 25 μg each as an antigen. The same amount of antigen was administered 5 times every other week, and 3 days later, the spleen was taken out and cell fusion was carried out as shown in Example 3. Example 3 Cell Fusion and Selection and Acquisition of Fused Cells Producing Monoclonal Antibody of Interest About the extracted mouse spleen cells and syngeneic mouse myeloma cells (SP-2 / 0-Ag-14) The mixture was mixed at a ratio of 10: 1, and cell fusion was performed using 50% polyethylene glycol 4000 as a fusion promoter. 1x1 cells after fusion
The cells were suspended in HAT medium containing 10% bovine serum so as to have a cell concentration of 0 6 cells / ml, and 100 μl was dispensed to each well of a 96-well microtiter plate (maximum soap manufactured by Nunc, the same applies below).

【0024】融合細胞は、CO2インキュベータ(5%
CO2,37℃)中で培養し、ヒポキサンチン、アミノ
プテリン、チミジンを含む培地(HAT培地)で培地交
換を行い、HAT培地中で増殖させて、脾臓細胞と骨髄
腫細胞からなる融合細胞のスクリーニングを行った。次
いでHT培地中で馴化し、さらに10%FCS−RPM
I1640培地で馴化した。
The fused cells were incubated in a CO 2 incubator (5%
(CO 2 , 37 ° C.), the medium is exchanged with a medium containing hypoxanthine, aminopterin, and thymidine (HAT medium), and the cells are grown in HAT medium to produce fused cells consisting of spleen cells and myeloma cells. Screened. Then acclimate in HT medium and further 10% FCS-RPM
I1640 medium was conditioned.

【0025】融合細胞培養上清中の抗体は、リン酸化P
Sペプチドを固相化したマイクロタイタープレートを用
いてELISA法により検出した。陽性となったウエル
に対しては、限界希釈法によるクローニングを2回繰り
返し、リン酸化PSペプチドに対する反応性を有するク
ローンを2種類選出し、それぞれ融合細胞クローン2B
9及び2G3(受託番号FERM P−15133、F
ERM P−15134)と名付けた。得られたクロー
ン2B9及び2G3は、それぞれ10%DMSOを含む
90%牛血清中に懸濁させ、液体窒素中に保存した。各
クローンの産生するモノクローナル抗体は、クローンを
BALB/cマウスの腹腔内で増殖させ、その腹水中か
らプロテイン−Aセファロース4Bカラムを用いてそれ
ぞれを精製した。 [実施例4] モノクローナル抗体の特異性の確認 (4−1)ELISA法によるリン酸化PSペプチドに
対する反応性の確認 実施例3で得られた融合細胞クローン2G3、2B9か
ら産生された2種類のモノクローナル抗体について、E
LISA法によりリン酸化PSペプチドに対する反応の
特異性を確認した。
The antibody in the fused cell culture supernatant was phosphorylated P
The detection was performed by the ELISA method using a microtiter plate on which the S peptide was immobilized. For positive wells, cloning by the limiting dilution method was repeated twice, and two clones having reactivity with phosphorylated PS peptide were selected.
9 and 2G3 (accession number FERM P-15133, F
ERM P-15134). The obtained clones 2B9 and 2G3 were suspended in 90% bovine serum containing 10% DMSO and stored in liquid nitrogen. The monoclonal antibody produced by each clone was obtained by growing the clone in the abdominal cavity of BALB / c mice and purifying each from the ascites using a Protein-A Sepharose 4B column. [Example 4] Confirmation of specificity of monoclonal antibody (4-1) Confirmation of reactivity to phosphorylated PS peptide by ELISA method Two types of monoclonal antibodies produced from the fused cell clones 2G3 and 2B9 obtained in Example 3 About antibodies, E
The specificity of the reaction to the phosphorylated PS peptide was confirmed by the LISA method.

