JP2021528999A - エンベロープウイルスの精製方法 - Google Patents

Abstract

本発明は、エンベロープウイルスの精製方法に関する。本発明はさらに、前記方法により得られるエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスに関する。【選択図】なし

Description

本発明は、エンベロープウイルスの精製方法に関する。本発明はさらに、前記方法により得られるエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスに関する。

今日、モノクローナル抗体を超えて、ウイルス粒子をベースとした新規の生物薬剤の開発が大きく期待されている。これらのウイルス粒子は、遺伝子治療またはワクチン接種に応用することができる。特に、癌や感染性疾患の処置または予防への幅広い広範囲の適用は、医療市場の拡大と相まって、遺伝子治療ベクターおよびウイルスワクチンの製造プロセスの改善に向けた努力を加速させている。

十分特徴づけられた動物細胞株およびスケーラブルな製造システムの使用により、天然ウイルスや組換えウイルスの力価や、製造物の品質の大幅な改善が可能になった。しかしながら、ウイルス粒子についての下流精製プロセスへは、それほど努力が投入されていなかった。

汚染物質は、プロセスに関連するもの（例えば、ウシ血清アルブミン、抽出物、ヌクレアーゼ、浸出物）または製造物に関連するもの（例えば、宿主細胞タンパク質、宿主細胞ＤＮＡ、プロテオグリカン、およびグリコサミノグリカン）のいずれかであり、原則として、精製プロセスによって除去されなければならない。上流の力価が向上し続けると、ウイルスの下流処理（ＤＳＰ）が、重大なボトルネックになる。粒子サイズや不均一性、等電点（ｐＩ）、表面の疎水性に加えて、ウイルスの不安定さは、生ウイルスの精製プロセスの設計において重要な役割を果たしている。これは、特にエンベロープウイルスに当てはまり、ウイルスエンベロープの物理化学的性質が、コスト効率の高い工業的ウイルス製造にとっての課題となっているからである。

多くのＤＮＡウイルスおよびＲＮＡウイルスは、ウイルスエンベロープを有する。脂質二重層エンベロープは、ウイルスのタンパク質カプシドを覆い、ウイルスの糖タンパク質を含む宿主細胞膜の部分に由来する。免疫系を回避するため、ウイルスは、短時間で表面タンパク質を変化させることができる。さらに、これらのウイルスのエンベロープは、熱、界面活性剤、および乾燥に対して比較的感受性があり、この特性は、宿主環境の外側でのエンベロープウイルスの限定的な生存をもたらしている。エンベロープウイルスは、非エンベロープウイルスより変性しやすく、典型的には、宿主から宿主へ直接移動し／移動させられなければならない。

それでもやはり、エンベロープウイルスは、弱毒生ワクチンとして用いらる。エンベロープウイルスは、不活性化ビリオンまたは精製されたサブユニットより広範な免疫応答を誘導する。

いくつかのエンベロープウイルスは、例えば、ポックスウイルス（ｐｏｘ ｖｉｒｕｓ）、アルファウイルス（ａｌｐｈａｖｉｒｕｓ）、フラビウイルス（ｆｌａｖｉｖｉｒｕｓ）、パラミクソウイルス（ｐａｒａｍｙｘｏｖｉｒｕｘ）、ヘルペスウイルス（ｈｅｒｐｅｓ ｖｉｒｕｓ）などの、ベクターワクチンとしても用いられる。この場合、エンベロープウイルスは、レシピエントにおける発現のため、別のウイルスの抗原または腫瘍抗原を運ぶために用いられる。遺伝子治療のためのベクターとして用いられる他のエンベロープウイルスには、レトロウイルス（ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓ）、ポックスウイルス、およびヘルペスウイルスなどが挙げられる。

明らかに、例えば遺伝子治療アプリケーション、ウイルスベクターワクチン、または腫瘍溶解性ウイルスに必須であるウイルス感染力を維持するために、生エンベロープウイルスの穏やかな下流処理（ＤＳＰ）に課題がある。

エンベロープウイルスを精製するために当技術分野で用いられる対応する処理は、しばしば、ラージスケールで移植する能力が限られていたり、または著しい収量損失と関連していたり、または連続的な細胞株で製造された医薬品に要求される純度のレベルを満たしていなかったりすることがある。

多数のウイルスベースワクチンは、初代ニワトリ胚線維芽細胞（ＣＥＦ）を含む初代細胞の有限培養物上で作製される。初代細胞に由来したワクチンに関する多数の経験と、それらの限られた寿命のため、初代ＣＥＦ細胞で産生されたワクチンは、一般的に安全であると認識されており、宿主細胞ＤＮＡまたは宿主細胞タンパク質のレベルに関しては、それほど厳格な条件が適用されない。しかしながら、ＣＥＦ細胞は、孵化卵から作製されなければならないため、特定病原体未感染（ＳＰＦ）な農場で卵を産生しているにも関わらず、感染性物質を汚染する潜在的なリスクがある。製造コストがかかり、産生されたワクチンバッチごとに費用のかかる高価なバイオセーフティ検査を行う必要があるため、業界では連続細胞株が好まれる。不死細胞をバンク化し、細胞バンクレベルで特徴づけ、個々のバッチのために高価な検査を必要としない、多数のワクチンバッチの生産に用いることができる。さらに、連続細胞株は、弱毒生ウイルス、および生きているが複製能力のないウイルスベクターを支援するためのヘルパー遺伝子の取り込みを可能にする。

そのようなベクターの一例として、改変ワクシニアアンカラ（Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｖａｃｃｉｎｉａ Ａｎｋａｒａ）（ＭＶＡ）がある。これは、高度に弱毒化されたワクシニアウイルスであり、ヒト細胞において複製することができず、無関係のウイルスの抗原または特定の腫瘍抗原を運ぶための重要なワクチンベクターとして機能する。ワクシニアは、最も大きいＤＮＡウイルスである。もうひとつの例は、トリパラミクソウイルス（ｐａｒａｍｙｘｏｖｉｒｕｓ）の一種である、ニューカッスル病（ＮＤ）ウイルスがあり、ヒト腫瘍において複製する潜在能力を示しており、腫瘍細胞を死滅させ、かつ強力な抗腫瘍免疫応答を開始させる腫瘍溶解剤として機能することができる。どちらのウイルスも、歴史的に、ＣＥＦ細胞で増殖している。

ワクチンまたは遺伝子治療送達媒体として適用される他のウイルスベクター、例えばセンダイウイルス（Ｓｅｎｄａｉ ｖｉｒｕｓ）（別のパラミクソウイルス）、それぞれのアルファウイルスに由来したベネズエラウマ脳炎ウイルスレプリコンベクター、黄熱病ウイルス（Ｙｅｌｌｏｗ ｆｅｖｅｒ ｖｉｒｕｓ）（ＹＦ１７Ｄ）、フラビウイルスなどは、連続細胞株で増殖する。恒久的な遺伝子改変に用いられるレンチウイルスベクターは、一過性トランスフェクションによって作製され、基質として恒久的な細胞株を必要とする。

ほとんどの不死細胞株、特に、懸濁培養での増殖に適応した不死細胞株は、高細胞用量で注射された場合、免疫無防備な不全動物（新生ヌードマウス）で増殖する潜在能力を獲得している。まれに、細胞ＤＮＡの注入後に腫瘍形成が見られることもある。

そのような細胞株は、不死化／形質変換因子（核酸またはタンパク質）をワクチンレシピエントへ移入する可能性がある。したがって、不死化細胞株で産生されるウイルスおよびウイルスベクターの純度に関して、厳格な条件が課されている。

そのような低レベルの宿主細胞汚染物質を得るため、精製のための新しい改善された方法が必要とされる。その目標は、一方においてはウイルス収率を向上させ、他方では規制上の必要条件を満たすことである。

ワクチンの製造または遺伝子治療に用いられるエンベロープウイルスの型に応じて、ベクターは様々な方法で精製することができる。従来、エンベロープウイルスの精製は、分子サイズとその特異的な密度差によって分子を分離する方法に基づいて行われている。密度勾配遠心分離は、ウイルス下流精製プロセスにおける最先端である。例えば、前臨床研究のための限られた量のウイルスを精製するために、スクロース、イオジキサノール（ｉｏｄｉｘａｎｏｌ）、または塩化セシウム勾配が、一般的に用いられている。さらに、宿主細胞ＤＮＡおよび他の宿主細胞汚染物質のさらなる除去のために、限外濾過またはヌクレアーゼ処理（例えば、ベンゾナーゼ（Ｂｅｎｚｏｎａｓｅ））のような二次的方法が用いられる。

これらのプロセスのスケーラビリティおよび経済面の乏しさ、ならびに医療用途として用いられるウイルス調製物の純度に関するより高い規制要件が、クロマトグラフィー法に基づいた新しいテクノロジーの開発に繋がった。これらの方法はよく知られ、確立されており、ウイルス粒子の下流処理に広く用いられている。ウイルス粒子のクロマトグラフィー濃縮および精製について最も一般的な方法は、アフィニティクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、およびサイズ排除クロマトグラフィーである。

宿主細胞ＤＮＡ問題に対抗する特定のアプローチを例証するために、ワクシニアウイルスを例として用いる（このアプローチはワクシニアウイルスのみに限定することはない）。ワクシニアウイルスの３つの表面タンパク質Ａ２７Ｌ、Ｄ８Ｌ、およびＨ３Ｌは、ワクシニアウイルスの細胞表面のヘパリン硫酸との相互作用を媒介することが報告されている。したがって、ワクシニア精製のためにアフィニティクロマトグラフィーに用いられた場合のヘパリンおよびヘパリン硫酸は、３７％の収量損失で７７％のＤＮＡ枯渇をもたらした（非特許文献１参照）。

特許文献１参照では、精製のためにカオトロピック剤とケイ酸濾過の組合せを用いて、感染単位の５２％を回収し、宿主細胞ＤＮＡの１７％を枯渇させた。

エンベロープウイルス粒子、例えば、ワクシニアウイルス粒子を感染細胞株から効率的に精製するには、いくつかの重要な課題が克服されなければならない。記載された方法は、しばしば、連続細胞で製造された医薬品に必要とされる純度のレベルを満たさない。成分の分離に必要とされる（塩濃度およびｐＨのような）条件は、特に、感受性の高いエンベロープウイルスについて、ウイルス凝集またはウイルス不活性化を引き起こす場合が多い。擬（Ｐｓｅｕｄｏ）アフィニティクロマトグラフィーは、いくつかのハードルを克服し得るが、特定のウイルスに限定される。

したがって、ヒトの予防薬や治療薬のために、高活性を有するエンベロープウイルスの精製のための新しい方法の必要性がある。このような新しい方法は、迅速で、費用効率が高く、普遍的で、堅牢で、工業的にスケーラブルであるべきである。加えて、この方法は、高収率および高純度でのエンベロープウイルスの調製を可能にするべきである。特に、エンベロープウイルスの調製は、ＤＮＡおよび／またはＲＮＡなどの宿主細胞由来核酸、加えて宿主細胞由来タンパク質を可能な限り少なく含むべきである。マルチモーダルクロマトグラフィーまたは混合モードクロマトグラフィー（ＭＭＣ）は、様々な生体分子の分離に用いられる技術であり、１を超える分離原理を利用したクロマトグラフィー方を指す。ＭＭＣによる抗体精製のための技術は、当技術分野において知られている。中でも、ＭＭＣは、タンパク質調製物からウイルスを除去するために用いられる。この場合、タンパク質溶液は、フロースルーモードで混合モード担体を通過するが、ウイルスを含む汚染物質は、樹脂に強固に結合したままであるため、タンパク質を精製することができる。

本特許出願の発明者らは、驚くべきことに、エンベロープウイルスの精製のための疎水性イオン交換混合モードクロマトグラフィーを初めて確立した。これは、完全にスケーラブルでかつ再現性のあるプロセスである。前記プロセスにより、高収率および高純度でのエンベロープウイルスの精製が可能となった。さらに、本特許出願の発明者らは、溶出バッファー中のアルギニンの存在が、ウイルス収率および純度をさらに高めることを可能にし、溶出に通常用いられる高い塩濃度を補償することさえできることを発見した。当技術分野において、アルギニンは、エンベロープウイルスを不活性化するために用いられるため、大量のエンベロープウイルスの回収は、極めて驚くべきことである（特許文献２参照）。本発明のウイルス精製方法は、エンベロープウイルスの精製における実際の欠点（例えば、純度、速度、回収率、普遍性、堅牢性、および／またはスケーラビリティに関する）を克服するのに適した結合溶出モードでの混合モードクロマトグラフィーを用いる。この方法は、いかなるエンベロープウイルスでもウイルス調製物から精製するのに適している。記載されたプロセスで得られたウイルス製剤は、規制当局の厳格なガイドラインを満たす。

米国特許第９２７３２８９号明細書 欧州特許第２３５０２７１号明細書

Ｗｏｌｆｆ ｅｔ ａｌ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，１０５（４），２０１０，７６１−７６９

第１の態様において、本発明は、
（ｉ）調製物に含まれるエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させるステップと、
（ｉｉ）前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体から溶出するステップと、を含み、
前記混合モードクロマトグラフィー担体が、疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、エンベロープウイルスの精製方法に関する。

第２の態様において、本発明は、第１の態様の方法により得られるエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスに関する。

第３の態様において、本発明は、医薬での使用のための第２の態様のエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスに関する。

第４の態様において、本発明は、アルギニンを含む溶出バッファーに関する。

第５の態様において、本発明は、エンベロープウイルスを溶出するための、アルギニンを含むバッファーの使用に関する。

第６の態様において、本発明は：
（ｉ）疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、混合モードクロマトグラフィー担体と、
（ｉｉ）以下のバッファーのうちの１または複数：平衡バッファー、洗浄バッファー、および溶出バッファーと、
（ｉｉｉ）任意で、ヌクレアーゼと、
を含む、エンベロープウイルスを精製するためのキットに関する。

