JP2022033569A - 植物病害防除剤及び植物病害防除方法 - Google Patents

Abstract

【課題】植物病害防除作用に優れる新規のバチルス属細菌を含有する植物病害防除剤、及び前記植物病害防除剤を用いた植物病害防除剤方法を提供する。
【解決手段】植物病害防除剤は、バチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１１１株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２７）及びバチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１２２株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２８）からなる群より選択される１種以上の枯草菌の菌体又は培養物を有効成分として含有する。植物病害防除方法は、前記植物病害防除剤を対象植物に施用することを含む。
【選択図】なし

Description

本発明は、植物病害防除剤及び植物病害防除方法に関する。

従来から、病害虫や病害菌による被害を最小限に抑え農作物の生産性を高めるために、効果や経済性の面で優れる化学合成農薬が使われてきた。しかしながら、近年、環境や人畜への影響等の観点から、生物そのものや生物由来の物質を有効成分とする生物農薬への関心が高まっている。

生物農薬は、天敵昆虫、天敵線虫、微生物（ウイルス、細菌、糸状菌、原生動物等）、生物産生物質（フェロモン、ホルモン、酸性毒素、抽出物等）の４種類に大別される。中でも、微生物農薬は、農作物の病害を防除する微生物を利用した農薬であり、化学合成農薬に比べて環境への負担の軽減できること、さらに、化学合成農薬の耐性菌や耐性害虫の発生抑制効果が期待されている。

例えば、バチルス・ズブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）は、植物病害をもたらす病原菌を直接攻撃する力は有しないが、ある種の病原菌と拮抗するため、野菜類等の灰色かび病、うどんこ病等の防除剤として農薬登録されている。

また、バチルス属細菌を用いた植物病害防除に関する技術として、特許文献４及び５には、バチルス・ズブチリスの特定の株を有効成分として含有する植物病害防除剤が開示されている。

特開平５－５１３０５号公報 特開平６－１３３７６３号公報

本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであって、植物病害防除作用に優れる新規のバチルス属細菌、前記バチルス属細菌を含有する植物病害防除剤、及び前記植物病害防除剤を用いた植物病害防除方法を提供する。

すなわち、本発明は、以下の態様を含む。
（１） バチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１１１株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２７）及びバチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１２２株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２８）からなる群より選択される１種以上の枯草菌の菌体又は培養物を有効成分として含有する、植物病害防除剤。
（２） 植物病害が、灰色かび病、緑かび病、青かび病及びうどんこ病からなる群より選択される、請求項１に記載の植物病害防除剤。
（３） 請求項１又は２に記載の植物病害防除剤を対象植物に施用することを含む、植物病害防除方法。
（４） バチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１１１株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２７）。
（５） バチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１２２株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２８）。

上記態様の植物病害防除剤及び植物病害防除方法によれば、植物病害を有効に防除することができる。

実施例３におけるミカンの病害発生率を示すグラフである。 実施例４におけるエンドウうどんこ病菌のコロニーあたりの平均胞子数を示すグラフである。 実施例４におけるエンドウうどんこ病菌の分生子の発芽率を示すグラフである。 実施例５におけるプリムラ花弁１ｃｍ^２当たりの病斑数を示すグラフである。 実施例６におけるキュウリうどんこ病の発病度を示すグラフである。 実施例７におけるキュウリうどんこ病の発病度を示すグラフである。 実施例８におけるキュウリうどんこ病の発病度を示すグラフである。 実施例１０におけるキュウリ葉の病斑直径を示すグラフである。 実施例１０におけるベゴニア葉の病斑直径を示すグラフである。

＜植物病害防除剤＞
本発明の一実施形態に係る植物病害防除剤は、バチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１１１株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２７）（以下、単に「ＴＴＣＣ２１１１株」と称する場合がある）及びバチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１２２株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２８）以下、単に「ＴＴＣＣ２１２２株」と称する場合がある）からなる群より選択される１種以上の枯草菌の菌体又は培養物を有効成分として含有する。

なお、本発明において、「枯草菌の菌体又は培養物を有効成分として含有する」とは、枯草菌の菌体又は培養物を、植物病害を防除する効果を奏する成分として含有することを意味する。

本実施形態の植物病害防除剤によれば、植物に病気を引き起こす幅広い病原菌の増殖や活動を効率的に抑制することができる。
本実施形態の植物病害防除剤は、植物に対する毒性や病原性がなく、植物病害に対して高い防除効果を有する。また、自然界に存在する細菌を有効成分とする微生物農薬であることから安全性が高く、化学農薬と比較して環境に対する影響が小さい。施用しても人畜への危険性や、環境汚染や農作物への残留等の問題もない。よって、消費者に安全で薬害のない農作物を提供することができる。また、化学農薬と比較して標的である病原菌の耐性菌出現率が非常に低い。

後述する実施例に示すように、バチルス・エスピーＴＴＣＣ２１１１株は、灰色かび病菌（Ｂｏｔｒｙｔｉｓ ｃｉｎｅｒｅａ）に対する生育抑制作用を有する枯草菌のスクリーニングを行い、また、バチルス・エスピーＴＴＣＣ２１２２株は、カンキツ緑かび病菌（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｄｉｇｉｔａｔｕｍ）に対する生育抑制作用を有する枯草菌のスクリーニングを行い、それぞれ灰色かび病菌に対する生育抑制作用を有する枯草菌、及び、カンキツ緑かび病菌に対する生育抑制作用を有する枯草菌として選抜された。