【0026】固相には、リン酸化PSペプチドを固相化
したマイクロタイタープレート、非リン酸化PSペプチ
ドを固相化したマイクロタイタープレート、及びコント
ロールペプチド(配列番号3で表されるMIPP4ペプ
チドのアミノ酸番号10のセリンをリン酸化することに
より得たリン酸化MIPP4ペプチド)を固相化したマ
イクロタイタープレートを用いた(これらの作製法につ
いては実施例5の固相化PSペプチドの作製法を参
照)。
As the solid phase, a microtiter plate on which phosphorylated PS peptide is immobilized, a microtiter plate on which non-phosphorylated PS peptide is immobilized, and a control peptide (amino acid of MIPP4 peptide represented by SEQ ID NO: 3) The microtiter plate on which the phosphorylated MIPP4 peptide obtained by phosphorylating the serine of No. 10 was immobilized was used (for the production method thereof, see the production method of immobilized PS peptide of Example 5). .

【0027】検体としては、クローン2G3より産生さ
れたモノクローナル抗体、クローン2B9より産生され
たモノクローナル抗体、及び対照としてリン酸化G1ペ
プチドに特異的に結合するモノクローナル抗体YC−1
0((株)医学生物学研究所製)を用いた。
As the specimen, the monoclonal antibody produced by the clone 2G3, the monoclonal antibody produced by the clone 2B9, and the monoclonal antibody YC-1 which specifically binds to the phosphorylated G1 peptide as a control.
0 (manufactured by Medical Biology Research Institute, Inc.) was used.

【0028】各モノクローナル抗体の希釈系列(10μ
g/mlから順に20倍希釈した)を作製して、この液
100μlを上記3種類の固相化したマイクロタイター
プレートの各ウエルに添加し、室温で1時間反応させた
後、液を捨て、PBSで3回洗浄した。一定濃度に希釈
したペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG(株式会社医
学生物学研究所製)100μlを各ウエルに添加し、室
温で1時間反応させた後、PBSで洗浄し、過酸化水素
及びオルトフェニレンジアミンの溶液を添加して発色反
応を行いリン酸化PSペプチドに対する反応性を確認し
た。その結果を下記表1及び図1〜図3に示す。尚、表
1及び図1〜図3中、「IgG濃度」はモノクローナル
抗体の濃度を表し、「2G3」はクローン2G3から産
生されるモノクローナル抗体を表し、「2B9」はクロ
ーン2B9から産生されるモノクローナル抗体を表す。
Dilution series of each monoclonal antibody (10 μm
(diluted 20-fold from g / ml in order), and 100 μl of this solution was added to each well of the above-mentioned three types of solid-phased microtiter plates, reacted for 1 hour at room temperature, and then the solution was discarded. Washed 3 times with PBS. 100 μl of peroxidase-labeled anti-mouse IgG (manufactured by Medical and Biological Laboratories Co., Ltd.) diluted to a constant concentration was added to each well, reacted at room temperature for 1 hour, washed with PBS, and then washed with hydrogen peroxide and orthophenylenediamine. The solution was added and a color reaction was performed to confirm the reactivity with the phosphorylated PS peptide. The results are shown in Table 1 below and FIGS. In Table 1 and FIGS. 1 to 3, “IgG concentration” represents the concentration of the monoclonal antibody, “2G3” represents the monoclonal antibody produced by clone 2G3, and “2B9” represents the monoclonal antibody produced by clone 2B9. Represents an antibody.

【0029】[0029]

【表1】 [Table 1]