この発明の概要は、必ずしも本発明の全ての特徴を記載しているわけではない。他の実施形態は、次の詳細な説明の概観から明らかになるであろう。

以下の図および実施例は、単に本発明の例示にすぎず、添付の特許請求の範囲により示された本発明の範囲を限定するとは決して解釈されるべきではない。
本発明によるエンベロープウイルス精製の例示的な方法の概略図である。 混合モード媒体からの溶出中のアルギニンの効果を示す図であって、ａ）は、示された条件下でのウイルス捕獲および回収の代表的なクロマトグラムを示す図であって、ウイルス可溶化液を、混合モード樹脂へ負荷し、洗浄し、最後に、２Ｍ ＮａＣＬのみを供給されたバッファー（灰色）かまたは２Ｍ ＮａＣＬおよび０．２５Ｍアルギニンを含有する溶出バッファー（黒色）のいずれかをアプライすることにより溶出したことを示し、ｂ）は、溶出バッファー中のアルギニンの非存在下または存在下（＋／−Ａｒｇ）における、ａ）に示された個々のクロマトグラフィーステップ中の典型的な感染性粒子（ＩＶＰ）の回収率およびピーク面積を示す図である。 混合モード媒体を用いたウイルス捕獲の再現性を示す図である。最適化条件下で同じ混合モードで実施された連続的なクロマトグラフィー実行（ｎ＝１０）のオーバーレイは、記載された方法によるウイルス捕獲の堅牢性を実証している。各ステップにおいて、一次清澄化ステップ由来のウイルス可溶化液の最適化量を負荷し、洗浄し、最後に、２Ｍ ＮａＣｌおよび０．２５Ｍアルギニンを供給された溶出バッファーを用いて回収した。 高いアルギニン濃度が、溶出中の高塩の要求の代わりとなり得、混合モード担体からのさらに向上したウイルス回収率を可能にし得ることを示す図であって、ａ）は、示された条件下でのウイルス捕獲および回収の代表的なクロマトグラムを示す図であって、ウイルス可溶化液を、混合モード樹脂へ負荷し、洗浄し、最後に、２Ｍ ＮａＣＬおよび０．２５Ｍアルギニンを供給されたバッファー（灰色）かまたは０．５Ｍ ＮａＣＬおよび０．７５Ｍアルギニンを含有する溶出バッファー（黒色）のいずれかをアプライすることにより溶出したことを示し、ｂ）は、溶出バッファー中のアルギニンの非存在下または存在下（＋／−Ａｒｇ）における、ａ）に示された個々のクロマトグラフィーステップ中の典型的な感染性粒子（ＩＶＰ）の回収率およびピーク面積を示す図である。

定義
本発明が下記で詳細に説明される前に、この発明が、本明細書に記載された特定の方法論、プロトコール、および試薬は変化し得るため、これらに限定されないことが理解されるべきである。本明細書に用いられる専門用語が特定の実施形態のみを記載することを目的とし、添付された特許請求の範囲によってのみ限定される本発明の範囲を限定することを意図しないこともまた理解すべきである。他に規定がない限り、本明細書で用いられる全ての技術的および科学的用語は、当業者によって一般的に理解されているのと同じ意味をもつ。

好ましくは、本明細書で用いられる用語は、“Ａ ｍｕｌｔｉｌｉｎｇｕａｌ ｇｌｏｓｓａｒｙ ｏｆ ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｃａｌ ｔｅｒｍｓ：（ＩＵＰＡＣ Ｒｅｃｏｍｍｅｎｄａｔｉｏｎｓ）”，Ｌｅｕｅｎｂｅｒｇｅｒ，Ｈ．Ｇ．Ｗ，Ｎａｇｅｌ， Ｂ．ａｎｄ Ｋｏｌｂｌ，Ｈ．ｅｄｓ．（１９９５），Ｈｅｌｖｅｔｉｃａ Ｃｈｉｍｉｃａ Ａｃｔａ，ＣＨ−４０１０ Ｂａｓｅｌ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄに記載されている通りに定義される。

いくつかの文書が、この明細書の本文を通して引用されている。上記下記に関わらず、（全ての特許、特許出願、科学的刊行物、製造会社の仕様書、使用説明書、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号配列提出などを含む）本明細書に引用された文書のそれぞれは、全体として参照により本明細書に組み入れられている。先行発明によって、本発明がそのような開示に先行する資格がないという承認として解釈されるべきことは、本明細書に存在しない。万一、そのような組み入れられた参考文献の定義または教示と、本明細書に列挙された定義または教示との間に矛盾が生じた場合、本明細書の本文が優先する。

本発明による用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」、または「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」もしくは「含むこと（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」などの語尾変化形は、述べられた整数または整数群の包含を意味するが、任意の他の整数または整数群の排除を意味するものではない。本発明による用語「から本質的になること（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙ ｏｆ）」は、述べられた整数または整数群の包含を意味するが、述べられた整数に著しく影響しまたは変化させるだろう改変または他の整数を排除する。本発明による用語「からなること（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ）」、または「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｓ ｏｆ）」などの語尾変化形は、述べられた整数または整数群の包含、およびいかなる他の整数または整数群の排除をも意味する。

本発明を記載する文脈において（特に、特許請求の範囲の文脈において）用いられる用語「１つの（ａ）」および「１つの（ａｎ）」および「その（ｔｈｅ）」ならびに類似した言及は、本明細書で他に指定がない限り、または文脈により明らかに矛盾しない限り、単数形と複数形の両方を網羅すると解釈されるものとする。

この発明の化合物または作用物質の量または濃度、ｐＨ、時間、温度などの測定可能な値に言及する時に本明細書で用いられる場合の用語「約」は、示された値および示された値の２０％、１０％、５％、１％、０．５％、またはさらに０．１％の変動を包含することを意図される。

本明細書で用いられる場合、用語「ウイルス」は、他の生物体の生きている細胞の内側でのみ複製する小さい作用物質を指す。ウイルスはまた、細胞培養において培養され得る。ウイルスは、動物および植物から、細菌および古細菌を含む微生物までの全ての型の生命体に感染することができる。感染細胞の内側でもなく、細胞に感染する最中でもない間、ウイルスは、独立した粒子の形をとって存在する。ビリオンとしても知られている、これらのウイルス粒子は、以下の２つまたは３つの部分からなる：（ｉ）遺伝情報を運ぶ長い分子であるＤＮＡかＲＮＡかのいずれかから作られた遺伝物質、（ｉｉ）遺伝物質を囲みかつ保護する、カプシドと呼ばれるタンパク質殻、および場合によっては、（ｉｉｉ）ウイルスが細胞の外側にある時、タンパク質殻を囲む脂質のエンベロープ。これらのウイルス粒子の形は、あるウイルス種についての単純なヘリックスおよび正二十面体の形から他のウイルス種についてのより複雑な構造まで様々である。したがって、本明細書で用いられる場合、用語「ウイルス」はまた、ウイルス粒子、特に感染性粒子を包含する。

本明細書で用いられる場合、用語「エンベロープウイルス」は、ウイルスの保護的タンパク質カプシドを覆うウイルスエンベロープを有するウイルスを指す。エンベロープは、典型的には、宿主細胞膜（リン脂質およびタンパク質）の部分に由来するが、糖タンパク質および／または糖オリゴペプチドなどのいくつかの（ウイルスの）糖構造を含む。機能的には、ウイルスエンベロープは、ウイルスが宿主細胞へ入るのを助け、ウイルスが宿主免疫系を回避するのを助け得る。エンベロープの表面上の糖タンパク質および／または糖オリゴペプチドなどの（ウイルスの）糖構造は、宿主の膜上の受容体部位を同定しかつ受容体部位と結合する役割を果たす。その後、ウイルスエンベロープは、宿主の膜と融合し、カプシドおよびウイルスゲノムが宿主へ入って、宿主を感染させることを可能にする。改変ワクシニアアンカラ（ＭＶＡ）ウイルスおよびニューカッスル病ウイルス（ＮＤＶ）はエンベロープウイルスである。本明細書で用いられる場合、用語「エンベロープウイルス」はまた、エンベロープウイルス粒子、特に感染性エンベロープウイルス粒子を包含する。

本明細書で用いられる場合、用語「改変ワクシニアアンカラ（ＭＶＡ）ウイルス」は、アンカラ株に由来したワクシニアの高度に弱毒化された株を指し、ワクチンおよびワクチンアジュバントとしての使用のために開発された。最初のＭＶＡウイルスは、野生型アンカラ株から、ニワトリ胚細胞の連続継代により単離された。このように処理されて、ＭＶＡウイルスは、霊長類（ヒトを含む）細胞において効率的に複製する能力を含む野生型ワクシニアのゲノムの約１５％を喪失した。ＭＶＡウイルスは、エンベロープウイルスのクラスに属する。

本明細書で用いられる場合、用語「ニューカッスル病（ＮＤ）ウイルス」は、多くの家畜および野生型のトリ種を冒すトリ疾患を引き起こすことが一般的に知られたウイルスを指す。ＮＤウイルスはヒトへ感染する。ヒトの、感染したトリへの曝露（例えば、家禽処理工場における）は、軽度の結膜炎およびインフルエンザ様症状を引き起こし得るが、その他の点では、ＮＤウイルスはヒトの健康に害をもたらさない。抗癌剤としてのＮＤウイルスの使用への関心は、ＮＤウイルスが、正常細胞に対する限られた毒性と共に、ヒト腫瘍細胞を選択的に死滅させる能力から起こった。ＮＤウイルスはエンベロープウイルスのクラスに属する。

本明細書で用いられる場合、用語「精製されたウイルス、特にエンベロープウイルス」は、汚染物質の存在を低減または排除する条件下で単離されたウイルス、特にエンベロープウイルスを指し、その汚染物質として、ウイルス、特にエンベロープウイルスが得られる、天然の材料／（非ウイルスの）細胞内物質／成分、例えば、細胞、細胞片、細胞レムナント、細胞タンパク質、細胞脂質、ならびに／または、ＤＮＡ分子および／もしくはＲＮＡ分子などの細胞核酸が挙げられる。汚染物質には、（非ウイルスの）細胞外物質／成分、例えば、（細胞培養およびウイルス産生に用いられる）培地添加物がさらに挙げられる。非ウイルスの細胞内物質および非ウイルスの細胞外物質はまた、ウイルス非関連材料と名づけられ得る。汚染物質にはまた、（望まれる（無傷の）ウイルスを除く）ウイルス物質／成分、例えば、不完全なウイルス粒子および外来性ウイルスが挙げられる。好ましくは、汚染物質には、天然の材料／（非ウイルスの）細胞内物質および／または（非ウイルスの）細胞外物質が挙げられる。精製されたウイルス、特にエンベロープウイルスは、好ましくは、汚染物質、例えば、細胞成分および／または培養成分を実質的に含まない。本明細書で用いられる場合、用語「実質的に含まない」は、例えばウイルスを産生する細胞および／またはその細胞培地に含まれる、汚染物質の、好ましくは少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも９０％、さらにより好ましくは少なくとも９５％、最も好ましくは少なくとも９９％または１００％、例えば、少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、または１００％が除去されていることを意味する。換言すれば、汚染物質を実質的に含まない、精製されたウイルス、特にエンベロープウイルスは、好ましくは少なくとも５０％純粋、より好ましくは少なくとも９０％純粋、さらにより好ましくは少なくとも９５％純粋、最も好ましくは少なくとも９９％または１００％純粋、例えば、少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、または１００％純粋である。

本明細書で用いられる場合、用語「（％）純度」は、精製ステップを経てウイルス、特にエンベロープウイルスが精製ステップを通して搬送される際に、精製ステップの前の調製物／試料におけるウイルスの純度と比較して達成された純度を意味することが意図される。純度を高めることは、調製物／試料が精製ステップの前後で比較されたときに、（ウイルス、特にエンベロープウイルスと比例して）汚染物質のレベルが低下したウイルス、特にエンベロープウイルスを得ることを伴う。上記で定義された純度の意味の範囲内のパーセンテージには、非限定的に、好ましくは少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９５％、最も好ましくは少なくとも９９％または１００％、例えば、少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、または１００％を含む。純度は、クロマトグラフィー、ゲル電気泳動、イムノアッセイ、組成物分析、生物検定、および当技術分野において知られた他の方法により評価することができる。純度はまた、用量あたりの各不純物の量（例えば、ｎｇの核酸／用量）である、特定の不純物として表現することができる。本明細書において精製されているようなエンベロープウイルスを含む調製物は、好ましくは、≦１０ｎｇの核酸／用量、例えば、０ｎｇ、≦０．１ｎｇ、０．２ｎｇ、０．３ｎｇ、０．４ｎｇ、０．５ｎｇ、０．６ｎｇ、０．７ｎｇ、０．８ｎｇ、０．９ｎｇ、１．０ｎｇ、２．０ｎｇ、３．０ｎｇ、４．０ｎｇ、５．０ｎｇ、６．０ｎｇ、７．０ｎｇ、８．０ｎｇ、９．０ｎｇ、または１０．０ｎｇの核酸／用量を含む。核酸は、ＤＮＡおよび／またはＲＮＡ分子を包含する。

本明細書で用いられる場合、ウイルス、特にエンベロープウイルスの用語「精製」は、ウイルス、特にエンベロープウイルスの調製物における汚染物質の除去または汚染物質のレベルの測定可能な低減を指す。

本明細書で用いられる場合、用語「ウイルス活性」は、（ｉ）少なくとも１つの細胞型において感染性であるか、（ｉｉ）ヒトなどの動物において免疫原性であるか、または（ｉｉｉ）感染性と免疫原性の両方であるかのいずれかである、ビリオンとして定義される。「活性ウイルス」、特に「活性エンベロープウイルス」は、好ましくは、少なくとも１つの細胞型において感染性であるかもしくはヒトなどの動物において免疫原性であるかのいずれか、または両方であるウイルスである。好ましくは、ウイルス活性は、精製中に保存される。特に、ウイルス活性は、最初の５０％組織培養感染量（ＴＣＩＤ_５０）の少なくとも３０％、好ましくは少なくとも４０％、より好ましくは少なくとも５０％、さらにより好ましくは少なくとも８０％、最も好ましくは少なくとも９０％またはそれ以上、例えば、少なくとも３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、または１００％が、精製中に保持されているように精製中に保存される。５０％組織培養感染量（ＴＣＩＤ_５０）は、感染性ウイルス力価の尺度である。このエンドポイント希釈アッセイは、感染した宿主の５０％を死滅させるのに、または接種された組織培養細胞の５０％において細胞変性効果を生じるのに必要とされるウイルスの量を定量化する。ＴＣＩＤ５０を計算するために以下の２つの方法が一般的に用いられる：Ｓｐｅａｒｍａｎ−Ｋａｒｂｅｒ方法およびＲｅｅｄ−Ｍｕｅｎｃｈ方法。ウイルス活性を決定するための代替方法は、当業者に知られている。

本明細書で用いられる場合、用語「ウイルスワクチン、特にエンベロープウイルスワクチン」は、レシピエント、例えば、ヒトまたは動物レシピエントにおいて、免疫応答を誘導するのに、または防御免疫を誘発するのに用いることができる作用物質を指す。有効であるためには、ウイルスワクチンは、一部の個体が堅牢なもしくは防御的な免疫応答を、または場合によってはいかなる免疫応答も、開始することができないとしても、免疫された集団の一部分において免疫を誘発することができる。このような免疫応答を開始できないことは、レシピエントの遺伝的背景から生じ得、または免疫不全状態（後天性か先天性のいずれか）もしくは免疫抑制（例えば、化学療法での処置または免疫抑制薬の使用による）のためであり得る。ウイルスワクチン効力は、動物モデルにおいて確立され得る。

本明細書で用いられる場合、用語「ワクチン接種」は、レシピエント、例えば、ヒトまたは動物レシピエントにおいて、弱毒化感染性ウイルスでの粘膜もしくは経皮曝露により、または前記ウイルスの不活性型の注射により、ウイルス抗原に対する特異的な免疫が誘導されることを意味する。ワクチンのレシピエントの体への投与後、エピトープが発現し、免疫系に提示され、これらのエピトープに対する特異的な免疫応答が誘導され得る。したがって、レシピエントは、エピトープを含有する分子に対して免疫される。

