JP2022550093A

JP2022550093A - 患者における医療関連感染の発生リスクを判定するための方法

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Publication number: JP2022550093A
Application number: JP2022519273A
Authority: JP
Inventors: ロランスヴァショ; フランスワマレ; ギヨームモナレ; ヴィルジニームカデル; アレクサンドルパショ; エステルペロネ; トマリムレ; ジュリアンテクストリス; ファビエンヴネ
Original assignee: Biomerieux SA; Hospices Civils de Lyon HCL
Current assignee: Biomerieux SA; Hospices Civils de Lyon HCL
Priority date: 2019-09-27
Filing date: 2020-09-25
Publication date: 2022-11-30
Also published as: EP4034679A1; FR3101358A1; AU2020356429A1; WO2021058919A1; CN114651071A; CA3151552A1; US20220333201A1

Abstract

本発明は、患者における医療関連感染の発生リスクを判定するためのインビトロまたはエクスビボ方法であって、当該患者の生体サンプルにおけるＣＸ３ＣＲ１の発現を測定する工程を包含する方法に関する。

Description

本発明は、患者における医療関連感染の発生リスクを判定するためのインビトロまたはエクスビボ方法であって、当該患者の生体サンプルにおいて、ＣＸ３ＣＲ１の発現を測定するための工程を包含する方法に関する。

医療関連感染への罹患は、特に病院などの医療構造物において、医療に関係した大問題である（院内感染の詳細は後述）。集中治療ユニットにおける院内感染は、患者の２０～４０％において発生し、罹患率および死亡率の増大、臓器不全対症療法を必要する期間の長期化、入院の長期化、医療コストの増大、および抗菌薬耐性に寄与する抗生物質の大量使用に関連してきたことが実証されてきた。近年、医療関連感染の出現は、多剤耐性病原菌が増えたことにより特に悪化してきた。世界保健機関（ＷＨＯ）の推定によると、欧州内の病院における院内感染数は約５百万件であり、これは約５０，０００人の死亡および１３０～２４０億ユーロの追加年間コストを招いている。医療関連感染の発生や罹患には、多くの要因が影響する。そのような要因として、患者の全体的な健康状態、患者管理に関係した要因（例えば、抗生物質の投与および／または侵襲的な医療用デバイスの使用）、病院環境に関係した要因（例えば、看護師数と患者数の比）、および病院スタッフによる感染予防テクニックの異なる使用などが挙げられる。特に米国保健福祉省（ＵＳＤｅｐａｒｔｍｅｎｔｏｆＨｅａｌｔｈａｎｄＨｕｍａｎＳｅｒｖｉｃｅｓ）、欧州疾病予防管理センター（ＥｕｒｏｐｅａｎＣｅｎｔｅｒｆｏｒＤｉｓｅａｓｅＰｒｅｖｅｎｔｉｏｎａｎｄＣｏｎｔｒｏｌ）、ＷＨＯ、および各国の機関によって、推奨事項が公開され、また感染制御プログラムの確立が奨励されてきた。そこでは、医療関連感染の防止および低減が主要な優先事項となっている。医療関連感染制御プログラムが特に重症感染を低減するのに有効であることが判明されてきた。しかし、カテーテルの設置に関係した血液および尿路感染の件数の最大で６５～７０％、および、人工呼吸に関連した肺炎および手術を行った場所における感染の件数の最大で５５％は、回避できたと推定されてきた。さらに、推奨に従った手順の遵守や適用は、特に低および中間所得国において、一部の病院では複雑となる場合がある。医療関連感染に罹患するリスクのある患者を早期に特定できれば、その感染の防止およびその患者の管理において重要なステップとなるであろう。いくつかのモデルによると、ハイリスク集団において医療関連感染を特定するのにかかる時間を低減し得るバイオマーカーがあれば、良好な費用対効果比でこれらの患者の死亡率が低減されるであろう。しかし、医療関連感染に罹患するリスクの高い患者を特定するための臨床インビトロ診断テストは現在のところ存在しない。

一方、非常に驚くべきことに、フラクタルカイン（またはＣＸ３ＣＬ１）受容体をコードしているＣＸ３ＣＲ１遺伝子の発現を測定することによって、患者における医療関連感染の発生リスクを判定することが可能になることが発見されている。医療関連感染に罹患するリスクの高い患者であれば、免疫賦活免疫治療または個別化管理から有利な効果を受け得るであろう。文献によると、ＣＸ３ＣＲ１の発現の低下が、特に、敗血症状態、およびより詳細には、敗血症性ショックの患者の死亡率の増加に関連していることが既に証明されている（非特許文献１）。しかし、医療関連感染の発生を予測するためにＣＸ３ＣＲ１の発現を測定することの有用性は、これまで実証も示唆もされていない。

Ｐａｃｈｏｔｅｔａｌ．（２００８），ＪＩｍｍｕｎｏｌ１８０：６４２１－６４２９

それゆえ、本発明の目的は、患者における医療関連感染の発生リスクを判定するためのインビトロまたはエクスビボ方法であって、当該患者の生体サンプルにおいて、ＣＸ３ＣＲ１（ＧＲＣｈ３８／ｈｇ３８による当該遺伝子の染色体位置：ｃｈｒ３：３９，２６３，４９４～３９，２８１，７３５）の発現を測定するための工程を包含する方法である。

