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JP2807471B2 - DNA and its uses - Google Patents

DNA and its uses

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Publication number
JP2807471B2
JP2807471B2 JP63228839A JP22883988A JP2807471B2 JP 2807471 B2 JP2807471 B2 JP 2807471B2 JP 63228839 A JP63228839 A JP 63228839A JP 22883988 A JP22883988 A JP 22883988A JP 2807471 B2 JP2807471 B2 JP 2807471B2
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JP
Japan
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dna
endothelin
peptide
mouse
amino acid
Prior art date
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Application number
JP63228839A
Other languages
Japanese (ja)
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洋司 三井
直理雄 石田
要 齊田
政彦 藤野
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
National Institute of Advanced Industrial Science and Technology AIST
Takeda Pharmaceutical Co Ltd
Original Assignee
Agency of Industrial Science and Technology
Takeda Chemical Industries Ltd
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Publication date
Application filed by Agency of Industrial Science and Technology, Takeda Chemical Industries Ltd filed Critical Agency of Industrial Science and Technology
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Publication of JPH0276583A publication Critical patent/JPH0276583A/en
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  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明はマウス血管収縮ペプチドたるマウス・エンド
セリン(β)をコードするDNAを含有するDNA、マウス・
エンドセリン(β)の前駆体蛋白質(前駆体ポリペプチ
ドともいう)および成熟蛋白質(成熟ポリペプチドとも
いう)、および該前駆体蛋白質と成熟蛋白質〔エンドセ
リン(β)〕の製造方法に関する。本明細書において、
前駆体蛋白質とは、成熟ペプチド(エンドセリン(β)
のアミノ酸配列を持ち、かつそのN末端側もしくはC末
端側、またはその両方にエンドセリン(β)DNAによっ
てコードされるアミノ酸配列の一部又は全部を持つよう
な蛋白質をさす。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Industrial Application Field] The present invention relates to a DNA containing DNA encoding mouse endothelin (β), which is a mouse vasoconstrictor peptide;
The present invention relates to a precursor protein (also referred to as a precursor polypeptide) and a mature protein (also referred to as a mature polypeptide) of endothelin (β), and a method for producing the precursor protein and a mature protein (endothelin (β)). In this specification,
The precursor protein is a mature peptide (endothelin (β)
And a protein having a part or all of the amino acid sequence encoded by endothelin (β) DNA on its N-terminal side or C-terminal side, or both.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

内皮依存性の血管拡張反応とならんで、種々の刺激に
対する内皮依存性の血管収縮反応が報告されている。血
管の伸張や内圧の亢進といった機械的負荷による収縮、
トロンビンによる収縮、血中酸素の減少による収縮、さ
らにはニューロペプチドY〔プロシーディングズ・オブ
・ザ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンス・オ
ブ・ザ・ユー・エス・エー(Proc.Natl.Acad・Sci.,U.
S.A.),79,5485(1982);同,81,4577(1984)〕によ
るノルアドレナリン収縮の増強などがその例である。
Along with the endothelium-dependent vasodilator response, endothelium-dependent vasoconstrictor responses to various stimuli have been reported. Contraction due to mechanical load such as blood vessel stretching and internal pressure increase,
A contraction by thrombin, a contraction by a decrease in blood oxygen, and a neuropeptide Y [Proceedings of the National Academy of Science of the USA (Proc. Natl. Acad. Sci., U.
SA), 79 , 5485 (1982); and 81,4577 (1984)], for example, to enhance noradrenaline contraction.

アメリカン・ジャーナル・オブ・フィジオロジー(Am
er.J.Physiol.),132,263(1987)には内皮細胞由来の
冠血管収縮因子(分子量はそれぞれ8,500,3,000)が記
載されているが構造は不明である。また、ジャーナル・
オブ・ファーマコロジー・アンド・エクスペリメンタル
・セラビューティクス(J.Pharmacl.Exp.Ther.)236,33
9(1985)にも内皮細胞由来のペプチド様物質が記載さ
れているが、これも構造は不明である。
American Journal of Physiology (Am
er. J. Physiol.), 132 , 263 (1987) describes an endothelial cell-derived coronary vasoconstrictor (molecular weight 8,500, 3,000, respectively), but the structure is unknown. Also, journals
Of Pharmacology And Experimental Serra Beauty box (J.Pharmacl.Exp.Ther.) 236, 33
9 (1985) also describes a peptide-like substance derived from endothelial cells, but the structure is unknown.

一方、血管収縮作用を有するペプチドとしてバソプレ
ッシン(Vasopressin)が知られていて、そのアミノ酸
配列も明確にされているが、バソプレッシンが哺乳類ま
たは鳥類の血管内皮細胞をオリジンとして得られたとい
う報告はない。また、血管収縮作用を有するアンジオテ
ンシン(Angiotensin)がウシ大動脈の内皮細胞から得
られるという報告〔サーキュレーション・リサーチ(Ci
rculation Research),60,422(1987)〕があるが、ア
ンジオテンシンは分子量約1,000のペプチドである。
On the other hand, Vasopressin is known as a peptide having a vasoconstrictive action and its amino acid sequence is also clarified, but there is no report that vasopressin was obtained from mammalian or bird vascular endothelial cells as an origin. In addition, it has been reported that angiotensin having vasoconstriction can be obtained from bovine aortic endothelial cells [Circulation Research (Ci.
rculation Research), 60 , 422 (1987)], but angiotensin is a peptide having a molecular weight of about 1,000.

また本発明者等の一部は同様の血管収縮作用を有する
ペプチドとして、先にブタ大動脈内皮細胞よりブタ・エ
ンドセリンを単離することに成功し(特願昭62−255381
号)、また本発明者等の一部はヒト・エンドセリンの単
離、相補DNAのクローニングにも成功している(特願昭6
2−313155号及び同63−148158号)。
Some of the present inventors have previously succeeded in isolating porcine endothelin from porcine aortic endothelial cells as a peptide having a similar vasoconstrictive action (Japanese Patent Application No. 62-255381).
And some of the present inventors have also succeeded in isolating human endothelin and cloning complementary DNA (Japanese Patent Application No.
2-313155 and 63-148158).

更に、本出願人は、ラット・エンドセリンの単離、相
補DNAのクローニングについても出願を行っている(特
願昭63−174935号、および昭和63年7月29日出願)。
The present applicant has also filed an application for isolation of rat endothelin and cloning of complementary DNA (Japanese Patent Application No. 63-174935, filed on July 29, 1988).

なお、エンドセリンは分子量2500±300で、アミノ酸2
1個からなるペプチドであり、そのアミノ酸中の4個のC
ysが2組のS−S結合を形成している構造を有するもの
である。
In addition, endothelin has a molecular weight of 2500 ± 300,
It is a peptide consisting of one and four Cs in the amino acid
ys has a structure in which two sets of SS bonds are formed.

〔発明が解決しようとする課題〕[Problems to be solved by the invention]

上記のように、各種動物より相同型のエンドセリンが
見出されているが同一動物種からの新規な相同型遺伝子
は見出されていない。そこで更に新規な相同型エンドセ
リンを検索し、それらエンドセリンの構造、及び活性等
の研究を深め、それらの有用性について検討すること、
及び該新規ペプチドを遺伝子組み換え技術によりクロー
ニングし、大量生産の道を拓くことが現在の課題であ
る。
As described above, homologous endothelin has been found in various animals, but a novel homologous gene from the same animal species has not been found. Therefore, further searching for novel homologous endothelins, deepening research on the structure and activity of those endothelins, and examining their usefulness,
The current problem is to clone the novel peptide by genetic recombination technology and to open up a way of mass production.

〔課題を解決するための手段〕[Means for solving the problem]

本発明者らは上記血管収縮作用を有するエンドセリン
の新規相同型遺伝子を、マウスから採取し、しかもそれ
を遺伝子組み換え技術によつて製造することができれ
ば、今後の研究、治療に多大な効果を奏することができ
ると考え、研究を重ねた結果、次のような知見を得、本
発明に到達したものである。
The inventors of the present invention will have great effects on future research and treatment if a novel homologous gene of endothelin having the above-mentioned vasoconstriction action can be collected from mice and produced by genetic recombination technology. As a result of repeated studies, the inventors have obtained the following findings and arrived at the present invention.