バチルス・エスピーＴＴＣＣ２１１１株及びバチルス・エスピーＴＴＣＣ２１２２株（以下、総じて「本実施形態の枯草菌」と称する場合がある）は、新規に単離同定された枯草菌であり、植物病害を防除する効果を有する非常に有用な新規枯草菌である。そこで、発明者らは、これらの枯草菌を、２０２０年５月２８日付で、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８）に新規菌株として寄託した。受託番号は、バチルス・エスピーＴＴＣＣ２１１１株がＮＩＴＥ Ｐ－０３２２７、バチルス・エスピーＴＴＣＣ２１２２株がＮＩＴＥ Ｐ－０３２２８である。

本実施形態の枯草菌の菌体は、生菌であることが好ましい。なお、ここでいう「生菌」とは、細菌が代謝、分裂、増殖等が可能な状態をいう。そのため、枯草菌における芽胞も発芽力を有する限り、生菌に含まれる。但し、本実施形態の植物病害防除剤は、枯草菌の死菌を含んでいてもよい。

本実施形態の枯草菌の菌体は、菌末として用いることができる。菌末を調製する方法としては、特に限定されず、例えば、フリーズドライ（凍結乾燥）法、スプレードライ法、ドラムドライ法等の一般的に枯草菌の菌末を調製する方法から適宜選択することができる。生菌の状態で菌末とし得ることから、フリーズドライ法により調製することが好ましい。

本実施形態の枯草菌の培養物は、枯草菌を培地中で培養して得られるものであれば特に限定されず、菌体を培地中で増殖させて得られる培養液であってもよく、培養液の上清（遠心分離処理等により培養液から菌体等の固形成分を除いたもの）であってもよく、培養液の濃縮物であってもよく、培養液に菌体破砕処理等を施したものであってもよく、培養液から菌体内成分を抽出したものであってもよい。すなわち、本実施形態の植物病害防除剤は、有効成分として、本実施形態の枯草菌の代謝物やその調製物（例えば、乾燥物、濃縮物、抽出物等）を含有していてもよい。なお、遠心分離処理、濃縮方法、菌体破砕処理、抽出方法、発酵方法等は、公知の方法から適宜選択して常法により行うことができる。

本実施形態の枯草菌を培養する培地は、各枯草菌が生育し得る培地であれば、特に限定されるものではなく、枯草菌の培養において一般的に用いられる培地やその改変培地等から適宜選択して用いることができる。具体的には、Ｔｒｙｐｔｉｃ Ｓｏｙ Ａｇａｒ平板培地、Ｐｏｔａｔｏ Ｓｕｃｒｏｓｅ Ｂｒｏｔｈ（ＰＳＢ）培地等が挙げられる。

培養形式は、特に限定されるものではなく、培養スケール、植物病害防除剤の剤形等を考慮して適宜決定することができる。例えば、寒天平板培地に塗布して培養してもよく、液体培地中で培養してもよい。液体培地における培養形式として、静置培養、回分培養等が挙げられる。例えば、継代培養の場合には、簡便であるため、寒天平板培地上で培養することや、適当な液体培地中で静置培養、回分培養することが好ましい。

本実施形態の枯草菌の培養条件は、特に限定されず、枯草菌を培養する場合に一般的に用いられる条件により培養することができる。例えば、培養温度は２０℃以上４０℃以下であることが好ましく、２５℃以上３７℃以下であることがより好ましい。また、培地のｐＨは３．５以上８．０以下であることが好ましく、４．０以上７．０以下であることがより好ましい。その他、本実施形態の枯草菌は、他の枯草菌と同様に好気的条件で培養することが好ましい。

本実施形態の植物病害防除剤の有効成分である枯草菌の菌体又は培養物は、ＴＴＣＣ２１１１株及びＴＴＣＣ２１２２株のいずれか１種類の枯草菌のみの菌体又は培養物からなるものであってもよく、これら２種類の枯草菌の菌体又は培養物の混合物であってもよい。中でも、より広範な植物病害への有効性が期待できることから、ＴＴＣＣ２１２２株単独の菌体又は培養物を有効成分とすることが好ましい。

本実施形態の植物病害防除剤は、本実施形態の枯草菌の菌体又は培養物のみからなるものであってもよく、本実施形態の枯草菌の菌体又は培養物による植物病害に対する防除効果を阻害しない程度において、所望の剤形に応じて、その他の物質を更に含有する植物病害防除組成物（以下、単に「本実施形態の組成物」と称する場合がある）とすることができる。

その他の物質としては、農薬製剤上許容可能な担体、界面活性剤、分散剤、補助剤、保護剤等が挙げられる。

「農薬製剤上許容可能な担体」とは、植物病害防除剤の施用を容易にし、枯草菌の生存や植物病原菌に対する拮抗作用又は抑制作用を維持する物質及び／又は植物病害防除剤の作用速度を制御する物質であって、土壌若しくは水質等の環境、及び／又は、動物（特にヒト）に対する有害性がない若しくは低い物質をいう。

このような担体として具体的には、例えば、タルク、ベントナイト、カオリン、クレー、珪藻土、ホワイトカーボン、バーミキュライト、消石灰、硫安、珪砂、尿素等の多孔質な固体担体；水、イソプロピルアルコール、メチルナフタレン、キシレン、シクロヘキサノン、アルキレングリコール等の液体担体等が挙げられる。

界面活性剤及び分散剤としては、例えば、ジナフチルメタンスルホン酸塩、アルコール硫酸エステル塩、リグニンスルホン酸塩、アルキルアリールスルホン酸塩、ポリオキシエチレングリコールエーテル、ポリオキシエチレンソルビタンモノアルキレート、ポリオキシエチレンアルキルアリールエーテル等が挙げられる。