本明細書で用いられる場合、用語「細胞培養」は、細胞が、一般的には細胞の天然の環境の外側で、管理条件下で成長する過程を指す。実際には、用語「細胞培養」は、多細胞生物体に由来した細胞、例えば、ヒトまたは動物の細胞の培養を指す。ウイルス細胞培養において、細胞は、ウイルスの宿主である。ウイルス細胞培養後、ウイルス、特にエンベロープウイルスを濃縮された量で含む細胞懸濁液が達成される。ウイルスは、細胞の内側および／または細胞の外側（すなわち、細胞を取り囲む培地中）であり得る。

本明細書で用いられる場合、用語「初代細胞培養物」は、切除された正常なヒトまたは動物組織から直接的に引き出され、かつ外植片培養として培養されたか、または酵素消化により単細胞懸濁液への解離後に培養されたかのいずれかである細胞培養物を指す。そのような培養物は、最初、不均一であるが、後には、線維芽細胞によって支配されるようになる。初代培養物の調製は大きな労働力を要し、初代培養物は、限られた期間のみ、インビトロで維持することができる。限られた寿命の間、初代細胞は、通常、インビボでの細胞の分化型特性の多くを保持する。

本明細書で用いられる場合、用語「連続細胞培養物」（または「不死化細胞培養物」）は、初代培養物の確立以後、培養で増殖し続けている細胞を記載し、この細胞は、老化の自然の限界を超えて成長および生存することができる。そのような生存している細胞は、不死とみなされる。換言すれば、本明細書で用いられる場合、用語「連続細胞培養物」は、長期間、培養で連続的に増殖することができる単一の細胞型を含む培養物を指す。この培養物は、不定の寿命を有する。連続または不死化細胞株は、例えば、癌遺伝子の誘導によりまたは腫瘍抑制遺伝子の喪失により、作製することができる。ウイルスは、連続または不死化細胞培養物において増殖し得る。

本明細書で用いられる場合、用語「汚染物質」は、ウイルス、特にエンベロープウイルスが得られる、（非ウイルスの）細胞内物質、例えば、細胞、細胞片、細胞レムナント、細胞タンパク質、細胞脂質、ならびに／またはＤＮＡ分子および／もしくはＲＮＡ分子などの細胞核酸を包含する。汚染物質には、（非ウイルスの）細胞外物質、例えば、（細胞培養およびウイルス産生に用いられる）培地添加物がさらに挙げられる。非ウイルスの細胞内物質および非ウイルスの細胞外物質はまた、ウイルス非関連材料と名づけられ得る。汚染物質にはまた、（望まれる（無傷の）ウイルスを除く）ウイルス物質、例えば、不完全なウイルス粒子および外来性ウイルスが挙げられる。加えて、汚染物質には、分離プロセスおよび／または精製プロセスから、またはこのプロセス中に生じる不純物などのプロセス関連不純物が挙げられる。好ましくは、汚染物質には、（非ウイルスの）細胞内物質、（非ウイルスの）細胞外物質、および／または（望まれる（無傷の）ウイルスを除く）ウイルス物質が挙げられる。より好ましくは、汚染物質には、（非ウイルスの）細胞内物質および／または（非ウイルスの）細胞外物質が挙げられる。

この点において、それぞれのＭＭＣの動的結合能力に関して、本発明の方法を用いて、１０Ｌのクロマトグラフィーカラムから、捕獲サイクルあたり１×１０^８個のＭＶＡウイルス粒子の最小限５０，０００回の用量を供給することができることは注目されるべきである。より好ましくは、本発明の方法を用いて、１０Ｌのクロマトグラフィーカラムから、捕獲サイクルあたり１×１０^８個のウイルス粒子の４００，０００回より多い用量を供給することができる。本明細書において精製されているようなエンベロープウイルスを含む調製物は、好ましくは、≦４０ｎｇの核酸／用量、例えば、０ｎｇ、≦０．１ｎｇ、０．２ｎｇ、０．３ｎｇ、０．４ｎｇ、０．５ｎｇ、０．６ｎｇ、０．７ｎｇ、０．８ｎｇ、０．９ｎｇ、１ｎｇ、２ｎｇ、３ｎｇ、４ｎｇ、５ｎｇ、６ｎｇ、７ｎｇ、８ｎｇ、９ｎｇ、１０ｎｇ、１１ｎｇ、１２ｎｇ、１３ｎｇ、１４ｎｇ、１５ｎｇ、１６ｎｇ、１７ｎｇ、１８ｎｇ、１９ｎｇ、２０ｎｇ、２１ｎｇ、２２ｎｇ、２３ｎｇ、２４ｎｇ、２５ｎｇ、２６ｎｇ、２７ｎｇ、２８ｎｇ、２９ｎｇ、３０ｎｇ、３１ｎｇ、３２ｎｇ、３３ｎｇ、３４ｎｇ、３５ｎｇ、３６ｎｇ、３７ｎｇ、３８ｎｇ、３９ｎｇ、または４０ｎｇの核酸／用量を含む。核酸は、ＤＮＡおよび／またはＲＮＡ分子を包含する。

本明細書で用いられる場合、用語「エンベロープウイルスを含む調製物」は、精製されていることが望まれる、エンベロープウイルスを含有する任意の組成物を指す。特に、本発明の方法において提供される調製物は、１または複数の汚染物質、例えば、非限定的に、細胞タンパク質、細胞核酸、細胞脂質、様々な細胞培地成分および添加物、不完全なウイルス粒子、ならびに／または外来性ウイルスから精製されることが望まれる、エンベロープウイルスを含む調製物を指す。本発明の方法において提供されるエンベロープウイルスを含む調製物は、不純な未精製調製物、または部分的に精製された調製物であり得る。不純な未精製調製物は、エンベロープウイルスを含む細胞懸濁液（エンベロープウイルスは細胞の内側および／または外側にあり得る）またはエンベロープウイルスを含む細胞可溶化液であり得る。部分的に精製された調製物は、（例えば、濾過、遠心分離、および分画ステップの少なくとも１つにより、またはそれらの任意の組合せにより）さらに処理されている、未精製調製物、例えば、エンベロープウイルスを含む細胞懸濁液またはエンベロープウイルスを含む細胞可溶化液から生じる。あるいは、エンベロープウイルスを含む調製物は、製造プロセスにおける以下のステップのいずれかからであり得る：ウイルス成長後（例えば、エンベロープウイルスを含む細胞懸濁液）、細胞溶解後（例えば、エンベロープウイルスを含む細胞可溶化液）、または１または複数のウイルス精製前／処理前ステップ、例えば、濾過、遠心分離、および／もしくは分画後（例えば、エンベロープウイルスを含む清澄化ウイルス調製物）。好ましくは、本発明の方法において提供されるエンベロープウイルスを含む調製物は、エンベロープウイルスを含む細胞懸濁液、エンベロープウイルスを含む細胞可溶化液、またはエンベロープウイルスを含む清澄化ウイルス調製物である。本発明の方法において提供されるエンベロープウイルスを含む調製物が、水性調製物、特に水性懸濁液であることは特に好ましい。

本明細書で用いられる場合、用語「異種性核酸配列」は、天然では、通常、ウイルス、特にエンベロープウイルスに密接に関連しては見出されない核酸配列を指す。異種性核酸配列を含むウイルスはまた、組換えウイルスと名づけられる場合もある。異種性核酸配列は、好ましくは、（ｉ）抗原、特に抗原のエピトープ、（ｉｉ）診断用化合物、および（ｉｉｉ）治療用化合物をコードする配列から選択される。

本明細書で用いられる場合、用語「混合モードクロマトグラフィー担体」は、混合物中の汚染物質、例えば、タンパク質、ＤＮＡおよび／またはＲＮＡ分子などの核酸、ならびにウイルスなどの２つ以上の成分の分離を達成するための、２つ以上の化学的機構の組合せを用いる固相クロマトグラフィー担体を指す。例として、陽イオン交換（すなわち、担体が陰イオン性である）、陰イオン交換（すなわち、担体が陽イオン性である）、疎水性相互作用、親水性相互作用、水素結合、ｐｉ−ｐｉ結合、および金属親和性の組合せを利用するクロマトグラフィー担体が挙げられるが、それらに限定されない。固相は、多孔性粒子、非多孔性粒子、膜、またはモノリスであり得る。本発明の方法において、混合モードクロマトグラフィー担体は、疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体、例えば、疎水性陽イオン交換クロマトグラフィー担体または疎水性陰イオン交換クロマトグラフィー担体、好ましくは疎水性陽イオン交換クロマトグラフィー担体である。

本明細書で用いられる場合、用語「疎水性相互作用クロマトグラフィー（ＨＩＣ）担体」は、定常相との疎水性相互作用に基づいた成分の分離を指す。したがって、ＨＩＣにおける溶出順序は、成分が成分の相対疎水性に基づいて順位付けされることを可能にする。ＨＩＣは、非変性条件を利用し、有機溶媒の使用も高温の使用も必要とせず、分離は、ウイルス精製プロセスに用いられる場合、ウイルス構造の保存を可能にする生理的ｐＨで行われる。

本明細書で用いられる場合、用語「イオン交換クロマトグラフィー担体」は、イオン化可能な分子の、総電荷に基づいた分離を可能にする、クロマトグラフィー担体を指す。イオン交換クロマトグラフィー担体は、「陰イオン交換クロマトグラフィー担体」または「陽イオン交換クロマトグラフィー担体」であり得る。陰イオン交換クロマトグラフィー担体は、成分の分離を達成するために正味正の表面電荷を有する分子への親和性を有する固相クロマトグラフィー担体である。陽イオン交換クロマトグラフィー担体は、成分の分離を達成するために正味負の表面電荷を有する分子への親和性を有する固相クロマトグラフィー担体である。固相は、多孔性粒子、非多孔性粒子、膜、またはモノリスであり得る。

本明細書で用いられる場合、用語「リガンド」は、エンベロープウイルスの、前記ウイルスを結合することによる精製を可能にする、混合モードクロマトグラフィー担体、特に疎水性相互作用クロマトグラフィー（ＨＩＣ）担体に付着した特異的な結合構造を指す。

本明細書で用いられる場合、用語「洗浄バッファー」は、エンベロープウイルスが結合している混合モードクロマトグラフィー担体、特に疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体から汚染物質を除去するために用いられる溶液を指す。洗浄バッファーにより、担体に結合したエンベロープウイルスが精製される。

本明細書で用いられる場合、用語「溶出バッファー」は、エンベロープウイルスが結合している混合モードクロマトグラフィー担体、特に疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体からエンベロープウイルスを溶出しまたは解離させるために用いられる溶液を指す。換言すれば、溶出バッファーは、混合モードクロマトグラフィー担体からエンベロープウイルスを救出するために用いられる。

本明細書で用いられる場合、用語「ウイルス清澄化」は、収集された感染細胞培養物質を固体成分（細胞および細胞片）から分離することを可能にする任意の技術を指す。これは、例えば、濾過、遠心分離、沈降、凝結、または当業者に知られた他の技術により、達成され得る。

本発明の実施形態
上記で述べられているように、本特許出願の発明者らは、驚くべきことに、エンベロープウイルスの精製のための疎水性イオン交換混合モードクロマトグラフィーを初めて確立した。これは、十分にスケーラブルでかつ再現性のあるプロセスである。前記プロセスは、高収率および高純度でのエンベロープウイルスの精製を可能にする。加えて、本特許出願の発明者らは、溶出バッファーにおけるアルギニンの存在が、ウイルス収率および純度を増加させるのをさらに可能にすることを発見した。当技術分野において、アルギニンは、エンベロープウイルスを不活性化するために用いられるため、エンベロープウイルスの高収率の回収は、極めて驚くべきことである（欧州特許第２３５０２７１号明細書）。本発明のウイルス精製のための方法は、エンベロープウイルスの精製における実際の欠点（例えば、純度、速度、回収率、普遍性、堅牢性、および／またはスケーラビリティに関する）を克服するのに適している、結合溶出モードでの混合モードクロマトグラフィーを用いる。前記方法は、いかなるエンベロープウイルスでもウイルス調製物から精製するのに適している。得られたウイルス調製物は、規制機関の厳格なガイドラインを満たす。

したがって、第１の態様において、本発明は、
（ｉ）調製物に含まれるエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させるステップと、
（ｉｉ）前記混合モードクロマトグラフィー担体から前記エンベロープウイルスを溶出するステップと、を含むエンベロープウイルスの精製方法であって、
前記混合モードクロマトグラフィー担体が疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、方法に関する。

ステップ（ｉ）におけるエンベロープウイルスを含む調製物は、好ましくは、１×１０^７個から１×１０^１１個の間の感染性ウイルス粒子（ＩＶＰ）／ｍｌを含む。

エンベロープウイルスは、細胞成分および／または細胞培地関連成分と非特異的に会合する。この相互作用のためのエンベロープウイルスのアクセス可能な表面は、主に、脂質膜、およびその脂質膜に埋め込まれた表面タンパク質である。エンベロープウイルスについて、精製は特に困難である：ウイルスエンベロープは、培地自体、宿主細胞、および／または他のウイルス粒子に由来した様々な結合パートナーに対して、様々な静電気的、ファンデルワールス、または疎水性相互作用表面をそれぞれまたは組み合わせて提示する、糖タンパク質におけるスルホ基からスフィンゴ脂質における脂肪族アルコールまで様々である異なる分子の非常に複雑かつ可動性のコレクションを含有し得る。本発明の方法は、エンベロープウイルスを含む調製物からの前記成分の低減、特に除去、およびそれにしたがって、高純度を有するエンベロープウイルスの産生を可能にする。

