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JP3043528B2 - Assay method for cholesteryl ester transfer protein - Google Patents

Assay method for cholesteryl ester transfer protein

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Publication number
JP3043528B2
JP3043528B2 JP4292891A JP29289192A JP3043528B2 JP 3043528 B2 JP3043528 B2 JP 3043528B2 JP 4292891 A JP4292891 A JP 4292891A JP 29289192 A JP29289192 A JP 29289192A JP 3043528 B2 JP3043528 B2 JP 3043528B2
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JP
Japan
Prior art keywords
cetp
antibody
apoprotein
polyclonal antibody
transfer protein
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Application number
JP4292891A
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Japanese (ja)
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JPH06138122A (en
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隆光 中野
克行 中嶋
正一 足立
健宅 金光
一義 西川
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Shiraimatsu Shinyaku KK
Original Assignee
Shiraimatsu Shinyaku KK
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Publication date
Application filed by Shiraimatsu Shinyaku KK filed Critical Shiraimatsu Shinyaku KK
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明はコレステリルエステル転
送蛋白(CETP:Cholesterylester
transfer protein)の測定法に関
し、更に詳細には動脈硬化症診断の一因子であるCET
Pを簡便かつ正確に測定する方法及びこれに用いるキッ
トに関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a cholesteryl ester transfer protein (CETP: Cholesterylester).
The present invention relates to a method for measuring transfer protein, and more particularly, to CET which is a factor in diagnosing arteriosclerosis.
The present invention relates to a method for simply and accurately measuring P and a kit used for the method.

【0002】[0002]

【従来の技術】血清中のコレステロール代謝において、
低比重リポ蛋白(LDL)が末梢組織へコレステロール
の供給経路に主要な働きをする。これに対し高比重リポ
蛋白(HDL)は末梢組織からコレステロールを引き抜
き、肝臓に逆転送する経路に重要なリポ蛋白であると考
えられている。更に多くの疫学調査から血中HDLレベ
ルが虚血性心疾患の発生頻度と負の相関を示すことが明
らかとなり、HDLが動脈硬化の防御因子として作用す
ることが知られている。このHDLのコレステロールを
引き抜く逆転送系に重要な働きを有するものとして、レ
シチン・コレステロールアシルトランスフェラーゼ(L
CAT)、肝性リパーゼ(HTGL)、リポ蛋白リパー
ゼ(LPL)などの酵素の他に、CETPがある。この
CETPは、生体においては、まず極めて疎水性の蛋白
質で476個のアミノ酸から成るペプチドとして合成さ
れ、細胞内でグリコシレーションを受けて分子量が74
000の成熟蛋白となることが知られている〔Hesl
er,C.B.et al.,J.Biol.Che
m.,263,5020(1988)〕。CETPの作
用機序については不明な点が多いが、各リポ蛋白間で脂
質の交換・転送を促進するとされている。即ち、LCA
T反応により、HDL上でエステル化された遊離コレス
テロールは、VLDL等のトリグリセリド・リッチ・リ
ポ蛋白質(TGrich lipoprotein)へ
転送されるが、これと交換にTGが1:1のモル比で逆
転送される。TG richとなったHDLは、HTG
Lの働きによりTG部分が水解されて、より小さなHD
L粒子となると考えられている。即ち、CETPはコレ
ステリルエステル(CE)をVLDLやLDLへ転送す
る働きを有するコレステロール転送蛋白と考えられてい
る。CETP活性系の異常症としては、HDLが上昇す
る場合として、CETP欠損症が報告されている〔Ya
mashita S.et al.,Atherosc
lerosis,70,7(1988)〕。また、CE
TP活性低下を伴う慢性飲酒患者の高HDL血症、原発
性胆汁性肝硬変に伴う高HDL血症などが報告されてい
る。このように、CETP活性又はCETP量の測定
は、動脈硬化症や肝疾患の診断にあたって極めて重要で
ある。
2. Description of the Related Art In the metabolism of cholesterol in serum,
Low density lipoprotein (LDL) plays a major role in the cholesterol supply pathway to peripheral tissues. On the other hand, high-density lipoprotein (HDL) is considered to be an important lipoprotein in the pathway of extracting cholesterol from peripheral tissues and transferring it back to the liver. Further, many epidemiological studies have revealed that blood HDL levels are negatively correlated with the frequency of occurrence of ischemic heart disease, and it is known that HDL acts as a protective factor against arteriosclerosis. An important function of the reverse transfer system for extracting HDL cholesterol is lecithin / cholesterol acyltransferase (L
In addition to enzymes such as CAT), hepatic lipase (HTGL) and lipoprotein lipase (LPL), there is CETP. In the living body, CETP is first synthesized as a peptide of 476 amino acids as a very hydrophobic protein, and is glycosylated in cells to have a molecular weight of 74.
000 mature proteins [Hesl
er, C.E. B. et al. , J. et al. Biol. Che
m. , 263 , 5020 (1988)]. Although there are many unclear points about the mechanism of action of CETP, it is said that it promotes lipid exchange and transfer between lipoproteins. That is, LCA
By the T reaction, free cholesterol esterified on HDL is transferred to triglyceride-rich lipoprotein (TGrich lipoprotein) such as VLDL. In exchange for this, TG is reversely transferred at a molar ratio of 1: 1. You. HDL that became TG rich is HTG
The TG part is hydrolyzed by the action of L, and a smaller HD
It is thought to be L particles. That is, CETP is considered to be a cholesterol transfer protein having a function of transferring cholesteryl ester (CE) to VLDL and LDL. As an abnormality of the CETP activity system, CETP deficiency has been reported as a case where HDL is elevated [Ya
mashita S .; et al. , Atherosc
lerosis, 70, 7 (1988)]. Also CE
There have been reports of hyper-HDLemia in chronic alcoholic patients with decreased TP activity and hyper-HDL-emia associated with primary biliary cirrhosis. Thus, measurement of CETP activity or CETP amount is extremely important for diagnosis of arteriosclerosis and liver disease.

【0003】CETPの脂質転送活性を測定する方法と
しては、例えば、空腹時採血で得られた血清又は血漿を
超遠心法で血清(血漿)より比重1.21以上の分画を
分離し、検体として得る。次に予め、放射性標識した放
射性CE標識HDL(20〜50μg 全コレステロール
(TC))とLDL(100〜150μg (TC))に
上記検体を加えて100μl とし、37℃で2〜3時間
インキュベーションした後、50mg/mlの血清の比重
1.21以上の分画を400μl 加え、更に50μl の
ヘパリン/MnCl2(2250IUヘパリン/1M
MnCl2)にてLDLを沈降させ上清のHDLの放射
活性を測定し、インキュベーション前後の放射活性の変
化にてCE転送活性を算出する方法〔佐々木憲裕,日本
臨床,47,534(1989)〕がある。しかしなが
ら、このようなCETPの脂質転送活性を測定する方法
は、超遠心を用いる等操作が煩雑なうえ精度が低いとい
う欠点があった。
[0003] As a method for measuring the lipid transfer activity of CETP, for example, serum or plasma obtained by fasting blood sampling is subjected to ultracentrifugation to separate a fraction having a specific gravity of 1.21 or more from serum (plasma). Get as. Next, the above sample was added to radioactively labeled radioactive CE-labeled HDL (20 to 50 µg total cholesterol (TC)) and LDL (100 to 150 µg (TC)) to make 100 µl, followed by incubation at 37 ° C for 2 to 3 hours. , 50 μl of a fraction with a specific gravity of serum of 1.21 or more was added, and 50 μl of heparin / MnCl 2 (2250 IU heparin / 1M) was added.
LDL is precipitated with MnCl 2 ), the radioactivity of HDL in the supernatant is measured, and the CE transfer activity is calculated based on the change in radioactivity before and after the incubation [Norihiro Sasaki, Japan Clinic, 47 , 534 (1989)]. There is. However, such a method for measuring the lipid transfer activity of CETP has the disadvantage that the operation is complicated and the accuracy is low, such as using ultracentrifugation.