補助剤としては、例えば、カルボキシメチルセルロース、ポリエチレングリコール、プロピレングリコール、アラビアゴム、キサンタンガム等が挙げられる。
保護剤としては、例えば、スキムミルク、ｐＨ緩衝剤等が挙げられる。

本実施形態の組成物は、有効成分の枯草菌に影響しない範囲において、他の薬理作用を有する有効成分、具体的には、除草剤、殺菌剤、殺虫剤、肥料（例えば、尿素、硝酸アンモニウム、過リン酸塩）等を更に含有することもできる。

剤形としては、有効成分である枯草菌を生菌の状態で保持できれば、特に限定されず、例えば、液体状態、固体状態又はその組み合わせとすることができる。
液体状態としては、例えば、顆粒水和剤、水和剤、水溶剤、懸濁製剤、乳剤等が挙げられる。液体状態の場合における菌体を懸濁する溶剤としては、例えば、水（滅菌水、脱イオン水、超純水を含む）、生理食塩水、緩衝液（リン酸緩衝液、炭酸緩衝液を含む）、その細菌の培地等が挙げられる。
固体状態としては、例えば、粒剤、粉剤、ゲル剤等が挙げられる。

本実施形態の植物病害防除剤の所定量あたりにおける枯草菌の菌体又は培養物の含有量は、各枯草菌の種類やその組み合わせ、施用対象植物の種類、剤形、及び施用方法等の諸条件によって異なる。通常は、本実施形態の植物病害防除剤を施用する際に枯草菌が植物病原菌に対する拮抗作用又は抑制作用を発揮する上で十分な量を含んでいることが好ましい。この含有量は、当該分野の技術常識の範囲において枯草菌の菌体又は培養物が施用後に施用対象植物の処理対象領域の所定の面積あたりに所望の（存在）量となるように各条件を勘案し、決定すればよい。本実施形態の植物病害防除剤における枯草菌の含有量は、例えば、菌体濃度として１０^９ｃｆｕ／ｇ以上１０^１１ｃｆｕ／ｇ以下程度の範囲とすることができる。或いは、本実施形態の植物病害防除剤が液体状態である場合に、枯草菌の含有量は、例えば、菌体濃度として、１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以上１０^１０ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以下程度の範囲とすることができる。この場合、必要に応じて施用時に、水、生理食塩水、緩衝液等で２倍以上１０００倍以下に希釈することもできる。

＜植物病害防除方法＞
本発明の一実施形態に係る植物病害防除方法は、上述した植物病害防除剤を対象植物に施用すること（以下、「施用工程」と称する場合がある）を含む。

本明細書において、「対象植物」とは、植物病害防除剤の施用対象となる植物を示す。対象植物は、病原菌の感染によって病害を発病し得る植物であれば、その種類は問わない。被子植物又は裸子植物のいずれであってもよい。被子植物としては、双子葉植物であってもよく、単子葉植物であってもよい。
単子葉植物としては、例えば、イネ科（Ｐｏａｃｅａｅ）植物等が挙げられる。
双子葉植物としては、例えば、ヒルガオ科（Ｃｏｎｖｏｌｖｕｌａｃｅａｅ）、バラ科（Ｒｏｓａｃｅａｅ）植物、セリ科（Ａｐｉａｃｅａｅ）、ナス科（Ｓｏｌａｎａｃｅａｅ）植物、ユリ科（Ｌｉｌｉａｃｅａｅ）、マメ科（Ｆａｂａｃｅａｅ）植物、ウリ科（Ｃｕｃｕｒｂｉｔａｃｅａｅ）植物、アブラナ科（Ｂｒａｓｓｉｃａｃｅａｅ）植物等が挙げられる。

具体的な対象植物としては、例えば、エンドウ（Ｐｉｓｕｍ ｓａｔｉｖｕｍ）、キュウリ（Ｃｕｃｕｍｉｓ ｓａｔｉｖｕｓ）、ピーマン（Ｃａｐｓｉｃｕｍ ａｎｎｕｕｍ Ｇｒｏｕｐ）、トマト（Ｓｏｌａｎｕｍ ｌｙｃｏｐｅｒｓｉｃｕｍ）、ナス（Ｓｏｌａｎｕｍ ｍｅｌｏｎｇｅｎａ）、イチゴ（Ｆｒａｇａｒｉａ ａｎａｎａｓｓａ）、ミカン（Ｃｉｔｒｕｓ ｕｎｓｈｉｕ）、ベゴニア（Ｂｅｇｏｎｉａ）、プリムラ（Ｐｒｉｍｕｌａ）等が挙げられる。

［施用工程］
施用工程では、上述した植物病害防除剤を対象植物に施用する。
植物病害防除剤をそのまま直接施用してもよく、或いは、水等の溶剤に希釈して使用してもよい。植物病害防除剤の施用方法として具体的には、例えば、直接植物に散布する方法、土壌に散布する方法、植物の種子に直接塗布する方法、植物や土壌に添加する水や肥料に添加する方法等が挙げられる。植物病害防除剤の施用量及び施用回数は、対象病害、対象作物、施用方法、発生傾向、被害の程度、環境条件、使用する剤形等によって、適宜調整することができる。また、植物病害防除剤の施用時期についても、特に限定されず、病害発生前に防除作用を発揮させることを目的として施用してもよく、或いは、病害発生後に病原菌の増殖を抑制し、病害を治療することを目的として施用してもよい。

