JP2022554277A - エンドセリンレセプターアンタゴニストを使用する眼疾患の処置 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年10月30日および2020年8月20日にそれぞれ出願された米国仮特許出願第62/928,092号および同第63/068,215号(これらの全内容は、全ての目的のために本明細書に参考として援用される)の優先権を主張する。
本開示は、医療の分野および眼疾患の処置に関する。より具体的には、本開示は、緑内障、糖尿病網膜症(DR)、網膜静脈閉塞症(RVO)、非動脈炎性前部虚血性視神経症(non-arteritic anterior ischemic optic neuropathy)(NAION)、動脈炎性前部虚血性視神経症(arteritic anterior ischemic optic neuropathy)(AION)、および未熟児網膜症(ROP)の処置または改善におけるエドネンタンおよびA-182086エンドセリンレセプターアンタゴニストの使用に関する。
眼の疾患は、ヒトのクオリティー・オブ・ライフに対して非常に大きな影響を有するが、有効な処置は非常に分かりにくいままである。米国では、一千億ドル超という年間の経済的負担が、視力喪失、眼疾患、および視覚障害から生じると概算される。消耗性の眼疾患の例としては、緑内障、糖尿病網膜症(DR)、網膜静脈閉塞症(RVO)、非動脈炎性前部虚血性視神経症(NAION)、動脈炎性前部虚血性視神経症(AION)、および未熟児網膜症(ROP)が挙げられる。
本発明は、緑内障、糖尿病網膜症(DR)、網膜静脈閉塞症(RVO)、非動脈炎性前部虚血性視神経症(NAION)、動脈炎性前部虚血性視神経症(AION)、および未熟児網膜症(ROP)から選択される眼疾患を処置するためにエンドセリンレセプターアンタゴニストを使用する方法を提供する。
本発明は、エドネンタンおよびA-182086が、眼疾患(緑内障、糖尿病網膜症(DR)、網膜静脈閉塞症(RVO)、非動脈炎性前部虚血性視神経症(NAION)、動脈炎性前部虚血性視神経症(AION)、および未熟児網膜症(ROP)が挙げられるが、これらに限定されない)を防止する、処置する、または別の方法で改善するために使用され得るという発見から生じる。本発明は、以下にさらに記載される。
本発明の方法は、眼の組織と(局所的または眼内での)治療上有効な量のエドネンタンおよびA-182086、またはこれらの薬学的に受容可能な塩との接触または投与を包含する。上記アンタゴニストは、以下で記載されるように、具体的にはエドネンタンおよびA-182086である。
本開示の方法は、緑内障、糖尿病網膜症(DR)、網膜静脈閉塞症(RVO)、非動脈炎性前部虚血性視神経症(NAION)、動脈炎性前部虚血性視神経症(AION)、および未熟児網膜症(ROP)から選択される眼疾患(これらは以下に記載される)の処置および改善において、上記のエドネンタンおよびA-182086の使用を包含する。
本明細書で記載されるエドネンタンまたはA-182086を使用する緑内障の処置において、「治療上有効な量」とは、標準ケアによって達成され得るもの(眼内圧(IOP)の降下)を超える、網膜血流(RBF)の改善を評価することによって決定され得る。緑内障兆候に関して、健常ウサギ眼モデルにおける血流の改善は、ヒトにおける薬力学的応答(PD)の予測因子として使用され得る。ウサギは、ウサギおよびヒトの眼の解剖学的および機能的類似性に起因して、ヒトの眼疾患を目標とする化合物に関して眼のPK/PD関係を評価するために一般に使用される。以前は、ET-1をウサギの眼に硝子体内投与することで、顕著な血管収縮および視神経損傷を誘導することが示された(Sasaoka M.ら, Exp Eye Res 2006; Sugiyama T.ら, Arch Ophthalmol 2009)。このモデルにおける有効性は、ある特定の濃度での硝子体内ET-1投与によって誘導される灌流障害の逆転に対する基準にされる。例えば、上記有効性は、ヒトの緑内障患者の血漿および眼房水において観察されるレベルに等しい濃度で達成され得る(Li S.ら, Journal of Ophthalmology 2016)。