エンベロープウイルスを含む調製物は、精製されることが望まれる、エンベロープウイルスを含有する任意の組成物であり得る。調製物は、不純な未精製調製物（例えば、ウイルス培養または細胞溶解後の細胞懸濁液）、または部分的に精製された、もしくはプレクリーニングされた調製物（例えば、清澄化ウイルス調製物）であり得る。部分的に精製された調製物は、（例えば、濾過、遠心分離、凝結、沈殿、沈降、もしくは代替の分画方法の少なくとも１つにより、またはそれらの任意の組合せにより）さらに処理されている、未精製調製物から生じる。特に、ステップ（ｉ）における調製物は、１または複数の汚染物質から精製されることが望まれる、エンベロープウイルスを含む組成物を指す。１または複数の汚染物質は、好ましくは、ウイルス物質（望まれる（無傷の）ウイルスを除く）、非ウイルスの細胞内物質、および／または非ウイルスの細胞外物質からなる群から選択され、例えば、非ウイルスの細胞内物質、または非ウイルスの細胞外物質、または非ウイルスの細胞内物質と非ウイルスの細胞外物質、または非ウイルスの細胞内物質と非ウイルスの細胞外物質とウイルス物質（望まれる（無傷の）ウイルスを除く）である。さらにより好ましくは、ウイルス物質は、不完全なウイルス粒子および外来性ウイルスからなる群から選択され、非ウイルスの細胞内物質は、細胞、細胞片、細胞レムナント、細胞タンパク質、細胞脂質ならびにＲＮＡおよび／もしくはＤＮＡ分子などの細胞核酸からなる群から選択され、ならびに／または非ウイルスの細胞外物質は、（細胞培養およびウイルス産生に用いられる）培地添加物である。ＭＶＡウイルス感染細胞の典型的な粗可溶化液は、約２．５×１０^５ｎｇ／ｍｌのＤＮＡおよび約３．０×１０^９ｐｆｕ／ｍｌのＭＶＡウイルスを含有する。ワクチン用量として１×１０^８ｐｆｕを用いると、通常、ＷＨＯガイドラインにより許容されるＤＮＡの量の８００倍より多く超過した、用量あたり８３００ｎｇのＤＮＡを取得する。任意の連続細胞株からのワクチンが、非常に破壊的な感染性疾患に対する世界的規模のワクチン接種に必要とされるラージスケールで製造されかつ使用され得る前に、このＤＮＡ汚染物質および他の汚染物質は解決されなければならない非常に大きな課題である。本発明の方法で精製されたエンベロープウイルスを含む調製物は、好ましくは、≦４０ｎｇの核酸／用量、例えば、０ｎｇ、≦０．１ｎｇ、０．２ｎｇ、０．３ｎｇ、０．４ｎｇ、０．５ｎｇ、０．６ｎｇ、０．７ｎｇ、０．８ｎｇ、０．９ｎｇ、１ｎｇ、２ｎｇ、３ｎｇ、４ｎｇ、５ｎｇ、６ｎｇ、７ｎｇ、８ｎｇ、９ｎｇ、１０ｎｇ、１１ｎｇ、１２ｎｇ、１３ｎｇ、１４ｎｇ、１５ｎｇ、１６ｎｇ、１７ｎｇ、１８ｎｇ、１９ｎｇ、２０ｎｇ、２１ｎｇ、２２ｎｇ、２３ｎｇ、２４ｎｇ、２５ｎｇ、２６ｎｇ、２７ｎｇ、２８ｎｇ、２９ｎｇ、３０ｎｇ、３１ｎｇ、３２ｎｇ、３３ｎｇ、３４ｎｇ、３５ｎｇ、３６ｎｇ、３７ｎｇ、３８ｎｇ、３９ｎｇ、または４０ｎｇの核酸／用量を含む。核酸は、ＤＮＡおよび／またはＲＮＡ分子を包含する。

一実施形態において、ステップ（ｉ）におけるエンベロープウイルスを含む調製物は、エンベロープウイルスを含む細胞懸濁液、エンベロープウイルスを含む細胞可溶化液、およびエンベロープウイルスを含む清澄化ウイルス調製物からなる群から選択される。一実施形態において、細胞懸濁液、細胞可溶化液、または清澄化ウイルス調製物はヌクレアーゼ処理される。当業者は、エンベロープウイルスを含む細胞懸濁液を作製する方法を知っている。通常、細胞に、エンベロープウイルスを感染させ、またはトランスフェクションし（宿主細胞）、規定された期間にわたって培養する（細胞培養物）。通常、感染細胞懸濁液は、感染サイクルが終了した後に収集される。例えば、ＭＶＡについての感染性ウイルス力価は、感染から４８時間後、ピークになり、感染から７２時間後に収集することができ、その後、本発明の方法でさらに精製することができる。好ましくは、感染していないまたはトランスフェクションされていない状態での前記ウイルス産生細胞は、ＡＧＥ１．ＣＲ、ＡＧＥ１．ＣＲ．ｐＩＸ、ＡＧＥ１．ＨＮ、ＡＧＥ１．Ｒ０６Ｅ、ＡＧＥ１．Ｒ０５Ｔ、ＭＤＣＫ（Ｍａｄｉｎ−Ｄａｒｂｙイヌ腎臓；ＡＴＣＣ ＣＣＬ ３４）、ＢＨＫ（ベビーハムスター腎臓）２１（ＡＴＣＣ ＣＣＬ−１０）、ＢＨＫ ＴＫ（ＥＣＡＣＣ Ｎｏ．８５０１１４２３）、ＨＥＫ（ヒト胚腎臓）２９３（ＡＴＣＣ ＣＲＬ １５７３）、またはＤＦ−１（Ｄｏｕｇ Ｆｏｓｔｅｒにより開発されたニワトリ線維芽細胞株）などの連続細胞株に由来する。細胞株ＡＧＥ１．ＣＲ．ｐＩＸ（１７ａ１１ｂ）は、ＰｒｏＢｉｏＧｅｎ、Ｇｏｅｔｈｅｓｔｒ．５４、１３０８６ Ｂｅｒｌｉｎ、Ｇｅｒｍａｎｙにより、ＤＳＭＺ−Ｄｅｕｔｓｃｈｅ Ｓａｍｍｌｕｎｇ ｖｏｎ Ｍｉｋｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｅｎ ｕｎｄ Ｚｅｌｌｋｕｌｔｕｒｅｎ ＧｍｂＨ、Ｍａｓｃｈｅｒｏｄｅｒ Ｗｅｇ １ｂ、３８１２４ Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇ、Ｇｅｒｍａｎｙへ２００５年１１月２４日にアクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４９として寄託された。細胞株ＡＧＥ１．ＨＮ（ＮＣ５Ｔ１１＃３４）は、ＰｒｏＢｉｏＧｅｎ、Ｇｏｅｔｈｅｓｔｒ．５４、１３０８６ Ｂｅｒｌｉｎ、Ｇｅｒｍａｎｙにより、ＤＳＭＺ−Ｄｅｕｔｓｃｈｅ Ｓａｍｍｌｕｎｇ ｖｏｎ Ｍｉｋｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｅｎ ｕｎｄ Ｚｅｌｌｋｕｌｔｕｒｅｎ ＧｍｂＨ、Ｍａｓｃｈｅｒｏｄｅｒ Ｗｅｇ １ｂ、３８１２４ Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇ、Ｇｅｒｍａｎｙへ２００５年１１月４日にアクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４４として寄託された。細胞株ＡＧＥ１．Ｒ０６Ｅは、ＰｒｏＢｉｏＧｅｎ、Ｇｏｅｔｈｅｓｔｒ．５４、１３０８６ Ｂｅｒｌｉｎ、Ｇｅｒｍａｎｙにより、ＤＳＭＺ−Ｄｅｕｔｓｃｈｅ Ｓａｍｍｌｕｎｇ ｖｏｎ Ｍｉｋｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｅｎ ｕｎｄ Ｚｅｌｌｋｕｌｔｕｒｅｎ ＧｍｂＨ、Ｉｎｈｏｆｆｅｎｓｔｒ．７Ｂ、３８１２４ Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇ、Ｇｅｒｍａｎｙへ２００８年４月３日にアクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２９０２として寄託された。さらに、当業者は、（細胞培養物における）エンベロープウイルス産生細胞から、エンベロープウイルスを含む細胞可溶化液を作製する方法を知っている。例えば、細胞可溶化液は、機械的方法、例えば、超音波、温度変化、狭いバルブを通しての混合もしくは圧力ホモジナイゼーションにより、または化学的方法により、例えば、浸透圧ショック、もしくはＴｗｅｅｎ−２０もしくはＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００などの界面活性剤を用いて、作製される。細胞可溶化液は、好ましくは、細胞溶解の前に、エンベロープウイルス産生細胞へ、１または複数のカオトロピック塩および／または極性もしくは荷電高分子を加えて、前記エンベロープウイルス産生細胞を溶解することにより作製される。カオトロピック塩および／または極性もしくは荷電高分子は、非ウイルスの物質、好ましくは細胞内もしくは細胞外物質の１もしくは複数と、ならびに／または前記ウイルスと結合する。カオトロピック塩および／または極性もしくは荷電高分子は、下流処理からの宿主細胞因子または細片とのビリオンの会合を媒介する結合部位を保護する、マスキング化合物である。好ましくは、カオトロピック塩は、任意でデキストラン硫酸および／またはポリリン酸および／またはポリビニルピロリドンと組み合わせた、ＮａＢｒおよび／またはＫＣｌおよび／または尿素である。好ましくは、カオトロピック塩および／または極性もしくは荷電高分子の濃度は、ウイルスが実質的に無傷および／または感染性のままであるような濃度である。実質的に無傷とは、血清、好ましくはヒト血清におけるウイルスの半減期が、カオトロピック塩および／または極性もしくは荷電高分子で処理されていないウイルスの半減期の少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、または少なくとも９５％であることを意味する。より好ましくは、ＮａＢｒの濃度は、５ｍＭから７５０ｍＭの間、２５ｍＭから７００ｍＭの間、５０ｍＭから６５０ｍＭの間、７５ｍＭから６００ｍＭの間、１００ｍＭから５５０ｍＭの間、１２５ｍＭから５００ｍＭの間、１５０ｍＭから４５０ｍＭの間、１７５ｍＭから４００ｍＭの間、または好ましくは、２００ｍＭから３５０ｍＭの間である。好ましくは、ｐＨは、７．４〜８．０、６．０〜６．５、６．５〜６．８、６．８〜７．２、より好ましくは７．２〜７．４の範囲内である。好ましくは、ＫＣｌの濃度は、１ｍＭから７５０ｍＭの間、１５ｍＭから７００ｍＭの間、３０ｍＭから６５０ｍＭの間、４５ｍＭから６００ｍＭの間、６０ｍＭから５５０ｍＭの間、７５ｍＭから５００ｍＭの間、９０ｍＭから４５０ｍＭの間、１０５ｍＭから４００ｍＭの間、または好ましくは１２０ｍＭから３５０ｍＭの間である。好ましくは、尿素の濃度は、０．２ｍＭから２Ｍの間、５ｍＭから１Ｍの間、または１００ｍＭから５００ｍＭの間である。好ましくは、デキストラン硫酸の濃度は、５ｍｇ／ｌから１０００ｍｇ／ｌの間、１０ｍｇ／ｌから８００ｍｇ／ｌの間、または好ましくは１５ｍｇ／ｌから６００ｍｇ／ｌの間である。好ましくは、ポリリン酸の濃度は、０．１ｍＭから１００ｍＭの間、０．２ｍＭから８０ｍＭの間、または好ましくは０．３ｍＭから６０ｍＭの間である。好ましくは、ポリビニルピロリドンの濃度は、０．２％から１０％の間、１％から８％の間、２％から６％の間、３％から４％の間である。好ましくは、Ｔｗｅｅｎ−２０および／またはオクチルフェノキシポリトキシエタノール（ｏｃｔｙｌｐｈｅｎｏｘｙｐｏｌｙｔｈｏｘｙｅｔｈａｎｏｌ）（ＩＧＥＰＡＬ）の濃度は、それぞれ、０．０５％から０．２５％の間、０．１％から０．２０％の間、または好ましくは０．１３％から０．１７％の間である。好ましくは、ｐＨは、７．４〜８．０、６．０〜６．５、６．５〜６．８、６．８〜７．２、より好ましくは７．２〜７．４の範囲内である。さらに、当業者には、エンベロープウイルスを含む清澄化ウイルス調製物を作製する方法が知られている。特に、エンベロープウイルスは、細胞懸濁液に含まれる細胞および／もしくは周囲の細胞培地から、または細胞可溶化液における溶解されていない細胞、細胞片、および／もしくは周囲の培地から、例えば、以下の精製前／処理前のステップ：濾過、遠心分離、凝結／沈殿、沈降、もしくは代替の分画方法、またはそれらの任意の組合せの１または複数により、分離することができる。ウイルスが、細胞から細胞培地へ放出されている場合には、例えば、細胞除去だけが必要とされる。細胞が、ウイルスを放出するために最初に溶解されなければならない場合には、ウイルス清澄化は、細胞可溶化液から始まる。この場合、エンベロープウイルスは、溶解されていない細胞および細胞片から、例えば、以下の精製前ステップ：濾過、遠心分離、凝結／沈殿、沈降、もしくは代替の分画方法、またはそれらの任意の組合せの１または複数により、分離される。

一つの別の実施形態において、ステップ（ｉ）におけるエンベロープウイルスを含む調製物は、エンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させる前に、以下の（処理前／精製前）ステップ：
（ａ）細胞溶解と、
（ｂ）ウイルス清澄化と、
（ｃ）ヌクレアーゼ処理と、
からなる群から選択される１または複数のステップに供せられる。
好ましくは、ステップ（ｉ）におけるエンベロープウイルスを含む調製物は、エンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させる前に、（ｂ）ウイルス清澄化および任意で、（ｃ）ヌクレアーゼ処理に供せられ、または（ａ）細胞溶解、（ｂ）ウイルス清澄化、および任意で、（ｃ）ヌクレアーゼ処理に供せられる。例えば、エンベロープウイルスを含む調製物が、エンベロープウイルスを含む細胞懸濁液であり、かつウイルスが細胞から周囲の細胞培地へ放出されている場合には、ウイルス清澄化は、直接、行うことができる。エンベロープウイルスを含む調製物が、エンベロープウイルスを含む細胞懸濁液であり、かつウイルスが細胞から周囲の細胞培地へ放出されていない場合には、細胞は、まず、溶解されなければならない。その後、ウイルス清澄化を行うことができる。ウイルス清澄化ステップは、好ましくは、以下からなる群から選択される：
クロマトグラフィー、より好ましくは、膜吸着装置、
濾過、より好ましくは、デッドエンド濾過、深層濾過、膜濾過、クロスフロー濾過、ダイアフィルトレーション（ＤＦ）、限外濾過（ＵＦ）、精密濾過（ＭＦ）、または接線流深層濾過（ＴＦＤＦ）、
遠心分離、より好ましくは、連続流遠心分離、不連続流遠心分離、または密度勾配遠心分離、
凝結／沈殿、より好ましくは、金属塩、マクロ多孔性材料または珪質物質、例えば、珪藻土、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリエチレンイミン（ＰＥＩ）などの陽イオン性ポリマー、キトサン、またはポリジアリルジメチルアンモニウムクロリド（ｐＤＡＤＭＡＣ）による凝結／沈殿、および
沈降、より好ましくは、重力による沈降。

上記で述べられているように、本発明の方法は、例えば、純度、速度、回収率、堅牢性、および／または選択性に関する、エンベロープウイルスの精製における実際の欠点を克服する。ヌクレアーゼの添加は、ウイルス調製物において、核酸、例えば、ＲＮＡおよび／またはＤＮＡ分子の量を低減するのをさらに助け得、したがって、純度をさらに高めることができる。

したがって、一実施形態において、エンベロープウイルスを含む調製物は、ステップ（ｉ）の前に、ヌクレアーゼで処理される。

調製物に含まれるエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させる前に、調製物をさらに、沈殿させ、（例えば、密度勾配における遠心分離または濾過により）分離し、および／または別のクロマトグラフィーカラムへ負荷し得る。