本発明に関して、
「患者」という用語は、医師（例えば、総合診療医）などの医療従事者または医療構造物もしくは健康施設（例えば、病院、およびより詳細には、救急ユニット、蘇生ユニット、集中治療ユニットもしくは継続治療ユニット、または介護ホームタイプの高齢者用医療構造物）と接している個人（人間）を指す。患者は、例えば、予防接種プロトコル（特に、介護ホームにおいて、または総合診療医の所で）を受ける高齢者であり得る、
感染は、医療従事者が患者を（診断、治療、緩和、予防、教育または手術）する最中またはその後に発生し、かつ、治療の開始時に存在も潜伏もしていなかった場合に、いわゆる「医療関連」とされる。医療関連感染（ＨＡＩ）は、医療施設内で罹患した感染（院内感染として知られる）、また、この医療施設の外で提供された医療中に罹患した感染も含む。治療の開始時における感染状態が具体的に既知でない場合、４８時間以上の遅延または潜伏期間よりも長い遅延もＨＡＩの定義に一般に受け入れられる。手術を行った場所での感染について、手術後３０日以内に発生した感染、または、インプラント、プロテーゼまたはプロテーゼ材が設置された場合は、手術後１年以内に発生した感染は、通常、医療関連であると考えられる。感染は、細菌、真菌、またはウイルスを原因とし得る。また、感染は、ＴＴＶまたはヘルペスウイルス（例えば、ＣＭＶ）などの潜在的に病原性である潜伏ウイルスの再活性化であり得る、
「生体サンプル」という用語は、患者からの任意のサンプルを指し、血液またはその誘導物、痰、尿、大便、皮膚、脳脊髄液、気管支肺胞洗浄液、唾液、胃分泌物、精液（ｓｅｍｅｎ）、精液（ｓｅｍｉｎａｌｆｌｕｉｄ）、涙、脊髄、三叉神経節、脂肪組織、リンパ組織、胎盤組織、胃腸管組織、生殖菅組織、中央神経系組織などの異なる性質を有するものであり得る。特に、このサンプルは、血液サンプルまたは血液由来のサンプルなどの生体液であり得る。特に、血液サンプルまたは血液由来のサンプルは、全血（静脈ルートから採取された血液、すなわち、白血球、赤血球、血小板および血漿を含有する）、血漿、血清、ならびに末梢血単核細胞（すなわちＰＢＭＣであり、リンパ球（Ｂ、ＴおよびＮＫ細胞）、樹状細胞および単球を含む）、Ｂ細胞の亜集団、精製された単球、または好中球などの血液から抽出される任意のタイプの細胞から選択され得る。

好ましくは、上記の方法において、
患者は、医療施設内の患者であり、好ましくは病院、より好ましくは救急ユニット、蘇生ユニット、集中治療ユニットまたは継続治療ユニット内の患者である。特に好適には、患者は、敗血症状態（より詳細には、敗血症性ショック）の患者、火傷（より詳細には、重篤な火傷）を罹患している患者、外傷（より詳細には、重篤な外傷）を罹患している患者、または手術（より詳細には、大手術）を受けた患者であり、かつ
方法は、当該患者における院内感染の発生リスクを判定することを可能にする。

敗血症状態（一次感染を既に罹患している）の患者の場合、本発明にかかる方法は、二次感染の発生リスクを判定することを可能にする。

敗血症患者（または、敗血症を有する患者）は、感染に対するホストの不適切な応答が原因で少なくとも１つの生命を脅かす臓器不全を有する患者を意味する。敗血症性ショックは、十分な血管充填にもかかわらず低血圧が持続する敗血症のサブタイプを意味する。

好ましくは、本発明にかかる方法は、上記のように、そのすべての実施形態において、
免疫炎症攻撃（すなわち、外傷を有する患者に対する外傷、火傷を有する患者に対する火傷、手術を受けた患者に対する手術、または敗血症患者に対する敗血症の診断）の日から１５日以内に、すなわち、免疫炎症攻撃から１日目、２日目、３日目、４日目、５日目、６日目、７日目、８日目、９日目、１０日目、１１日目、１２日目、１３日目、１４日目または１５日目（ここで、１日目は、免疫炎症攻撃が発生した日に対応する）に（生体サンプルの採取は、特に免疫炎症攻撃から１日目、２日目、３日目、４日目、５日目、６日目、７日目、８日目、９日目、１０日目、１１日目、１２日目、１３日目、１４日目または１５日目、好ましくは免疫炎症攻撃から１日目、２日目、３日目、４日目、５日目、６日目または７日目、より好ましくは免疫炎症攻撃から３日目、４日目、５日目、６日目または７日目に実行されていてもよい）、かつ／または、
生体サンプルの採取を行った日の後の７日以内、６日以内、５日以内または４日以内に（生体サンプルの採取を行った日に関係なく）、すなわち、生体サンプルの採取を行った日から３日目、４日目、５日目、６日目または７日目に（ここで、１日目は、生体サンプルの採取を行った日の次の日に対応する）、
患者において医療関連感染が発生するリスクを判定することを可能する。

好ましくは、上記の方法において、そのすべての実施形態において、生体サンプルは、血液サンプル、好ましくは全血サンプルまたは血液由来のサンプル（例えば、当業者に良く知られたフィコール（Ｆｉｃｏｌｌ）方法によって得られ得るＰＢＭＣ、または精製された単球）である。

好ましくは、上記の方法は、そのすべての実施形態において、患者の生体サンプルにおいて、ＡＤＧＲＥ３、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４（ＰＤ－Ｌ１としても知られる）、ＣＴＬＡ４（ＣＤ１５２としても知られる）、ＨＰ、ＩＣＯＳ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ６、ＩＬ７Ｒ（ＣＤ１２７としても知られる）、ＩＬ１０、ＩＬ１５、ＭＤＣ１、ＰＤＣＤ１（ＰＤ－１およびＣＤ２７９としても知られる）、Ｓ１００Ａ９、ＴＤＲＤ９およびＺＡＰ７０からなるリストから選択される別の対象遺伝子の発現を測定する工程をさらに包含する。より好ましくは、当該別の遺伝子は、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＣＯＳ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＩＬ１５、ＰＤＣＤ１およびＳ１００Ａ９からなるリストから選択される。

表１．遺伝子の染色体位置。これらの遺伝子の発現は、ＣＸ３ＣＲ１の発現の測定と組み合わせて測定され得る

遺伝子の発現（または、発現レベル）の測定は、当該遺伝子の少なくとも１つの発現産物を定量することからなる。遺伝子の発現産物は、本発明に関して、当該遺伝子の発現から得られる任意の生体分子である。