即ち、本発明者らは先に出願したヒト・エンドセリン
のcDNAをコードするDNAをプローブとして使用して、マ
ウス肝由来のDNAライブラリーから、はじめてマウスの
エンドセリンをコードするDNAをクローニングすること
に成功した。その結果、従来ヒト・ブタで同定された型
(α型)と、これとは違ったアミノ酸配列を持つ新規相
同型遺伝子(β型)の2種が存在する事が明らかとなっ
た(式III及びIV)。その結果、これらを遺伝子組み換
え技術によって大量に生産する道を拓くことに成功した
ものである。
That is, the present inventors succeeded in cloning a mouse endothelin-encoding DNA for the first time from a mouse liver-derived DNA library using a DNA encoding a human endothelin cDNA that had been previously filed as a probe. did. As a result, it was revealed that there are two types, a type (α type) conventionally identified in humans and pigs, and a novel homologous type gene (β type) having a different amino acid sequence (formula III). And IV). As a result, they succeeded in cultivating a way to produce them in large quantities by genetic recombination technology.

本発明は(1)マウス・エンドセリンβ型をコードす
るDNAを含有するDNA(2)マウス・エンドセリンのポリ
ペプチド(β)(3)(1)のマウス・エンドセリンを
コードするDNAを含有するDNAを保持する形質転換体、お
よび(4)上記(3)の形質転換体の培養、培養物中へ
の蛋白質の生産蓄積、採取を包含する成熟マウス・エン
ドセリンの製造方法に関するものである。
The present invention relates to (1) a DNA containing a DNA encoding mouse endothelin β-form (2) a DNA containing a mouse endothelin polypeptide (β) (3) (1) a DNA containing a DNA encoding mouse endothelin The present invention relates to (4) a method for producing mature mouse endothelin, which includes culturing the transformant (3), accumulating and accumulating protein in the culture, and collecting the transformant.

ブタ由来の成熟エンドセリン(エンドセリンα)に相
当する、21個のペプチドたるマウス成熟エンドセリンα
は〔式III′〕で表わされるものであり、 また本発明のマウス成熟エンドセリンβは〔式IV′〕で
表わされるものである。
Mouse mature endothelin α, 21 peptides, corresponding to mature endothelin from pigs (endothelin α)
Is represented by [Formula III '], The mouse mature endothelin β of the present invention is represented by [formula IV ′].

上記式中のアミノ酸の番号はマウス成熟エンドセリン
のアミノ酸配列に関して第1番のCysから番号をつけた
ものであり、マウス前駆体エンドセリンの番号とは異な
る。
The numbers of the amino acids in the above formula are numbered from the first Cys in the amino acid sequence of mouse mature endothelin, and are different from the numbers of the mouse precursor endothelin.

上記式中、アンダーラインを施したアミノ酸がヒト、
ブタンのエンドセリンと異なるものである。
In the above formula, the underlined amino acid is human,
It is different from butane's endothelin.

上記式中の4個のCysが形成するS−S結合が架かる
位置についてはマウス成熟エンドセリンのCysの番号で
表わして、1−15,3−11の組合せ、3−15,1−11の組合
せがあるが、1−15,3−11の組合せが生ずる割合で大き
く、また血管収縮活性もこのものが大である。
The position where the SS bond formed by the four Cys in the above formula spans is represented by the number of Cys of the mouse mature endothelin, a combination of 1-15,3-11 and a combination of 3-15,1-11 However, the combination of 1-15 and 3-11 is large, and the vasoconstriction activity is also large.

またDNA配列については、マウス・エンドセリンα,
βをコードするDNAは各々式(I)もしくは式(II)の
塩基配列を含有する2種のものであり、このものはブタ
・ヒト・ラットの各エンドセリンのものとは大巾に異な
っている。本発明はまた、新規なアミノ酸配列のマウス
・エンドセリンβをコードする式(II)のDNAに関する
ものである。
For DNA sequence, mouse endothelin α,
The β-encoding DNAs are of two types, each containing the base sequence of formula (I) or (II), which are significantly different from those of the respective endothelins of pig, human and rat. . The present invention also relates to a DNA of formula (II) encoding a novel amino acid sequence of mouse endothelin β.

成熟マウス・エンドセリンαおよびβに関する部分
(式IIIおよびIVのNo.5−25に当る)についてもブタ・
ヒト・ラットエンドセリンのDNAとは異なっており、本
発明のDNAは新規なものである。
The portion relating to mature mouse endothelin α and β (corresponding to No. 5-25 of Formulas III and IV) was
Unlike the DNA of human / rat endothelin, the DNA of the present invention is novel.

本発明のマウス・エンドセリン成熟ペプチド(エンド
セリン)をコードするDNAとしては、マウス・エンドセ
リン(β)の成熟ペプチド(エンドセリン)のアミノ酸
配列(IVの5〜25)をコードする塩基配列を含有するも
のであればいかなるものであってもよいが、たとえは式
(II)の塩基配列を含有するDNAあるいはその一部のDNA
であることが好ましい。
The DNA encoding the mature mouse endothelin peptide (endothelin) of the present invention contains a nucleotide sequence encoding the amino acid sequence (5 to 25 of IV) of the mature mouse endothelin (β) peptide (endothelin). Any DNA may be used as long as it is a DNA containing the nucleotide sequence of formula (II) or a partial DNA thereof.
It is preferred that

式(I)および(II)の塩基配列は本発明で得られた
マウス・エンドセリンDNA配列であり、式(III′)もし
くは(IV′)のマウス・成熟エンドセリンアミノ酸をコ
ードする塩基配列の一例としては式(I)もしくは(I
I)のNo.13−75で表わされるものが挙げられる。
The nucleotide sequences of the formulas (I) and (II) are the mouse endothelin DNA sequences obtained in the present invention, and as an example of the nucleotide sequence encoding the mouse mature endothelin amino acid of the formula (III ′) or (IV ′) Is the formula (I) or (I
No. 13-75 of I).

本発明方法におけるマウス・エンドセリンの成熟マウ
ス・エンドセリン(β)をコードする塩基配列を有する
DNAを含有する発現型ベクターは、例えば、(i)マウ
ス・エンドセリン産生細胞からメッセンジャーRNA(mRN
A)を分離し、(ii)該mRNAから単鎖の相補DNA(cDNA)
を、次いで二重鎖DNAを合成し、(iii)該相補DNAをフ
ァージまたはプラスミドに組み込み、(iv)得られた組
み換えファージまたはプラスミドで宿主を形質転換し、
(v)得られた形質転換体を培養後、形質転換体から適
当な方法、例えばマウス・エンドセリン(β)の一部を
コードするDNAプローブとのハイブリダイゼーションに
より、あるいは抗マウス・エンドセリン(β)抗体を用
いたイムノアッセイ法により目的とするDNAを含有する
ファージあるいはプラスミドを単離し、(vi)その組み
換えDNAから目的とするクローン化DNAを切り出し、(vi
i)該クローン化DNAまたはその一部を発現ベクター中の
プロモーターの下流に連結する、ことにより製造するこ
とができる。
In the method of the present invention, the mouse endothelin has a nucleotide sequence encoding mature mouse endothelin (β)
An expression vector containing DNA can be obtained, for example, by using (i) mouse messenger RNA (mRN
A) and (ii) a single-stranded complementary DNA (cDNA) from the mRNA
Then synthesizing double-stranded DNA, (iii) incorporating the complementary DNA into a phage or plasmid, (iv) transforming a host with the resulting recombinant phage or plasmid,
(V) After culturing the obtained transformant, a suitable method is used from the transformant, for example, hybridization with a DNA probe encoding a part of mouse endothelin (β), or anti-mouse endothelin (β) A phage or plasmid containing the target DNA is isolated by an immunoassay using an antibody, and (vi) the cloned DNA of interest is cut out from the recombinant DNA, and (vi)
i) the cloned DNA or a part thereof is ligated downstream of a promoter in an expression vector.