【0030】上記の結果から、融合細胞クローン2G3
及び2B9から産生されるモノクローナル抗体は、リン
酸化PSペプチドにのみ反応性を示し、非リン酸化PS
ペプチド及びコントロールペプチドには反応性を示さな
かった。また、対照としたリン酸化G1ペプチドに対す
るモノクローナル抗体YC−10は、いずれのペプチド
とも反応性を示さなかった。このことから、両モノクロ
ーナル抗体はリン酸化PSペプチドに特異的に反応する
ことが確認された。 (4−2)免疫ブロット法による特異性の確認 さらにマウス脳抽出物を用いて常法により免疫ブロット
法により各クローン2G3及び2B9から産生されるモ
ノクローナル抗体の反応性を確認した。その結果を図4
に示す。尚、図4中、「2G3」はクローン2G3から
産生されるモノクローナル抗体を表し、「2B9」はク
ローン2B9から産生されるモノクローナル抗体を表
す。また、PKC活性を調べる場合には、通常、Ca2+
とホスファチジルセリン(PS)を添加して試料中のP
KCを活性化させるため、これらの試薬を添加した場合
についても調べた(EGTAを添加すると試料中のCa
2+は錯体となりPKCは活性化されない)。
From the above results, the fused cell clone 2G3
And the monoclonal antibodies produced from 2B9 show reactivity only to phosphorylated PS peptide and
There was no reactivity with the peptide or control peptide. In addition, the control monoclonal antibody YC-10 against the phosphorylated G1 peptide did not show reactivity with any of the peptides. From this, it was confirmed that both monoclonal antibodies specifically react with the phosphorylated PS peptide. (4-2) Confirmation of specificity by immunoblotting Further, the reactivity of the monoclonal antibody produced from each of the clones 2G3 and 2B9 was confirmed by an immunoblotting method using mouse brain extract by a conventional method. The result is shown in Figure 4.
Shown in. In addition, in FIG. 4, "2G3" represents the monoclonal antibody produced from clone 2G3, and "2B9" represents the monoclonal antibody produced from clone 2B9. When investigating PKC activity, Ca 2+ is usually used.
And phosphatidylserine (PS) were added
In order to activate KC, the case where these reagents were added was also examined (when EGTA was added, Ca in the sample was
2+ becomes a complex and PKC is not activated).

【0031】図4から次の点が明らかとなった。即ち、
クローン2B9により産生されるモノクローナル抗体
はマウス脳抽出物中の蛋白質と反応しない、クローン
2G3により産生されるモノクローナル抗体は20kD
より少し小さい蛋白質との反応性が認められた、抗P
KCモノクローナル抗体によってバンドが認められたこ
とからマウス脳抽出物中には確かにPKCが存在する
(抗PKCモノクローナル抗体を反応させた場合にPS
及びCa2+存在下でバンドが2本認められたのは、試料
中のカルシウム依存性タンパク分解酵素が活性化されて
PKC分子が分解され、PKC分子の調節ドメインと抗
PKCモノクローナル抗体が反応したからと考えられ
る)点が明らかとなった。
The following points were made clear from FIG. That is,
The monoclonal antibody produced by clone 2B9 does not react with the protein in mouse brain extract, the monoclonal antibody produced by clone 2G3 is 20 kD
Reactivity with a little smaller protein was observed, anti-P
Since the band was recognized by the KC monoclonal antibody, PKC was certainly present in the mouse brain extract (PS was detected when the anti-PKC monoclonal antibody was reacted).
And two bands were observed in the presence of Ca 2+ , the calcium-dependent proteolytic enzyme in the sample was activated to decompose the PKC molecule, and the regulatory domain of the PKC molecule reacted with the anti-PKC monoclonal antibody. (Probably because of this).

【0032】以上の結果から、クローン2G3により産
生されるモノクローナル抗体は、マウス脳抽出物を検体
として用いる場合、リン酸化PSペプチド以外の蛋白質
と反応してリン酸化PSペプチドの測定精度に影響する
ことが懸念される。このため、ELISAでの測定系に
はクローン2B9により産生されるモノクローナル抗体
を用いることとした。 [実施例5] 測定系の構築 リン酸化PSペプチドに特異的に結合するモノクローナ
ル抗体を用いて検体中の蛋白質リン酸化酵素の活性を測
定する系を以下のように構築した。
From the above results, when the mouse brain extract is used as a sample, the monoclonal antibody produced by clone 2G3 reacts with proteins other than phosphorylated PS peptide and affects the measurement accuracy of phosphorylated PS peptide. Is concerned. Therefore, it was decided to use the monoclonal antibody produced by clone 2B9 for the measurement system in ELISA. [Example 5] Construction of measurement system A system for measuring the activity of protein phosphatase in a sample using a monoclonal antibody that specifically binds to phosphorylated PS peptide was constructed as follows.