より詳細には、遺伝子の発現産物は、ＲＮＡ転写産物であり得る。「転写産物」は、遺伝子の転写から得られたＲＮＡ、および特に、メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を意味する。より具体的には、転写産物は、遺伝子を転写した後に前ＲＮＡ形態を転写後修飾することによって生成されたＲＮＡである。本発明に関して、同じ遺伝子の１つまたは複数のＲＮＡ転写産物の発現レベルの測定が行われ得る。それゆえに、好ましくは、上記の方法において、そのすべての実施形態において、遺伝子の発現（すなわち、ＣＸ３ＣＲ１の発現、および必要に応じて、上記リストからの別の対象遺伝子の発現）は、ＲＮＡまたはｍＲＮＡ転写産物レベルで測定される。ｍＲＮＡ転写産物の場合、検出は、直接的な方法によって、当該転写産物のサンプル中の存在を判定することを可能にする、当業者に知られた任意の方法によって、または当該転写産物をＤＮＡに変換した後、または当該転写産物を増幅した後、または当該転写産物をＤＮＡに変換した後に得られたＤＮＡを増幅した後に当該転写産物を間接的に検出することによって、実行され得る。核酸を検出するために多くの方法が存在する（例えば、Ｋｒｉｃｋａｅｔａｌ．，ＣｌｉｎｉｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９９９，Ｎｏ．４５（４），ｐ．４５３－４５８；ＲｅｌｉｅｒＧＨｅｔａｌ．，ＤＮＡＰｒｏｂｅｓ，２ｎｄＥｄ．，ＳｔｏｃｋｔｏｎＰｒｅｓｓ，１９９３，ｓｅｃｔｉｏｎｓ５ａｎｄ６，ｐ．１７３－２４９を参照）。遺伝子の発現は、特に、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応、すなわち、ＲＴ－ＰＣＲによって、好ましくは定量的ＲＴ－ＰＣＲ、すなわち、ＲＴ－ｑＰＣＲ（例えば、ＦｉｌｍＡｒｒａｙ（登録商標）技術を使用）によって、シークエンシング（好ましくは、高スループットシークエンシング）によって、またはハイブリダイゼーション手法（例えば、ハイブリダイゼーションマイクロチップを用いるか、またはＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ（登録商標）ｎＣｏｕｎｔｅｒ（登録商標）タイプの手法によって）によって、測定され得る。

遺伝子の発現産物はまた、該遺伝子の転写産物のうちの少なくとも１つの翻訳産物であるタンパク質および／またはポリペプチドであり得る。それゆえに、上記の方法において、遺伝子の発現はまた、タンパク質レベルで測定され得る。遺伝子の発現産物であるタンパク質のアイソフォームのすべては、単独でまたは組み合わせで、患者における医療関連感染の発生リスクを判定するためのマーカーとして測定され得る。生体サンプルにおけるタンパク質レベルでの遺伝子の発現の測定は、生体サンプル中の１つまたは複数の検査対象の量または分量を決定するための、当業者に広く知られた手法にしたがってなされ得る。例として、ＥＬＩＳＡ（ＥｎｚｙｍｅＬｉｎｋｅｄＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔＡｓｓａｙ）、ＥＬＦＡ（ＥｎｚｙｍｅＬｉｎｋｅｄＦｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔＡｓｓａｙ）およびＲＩＡ（ＲａｄｉｏＩｍｍｕｎｏＡｓｓａｙ）などのイムノアッセイによる分析、および質量分析法よる分析を挙げ得る。

遺伝子の発現レベルの測定によって、生体サンプル中に存在する１つまたは複数の転写産物（または１つまたは複数のタンパク質）の量を決定するか、または、それから導出される値を与えることが可能になる。当該量から導出される値は、例えば、既知の濃度のアンプリコン（またはタンパク質もしくはポリペプチド）溶液の連続希釈物から得られた検量線によって計算された絶対濃度であり得る。また、当該量から導出される値は、基準サンプル（またはキャリブレータ）および１つまたは複数のハウスキーピング遺伝子（リファレンス遺伝子とも呼ばれる）の値を積算するＣＮＲＱ（ＣａｌｉｂｒａｔｅｄＮｏｒｍａｌｉｚｅｄＲｅｌａｔｉｖｅＱｕａｎｔｉｔｙ、（Ｈｅｌｌｅｍａｎｓｅｔａｌ．（２００７），Ｇｅｎｏｍｅｂｉｏｌｏｇｙ８（２）：Ｒ１９）などの標準化および較正された量の値に相当する。ハウスキーピング遺伝子の例は、ＤＥＣＲ１、ＨＰＲＴ１、ＰＰＩＢ、ＲＰＬＰ０、ＰＰＩＡ、ＧＬＹＲ１、ＲＡＮＢＰ３、１８Ｓ、ＧＡＰＤＨおよびＡＣＴＢ遺伝子を含む。

それゆえに、好ましくは、上記の方法において、そのすべての実施形態において、対象遺伝子の発現は、当業者に既知の１つまたは複数のハウスキーピング遺伝子（またはリファレンス遺伝子）の発現に対して正規化される。ここで、より好ましくは、以下のハウスキーピング遺伝子のうちの１つ以上を使用する。ＤＥＣＲ１（ＧＲＣｈ３８／ｈｇ３８による当該遺伝子の染色体位置：ｃｈｒ８：９０，００１，３５２～９０，０５３，６３３）、ＨＰＲＴ１（ＧＲＣｈ３８／ｈｇ３８による当該遺伝子の染色体位置：ｃｈｒＸ：１３４，４５２，８４２～１３４，５２０，５１３）、およびＰＰＩＢ（ＧＲＣｈ３８／ｈｇ３８による当該遺伝子の染色体位置：ｃｈｒ１５：６４，１５５，８１２～６４，１６３，２０５）。

好ましくは、上記の方法において、そのすべての実施形態において、患者の生体サンプル中の対象遺伝子の発現（好ましくは、正規化された発現）は、基準値、または生体基準サンプル中の同じ対象遺伝子の発現（好ましくは、正規化された発現）と比較される（これらのデータは、上記のようにＣＮＲＱの計算のために使用される）。基準サンプルは、例えば、志願者（健常者）からのサンプル、患者からのサンプル、または複数の志願者からのサンプル（一方）または複数の患者からのサンプル（他方）の混合物であり得る。基準サンプルはまた、１人の志願者から採取されたサンプル（または、複数の志願者から採取されたサンプルの混合物）であって、次いで免疫系刺激剤（ＬＰＳまたはリポ多糖類など）を用いてエクスビボで処理されたサンプルであり得る。基準サンプルはまた、未処理サンプルおよび免疫系刺激剤を用いてエクスビボ処置されたサンプルの混合物であり得る。