【0004】一方、CETP量を測定する方法として
は、モノクローナル抗体を用いる方法及びポリクローナ
ル抗体を用いる方法の両者が報告されている。モノクロ
ーナル抗体を用いる方法としては、トール(Tall,
A.)らが、CETPに対するモノクローナル抗体TP
−2を用い、抗原を固定化する競合的RIA法を報告し
ている。即ち、超遠心法によりリポ蛋白分画を得、リポ
蛋白分画中の抗原を固相化した後、TP−2抗体と反応
させ、該反応物と第2抗体としての125I−抗マウスI
gG抗体とを反応させ、γ−カウンターで測定する方法
である〔Marcel,Y.L.et al.,J.C
lin.Invest.,85,10−17(199
0)〕。しかしながら、このモノクローナル抗体を用い
て、Brownらは、ある高αリポ蛋白血症のファミリ
ーの何人かにおいて、血漿CETPを検出できなかった
と報告している〔Brown,M.L.et al.,
Nature,342,448−451(198
9)〕。このように、モノクローナル抗体を用いた場
合、部分的にその抗体の認識するエピトープに遺伝子変
異が起きると蛋白構造が異なるものとなり、単一のエピ
トープを認識するモノクローナル抗体は、この際欠点と
なる。またCETP断片が触媒活性を示す場合、その蛋
白からのエピトープが欠失しているかもしれず、この際
モノクローナル抗体によっては認識されないこととな
る。また、CETP欠損の場合、ホモ接合体とヘテロ接
合体とでは、CETPの蛋白の発現量も異なり、モノク
ローナル抗体によっては、ヘテロ接合体のタイプを認識
し得ない場合がある。更に本方法は、RIA法である
為、キット化することは困難である。
[0004] On the other hand, as a method for measuring the amount of CETP, both a method using a monoclonal antibody and a method using a polyclonal antibody have been reported. Methods using monoclonal antibodies include Tall (Tall,
A. ) Et al., A monoclonal antibody TP against CETP.
-2, a competitive RIA method for immobilizing an antigen has been reported. That is, a lipoprotein fraction is obtained by ultracentrifugation, the antigen in the lipoprotein fraction is immobilized, and then reacted with the TP-2 antibody. The reaction product is reacted with 125 I-anti-mouse I as a second antibody.
This is a method of reacting with a gG antibody and measuring with a γ-counter [Marcel, Y. et al. L. et al. , J. et al. C
lin. Invest. , 85 , 10-17 (199
0)]. However, using this monoclonal antibody, Brown et al. Report that they could not detect plasma CETP in some members of a family of certain hyperalphalipoproteinemias [Brown, M., et al. L. et al. ,
Nature, 342 , 448-451 (198
9)]. As described above, when a monoclonal antibody is used, if a gene mutation occurs partially in an epitope recognized by the antibody, the protein structure becomes different, and a monoclonal antibody that recognizes a single epitope is disadvantageous in this case. If the CETP fragment exhibits catalytic activity, the epitope from the protein may be missing, and will not be recognized by the monoclonal antibody. In the case of CETP deficiency, the expression level of CETP protein differs between homozygotes and heterozygotes, and depending on the monoclonal antibody, the type of heterozygotes may not be recognized. Furthermore, since this method is an RIA method, it is difficult to make a kit.

【0005】ポリクローナル抗体を用いたCETP量の
測定については、Yamashitaらの酵素免疫測定
法が報告されている〔Yamashita S.et
al.,Clin.Chim.Acta.,194,1
45−160(1990)〕。該方法は、まずCETP
を部分精製し、ポリクローナル抗体を固定化した抗CE
TP抗体結合アフィニティーゲルを用い、これを血清と
反応させ、次いで上記部分精製したCETPを加え、上
清の未反応CETPのCE転送活性を測定する方法で、
CETP量を正常コントロールを100%とした時の相
対%で表示する方法である。この方法では、部分精製し
たCETPが大量に必要であり、直接血液中のCETP
を測定するものでなく、最終的にはCETP活性を測定
することとなる。しかもCE転送活性の測定にアイソト
ープが必要となる為、キット化するのには困難性がある
し、しかも測定に時間がかかるという難点がある。
As for the measurement of the amount of CETP using a polyclonal antibody, an enzyme immunoassay by Yamashita et al. Has been reported [Yamashita S. et al. et
al. , Clin. Chim. Acta. , 194 , 1
45-160 (1990)]. The method begins with CETP
Was partially purified and polyclonal antibody was immobilized on anti-CE
Using a TP antibody binding affinity gel, reacting it with serum, then adding the partially purified CETP, and measuring the CE transfer activity of unreacted CETP in the supernatant,
In this method, the amount of CETP is expressed as a relative% when the normal control is set to 100%. This method requires a large amount of partially purified CETP, and directly
Is not measured, but the CETP activity is ultimately measured. In addition, the measurement of CE transfer activity requires an isotope, which makes it difficult to make a kit, and that the measurement takes time.

【0006】これらの背景をふまえ、本発明者らは血清
検体を100℃で熱処理し、冷却遠心して得た血清に、
固定化抗CETPポリクローナル抗体を反応させた後、
予めFab′に精製した抗ヒトCETP抗体にペルオキ
シダーゼ標識した酵素標識抗体を反応させ、該酵素反応
でCETP量を測定する方法について、先に報告した
〔中野隆光ら,動脈硬化学会1991年,12月5日
(東京)〕。また、この報告において、この熱処理を施
す方法により、検体無処理の方法では、測定不可能であ
ったCETPの定量が測定可能となったが、測定系に影
響を与えるものとして、血清アルブミンが認められるこ
とを示した。更に研究した結果、アルブミン以外にIg
Gが本CETP量測定系に影響することが判明したた
め、血漿を一度無水硫酸ナトリウム処理によりIgG分
離除去後、分子篩により分画し、次いで上記の固定化抗
CETPポリクローナル抗体を反応させる方法を報告し
た〔金光健宅ら,動脈硬化学会,1992年6月9日
(大阪)〕。しかしながら、この方法は検体の前処理操
作が無水硫酸ナトリウム処理及び分子篩分画処理と極め
て煩雑となり、通常の臨床検査室における検査手段とし
ては採用し得ないものであった。
[0006] Based on these backgrounds, the inventors of the present invention have performed a heat treatment of a serum sample at 100 ° C.
After reacting the immobilized anti-CETP polyclonal antibody,
A method of measuring the amount of CETP by reacting an enzyme-labeled antibody labeled with peroxidase with an anti-human CETP antibody purified in advance to Fab 'was previously reported [Takamitsu Nakano et al., The Arteriosclerosis Society December, 1991. 5 (Tokyo)]. In addition, in this report, this method of heat treatment enabled quantitative measurement of CETP, which could not be measured by the sample-free method, but serum albumin was recognized as affecting the measurement system. Was shown. As a result of further study, Ig
Since G was found to affect the CETP amount measurement system, a method was described in which plasma was once separated by an anhydrous sodium sulfate treatment to separate and remove IgG, followed by fractionation with a molecular sieve, and then reaction with the above-mentioned immobilized anti-CETP polyclonal antibody. [Kenmitsu Kenke et al., Atherosclerosis Society, June 9, 1992 (Osaka)]. However, in this method, the pretreatment operation of the specimen becomes extremely complicated with the anhydrous sodium sulfate treatment and the molecular sieve fractionation treatment, and thus cannot be adopted as a test means in a normal clinical laboratory.

【0007】また、従来の方法では、リポプロテイン転
送抑制蛋白(LTIP)などの物質がCETP測定値に
影響を及ぼすといわれている。
[0007] In the conventional method, it is said that substances such as lipoprotein transfer inhibitory protein (LTIP) affect CETP measurement values.

【0008】[0008]

【発明が解決しようとする課題】従って、本発明の目的
は簡便な操作で、かつ高精度で血清や血漿等の検体中の
CETP量を測定する方法を提供することにある。
SUMMARY OF THE INVENTION Accordingly, an object of the present invention is to provide a method for measuring the amount of CETP in a sample such as serum or plasma with a simple operation and with high accuracy.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】そこで、本発明者らは、
血液中のCETP測定値に影響を与える因子を簡便な操
作で除去する手段を開発すべく種々検討してきたとこ
ろ、血漿等の検体を抗アポ蛋白A−I抗体で前処理し、
得られたアポ蛋白A−I中のCETPを抗CETPポリ
クローナル抗体を用いる免疫学的手法により測定すれば
簡便な操作で極めて精度良く検体中のCETPが定量で
きることを見出し本発明を完成するに至った。
Means for Solving the Problems Accordingly, the present inventors have:
Various studies have been conducted to develop a means for removing factors affecting the CETP measurement value in blood by a simple operation, and a sample such as plasma is pretreated with an anti-apoprotein AI antibody,
The present inventors have found that CETP in the obtained apoprotein AI can be quantified with high precision by a simple operation if the CETP in the obtained apoprotein AI is measured by an immunological technique using an anti-CETP polyclonal antibody, thereby completing the present invention. .