血流=(灌流圧×πr4)/(8ηl)
ここで
l: 血管の長さ
r: 血管の半径
η: 血液の粘性
灌流圧: 平均動脈圧-IOP
さらに、エドネンタンまたはA-182086は、網膜/視神経乳頭組織灌流における改善とは独立した機序を通じて、IOPを降下させ得るおよび/またはRGC死滅を防止し得る。よって、ある特定の特異的エンドセリンレセプターアンタゴニストを使用することによって、上記のパラメーターのうちの1つ(r)またはより多くの(IOP)が、RBFを改善するように変化させられ得、よって、緑内障を処置することにおける治療有効性を達成する。
糖尿病は、微小血管障害性(網膜症、ニューロパチーおよび糖尿病性腎症)および大血管障害性(macroangiopathic)(心血管疾患)として分類される重篤な後期合併症を引きおこし得る。糖尿病網膜症は、網膜の小血管およびニューロンに対する損傷の結果である。糖尿病網膜症をもたらす最も早い変化としては、網膜血流の低減と関連した網膜動脈の狭窄;網膜内層のニューロンの機能障害、続いて、後のステージでは、視覚機能の微妙な変化と関連する網膜外層の機能の変化;血液中の多くの物質(毒素および免疫細胞が挙げられる)から網膜を防御する血液網膜関門の機能障害が挙げられ、網膜神経網(retinal neuropile)への血液成分の漏出をもたらす。後に、網膜血管の基底膜は肥厚化し、毛細管は変性して細胞、特にペリサイトおよび血管平滑筋細胞を失う。これは、血流の喪失および進行性の虚血、ならびに毛細管壁からはみ出したバルーン様構造(これは、炎症性細胞を動員する)として現れる顕微鏡的動脈瘤をもたらし;そして網膜のニューロンおよびグリア細胞の進行した機能障害および変性をもたらす。
網膜の血管障害である網膜静脈閉塞症(RVO)は現在、黄斑浮腫を引きおこす増殖因子を阻害するための抗VEGF薬物および浮腫をもたらす炎症性の構成要素と戦うためのコルチコステロイドの硝子体内注射で処置される。組織灌流を改善し、全身の免疫抑制の不要な影響および/またはステロイドの局所的有害効果を回避しながら炎症を低減することによって、RVOを処置するためにエドネンタンおよびA-182086治療を使用することは、非常に望ましい。
非動脈炎性前部虚血性視神経症(NAION)において、視神経の前部に供給する小血管への血流の妨害が存在する。NAIONにおける視力喪失は、疼痛がなく、急速であり、通常は恒久的である。NAIONのリスク因子としては、アテローム性動脈硬化症(これは、視神経に供給する血管を通る血流を損なうので)および「絞扼された(tight)」視神経を含む。「リスクのある乳頭(disc at risk)」ともいわれる、小さな眼杯を有するかまたは眼杯のない視神経は、眼に入る場合に、強膜を通過する「絞扼された」経路になる。強膜を通過するこの絞扼された経路は、視神経に供給する小血管にさらなる圧力を課すと考えられる。アテローム性動脈硬化症は、これらの小血管の外径の増大を(および内径の減少を)引きおこすことから、血管が広がる余地がない。なぜならそれらは、「絞扼された」視神経によって拘束されるからである。このプロセスは最終的に、視神経への適切な血流の喪失をもたらし、虚血性視神経症が後に起こる。NAIONを処置しようとする試みは、視神経に対する機械的圧力およびその支持する血管系を解放するために、放射状神経切開術(radial neurotomy)を含んだ。この手順は、眼内手術のリスクの全てを有し、実施するのは困難である。穿孔される領域は、周囲の構造と同様に極めて繊細である。これらの構造に付帯する損傷は、希なことではない。
動脈炎性前部虚血性視神経症(AION)は、50歳を超える高齢患者において主に起こり、その後各10年間で発生率が増大する急性の、しばしば有痛性の視神経症であり、視覚の恒久的な喪失を引きおこし得る。虚血は、神経線維の構造的密集と関連して、視神経の頭部で起こり、灌流を損ない、視神経乳頭浮腫をもたらす。白色人種がより高い割合で罹患することを証拠が示していることから、上記疾患には遺伝的構成要素があると考えられるが、多くの異なる人種および民族においても報告されている。