本実施形態の植物病害防除剤は、広範囲の種類の細菌及び糸状菌に対して、優れた防除効果を発揮する。本実施形態の植物病害防除剤により防除可能な植物の病原菌としては、例えば、「カンキツ」の黒点病菌（Ｄｉａｐｏｒｔｈｅ ｃｉｔｒｉ）、そうか病菌（Ｅｌｓｉｎｏｅ ｆａｗｃｅｔｔｉｉ）、褐色腐敗病菌（Ｐｈｙｔｏｐｈｔｈｏｒａ ｃｉｔｒｏｐｈｔｈｏｒａ）、緑かび病菌（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｄｉｇｉｔａｔｕｍ）、青かび病菌（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｉｔａｌｉｃｕｍ）；
「ウリ類」のうどんこ病菌（Ｓｐｈａｅｒｏｔｈｅｃａ ｆｕｌｉｇｉｎｅａ）、つる枯病菌（Ｄｉｄｙｍｅｌｌａ ｂｒｙｏｎｉａｅ）、炭そ病菌（Ｃｏｌｌｅｔｏｔｒｉｃｈｕｍ ｌａｇｅｎａｒｉｕｍ）；
「トマト」の輪紋病菌（Ａｌｔｅｒｎａｒｉａ ｓｏｌａｎｉ）、葉かび病菌（Ｃｌａｄｏｓｐｏｒｉｕｍ ｆｕｌｖｕｍ）、うどんこ病菌（Ｏｉｄｉｕｍ ｎｅｏｌｙｃｏｐｅｒｓｉｃｉ、Ｏｉｄｉｏｐｓｉｓ ｓｐ．、Ｌｅｖｅｉｌｌｕｌａ ｔａｕｒｉｃａ）；
「ナス」の褐紋病菌（Ｐｈｏｍｏｐｓｉｓ ｖｅｘａｎｓ）、うどんこ病菌（Ｅｒｙｓｉｐｈｅ ｃｉｃｈｏｒａｃｅａｒｕｍ）；
「イチゴ」のうどんこ病菌（Ｓｐｈａｅｒｏｔｈｅｃａ ｈｕｍｕｌｉ）、炭そ病菌（Ｇｌｏｍｅｒｅｌｌａ ｃｉｎｇｕｌａｔａ）；
「ピーマン」のうどんこ病菌（Ｏｉｄｉｏｐｓｉｓ ｓｉｃｕｌａ）；
「エンドウ」のうどんこ病菌（Ｅｒｙｓｉｐｈｅ ｐｉｓｉ）；
「種々の作物」の灰色かび病菌（Ｂｏｔｒｙｔｉｓ ｃｉｎｅｒｅａ）等が挙げられ、これらに限定されない。

以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。

［実施例１］
（緑かび病を防除する納豆菌の選抜）
１．納豆菌培養液の調製
納豆菌としては、タカノフーズ株式会社が保有する納豆菌７２０菌株を用いた。納豆菌培養液は、以下の方法を用いて調製した。まず、各菌株はＴｒｙｐｔｉｃａｓｅ Ｓｏｙ Ａｇａｒ（ＴＳＡ）平板培地を用いて３７℃で１６時間培養したものを白金耳でＴｒｙｐｔｉｃａｓｅ Ｓｏｙ Ｂｒｏｔｈ（ＴＳＢ）培地に懸濁し、２８℃、１０５ｒｐｍで２４時間振とう培養した。培養後、納豆菌を遠心分離（３０００ｒｃｆ、８分間、２２℃）により集菌し、上清を除去した後に滅菌水に懸濁した。この作業を３回繰り返して培地成分を除去した後に、分光光度計を用いて培養液濃度をＯＤ_６００＝１となるように調整し、実験に供試した。

２．分生子懸濁液の調製
カンキツにおける緑かび病菌Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ ｄｉｇｉｔａｔｕｍは、茨城大学農学部で保存しているＩＵＰｄ２株を用いた。分生子形成は、本菌をＰｏｔａｔｏ Ｓｕｃｒｏｓｅ Ａｇａｒ（ＰＳＡ）平板培地で３日間培養後、ブラックライトブルーランプを３日間照射し、その後３日間暗所に置くことで誘導した。培地上の分生子は滅菌水に懸濁した後に、滅菌ティッシュペーパーでろ過することで菌糸を除去した、分生子を遠心分離（１７００ｒｃｆ、５分間、２２℃）により回収し、上澄みを除去した後に滅菌水に再懸濁した。この作業を３回繰り返すことで分生子を洗浄した。分生子懸濁液は血球計算盤を用いて濃度を１．０×１０^５ｃｏｎｉｄｉａ／ｍＬに調製し、実験に供試した。

３．対峙培養試験
ＰＳＡ平板培地にＰ． ｄｉｇｉｔａｔｕｍ分生子懸濁液を１００μＬ滴下し、コンラージ棒で塗布した後、納豆菌培養液に浸漬したペーパーディスク（径５ｍｍ）を平板培地の中央に置床した。これを２５℃の暗所で３日間培養後、ペーパーディスクの周囲に形成された阻止円の直径を測定した。試験は２反復行った。

対峙培養試験の結果、供試した全ての菌株でＰ． ｄｉｇｉｔａｔｕｍの菌糸生育に対する抑制効果が見られ、中でも、ＴＴＣＣ２１２２株が他の株と比べて強い抑制効果を示した。
なお、優れた抑制効果が確かめられたＴＴＣＣ２１２２株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許微生物寄託センター（住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８）に２０２０年５月２８日付けで、受託番号ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２８として寄託されているものである。

［実施例２］
（灰色かび病を防除する納豆菌の選抜）
１．納豆菌培養液の調製
実施例１の「１．」と同様の方法を用いて、７２０種の納豆菌について納豆菌培養液を調製した。

２．分生子懸濁液の調製
灰色かび病菌Ｂｏｔｒｙｔｉｓ ｃｉｎｅｒｅａは、茨城大学農学部で保存しているＴＶ３３５株を用いた。実施例１の「２．」と同様の方法を用いて、分生子懸濁液を調製した。