一実施形態において、混合モードクロマトグラフィー担体を、特にエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させる前に、平衡バッファーで平衡化させる。このようにして、担体内の化学的環境は平衡化されている。混合モード担体は、適切なｐＨ、伝導率、および／または塩の濃度を確立するように平衡化され得る。担体の平衡化は、例えば、適切な試薬を含有する平衡バッファーをカラムに流すことにより、達成される。緩衝化合物はＴｒｉｓであり得る。

この操作は、エンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させる前に、エンベロープウイルスを含む調製物を再緩衝化、濃縮、または希釈する場合、有用であり得る。例えば、エンベロープウイルスを含む調製物を、調製物をクロマトグラフィー担体へアプライする前に、クロマトグラフィー担体平衡バッファーと適合性の条件へ平衡化させることができる。調製物を、ｐＨおよび／または塩の濃度を調整することにより平衡化させ得る。

あるいは、ステップ（ｉ）における混合モードクロマトグラフィー担体は、平衡化混合モードクロマトグラフィー担体であり、ステップ（ｉ）におけるエンベロープウイルスを含む調製物を、混合モードクロマトグラフィー担体と適合性の条件へ平衡化させる。

クロマトグラフィー担体および／またはエンベロープウイルスを含む調製物の平衡化の後、調製物に含まれるエンベロープウイルスは、クロマトグラフィー担体と結合している。調製物に含まれるエンベロープウイルスは、担体と線流速で結合することができる。

エンベロープウイルスの混合モードクロマトグラフィー担体との結合後、結合したウイルスは、任意で、洗浄される。したがって、一実施形態において、方法は、（ステップ（ｉｉ）後）以下のステップ：
（ｉｉｉ）混合モードクロマトグラフィー担体を洗浄バッファーで洗浄するステップであって、前記エンベロープウイルスが前記混合モードクロマトグラフィー担体と結合したままである、ステップをさらに含む。
洗浄ステップは、１または複数の汚染物質、例えば、宿主細胞タンパク質、ＤＮＡおよび／もしくはＲＮＡ分子などの宿主細胞核酸、不完全なウイルス粒子、ならびに／または外来性ウイルスの除去および／または置換をもたらす。１回より多い洗浄ステップ、例えば、２回、３回、４回、またはそれ以上の洗浄ステップを行うことができる。

任意の洗浄ステップ後、エンベロープウイルスは、混合モードクロマトグラフィー担体から溶出される。一実施形態において、エンベロープウイルスは、混合モードクロマトグラフィー担体から溶出バッファーで溶出される。エンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体から溶出することにより、エンベロープウイルスは精製される。

平衡バッファー、洗浄バッファー、および溶出バッファーは、好ましくは、塩を含み、および／または規定のｐＨを有する。塩は、好ましくは、アルカリ塩またはアルカリ土類塩である。より好ましくは、アルカリ塩は、ＮａＣｌまたはＫＣｌである。さらにより好ましくは、アルカリ塩はＮａＣｌである。より好ましくは、アルカリ土類塩はＭｇＣｌ_２である。

一つの好ましい実施形態において、ステップ（ｉｉ）における溶出は、
平衡バッファーおよび洗浄バッファーよりも高い塩濃度を有する溶出バッファー、
平衡バッファーおよび洗浄バッファーよりも高いｐＨを有する溶出バッファー、または、
平衡バッファーおよび洗浄バッファーよりも高い塩濃度および高いｐＨを有する溶出バッファー、のいずれか、を用いて達成される。

一つの別の好ましい実施形態において、平衡バッファー、洗浄バッファー、および溶出バッファーは、塩を含み、および／または規定のｐＨを有し、ならびにステップ（ｉｉ）における溶出は、
平衡バッファーおよび洗浄バッファーの塩濃度と比較して、（混合モードクロマトグラフィー担体と結合したエンベロープウイルスと接触する）溶出バッファーの塩濃度を上昇させること、
平衡バッファーおよび洗浄バッファーのｐＨと比較して、（混合モードクロマトグラフィー担体と結合したエンベロープウイルスと接触する）溶出バッファーのｐＨを上昇させること、または
平衡バッファーおよび洗浄バッファーの塩濃度およびｐＨと比較して、（混合モードクロマトグラフィー担体と結合したエンベロープウイルスと接触する）溶出バッファーの塩濃度およびｐＨを上昇させること、のいずれか、を含む。

溶出されたエンベロープウイルスは、ステップ（ｉ）における調製物に含まれるエンベロープウイルスと比較して高度に濃縮されている。

好ましくは、平衡バッファーは、≦０．８Ｍ ＮａＣｌ、例えば、０Ｍ、≦０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、もしくは０．８Ｍ ＮａＣｌを含み、および／または約７．０から約７．５の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、もしくは７．５のｐＨを有する。より好ましくは、平衡バッファーは、０．０１Ｍから０．８Ｍの間のＮａＣｌ、０．１Ｍから０．８Ｍの間のＮａＣｌ、または０．３Ｍから０．６Ｍの間のＮａＣｌを含む。さらにより好ましくは、平衡バッファーは、０．３Ｍから０．６Ｍの間のＮａＣｌを含む。

好ましくは、洗浄バッファーは、≦０．８Ｍ ＮａＣｌ、例えば、０Ｍ、≦０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、もしくは０．８Ｍ ＮａＣｌを含み、および／または約７．０から約７．５の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、もしくは７．５のｐＨを有する。より好ましくは、洗浄バッファーは、０．０１Ｍから０．８Ｍの間のＮａＣｌ、０．１Ｍから０．８Ｍの間のＮａＣｌ、または０．３Ｍから０．６Ｍの間のＮａＣｌを含む。さらにより好ましくは、洗浄バッファーは、０．３Ｍから０．６Ｍの間のＮａＣｌを含む。

好ましくは、溶出バッファーは、０．０１Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、もしくは３．０Ｍ ＮａＣｌを含み、および／または約７．０から約８．０の間、例えば、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、もしくは８．０のｐＨを有する。より好ましくは、溶出バッファーは、０．２Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌを含む。さらにより好ましくは、溶出バッファーは、０．２Ｍから２．０Ｍの間のＮａＣｌ、または０．５Ｍから２．０Ｍの間のＮａＣｌを含む。

最も好ましくは、平衡バッファーおよび洗浄バッファーは、≦０．５Ｍ ＮａＣｌ、例えば、０．５Ｍ ＮａＣｌを含み、および約７．０から約７．５の間、例えば、７．２のｐＨを有し、ならびに溶出バッファーは、≧０．５Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、例えば、０．５Ｍ ＮａＣｌまたは２．０Ｍ ＮａＣｌを含み、および約７．０から約８．０の間、例えば７．２のｐＨを有する。

本特許出願の発明者らは、驚くべきことに、溶出バッファーにおけるアルギニンの存在が、ウイルス収率および純度をさらに高めることを見出した。当技術分野において、アルギニンは、エンベロープウイルスを不活性化するために用いられるため、エンベロープウイルスの高収率の回収は、極めて驚くべきことである（欧州特許第２３５０２７１号明細書）。したがって、溶出バッファーがアルギニンを含むことは特に好ましい。より好ましくは、溶出バッファーは、０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、または１．０Ｍのアルギニンを含む。さらにより好ましくは、溶出バッファーは、０．０１Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、もしくは３．０Ｍ ＮａＣｌ、および０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、もしくは１．０Ｍアルギニンを含み、ならびに／または７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、もしくは８．０のｐＨを有する。

一つの特に好ましい実施形態において、溶出バッファーは、＞１．０Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、好ましくは２．０Ｍ ＮａＣｌ、例えば、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、または３．０Ｍ ＮａＣｌ、および０．２Ｍから≦０．５Ｍの間のアルギニン、好ましくは０．２５Ｍアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍアルギニンを含む（高塩バッファー）。

一つの別の特に好ましい実施形態において、溶出バッファーは、０．０１Ｍから１．０Ｍの間のＮａＣｌ、好ましくは０．５Ｍ ＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ ＮａＣｌ、および＞０．５Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、好ましくは０．７５Ｍアルギニン、例えば、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、または１．０Ｍアルギニンを含む（低塩バッファー）。

上記の溶出バッファーのｐＨは、好ましくは、７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、または８．０である。

好ましくは、ステップ（ｉ）におけるエンベロープウイルスを含む調製物は、混合モードクロマトグラフィー担体と結合した時、≦０．８Ｍ ＮａＣｌ、例えば、０Ｍ、≦０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、もしくは０．８Ｍ ＮａＣｌを含み、および／または約７．０から約７．５の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、もしくは７．５のｐＨを有する。前記エンベロープウイルスを含む調製物は、好ましくは、１×１０^７個から１×１０^１２個の間の感染性ウイルス粒子（ＩＶＰ）／ｍｌを含む。

混合モードクロマトグラフィー担体、特に疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体は、結合溶出モードで操作される。特に、エンベロープウイルスは、バッファー条件（例えば、（ｉ）塩濃度、（ｉｉ）ｐＨ値、（ｉｉｉ）アルギニン濃度、（ｉｖ）塩濃度およびｐＨ値、（ｖ）塩およびアルギニンの濃度、（ｖｉ）ｐＨ値とアルギニン濃度、または（ｖｉｉ）塩濃度、ｐＨ値、およびアルギニン濃度などの塩および／またはｐＨ値および／またはアルギニン濃度）を変化させることにより溶出される。ステップ（ｉｉ）においてエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体から溶出することにより、混合モード溶出液が形成される。

溶出液は、ウイルス製剤バッファーと直接、混合され得、またはウイルス製剤用にウイルスを調製するために１もしくは複数の処理後／精製後ステップに供され得る。

一実施形態において、溶出液は、以下の（処理後／精製後）ステップからなる群から選択される１または複数のステップにさらに供せられる：
（ａ）濾過、好ましくは、デッドエンド濾過、深層濾過、膜濾過、クロスフロー濾過、ダイアフィルトレーション（ＤＦ）、限外濾過（ＵＦ）、精密濾過（ＭＦ）、または接線流深層濾過（ＴＦＤＦ）、
（ｂ）クロマトグラフィー、好ましくは、サイズ排除クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィー、擬アフィニティクロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、または膜吸着装置、および、
（ｃ）ヌクレアーゼ処理。

一つの好ましい実施形態において、混合モード溶出液は、ヌクレアーゼで処理される。この場合、ヌクレアーゼは、好ましくは、バッファー交換なしに、溶出液に直接加えられる。好ましくは、ヌクレアーゼは、ＳＡＮ Ｈｉｇｈ Ｑｕａｌｉｔｙ（商標）（ＡｒｃｔｉｃＺｙｍｅｓ）などの塩活性ヌクレアーゼである。ヌクレアーゼ処理は、≧１．０Ｍ ＮａＣｌ、例えば、１．０Ｍ、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、または３．０Ｍ ＮａＣｌを含有する溶液／懸濁液において実施され得る。ヌクレアーゼは、ＲＮＡおよび／またはＤＮＡ分子などの細胞核酸を消化するために用いられ、したがって、エンベロープウイルス精製に寄与する。ヌクレアーゼは、≦１．０Ｍ ＮａＣｌの記載された範囲外で、すなわち、＞１．０Ｍ ＮａＣｌで有効であることは、本発明者らにとって驚くべきことであった。推奨される塩濃度は、通常、０．５Ｍ ＮａＣｌであり、１．０Ｍ ＮａＣｌにおいていくらかの活性が保存される。ヌクレアーゼは、驚くべきことに、≦１．０Ｍ ＮａＣｌおよび＞０．５Ｍアルギニンを含有する溶出液／溶液／バッファーにおいても有効であった。

したがって、一つの好ましい実施形態において、ヌクレアーゼは、＞１．０Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、好ましくは２．０Ｍ ＮａＣｌ、例えば、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、または３．０Ｍ ＮａＣｌ、および０．２Ｍから≦０．５Ｍの間のアルギニン、好ましくは０．２５Ｍアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍアルギニンを含む溶出液に加えられる。

一つの別の好ましい実施形態において、ヌクレアーゼは、０．０１Ｍから１．０Ｍの間のＮａＣｌ、好ましくは０．５Ｍ ＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ ＮａＣｌ、および＞０．５Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、好ましくは０．７５Ｍアルギニン、例えば、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、または１．０Ｍアルギニン（低塩バッファー）を含む溶出液に加えられる。

上記の溶出液のｐＨは、好ましくは、７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、または８．０である。

ヌクレアーゼ処理が、例えばバッファー交換後、アルギニンを含む溶液／バッファーにおいて実施されることもまた好ましい。より好ましくは、溶液／バッファーは、０．２Ｍと１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、または１．０Ｍアルギニンを含む。さらにより好ましくは、溶液／バッファーはまた、０．０１Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、もしくは３．０Ｍ ＮａＣｌ、および０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、もしくは１．０Ｍアルギニンを含み、ならびに／または７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、もしくは８．０のｐＨを有する。

好ましくは、ヌクレアーゼは、その後、例えば、クロマトグラフィーにより、より好ましくは、サイズ排除クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィー、擬アフィニティクロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、もしくは膜吸着装置により、および／または濾過により、より好ましくは、デッドエンド濾過、深層濾過、膜濾過、クロスフロー濾過、ダイアフィルトレーション（ＤＦ）、限外濾過（ＵＦ）、精密濾過（ＭＦ）、もしくは接線流深層濾過（ＴＦＤＦ）により、溶出液から除去される。

一実施形態において、混合モード溶出液は、製剤バッファーと混合される。最終濾過ステップは、その後、行われ得る（図１参照）。

上記で述べられているように、エンベロープウイルスは、ステップ（ｉ）において混合モードクロマトグラフィー担体と結合する。混合モードクロマトグラフィー担体は、疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である。エンベロープウイルスを含む調製物の精製のための疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体の使用は、規制機関の厳格なガイドラインを満たす、高純度、高効力、および高品質を有するエンベロープウイルスを得ることを可能にする。一実施形態において、疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体は、疎水性陽イオン交換クロマトグラフィー担体または疎水性陰イオン交換クロマトグラフィー担体、好ましくは疎水性陽イオン交換クロマトグラフィー担体である。好ましくは、疎水性陽イオン交換クロマトグラフィー担体は、少なくとも１つの疎水性部分および少なくとも１つの酸性部分を含むリガンドを含む。より好ましくは、疎水性部分は、フェニル環もしくは脂肪族炭化水素鎖であり、および／または酸性部分はカルボキシル基である。さらにより好ましくは、リガンドは、ｐ−アミノ馬尿酸である。担体は、好ましくは、カラムに充填されている。担体はまた、膜または樹脂であり得る。疎水性陽イオン交換担体の市販の例には、Ｃａｐｔｏ ＭＭＣ（商標）（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅから入手できる）およびＮｕｖｉａ（商標）ｃＰｒｉｍｅ（商標）（Ｂｉｏ−Ｒａｄから入手できる）が挙げられるが、それらに限定されない。