マウス・エンドセリンをコードするmRNAは、種々のエ
ンドセリン産生細胞、例えばマウス大動脈内皮細胞など
から得ることができる。
MRNA encoding mouse endothelin can be obtained from various endothelin-producing cells, such as mouse aortic endothelial cells.

マウス・エンドセリン産生細胞からRNAを調製する方
法としては、グアニジンチオシアネート法〔(ジェー・
エム・チルグウィン(J.M..Chirgwin)ら、バイオケミ
ストリー(Bio−chemistry),18,5294(1979)〕など
が挙げられる。
As a method for preparing RNA from mouse endothelin-producing cells, the guanidine thiocyanate method [(J.
J. Chirgwin et al., Bio-chemistry, 18 , 5294 (1979)].

このようにして得られたmRNAを鋳型とし、逆転写酵素
を用いて、例えば岡山(H.Okayama)らの方法〔モレキ
ュラー・アンド・セルラー・バイオロジー(Molecular
and Cellular Biology)2,161(1982)および同誌3,280
(1983)〕に従いcDNAを合成し、得られたcDNAをプラス
ミドに組み込む。
Using the mRNA thus obtained as a template and reverse transcriptase, for example, the method of H. Okayama et al. [Molecular and Cellular Biology (Molecular
and Cellular Biology) 2, 161 ( 1982) and ibid 3, 280
(1983)], and the obtained cDNA is integrated into a plasmid.

cDNAを組み込むプラスミドとしては、たとえば大腸菌
由来のpBR322〔ジーン(gene),2,95(1977)〕,pBR32
5〔ジーン,4,121(1978)〕,pUC12〔ジーン,19,,259
(1982)〕,pUC13〔ジーン,19,259(1982)〕、枯草菌
由来のpUB110〔バイオケミカル・バイオフィジカル・リ
サーチ・コミュニケーション(Biochemical and Biophy
sical Research Communication),112,678(1983)〕
などが挙げられるが、その他のものであっても、宿主内
で複製増殖されるものであれば、いずれをも用いること
ができる。またcDNAを組み込むファージベクターとして
は、たとえばλgt11〔ヤング及びデーヴィス(Young,
R.,and Davis,R.,)プロシーディングズ・オブ・ザ・ナ
ショナル・アカデミー・オブ・サイエンス・オブ・ザ・
ユー・エス・エー(Proc.Natl.Acad.Sci.,U.S.A.),8
0,1194(1983)〕などが挙げられるが、その他のもので
あっても宿主内で増殖できるものであれば用いることが
できる。
Examples of plasmids for incorporating cDNA include E. coli-derived pBR322 [gene, 2, 95 (1977)], pBR32
5 [Gene, 4, 121 (1978)], pUC12 [Gene, 19 ,, 259
(1982)], pUC13 [Gene, 19, 259 (1982)], pUB110 derived from Bacillus subtilis [Biochemical and Biophysical Research Communication (Biochemical and Biophyl).
sical Research Communication), 112, 678 (1983)]
And the like. However, any other substances can be used as long as they are replicated and propagated in the host. As a phage vector incorporating a cDNA, for example, λgt11 [Young and Davis (Young,
R., and Davis, R.,) Proceedings of the National Academy of Sciences of the
USA (Proc. Natl. Acad. Sci., USA), 8
0 , 1194 (1983)], etc., but any other one can be used as long as it can be propagated in the host.

プラスミドに組み込む方法としては、たとえば、ティ
ー・マニアティス(T.Maniatis)ら,モレキュラー・ク
ローニング(Molecular Cloning)コールド・スプリン
グ・ハーバー・ラボラトリー(Cold Spring Harbor La
−boratory),第239頁(1982)に記載の方法などが挙
げられる。またファージベクターにcDNAを組み込む方法
としては、たとえばヒューン(Hyunh.T.V.)らの方法
〔ディー・エヌ・エー クローニング ア プラクティ
カル アプローチ(DNA Cloning,A Practical Approac
h),49(1985)〕などが挙げられる。
Examples of the method for incorporation into a plasmid include, for example, T. Maniatis, et al., Molecular Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory.
-Boratory), page 239 (1982). As a method for incorporating cDNA into a phage vector, for example, the method of Hyunh. TV et al. [DNA Cloning, A Practical Approac
h) 1 , 49 (1985)].

このようにして得られたプラスミドは、適当な宿主た
とえばエシェリキア(Escherichia)属菌,バチルス(B
acillus)属菌などに導入する。
The plasmid thus obtained can be used in a suitable host such as a bacterium belonging to the genus Escherichia or Bacillus (B.
acillus).

上記エシェリキア属菌の例としては、エシェリキア・
コリ(Escherichia coli)K12DH1〔プロシージング・オ
ブ・ザ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンス
(Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.)60,160(1968)〕,M103
〔ヌクレイック・アシッズ・リサーチ,(Nucleic Acid
s Research),,309(1981)〕,JA221〔ジャーナル・
オブ・モレキュラー・バイオロジー(Journal of Molec
ular Biology)〕,120,517(1978)〕,HB101〔ジャー
ナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー41,459(196
9)〕,C600〔ジェネティックス(Genetics),39,440
(1954)〕などが挙げられる。
Examples of the genus Escherichia include Escherichia
Escherichia coli K12DH1 [Proceding of the National Academy of Sciences (Proc. Natl. Acad. Sci. USA) 60, 160 (1968)], M103
[Nucleic Acids Research, (Nucleic Acid
Research), 9 , 309 (1981)], JA221 [Journal
Journal of Molec
ular Biology)], 120, 517 (1978)], HB101 [Journal of Molecular Biology 41, 459 (196
9)], C600 [Genetics, 39, 440
(1954)].

上記バチルス属菌としては、たとえばバチルス・サチ
リス(Bacillus subtilis)MI114(ジーン,24,255(19
83)〕,207−21〔ジャーナル・オブ・バイオケミストリ
ー(Journal of Biochemistry)95,87(1984)〕などが
挙げられる。
Examples of the Bacillus genus include Bacillus subtilis MI114 (Gene, 24, 255 (19
83)], 207-21 [Journal of Biochemistry 95, 87 (1984)].

プラスミドで宿主を形質転換する方法としては、たと
えばティー・マニアティス(T.Maniatis)ら,モレキュ
ラー・クローニング(Molecular Cloning),コールド
・スプリング・ハーバー・ラボラトリー(Cold Spring
Harbor Laboratory),第249頁(1982)に記載のカルシ
ウムクロライド法あるいはカルシウムクロライド/ルビ
ジウムクロライド法などが挙げられる。
Methods for transforming a host with a plasmid include, for example, T. Maniatis et al., Molecular Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory.
Harbor Laboratory), page 249 (1982), the calcium chloride method or the calcium chloride / rubidium chloride method.

またファージ・ベクターを用いる場合には、たとえば
増殖させた大腸菌にインビトロパッケージング法を用い
て導入することができる。
When a phage vector is used, it can be introduced into, for example, propagated Escherichia coli using an in vitro packaging method.

マウス・エンドセリン(αとβ)cDNAを含有するマウ
ス・cDNAライブラリーは上記の方法などで得ることが出
来るが、市販品として購入することも可能であり、例え
ばマウスのcDNAライブラリーはクローンテックラボラト
リーズ(Clontech Laboratories,Inc.,米国)から入手
することができる。
A mouse cDNA library containing mouse endothelin (α and β) cDNAs can be obtained by the above-mentioned method or the like, but can also be purchased as a commercial product. For example, a mouse cDNA library is available from Clonetech Laboratories. (Clontech Laboratories, Inc., USA).