好ましくは、上記の医療関連感染の発生リスクを判定するための方法はまた、そのすべての実施形態において、医療関連感染の発生リスクを低減するための医療管理工程を包含する。医療関連感染に罹患するリスクが増大していると特定された患者は、医療関連感染に罹患するリスクを低減することを目的として、および例えば、敗血症、敗血症性ショックに罹患するリスクまたは死亡リスクを低減するために、適切な医療管理を受け得る。医療管理の例は、患者に適合された免疫調節治療、または予防抗生物質治療を含む。この２つの治療は、医療関連感染の発生リスクを低減するために、例えば、バイオマーカーの発現の測定の何日か後に敗血症、敗血症性ショックに罹患するリスクまたは死亡するリスクを低減するために、継続治療ユニットまたは蘇生ユニットに組み合わせおよび／または適応され得る。好ましくは、免疫調節治療は、患者が免疫抑制状態であると判定された場合は免疫賦活治療であり、または、患者が炎症状態であると判定された場合には抗炎症治療である。選択され得る免疫賦活治療に関して、例えば、インターロイキン（特に、ＩＬ－７、ＩＬ－１５またはＩＬ－３）、成長因子（特に、ＧＭ－ＣＳＦ）、インターフェロン（特に、ＩＦＮ_γ）、Ｔｏｌｌ作動薬、抗体（特に、抗ＰＤ１、抗ＰＤＬ１、抗ＬＡＧ３、抗ＴＩＭ３、抗ＩＬ－１０または抗ＣＴＬＡ４抗体）、トランスフェリンおよびアポトーシスを抑制する分子、ＦＬＴ３Ｌ、チモシンα１、アドレナリン遮断薬の類を挙げ得る。抗炎症治療に関して、特に、グルココルチコイド、細胞増殖抑制剤、イムノフィリンおよびサイトカインに作用する分子、ＩＬ－１受容体をブロックする分子、ならびに抗ＴＮＦ治療の類を挙げ得る。肺炎を予防する適切な予防抗生物質治療の例は、特に、「ＡｎｎａｌｅｓＦｒａｎcａｉｓｅｓｄ'ＡｎｅｓｔｈｅｓｉｅｅｔｄｅＲｅａｎｉｍａｔｉｏｎ」（３０；２０１１；１６８－１９０）に記載されている。反対に、医療関連感染の発生リスクを呈さない患者は、必要のない細心の観察を有するサービスを受け続けるのではなく、昼間病院サービス（例えば、感染症科サービス）にすぐに移され得る。

本発明の別の目的は、ＣＸ３ＣＲ１、およびＡＤＧＲＥ３、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＣＯＳ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ６、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＩＬ１５、ＭＤＣ１、ＰＤＣＤ１、Ｓ１００Ａ９、ＴＤＲＤ９およびＺＡＰ７０からなるリストから選択される別の遺伝子の増幅手段および／または発現検出手段（好ましくは、プライマーおよび／もしくはプローブ、または抗体）を備えるキットである（好ましくは、当該別の遺伝子は、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＣＯＳ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＩＬ１５、ＰＤＣＤ１およびＳ１００Ａ９からなるリストから、またはＡＤＧＲＥ３、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ６、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＭＤＣ１、ＰＤＣＤ１、Ｓ１００Ａ９、ＴＤＲＤ９およびＺＡＰ７０からなるリストから、より好ましくはＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＰＤＣＤ１およびＳ１００Ａ９からなるリストから選択される）。当該キットは、当該キットの増幅および／または検出手段のすべてが、合計で１００個以下、好ましくは９０個以下、好ましくは８０個以下、好ましくは７０個以下、好ましくは６０個以下、好ましくは５０個以下、好ましくは４０個以下、好ましくは３０個以下、好ましくは２０個以下、好ましくは１０個以下、好ましくは５個以下のバイオマーカー、好ましくは４個以下、好ましくは３個以下、好ましくは２個以下の検出および／または増幅を可能にすることを特徴とする。「バイオマーカー」（または、「マーカー」）は、正常または病理的な生体プロセスまたは治療的介入に対する薬理的な応答の指標を表す客観的に測定可能な生体特性を意味する。このバイオマーカーは、特に、ｍＲＮＡまたはタンパク質レベルにおいて検出可能であり得る。より詳細には、バイオマーカーは、内在性バイオマーカーまたは遺伝子座（個人の染色体物質において見出される遺伝子またはＨＥＲＶ／ヒト内在性レトロウイルス（ＨｕｍａｎＥｎｄｏｇｅｎｏｕｓＲｅｔｒｏＶｉｒｕｓ）など）または外因性バイオマーカー（ウイルスなど）であり得る。

それゆえに、当該キットはまた、例えば、１つまたは複数のハウスキーピング遺伝子（好ましくは、ＤＥＣＲ１、ＨＰＲＴ１およびＰＰＩＢからなるリストから選択される）を増幅および／または検出するための手段を備え得る。キットはまた、ＲＮＡ抽出の量、任意の増幅および／またはハイブリダイゼーションプロセスの量を評価することを可能にするポジティブ制御手段を備え得る。

「プライマー」または「増幅プライマー」は、５～１００個のヌクレオチド、好ましくは１５～３０個のヌクレオチドからなり得、かつ、例えば、標的ヌクレオチド配列の酵素増幅反応において、酵素ポリメライゼーションを開始するように決定された条件下に、標的ヌクレオチド配列とのハイブリダイゼーションの特異性を有するヌクレオチド断片であり得る。一般に、２つのプライマーからなる「プライマー対」を使用する。複数の異なるバイオマーカー（例えば、遺伝子）を増幅したい場合、好ましくは複数の異なるプライマー対を使用する。ここで、各プライマー対は、好ましくは、異なるバイオマーカーに特異的にハイブリダイズする能力を有する。

「プローブ」または「ハイブリダイゼーションプローブ」は、典型的には５～１００個のヌクレオチド、好ましくは１５～９０個のヌクレオチド、さらにより好ましくは１５～３５ヌクレオチドからなり、標的ヌクレオチド配列とハイブリダイゼーション複合体を形成するように決定された条件下においてハイブリダイゼーション特異性を有するヌクレオチド断片を意味する。プローブはまた、標的ヌクレオチド配列の検出を可能にするリポーター（フルオロフォア、酵素または任意の他の検出システムなど）を含む。本発明において、標的ヌクレオチド配列は、メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）に含まれたヌクレオチド配列、または当該ｍＲＮＡの逆転写によって得られた相補ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）に含まれたヌクレオチド配列であり得る。複数の異なるバイオマーカー（例えば、遺伝子）を標的にしたい場合、好ましくは、複数の異なるプローブを使用する。ここで、各プローブは、好ましくは、異なるバイオマーカーに特異的にハイブリダイズする能力を有する。