【0010】すなわち、本発明は検体に抗アポ蛋白A−
I抗体を作用させてアポ蛋白A−Iを得、次いで当該ア
ポ蛋白A−Iより抗CETPポリクローナル抗体に結合
するリポ蛋白を検出することを特徴とする検体中のCE
TPの測定法を提供するものである。また、本発明は抗
アポ蛋白A−I抗体及び抗CETPポリクローナル抗体
を含有するCETP測定用キットを提供するものであ
る。
That is, the present invention relates to a method for preparing an anti-apoprotein A-
Reacting the antibody I to obtain apoprotein AI, and then detecting a lipoprotein that binds to the anti-CETP polyclonal antibody from the apoprotein AI;
It provides a method for measuring TP. The present invention also provides a kit for measuring CETP containing an anti-apoprotein AI antibody and an anti-CETP polyclonal antibody.

【0011】本発明の測定法において、検体よりアポ蛋
白A−Iを取得するために用いられる抗アポ蛋白A−I
抗体としては、モノクローナル抗体及びポリクローナル
抗体のいずれでもよいが、モノクローナル抗体が好まし
い。抗アポ蛋白A−I抗体の調製は、常法、例えばポリ
クローナル抗体はアポ蛋白A−Iを摂取して抗血清を得
る方法により、またモノクローナル抗体は精製アポ蛋白
A−Iを免疫原として用いる細胞融合法によって行うこ
とができる。ここで免疫原としての精製アポ蛋白A−I
は、公知であり、常法に従い調製され〔Advance
Lipid Research,,1−68(19
68)〕、ヒト血清を超遠心により、比重1.063〜
1.210のHDLを分取し、これをゲル濾過により分
子量約28000の分画を得、更にゲル濾過より精製し
て得られる。抗アポ蛋白A−Iモノクローナル抗体の製
法としては、Hanfland,P.,Chem.Ph
ys.Lipids,15,105(1975);Ha
nfland,P.,Chem.Phys.Lipid
s,10,201(1976);Koscielak,
J.,Eur.J.Biochem.,37,214
(1978)及び特開昭60−253871号公報に記
載された方法を採用できる。特開昭60−253871
号公報記載の方法で得られた抗アポ蛋白A−Iモノクロ
ーナル抗体は、免疫グロブリンサブクラスがIgG1
属し、HDLと強く反応し、VLDL及びLDLと実質
的に反応しない特徴を有しており、特に好ましい。
In the method of the present invention, the anti-apoprotein AI used for obtaining the apoprotein AI from the sample is used.
The antibody may be either a monoclonal antibody or a polyclonal antibody, but a monoclonal antibody is preferred. Preparation of anti-apoprotein AI antibody is carried out by a conventional method, for example, polyclonal antibody is obtained by ingesting apoprotein AI to obtain antiserum, and monoclonal antibody is obtained by using purified apoprotein AI as immunogen. It can be performed by a fusion method. Here, purified apoprotein AI as an immunogen
Is known and is prepared according to a conventional method [Advanced
Lipid Research, 6 , 1-68 (19
68)], the human serum was subjected to ultracentrifugation to obtain a specific gravity of 1.063 to
An HDL having a molecular weight of about 1.210 is collected, fractionated by gel filtration to obtain a fraction having a molecular weight of about 28,000, and further purified by gel filtration. A method for producing an anti-apoprotein AI monoclonal antibody is described in Hanland, P .; Chem. Ph
ys. Lipids, 15 , 105 (1975); Ha
nland, P .; Chem. Phys. Lipid
s, 10 , 201 (1976); Koskielak,
J. , Eur. J. Biochem. , 37 , 214
(1978) and JP-A-60-253871. JP-A-60-253871
Anti apoprotein A-I monoclonal antibody obtained by the method described in JP an immunoglobulin subclasses belonging to IgG 1, reacted strongly with HDL, has a characteristic that does not substantially react with VLDL and LDL, Particularly preferred.

【0012】本発明の測定法に使用される抗CETPポ
リクローナル抗体としては、精製CETPを免疫原とし
て、マウス、ラット、モルモット、ウサギ、ヒツジ、ヤ
ギ、ウマ、ウシ等の動物に感作させて得られる抗血清、
これらより分離されたイムノグロブリン(例えばIg
G、IgM等)、この加工品であるF(ab′)2 、F
(ab′)、F(ab)等が挙げられる。
The anti-CETP polyclonal antibody used in the assay of the present invention can be obtained by sensitizing purified CETP as an immunogen to animals such as mice, rats, guinea pigs, rabbits, sheep, goats, horses, cows, etc. Antiserum,
Immunoglobulins separated therefrom (for example, Ig
G, IgM, etc.), and F (ab ') 2 , F
(Ab '), F (ab) and the like.

【0013】ここで免疫原として用いられる精製CET
Pは、例えばヒト血漿を比重1.25以上の分画に濃度
勾配超遠心法、連続的等密度超遠心法などの超遠心法に
より分画した画分をアフィニティークロマトグラフィ
ー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過、硫酸ア
ンモニウム分画、塩析等の通常の手段により精製するこ
とにより得られる。かかるCETPの精製はヤマシタら
の方法〔Yamashita,S.,et al.,C
linica Chimica Acta,194,1
45−160(1990)〕を採用するのが好ましい。
より具体的には、ヒト血漿を超遠心機にて46000rp
m で4℃で48時間、比重1.21g/ml以上で超遠心
を行い、得られた血漿の比重1.21g/ml以上のフラ
クションを4mol /l NaClで平衡化したフェニル
セファロースCL−4Bカラム(2.5×20cm)等の
セファロースカラムを用いてクロマトグラフィーで分離
することができる。カラムを50mmol/lトリス−塩
酸、150mmol/l NaCl、0.02%NaN3
pH7.4のトリス−塩酸緩衝液で洗浄抽出後、カラムに
結合した蛋白を水で抽出し、活性画分を含有するフラク
ションを50mmol/l酢酸ナトリウム(pH7.5)で平
衡化したCM−セルロースカラム(CM−52)(2.
5×20cm)にかけて分離し、50mmol/l酢酸ナトリ
ウム、0.02%NaN3 、1mg/ml EDTA−2N
a(pH4.5)中にてNaClの600ml直線濃度勾配
にて溶出することができる。溶出フラクションは、1ml
の1mmol/lトリス−塩酸(pH8.5)に含有するチュ
ーブ中に集めて中和し、活性画分を含有するフラクショ
ンを吸着させ、トリス/NaCl緩衝液に対して透析し
た後、アミコンPM30膜で超濾過することにより10
00倍に精製されたCETPを得ることができる。
The purified CET used here as an immunogen
P is a fraction obtained by fractionating human plasma into fractions having a specific gravity of 1.25 or more by ultracentrifugation such as concentration gradient ultracentrifugation, continuous isopycnic ultracentrifugation, affinity chromatography, ion exchange chromatography, It is obtained by purification by usual means such as gel filtration, ammonium sulfate fractionation and salting out. Purification of such CETP is performed according to the method of Yamashita et al. [Yamashita, S .; , Et al. , C
linica Chimica Acta, 194 , 1
45-160 (1990)].
More specifically, human plasma was subjected to 46,000 rp in an ultracentrifuge.
Ultracentrifugation at a specific gravity of 1.21 g / ml or more at 48 ° C. for 48 hours at 4 ° C., and a phenyl sepharose CL-4B column equilibrated with a fraction having a specific gravity of 1.21 g / ml or more with 4 mol / l NaCl. (2.5 × 20 cm) and can be separated by chromatography using a Sepharose column. The column 50 mmol / l Tris - HCl, 150mmol / l NaCl, 0.02% NaN 3,
After washing and extraction with a pH 7.4 Tris-HCl buffer, the protein bound to the column was extracted with water, and the fraction containing the active fraction was CM-cellulose equilibrated with 50 mmol / l sodium acetate (pH 7.5). Column (CM-52) (2.
5 × 20 cm), 50 mmol / l sodium acetate, 0.02% NaN 3 , 1 mg / ml EDTA-2N
a (pH 4.5) can be eluted with a linear gradient of 600 ml of NaCl. Elution fraction is 1 ml
Collected in a tube containing 1 mmol / l Tris-hydrochloric acid (pH 8.5), neutralized, adsorbed the fraction containing the active fraction, dialyzed against Tris / NaCl buffer, and then treated with Amicon PM30 membrane. 10 by ultrafiltration
It is possible to obtain a CETP that has been purified by a factor of 00.