マウス・DNAライブラリーからマウス・エンドセリンD
NAをクローニングする方法としては、例えばファージベ
クターλcharon4Aとヒト・エンドセリンのアミノ酸配列
に基づいて化学合成したオリゴヌクレオチドをプローブ
として用いたプラークハイブリダイゼーション法〔ティ
ー・マニアティス(T.Maniatis)ら,モレキュラー・ク
ローニング(Molecular Cloning)コールド・スプリン
グ・ハーバー・ラボラトリー(Cold Spring Harbor La
−boratory),(1982)〕などが挙げられる。
Mouse endothelin D from mouse DNA library
As a method for cloning NA, for example, a plaque hybridization method using a phage vector λcharon4A and an oligonucleotide chemically synthesized based on the amino acid sequence of human endothelin as a probe [T. Maniatis et al., Molecular Biochem. Cloning (Molecular Cloning) Cold Spring Harbor Laboratory
-Boratory), (1982)].

このようにしてクローン化されたマウス・エンドセリ
ンDNAは必要があればプラスミド、例えばpBR322,pUC12,
pUC13,pUC18,pUC19,pUC118,pUC119などにサブクローニ
ングしてマウス・エンドセリンDNAを得ることができ
る。
The mouse endothelin DNA cloned in this way can be used as a plasmid if necessary, for example, pBR322, pUC12,
Mouse endothelin DNA can be obtained by subcloning into pUC13, pUC18, pUC19, pUC118, pUC119 and the like.

このようにして得られたDNAの塩基配列を、たとえば
マキサム・ギルバート(Maxam−Gilbert)法〔Maxam,A.
M.and Gilbert,w.,プロシーディングズ・オブ・ザ・ナ
ショナル・アカデミー・オブ・サイエンス・オブ・ザ・
ユー・エス・エー(Proc.Natl.Acad.Sci.,U.S.A.),7
4,560(1977)〕あるいはジデオキシ法〔Messing,J.
ら、ヌクレイック・アシッズ・リサーチ(Nucleic Acid
s Research)9,309(1981)〕によって決定し、既知の
アミノ酸配列との比較からマウス・エンドセリン(β)
DNAの存在を確認する。
The nucleotide sequence of the DNA thus obtained is used, for example, by the Maxam-Gilbert method [Maxam, A. et al.
M. and Gilbert, w., Proceedings of the National Academy of Sciences of the
USA (Proc. Natl. Acad. Sci., USA), 7
4, 560 (1977)] or the dideoxy method [Messing, J.
Et al., Nucleic Acids Research
s Research) 9, 309 (1981)] and compared with known amino acid sequences to determine mouse endothelin (β)
Check for the presence of DNA.

以上のようにして、マウス・エンドセリンをコードす
るDNA(マウス・エンドセリンDNA)(式II)が得られ
る。
Thus, DNA encoding mouse endothelin (mouse endothelin DNA) (formula II) is obtained.

後述の実施例1で得られたマウス・エンドセリン(α
とβ)をコードするDNAを含むDNAの制限酵素断片地図を
第1図に示す。またジデオキシ法で決定したDNAの塩基
配列と、その塩基配列から判明したアミノ酸配列を第2
図に示す。
Mouse endothelin (α) obtained in Example 1 described later
FIG. 1 shows a restriction enzyme fragment map of DNA containing DNAs encoding β and β). The nucleotide sequence of DNA determined by the dideoxy method and the amino acid sequence determined from
Shown in the figure.

上記のようにしてクローン化されたマウス・エンドセ
リンをコードするDNAは目的によりそのまま、または所
望により制限酵素で消化して使用することが出来る。
The DNA encoding mouse endothelin cloned as described above can be used as it is depending on the purpose, or digested with a restriction enzyme if desired.

クローン化されたDNAから発現させたい領域を切り出
し、発現に適したビークル(ベクター)中のプロモータ
ーの下流に連結して発現型ベクターを得ることができ
る。
A region to be expressed is excised from the cloned DNA and ligated downstream of a promoter in a vehicle (vector) suitable for expression to obtain an expression type vector.

該DNAはその5′末端に翻訳開始コドンとしてのATGを
有し、また3′末端には翻訳終止コドンとしてのTAA,TG
AまたはTAGを有していてもよい。これらの翻訳開始コド
ンや翻訳終止コドンは、適当な合成DNAアダプターを用
いて付加することもできる。さらに該DNAを発現させる
にはその上流にプロモーターを接続する。
The DNA has ATG at its 5 'end as a translation initiation codon and TAA, TG at its 3' end as a translation stop codon.
It may have A or TAG. These translation initiation codon and translation termination codon can also be added using an appropriate synthetic DNA adapter. To express the DNA, a promoter is connected upstream thereof.

ベクターとしては、上記の大腸菌由来のプラスミド
(例、pBR322,pBR325,pUC12,pUC13),枯草菌由来プラ
スミド(例、pUB110,pTP5,pC194),酵母由来プラスミ
ド(例、pSH19,pSH15),あるいはλファージなどのバ
クテリオファージおよびレトロウィルス、ワクシニアウ
ィルスなどの動物ウィルスなどが挙げられる。
Examples of the vector include the above-mentioned Escherichia coli-derived plasmids (eg, pBR322, pBR325, pUC12, pUC13), Bacillus subtilis-derived plasmids (eg, pUB110, pTP5, pC194), yeast-derived plasmids (eg, pSH19, pSH15), or λ phage. And animal viruses such as vaccinia virus and retroviruses.

本発明で用いられるプロモーターとしては、遺伝子の
発現に用いる宿主に対応して適切なプロモーターであれ
ばいかなるものでもよい。
The promoter used in the present invention may be any promoter as long as it is appropriate for the host used for gene expression.

形質転換する際の宿主がエシェリキア属菌である場合
は、trpプロモーター,lacプロモーター,recAプロモータ
ー,λPLプロモーター,lppプロモーターなどが、宿主が
バチルス属菌である場合は、SPO1プロモーター,SPO2プ
ロモーター,penPプロモーターなど、宿主が酵母である
場合は、PHO5プロモーター,PGKプロモーター,GAPプロモ
ーター,ADHプロモーターなどが好ましい。とりわけ宿主
がエシェリキア属菌でプロモーターがtrpプロモーター
またはλPLプロモーターであることが好ましい。
The trp promoter, lac promoter, recA promoter, λPL promoter, lpp promoter and the like are used when the host used for transformation is Escherichia, and the SPO1 promoter, SPO2 promoter and penP promoter are used when the host is Bacillus. When the host is yeast, for example, the PHO5 promoter, PGK promoter, GAP promoter, ADH promoter and the like are preferable. Especially it is preferred host promoters in Escherichia is trp promoter or .lambda.P L promoter.

宿主が動物細胞である場合には、SV40由来のプロモー
ター、レトロウィルスのプロモーター、メタロチオネイ
ンプロモーター、ヒートショックプロモーターなどがそ
れぞれ利用できる。
When the host is an animal cell, an SV40-derived promoter, a retrovirus promoter, a metallothionein promoter, a heat shock promoter, or the like can be used.

なお、発現にエンハンサーの利用も効果的である。 The use of enhancers for expression is also effective.

このようにして構築されたマウス・エンドセリンの成
熟ペプチド(エンドセリン)をコードするDNAを含有す
るベクターを用いて、形質転換体を製造する。
Using the vector containing the DNA encoding the mature peptide of mouse endothelin (endothelin) thus constructed, a transformant is produced.

宿主としては、たとえばエシェリキア属菌、バチルス
属菌、酵母、動物細胞などが挙げられる。
Examples of the host include Escherichia, Bacillus, yeast, animal cells and the like.

上記エシェルキア属菌、バチルス属菌の具体例として
は、前記したものと同様のものが挙げられる。
Specific examples of the genus Escherichia and Bacillus include those similar to those described above.

上記酵母としては、たとえばサッカロマイセスセレビ
シエ(Saccaromyces cerevisiae)AH22,AH22R-,NA87−1
1A,DKD−5Dなどが挙げられる。
Examples of the yeast include Saccharomyces cerevisiae AH22, AH22R , and NA87-1.
1A, DKD-5D and the like.