【0033】PSペプチドを生理的リン酸緩衝液(PB
S)に溶解して1μg/mlの溶液を調製した。この液
100μlを96ウエルのマイクロタイタープレートの
各ウエルに添加し、4℃で12時間〜18時間静置反応
させた後、ペプチド溶液を除き、5%牛血清アルブミ
ン、5%シュクロース及び0.1%アジ化ナトリウムを
含むPBS350μlを加えて4℃で12〜18時間静
置してマイクロタイタープレートの未反応部位をブロッ
キングし、ブロッキング溶液を捨て、PBSで3回洗浄
することにより、固相化PSペプチドを得た。
PS peptide was added to physiological phosphate buffer (PB
It was dissolved in S) to prepare a 1 μg / ml solution. 100 μl of this solution was added to each well of a 96-well microtiter plate and allowed to stand at 4 ° C. for 12 to 18 hours. Then, the peptide solution was removed, and 5% bovine serum albumin, 5% sucrose and 0. 350 μl of PBS containing 1% sodium azide was added, and the mixture was allowed to stand at 4 ° C. for 12 to 18 hours to block unreacted sites of the microtiter plate, discard the blocking solution, and wash 3 times with PBS to immobilize. The PS peptide was obtained.

【0034】一方、精製したPKAを3mM MgCl
2、0.1mM ATP、2μMcAMP、0.5mM
EDTA、1mM EGTA及び5mM 2−メルカ
プトエタノールを含む25mMトリス塩酸緩衝液で希釈
し、表2に示す濃度のPKA溶液を調製した。
On the other hand, purified PKA was treated with 3 mM MgCl 2.
2 , 0.1 mM ATP, 2 μM cAMP, 0.5 mM
Diluted with 25 mM Tris-hydrochloric acid buffer containing EDTA, 1 mM EGTA and 5 mM 2-mercaptoethanol to prepare PKA solutions having the concentrations shown in Table 2.

【0035】そして、各濃度のPKA溶液100μlを
固相化PSペプチドに添加し、室温で5〜20分間反応
させ、20%リン酸溶液100μlを加えてリン酸化反
応を停止し、PBSで5回洗浄した(これにより、固相
化PSペプチドはリン酸化される)。
Then, 100 μl of each concentration of PKA solution was added to the immobilized PS peptide and reacted at room temperature for 5 to 20 minutes, 100 μl of 20% phosphoric acid solution was added to stop the phosphorylation reaction, and 5 times with PBS. Washed (this causes the immobilized PS peptide to be phosphorylated).

【0036】ビオチン標識モノクローナル抗体は次のよ
うにして作製した。即ち、0.1M炭酸緩衝液(pH
8.5)に溶解したモノクローナル抗体(2B9、5m
g/ml)とNHS−LC−BIOTIN(PIERC
E社製 25mg/ml)をIgGとNHS−LC−B
IOTINのモル比が1:60になるように加え、室温
で4時間スターラーを用いて攪拌した。攪拌後、この溶
液を生理的リン酸緩衝液(PBS)に透析し、ビオチン
標識モノクローナル抗体を得た。
The biotin-labeled monoclonal antibody was prepared as follows. That is, 0.1M carbonate buffer (pH
8.5) dissolved in monoclonal antibody (2B9, 5m
g / ml) and NHS-LC-BIOTIN (PIERC
25 mg / ml manufactured by Company E) is used as IgG and NHS-LC-B.
IOTIN was added at a molar ratio of 1:60 and stirred at room temperature for 4 hours using a stirrer. After stirring, this solution was dialyzed against a physiological phosphate buffer (PBS) to obtain a biotin-labeled monoclonal antibody.