３．対峙培養試験
ＰＳＡ平板培地にＢ． ｃｉｎｅｒｅａ分生子懸濁液を１００μＬ滴下し、コンラージ棒で塗布した後、納豆菌培養液に浸漬したペーパーディスク（径５ｍｍ）を平板培地の中央に置床した。これを２５℃の暗所で３日間培養後、ペーパーディスクの周囲に形成された阻止円の直径を測定した。試験は２反復行った。

対峙培養試験の結果、供試した全ての菌株でＢ． ｃｉｎｅｒｅａの菌糸生育に対する抑制効果が見られ、中でも、ＴＴＣＣ２１１１株が他の株と比べて強い抑制効果を示した。
なお、優れた抑制効果が確かめられたＴＴＣＣ２１１１株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許微生物寄託センター（住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８）に２０２０年５月２８日付けで、受託番号ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２７として寄託されているものである。

［実施例３］
（貯蔵時のみかんにおける保存性向上確認試験）
実施例１の「１．」と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。参考として茨城大学で保有していた納豆菌Ｎｏ．２株についても同様に培養液（菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。また、カンキツにおける緑かび病菌Ｐ． ｄｉｇｉｔａｔｕｍ分生子懸濁液（１．０×１０^５ｃｏｎｉｄｉａ／ｍＬ）についても、実施例１の「２．」と同様の方法を用いて、準備した。さらに、カンキツにおける青かび病菌Ｐ． ｉｔａｌｉｃｕｍ（茨城大学農学部で保存、ＩＵＰｉ１株）についても同様に、分生子懸濁液（１．０×１０^５ｃｏｎｉｄｉａ／ｍＬ）を調製した。

次いで、みかんの表面に４か所の深さ１ｍｍ、幅３ｍｍの傷を付け、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液を１か所あたり１５μｌ滴下処理した。処理１６時間後、Ｐ． ｄｉｇｉｔａｔｕｍ及びＰ． ｉｔａｌｉｃｕｍ（茨城大学農学部で保存、ＩＵＰｉ１株）の分生子懸濁液（１．０×１０^５ｃｏｎｉｄｉａ／ｍＬ）をそれぞれ傷１か所あたり１５μｌ滴下接種した。分生子の接種から４日後にみかんの表面を観察し、接種試験に供したみかんの傷に対する、かびが観察された傷の割合（百分率）を病害発生率（％）として算出した。結果を図１に示す。なお、図１において「コントロール」群は、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液の滴下処理を行なわずに、緑かび病菌（Ｐ． ｄｉｇｉｔａｔｕｍ）又は青かび病菌（Ｐ． ｉｔａｌｉｃｕｍ）を接種したみかんである。

図１に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液による滴下処理を施した傷では、緑かび病菌（Ｐ． ｄｉｇｉｔａｔｕｍ）又は青かび病菌（Ｐ． ｉｔａｌｉｃｕｍ）のいずれを接種した場合においても病害発生率が顕著に抑制されていた。この抑制効果は、参考として使用した納豆菌Ｎｏ．２株と比較しても顕著であった。

［実施例４］
（納豆菌培養液のエンドウうどんこ病に対する治療効果及び防除効果確認試験）
ＴＴＣＣ２１１１株及びＴＴＣＣ２１２２株はＴｒｙｐｔｉｃａｓｅ Ｓｏｙ Ａｇａｒ（ＴＳＡ）平板培地を用いて３７℃で１６時間培養したものを白金耳でＰｏｔａｔｏ Ｓｕｃｒｏｓｅ Ｂｒｏｔｈ（ＰＳＢ）培地に懸濁した。これらを２８℃、１０５ｒｐｍで２４時間振とう培養し、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液（各菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。

予めうどんこ病菌を２週間前に接種したエンドウ葉から多くの分生子を形成している葉を選び、絵筆を用いて葉面上の分生子を掃い落とした。次いで、調製したＴＴＣＣ２１２２株の培養液をスプレーで噴霧した。培養液の噴霧量は、エンドウ葉１枚当たり０．３ｍＬ以上０．５ｍＬ以下程度であった。コントロールには、培養液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。噴霧処理から２日後に、エンドウ葉を固定液に浸漬させて固定した。固定液としては、ＦＡＡ（Ｆｏｒｍａｌｉｎ／Ａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ／Ａｌｃｏｈｏｌ）固定液を用いた。ＦＡＡ固定液の組成は、容量比でホルマリン：酢酸：エタノール＝１：１：１である。次いで、固定後のエンドウ葉についてエンドウうどんこ病菌の菌体をメチルブルーで染色した。葉１枚当たり１０コロニーをランダムに選び、コロニー当たりに形成された分生子数を数えた。結果を図２に示す。

図２に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液の噴霧処理群では、コントロール群と比較して、形成された分生子数の減少が確認された。また、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液を噴霧処理した葉におけるエンドウうどんこ病菌の菌糸を観察したところ、細胞死様の染色箇所が見られた（図示せず）。
以上のことから、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液は、エンドウうどんこ病に対する治療効果を有することが示唆された。

次いで、１週齢のエンドウ葉表面に、調製したＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液をそれぞれスプレーで噴霧した。培養液の噴霧量は、エンドウ葉１枚当たり０．３ｍＬ以上０．５ｍＬ以下程度であった。コントロールには、培養液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。翌日、充分にエンドウ葉表面を乾かした後、罹病エンドウ葉に形成された分生子を絵筆で処理葉全体に乗せて接種した。接種から３日後に接種葉をＦＡＡ固定液で固定した後、エンドウうどんこ病菌の菌体をメチルブルーで染色した。分生子よりも長い発芽管を形成したものを「発芽」とした。分生子数に対する発芽数の割合（百分率）を発芽率（％）として算出した。結果を図３に示す。図３において、各群について独立した試験を２回行った結果を示している。