【0014】精製CETPを用いて抗CETPポリクロ
ーナル抗体を得るには、例えば精製CETPにPBS
(リン酸緩衝生理食塩水)等の緩衝液を加えて適当な濃
度に調整した後、これにフロインドの完全アジュバンド
液などのアジュバンドを等量加えて懸濁液を作成し、こ
の懸濁液を上記の哺乳動物に適当量ずつ、例えばCET
P量として1回量20〜1000μg /匹となる量で、
2週間毎に皮下投与して免疫する。これを6回くり返し
て免疫後、動物より全採血して抗血清を得ることにより
行うことができる。かくして得られた抗血清はアフィニ
ティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフ
ィー、ゲル濾過、硫酸アンモニウム分画、塩析等の通常
の手段により精製することができる。
In order to obtain an anti-CETP polyclonal antibody using purified CETP, for example, PBS can be added to purified CETP.
(Phosphate-buffered saline) and the like to adjust to an appropriate concentration, and then add an equal amount of an adjuvant such as Freund's complete adjuvant solution to prepare a suspension. The solution is added to the above mammal in an appropriate amount, for example, CET.
The amount of P is 20 to 1000 μg / animal per dose.
Immunization is performed by subcutaneous administration every two weeks. This can be performed by repeating the procedure six times and immunizing, and then collecting whole blood from the animal to obtain an antiserum. The antiserum thus obtained can be purified by usual means such as affinity chromatography, ion exchange chromatography, gel filtration, ammonium sulfate fractionation and salting out.

【0015】本発明の測定法において、検体としては血
液、細胞組織液等を例示でき、これらのうちでは血液、
特に空腹時の血清又は血漿が好ましく、これらは被検者
より、採血後、常法に従い調製できる。
In the measurement method of the present invention, examples of the specimen include blood, cell tissue fluid, and the like.
In particular, fasting serum or plasma is preferable, and these can be prepared from a subject by collecting blood from a subject according to a conventional method.

【0016】本発明の測定法を実施するには、まず検体
に抗アポ蛋白A−I抗体を作用させて検体よりアポ蛋白
A−Iを取得する。当該アポ蛋白A−Iの取得手段は、
特に制限されないが、抗アポ蛋白A−I抗体を不溶性担
体に固定化したアフィニティーゲルを用いる方法が好ま
しい。より具体的には、抗アポ蛋白A−I抗体を結合さ
せたアフィニティーゲル混合物に検体を加えて反応さ
せ、アポ蛋白A−I不溶化抗体複合体を形成させ、適当
な洗浄液で非結合物を分離した後、アポ蛋白A−I不溶
化抗体複合体からアポ蛋白A−Iと抗アポ蛋白A−I抗
体とを分離すればよい。
In order to carry out the measurement method of the present invention, first, an anti-apoprotein AI antibody is allowed to act on a sample to obtain apoprotein AI from the sample. The means for obtaining the apoprotein AI includes:
Although not particularly limited, a method using an affinity gel in which an anti-apoprotein AI antibody is immobilized on an insoluble carrier is preferable. More specifically, a sample is added to the affinity gel mixture to which the anti-apoprotein A-I antibody has been bound and reacted, to form an apoprotein A-I insolubilized antibody complex, and the unbound substance is separated with an appropriate washing solution. After that, the apoprotein AI and the anti-apoprotein AI antibody may be separated from the apoprotein AI insolubilized antibody complex.

【0017】ここで用いるアフィニティーゲルは、通常
の方法で調製できる。例えば抗アポ蛋白A−I抗体をブ
ロモシアン等で活性化させたアフィニティーゲルにカッ
プリングさせ、その後両者を混合し、適当な緩衝液にて
平衡化する。ここで用いられるアフィニティーゲルの代
表例としては、例えば予めブロモシアン等で活性化され
たセファロース4B(ファルマシアLKB社製)等を例
示でき、カップリング反応は、当該ゲルと蛋白とのカッ
プリング反応に慣用される常法に従い、通常pH7〜7.
5の範囲でゲル1ml当り約10〜100μmol の抗アポ
蛋白A−I抗体を用いて、室温(約20〜25℃)下に
2時間以内で実施できる。このようにして調製されたア
フィニティーゲル混合物は、そのまま又は振盪及び遠心
分離が可能なチューブに予め適当な緩衝液、例えば0.
01Mトリス−塩酸緩衝液(pH7.4)、0.15M
NaCl等の緩衝液でゲルを平衡化しておくのが好まし
い。更にこの緩衝液には、例えばアジ化ナトリウム等の
通常使用される保存剤を含ませることができる。
The affinity gel used here can be prepared by a usual method. For example, an anti-apoprotein AI antibody is coupled to an affinity gel activated with bromocyan or the like, and then both are mixed and equilibrated with an appropriate buffer. As a typical example of the affinity gel used here, for example, Sepharose 4B (manufactured by Pharmacia LKB) activated with bromocyan or the like can be exemplified. The coupling reaction is commonly used for the coupling reaction between the gel and the protein. The pH is usually 7-7.
The reaction can be performed within 2 hours at room temperature (about 20 to 25 ° C.) using about 10 to 100 μmol of the anti-apoprotein AI antibody per ml of gel in the range of 5. The affinity gel mixture thus prepared can be used as it is or in a tube that can be shaken and centrifuged beforehand with an appropriate buffer solution, for example, 0.1 mL.
01M Tris-HCl buffer (pH 7.4), 0.15M
It is preferable to equilibrate the gel with a buffer such as NaCl. Further, the buffer may contain commonly used preservatives such as, for example, sodium azide.

【0018】得られたアフィニティーゲル混合物と検体
との反応は、例えばアフィニティーゲル混合物を振盪及
び遠心分離が可能な容器に入れ、適当な緩衝液で平衡化
させた後、該容器内に所定量の検体を加え、室温で静置
又は振盪することにより行われる。反応後、比較的低速
度(800〜1000rpm )で遠心分離して上清を除去
し、沈渣を取得すればアポ蛋白A−I不溶化抗体複合体
が得られる。得られた複合体からアポ蛋白A−Iを分離
するには、上記残渣を通常用いられる固相−液相の分
離、例えば遠心分離、濾別、デカンテーション、洗浄等
に付すことにより行うことができる。より具体的には、
PBS(pH7.2)等で洗浄し、非抗体結合物を除去し
た後、抗アポ蛋白A−I抗体結合複合体をアポ蛋白A−
Iと抗体結合アフィニティーゲルとに分離する為に3M
チオシアン酸ナトリウム(pH7.4)等の抗体分離溶液
で溶出することによりアポ蛋白A−Iを分離することが
できる。上記の如くして得られるアポ蛋白A−Iは、塩
析、ゲル濾過法、アフィニティークロマトグラフィー等
の通常の手段により更に精製することができる。上記の
操作により、被測定物質CETPを含有するアポ蛋白A
−Iは高い回収率で取得される。
The reaction between the obtained affinity gel mixture and the sample is carried out, for example, by placing the affinity gel mixture in a container capable of shaking and centrifuging, equilibrating with an appropriate buffer, and then adding a predetermined amount of This is performed by adding a sample and allowing the mixture to stand or shake at room temperature. After the reaction, the supernatant is removed by centrifugation at a relatively low speed (800 to 1000 rpm), and the apoprotein AI-insolubilized antibody complex is obtained by collecting the precipitate. The apoprotein AI can be separated from the obtained complex by subjecting the residue to solid phase-liquid phase separation which is usually used, for example, centrifugation, filtration, decantation, washing and the like. it can. More specifically,
After washing with PBS (pH 7.2) or the like to remove non-antibody-bound substances, the anti-apoprotein AI antibody-bound complex was
3M for separation into I and antibody binding affinity gel
Apoprotein AI can be separated by elution with an antibody separation solution such as sodium thiocyanate (pH 7.4). The apoprotein AI obtained as described above can be further purified by usual means such as salting out, gel filtration, affinity chromatography and the like. By the above operation, apoprotein A containing the substance to be measured CETP
-I is obtained with high recovery.

【0019】次に得られたアポ蛋白A−Iより抗CET
Pポリクローナル抗体に結合するリポ蛋白を検出するに
は、抗CETPポリクローナル抗体を用いた通常の免疫
学的手段、例えば競合法、サンドイッチ法によるラジオ
イムノアッセイ(RIA)法、免疫測定法(ELIS
A)、凝集法等の免疫学的手法により行うことができる
が、抗CETPポリクローナル抗体を固定化した不溶性
担体に上記リポ蛋白分子を接触させ、次いでこれに標識
抗CETPポリクローナル抗体を反応させ、該担体中の
反応生成物の標識量を測定することにより行うのが好ま
しい。
Next, anti-CET was obtained from the obtained apoprotein AI.
In order to detect a lipoprotein that binds to the P polyclonal antibody, usual immunological means using an anti-CETP polyclonal antibody, for example, a competition method, a radioimmunoassay (RIA) method by a sandwich method, an immunoassay method (ELIS
A), which can be performed by an immunological technique such as an agglutination method. The lipoprotein molecule is brought into contact with an insoluble carrier on which an anti-CETP polyclonal antibody is immobilized, and then a labeled anti-CETP polyclonal antibody is reacted therewith. It is preferable to carry out the measurement by measuring the labeling amount of the reaction product in the carrier.