「ハイブリダイゼーション」は、適切な条件下において、例えばハイブリダイゼーションプローブと標的ヌクレオチド断片などの、十分な相補配列を有する２つのヌクレオチド断片が安定かつ特異的な水素結合を有する二重鎖を形成できるプロセスを意味する。ポリヌクレオチドと「ハイブリダイズ可能な」ヌクレオチド断片は、各場合に既知のやり方で決定され得るハイブリダイゼーション条件下に当該ポリヌクレオチドとハイブリダイズ可能な断片である。ハイブリダイゼーション条件は、操作条件の厳密さ（ｓｔｒｉｎｇｅｎｃｙ）、すなわち、正確さ（ｒｉｇｏｒ）によって決定される。ハイブリダイゼーションは、より高い厳密さで行われるにつれ、より特異的になる。厳密さは、特に、プローブ／標的二重体の塩基組成にしたがって、かつ、２つの核酸のミスマッチの度合いによって定義される。厳密さはまた、ハイブリダイゼーション溶液中に存在するイオン種の濃度および種類、変性剤の性質および濃度、ならびに／またはハイブリダイゼーション温度などの反応パラメータの関数であり得る。ハイブリダイゼーション反応を行う条件の厳密さは、主に、使用されるハイブリダイゼーションプローブに依存する。これらのデータのすべては、良く知られており、かつ、適切な条件は、当業者によって決定され得る。一般に、使用されるハイブリダイゼーションプローブの長さに依存するが、ハイブリダイゼーション反応のための温度は、生理食塩水溶液中で約０．５～１Ｍの濃度の場合、約２０～７０℃、特に３５～６５℃である。次いで、ハイブリダイゼーション反応を検出する工程を実行する。

「酵素増幅反応」は、少なくとも１つの酵素の作用によって、標的ヌクレオチド断片の複数の複製を生成するプロセスを意味する。そのような増幅反応は、当業者に良く知られており、特に以下の手法を挙げ得る。ＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）、ＬＣＲ（リガーゼ連鎖反応）、ＲＣＲ（修復連鎖反応）、特許出願ＷＯ－Ａ－９０／０６９９５を有する３ＳＲ（自家持続配列複製）、ＮＡＳＢＡ（核酸配列に基づく増幅）、特許ＵＳ－Ａ－５，３９９，４９１を有するＴＭＡ（転写介在増幅）、および特許ＵＳ６４１０２７８を有するＬＡＭＰ（ループ介在等温増幅）である。酵素増幅反応がＰＣＲである場合であって、より詳細には、増幅工程に先立ってメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を相補ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）に逆転写する工程が行われる場合は、ＲＴ－ＰＣＲ（ＲＴは、「逆転写」の略である）について説明し、また、ＰＣＲが定量的である場合は、ｑＰＣＲまたはＲＴ－ｑＰＣＲについて説明する。

本発明の別の目的は、
ＣＸ３ＣＲ１、および必要に応じてまた、ＡＤＧＲＥ３、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＣＯＳ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ６、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＩＬ１５、ＭＤＣ１、ＰＤＣＤ１、Ｓ１００Ａ９、ＴＤＲＤ９およびＺＡＰ７０からなるリストから選択される別の遺伝子の増幅手段および／または発現検出手段（好ましくは、プライマーおよび／もしくはプローブ、または抗体）（好ましくは、当該別の遺伝子は、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＣＯＳ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＩＬ１５、ＰＤＣＤ１およびＳ１００Ａ９からなるリストから、またはＡＤＧＲＥ３、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ６、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＭＤＣ１、ＰＤＣＤ１、Ｓ１００Ａ９、ＴＤＲＤ９およびＺＡＰ７０からなるリストから、より好ましくはＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＰＤＣＤ１およびＳ１００Ａ９からなるリストから選択される）、または、
そのような増幅および／または検出手段を備えるキットであって、好ましくは、当該キットの増幅および／または検出手段のすべてが、合計で１００個以下、好ましくは９０個以下、好ましくは８０個以下、好ましくは７０個以下、好ましくは６０個以下、好ましくは５０個以下、好ましくは４０個以下、好ましくは３０個以下、好ましくは２０個以下、好ましくは１０個以下、好ましくは５個以下のバイオマーカー、好ましくは４個以下、好ましくは３個以下、好ましくは２個以下のバイオマーカーの検出および／または増幅を可能にし、かつ必要に応じて、当該キットは、１つまたは複数のハウスキーピング遺伝子（好ましくは、ＤＥＣＲ１、ＨＰＲＴ１およびＰＰＩＢからなるリストから選択される）の増幅および／または発現検出するための手段を備える、キット
を使用して、
患者における医療関連感染、好ましくは院内感染、の発生リスクを判定することである。ここで、患者は、好ましくは医療施設内の患者であり、より好ましくは病院、好ましくは救急ユニット、蘇生ユニット、集中治療ユニットまたは継続治療ユニット内の患者である。特に好ましくは、患者は、敗血症状態（より詳細には、敗血症性ショック）の患者、火傷（より詳細には、重篤な火傷）を罹患している患者、外傷（より詳細には、重篤な外傷）を罹患している患者、または手術（より詳細には、大手術）を受けた患者である。