動物細胞としては、たとえばサル細胞COS−7,Vero,チ
ャイニーズハムスター細胞CHO,マウスL細胞,ヒトFL細
胞などが挙げられる。
Examples of animal cells include monkey cells COS-7, Vero, Chinese hamster cells CHO, mouse L cells, human FL cells, and the like.

上記エシェリキア属菌を形質転換するには、たとえば
プロシージング・オブ・ザ・ナショナル・アカデミー・
オブ・サイエンス(Proc.Natl.Acad.Sci.USA),69,211
0(1972)やジーン,17,107(1982)などに記載の方法
に従って行なわれる。
In order to transform the above Escherichia, for example, proceeding of the National Academy
Science of Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 69 , 211
0 (1972) and Gene, 17 , 107 (1982).

バチルス属菌を形質転換するには、たとえばモレキュ
ラー・アンド・ジェネラル・ジェネティックス(Molecu
lar & General Gentetics),168,111(1979)などに
記載の方法に従って行なわれる。
To transform Bacillus sp., For example, Molecular and General Genetics (Molecu
lar & General Gentetics), 168 , 111 (1979).

酵母を形質転換するには、たとえばプロシージング・
オブ・ザ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンス
(Proc.Natl.Acad.Sci.USA),751929(1978)に記載の
方法に従って行なわれる。
To transform yeast, for example,
Acad. Sci. USA, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75 1929 (1978).

動物細胞を形質転換するには、たとえばヴィロロジー
(Virology)52,456(1973)に記載の方法に従って行な
われる。
Transformation of animal cells is performed, for example, according to the method described in Virology 52 , 456 (1973).

このようにして、マウス・エンドセリン成熟ペプチド
〔エンドセリン(β)〕をコードするDNAを含有する発
現ベクターで形質転換された形質転換体が得られる。
Thus, a transformant transformed with the expression vector containing the DNA encoding the mouse endothelin mature peptide [endothelin (β)] is obtained.

宿主がエシェリキア属菌、バチルス属菌である形質転
換体を培養する際、培養に使用される培地としては液体
培地が適当であり、その中には該形質転換体の生育に必
要な炭素源、窒素源、無機物その他が含有せしめられ
る。炭素源としては、たとえばグルコース、デキストリ
ン、可塑性澱粉、ショ糖など、窒素源としては、たとえ
ばアンモニウム塩類、硝酸塩類、コーンスチープ・リカ
ー、ペプトン、カゼイン、肉エキス、大豆粕、バレイシ
ョ抽出液などの無機または有機物質、無機物としてはた
とえば塩化カルシウム、リン酸二水素ナトリウム、塩化
マグネシウムなどが挙げられる。また、酵母、ビタミン
類、生長促進因子などを添加してもよい。
When culturing a transformant whose host is a bacterium belonging to the genus Escherichia or Bacillus, a liquid medium is suitable as a medium used for the culturing, and a carbon source necessary for growth of the transformant is used therein. Nitrogen sources, inorganic substances, etc. are contained. Examples of carbon sources include glucose, dextrin, plastic starch, and sucrose. Examples of nitrogen sources include ammonium salts, nitrates, corn steep liquor, peptone, casein, meat extracts, soybean meal, and potato extract. Alternatively, examples of the organic substance and the inorganic substance include calcium chloride, sodium dihydrogen phosphate, and magnesium chloride. In addition, yeast, vitamins, growth promoting factors and the like may be added.

培地のpHは約5〜8が望ましい。 The pH of the medium is preferably about 5 to 8.

エシェリキア属菌を培養する際の培地としては、例え
ばグルコース、カザミノ酸を含むM9培地〔ミラー(Mill
er),ジャーナル・オブ・エクスペリメンツ・イン・モ
レキュラー・ジェネティックス(Journal of Experimen
ts in Molecular Genetics),431−433,Cold Spring Ha
rbor Laboratory,New York 1972〕が好ましい。ここに
必要によりプロモーターを効率よく働かせるために、た
とえば3β−インドリル アクリル酸のような薬剤を加
えることができる。
As a medium for culturing Escherichia, for example, M9 medium containing glucose and casamino acid [Mill (Mill
er), Journal of Experimens in Molecular Genetics (Journal of Experimen)
ts in Molecular Genetics), 431-433, Cold Spring Ha
rbor Laboratory, New York 1972]. If necessary, an agent such as 3β-indolyl acrylic acid can be added in order to make the promoter work efficiently.

宿主がエシェリキア属菌の場合、培養は通常約15〜43
℃で約3〜24時間行い、必要により、通気や撹拌を加え
ることもできる。
When the host is Escherichia, the culture is usually about 15 to 43.
C. for about 3 to 24 hours, and if necessary, aeration and stirring can be added.

宿主がバチルス属菌の場合、培養は通常約30〜40℃で
約6〜24時間行ない、必要により通気や撹拌を加えるこ
ともできる。
When the host is a bacterium belonging to the genus Bacillus, the cultivation is usually carried out at about 30 to 40 ° C. for about 6 to 24 hours, and if necessary, aeration and stirring can be applied.

宿主が酵母である形質転換体を培養する際、培地とし
ては、たとえばバークホルダー(Burkholder)最小培地
〔Bostian,K.L.ら、「ブロシージング・オブ・ザ・ナシ
ョナル・アカデミー・オブ・サイエンス(Proc.Natl.Ac
ad.Sci.USA)77,4505(1980)〕が挙げられる。培地のp
Hは約5〜8に調整するのが好ましい。培養は通常約20
℃〜35℃で約24〜72時間行い、必要に応じて通気や撹拌
を加える。
When culturing a transformant whose host is yeast, for example, Burkholder's minimal medium [Bostian, KL et al., “Brothing of the National Academy of Sciences (Proc. .Ac
ad.Sci.USA) 77 , 4505 (1980)]. Medium p
Preferably, H is adjusted to about 5-8. Culture is usually about 20
C. to 35.degree. C. for about 24 to 72 hours, with aeration and agitation as needed.

宿主が動物細胞である形質転換体を培養する際、培地
としては、たとえば約5〜20%の胎児牛血際を含むMEM
培地〔サイエンス(Science)122,501(1952)〕,DEME
培地〔ヴィロロジー(Virology),396(1959)〕,RP
MI1640培地〔ジャーナル・オブ・ザ・アメリカン・メデ
ィカル・アソシエーション(The Jounal of the Americ
an Medical Association)199,519(1967)〕,199培地
〔プロシージング・オブ・ザ・ソサイエティ・フォー・
ザ・バイオロジカル・メディスン(Pro−ceeding of th
e Society for Biological Medicine)73,1(1950)〕
などが挙げられる。pHは約6〜8であるのが好ましい。
培養は通常約30〜40℃で約15〜60時間行い、必要に応じ
て通気や撹拌を加える。
When culturing a transformant in which the host is an animal cell, the medium may be, for example, MEM containing about 5 to 20% of fetal bovine blood.
Medium [Science 122 , 501 (1952)], DEME
Medium [Viroroji (Virology), 8 396 (1959 ) ], RP
MI1640 medium [The Journal of the American Medical Association (The Jounal of the Americ
an Medical Association) 199, 519 ( 1967) ], 199 medium [Proceedings Managing Of The Society FOR
The Biological Medicine (Pro-ceeding of th
e Society for Biological Medicine) 73 , 1 (1950)]
And the like. Preferably, the pH is between about 6 and 8.
The cultivation is usually performed at about 30 to 40 ° C. for about 15 to 60 hours, and if necessary, aeration or stirring is added.

上記培養物からマウス・エンドセリン(β)の成熟ペ
プチド(エンドセリン)を分離精製するには、例えば下
記の方法により行なうことができる。
Separation and purification of the mature mouse endothelin (β) peptide (endothelin) from the above culture can be performed, for example, by the following method.