図３に示すように、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液の噴霧処理群では、コントロール群と比較して、発芽率の減少が確認された。また、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液の噴霧処理した葉におけるエンドウうどんこ病菌の発芽管を観察したところ、細胞死様の染色箇所が見られた（図示せず）。
以上のことから、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液は、エンドウうどんこ病に対する防除効果を有することが示唆された。

［実施例５］
（納豆菌培養液のプリムラ花弁での灰色かび病に対する発病抑制効果確認試験）
実施例１の「１．」と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液（各菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。次いで、プリムラ花弁の表面に、調製したＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液をそれぞれスプレーで噴霧した。各培養液の噴霧量は、プリムラ花弁１枚当たり０．３ｍＬ以上０．５ｍＬ以下程度であった。コントロールには、培養液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。噴霧処理から１６時間後に、灰色かび病菌の分生子懸濁液（１×１０^５ｃｏｎｉｄｉａ／ｍＬ）を用いて噴霧接種した。接種から２４時間後に形成されたプリムラ花弁１ｃｍ^２当たりの病斑数（個）を算出した。結果を図４に示す。

図４に示すように、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液の噴霧処理群では、灰色かび病の発病抑制効果がみられた。その効果はやや弱いものであったが、これは、花弁表面が疎水性であることから、培養液が一様に広がらないことが原因であるものと推察された。灰色かび病菌による感染行動を観察したところ、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液の噴霧処理群では、発芽菌糸の伸長が抑制されていることが確認された（図示せず）。よって、培養液の組成及び処理方法を改善することで、灰色かび病の発病抑制効果を向上できるものと考えられる。

［実施例６］
（納豆菌培養液のキュウリうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験）
実施例４と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液（各菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。次いで、２週齢のキュウリ苗の子葉に培養液をそのまま噴霧処理した。各培養液の噴霧量は、子葉全体が培養液で覆われるまで行った。コントロールには、培養液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。噴霧処理から２４時間後に、うどんこ病菌の胞子を絵筆で処理葉全体に乗せて、接種を行った。接種後のキュウリ苗は２５℃で栽培した。接種から２週間後に各子葉に発生したコロニー数及び面積を調査し、以下に示す基準によって発病指数を判定した。コロニー面積はｉｍａｇｅＪソフトを用いて計測した。

（基準）
０：発病なし
１：コロニーが１個以上２個以下認められる
２：コロニーが葉面積の１／４未満を占める
３：コロニーが葉面積の１／４以上１／２未満を占める
４：コロニーが葉面積の１／２以上を占める

次いで、判定した発病指数に基づいて、次の式を用いて発病度を算出した。結果を図５に示す。なお、各群の調査葉数（Ｎ）は１０枚である。

発病度＝［Σ｛（発病指数）×（葉数）｝／｛４×（調査葉数）｝］×１００

図５に示すように、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液の噴霧処理群では、キュウリうどんこ病の発病抑制効果がみられた。特に、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液の噴霧処理群では、キュウリうどんこ病の発病抑制効果が顕著であった。

［実施例７］
（納豆菌培養液のキュウリうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験２）
実施例４と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液（各菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。また、参考として、市販のバチルス属菌製剤の１０００倍希釈液（推奨希釈率、推定菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）も準備した。次いで、これらを用いて、実施例６と同様の方法で、キュウリうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験を行った。各群の調査葉数（Ｎ）は１０枚である。結果を図６に示す。

図６に示すように、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液の噴霧処理群では、キュウリうどんこ病の発病抑制効果がみられた。一方で、市販のバチルス属菌製剤の希釈液を噴霧処理した群では、コントロール群と比べて、大きな差が見られず、キュウリうどんこ病の発病抑制効果が確認できなかった。
また、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液を噴霧処理した葉、並びに、滅菌水を噴霧処理した葉（コントロール群）をＦＡＡ固定液で固定した後、キュウリうどんこ病菌の菌体をメチルブルーで染色した。これら葉におけるキュウリうどんこ病菌の発芽管を光学顕微鏡で観察したところ、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液の噴霧処理群では、分生子の発芽が抑制されていることが確認された（図示せず）。
以上のことから、ＴＴＣＣ２１１１株の培養液及びＴＴＣＣ２１２２株の培養液は、キュウリうどんこ病に対する発病抑制効果を有することが示唆された。

［実施例８］
（納豆菌培養液及び培養上清のキュウリうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験）
実施例４と同様の方法を用いて、得られた培養液をＴＴＣＣ２１２２株の培養液（菌体含有、菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）として、培養上清をＴＴＣＣ２１２２株の培養上清（菌体不含）として用いた。また、参考として、市販のバチルス属菌製剤の１０００倍希釈液（推奨希釈率、推定菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）も準備した。次いで、２週齢のキュウリ苗の第一本葉に培養液（菌体含有）又は培養上清（菌体不含）をそのまま噴霧処理した。各処理液の噴霧量は、葉全体が培養液で覆われるまで行った。コントロールには、培養液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。噴霧処理から２４時間後及び１週間後に、うどんこ病菌の胞子を絵筆で処理葉全体に乗せて、接種を行った。接種後のキュウリ苗は２５℃で栽培した。接種から２週間後に各子葉に発生したコロニー数及び面積を調査し、実施例６と同様の方法を用いて、発病度を算出した。各群の調査葉数（Ｎ）は１０枚である。結果を図７に示す。