未熟児網膜症(ROP)は、早産児に影響を及ぼす網膜血管増殖性疾患である。ROPは、全世界で失明および視覚障害の主要な防止可能な原因であり続けている。周産期ケアの改善、中等度早産児(moderately preterm infant)の生存の改善、および酸素送達およびモニタリングに関する資源の制限に伴って、発展途上国では、より成熟した早産児が、重篤なROPを発生している。
ROPは、早産に続発する網膜血管の発達不全に起因する重篤な虚血によって誘導される。従って、本発明の一局面として、本発明者らは、エドネンタンまたはA-182086での既存の血管の灌流の改善が、虚血の程度およびVEGFアップレギュレーション、およびROPとして症状発現する下流の不適応の変化を低減すると考える。有効性を試験するために、ROPの前臨床マウスモデルが使用され得る。上記マウスにおける酸素誘導性網膜症は、ROPにおける網膜新生血管形成に関する病因および治療介入を試験するために適切な、再現性がありかつ定量可能な増殖性網膜新生血管形成モデルである。上記モデルは、以前に記載されるように、1週齢のC57BL/6Jマウスを75%酸素に5日間、次いで、室内気へと曝すことによって誘導される(Smith LEHら, Invest Ophthalmol Vis Sci 1994)。ROPのこの前臨床モデルにおける有効性は、網膜低酸素症および新生血管形成を試験することによって評価され得る。エドネンタンまたはA-182086の「治療上有効な量」は、本明細書で記載されるように、組織灌流を改善し、VEGFによって誘導される病的な新生血管形成を低減することによる、現在の標準ケアに対する追加である。いくつかの実施形態において、上記薬物治療は、患者の疾患経過および治療への応答に基づいて、必要な場合に4~6週間ごとの頻度で、硝子体内、局所、脈絡膜上、またはインプラント送達プラットフォームを使用して眼の後ろ側に局所投与される。例えば、上記薬物治療は、患者の疾患経過および治療への応答に基づいて、必要な場合に5週間ごとの頻度で、硝子体内注射を使用して眼の後ろ側に局所投与される。
本明細書で記載されるいくつかの実施形態は、治療上有効な量の、エドネンタンおよびA-182086(本明細書で記載される)のうちの一方、またはその薬学的に受容可能な塩、および薬学的に受容可能なキャリア、希釈剤、賦形剤またはこれらの組み合わせを含み得る薬学的組成物に関する。このようなアンタゴニストまたはその薬学的に受容可能な塩は、結晶形態または非晶質形態にあり得る。これらの各々は、薬理学的に受容可能な使用のためのものであり得る。
以下の表1に提供されるのは、上記のエドネンタンおよびA-182086に関する物理化学的および生化学的データである。表1に示されるように、pH2では、A-182086は、エドネンタンのものより優れた溶解度を有する。他方で、pH7では、エドネンタンは、A-182086のものより優れた溶解度を有する。
表1. 化合物の物理化学的および生化学的特徴付け
b 表面電荷分布(主にOおよびN)を考慮して適切に計算した。およそ90またはこれ未満のPSAを有する化合物は、血液脳関門を横断すると推測される。
適切な量のエドネンタンを、ニートのPEG400中に溶解し、続いて、15% CD(HP-β-シクロデキストリン)溶液を添加する。PEG400の最終濃度は、20%であると測定される。目標濃度は、エドネンタンの量に基づいて、5mg/mlおよび0.5mg/mlである。その得られた溶液を、0.25ミクロンフィルターを使用して濾過する。
成体雄性Dutch-beltedウサギに、0.5μgのET-1の20μl 硝子体内注射(IVT)を与え、続いて、10~100μg エドネンタンの20μl 硝子体内注射を、ET-1投与の30分後に与えた。IOP、光干渉断層撮影-血管造影検査(OCT-A)、およびフルオレセイン血管造影図(FA)を、ET-1およびエドネンタン投与後の所定の時点(30分、45分、60分、および75分)で行って、ET-1±エドネンタンによって誘導された網膜血流変化を評価した。図1に示されるように、ET-1投与は、45分以内に網膜血管床において明らかな血管収縮を効果的に誘導した。図2は、ET-1の効果が、次いで、90分以内(エドネンタン投与の60分後)の10μgのエドネンタン投与で逆転されたことを示す。