以下の実施例によって本発明を例示するが、本発明はそれらに限定されない。

実施例１：ＣＸ３ＣＲ１の発現の測定によって、患者における医療関連感染の発生リスクを予測することが可能になる

材料および方法
有望、縦断的かつ単心的な観察臨床研究がＥｄｏｕａｒｄＨｅｒｒｉｏｔ病院（リヨン、フランス）で行われた。この臨床研究のデザインは、Ｒｏｌｅｔａｌ．（２０１７），ＢＭＪＯｐｅｎ７（６）：ｅ０１５７３４において公開されている。この臨床研究は、２０１５年１１月にＮａｔｉｏｎａｌＡｇｅｎｃｙｆｏｒｔｈｅＳａｆｅｔｙｏｆＭｅｄｉｃｉｎｅｓａｎｄＨｅａｌｔｈＰｒｏｄｕｃｔｓ（ＡＮＳＭ）によって承認され、そして２０１５年１２月にＳｏｕｔｈ－ＥａｓｔＩＩＰｅｒｓｏｎａｌＰｒｏｔｅｃｔｉｏｎＣｏｍｍｉｔｔｅｅによって承認された。プロトコルは、２０１６年６月、次いで２０１７年１月に改訂された。簡単に言えば、２０１５年１２月から２０１８年３月までの間に合計３７７人の患者が含まれた。これらの患者は、敗血症状態（ｎ＝３５）または敗血症性ショック（ｎ＝７２）であるか、重篤な火傷（ｎ＝２４）、重篤な外傷（ｎ＝１３７）を罹患しているか、または大手術後に蘇生ユニットまたは集中治療ユニット（ｎ＝１０９）に入院している患者、および１７５人の健常志願者を含んだ。

敗血症状態／敗血症性ショックの患者：最初の臨床プロトコルによると、感染部位の疑義に基づいて、敗血症性ショックの患者だけが含まれており、蘇生ユニットへの入院後４８時間以内にカテコールアミンを用いた治療、および、２時間以上にわたって＞０．２５μｇ／ｋｇ／分のカテコールアミン（ノルアドレナリン）の治療を開始。次いで、適格性判断基準は、敗血症性ショックの新たな定義、Ｓｅｐｓｉｓ３（Ｓｉｎｇｅｒｅｔａｌ．（２０１６）、ＪＡＭＡ３１５（８）：８０１－８１０）が公開された後、２０１６年８月に修正された。したがって、敗血症性ショックの患者は、感染部位の疑義に基づいて含まれており、蘇生ユニットへの入院後４８時間以内にカテコールアミンを用いた治療、および、血液量減少の矯正にもかかわらず、血圧を≧６５ｍｍＨｇにかつ乳酸塩濃度を＞２ｍｍｏｌ／Ｌ（１８ｍｇ／ｄＬ）に維持するために必要な昇圧剤治療の開始。２０１７年において、敗血症状態の患者（Ｓｅｐｓｉｓ３の定義による）、すなわち、蘇生ユニットに入院後４８時間以内における感染部位の疑義および基本ＳＯＦＡと比較してＳＯＦＡスコアの上昇が≧２ポイントを含む可能性が追加された。この集団に対して、１日目は、敗血症または敗血症性ショックを診断した日に相当する。

重篤な外傷：最初のプロトコルにおいては、重篤な外傷を有する患者だけが含まれた（外傷重症度スコア（ＩＳＳ）≧２５）。２０１６年８月に、重症度がより低い外傷を含む可能性が追加された（１６＜ＩＳＳ＜２４）。この集団に対して、１日目（ｄａｙ１）は、蘇生ユニットまたは集中治療ユニットに入院した日（およそ外傷日）に相当する。

大手術：最初のプロトコルにおいて、食道胃切除、Ｂｒｉｃｋｅｒタイプ膀胱切除、膵頭十二指腸切除、および開腹術による腹部大動脈手術だけが考慮されていた。２０１７年１月に、合併症リスクの高い他のタイプの手術が追加された。（全部または尾部）膵切除、神経内分泌腫瘍、肝切除（右側）、拡大結腸切除（開腹術）、腹会陰式直腸切除、腎切除（開腹術、ＰＫＤ）、腸骨大腿骨バイパス（Ｓｃａｒｐａ）である。この集団について、１日目は、手術の日に相当する。

重篤な火傷：患者は、火傷の全表面積が３０％超であることに基づいて選択された。この集団について、１日目は、蘇生ユニットまたは集中治療ユニットに入院した日（およそ火傷の日）に相当する。

除外判断基準は、免疫状態に影響を与え、かつ結果にバイアスをかけ得た要因に主に関係した（例えば：重篤な好中球減少症、コルチコステロイド治療、腫瘍血液病理学など）。患者の募集に関与していない３人の医師によって、３０日目より前に病院内で発生した疑わしい医療関連感染につながる各出来事が独立に調べられた。患者のうちの２６％が３０日目より前、または、退院する前に少なくとも１つの医療関連感染に罹患した。

血液サンプルをＰＡＸｇｅｎｅ（登録商標）チューブ（品番：７６２１６５、ＰｒｅＡｎａｌｙｔｉＸＧｍｂＨＨｏｍｂｒｅｃｈｔｉｋｏｎＳｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）に採取した。健常志願者に対しては１回採取した。患者に対しては複数回、すなわち、最初の週に３～４回（１または２日目：Ｄ１／２、３または４日目：Ｄ３／４、および５、６または７日目：Ｄ５／７）、次いでその後に３回（およそＤ１４、Ｄ２８およびＤ６０）採取した。

これらのサンプルにおけるＣＸ３ＣＲ１の発現レベルをＲＴ－ｑＰＣＲによって測定した。ＭａｘｗｅｌｌＨＴＳｉｍｐｌｙＲＮＡキット（品番：ＡＸ２４２０、Ｐｒｏｍｅｇａ）およびＥＶＯａｕｔｏｍａｔｅｄｐｌａｔｆｏｒｍ（ＴＥＣＡＮ）を使用し、そのキット供給者の取扱説明書にしたがって、ＲＮＡを全血サンプルから抽出した。次いで、ＦｌｕｉｄｉｇｍＲｅｖｅｒｓｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｍａｓｔｅｒｍｉｘ（品番：ＰＮ１００－６４７２Ａ１、Ｆｌｕｉｄｉｇｍ）を使用し、その供給者の取扱説明書にしたがって、１０ｎｇのトータルＲＮＡを相補ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）に逆転写した。次いで、ＦｌｕｉｄｉｇｍのＢｉｏｍａｒｋＨＤリアルタイムＰＣＲシステムを使用して、ＣＸ３ＣＲ１の発現をｑＰＣＲによって定量した。

まず、ＰｒｅＡｍｐｍａｓｔｅｒｍｉｘ（品番：ＰＮ１００－５８７６Ｂ１、Ｆｌｕｉｄｉｇｍ）を使用し、その供給者の取扱説明書にしたがって、ｃＤＮＡ前増幅工程を行った。次いで、前増幅ｃＤＮＡを５倍に希釈し、そして流体集積回路１９２．２４（品番：ＰＮ１００－６１７０Ｃ１）上で、その供給者の推奨にしたがって、ｑＰＣＲを行った。ｑＰＣＲに使用したプローブおよびプライマーの品番を表２に示す。