マウス・エンドセリンの成熟ペプチド(β)(エンド
セリン)を培養菌体あるいは細胞から抽出するに際して
は、培養後、公知の方法で菌体あるいは細胞を集め、こ
れを適当な緩衝液に懸濁し、超音波、リゾチームおよび
/または凍結融解などによって菌体あるいは細胞を破壊
したのち、遠心分離やろ過によりラット・エンドセリン
の成熟ペプチドの粗抽出液を得る方法などが適宜用い得
る。緩衝液の中に尿素や塩酸グアニジンなどのたんぱく
変性剤や、トリトンX−100などの界面活性剤が含まれ
ていてもよい。
When extracting mature mouse endothelin peptide (β) (endothelin) from cultured cells or cells, the cells or cells are collected by a known method after culture, suspended in an appropriate buffer, and sonicated. After disrupting cells or cells by lysozyme and / or freeze-thawing, a method of obtaining a crude extract of a mature rat endothelin peptide by centrifugation or filtration may be used as appropriate. The buffer may contain a protein denaturing agent such as urea or guanidine hydrochloride, or a surfactant such as Triton X-100.

培養液中にマウス・エンドセリン前駆体たんぱくや成
熟ペプチド(β)が分泌される場合には、培養終了後、
それ自体公知の方法で菌体あるいは細胞と上清とを分離
し、上清を集める。このようにして得られた培養上清、
あるいは抽出液中に含まれるラット・エンドセリン前駆
体たんぱくや成熟ペプチドは、自体公知の分離・精製法
を適切に組み合わせて行なうことができる。これらの公
知の分離、精製法としては、塩析や溶媒沈澱法などの溶
解度を利用する方法、透析法、限外ろ過法、ゲルろ過
法、およびSDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法な
どの主として分子量の差を利用する方法、イオン交換ク
ロマトグラフィーなどの荷電の差を利用する方法、アフ
ィニティークロマトグラフィオなどの特異的親和性を利
用する方法、逆相高速液体クロマトグラフィーなどの疎
水性の差を利用する方法、等電点電気泳動法などの等電
点の差を利用する方法などが挙げられる。
If the mouse endothelin precursor protein or mature peptide (β) is secreted into the culture,
The supernatant is separated from the cells or cells by a method known per se, and the supernatant is collected. The culture supernatant thus obtained,
Alternatively, the rat endothelin precursor protein or mature peptide contained in the extract can be obtained by appropriately combining known separation and purification methods. As these known separation and purification methods, methods utilizing solubility such as salting out and solvent precipitation, dialysis, ultrafiltration, gel filtration, and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, mainly molecular weight such as Using differences in charge, methods using charge differences such as ion exchange chromatography, methods using specific affinity such as affinity chromatography, and using differences in hydrophobicity such as reversed-phase high-performance liquid chromatography And methods utilizing the difference in isoelectric points, such as isoelectric focusing.

かくして生成するマウス・エンドセリン(αとβ)前
駆体たんぱくや成熟ペプチドは特異抗体を用いたエンザ
イムイムノアッセイなどにより測定することができる。
また生成物に血管収縮活性がある場合は、該活性を指標
にして測定することもできる。
The thus produced mouse endothelin (α and β) precursor protein and mature peptide can be measured by an enzyme immunoassay using a specific antibody or the like.
When the product has vasoconstriction activity, the activity can be measured using the activity as an index.

〔作用・効果〕[Action / Effect]

本発明のDNAでDNA感染または形質転換した菌体や細胞
では、大量のマウス・エンドセリン成熟ペプチド(β)
を産生せしめることができ、マウス・エンドセリン成熟
ペプチド生産を有利に導くことができる。
In cells and cells infected or transformed with the DNA of the present invention, a large amount of mouse endothelin mature peptide (β)
Can be produced, and the production of mature mouse endothelin peptide can be advantageously induced.

ここに製造されるマウス・エンドセリン成熟ペプチド
は生体、特に人間の血管収縮反応のメカニズムの解析や
血管収縮因子のアンタゴニストの解明の手掛かりを与え
るのみならず、低血圧治療剤や局所血管収縮剤としても
利用することができる。
The mouse endothelin mature peptide produced here not only provides a clue to the analysis of the mechanism of vasoconstriction in living organisms, especially humans, and elucidation of vasoconstrictor antagonists, but also as a therapeutic agent for hypotension and a local vasoconstrictor. Can be used.

以上、マウス・エンドセリン(β)をコードするDNA
のクローニング、マウス・エンドセリン成熟ペプチドの
発現ベクターの作製と、それらによる形質転換体の製
造、該形質転換体を用いたマウス・エンドセリン(β)
成熟ペプチドの製造及びその有用性等について詳細に述
べた。
The DNA encoding mouse endothelin (β)
Cloning, production of a mouse endothelin mature peptide expression vector, production of a transformant using them, and mouse endothelin (β) using the transformant
The production of the mature peptide and its usefulness have been described in detail.

本発明明細書および図面において、塩基やアミノ酸な
どを略号で表示する場合、IUPAC−IUB Commision on Bi
ochemical Nomenclatureによる略号あるいは当該分野に
おける慣用略号に基づくものであり、その例を下記す
る。またアミノ酸に関し光学異性体があり得る場合は、
特に明示しなければL−体を示すものとする。
In the specification and the drawings of the present invention, when bases, amino acids and the like are indicated by abbreviations, IUPAC-IUB Commision on Bi
This is based on an abbreviation by ochemical Nomenclature or an abbreviation commonly used in the art, and examples thereof are described below. When amino acids may have optical isomers,
Unless otherwise specified, L-form is shown.

DNA :デオキシリボ核酸 cDNA:相補的デオキシリボ核酸 A :アデニン T :チミン G :グアニン C :シトシン RNA :リボ核酸 mRNA:メッセンジャーリボ核酸 dATP:デオキシアデノシン三リン酸 dTTP:デオキシチミジン三リン酸 dGTP:デオキシグアノシン三リン酸 dCTP:デオキシシチジン三リン酸 ATP :アデノシン三リン酸 EDTA:エチレンジアミン四酢酸 SDS :ドデシル硫酸ナトリウム GlyまたはG:グリシン AlaまたはA:アラニン ValまたはV:バリン LeuまたはL:ロイシン IleまたはI:イソロイシン SerまたはS:セリン ThrまたはT:スレオニン CysまたはC:システイン MetまたはM:メチオニン GluまたはE:グルタミン酸 AspまたはD:アスパラギン酸 LysまたはK:リジン ArgまたはR:アルギニン HisまたはH:ヒスチジン PheまたはF:フェニールアラニン TyrまたはY:チロシン TrpまたはW:トリプトファン ProまたはP:プロリン AsnまたはN:アスパラギン GlnまたはQ:グルタミン なお、本発明のマウス・エンドセリン成熟ペプチドに
おいては、そのアミノ酸配列の一部が修飾(付加、除
去、その他のアミノ酸への置換など)されていてもよ
い。
DNA: deoxyribonucleic acid cDNA: complementary deoxyribonucleic acid A: adenine T: thymine G: guanine C: cytosine RNA: ribonucleic acid mRNA: messenger ribonucleic acid dATP: deoxyadenosine triphosphate dTTP: deoxythymidine triphosphate dGTP: deoxyguanosine tri Phosphate dCTP: Deoxycytidine triphosphate ATP: Adenosine triphosphate EDTA: Ethylenediaminetetraacetic acid SDS: Sodium dodecyl sulfate Gly or G: Glycine Ala or A: Alanine Val or V: Valine Leu or L: Leucine Ile or I: Isoleucine Ser or S: Serine Thr or T: Threonine Cys or C: Cysteine Met or M: Methionine Glu or E: Glutamic acid Asp or D: Aspartic acid Lys or K: Lysine Arg or R: Arginine His or H: Histidine Phe or F: Phenylalanine Tyr or Y: Tyrosine Trp or W: Tryptophan Pro or P: P Phosphorus Asn or N: Asparagine Gln or Q: Glutamine In the mature mouse endothelin peptide of the present invention, a part of its amino acid sequence may be modified (addition, removal, substitution with another amino acid, etc.) .

実施例 以下の参考例および実施例により本発明をより具体的
に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではな
い。
Examples The present invention will be described in more detail with reference to the following Reference Examples and Examples, but the present invention is not limited thereto.