【0020】ここで抗CETPポリクローナル抗体の固
定化は、常法に従い抗体を不溶性担体に物理的又は化学
的に結合させることにより行われる。固定化のための不
溶性担体としては、例えばポリスチレン、セファデック
ス、イオン交換樹脂、プラスチックチューブ、アミノ共
重合体等を使用でき、不溶化は共有結合法としてのジア
ゾ法、ペプチド法、アルキル化法、架橋試薬による担体
結合法、Ugi反応による担体結合法等の化学反応、或
いはイオン交換樹脂のような担体を用いるイオン結合
法、ガラスビーズ等の多孔性ガラスを担体として用いる
物理的吸着法等によって行うこともできるが、洗浄及び
多数の検体を同時処理する際の操作性等の点から、96
ウエルプラスチックプレートを用いるのが好ましい。
Here, the immobilization of the anti-CETP polyclonal antibody is performed by physically or chemically binding the antibody to an insoluble carrier according to a conventional method. As the insoluble carrier for immobilization, for example, polystyrene, Sephadex, ion exchange resin, plastic tube, amino copolymer, etc. can be used, and the insolubilization is performed by a diazo method, a peptide method, an alkylation method, a cross-linking method as a covalent bond method. Carrier binding method using reagents, chemical reaction such as carrier binding method by Ugi reaction, or ion binding method using a carrier such as ion exchange resin, physical adsorption method using porous glass such as glass beads as a carrier However, from the viewpoint of operability when washing and simultaneously processing a large number of samples, 96
Preferably, a well plastic plate is used.

【0021】上記抗CETPポリクローナル抗体を標識
するために用いられる標識剤としては、通常の標識剤、
例えばヨウ素アイソトープ(例えば125I、131I)、14
C、トリチウム等の放射性アイソトープ;フルオレッセ
インイソシアネート、フルオレッセインイソチオシアネ
ート、ローダミン等の蛍光物質;ペルオキシダーゼ、ア
ルカリフォスファターゼ、β−D−ガラクトシダーゼ、
グルコースオキシダーゼ、ペニシリナーゼ等の酵素が挙
げられるが、試薬をキット化するには酵素が好ましい。
該酵素は、既に市販のパーオキシダーゼ(POD)、β
−D−ガラクトシダーゼ、酸性フォスファターゼ、アル
カリフォスファターゼ等を使用できる。これらの標識剤
で上記抗CETPポリクローナル抗体を標識するには自
体公知の方法が採用される。
The labeling agent used for labeling the above-mentioned anti-CETP polyclonal antibody includes a conventional labeling agent,
For example, iodine isotopes (eg, 125 I, 131 I), 14
C, radioactive isotopes such as tritium; fluorescent substances such as fluorescein isocyanate, fluorescein isothiocyanate and rhodamine; peroxidase, alkaline phosphatase, β-D-galactosidase,
Enzymes such as glucose oxidase and penicillinase can be mentioned, but enzymes are preferred for kitting reagents.
The enzyme is already commercially available peroxidase (POD), β
-D-galactosidase, acid phosphatase, alkaline phosphatase and the like can be used. For labeling the anti-CETP polyclonal antibody with these labeling agents, a method known per se is employed.

【0022】測定系に利用される溶媒としては、反応に
悪影響を与えない通常の各種のものをいずれも利用で
き、例えばクエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、トリス酸緩
衝液、酢酸緩衝液等のpHが約5.0〜9.0程度の緩衝
液を用いるのが好ましい。尚、本発明においては、上記
溶媒に、約0.1〜30w/v%程度の血清(測定対象
のCETPが含まれていないもの)及び/又は約0.1
〜2M程度のNaClを含ませるのが、本発明測定法の
目的により合致していて好ましい。
As the solvent used in the measurement system, any of various ordinary solvents which do not adversely affect the reaction can be used. For example, citrate buffer, phosphate buffer, tris acid buffer, acetate buffer, etc. It is preferable to use a buffer having a pH of about 5.0 to 9.0. In the present invention, the solvent contains about 0.1 to 30% w / v of serum (containing no CETP to be measured) and / or about 0.1% w / v.
It is preferable to include about 2 M of NaCl, because it is more consistent with the purpose of the measurement method of the present invention.

【0023】CETP検出の際の免疫反応条件は、特に
制限はなく、通常のこの種の測定法と同様のものとする
ことができる。一般には45℃以下、好ましくは約4〜
40℃程度の温度条件下に、約1〜80時間程度反応を
行えばよい。免疫反応終了後の固相−液相(前記サンド
イッチ法での反応複合体と標識抗体との結合体−非結合
標識抗体)の分離は、例えば遠心分離、濾別、デカンテ
ーション、洗浄等の通常の方法により行うことができ
る。
The immune reaction conditions for detecting CETP are not particularly limited, and may be the same as those of a usual measurement method of this type. Generally below 45 ° C, preferably about 4 to
The reaction may be performed at a temperature of about 40 ° C. for about 1 to 80 hours. Separation of the solid-liquid phase (combination of the reaction complex and the labeled antibody in the sandwich method-unbound labeled antibody) after the completion of the immune reaction is performed by, for example, centrifugation, filtration, decantation, washing, and the like. It can be performed by the method of.

【0024】かくして分離された担体中の反応生成物の
標識量を測定するには、標識剤の種類により異なるが、
標識剤が酵素の場合には、更に発色試薬を共存させて発
色反応に導き、当該色素量を測定することにより行うこ
ともできる。その際用いられる発色溶液としては、例え
ばo−フェニレンジアミン、o−ニトロフェニル−β−
D−ガラクトシド、チラミン、2,2′−アジノ−ビス
−3−エチルベンズチアゾリン−6−スルホン酸(AB
TS)、N−エチル−N−スルホプロピル−m−アニシ
ジン(ADPS)、p−ニトロフェニルリン酸等を例示
できる。例えば酵素としてパーオキシダーゼを用いる場
合には、o−フェニレンジアミン(OPD)等を用いる
ことができ、発色反応の停止も常法に従い、例えば反応
液に1〜4Nの硫酸等の適当な酵素活性阻害剤を添加す
ることにより実施できる。得られた標識量から検体中の
CETP量を求めるには、予め検量線を作成しておき、
これと対比することにより行うのが好ましい。
In order to measure the amount of the reaction product in the carrier thus separated, the amount varies depending on the type of the labeling agent.
When the labeling agent is an enzyme, it can be carried out by further coexisting a coloring reagent to lead to a coloring reaction and measuring the amount of the dye. Examples of the coloring solution used in this case include o-phenylenediamine, o-nitrophenyl-β-
D-galactoside, tyramine, 2,2'-azino-bis-3-ethylbenzthiazoline-6-sulfonic acid (AB
TS), N-ethyl-N-sulfopropyl-m-anisidine (ADPS), p-nitrophenylphosphoric acid and the like. For example, when peroxidase is used as the enzyme, o-phenylenediamine (OPD) or the like can be used, and the coloration reaction can be stopped according to a conventional method. It can be carried out by adding an agent. In order to determine the amount of CETP in the sample from the obtained amount of label, a calibration curve is created in advance,
It is preferable to carry out by contrasting this.

【0025】上記CETPの測定法の実施に特に便利な
方法として、CETP検出のためのキットを利用する方
法がある。該キットとしては、抗アポ蛋白A−I抗体を
含む試薬と、抗CETPポリクローナル抗体を含む試薬
を組み合わせたキットが好ましい。該キットには第1試
薬として、前記抗アポ蛋白A−I抗体をアフィニティー
ゲルとして供給し、反応用緩衝液を同時に供給するのが
好ましい。また、第2試薬としては、不溶性担体に固定
化した抗CETPポリクローナル抗体と標識抗CETP
ポリクローナル抗体とを供給するのがより好ましい。
尚、本キットには、実測値に悪影響を与えないかぎり、
更に必要に応じてサッカロース、グリセロール、牛血清
蛋白等の安定化剤及び/又は保存剤を添加することがで
きる。また抗体試薬は、凍結乾燥してもよく、該キット
には水溶性もしくは水と混和し得る溶媒を含有させるこ
ともできる。更に抗体試薬には、測定時に再構成された
試薬系を一定のpHに保つための緩衝液及び/又は検体が
悪化するのを防止するための保存剤及び/又は安定剤を
配合することもできる。緩衝液はキット試薬の必須成分
ではないが、本発明測定法を実施する際に、pHを約5.
0〜9.0程度とするものを用いるのが好ましい。また
再構成剤は、好ましくは水を含んだものであるが、該水
の一部又は全部を水と混和し得る溶媒で置き換えること
もできる。この水と混和し得る溶媒としては、グリセリ
ン、アルコール類、グリコールエーテル類等を例示する
ことができる。
As a particularly convenient method for carrying out the above CETP measurement method, there is a method using a kit for detecting CETP. The kit is preferably a kit in which a reagent containing an anti-apoprotein AI antibody and a reagent containing an anti-CETP polyclonal antibody are combined. It is preferable that the kit is supplied with the anti-apoprotein AI antibody as an affinity gel as a first reagent and a reaction buffer at the same time. As the second reagent, an anti-CETP polyclonal antibody immobilized on an insoluble carrier and a labeled anti-CETP
More preferably, a polyclonal antibody is provided.
In addition, as long as the measured value is not adversely affected,
Further, if necessary, a stabilizer and / or a preservative such as saccharose, glycerol, bovine serum protein and the like can be added. The antibody reagent may be freeze-dried, and the kit may contain a water-soluble or water-miscible solvent. Further, the antibody reagent may contain a buffer solution for maintaining the reagent system reconstituted at the time of measurement at a constant pH and / or a preservative and / or a stabilizer for preventing deterioration of the sample. . Although the buffer is not an essential component of the kit reagent, when performing the measurement method of the present invention, the pH is adjusted to about 5.
It is preferable to use one having a value of about 0 to 9.0. The reconstituting agent preferably contains water, but part or all of the water can be replaced with a solvent miscible with water. Examples of the water-miscible solvent include glycerin, alcohols, glycol ethers and the like.