【0037】そして、固相化PSペプチドをPKAと反
応させた後、ビオチン標識モノクローナル抗体100μ
lを加え、室温で60分間反応させ洗浄した後、ストレ
プトアビジン−POD複合体溶液100μlを加えた。
さらに室温で60分間反応させた後、洗浄し、オルトフ
ェニレンジアミンと過酸化水素の混合溶液100μlを
加え、室温で3〜5分間反応させ、発色した後、20%
リン酸溶液100μlを加えて反応を停止した。発色し
た溶液につき波長492nmの吸光度を測定した。
Then, after the immobilized PS peptide was reacted with PKA, biotin-labeled monoclonal antibody 100 μ
1 was added, the mixture was reacted at room temperature for 60 minutes and washed, and then 100 μl of streptavidin-POD complex solution was added.
After further reacting at room temperature for 60 minutes, washing, adding 100 μl of a mixed solution of orthophenylenediamine and hydrogen peroxide, reacting at room temperature for 3 to 5 minutes, and developing color, then 20%
The reaction was stopped by adding 100 μl of phosphoric acid solution. The absorbance at a wavelength of 492 nm was measured for the colored solution.

【0038】尚、比較品として、G1ペプチド(基質)
をマイクロタイタープレートに結合させることにより得
た固相化G1ペプチド、及び、リン酸化G1ペプチドに
特異的に結合するモノクローナル抗体YC−10をペル
オキシダーゼで標識化したペルオキシダーゼ標識YC−
10を用いて、各濃度のPKA溶液の測定を行い、本実
施例との感度を比較した。その結果を表2及び図5に示
す。
As a comparative product, G1 peptide (substrate)
Immobilized G1 peptide obtained by binding to a microtiter plate, and a peroxidase-labeled YC-labeled with peroxidase-labeled monoclonal antibody YC-10 that specifically binds to phosphorylated G1 peptide.
10 was used to measure the PKA solution of each concentration, and the sensitivity was compared with that of this example. The results are shown in Table 2 and FIG.

【0039】[0039]

【表2】 [Table 2]

【0040】上記の結果から、本実施例の試薬は、従来
の試薬(比較品)に比べて、きわめて感度よく蛋白質リ
ン酸化酵素活性を検出できることが示された。 [実施例6] 反応性の確認 当該測定試薬がPKA及びPKC活性を特異的に捕らえ
ていることを確認するため、COS細胞及びMolt3
細胞の抽出物を用いてリン酸化活性の測定を行った。即
ち、COS細胞及びMolt3細胞の抽出物を検体とし
た。また、PKA活性を調べる場合は、試料中にcAM
P(PKAを活性化させるもの)を添加し又は添加しな
いで、一方、PKC活性を調べる場合は、試料中にCa
2+とPS(これらはPKCを活性化させる)を添加し又
はEGTA(試料中のCa2+をキレート化するもの)を
添加して、実施例5と同様にその活性を測定した。その
結果を表3、4及び図6〜9に示す。これらの表及び図
中、「蛋白濃度」とは、COS細胞またはMolt3細
胞の抽出物の濃度を表す。
From the above results, it was shown that the reagent of this example can detect the protein kinase activity with extremely high sensitivity as compared with the conventional reagent (comparative product). [Example 6] Confirmation of reactivity In order to confirm that the measurement reagent specifically captures PKA and PKC activities, COS cells and Molt3 were confirmed.
Phosphorylation activity was measured using cell extracts. That is, an extract of COS cells and Molt3 cells was used as a sample. In addition, when examining PKA activity, cAM
When P (activity that activates PKA) is added or not, while PKC activity is examined, Ca
2+ and PS (these activate PKC) or EGTA (which chelate Ca 2+ in the sample) were added and the activity was measured as in Example 5. The results are shown in Tables 3 and 4 and FIGS. In these tables and figures, "protein concentration" represents the concentration of the extract of COS cells or Molt3 cells.