なお、実施例1で得られた形質転換体はEscherichia
coli HB 101/pmET5およびEscherichia coli HB 101/pmE
T10は、昭和63年9月6日から通商産業省工業技術院微
生物工業技術研究所(FRI)に各々、受託番号FERM BP
−2032およびFERM BP−2033として寄託され保管されて
いる。
The transformant obtained in Example 1 was obtained from Escherichia
coli HB101 / pmET5 and Escherichia coli HB101 / pmE
T10 has been assigned to the Microorganisms and Industrial Technology Research Institute (FRI) of the Ministry of International Trade and Industry of the Ministry of International Trade and Industry on September 6,
Deposited and stored as -2032 and FERM BP-2033.

参考例 (1)血管平滑筋収縮作用のアッセイ法 内皮を注射針による擦過にて除去したブタ右冠状動脈
スパイラル標本(0.5×20mm)を炭酸ガスと酸素の混合
ガス(5:95、V/V)で飽和した37℃のクレブス−リンゲ
ル液(3ml)中に懸垂する。刺激前張力(basal tensio
n)を2gに設定したのち、張力トランスデューサーで等
尺性張力を測定する。
Reference example (1) Assay method for vascular smooth muscle contraction effect A swine right coronary artery spiral specimen (0.5 × 20 mm) from which endothelium was removed by abrasion with a syringe needle was mixed with a mixed gas of carbon dioxide and oxygen (5:95, V / V). Suspension in Krebs-Ringer solution (3 ml) at 37 ° C. saturated with). Basal tensio
After setting n) to 2 g, measure the isometric tension with a tension transducer.

実施例1 マウス・エンドセリンDNAの単離とその塩基
配列の決定 大腸菌LE392にマウスDNAライブラリー(マウス肝由来
DNAをSau3Aで部分分解してキャロン28に結合したもの)
を感染させてプレーティングし、ファージプラークを出
現せしめた。ベントンとデイビス(Benton,W.,Davis,
R.)の報告〔サイエンス(Science)196,180−182(197
7)〕に従ってプラークDNAの一部をニトロセルロース膜
にうつしとり、32Pで標識した前項のDNAプローブとプラ
ークハイブリダイゼーションを行なった。ハイブリダイ
ゼーションは、ホルムアミド非存在下、65℃で行なっ
た。ハイブリダイゼーション陽性の23個のクローンを単
離し、そのうちのひとつであるmET5のEcoR I Xba I DN
A部分とmET10のBamH I DNA部分を切り出してプラスミ
ドpUC18の相当部位にリクローニングし、プラスミドpmE
T5とpmET10を作製した。このプラスミドで大腸菌HB101
を形質転換し、形質転換体Escherichia coli HB101/pmE
T5とE.coli HB101/pmET10を得た。このプラスミドに含
まれるDNA部分は1.4Kbpと1.8KpbでありこのDNA断片を含
むDNAの簡単な制限酵素地図を第1図に示した。図中の
区域は以下のものを示す。
Example 1 Isolation of mouse endothelin DNA and determination of its nucleotide sequence A mouse DNA library (derived from mouse liver) was used in E. coli LE392.
DNA partially digested with Sau3A and bound to Caron 28)
Was infected and plated to reveal phage plaques. Benton, W., Davis,
R.) [Science 196 , 180-182 (197
Utsushitori part of plaque DNA to a nitrocellulose membrane according to 7)], 32 was subjected to DNA probe and plaque hybridization of the labeled preceding by P. Hybridization was performed at 65 ° C. in the absence of formamide. 23 clones positive for hybridization were isolated and one of them was EcoR I Xba I DN of mET5.
The A part and the BamHI DNA part of mET10 were cut out and recloned into the corresponding sites of the plasmid pUC18.
T5 and pmET10 were prepared. Escherichia coli HB101
And transformant Escherichia coli HB101 / pmE
T5 and E. coli HB101 / pmET10 were obtained. The DNA portions contained in this plasmid are 1.4 Kbp and 1.8 Kpb, and a simple restriction map of the DNA containing this DNA fragment is shown in FIG. Areas in the figure indicate the following.

このcDNA部分の塩基配列をサンガー(Sanger)の方法
〔プロシージング オブ ザ ナショナル アカデミー
オブ サイエンス(Proc.Nat.Acad.Sci.USA)74,5463
−5467(1977)〕によって決定した。この塩基配列、お
よびそれより推定されるマウス・エンドセリ(αとβ)
のアミノ酸配列を第2図に示した。
The method of the nucleotide sequence of the cDNA portion Sanger (Sanger) [Pro sheathing of The National Academy of Sciences (Proc.Nat.Acad.Sci.USA) 74, 5463
-5467 (1977)]. This base sequence and mouse endoseri (α and β) deduced from it
The amino acid sequence of is shown in FIG.

で囲った領域が、マウス・エンドセリン(αとβ)成熟
ペプチド部である。
The region surrounded by is the mature peptide of mouse endothelin (α and β).

実施例2 i)マウス・エンドセリンβ合成 市販のBoc−Trp(CHO)−PAM樹脂、(アプライド・バ
イオシステムズ社製)0.7g(0.5m mole)を用い、ペプ
チド合成機(アプライド・バイオシステムズ社製・モデ
ル430A)を使用し、通常の方法により合成した。縮合方
法は、樹脂上のBoc基を塩化メチレン中50%トリフルオ
ロ酢酸で処理し、末端アミノ基を遊離させ、この遊離の
アミノ基にBoc−Ile,Boc−Asp(OBzl),Boc−Leu,Boc−
His(Tos),Boc−Cys(Acm),Boc−Tyr(Br−z),Boc
−Val,Boc−Phe,Boc−Glu(OBzl),Boc−Lys(Cl−
Z),Boc−Trp(CHO),Boc−Ser(Bzl)をC末端側より
マウスエンドセリンのアミノ酸配列通りに、DCCの存在
下に縮合させる反応をくり返した。
Example 2 i) Mouse endothelin β synthesis Using a commercially available Boc-Trp (CHO) -PAM resin, 0.7 g (0.5 mmole) (manufactured by Applied Biosystems), a peptide synthesizer (manufactured by Applied Biosystems) -Using the model 430A), it was synthesized by a usual method. In the condensation method, the Boc group on the resin is treated with 50% trifluoroacetic acid in methylene chloride to release a terminal amino group, and the free amino group is added to Boc-Ile, Boc-Asp (OBzl), Boc-Leu, Boc−
His (Tos), Boc-Cys (Acm), Boc-Tyr (Br-z), Boc
-Val, Boc-Phe, Boc-Glu (OBzl), Boc-Lys (Cl-
Z) The reaction of condensing Boc-Trp (CHO) and Boc-Ser (Bzl) from the C-terminal side according to the amino acid sequence of mouse endothelin in the presence of DCC was repeated.