【0026】[0026]

【発明の効果】本発明方法によれば、臨床血液サンプル
等の微量のCETPを含有する試料を検体として、該検
体中のCETPをアルブミン、グロブリン等の妨害物質
の影響を受けることなく、高精度、高感度をもって、し
かも簡便な操作で定量することができる。
According to the method of the present invention, a sample containing a very small amount of CETP, such as a clinical blood sample, is used as a sample, and the CETP in the sample can be analyzed with high precision without being affected by interfering substances such as albumin and globulin. It can be quantified with high sensitivity and simple operation.

【0027】[0027]

【実施例】以下に、参考例及び実施例を挙げて本発明を
更に詳細に説明する。
The present invention will be described below in more detail with reference to Reference Examples and Examples.

【0028】参考例1 抗ヒトアポ蛋白A−Iモノクローナル抗体アフィニティ
ーゲルの調製 抗ヒトアポ蛋白A−Iモノクローナル抗体は、特開昭6
0−253871号公報の実施例で得られた精製抗ヒト
アポ蛋白A−Iモノクローナル抗体(IgGサブクラス
がIgG1 )を用いた。抗体結合用アフィニティーゲル
はセファロース4B(ファルマシアLKB社製)を用い
た。予め、ブロムシアンにて活性化したセファロース4
Bを0.01Mトリス塩酸緩衝液(pH7.4)中にて抗
ヒトアポ蛋白A−Iモノクローナル抗体とゲルとをゲル
1ml当り各抗体蛋白量として5mgずつと、pH7.5で、
室温にて、2時間カップリング反応させて、抗ヒトアポ
蛋白A−Iモノクローナル抗体結合アフィニティーゲル
の混合物を20ml得た。この混合物を50mlの遠心分離
用チューブ中にて、0.01Mトリス塩酸緩衝液(pH
7.4)及び0.15M NaClの緩衝液中で平衡化
し、4℃で保存した。
Reference Example 1 Preparation of affinity gel for anti-human apoprotein A-I monoclonal antibody
The purified anti-human apoprotein A-I monoclonal antibody (IgG subclass is IgG 1 ) obtained in Examples of 0-253871 was used. Sepharose 4B (Pharmacia LKB) was used as the affinity gel for antibody binding. Sepharose 4 previously activated with Bromcian
B was added to an anti-human apoprotein AI monoclonal antibody and a gel in 0.01M Tris-HCl buffer (pH 7.4) at a pH of 7.5 by adding 5 mg of each antibody protein / ml to the gel.
The mixture was subjected to a coupling reaction at room temperature for 2 hours to obtain 20 ml of a mixture of affinity gels binding anti-human apoprotein AI monoclonal antibody. This mixture is placed in a 50 ml centrifuge tube in 0.01 M Tris-HCl buffer (pH
Equilibrated in buffer of 7.4) and 0.15 M NaCl and stored at 4 ° C.

【0029】参考例2 ヒトCETPの精製 正常ヒト血漿300mlを超遠心機(機種名:55P−7
2,日立製作所社製)にて46000rpm の速さで4℃
で48時間比重1.21g/ml以上で連続的等密度超遠
心を行い、得られた血漿の比重1.21g/ml以上のフ
ラクションを予め4mol /l NaClで平衡化したフ
ェニルセファロースCL−4Bカラム(2.5×20c
m;ファルマシアLKB社製)のセファロースカラムに
掛けてクロマトグラフィーを行った。次にカラムを50
mmol/lトリス−塩酸、150mmol/l NaCl、
0.02%NaN3 、pH7.4のトリス−塩酸緩衝液で
洗浄抽出後、カラムに結合した蛋白を水で抽出し、活性
画分を含有するフラクションを50mmol/l酢酸ナトリ
ウム(pH7.5)で平衡化したCM−セルロースカラム
(CM−52)(2.5×20cm;ファルマシアLKB
社製)にかけて分離し、50mmol/l酢酸ナトリウム、
0.02%NaN3 、1mg/ml EDTA−2Na(pH
4.5)中にてNaClの600mlの直線濃度勾配にて
溶出した。溶出フラクションは、1mlの1mmol/lトリ
ス−塩酸(pH8.5)に含有するチューブ中に集めて中
和し、活性画分を含有するフラクションを吸着させ、ト
リス/NaCl緩衝液に対して透析した後、アミコンP
M30膜で超濾過した。上記操作により1000倍に精
製されたCETPを得た。
Reference Example 2 Purification of human CETP 300 ml of normal human plasma was subjected to an ultracentrifuge (model name: 55P-7).
2, Hitachi, Ltd.) at 46000 rpm at 4 ° C
Phenyl sepharose CL-4B column which was subjected to continuous isopycnic ultracentrifugation at a specific gravity of 1.21 g / ml or more for 48 hours, and a fraction of the obtained plasma having a specific gravity of 1.21 g / ml or more equilibrated with 4 mol / l NaCl in advance. (2.5 × 20c
m; manufactured by Pharmacia LKB) and chromatographed on a Sepharose column. Then add 50 columns
mmol / l Tris-HCl, 150 mmol / l NaCl,
0.02% NaN 3, Tris pH 7.4 - washed extracted with HCl buffer, the protein bound to the column was extracted with water, the active fraction fraction 50 mmol / l sodium acetate containing (pH 7.5) -Cellulose column (CM-52) equilibrated with (2.5 × 20 cm; Pharmacia LKB)
50 mmol / l sodium acetate,
0.02% NaN 3 , 1 mg / ml EDTA-2Na (pH
The mixture was eluted with a linear gradient of 600 ml of NaCl in 4.5). The eluted fraction was collected in a tube containing 1 ml of 1 mmol / l Tris-hydrochloric acid (pH 8.5) and neutralized, the fraction containing the active fraction was adsorbed, and dialyzed against Tris / NaCl buffer. Later, Amicon P
Ultrafiltered through a M30 membrane. By the above operation, 1000 times purified CETP was obtained.

【0030】参考例3 抗ヒトCETPポリクローナル抗体の調製 参考例2で得られた精製CETP2mg/mlとフロインド
の完全アジュバンド(Freud’s Complel
e adjuvant)(ナカライテスク社製)を等量
混合し、ウサギ四肢及び背中の皮膚数十ケ所に注射して
免疫した。2ケ月〜3ケ月の間に5〜6回同様に投与し
た。最終投与2週間後に全血液を採取し、その血清を取
得した。
Reference Example 3 Preparation of anti-human CETP polyclonal antibody Purified CETP (2 mg / ml) obtained in Reference Example 2 and Freund's complete adjuvant (Freud's Complete)
Eadjuvant (manufactured by Nacalai Tesque, Inc.) was mixed in equal amounts, and the mixture was injected into dozens of rabbit limbs and back skin to immunize. The same administration was performed 5 to 6 times during 2 to 3 months. Two weeks after the final administration, whole blood was collected, and the serum was obtained.