濃縮エドネンタン分散物を、エドネンタンと、水、ビタミンE-TPGSおよびγ-シクロデキストリンとを合わせることによって作製する。これらの成分を混合して、エドネンタンを分散させ、次いで、オートクレーブにかける。ヒアルロン酸ナトリウムを、無菌粉末として購入し得るか、または希薄溶液を濾過によって滅菌し、続いて、凍結乾燥して、無菌粉末を獲得し得る。その無菌ヒアルロン酸ナトリウムを水に溶解して、水性濃縮物にする。その濃縮したエドネンタン分散物を混合し、スラリーとしてヒアルロン酸ナトリウム濃縮物に添加する。水を、十分量で(十分な程度に、この場合、均質な混合物、分散物、ゲルまたは懸濁物を調製するために必要とされる十分な程度に)添加し、その混合物を、均質になるまで混合する。これらの組成物の例を、以下の表2に提供する:
表2. エドネンタンを含む長期放出製剤の組成物
局所エドネンタン製剤を、公知の方法(例えば、WO 2016156639 A1)に従って調製し得る。より具体的には、20gのCremophor(登録商標) RH40を、磁性式撹拌によって75mLの脱イオン水に溶解し、これを、完全に溶解するまで撹拌させておく。次いで、1.5gのトロメタモールを、その得られる溶液に添加し、15分間撹拌し、完全な溶解を達成する。0.5gのエドネンタンを添加し、15分間撹拌させ、完全な溶解を確実にする。次いで、2gのグリシンおよび1gのホウ酸を添加し、完全に溶解されるまで撹拌させる。その得られた溶液を、100mL 脱イオン水に十分量で添加する。その最終溶液を濾紙で濾過すると、pH8.06を有する無色透明溶液が得られる。容積5mLを有する点眼用滴瓶の点眼剤中に上記溶液を充填する。
ナノ粒子を、溶媒エバポレーション技術によって調製した。60mLの酢酸エチル中120mgの50:50 PLGAの溶液を、調製した。この溶液に、50mlの水と12mgのエドネンタンおよび0.5mgのポリビニルアルコールの水性溶液を、激しく撹拌しながら組み込んだ。その得られた混合物を、連続撹拌下および2時間の真空下で放置した。次いで、その得られた調製物を超遠心分離し、水で3回洗浄して、その媒体からナノ粒子を取り出した。そのようにして得たナノ粒子を、真空オーブン中で乾燥させ、評価後に、5mg/1mLのエドネンタンの濃度に対して十分な等張性の水性溶液中に分散させた。
健常ウサギモデルは、エドネンタンおよび/もしくはA-182086またはこれらの薬学的に受容可能な塩の薬力学的効果を(インビボで)評価するために使用される。これらの試験を、選択したエンドセリンアンタゴニストの種々の用量で行う。さらなる動物試験を、エンドセリンアンタゴニストと現在の標準ケアとを組み合わせることによって行う。緑内障のMorrisonのラットモデル、急性に上昇したIOP上昇のラットモデルおよび非ヒト霊長類のレーザー誘導性緑内障モデルを使用して、標準ケアありおよびなしの選択したエンドセリンアンタゴニストの種々の用量に伴う視神経乳頭血流および網膜神経節細胞喪失の割合を評価する。
ウサギにおいて硝子体内投与したエンドセリン-1(ET-1)、続いて、アンタゴニストであるエドネンタンの投与後の網膜血流の効果を評価するために、ウサギ(Oryctolagus cuniculus)の左眼に、ET-1の20μL 硝子体内注射を、続いて、2種(または3種)の異なる用量(例えば、0.1μg、0.5μg、2.5μg)のエドネンタンの20μL 硝子体内注射を与えた。パルスオキシメーター、眼圧測定、光干渉断層撮影-血管造影検査(OCTA)、フルオレセイン血管造影検査(FA)および網膜漏出スコア付けを、評価のために行った。ウサギにおける用量応答を、図8Aおよび図8Bに示す。
ウサギにおける硝子体内投与後のエドネンタンの薬物動態および安全性特性を決定するために、ウサギ(Oryctolagus cuniculus)に、両側の硝子体内注射(20μL 注射容積/眼)を与えた。その注射後に、動物をケタミン/キシラジンカクテルで鎮静化し、次いで、その動物を、ペントバルビタールナトリウム(Euthasol)の過剰投与で安楽死させた。薬物動態分析のために指定された動物を、種々の時点(例えば、12時間、16時間、24時間、36時間および48時間)で安楽死させた。少なくとも1.0mLの全血を、耳介縁部(marginal ear)の静脈または心臓穿刺(終末採血のみ)から、血漿収集のためにK2EDTAチューブへと採血し、分析のために処理した。