図７に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（菌体含有）及びＴＴＣＣ２１２２株の培養上清（菌体不含）の噴霧処理群では、いずれにおいてもキュウリうどんこ病の発病抑制効果がみられた。噴霧処理から１週間後にうどんこ病菌を接種した場合も、噴霧処理から２４時間後に接種した場合と同様に、キュウリうどんこ病の発病抑制効果がみられた。特に、噴霧処理から１週間後にうどんこ病菌を接種した場合において、ＴＴＣＣ２１２２株の培養上清（菌体不含）の噴霧処理群では、キュウリうどんこ病の発病抑制効果が顕著であった。

［実施例９］
（納豆菌培養液のキュウリうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験３）
実施例４と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。調製した培養液に滅菌水を加えて、５倍、１０倍及び２０倍希釈液を調製した。これらを用いて、実施例６と同様の方法で、キュウリうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験を行った。また、防除価を次の式を用いて算出した。結果を表１に示す。

防除価＝｛１－（噴霧処理群での発病度の平均）／（無処理（コントロール）群での発病度の平均）｝×１００

表１に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）、５倍希釈液、１０倍希釈液及び２０倍希釈液の噴霧処理群において、防除価が３５．５以上であり、キュウリうどんこ病の発病抑制効果がみられた。

［実施例１０］
（納豆菌培養液のキュウリ及びベゴニアでの灰色かび病に対する発病抑制効果確認試験）
実施例４と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。調製した培養液に滅菌水を加えて、５倍、１０倍及び２０倍希釈液を調製した。また、参考として、市販のバチルス属菌製剤の１０００倍希釈液（推奨希釈率、推定菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）も準備した。次いで、これらを３週齢のキュウリ第一本葉及びベゴニアの切り葉にスプレーを用いて噴霧処理した。各液の噴霧量は、液が葉から滴るまで行った。コントロールには、培養液及び希釈液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。噴霧処理後、２５℃の人工気象器内で維持し、キュウリは噴霧処理から２４時間後に処理葉を切り取った。これら処理葉にＰＳＡ平板培地で２日間培養したＢ． ｃｉｎｅｒｅａの菌叢プラグ（径５ｍｍ）を処理葉１枚あたり２箇所に接種した。接種葉は、イオン交換水で湿らせたペーパータオルを敷いたプラスチックボックスに入れて２２℃で維持し、接種から２日後に病斑直径を測定した。試験には各処理群について３葉を用い、同様の試験を３反復行った。結果を図８（キュウリでの病斑直径）及び図９（ベゴニアでの病斑直径）に示す。

図８に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）、５倍希釈液、１０倍希釈液及び２０倍希釈液の噴霧処理群では、コントロール群と比べて、病斑直径の大きさが抑えられており、キュウリ灰色かび病に対する発病抑制効果が見られた。一方で、市販のバチルス属菌製剤の希釈液を噴霧処理した群では、コントロール群と比べて、病斑直径の大きさに差が見られず、キュウリ灰色かび病に対する発病抑制効果が確認できなかった。また、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）、５倍希釈液及び１０倍希釈液の噴霧処理群において、キュウリ灰色かび病に対する発病抑制効果が特に顕著であった。

図９に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）、５倍希釈液、１０倍希釈液及び２０倍希釈液の噴霧処理群では、コントロール群と比べて、病斑直径の大きさが抑えられており、ベゴニア灰色かび病に対する発病抑制効果が見られた。一方で、市販のバチルス属菌製剤の希釈液を噴霧処理した群では、コントロール群と比べて、病斑直径の大きさに差が見られず、ベゴニア灰色かび病に対する発病抑制効果が確認できなかった。また、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）、５倍希釈液、１０倍希釈液及び２０倍希釈液の噴霧処理群いずれにおいても、ベゴニア灰色かび病に対する発病抑制効果が顕著であった。

［実施例１１］
（納豆菌培養液のイチゴうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験）
実施例４と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。調製した培養液に滅菌水を加えて、５倍及び１０倍希釈液を調製した。これらをイチゴ（品種：ローズベリーレッド）の小葉裏面にスプレーを用いて噴霧処理した。小葉はイチゴ苗の展葉後間もない（１週間から２週間程度）複葉から切り取って実験に供試した。各液の噴霧量は、小葉裏面を処理液が覆うまで行った。コントロールには、培養液及び希釈液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。噴霧処理から２４時間後に、イチゴうどんこ病罹病葉の病斑から分生胞子を絵筆で払い落とし、処理葉全体に接種を行った。接種後のイチゴ葉は湿らせた濾紙を敷いたプラスチックトレイ内に並べて密閉し、２０℃、蛍光灯照明下（１日当たり１２時間の照明）に維持した。接種から２週間後に葉に発生したコロニー数及び面積を実体顕微鏡下で調査し、実施例６と同様の方法で、発病度を算出し、実施例９と同様の方法で、防除価を算出した。結果を表２に示す。

表２に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）、５倍希釈液及び１０倍希釈液の噴霧処理群において、防除価が５４．２以上であり、十分なイチゴうどんこ病の発病抑制効果がみられた。

また、各処理群の葉の裏面を実体顕微鏡で観察したところ、５倍希釈液の噴霧処理群及び１０倍希釈液の噴霧処理群の葉面には毛茸の下にうどんこ病菌のコロニーが観察できるが、それらは、滅菌水の噴霧処理群（コントロール群）で見られるコロニーよりも菌糸密度が低いことが明らかとなった（図示せず）。