エンベロープウイルスを精製するための例示的な方法は、以下のステップ：
（ｉ）任意として、細胞溶解と、
（ｉｉ）ウイルス清澄化、例えば、濾過または遠心分離と、
（ｉｉｉ）疎水性イオン交換クロマトグラフィー（例えば、結合ステップ、任意で洗浄ステップ、および溶出ステップによる）と、
（ｉｖ）任意として、ヌクレアーゼ処理、および、例えばクロマトグラフィーまたは接線流濾過（ＴＦＦ）による、その後のヌクレアーゼ除去と、を有することとしてもよい。

特に、エンベロープウイルスの精製方法は以下のステップ：
（ｉ）細胞溶解と、
（ｉｉ）ウイルス清澄化、例えば、濾過または遠心分離と、
（ｉｉｉ）疎水性イオン交換クロマトグラフィー（例えば、結合ステップ、任意で洗浄ステップ、および溶出ステップによる）と、
（ｉｖ）ヌクレアーゼ処理、および、例えばクロマトグラフィーまたは接線流濾過（ＴＦＦ）による、その後のヌクレアーゼ除去と、を有することとしてもよい。

一つの好ましい実施形態において、エンベロープウイルスの精製方法は、以下のステップ：
（ｉ）調製物に含まれるエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させるステップであって、前記混合モードクロマトグラフィー担体が疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、ステップと、
（ｉｉ）前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体から、＞１．０Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、好ましくは２．０Ｍ ＮａＣｌ、例えば、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、または３．０Ｍ ＮａＣｌを含む溶出バッファー（高塩バッファー）で溶出し、それにより、溶出液を形成するステップと、
（ｉｉｉ）任意で、前記溶出液にヌクレアーゼを加えるステップと、を含むこととしてもよい。

一つのより好ましい実施形態において、エンベロープウイルスの精製方法は、以下のステップ：
（ｉ）調製物に含まれるエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させるステップであって、前記混合モードクロマトグラフィー担体が疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、ステップと、
（ｉｉ）前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体から、＞１．０Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、好ましくは２．０Ｍ ＮａＣｌ、例えば、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、または３．０Ｍ ＮａＣｌ、および０．２Ｍから≦０．５Ｍの間のアルギニン、好ましくは０．２５Ｍアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍアルギニンを含む溶出バッファー（高塩バッファー）で溶出し、それにより、溶出液を形成するステップと、
（ｉｉｉ）任意で、前記溶出液にヌクレアーゼを加えるステップと、を含むこととしてもよい。

一つのさらにより好ましい実施形態において、エンベロープウイルスの精製方法は、以下のステップ：
（ｉ）調製物に含まれるエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させるステップであって、前記混合モードクロマトグラフィー担体が疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、ステップと、
（ｉｉ）前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体から、０．０１Ｍから１．０Ｍの間のＮａＣｌ、好ましくは０．５Ｍ ＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ ＮａＣｌ、および＞０．５Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、好ましくは０．７５Ｍアルギニン、例えば、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、または１．０Ｍアルギニンを含む溶出バッファー（低塩バッファー）で溶出し、それにより、溶出液を形成するステップと、
（ｉｉｉ）任意で、前記溶出液にヌクレアーゼを加えるステップと、を含むこととしてもよい。

好ましくは、ヌクレアーゼは、その後、例えば、クロマトグラフィーにより、より好ましくは、サイズ排除クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィー、擬アフィニティクロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、もしくは膜吸着装置により、および／または濾過により、より好ましくは、デッドエンド濾過、深層濾過、膜濾過、クロスフロー濾過、ダイアフィルトレーション（ＤＦ）、限外濾過（ＵＦ）、精密濾過（ＭＦ）、もしくは接線流深層濾過（ＴＦＤＦ）により、溶出液から除去される。

エンベロープウイルスが、生エンベロープウイルス、弱毒化エンベロープウイルス、または複製欠損エンベロープウイルスであることは、好ましい。エンベロープウイルスが、野生型エンベロープウイルス、組換えエンベロープウイルス、または改変エンベロープウイルスであることは、（代替としてまたは追加として）好ましい。エンベロープウイルスが、マイナス鎖一本鎖ＲＮＡ（（−）ｓｓＲＮＡ）ウイルス、プラス鎖一本鎖ＲＮＡ（（＋）ｓｓＲＮＡ）ウイルス、二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）ウイルス、または逆転写ウイルスであることは、より好ましい。マイナス鎖一本鎖ＲＮＡ（（−）ｓｓＲＮＡ）ウイルスが、Ｏｒｔｈｏｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ科、Ｐａｒａｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ科、Ａｒｅｎａｖｉｒｉｄａｅ科、Ｂｏｒｎａｖｉｒｉｄａｅ科、Ｂｕｎｙａｖｉｒｉｄａｅ科、Ｆｉｌｏｖｉｒｉｄａｅ科、もしくはＲｈａｂｄｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルス、もしくはＤ型肝炎ウイルスであり、プラス鎖一本鎖ＲＮＡ（（＋）ｓｓＲＮＡ）ウイルスが、Ｆｌａｖｉｖｉｒｉｄａｅ科、Ｃｏｒｏｎａｖｉｒｉｄａｅ科、もしくはＴｏｇａｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスであり、二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）ウイルスが、Ｐｏｘｖｉｒｉｄａｅ科、Ｈｅｒｐｅｓｖｉｒｉｄａｅ科、もしくはＨｅｐａｄｎａｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスであり、または逆転写ウイルスが、Ｒｅｔｒｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスであることは、さらにより好ましい。Ｏｒｔｈｏｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、Ａ型インフルエンザウイルス（ｉｎｆｌｕｅｎｚａ Ａ ｖｉｒｕｓ）、Ｂ型インフルエンザウイルス（ｉｎｆｌｕｅｎｚａ Ｂ ｖｉｒｕｓ）、Ｃ型インフルエンザウイルス（ｉｎｆｌｕｅｎｚａ Ｃ ｖｉｒｕｓ）、イサウイルス（Ｉｓａｖｉｒｕｓ）、クアランジャウイルス（Ｑｕａｒａｎｊａｖｉｒｕｓ）、およびトゴトウイルス（Ｔｈｏｇｏｔｏｖｉｒｕｓ）からなる群から選択され、Ｐａｒａｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、ニューカッスル病（ＮＤ）ウイルス（Ｎｅｗｃａｓｔｌｅ ｄｉｓｅａｓｅ ｖｉｒｕｓ）、センダイウイルス（Ｓｅｎｄａｉ ｖｉｒｕｓ）、麻疹ウイルス（ｍｅａｓｌｅｓ ｖｉｒｕｓ）、ヘンドラウイルス（Ｈｅｎｄｒａ ｖｉｒｕｓ）、およびニパウイルス（Ｎｉｐａｈ ｖｉｒｕｓ）からなる群から選択され、Ｆｌａｖｉｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、フラビウイルス（Ｆｌａｖｉｖｉｒｕｓ）、ペギウイルス（Ｐｅｇｉｖｉｒｕｓ）、およびペスチウイルス（Ｐｅｓｔｉｖｉｒｕｓ）からなる群から選択され、Ｃｏｒｏｎａｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、ブタ流行性下痢ウイルス（ｐｏｒｃｉｎｅ ｅｐｉｄｅｍｉｃ ｄｉａｒｒｈｅａ ｖｉｒｕｓ）（ＰＥＤＶ）であり、Ｒｅｔｒｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、アルファ、ベータ、ガンマ、もしくはデルタレトロウイルス（ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓ）、レンチウイルス（ｌｅｎｔｉｖｉｒｕｓ）、またはスプマウイルス（ｓｐｕｍａｖｉｒｕｓ）であり、またはＰｏｘｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、ワクシニアウイルス（ｖａｃｃｉｎｉａ ｖｉｒｕｓ）、好ましくは、改変ワクシニアアンカラ（Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｖａｃｃｉｎｉａ Ａｎｋａｒａ）（ＭＶＡ）ウイルス、より好ましくは組換え改変ワクシニアアンカラ（ＭＶＡ）ウイルスであることが最も好ましい。好ましい実施形態において、エンベロープウイルスは、改変ワクシニアアンカラ（ＭＶＡ）ウイルスである（実施例参照）。

エンベロープウイルスが異種性核酸配列をさらに含むことは特に好ましい。前記異種性核酸配列は、好ましくは、抗原、特に抗原のエピトープ、診断用化合物、および治療用化合物をコードする配列からなる群から選択される。

第２の態様において、本発明は、第１の態様の方法により得られるエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスに関する。エンベロープウイルスは、好ましくは、汚染物質、例えば、ウイルス物質（望まれる（無傷の）ウイルスを除く）、非ウイルスの細胞内物質、および／または非ウイルスの細胞外物質を実質的に含まない。ウイルス物質は、好ましくは、不完全なウイルス粒子および外来性ウイルスからなる群から選択され、非ウイルスの細胞内物質は、好ましくは、細胞、細胞片、細胞レムナント、細胞タンパク質、細胞脂質、および細胞核酸からなる群から選択され、ならびに／または非ウイルスの細胞外物質は、好ましくは、（細胞培養およびウイルス産生に用いられる）培地添加物である。特に、エンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスは、≦４０ｎｇの核酸／用量、例えば、０ｎｇ、≦０．１ｎｇ、０．２ｎｇ、０．３ｎｇ、０．４ｎｇ、０．５ｎｇ、０．６ｎｇ、０．７ｎｇ、０．８ｎｇ、０．９ｎｇ、１ｎｇ、２ｎｇ、３ｎｇ、４ｎｇ、５ｎｇ、６ｎｇ、７ｎｇ、８ｎｇ、９ｎｇ、１０ｎｇ、１１ｎｇ、１２ｎｇ、１３ｎｇ、１４ｎｇ、１５ｎｇ、１６ｎｇ、１７ｎｇ、１８ｎｇ、１９ｎｇ、２０ｎｇ、２１ｎｇ、２２ｎｇ、２３ｎｇ、２４ｎｇ、２５ｎｇ、２６ｎｇ、２７ｎｇ、２８ｎｇ、２９ｎｇ、３０ｎｇ、３１ｎｇ、３２ｎｇ、３３ｎｇ、３４ｎｇ、３５ｎｇ、３６ｎｇ、３７ｎｇ、３８ｎｇ、３９ｎｇ、または４０ｎｇの核酸／用量を含む。核酸は、ＤＮＡおよび／またはＲＮＡ分子であり得る。エンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスは、製剤バッファーに含まれ得る。

第３の態様において、本発明は、医薬での使用のための第２の態様のエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスに関する。

第２の態様のエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスを遺伝子治療のために、例えば、治療用遺伝子を導入するために、または内因性遺伝子を改変もしくは矯正するために、用いることは好ましい。治療用遺伝子は、哺乳類、例えば、ヒトへ導入され得、または内因性遺伝子は、哺乳類、例えば、ヒトの内部で改変もしくは矯正され得る。

第２の態様のエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスをワクチンとして／ワクチン接種のために、特に、例えばヒトなどの哺乳類において、免疫応答を誘導するために、用いることもまた好ましい。

第２の態様のエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルスを、疾患、例えば、遺伝性もしくは後天性疾患、感染症、または癌を予防または処置するために用いることはさらに好ましい。

第４の態様において、本発明は、アルギニンを含む溶出バッファーに関する。好ましくは、溶出バッファーは、０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、または１．０Ｍアルギニンを含む。特に、溶出バッファーは、７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、または８．０のｐＨを有する。より好ましくは、溶出バッファーは、０．０１Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、もしくは３．０Ｍ ＮａＣｌ、および０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、もしくは１．０Ｍアルギニンを含み、ならびに／または７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、もしくは８．０のｐＨを有する。さらなる好ましい範囲について、本発明の第１の態様が参照される。

第５の態様において、本発明は、エンベロープウイルスを溶出するための、アルギニンを含むバッファーの使用に関する。好ましくは、溶出バッファーは、０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、または１．０Ｍアルギニンを含む。特に、溶出バッファーは、７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、または８．０のｐＨを有する。より好ましくは、溶出バッファーは、０．０１Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、もしくは３．０Ｍ ＮａＣｌ、および０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、もしくは１．０Ｍアルギニンを含み、ならびに／または７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、もしくは８．０のｐＨを有する。さらなる好ましい範囲について、本発明の第１の態様が参照される。

さらなる態様において、本発明は、エンベロープウイルスを精製するための、アルギニンおよびヌクレアーゼの使用、またはヌクレアーゼと組み合わせてのアルギニンの使用に関する。アルギニンは、好ましくは、バッファーに含まれる。特に、バッファーは、０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、または１．０Ｍアルギニンを含む。特に、バッファーは、７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、または８．０のｐＨを有する。より好ましくは、バッファーは、０．０１Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、もしくは３．０Ｍ ＮａＣｌ、および０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、もしくは１．０Ｍアルギニンを含み、ならびに／または７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、もしくは８．０のｐＨを有する。さらなる好ましい範囲について、本発明の第１の態様が参照される。ヌクレアーゼに関して、それもまた、本発明の第１の態様が参照される。

第６の態様において、本発明は、以下：
（ｉ）疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、混合モードクロマトグラフィー担体と、
（ｉｉ）以下のバッファーのうちの１または複数：平衡バッファー、洗浄バッファー、および溶出バッファーと、
（ｉｉｉ）任意で、ヌクレアーゼと、を含む、エンベロープウイルスを精製するためのキットに関する。
一実施形態において、キットは、平衡バッファー、洗浄バッファー、および溶出バッファーを含む。一つの好ましい実施形態において、キットは、溶出バッファー、ならびに任意で、平衡バッファーおよび／または洗浄バッファーを含む。好ましくは、溶出バッファーはアルギニンを含む。より好ましくは、溶出バッファーは、０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、または１．０Ｍのアルギニンを含む。特に、溶出バッファーは、７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、もしくは８．０のｐＨを有する。さらにより好ましくは、溶出バッファーは、０．０１Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、例えば、０．０１Ｍ、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ、１．１Ｍ、１．２Ｍ、１．３Ｍ、１．４Ｍ、１．５Ｍ、１．６Ｍ、１．７Ｍ、１．８Ｍ、１．９Ｍ、２．０Ｍ、２．１Ｍ、２．２Ｍ、２．３Ｍ、２．４Ｍ、２．５Ｍ、２．６Ｍ、２．７Ｍ、２．８Ｍ、２．９Ｍ、もしくは３．０Ｍ ＮａＣｌ、および０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニン、例えば、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．７５Ｍ、０．８Ｍ、０．９Ｍ、もしくは１．０Ｍアルギニンを含み、ならびに／または７．０から８．０の間、例えば、７．０、７．１、７．２、７．３、７．４、７．５、７．６、７．７、７．８、７．９、もしくは８．０のｐＨを有する。さらなる好ましい範囲について、本発明の第１の態様が参照される。一つのより好ましい実施形態において、キットは、ヌクレアーゼをさらに含む。任意で存在するヌクレアーゼに関して、それもまた、本発明の第１の態様が参照される。キットは、エンベロープウイルスを精製するのに有用である。特に、キットは、第１の態様による方法を行うのに有用である。キットは、エンベロープウイルス精製を行う方法に関する使用説明書（例えば、ＣＤ−ＲＯＭまたはＤＶＤなどのデータ記憶媒体における）、および包装材料をさらに含み得る。