【0041】[0041]

【表3】 [Table 3]

【0042】[0042]

【表4】 [Table 4]

【0043】上記の結果から、当該試薬はPKA及びP
KCの活性測定においていずれも特異的にこれら酵素の
活性を測定していることが示された。尚、対照例(cA
MP(−)、EGTA(+))でも反応性が見られたの
は、細胞抽出物中にあって既に活性化されていたPKA
やPKC、又は、PKAやPKC以外のプロテインキナ
ーゼの影響によるものである。
From the above results, the reagents are PKA and P
It was shown that the activity of these enzymes was specifically measured in all of the KC activity measurements. The control example (cA
Reactivity was also seen with MP (-) and EGTA (+) because PKA that was already activated in the cell extract
Or PKC, or a protein kinase other than PKA or PKC.

【0044】[0044]

【発明の効果】本発明によれば、検体中の蛋白質リン酸
化酵素の活性を高感度に測定することが可能な免疫学的
測定方法及びそのためのキットが提供される。細胞中の
蛋白質リン酸化酵素の活性を測定することは従来困難で
あったが、未調整の検体中におけるこれら酵素の活性を
感度よく測定することにより、細胞内における情報伝達
のメカニズム解明のための手段が提供されると同時に、
情報伝達機構の異常として捉えられる疾患(癌や一部の
糖尿病等)の原因解明の手段が提供される。また、これ
らに使用される有用なモノクローナル抗体が提供され、
更にこのモノクローナル抗体を産生する有用な融合細胞
が提供される。
INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, there are provided an immunological assay method capable of assaying the activity of protein kinase in a sample with high sensitivity, and a kit therefor. It has been difficult to measure the activity of protein kinases in cells in the past, but by sensitively measuring the activities of these enzymes in unadjusted specimens, it was possible to elucidate the mechanism of intracellular signal transduction. At the same time that the means are provided
A means for elucidating the cause of a disease (cancer, some diabetes, etc.) that is regarded as an abnormality in the information transmission mechanism is provided. In addition, useful monoclonal antibodies used for these are provided,
Further provided are useful fused cells which produce this monoclonal antibody.

【0045】[0045]

【配列表】[Sequence list]

配列番号:1 配列の長さ:14 配列の型:アミノ酸 トボロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Arg Phe Ala Arg Lys Gly Ser Leu Arg Gln Lys Asn Val Cys 1 5 10 SEQ ID NO: 1 Sequence length: 14 Sequence type: Amino acid Tobology: linear Sequence type: Peptide Array   Arg Phe Ala Arg Lys Gly Ser Leu Arg Gln Lys Asn Val Cys    1 5 10

【0046】配列番号:2 配列の長さ:14 配列の型:アミノ酸 トボロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Arg Phe Ala Arg Lys Gly Ala Leu Arg Gln Lys Asn Val Cys 1 5 10SEQ ID NO: 2 Sequence length: 14 Sequence type: Amino acid Tobology: linear Sequence type: Peptide Array Arg Phe Ala Arg Lys Gly Ala Leu Arg Gln Lys Asn Val Cys  1 5 10

【0047】配列番号:3 配列の長さ:15 配列の型:アミノ酸 トボロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Lys Arg Arg Leu Asn Arg Glu Glu Ser Ser Val Val Leu Gly Tyr 1 5 10 15SEQ ID NO: 3 Sequence length: 15 Sequence type: Amino acid Tobology: linear Sequence type: Peptide Array Lys Arg Arg Leu Asn Arg Glu Glu Ser Ser Val Val Leu Gly Tyr  1 5 10 15

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】 非リン酸化PSペプチドを用いたときのIg
G(モノクローナル抗体)濃度に対する吸光度の関係を
表すグラフである。
FIG. 1 Ig with non-phosphorylated PS peptide
It is a graph showing the relationship of the light absorbency with respect to G (monoclonal antibody) density | concentration.