【0031】参考例4 抗ヒトCETPポリクローナル抗体固定化イムノプレー
トの調製 参考例3で得られた血清を50%飽和硫酸アンモニウム
で塩析分画し、沈澱を少量のPBS緩衝液に溶解して、
同緩衝液に対して4℃で24〜28時間、外液を数回交
換しながら透析を行った。透析後4℃、3000rpm 、
10分間遠心分離を行った上清をプレフィルターを通
し、0.0175M PBS(pH6.3)で平衡化した
DEAEセルロースに付加した。溶出してくる画分を吸
光度280nmで測定し、蛋白画分を集めこれに0.1M
PBSを1/9量加えて4℃で保存した。IgG0.
1mg/mlの0.05%チメロサール含有0.01M P
BS100μl /wellをイムノプレートに入れ、4℃2
日間固定化し、0.1%BSA含有0.01M PBS
で3回洗浄した。1%BSA、5%D−ソルビトール、
0.05%チメロサール含有0.01M PBS200
μl /wellで4℃24時間インキュベートし、ブロック
する。更にプレートは凍結乾燥して用いた。
Reference Example 4 Preparation of Immunoplate Immobilized with Anti-Human CETP Polyclonal Antibody The serum obtained in Reference Example 3 was subjected to salting out and fractionation with 50% saturated ammonium sulfate, and the precipitate was dissolved in a small amount of PBS buffer.
Dialysis was performed against the same buffer at 4 ° C. for 24 to 28 hours while exchanging the external solution several times. After dialysis, 4 ° C, 3000 rpm,
The supernatant after centrifugation for 10 minutes was passed through a prefilter and added to DEAE cellulose equilibrated with 0.0175 M PBS (pH 6.3). The eluted fraction was measured at an absorbance of 280 nm, and the protein fraction was collected and 0.1 M
1/9 volume of PBS was added and stored at 4 ° C. IgG0.
0.01M P containing 1mg / ml 0.05% thimerosal
Put 100 μl / well of BS into immunoplate,
Immobilized for 0.01 days, 0.01M PBS containing 0.1% BSA
And washed three times. 1% BSA, 5% D-sorbitol,
0.01M PBS200 containing 0.05% thimerosal
Incubate at 4 ° C. for 24 hours at μl / well and block. Further, the plate was used after freeze-drying.

【0032】参考例5 ペルオキシダーゼ標識ヒトCETPポリクローナル抗体
の調製 a)抗CETPポリクローナル抗体F(ab′)フラグ
メントの調製 参考例3で得られた精製抗体のIgGを0.1M Na
Clを含む0.1M酢酸ナトリウム緩衝液(pH4.5)
に対して透析をした。この溶液をブタ胃・ペプシン(シ
グマ社製)をIgG量の4%添加溶解し、37℃で約1
8時間反応させ、次いで1N NaOHでpH8.0に調
整して、0.1M NaClを含む0.1Mホウ酸ナト
リウム緩衝液(pH8.0)で平衡化したウルトロゲルA
cA44(1.5×45cm;IBFバイオテクニクス社
製)のカラムに付した。F(ab′)2 のピークを回収
後、これを限外濾過により約5mg/mlにまで濃縮し、5
mMEDTAを含む0.1Mリン酸緩衝液(pH6.0)に
対して透析を行った。透析後、0.1M 2−メルカプ
トエチルアミン及び5mM EDTAを含む0.1Mリン
酸緩衝液(pH6.0)を9分の1容添加し、37℃、9
0分反応させた。ついでこれを50mM EDTA及び
0.1M NaClを含む0.1Mリン酸緩衝液で平衡
化したセファデックスG−25ゲル(1×30cm;ファ
ルマシアLKB社製)のカラムに付し、F(ab′)画
分を回収した。回収したF(ab′)画分を限外濾過で
濃縮して、2.5mM EDTAを含む0.1Mリン酸緩
衝液で透析した。得られたフラグメントを0.1%SD
S(ドデシル硫酸ナトリウム:ナカライテスク社製)の
存在下にて、7.5%PAGE(ポリアクリルアミドゲ
ル電気泳動)分析を行い、精製した抗体フラグメントの
分子量を確認した。SDS−PAGEの結果、分子量約
75kdの位置にバンドを確認したことから、抗体フラグ
メントは予想した分子量を持つことが確認された。
Reference Example 5 Preparation of peroxidase-labeled human CETP polyclonal antibody a) Preparation of anti-CETP polyclonal antibody F (ab ') fragment The purified antibody obtained in Reference Example 3 was replaced with 0.1 M Na
0.1 M sodium acetate buffer containing Cl (pH 4.5)
Was dialyzed against. This solution was dissolved by adding pig stomach / pepsin (manufactured by Sigma) at 4% of the IgG amount, and the solution was added at 37 ° C. for about 1 hour.
8 hours, then adjusted to pH 8.0 with 1N NaOH, and equilibrated with 0.1 M sodium borate buffer (pH 8.0) containing 0.1 M NaCl.
It was applied to a column of cA44 (1.5 × 45 cm; manufactured by IBF Biotechnics). After collecting the F (ab ') 2 peak, it was concentrated to about 5 mg / ml by ultrafiltration,
Dialysis was performed against a 0.1 M phosphate buffer (pH 6.0) containing mM EDTA. After dialysis, one-ninth volume of 0.1 M phosphate buffer (pH 6.0) containing 0.1 M 2-mercaptoethylamine and 5 mM EDTA was added, and the mixture was added at 37 ° C., 9
The reaction was performed for 0 minutes. Then, this was applied to a column of Sephadex G-25 gel (1 × 30 cm; manufactured by Pharmacia LKB) equilibrated with a 0.1 M phosphate buffer containing 50 mM EDTA and 0.1 M NaCl, and F (ab ′) Fractions were collected. The collected F (ab ') fraction was concentrated by ultrafiltration, and dialyzed against 0.1 M phosphate buffer containing 2.5 mM EDTA. 0.1% SD of the obtained fragment
7.5% PAGE (polyacrylamide gel electrophoresis) analysis was performed in the presence of S (sodium dodecyl sulfate: manufactured by Nacalai Tesque) to confirm the molecular weight of the purified antibody fragment. As a result of SDS-PAGE, a band was confirmed at a position having a molecular weight of about 75 kd, which confirmed that the antibody fragment had the expected molecular weight.

【0033】b)抗CETPポリクローナル抗体フラグ
メントのペルオキシダーゼ標識 N−サクシニミジル−4−(N−マレイミドメチル)シ
クロヘキサン−1−カルボキシレート2.5mgをN,N
−ジメチルホルムアミドの150μl に溶解した溶液
を、0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.0)1.
5mlに10mgの西洋ワサビ・ペルオキシダーゼ(HR
P)を溶解した液に入れ30℃60分間反応させた。つ
いで反応液に存在する沈澱を遠心分離によって除去し、
0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.0)で平衡化
したセファデックスG−25ゲルに付し、マレイミド・
HRP画分を回収後、これを濃縮して2.5mM EDT
Aを含む0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液で透析した。
次にa)で得られたF(ab′)2.0mgとb)で得ら
れたマレイミドHRP1.8mgを混合し、2.5mM E
DTAを含む0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液を加えて
1.0mlとし、30℃1時間反応させた後、50nM N
−エチルマレイミドを20μl 加えた。次いで0.1M
NaClを含む0.1Mリン酸緩衝液で平衡化したウ
ルトロゲルAcA44(1.5×45cm;IBFバイオ
テクニクス社製)に付し、HRP F(ab′)の画分
を回収した。回収したHRP F(ab′)画分をPB
S(−)で透析後、2mg/mlのチメロサールを100分
の1添加し、分注して−20℃で保存した。
B) Peroxidase labeling of anti-CETP polyclonal antibody fragment 2.5 mg of N-succinimidyl-4- (N-maleimidomethyl) cyclohexane-1-carboxylate was added to N, N
A solution of dimethylformamide dissolved in 150 μl of 0.1 M sodium phosphate buffer (pH 7.0)
10 mg of horseradish peroxidase (HR in 5 ml)
P) was dissolved in the solution and reacted at 30 ° C. for 60 minutes. Then, the precipitate present in the reaction solution was removed by centrifugation,
The mixture was subjected to Sephadex G-25 gel equilibrated with 0.1 M sodium phosphate buffer (pH 7.0),
After collecting the HRP fraction, it was concentrated and concentrated to 2.5 mM EDT.
A was dialyzed against 0.1 M sodium phosphate buffer containing A.
Next, 2.0 mg of F (ab ') obtained in a) and 1.8 mg of maleimide HRP obtained in b) were mixed and mixed with 2.5 mM E.
0.1 M sodium phosphate buffer containing DTA was added to make up to 1.0 ml, reacted at 30 ° C. for 1 hour, and then reacted with 50 nM N 2.
20 μl of ethylmaleimide was added. Then 0.1M
It was applied to Ultrogel AcA44 (1.5 × 45 cm; IBF Biotechnics) equilibrated with a 0.1 M phosphate buffer containing NaCl, and the HRP F (ab ′) fraction was collected. The recovered HRP F (ab ') fraction is
After dialysis with S (-), 2 mg / ml thimerosal was added at 1/100, dispensed and stored at -20 ° C.