本発明は、以下の通り、要約される：
１．（ｉ）調製物に含まれるエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させるステップと、
（ｉｉ）前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体から溶出するステップと、を含み、
前記混合モードクロマトグラフィー担体が、疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、エンベロープウイルスの精製方法。
２．ステップ（ｉ）における前記エンベロープウイルスを含む調製物が、前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体と結合させる前に、以下のステップ：
（ａ）細胞溶解と、
（ｂ）ウイルス清澄化と、
（ｃ）ヌクレアーゼ処理と、
からなる群から選択される１または複数のステップに供せられる、項目１に記載の方法。
３．前記ウイルス清澄化ステップが、クロマトグラフィー、濾過、遠心分離、凝結／沈殿、および沈降からなる群から選択される、項目２に記載の方法。
４．前記混合モードクロマトグラフィー担体が平衡バッファーで平衡化されている、項目１〜３のいずれか一項目に記載の方法。
５．（ｉｉｉ）前記混合モードクロマトグラフィー担体を洗浄バッファーで洗浄するステップであって、前記エンベロープウイルスが前記混合モードクロマトグラフィー担体と結合したままである、ステップをさらに含む、項目１〜４のいずれか一項目に記載の方法。
６．前記エンベロープウイルスが、前記混合モードクロマトグラフィー担体から溶出バッファーで溶出される、項目１〜５のいずれか一項目に記載の方法。
７．ステップ（ｉｉ）における前記溶出が、
前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーよりも高い塩濃度を有する溶出バッファー、
前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーよりも高いｐＨを有する溶出バッファー、または
前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーよりも高い塩濃度および高いｐＨを有する溶出バッファー、
のいずれかを用いて達成される、項目４〜６のいずれか一項目に記載の方法。
８．前記平衡バッファー、前記洗浄バッファー、および前記溶出バッファーが、塩を含み、および／または規定のｐＨを有し、ならびにステップ（ｉｉ）における前記溶出が、
前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーの塩濃度と比較して、前記溶出バッファーの塩濃度を上昇させること、
前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーのｐＨと比較して、前記溶出バッファーのｐＨを上昇させること、または
前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーの塩濃度およびｐＨと比較して、前記溶出バッファーの塩濃度およびｐＨを上昇させること、
のいずれかを含む、項目４〜６のいずれか一項目に記載の方法。
９．前記平衡バッファーが、≦０．８Ｍ ＮａＣｌを含み、および／または７．０から７．５の間のｐＨを有する、項目４〜８のいずれか一項目に記載の方法。
１０．前記洗浄バッファーが、≦０．８Ｍ ＮａＣｌを含み、および／または７．０から７．５の間のｐＨを有する、項目５〜９のいずれか一項目に記載の方法。
１１．前記溶出バッファーが、０．２Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌを含み、および／または７．０から８．０の間のｐＨを有する、項目６または１０のいずれか一項目に記載の方法。
１２．前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーが、≦０．５Ｍ ＮａＣｌ、好ましくは０．５Ｍ ＮａＣｌを含み、および７．０から７．５の間、好ましくは７．２のｐＨを有し、ならびに前記溶出バッファーが、≧０．５Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、好ましくは２．０Ｍ ＮａＣｌを含み、および７．０から８．０の間、好ましくは７．２のｐＨを有する、項目４〜１１のいずれか一項目に記載の方法。
１３．前記溶出バッファーがアルギニンを含む、項目６〜１２のいずれか一項目に記載の方法。
１４．前記溶出バッファーが、０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニンを含む、項目１３に記載の方法。
１５．前記溶出バッファーが、０．２Ｍから３．０Ｍの間のＮａＣｌ、および０．２Ｍから１．０Ｍの間のアルギニンを含み、ならびに／または７．０から８．０の間のｐＨを有する、項目１３または１４に記載の方法。
１６．ステップ（ｉ）における前記エンベロープウイルスを含む調製物が、前記混合モードクロマトグラフィー担体と結合する時、≦０．８Ｍ ＮａＣｌを含み、および／または７．０から７．５の間のｐＨを有する、項目１〜１５のいずれか一項目に記載の方法。
１７．ステップ（ｉｉ）において前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体から溶出することにより、混合モード溶出液が形成される、項目１〜１６のいずれか一項目に記載の方法。
１８．前記溶出液が、以下のステップ：
（ａ）濾過と、
（ｂ）クロマトグラフィーと、
（ｃ）ヌクレアーゼ処理と、
からなる群から選択される１または複数のステップにさらに供せられる、項目１７に記載の方法。
１９．前記混合モード溶出液がヌクレアーゼで処理される、項目１７または１８に記載の方法。
２０．前記ヌクレアーゼが、その後、クロマトグラフィー、好ましくはサイズ排除クロマトグラフィー、および／または濾過、好ましくは、接線流濾過（ＴＦＦ）、限外濾過（ＵＦ）、ダイアフィルトレーション（ＤＦ）、ゲル濾過、もしくはゲル濾過と接線流濾過（ＴＦＦ）の組合せにより、前記溶出液から除去される、項目１８または１９に記載の方法。
２１．前記混合モード溶出液が製剤バッファーと混合される、項目１７〜２０のいずれか一項目に記載の方法。
２２．前記疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体が、疎水性陽イオン交換クロマトグラフィー担体または疎水性陰イオン交換クロマトグラフィー担体、好ましくは疎水性陽イオン交換クロマトグラフィー担体である、項目１〜２１のいずれか一項目に記載の方法。
２３．前記疎水性陽イオン交換クロマトグラフィー担体が、少なくとも１つの疎水性部分および少なくとも１つの酸性部分を含むリガンドを含む、項目２２に記載の方法。
２４．前記疎水性部分が、フェニル環もしくは脂肪族炭化水素鎖であり、および／または前記酸性部分がカルボキシル基である、項目２３に記載の方法。
２５．前記リガンドがｐ−アミノ馬尿酸である、項目２３または２４に記載の方法。
２６．前記担体がカラムに充填されている、項目１〜２５のいずれか一項目に記載の方法。
２７．ステップ（ｉ）における前記エンベロープウイルスを含む調製物が、ウイルス物質、非ウイルスの細胞内物質、および／または非ウイルスの細胞外物質からなる群から選択される１または複数の汚染物質を含む、項目１〜２６のいずれか一項目に記載の方法。
２８．前記ウイルス物質が、不完全なウイルス粒子および外来性ウイルスからなる群から選択され、前記非ウイルスの細胞内物質が、細胞、細胞片、細胞レムナント、細胞タンパク質、細胞脂質、および細胞核酸からなる群から選択され、ならびに／または前記非ウイルスの細胞外物質が、（細胞培養およびウイルス産生に用いられる）培地添加物である、項目２７に記載の方法。
２９．前記エンベロープウイルスが、生エンベロープウイルス、弱毒化エンベロープウイルス、または複製欠損エンベロープウイルスである、項目１〜２８のいずれか一項目に記載の方法。
３０．前記エンベロープウイルスが、野生型エンベロープウイルス、組換えエンベロープウイルス、または改変エンベロープウイルスである、項目１〜２９のいずれか一項目に記載の方法。
３１．前記エンベロープウイルスが、マイナス鎖一本鎖ＲＮＡ（（−）ｓｓＲＮＡ）ウイルス、プラス鎖一本鎖ＲＮＡ（（＋）ｓｓＲＮＡ）ウイルス、二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）ウイルス、または逆転写ウイルスである、項目１〜３０のいずれか一項目に記載の方法。
３２．前記マイナス鎖一本鎖ＲＮＡ（（−）ｓｓＲＮＡ）ウイルスが、Ｏｒｔｈｏｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ科、Ｐａｒａｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ科、Ａｒｅｎａｖｉｒｉｄａｅ科、Ｂｏｒｎａｖｉｒｉｄａｅ科、Ｂｕｎｙａｖｉｒｉｄａｅ科、Ｆｉｌｏｖｉｒｉｄａｅ科、もしくはＲｈａｂｄｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルス、もしくはＤ型肝炎ウイルスであり、プラス鎖一本鎖ＲＮＡ（（＋）ｓｓＲＮＡ）ウイルスが、Ｆｌａｖｉｖｉｒｉｄａｅ科、Ｃｏｒｏｎａｖｉｒｉｄａｅ科、もしくはＴｏｇａｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスであり、二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）ウイルスが、Ｐｏｘｖｉｒｉｄａｅ科、Ｈｅｒｐｅｓｖｉｒｉｄａｅ科、もしくはＨｅｐａｄｎａｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスであり、または逆転写ウイルスが、Ｒｅｔｒｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスである、項目３１に記載の方法。
３３．前記Ｏｒｔｈｏｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、Ａ型インフルエンザウイルス、Ｂ型インフルエンザウイルス、Ｃ型インフルエンザウイルス、イサウイルス、クアランジャウイルス、およびトゴトウイルスからなる群から選択され、前記Ｐａｒａｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、ニューカッスル病（ＮＤ）ウイルス、センダイウイルス、麻疹ウイルス、ヘンドラウイルス、およびニパウイルスからなる群から選択され、前記Ｆｌａｖｉｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、フラビウイルス、ペギウイルス、およびペスチウイルスからなる群から選択され、前記Ｃｏｒｏｎａｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、ブタ流行性下痢ウイルス（ＰＥＤＶ）であり、前記Ｒｅｔｒｏｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、アルファ、ベータ、ガンマ、もしくはデルタレトロウイルス、レンチウイルス、またはスプマウイルスであり、または前記Ｐｏｘｖｉｒｉｄａｅ科のウイルスが、ワクシニアウイルス、好ましくは、改変ワクシニアアンカラ（ＭＶＡ）ウイルスである、項目３２に記載の方法。
３４．前記エンベロープウイルスが異種性核酸配列をさらに含む、項目１〜３３のいずれか一項目に記載の方法。
３５．前記異種性核酸配列が、抗原、特に抗原のエピトープ、診断用化合物、および治療用化合物をコードする配列からなる群から選択される、項目３４に記載の方法。
３６．項目１〜３５のいずれか一項目に記載の方法により得られるエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルス。
３７．医薬での使用のための項目３６に記載のエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルス。
３８．アルギニンを含む溶出バッファー。
３９．エンベロープウイルスを溶出するための、アルギニンを含むバッファーの使用。
４０．以下を含む、エンベロープウイルスを精製するためのキット：
（ｉ）疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、混合モードクロマトグラフィー担体、
（ｉｉ）以下のバッファーのうちの１または複数が、：平衡バッファー、洗浄バッファー、および溶出バッファー、ならびに
（ｉｉｉ）任意で、ヌクレアーゼ。
４１．前記溶出バッファーがアルギニンを含む、項目４０に記載のキット。
４２．エンベロープウイルスを精製するのに有用である、項目４０または４１に記載のキット。
４３．エンベロープウイルス精製を行う方法に関する使用説明書を含む、項目４０〜４２のいずれか一項目に記載のキット。

本発明の様々な改変およびバリエーションは、本発明の範囲から逸脱することなく、当業者に明らかであろう。本発明は、特定の好ましい実施形態に関連して記載されているが、主張されている本発明が、そのような特定の実施形態に過度に限定されるべきではないことを理解されたい。実際、当業者に明白である、本発明を実行するための記載されたモードの様々な改変は、本発明により網羅されることを意図される。

下記に示された実施例は、例証のみを目的とし、上記の発明を決して限定するものではない。

実施例１
改変ワクシニアアンカラ（ＭＶＡ）ウイルス産生
親ＭＶＡ−ＣＲ１９クローン（米国特許第９７３２３２５号明細書）の蛍光バージョンである、ＭＶＡ−ＣＲ１９．ｇｆｐを、成長培地中で培養されたＡＧＥ１．ＣＲ．ｐＩＸ細胞（Ｊｏｒｄａｎ Ｉ，Ｖｏｓ Ａ，Ｂｅｉｌｆｕｓｓ Ｓ，Ｎｅｕｂｅｒｔ Ａ，Ｂｒｅｕｌ Ｓ，Ｓａｎｄｉｇ Ｖ．Ａｎ ａｖｉａｎ ｃｅｌｌ ｌｉｎｅ ｄｅｓｉｇｎｅｄ ｆｏｒ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｈｉｇｈｌｙ ａｔｔｅｎｕａｔｅｄ ｖｉｒｕｓｅｓ．Ｖａｃｃｉｎｅ．２００９；７：７４８−７５６）において２×１０^６個の細胞／ｍｌの生細胞密度まで産生させた。ウイルス産生について、ウイルス伝播を支持する細胞凝集物を誘導するために、成長培地ＣＤ−Ｕ４（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、ＵＳＡ）の５０％をＣＤ−ＶＰ４培地（Ｇｉｂｃｏ、ＵＳＡ）へ置き換えた。細胞に０．００５の感染効率（ＭＯＩ）で感染させ、収集前に最長３日間、培養した。細胞を培養上清から分離せずに、超音波を用いて直接、溶解した。このプロセスにおいて１０^９／ｍｌまたはそれ以上の力価が定期的に得られた。

実施例２
ＭＶＡウイルス滴定（ＴＣＩＤ５０、ｑＴＣＩＤ５０）
ＭＶＡのウイルス滴定を、ＴＣＩＤ５０およびｑＴＣＩＤ５０の両方の方法について接着性ＡＧＥ１．ＣＲ．ｐＩＸにおいて実施した。ＴＣＩＤ５０（組織培養感染用量５０（Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ Ｄｏｓｅ ５０））アッセイについて、９６ウェルプレートに、５％ ＦＣＳを含有するＤＭＥＭ／Ｆ１２（Ｇｉｂｃｏ、ＵＳＡ）中２．５×１０^５個の細胞／ｍｌを播種してから２４時間後、段階ウイルス希釈物を感染させた。評価は、３７℃でのインキュベーションから４８時間後であり、ＲｅｅｄおよびＭｕｅｎｃｈ（Ｒｅｅｄ ＬＪ，Ｍｕｅｎｃｈ Ｈ．Ａ ｓｉｍｐｌｅ ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ ｅｓｔｉｍａｔｉｎｇ ｆｉｆｔｙ ｐｅｒ ｃｅｎｔ ｅｎｄｐｏｉｎｔｓ．Ａｍ Ｊ Ｈｙｇ １９３８；２７：４９３−４９７）に従って計算した。さらに、ＭＶＡについてのｑＴＣＩＤ５０、定量的ポリメラーゼ連鎖反応（ｑＰＣＲ）による力価決定法を開発し、確立した。ＴＣＩＤ５０と同様に、細胞プレートに、１０^−２〜１０^−６希釈された規定標準を感染させ、その試料を１０^−３希釈した。６時間のインキュベーション後、培地を除去し、ウェルをＰＢＳで洗浄した。細胞溶解について、ウェルあたり５０μｌのＱｕｉｃｋＥｘｔｒａｃｔ ＤＮＡ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ １．０（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ、ＵＳＡ）を用い、プレートを６５℃まで１５分間加熱し、その後、９５℃で５分間のインキュベーションステップを行った。１００μｌ ＷＦＩを加えた後、試料を、ｑＰＣＲに用いた。プライマーペアＭＶＡ１２８Ｌ ５’−ＣＧＴＴＴＴＧＣＡＴＣＡＴＡＣＣＴＣＣＡＴＣＴＴ−３’（配列番号１）および５’−ＧＣＧＧＧＴＧＣＴＧＧＡＧＴＧＣＴＴ−３’（配列番号２）（ＴＩＢ ＭｏｌＢｉｏｌ、Ｇｅｒｍａｎｙ）、Ｐｏｗｅｒ ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ ＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、ＵＳＡ）、およびＷＦＩを含有する最終マスターミックスの１５μｌへ５μｌプローブをそれぞれ加えた。非鋳型対照（ＮＴＣ）についてＷＦＩを用いた。ｑＰＣＲを、９５℃で１０分間、続いて、９５℃で１５秒間の変性およびアニーリングおよび６０℃で１分間のＤＮＡ増幅の４０サイクルをプログラムされたＳｔｅｐＯｎｅＰｌｕｓ ＲｅａｌＴｉｍｅ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、ＵＳＡ）において実施した。評価は、ｃｔ値およびＭＶＡ標準の力価に基づいた。