【図2】 リン酸化PSペプチドを用いたときのIgG
(モノクローナル抗体)濃度に対する吸光度の関係を表
すグラフである。
FIG. 2 IgG using phosphorylated PS peptide
It is a graph showing the relationship of the absorbance with respect to (monoclonal antibody) concentration.

【図3】 コントロールペプチドを用いたときのIgG
(モノクローナル抗体)濃度に対する吸光度の関係を表
すグラフである。
FIG. 3: IgG when using a control peptide
It is a graph showing the relationship of the absorbance with respect to (monoclonal antibody) concentration.

【図4】 マウス脳抽出物を用いたときの各種モノクロ
ーナル抗体の免疫ブロット法の結果を表す説明図(電気
泳動の様子を書き写したもの)である。
FIG. 4 is an explanatory view (transcription of the state of electrophoresis) showing the results of immunoblotting of various monoclonal antibodies when a mouse brain extract was used.

【図5】 実施例5の試薬及び比較品を用いたときのP
KAに対する吸光度の関係を表すグラフである。
FIG. 5: P when using the reagents of Example 5 and comparative products
It is a graph showing the relationship of the light absorbency with respect to KA.

【図6】 PKA活性に関し、COS細胞の蛋白濃度に
対する吸光度の関係を表すグラフである。
FIG. 6 is a graph showing the relationship of absorbance with respect to protein concentration in COS cells regarding PKA activity.

【図7】 PKA活性に関し、Molt3細胞の蛋白濃
度に対する吸光度の関係を表すグラフである。
FIG. 7 is a graph showing the relationship between the PKA activity and the absorbance of Molt3 cells with respect to the protein concentration.

【図8】 PKC活性に関し、COS細胞の蛋白濃度に
対する吸光度の関係を表すグラフである。
FIG. 8 is a graph showing the relationship between the absorbance of COS cells and the protein concentration of PKC activity.

【図9】 PKC活性に関し、Molt3細胞の蛋白濃
度に対する吸光度の関係を表すグラフである。
FIG. 9 is a graph showing the relationship between the protein concentration of Molt3 cells and the absorbance with respect to PKC activity.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) G01N 33/53 C07K 16/40 G01N 33/577 SwissProt/PIR/GeneS eq─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page (58) Fields surveyed (Int.Cl. 7 , DB name) G01N 33/53 C07K 16/40 G01N 33/577 SwissProt / PIR / GeneS eq