次いで、閾値サイクル（またはＣｔ）を決定した。ＣＸ３ＣＲ１の発現をＣＮＲＱ（ＣａｌｉｂｒａｔｅｄＮｏｒｍａｌｉｚｅｄＲｅｌａｔｉｖｅＱｕａｎｔｉｔｙ）において正規化した。これは、Ｈｅｌｌｅｍａｎｓｅｔａｌ．（２００７），Ｇｅｎｏｍｅｂｉｏｌｏｇｙ８（２）：Ｒ１９に記載されるように、各流体集積回路１９２．２４において、３つのハウスキーピング遺伝子（ＤＥＣＲ１、ＨＰＲＴ１、ＰＰＩＢ）のＣｔの相乗平均、および、較正器（健常志願者／患者からの、ＬＰＳ（免疫系刺激剤）によって処理されたエクスビボサンプル（５０％）および未処理のエクスビボサンプル（５０％）の混合物に対応する）を使用して行った。

表２．ｑＰＣＲのために使用されたプローブおよびプライマー

データ分析に関し、第１週目における異なる時点において測定されたＣＸ３ＣＲ１の発現と、研究に組み入れてから３０日目より前の医療関連感染の発生との間の関連を評価した。結果は、四分位間距離と、対応づけられた９５％信頼区間とで表されるハザード比（ＨＲＩＱＲ）の形態で計算した。次いで、単変量ロジスティック回帰を実施して、１５日目より前の医療関連感染の発生リスクを予測した。医療関連感染の有無を区別するためのロジスティック回帰によって予測される値の大きさ（ｐｏｗｅｒ）をＲＯＣ（受信者操作特性（ＲｅｃｅｉｖｅｒＯｐｅｒａｔｉｎｇＣｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃ））曲線の曲線下面積（ＡＵＣ）によって定量し、そして９５％信頼区間を推定した。

次いで、ＣＸ３ＣＲ１の発現と医療関連感染の発生との間の関連を、感染の発生からの異なる時間間隔（すなわち、サンプル採取と感染の最初の発生との間の期間）に対して評価した。対象の異なる期間は、サンプルがいつ採取されたかにかかわらず、サンプル採取後４日以内および７日以内の医療関連感染であった。医療関連感染に罹患した各患者について、対象のサンプルは、医療関連感染の最初のエピソードの発生の前の最も近いサンプル採取に対応する。

医療関連感染に罹患しなかった患者（すなわち、対照患者）について、各場合に、サンプル採取日が同じであり、かつ、ＳＯＦＡおよびチャールソンスコアが近い対照患者を選択するためにマッチング方法を使用した。最後に、各ユニークな場合に対してユニークな対照（コントロール）を選択した。単変量ロジスティック回帰を実施した。医療関連感染の有無を区別するためのロジスティック回帰によって予測される値の大きさをＲＯＣ曲線の曲線下面積（ＡＵＣ）によって定量し、そして９５％信頼区間を推定した。

結果
患者の全集団において、コーホートに組み入れてからＤ３／４またはＤ５／７において測定されたＣＸ３ＣＲ１のｍＲＮＡレベルでの発現の低下は、Ｄ３０より前の医療関連感染のより高い発生リスクに関連する（Ｄ３／４：ＨＲＩＱＲ＝０．５４［０．３９～０．７４］、ｐ＝０．０００１；Ｄ５／７：ＨＲＩＱＲ＝０．５７［０．４２～０．７９］、ｐ＝０．０００６）。この関連は、ＣＸ３ＣＲ１の発現の２つの測定時について、ＳＯＦＡおよびチャールソンスコアを用いた調節後において有意であった（Ｄ３／４：ＨＲＩＱＲ＝０．６１［０．４４～０．８５］、ｐ＝０．００３；Ｄ５／７：ＨＲＩＱＲ＝０．６５［０．４６～０．９１］、ｐ＝０．０１）。

さらに、予測モデルは、コーホートに組み入れてからＤ３／４またはＤ５／７において測定されたＣＸ３ＣＲ１のｍＲＮＡレベルでの発現がコーホートに組み入れてから１５日目より前の医療関連感染の発生の予測を可能にすることを示した（表３）。

表３．コーホートに組み入れてから１５日目より前の医療関連感染の発生を予測するための、コーホートに組み入れてからＤ３／４またはＤ５／７において測定されたＣＸ３ＣＲ１の発現の測定のパフォーマンス（ＡＵＣおよび９５％信頼区間、ＣＩ）

予測モデルはまた、Ｄ３／４またはＤ５／７において測定されたＣＸ３ＣＲ１のｍＲＮＡレベルでの発現がサンプルの採取後４日または７日以内の医療関連感染の発生を予測することを可能にすることを示した（表４）。

表４．サンプルの採取後４日または７日以内の医療関連感染の発生を予測するためのＣＸ３ＣＲ１の発現の測定のパフォーマンス（ＡＵＣおよび９５％信頼区間、ＣＩ）

このように、上記に得られた結果は、ＣＸ３ＣＲ１単独の発現を測定することによって、免疫炎症攻撃から１５日以内、サンプルの採取後４日以内、またはサンプルの採取後７日以内の医療関連感染の発生を予測することが可能にあることを示す。

実施例２：ＣＸ３ＣＲ１および別の遺伝子の発現の測定によって、医療関連感染の発生リスクの予測パフォーマンスを向上させることが可能になる

材料および方法
材料および方法は、以下の点を除いて実施例１と同一である。１）所定の遺伝子（ＢＴＬＡおよびＩＬ１５、ならびに２つのリファレンスを用いて測定されたリファレンス遺伝子）に対して、別のＰｒｅＡｍｐｍａｓｔｅｒｍｉｘリファレンス（品番：ＰＮ１００－５８７５Ｃ１、Ｆｌｕｉｄｉｇｍ）を用いてｃＤＮＡ前増幅工程を実行し、その後、エクソヌクレアーゼＩ（品番：ＰＮ１００－５８７５Ｃ１、Ｆｌｕｉｄｉｇｍ）を用いてさらなる処理工程を行い、かつ、これらの遺伝子に加えて、供給者の推奨のように、別のタイプの流体集積回路１９２．２４（品番：ＰＮ１００－７２２２Ｃ１）を用いて増幅工程を実行した。２）ここで、多変量ロジスティック回帰（ＣＸ３ＣＲ１、およびＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＣＯＳ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＩＬ１５、ＰＤＣＤ１およびＳ１００Ａ９からなるリストから選択される別の遺伝子の発現の測定の組み合わせ）を行った。