この様にして得られた保護マウスエンドセリン樹脂2.
53gのうち890mgをアニソール1ml、1,2−エタンジチオー
ル1mlで膨張させ、0℃でフッ化水素10mlと60分間処理
した後、過剰のフッ化水素を減圧留去した。残渣をジエ
チルエーテル5mlで洗った後、トリフルオロ酢酸に抽出
し、樹脂をろ去した。トリフルオロ酢酸を減圧留去した
のち、50%−酢酸水に溶解し、デキストランゲル(セフ
ァデックスG−50)カラム(2×90cm)に付し、同溶媒
で溶出した主分画を集め凍結乾燥し、180mgの白色粉末
を得た。これの31mgを50%−酢酸水4mlに溶解し、トリ
フルオロ酢酸第二水銀19mgを加え、室温で16時間撹拌し
たのち、n−ブタノール100ml,メタノール50ml,水50ml
を加え希釈し、硫化水素ガスを通じた。これに5%−NH
4OHを加えてpH8に調節したのち、6時間空気酸化に付
し、酢酸を加えpH3としたのち、凍結乾燥した。これを5
0%−酢酸で充填したセファデックスG−50のカラム
(2×90cm)に付し、主要分画を集め、さらにHPLC(カ
ラム:YMC,溶媒:0.1%−トリフルオロ酢酸水と0.1%−ト
リフルオロ酢酸含有アセトニトリルの直線型濃度勾配溶
出)で分取し目的物1.0mgを得た。
The protected mouse endothelin resin thus obtained 2.
890 mg of 53 g was expanded with 1 ml of anisole and 1 ml of 1,2-ethanedithiol, treated with 10 ml of hydrogen fluoride at 0 ° C. for 60 minutes, and then excess hydrogen fluoride was distilled off under reduced pressure. The residue was washed with 5 ml of diethyl ether, extracted with trifluoroacetic acid, and the resin was removed by filtration. After trifluoroacetic acid was distilled off under reduced pressure, the residue was dissolved in 50% aqueous acetic acid, applied to a dextran gel (Sephadex G-50) column (2 × 90 cm), and the main fraction eluted with the same solvent was collected and freeze-dried. Thus, 180 mg of a white powder was obtained. 31 mg of this was dissolved in 4 ml of 50% aqueous acetic acid, 19 mg of mercuric trifluoroacetate was added, and the mixture was stirred at room temperature for 16 hours.
, And the mixture was diluted with hydrogen sulfide gas. 5% -NH
After adjusting the pH to 8 by adding 4 OH, the mixture was subjected to air oxidation for 6 hours, acetic acid was added to adjust the pH to 3, and then freeze-dried. This is 5
The mixture was applied to a Sephadex G-50 column (2 × 90 cm) packed with 0% acetic acid, and the main fractions were collected. (Acetonitrile containing fluoroacetic acid was eluted with a linear gradient) to obtain 1.0 mg of the desired product.

合成マウス・エンドセリンβは、HPLCでエンドセリン
α23.33分に対し、23.84分に溶出された。
Synthetic mouse endothelin β was eluted by HPLC at 23.84 minutes compared to 23.33 minutes for endothelin α.

カラム条件 YMC−ODS(4.6×150mm) 溶離液:A液(0.1%−トリフルオロ酢酸水) B液(0.1%−トリフルオロ酢酸含有アセト
ニトリル) を用いA液からB液へ直線型濃度勾配溶出(50分) 流速:1.0ml/分 アミノ酸分析値: Asp3.33(3),Ser2.00(2),Glu1.32(1),Cys3.5
2(4),Val0.92(1),Ile1.73(2),Leu2.19(2),
Try0.93(1),Phe1.0(1),Lys1.13(1),His0.99
(1),Trp1.88(2) ここでのS−S結合位置はマウス成熟エンドセリンβ
のCysの番号で示して、1−15,3−11の組合せであっ
た。
Column conditions YMC-ODS (4.6 x 150 mm) Eluent: Solution A (0.1% -trifluoroacetic acid aqueous solution) Using solution B (0.1% -trifluoroacetic acid-containing acetonitrile), linear concentration gradient elution from solution A to solution B ( Flow rate: 1.0 ml / min Amino acid analysis value: Asp3.33 (3), Ser2.00 (2), Glu1.32 (1), Cys3.5
2 (4), Val0.92 (1), Ile1.73 (2), Leu2.19 (2),
Try0.93 (1), Phe1.0 (1), Lys1.13 (1), His0.99
(1), Trp1.88 (2) Here, the SS binding position is mouse mature endothelin β
And the combination of 1-15 and 3-11.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

第1図はマウス・エンドセリン(αとβ)前駆体や成熟
ペプチドDNAを含むDNAの簡単な制限酵素地図である。 第2図はマウス・エンドセリン(αとβ)前駆体や成熟
ペプチドDNAの塩基配列およびそれより推定されるマウ
ス・エンドセリン(αとβ)前駆体の一部や成熟ペプチ
ドのアミノ酸配列を示す。
FIG. 1 is a simple restriction map of DNA including mouse endothelin (α and β) precursors and mature peptide DNA. FIG. 2 shows the nucleotide sequences of the mouse endothelin (α and β) precursor and the mature peptide DNA, and the amino acid sequences of a part of the mouse endothelin (α and β) precursor and the mature peptide deduced therefrom.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI C12N 5/10 C12P 21/02 C C12P 21/02 C12N 5/00 B // A61K 38/00 AER A61K 37/02 AER (72)発明者 齊田 要 茨城県つくば市東1丁目1番3号 工業 技術院微生物工業技術研究所内 (72)発明者 藤野 政彦 兵庫県宝塚市雲雀丘2丁目10番7号 審査官 斎藤 真由美 (56)参考文献 特開 平2−72877(JP,A) FEBS LETTERS,Vol. 231,No.2,(April 1988), P.440〜444 Nature,Vol.332 (31 March 1988),P.411〜415 (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C12N 15/00 - 15/90 C07K 1/00 - 19/00 C12N 1/00 - 5/28 C12P 21/00 - 21/08 BIOSIS(DIALOG) WPI(DIALOG) DDBJ/GenBank/EMBL(G enseq)──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code FI C12N 5/10 C12P 21/02 C C12P 21/02 C12N 5/00 B // A61K 38/00 AER A61K 37/02 AER (72 Inventor Kaname Saida 1-3-1 Higashi, Tsukuba City, Ibaraki Pref.Institute of Microbiology, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (72) Inventor Masahiko Fujino 2-10-7 Hibarigaoka, Takarazuka-shi, Hyogo Examiner Mayumi Saito (56) Reference Document JP-A-2-72877 (JP, A) FEBS LETTERS, Vol. 2, (April 1988), p. 440-444 Nature, Vol. 332 (31 March 1988); 411-415 (58) Fields investigated (Int.Cl. 6 , DB name) C12N 15/00-15/90 C07K 1/00-19/00 C12N 1/00-5/28 C12P 21/00-21 / 08 BIOSIS (DIALOG) WPI (DIALOG) DDBJ / GenBank / EMBL (Genseq)

Claims (7)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】アミノ酸配列Cys Ser Cys Asn Ser Trp Le
u Asp Lys Glu Cys Val Tyr Phe Cys His Leu Asp Ile
Ile Trpで表されるペプチドをコードするDNAを含有する
DNA。
1. The amino acid sequence Cys Ser Cys Asn Ser Trp Le
u Asp Lys Glu Cys Val Tyr Phe Cys His Leu Asp Ile
Contains DNA encoding the peptide represented by Ile Trp
DNA.
【請求項2】ペプチドをコードするDNAが塩基配列 で表される請求項1記載のDNA。2. The DNA encoding the peptide has a base sequence. The DNA according to claim 1, which is represented by: 【請求項3】ペプチドをコードするDNAが次の塩基配列 で表わされる、請求項1記載のDNA。3. The DNA encoding the peptide has the following nucleotide sequence: The DNA according to claim 1, which is represented by the following formula: 【請求項4】アミノ酸配列 で表されるペプチド。4. An amino acid sequence A peptide represented by 【請求項5】アミノ酸配列 で表される請求項4記載のペプチドの前駆体。5. An amino acid sequence The precursor of the peptide according to claim 4, which is represented by the following formula: 【請求項6】請求項1記載のDNAを保持する形質転換
体。
6. A transformant carrying the DNA according to claim 1.
【請求項7】請求項6記載の形質転換体を培養し、培養
物中にアミノ酸配列Cys Ser Cys Asn Ser Trp Leu Asp
Lys Glu Cys Val Tyr Phe Cys His Leu Asp Ile Ile Tr
pで表されるペプチドを生成蓄積せしめ、これを採取す
ることを特徴とする該ペプチドの製造方法。
7. The transformant according to claim 6, which is cultured, and the amino acid sequence Cys Ser Cys Asn Ser Trp Leu Asp is added to the culture.
Lys Glu Cys Val Tyr Phe Cys His Leu Asp Ile Ile Tr
A method for producing a peptide represented by p, comprising producing and accumulating a peptide represented by p, and collecting the peptide.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
FEBS LETTERS,Vol.231,No.2,(April 1988),P.440〜444
Nature,Vol.332 (31 March 1988),P.411〜415

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