Claims (10)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 リン酸化PSペプチド(配列番号1で表
されるPSペプチドのアミノ酸番号7のセリンがリン酸
化されたもの)と特異的に結合するモノクローナル抗
体。
1. A monoclonal antibody that specifically binds to a phosphorylated PS peptide (a PS peptide represented by SEQ ID NO: 1 in which serine at amino acid number 7 is phosphorylated).
【請求項2】 請求項1記載のモノクローナル抗体を産
生する融合細胞。
2. A fused cell producing the monoclonal antibody according to claim 1.
【請求項3】 リン酸化PSペプチドを免疫感作させた
哺乳動物から取得される抗体産生細胞と哺乳動物骨髄腫
系細胞との融合により得られる請求項2記載の融合細
胞。
3. The fused cell according to claim 2, which is obtained by fusing an antibody-producing cell obtained from a mammal immunized with a phosphorylated PS peptide and a mammalian myeloma cell.
【請求項4】 融合細胞クローン2B9(受託番号FE
RM P−15133)又は融合細胞クローン2G3
(受託番号FERM P−15134)である請求項2
記載の融合細胞。
4. The fused cell clone 2B9 (accession number FE)
RM P-15133) or fused cell clone 2G3
(Accession number FERM P-15134)
The fused cell described.
【請求項5】 下記a)〜c)及びd)〜f)の工程を
含むことを特徴とする蛋白質リン酸化酵素活性の免疫学
的測定方法。 a)配列番号1で表されるPSペプチドを不溶性支持体
に結合せしめてなる固相化PSペプチドに標準物質とし
てのサイクリックAMP依存性プロテイン(PKA)又
はプロテインキナーゼC(PKC)を反応せしめた後、 b)請求項1記載のモノクローナル抗体を標識物質によ
り標識化した標識モノクローナル抗体を反応させ、 c)この反応生成物の標識量を測定することにより検量
線を作成する工程、及び d)前記固相化PSペプチドに検体を反応せしめた後、 e)請求項1記載のモノクローナル抗体を標識物質によ
り標識化した標識モノクローナル抗体を反応させ、 f)この反応生成物の標識量を測定し、前記検量線から
検体中に含まれるPKA又はPKCの酵素活性を測定す
る工程。
5. A method for immunologically measuring protein kinase activity, which comprises the following steps a) to c) and d) to f). a) A solid-phased PS peptide obtained by binding the PS peptide represented by SEQ ID NO: 1 to an insoluble support was reacted with cyclic AMP-dependent protein (PKA) or protein kinase C (PKC) as a standard substance. Then, b) reacting the labeled monoclonal antibody obtained by labeling the monoclonal antibody according to claim 1 with a labeling substance, and c) creating a calibration curve by measuring the labeled amount of this reaction product, and d) the above After reacting the sample with the solid-phased PS peptide, e) a labeled monoclonal antibody obtained by labeling the monoclonal antibody according to claim 1 with a labeling substance is reacted, and f) the labeled amount of the reaction product is measured, and A step of measuring the enzyme activity of PKA or PKC contained in the sample from a calibration curve.
【請求項6】 前記標識モノクローナル抗体は、請求項
2〜4のいずれかに記載の融合細胞により産生されるモ
ノクローナル抗体を標識物質により標識化したことを特
徴とする請求項5記載の免疫学的測定方法。
6. The immunological method according to claim 5, wherein the labeled monoclonal antibody is obtained by labeling the monoclonal antibody produced by the fused cell according to any one of claims 2 to 4 with a labeling substance. Measuring method.
【請求項7】 前記標識物質は、ビオチン、ペルオキシ
ダーゼ、β−D−ガラクトシダーゼ、アルカリフォスフ
ァターゼ及びマイクロペルオキシダーゼからなる群から
選ばれたことを特徴とする請求項5又は6記載の免疫学
的測定方法。
7. The immunological measurement method according to claim 5, wherein the labeling substance is selected from the group consisting of biotin, peroxidase, β-D-galactosidase, alkaline phosphatase and microperoxidase.
【請求項8】 配列番号1で表されるPSペプチドを不
溶性支持体に結合せしめてなる固相化PSペプチドと、 請求項1記載のモノクローナル抗体を標識物質により標
識化した標識モノクローナル抗体とを備えたことを特徴
とする蛋白質リン酸化酵素活性の免疫学的測定キット。
8. A solid-phased PS peptide obtained by binding the PS peptide represented by SEQ ID NO: 1 to an insoluble support, and a labeled monoclonal antibody obtained by labeling the monoclonal antibody according to claim 1 with a labeling substance. An immunological assay kit for protein phosphatase activity, which comprises:
【請求項9】 前記標識モノクローナル抗体は、請求項
2〜4のいずれかに記載の融合細胞により産生されるモ
ノクローナル抗体を標識物質により標識化したことを特
徴とする請求項9記載の免疫学的測定キット。
9. The immunological method according to claim 9, wherein the labeled monoclonal antibody is obtained by labeling the monoclonal antibody produced by the fused cell according to any one of claims 2 to 4 with a labeling substance. Measurement kit.
【請求項10】 前記標識物質は、ビオチン、ペルオキ
シダーゼ、β−D−ガラクトシダーゼ、アルカリフォス
ファターゼ及びマイクロペルオキシダーゼからなる群か
ら選ばれたことを特徴とする請求項8又は9記載の免疫
学的測定キット。
10. The immunological assay kit according to claim 8, wherein the labeling substance is selected from the group consisting of biotin, peroxidase, β-D-galactosidase, alkaline phosphatase and microperoxidase.
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