したがって、対象遺伝子（ＢＴＬＡおよびＩＬ１５を除く）の発現をＴａｑＭａｎＣｈｅｍｉｓｔｒｙで測定した。ここで、やはりＴａｑＭａｎＣｈｅｍｉｓｔｒｙで測定したリファレンス遺伝子の発現を使用して正規化した（２つのプライマーおよび１つのプローブを含むＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒリファレンス）。ＢＴＬＡおよびＩＬ１５遺伝子の発現をＳＹＢＲＧｒｅｅｎＣｈｅｍｉｓｔｒｙを使用して測定した。ここで、やはりＳＹＢＲＧｒｅｅｎＣｈｅｍｉｓｔｒｙを使用して測定したリファレンス遺伝子の発現を使用して正規化した（２つのプライマーを含むＩｎｔｅｇｒａｔｅｄＤＮＡＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓリファレンス）。表２に既に示したプローブおよびプライマー（ＴａｑＭａｎＣｈｅｍｉｓｔｒｙにおけるＣＸ３ＣＲ１およびリファレンス遺伝子用）に加えて、この実施例において使用したさらなるプローブおよびプライマー（ＳＹＢＲＧｒｅｅｎＣｈｅｍｉｓｔｒｙにおける別の対象遺伝子およびリファレンス遺伝子用）を表５に示す。

表５．ｑＰＣＲのために使用したさらなるプローブおよびプライマー

結果
ＣＸ３ＣＲ１の発現の測定に加えて、これらの他の対象遺伝子のうちの１つの発現を測定することによって、コーホートに組み入れてから１５日目より前（表６）またはサンプルの採取後４日もしくは７日以内のいずれについても、医療関連感染の発生リスクの予測パフォーマンスを向上させることが可能なる（表７）。

表６．コーホートに組み入れてから１５日目より前の医療関連感染の発生の予測についての、コーホートに組み入れてからＤ３／４またはＤ５／７において測定された、別のバイオマーカー（多変量分析）と組み合わされたＣＸ３ＣＲ１の発現の測定のパフォーマンス（ＡＵＣおよび９５％信頼区間、ＣＩ）

表７．サンプル採取後４日以内または７日以内の医療関連感染の発生の予測についての、別のバイオマーカーと組み合わされたＣＸ３ＣＲ１の発現の測定（多変量分析）のパフォーマンス（ＡＵＣおよび９５％信頼区間、ＣＩ）

Claims

患者における医療関連感染の発生リスクを判定するためのインビトロまたはエクスビボ方法であって、当該患者からの生体サンプルにおいて、ＣＸ３ＣＲ１の発現を測定する工程を包含する方法。
前記患者は、医療施設内の患者であり、かつ、前記方法は、当該患者における院内感染の発生リスクを判定することを可能にする、ことを特徴とする請求項１に記載の方法。
前記患者は、病院、好ましくは救急ユニット、蘇生ユニット、集中治療ユニットまたは継続治療ユニット内の患者、より好ましくは敗血症患者、火傷患者、外傷患者、または手術患者である、ことを特徴とする請求項１または２に記載の方法。
前記方法は、免疫炎症攻撃から１５日以内に、かつ／または、生体サンプルの採取を行った日の後の７日以内に前記患者において医療関連感染が発生するリスクを判定することを可能する、ことを特徴とする請求項１～３の何れか１項に記載の方法。
前記生体サンプルは、血液サンプルである、ことを特徴とする請求項１～４の何れか１項に記載の方法。
前記生体サンプルは、全血サンプルである、ことを特徴とする請求項１～５の何れか１項に記載の方法。
前記方法は、前記患者の前記生体サンプルにおいて、ＡＤＧＲＥ３、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＣＯＳ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ６、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＩＬ１５、ＭＤＣ１、ＰＤＣＤ１、Ｓ１００Ａ９、ＴＤＲＤ９およびＺＡＰ７０からなるリストから選択される別の遺伝子の発現を測定する工程をさらに包含する、ことを特徴とする請求項１～６の何れか１項に記載の方法。
前記発現は、ｍＲＮＡまたはタンパク質レベルで測定される、ことを特徴とする請求項１～７の何れか１項に記載の方法。
前記発現は、ｍＲＮＡレベルで測定される、ことを特徴とする請求項１～８の何れか１項に記載の方法。
前記発現は、ＲＴ－ＰＣＲ、好ましくはＲＴ－ｑＰＣＲによって測定される、ことを特徴とする請求項１～９の何れか１項に記載の方法。
前記発現は、シークエンシングによって測定される、ことを特徴とする請求項１～９の何れか１項に記載の方法。
前記発現は、ハイブリダイゼーションによって測定される、ことを特徴とする請求項１～９の何れか１項に記載の方法。
前記発現は、１つまたは複数のハウスキーピング遺伝子の発現に対して正規化される、ことを特徴とする請求項９～１２の何れか１項に記載の方法。
ＣＸ３ＣＲ１、およびＡＤＧＲＥ３、ＢＴＬＡ、ＣＤ３Ｄ、ＣＤ７４、ＣＤ２７４、ＣＴＬＡ４、ＨＰ、ＩＦＮＧ、ＩＬ１ＲＮ、ＩＬ６、ＩＬ７Ｒ、ＩＬ１０、ＭＤＣ１、ＰＤＣＤ１、Ｓ１００Ａ９、ＴＤＲＤ９およびＺＡＰ７０からなるリストから選択される別の遺伝子の増幅手段および／または発現検出手段を備えるキットであって、当該キットは、当該キットの増幅および／または検出手段のすべてが合計で１００個以下のバイオマーカーの検出および／または増幅を可能にすることを特徴とする、キット。
ＣＸ３ＣＲ１の増幅手段および／または発現検出手段、または、
そのような増幅手段および／または検出手段を備えるキットの、
患者における医療関連感染の発生リスクを判定するための使用。