［実施例１２］
（納豆菌培養液のピーマンうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験）
実施例４と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。調製した培養液に滅菌水を加えて、５倍及び１０倍希釈液を調製した。これらをピーマンうどんこ病菌に感受性であるシシトウ葉の裏面にスプレーを用いて噴霧処理した。シシトウの葉は播種後８週齢の苗から切り取って実験に供試した。各液の噴霧量は、葉面を処理液が覆うまで行った。コントロールには、培養液及び希釈液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。噴霧処理から２４時間後に、ピーマンうどんこ病罹病葉の病斑から分生胞子を絵筆でかき取り、処理葉全体になすりつけて接種を行った。接種後のシシトウ葉は湿らせた濾紙を敷いたプラスチックトレイ内に並べて密閉し、２１℃、蛍光灯照明下（１日当たり１２時間の照明）に維持した。接種から３週間後に葉に発生したコロニー数及び面積を実体顕微鏡下で調査し、実施例６と同様の方法で、発病度を算出し、実施例９と同様の方法で、防除価を算出した。結果を表３に示す。

表３に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）及び５倍希釈液の噴霧処理群において、防除価が３８．６以上であり、ピーマンうどんこ病の発病抑制効果がみられた。一方で、１０倍希釈液の噴霧処理群では、ピーマンうどんこ病の発病抑制効果がみられなかった。

また、各処理群の葉の裏面を実体顕微鏡で観察したところ、各処理群に形成されたコロニーに顕著な違いは見られなかった（図示せず）。これは、他のうどんこ病菌が表面寄生性であるのに対し、本菌が内部寄生性であるためと推察された。

［実施例１３］
（納豆菌培養液のトマトうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験）
実施例４と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。調製した培養液に滅菌水を加えて、５倍及び１０倍希釈液を調製した。これらを３週齢のトマト（品種：ポンテローザ）の本葉にスプレーを用いて噴霧処理した。各液の噴霧量は、葉面を処理液が覆うまで行った。コントロールには、培養液及び希釈液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。噴霧処理から２４時間後に、トマトうどんこ病罹病葉の病斑から分生胞子を絵筆でかき取り、処理葉全体になすりつけて接種を行った。接種後のトマト苗は２５℃で栽培した。接種から１０日後に葉に発生したコロニー数及び面積を実体顕微鏡下で調査し、実施例６と同様の方法で、発病度を算出し、実施例９と同様の方法で、防除価を算出した。結果を表４に示す。

表４に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）、５倍希釈液及び１０倍希釈液の噴霧処理群において、防除価が３６．４以上であり、トマトうどんこ病の発病抑制効果がみられた。

また、各処理群の接種葉の表面におけるトマトうどんこ病菌の分生子及び菌糸の形態を目視で観察したところ、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）の噴霧処理群ではコントロール群と比べて顕著な発芽抑制効果が見られた（図示せず）。また、５倍希釈液の噴霧処理群では、コントロール群に比べてコロニーを形成する菌糸の密度が薄くなっていた（図示せず）。１０倍希釈液の噴霧処理群ではコントロール群との差異は見られなかった（図示せず）。

［実施例１４］
（納豆菌培養液のナスうどんこ病に対する発病抑制効果確認試験）
実施例４と同様の方法を用いて、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（菌体濃度：１×１０^８ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）を調製した。調製した培養液に滅菌水を加えて、５倍及び１０倍希釈液を調製した。これらを３週齢のナス（品種：千両二号）の本葉にスプレーを用いて噴霧処理した。各液の噴霧量は、葉面を処理液が覆うまで行った。コントロールには、培養液及び希釈液の代わりに滅菌水を噴霧処理した。噴霧処理から２４時間後にナスうどんこ病罹病葉の病斑から分生胞子を絵筆でかき取り、処理葉全体になすりつけて接種を行った。接種後のナス苗は２５℃で栽培した。接種から１０日後に葉に発生したコロニー数及び面積を調査し、実施例６と同様の方法で、発病度を算出し、実施例９と同様の方法で、防除価を算出した。結果を表５に示す。

表５に示すように、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）、５倍希釈液及び１０倍希釈液の噴霧処理群において、防除価が２５．４以上であり、ナスうどんこ病の発病抑制効果がみられた。

また、各処理群の接種葉の表面におけるナスうどんこ病菌の分生子及び菌糸の形態を目視で観察したところ、ナスうどんこ病菌は他のうどんこ病菌に比べて感染率が低く、コロニーも他に比べて進展しないものであった。また、ＴＴＣＣ２１２２株の培養液（原液）、５倍希釈液及び１０倍希釈液の噴霧処理群において、ナスうどんこ病の発病抑制効果は見られたものの、これまで検定した他の植物種のうどんこ病菌に対する発病抑制効果に比べて低く見えた。これは、上述したように、ナスうどんこ病菌は他のうどんこ病菌に比べて感染率が低いことから、コントロール群との差異が見にくかったためであると推察された。

以上のことから、ＴＴＣＣ２１１１株及びＴＴＣＣ２１２２株は、各種植物病害に対する防除効果を有することが明らかとなった。

本実施形態の植物病害防除剤及び植物病害防除方法によれば、植物病害を有効に防除することができる。

Claims (5)

1. バチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１１１株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２７）及びバチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１２２株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２８）からなる群より選択される１種以上の枯草菌の菌体又は培養物を有効成分として含有する、植物病害防除剤。
2. 植物病害が、灰色かび病、緑かび病、青かび病及びうどんこ病からなる群より選択される、請求項１に記載の植物病害防除剤。
3. 請求項１又は２に記載の植物病害防除剤を対象植物に施用することを含む、植物病害防除方法。
4. バチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１１１株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２７）。
5. バチルス・エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）ＴＴＣＣ２１２２株（ＮＩＴＥ Ｐ－０３２２８）。

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