ウサギにおける局所投与後のエドネンタンの薬物動態特性を決定するために、ウサギ(Dutch-beltedウサギ)の両眼に、点眼剤(100μgのエドネンタン、35μL用量容積/眼)を与えた。その投与後に、動物(N=2)を、種々の時点(例えば、10分(投与直後(immediately after pot-dose))、2時間および7時間)で安楽死させ、分析のために組織を集めた。集めた組織のリストは、血漿、網膜、硝子体液および眼球結膜を含む。ウサギにおいて局所送達したエドネンタンの薬物動態特性を図10に示す。これは、エドネンタンが、1回の局所適用後の全ての時点で試験した全ての組織において検出されたことを示す。
成体雄性および雌性の繁殖を終えたBrown Norwayラット(およそ8~11ヶ月の年齢群)を、Envigo(Indianapolis, IN)から得た。ベースラインIOP測定およびパターン網膜電図(PERG)振幅を、IOPの上昇のための手術前に集めた(IOPおよびPERG振幅が、予測される値の範囲にあったことを担保するため)。IOPをラットの片眼(左眼)で上昇させた一方で、その対応する右眼を、対側のコントロールとして供した。ラットにおいてIOPを上昇させるMorrison法を、50μLの高張性食塩水を強膜上静脈を経て注射することによって行って、線維柱網を硬化させた。IOPを、実験の継続期間全体の間に1週間に2回測定した。手術の7~10日後に、IOP上昇が、ラットの手術した眼において観察された。2連続日にわたってIOPの上昇を検出した後、点眼剤の局所投与(IOPが上昇した眼において20μL(100μg)/用量の試験化合物)を開始し、1週間に5日間、合計4週間にわたって行った。処置の4週間目に、PERG分析を行い、ラットを、ペントバルビタール(Fatal-Plus)の過剰投与によって屠殺した。眼房水をラットの眼から集め、凍結し、分析のために送付した。網膜のフラットマウントを準備し、RGCマーカー、Brn3a抗体で免疫染色し、生存しているRGCを、2つの偏心(eccentricity)(中心および周辺部)で計数した。
ラットにおける局所投与後に、エドネンタンまたはA-182086の薬物動態特性を決定するために、ラット(Brown Norwayラット)に、点眼剤(100μgのエドネンタン、20μL用量容積/眼;または100μgのA-182086、20μL用量容積/眼)を与えた。ラットにおける経口投与後のエドネンタンまたはA-182086の薬物動態特性を決定するために、ラット(Brown Norwayラット)に、10mg/kgもしくは50mg/kgのエドネンタンの経口投与、または1.7mg/kgもしくは17mg/kgのA-182086の経口投与を与えた。投与後に、動物(N=2)を、種々の時点(例えば、4時間および8時間)で安楽死させ、組織を分析のために集めた。集めた組織のリストは、血漿、網膜/網膜色素上皮(RPE)/脈絡膜、硝子体液および眼房水を含む。ラットにおいて局所投与または経口投与したエドネンタンの薬物動態特性を、図5Cに示す。ラットにおいて局所投与または経口投与したA-182086の薬物動態特性を、図6Cに示す。図5Cおよび図6Cは、エドネンタンおよびA-182086の両方が、網膜/RPE/脈絡膜、眼房水および硝子体液において局所投与の4時間後および8時間後で検出されることを示す。これらのデータはまた、エドネンタンが、エドネンタンの経口投与後に17mg/kgで眼房水において、ならびに1.7および17mg/kgで網膜/RPE/脈絡膜および硝子体液において検出可能であり、A-182086が、A-182086の経口投与後に50mg/kgで網膜/RPE/脈絡膜において検出可能であることを明らかにした。
関連するマウスモデルを、図4に示されるように、種々の時点で、酸素誘導性虚血性網膜症(OIR)を有するマウスにおいて網膜低酸素領域を得るために使用した。エドネンタンによるマウス酸素誘導性虚血性網膜症(OIR)モデルの網膜低酸素症の改善が、明らかにされる。簡潔には、P17において、OIRを有するマウス(n=60)に、ET-1アンタゴニストの注射(1μLの2μg/μL エドネンタン製剤、単一用量)を片眼に与え、PBSを他眼に与えた。注射後24時間、48時間、および96時間で、マウス(各時点に対してn=10)を安楽死させ、網膜を解剖し、GSAレクチンおよびhypoxyprobeで染色した。NVの領域、網膜低酸素症の領域、および網膜非灌流の領域を、各網膜に対して決定した。