【0034】実施例1 (1)患者又は健常人より空腹時EDTA採血し、遠心
分離(2500〜3000rpm )して血漿を得た。得ら
れた各血漿について、トリグリセライド量を酵素法(T
G−555,協和メデックス社製)により測定し、コレ
ステロール量を酵素法(Mercko Test CH
O,関東化学社製;2ml/10μl 血漿、37℃、10
分間インキュベーション)により測定(365nmでの吸
光度)した。また、アポ蛋白A−Iは、抗ヒトアポ蛋白
A−Iモノクローナル抗体(株式会社日本抗体研究所
製)を用いて測定した。
Example 1 (1) Fasting EDTA blood was collected from a patient or a healthy subject, and centrifuged (2,500 to 3000 rpm) to obtain plasma. For each of the obtained plasmas, the amount of triglyceride was determined by the enzyme method (T
G-555, manufactured by Kyowa Medex Co., Ltd.), and the amount of cholesterol is determined by an enzyme method (Mercko Test CH).
O, manufactured by Kanto Chemical Co .; 2 ml / 10 μl plasma, 37 ° C., 10
(Incubation for 3 minutes) (absorbance at 365 nm). Apoprotein AI was measured using an anti-human apoprotein AI monoclonal antibody (manufactured by Japan Antibody Research Institute, Inc.).

【0035】(2)上記血漿からフィブリノーゲンなど
の線維成分を取り除いて得られた血清0.25mlを試験
管に加え、参考例1で得られた抗ヒトアポ蛋白A−Iモ
ノクローナル抗体結合アフィニティーゲルを含有する反
応液300μl を分注し、振盪を30分間行い、その後
低速度で遠心分離(800rpm )して上清を除去した。
次に沈渣を20mlのPBS緩衝液(pH7.2)で洗浄し
た後、1.5mlの3Mチオシアン酸ナトリウム(pH7.
4)の抗体分離液を添加してアポ蛋白A−I1.5mlを
溶出した。上記で得られた溶出液の容量を2mlに調整
し、参考例4で得られた抗ヒトCETPポリクローナル
抗体固定化イムノプレートに100μl /well入れ、3
7℃で2時間インキュベートした。反応液を除き、0.
1%BSA含有0.01M PBS(pH7.0)300
μl で3回洗浄した。次いでペルオキシダーゼ標識抗C
ETP−F(ab′)の0.1%BSA含有0.01M
PBS(pH7.0)を100μl /well加え、37℃
で1時間インキュベートした。反応液を除き、イムノプ
レートを上記洗浄液300μl で3回洗浄した。2.5
mMの2,2′−アジノ−3−エチルベンゾチアゾリンス
ルホネート(ABTS)を含む緩衝液(0.01Mクエ
ン酸三ナトリウム及び0.01Mリン酸緩衝液,pH4.
0)を100μl /well加え37℃で2分間プレインキ
ュベーションした。0.02%過酸化水素水50μl /
wellを加え37℃で6分間インキュベート後、0.05
%アジ化ナトリウム液50μl /wellを加えて反応を停
止させ、イムノリーダーを用いて波長405nmにおける
吸光度を測定した。本発明の測定法を用いて精製したC
ETPの標準曲線とCETP希釈曲線を比較した結果を
図1に示す。図1より、本発明の測定法によれば、CE
TP希釈曲線はCETP標準曲線とほぼ平行性を示し
た。また、更に本発明の測定法を健常人5名及び高HD
Lを示した脂質代謝異常者5名の血液を用いて行った結
果を表1に示す。表1より、本発明の測定法による定量
値は、アポ蛋白A−Iと高い負の相関を示した。
(2) 0.25 ml of serum obtained by removing fibrinogen such as fibrinogen from the above plasma was added to a test tube, and the anti-human apoprotein AI monoclonal antibody-bound affinity gel obtained in Reference Example 1 was contained. 300 μl of the reaction solution to be prepared was dispensed, shaken for 30 minutes, and then centrifuged at a low speed (800 rpm) to remove the supernatant.
Next, the precipitate was washed with 20 ml of a PBS buffer (pH 7.2), and then 1.5 ml of 3M sodium thiocyanate (pH 7.0).
The antibody separation solution of 4) was added to elute 1.5 ml of Apoprotein AI. The volume of the eluate obtained above was adjusted to 2 ml, and 100 μl / well was placed in the immunoplate immobilized with the anti-human CETP polyclonal antibody obtained in Reference Example 4,
Incubated at 7 ° C. for 2 hours. The reaction solution was removed.
0.01M PBS (pH 7.0) containing 1% BSA 300
Washed three times with μl. Then, peroxidase-labeled anti-C
0.01M of ETP-F (ab ') containing 0.1% BSA
100 µl / well of PBS (pH 7.0) was added, and 37 ° C
For 1 hour. After removing the reaction solution, the immunoplate was washed three times with 300 μl of the above washing solution. 2.5
Buffer containing mM 2,2'-azino-3-ethylbenzothiazoline sulfonate (ABTS) (0.01 M trisodium citrate and 0.01 M phosphate buffer, pH 4.0).
0) was added at 100 μl / well, and the mixture was pre-incubated at 37 ° C. for 2 minutes. 50 μl of 0.02% hydrogen peroxide solution /
After adding a well and incubating at 37 ° C for 6 minutes, 0.05
The reaction was stopped by adding 50 μl / well of a 50% sodium azide solution, and the absorbance at a wavelength of 405 nm was measured using an immunoreader. C purified using the assay of the present invention
The result of comparing the standard curve of ETP and the CETP dilution curve is shown in FIG. As shown in FIG. 1, according to the measuring method of the present invention, CE
The TP dilution curve was almost parallel to the CETP standard curve. Further, the measurement method of the present invention was applied to 5 healthy subjects and high HD.
Table 1 shows the results obtained by using blood of five persons with abnormal lipid metabolism showing L. From Table 1, the quantification value by the measurement method of the present invention showed a high negative correlation with Apoprotein AI.

【0036】[0036]

【表1】 [Table 1]

【0037】[0037]

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】CETPの標準曲線とCETPの希釈曲線を示
す図である。
FIG. 1 shows a standard curve of CETP and a dilution curve of CETP.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 金光 健宅 滋賀県甲賀郡甲西町菩提寺330−328 (72)発明者 西川 一義 滋賀県甲賀郡甲南町深川1078−34 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) G01N 33/53 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continuing on the front page .Cl. 7 , DB name) G01N 33/53

Claims (4)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 検体に抗アポ蛋白A−I抗体を作用させ
てアポ蛋白A−Iを得、次いで当該アポ蛋白A−Iより
抗コレステリルエステル転送蛋白ポリクローナル抗体に
結合するリポ蛋白を検出することを特徴とする検体中の
コレステリルエステル転送蛋白の測定法。
1. An anti-apoprotein AI antibody is allowed to act on a sample to obtain an apoprotein AI, and then a lipoprotein that binds to the anti-cholesteryl ester transfer protein polyclonal antibody from the apoprotein AI is detected. A method for measuring cholesteryl ester transfer protein in a sample, which is characterized in that:
【請求項2】 アポ蛋白A−Iの取得手段が、抗アポ蛋
白A−I抗体を不溶性担体に固定化したアフィニティー
ゲルを用いるものである請求項1記載の測定法。
2. The method according to claim 1, wherein the means for obtaining Apoprotein AI uses an affinity gel in which an anti-Apoprotein AI antibody is immobilized on an insoluble carrier.
【請求項3】 抗コレステリルエステル転送蛋白ポリク
ローナル抗体に結合するリポ蛋白の検出が、抗コレステ
リルエステル転送蛋白ポリクローナル抗体を固定化した
不溶性担体にアポ蛋白A−Iを接触させ、次いでこれに
標識抗コレステリルエステル転送蛋白ポリクローナル抗
体を反応させ、該担体中の反応生成物の標識量を測定す
るものである請求項1記載の測定法。
3. Detection of lipoprotein binding to an anti-cholesteryl ester transfer protein polyclonal antibody is performed by contacting apoprotein A-I with an insoluble carrier having an anti-cholesteryl ester transfer protein polyclonal antibody immobilized thereon, and then labeling it with a labeled anti-cholesteryl ester transfer protein polyclonal antibody. 2. The method according to claim 1, wherein the reaction is carried out with an ester transfer protein polyclonal antibody, and the amount of the labeled reaction product in the carrier is measured.
【請求項4】 抗アポ蛋白A−I抗体及び抗コレステリ
ルエステル転送蛋白ポリクローナル抗体を含有するコレ
ステリルエステル転送蛋白測定用キット。
4. A kit for measuring cholesteryl ester transfer protein, comprising an anti-apoprotein AI antibody and an anti-cholesteryl ester transfer protein polyclonal antibody.
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