非ヒト霊長類(アカゲザル、Macaca Mulatta)を、この試験のために得た。各動物の片眼に、線維柱網の反復レーザー光凝固による眼内圧(IOP)の上昇の誘導を行った。画像化セッションを反復して、視神経乳頭(ONH)および網膜構造の変化をモニターした。
レーザー誘導性緑内障モデルにおけるONH血流の指数として、全体の平均ブレ率(MBR)およびベースラインからの経時的なMBR変化において3匹の非ヒト霊長類の実験的緑内障の眼および対側の健常な眼(コントロール)を比較する試験を行った。より具体的には、ビヒクルコントロール、0.02mg/mLのエドネンタン、0.2mg/mLのエドネンタン、または2.0mg/mLのエドネンタンを、3匹の非ヒト霊長類(アカゲザル、Macaca Mulatta)の各々の緑内障の眼に硝子体内投与した(50μL)。次いで、ONH血流を、図7A~7Lに示されるように、レーザースペックルフローグラフィー(LSFG)を使用して6時間かけて測定した。これらのグラフは、ビヒクル単独(図7A、図7E、および図7I)、0.02mg/mLのエドネンタン(図7B、図7F、および図7J)、0.2mg/mLのエドネンタン(図7C、図7G、および図7K)または2.0mg/mLのエドネンタン(図7D、図7H、および図7L)のIVT投与後の3匹の非ヒト霊長類におけるONH血流を示す。図7A~7Lは、エドネンタンでの処置後に用量依存性様式において、ONH血流の改善を明らかにする。3匹の非ヒト霊長類の集合結果を、図7Mに示す。これは、エドネンタンが、コントロールの眼と比較して、実験的緑内障の眼において網膜動脈、静脈、および毛細管の拡張から生じるONH血流の用量関連増大を明らかに示すことを示す。
単一用量の0.5% チモロールまたは単一用量の2mg/mL エドネンタンを、右眼(OD)にレーザー誘導性緑内障を有する3匹の非ヒト霊長類に、無作為の順序での1週間洗い流しを伴って局所投与した。
コントロール1: 各眼における単一用量の50μLの局所的チモロール 0.5%は、投与前から投与後(120分間)へと約20%のIOP降下を示した。
本明細書で開示される特徴は全て、任意の組み合わせにおいて組み合わされ得る。本明細書で開示される各特徴は、同じ、等価な、または類似の目的を果たす代替の特徴によって置換され得る。従って、別段明示的に述べられなければ、開示される各特徴は、包括的な一連の等価なまたは類似の特徴の例に過ぎない。
Claims (24)
- 眼疾患を処置する方法であって、前記方法は、
被験体の視覚組織と、治療上有効な量のエドネンタンもしくはA-182086のいずれか、またはこれらの薬学的に受容可能な塩、またはこれらの結晶形態もしくは非晶質形態を含む組成物とを接触させる工程、
を包含し、ここで前記眼疾患は、緑内障、糖尿病網膜症(DR)、網膜静脈閉塞症(RVO)、非動脈炎性前部虚血性視神経症(NAION)、動脈炎性前部虚血性視神経症(AION)、および未熟児網膜症(ROP)からなる群より選択される、方法。 - 前記処置の治療有効性は、視力または視野における改善の程度を評価することによって決定される、請求項1に記載の方法。
- 前記眼疾患は、緑内障である、請求項1に記載の方法。
- 前記処置の治療有効性は、眼内圧の降下、または視神経損傷の割合の低減を、視神経損傷を軽減または防止するために十分な量で検出することによって決定される、請求項3に記載の方法。
- 前記処置の治療有効性は、視神経乳頭血流の改善によって決定される、請求項3に記載の方法。
- 前記眼疾患は、DR、RVO、NAION、AION、またはROPである、請求項1に記載の方法。
- 前記処置の治療有効性は、糖尿病によって誘導される網膜神経変性の減少によって決定される、請求項6に記載の方法。
- 前記処置の治療有効性は、組織または網膜灌流の改善によって示される、請求項6に記載の方法。
- 前記処置の治療有効性は、組織もしくは網膜灌流の改善、炎症の低減、またはこれらの組み合わせを測定することによって決定される、請求項1に記載の方法。
- 前記組成物は、治療上有効な量の、眼内圧(IOP)降下剤もしくは神経保護剤、またはこれらの薬学的に受容可能な塩をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記組成物は、治療上有効な量の眼内圧(IOP)降下剤またはその薬学的に受容可能な塩をさらに含み、ここで前記IOP降下剤は、プロスタグランジン(例えば、ラタノプロストまたはトラボプロスト)、β遮断薬(例えば、チモロールまたはベタキソロール)、αアドレナリン作動薬(例えば、ブリモニジン、アプラクロニジン)、炭酸脱水酵素インヒビター(例えば、ドルゾラミドまたはブリンゾラミド)、Rhoキナーゼインヒビター(例えば、ネタルスジル)および縮瞳薬またはコリン作動性薬剤(例えば、ピロカルピン)からなる群より選択される、請求項10に記載の方法。
- 前記組成物は、治療上有効な量の神経保護剤またはその薬学的に受容可能な塩をさらに含み、ここで前記神経保護剤は、抗アポトーシス薬剤(例えば、カスパーゼ-2インヒビター)および神経栄養因子(例えば、毛様体神経栄養因子)からなる群より選択される、請求項10に記載の方法。
- 前記組成物は、エドネンタンを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記眼疾患は、緑内障である、請求項13に記載の方法。
- 前記処置の治療有効性は、眼内圧の降下、または視神経損傷の割合の低減を、視神経損傷を軽減または防止するために十分な量で検出することによって決定される、請求項14に記載の方法。
- 前記組成物は、A-182086を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記眼疾患は、緑内障である、請求項16に記載の方法。
- 前記処置の治療有効性は、眼内圧の降下、もしくは視神経損傷の割合の低減、またはこれらの組み合わせを、視神経損傷を軽減または防止するために十分な量で検出することによって決定される、請求項17に記載の方法。
- 前記組成物は、1μg~4mgの間の投与量で投与される、請求項1に記載の方法。
- 前記組成物は、10μg~100μgの間の投与量で投与される、請求項1に記載の方法。
- 前記接触させる工程は、前記組成物を、眼またはその一部の表面に局所的に投与する工程を包含する、請求項1に記載の方法。
- 前記接触させる工程は、眼またはその構成要素に組成物を注射する工程を包含する、請求項1に記載の方法。
- 前記組成物は、1種またはこれより多くの保存剤、保存助剤、粘性または潤滑調節剤、張度調節剤、可溶化剤、緩衝物質、界面活性剤、安定化剤、またはこれらの組み合わせを含む眼用調製物を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記接触させる工程は、標的化薬物送達システムを介して組成物を投与する工程を包含し、ここで前記標的化薬物送達システムは、ApidCOR、BioSeizer-ProDex、Vitrasert、Retisert、Iluvien、I-Vation、Nanoporous Silicon、Ozurdex/Novadur、OcuLief、Port Delivery System(PDS)、PEA Implant、PEG-PLA Microspheres、PRINT Technology、Q-Sphera、SKS Microparticles、Verisome、Capsule Ring Device、MicroPump、Microneedle Injector、Microneedle/Needle-less Injectors、EyeCET、Gemini Refractive Capsule、IVMED、Ciliary Sulcus Ring、Episcleral Exoplant、Eye-D Implant、およびNanoliposomesからなる群より選択される、請求項1に記載の方法。
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