実施例３
混合モードクロマトグラフィーによるＭＶＡウイルス精製
収集時点において、ウイルスの一部は、上清に見出すことができるが、ウイルスの大部分は細胞の内部に留まっている。上清におけるウイルス画分はＭＶＡ−ＣＲ１９についてより高い（米国特許第９７３２３２５号明細書）が、それでも細胞内画分は重要であり、好ましくは、プロセスへ細胞溶解を含める。細胞内ＭＶＡウイルスの放出のために、産生培地中の細胞を、カオトロピック塩（２５０ｍＭ ＮａＢｒ、２５０ｍＭ ＮａＣｌ、および／または１５０ｍＭ ＫＣｌ、米国特許第９２７３２８９号明細書参照）とインキュベートして、ウイルス粒子から宿主細胞ＤＮＡを脱離させ、超音波（振幅１０％、４５秒間）を用いて溶解した。可溶化液の一次クリアランスを、プレフィルター（Ｓａｒｔｏｐｕｒｅ、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ、Ｇｅｒｍａｎｙ）で実施して、次の精製ステップにおいて困難を引き起こし得る細胞片およびより大きい粒子を除去した（図１）。この段階後すでに、宿主細胞ＤＮＡを低減するためにヌクレアーゼ処理を適用することができる。しかしながら、ヌクレアーゼで処理された可溶化液において沈殿物が観察され、クロマトグラフィーへの前提条件として追加の濾過ステップを必要とした。このステップは、ウイルスの５０％より多く、時には８０％も除去した。さらに、クリアランスされた可溶化液の高体積において、ヌクレアーゼ処理は経済的ではない。したがって、ヌクレアーゼ処理をこの段階で実施して、次のステップにおいてヌクレアーゼの除去を容易にすることができるが、この段階でヌクレアーゼ処理を省き、代わりに、ヌクレアーゼ処理をクロマトグラフィー後に実施することが好ましい。ウイルス精製の中心的構成要素は、収集体積の低減、ウイルスの濃縮、および下流精製初期における主要な汚染物質の除去を並行して可能にする効率的な捕獲ステップである。混合モード担体は、それらの様々な結合相互作用モードにより、不均質な構造、脂質およびタンパク質組成、加えて、不均一な表面電荷を有するエンベロープウイルスに特に適していると予測された。さらに、混合モード担体は、プラットフォームステップとして様々なウイルスに適用可能であると考えられた。しかしながら、混合モード担体と結合しかつこれから溶出する典型的な条件は、脆弱なエンベロープウイルスの不活性化を引き起こし得る。ラージスケール産生に適合した混合モード担体は、最近、様々な販売会社を通して商業的に入手可能になってきたが、エンベロープウイルスに用いられたことはない。異なる混合モードリガンドをスクリーニングすることにより、生存可能なウイルスと適合した条件下でいくつかのリガンドについてのＭＶＡの捕獲を、実際、観察した。適用された条件下（ｐＨ７．２±０．２、５５ｍＳ／ｃｍ）でフロースルー画分における感染単位の実質的な低下により判断された場合、最も効率的な捕獲は、混合モード陽イオン交換器Ｃａｐｔｏ ＭＭＣ（商標）（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅから入手できる）およびＮｕｖｉａ（商標）ｃＰｒｉｍｅ（商標）（Ｂｉｏ−Ｒａｄから入手できる）で効率的に達成された（図２）。好ましいプロセスについて、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、０．５Ｍ ＮａＣｌ、ｐＨ７．２と平衡化した樹脂（Ｎｕｖｉａ ｃＰｒｉｍｅ、Ｂｉｏｒａｄ、Ｇｅｒｍａｎｙ）の１ｍｌあたり５×１０^９個の感染性ウイルス粒子を負荷した。ＵＶ吸収の増加により明らかなように、汚染物質を２５ＣＶの洗浄バッファー（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、０．５Ｍ ＮａＣｌ、ｐＨ７．２）で洗い流した（図２ａ）。ウイルス粒子を混合モード担体から放出させるために、溶出バッファーにおける塩濃度を増加させることを試験した。５０ｍＭ Ｔｒｉｓ．ＨＣＬおよび２Ｍ ＮａＣｌでの溶出は、感染性ウイルスの約２４％を回収することを可能にしたが、残留の結合している材料は、ＣＩＰ中に放出された（図２ｂ）。興味深いことに、アルギニンが溶出バッファーに加えられた場合、ウイルス回収率は、２４％から約４０％へ有意に向上し、それに応じて、ＣＩＰピーク面積が減少した（図２ａ、ｂ）。したがって、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ．ＨＣＬ、２Ｍ ＮａＣｌ、および２５０ｍＭアルギニン、ｐＨ７．２を含有する溶出バッファーでウイルスを溶出することが好ましい。アルギニンのウイルスへの負の影響を考えれば、この所見は驚くべきことである。とりわけ、溶出された材料は、汚染細胞ＤＮＡの約９７．５％（表１）およびタンパク質汚染物質の約９８％から解放され、したがって、担体に適用された最初の材料と比較して、実質的に精製されたと言うことができる。混合モードリガンドを用いるウイルス捕獲の一貫性を、アルギニンを含有する溶出バッファーを用いる同じ混合モード担体における連続的実行により調べた。図３に示されているように、ウイルス捕獲および溶出は、担体の延長した使用（ｎ＝１０）の時でさえも、本明細書に記載された方法で再現性よく実施することができた。プロセスの堅牢性の実証以外にも、この所見は、スケールアップに必要とされるカラムサイズに大きな影響を及ぼし、本明細書に記載されたプロセスがそのような問題によって制限されないことを示唆している。

実施例４
ヌクレアーゼ処理によるＤＮＡの低減およびヌクレアーゼの除去
細胞ＤＮＡ負担をさらに低減し、かつヒトワクチン／治療薬についての必要条件を満たすために、別のクロマトグラフィーが考えられ得るが、ヌクレアーゼ処理が最も適切なステップであり得る。しかしながら、溶出液における高塩濃度は、多くのヌクレアーゼの活性と適合しない可能性がある。消化するために、全体的な収率を低下させるだろう追加のステップである、ＤＮＡバッファーをＴＦＦによって交換して、塩濃度を低下させることができる。あるいは、ＳＡＮ（Ａｒｔｉｃ Ｅｎｚｙｍｅｓ、Ｎｏｒｗａｙ）などのより高い塩濃度において活性があるヌクレアーゼが用いられ得る。このヌクレアーゼについての推奨塩濃度は、５００ｍＭであり、１Ｍにおいていくらかの活性が保存される。驚くべきことに、部分的に精製された材料／溶出液が５０Ｕ／ｍｌのＳＡＮで、室温において一晩、処理された時、ウイルス用量あたりＤＮＡの１５０分の１への低下が見出された。消化後、ヌクレアーゼは、接線流濾過によるか、またはサイズ差によりウイルス粒子から酵素を分離するゲル濾過担体を用いることによるかのいずれかにより除去することができる。ホローファイバー（７５０ｋＤａ ｍＰＥＳ、ＳｐｅｃｔｒｕｍＬａｂｓ、ＵＳＡ）および穏やかなずり速度（５００ｌ／ｓ）を用いる、溶出バッファーに対するダイアフィルトレーションは、ヌクレアーゼを除去し、９８％のステップ収率であった。バッファーを適用のための適切な製剤へ変えるために同じステップが適用される。

実施例５
高いアルギニン濃度における混合モードクロマトグラフィー
事前のバッファー交換なしにヌクレアーゼ消化を促進するために溶出ステップにおいて塩濃度を低下させることは望ましい。アルギニンの添加がウイルス回収率を向上させることが観察されたため、非常に高いアルギニン濃度がＮａＣｌの代わりになり得ると推論された。可溶化液を調製し、前処理し、実施例３に記載されているように、クロマトグラフィー樹脂（Ｎｕｖｉａ ｃＰｒｉｍｅ、Ｂｉｏｒａｄ、Ｇｅｒｍａｎｙ）へアプライした。汚染物質を、２５ＣＶの洗浄バッファー（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、０．５Ｍ ＮａＣｌ、ｐＨ７．２）で洗い流した。溶出バッファーについて、アルギニン濃度を、３倍、上昇させ（０．７５Ｍ）、塩濃度を、４分の１へ減少させた（０．５Ｍ）。このアプローチにより、ウイルス回収率は、約８３％へさらに向上した（図４ａ、ｂ）。溶出液を、事前バッファー交換なしにヌクレアーゼ処理に供した。ＤＮＡ含有量は、５０Ｕ／ｍｌのＳＡＮでの室温における一晩の処理によって５００分の１未満へ、低減した。結果的に、ＳＡＮヌクレアーゼは、予想通り、５００ｍＭ ＮａＣｌにおいて、より高い活性を有するが、高濃度７５０ｍＭのアルギニンに対しても非感受性であった。全体的なプロセスの収率および純度は表２に記載されている。

実施例６
宿主細胞ＤＮＡの定量化
少量のＤＮＡを含む精製された試料の測定を、ｑＰＣＲにより実施した。ＤＮＡ抽出前に、高塩レベルを有する試料を、１０^−１希釈し、規定標準１０^−１〜１０^−６に希釈した。５μｌ ＱｕｉｃｋＥｘｔｒａｃｔ ＤＮＡ抽出溶液１．０（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ、ＵＳＡ）へ２０μｌ試料を加え、Ｃ１０００ Ｔｏｕｃｈ Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、ＵＳＡ）を用いて、６５℃へ加熱し、１５分間、インキュベートし、その後、９５℃で５分間のインキュベーションステップを行った。後で、５０μｌのＷＦＩを加えた。ｑＰＣＲ方法およびマスターミックスの組成は、プライマーペアのｄｕＰｓｅｕｄｏ２（５’−ＣＡＧＧＣＡＧＧＴＴＴＣＴＴＴＡＧＧＡＡＧＧ−３’（配列番号３）および５’−ＧＴＡＧＧＴＡＧＣＡＡＧＧＡＧＧＴＴＴＡＧＣ−３’（配列番号４））（ＴＩＢ ＭｏｌＢｉｏｌ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を除いて、ｑＴＣＩＤ５０について用いられたものと同一であった。

実施例７
ニューカッスル病ウイルス（ＮＤＶ）産生
ニューカッスル病ウイルス（ＮＤＶ）を、ＡＧＥ１．ＣＲ．ｐＩＸ細胞において産生させた。懸濁培養物を、５ｃｍの振幅および毎分１８０回転の回転速度での回転プラットフォーム上の振盪インキュベーター（ＨＴ Ｍｕｌｔｉｔｒｏｎ Ｃｅｌｌ、Ｉｎｆｏｒｓ ＡＧ、Ｂｏｔｔｍｉｎｇｅｎ、Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）において維持した。ＣＯ_２気圧を８％に、温度を３７℃に設定した。全ての培養容器、振盪チューブ（Ｔｕｂｅｓｐｉｎ ５０、ＴＰＰ Ｔｅｃｈｎｏ Ｐｌａｓｔｉｃ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ ＡＧ、Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）、またはバッフル付き振盪フラスコ（Ｃｏｒｎｉｎｇ、ＮＹ、ＵＳＡ）は、ガス交換を可能にするために、０．２μｍフィルター付き蓋を備えた。培養物体積を、容器サイズの２０〜５０％に維持した。ＤＡＳＢｏｘ（ＤＡＳＧｉｐ、Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ、Ｈａｍｂｕｒｇ、Ｇｅｒｍａｎｙ）バイオリアクターユニットは、３つの羽根を有するＭａｒｉｎｅ羽根車および６０〜２５０ｍｌワーキング体積の容器を備えた。ガス混合は、Ｎ_２、空気、ＣＯ_２、およびＯ_２で実施され、ｐＨはＣＯ_２および１Ｍ Ｎａ_２ＣＯ_３で調整された。接種を、通常、１×１０^６個の細胞／ｍｌ ＣＤ−Ｕ３培地へと実施し、培養物を、およそ４×１０^６個の細胞／ｍｌへ３日間、増殖させた。細胞増殖相についてのパラメータは、３７℃培養温度、培地中６０％ ＤＯ（溶存酸素）飽和、羽根車について１８０ｒｐｍ、および細胞増殖中、細胞培養物において７．２５単位から７．００単位へ減少するｐＨ勾配であった。ｐＨは、通常、感染中、７．１単位に維持された。０．１７ｍｌ／時間（１日あたり４ｍｌ）の供給速度が毎日、８Ｕ／ｍｌ培養体積の最終濃度を生じるように調整された活性で、組換えトリプシン（ｒＴｒｙｐｓｉｎ、Ｎｏｖｏｚｙｍ ６３９５０２０）を、４℃に維持された溶液由来の感染培養物へ供給することにより、ＮＤＶウイルスの増殖がさらに支援された。インキュベーション温度は３５℃に設定された。

実施例８
混合モードクロマトグラフィーによるニューカッスル病ウイルス精製
細胞懸濁液を、３回の凍結融解サイクルに供し、ＭＶＡプロセスについて記載されているように、細胞片を濾過（Ｓａｒｔｏｐｕｒｅ、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ、Ｇｅｒｍａｎｙ）により除去した。得られた材料を、混合モード陽イオン交換器（Ｎｕｖｉａ ｃＰｒｉｍｅ、Ｂｉｏｒａｄ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いるクロマトグラフィーステップに供した。汚染物質を２５ＣＶの洗浄バッファーで洗い流し、結合しているウイルスを５ＣＶの溶出バッファーで溶出し、生ウイルスを回収した。部分的に精製された材料／溶出液を、５０Ｕ／ｍｌのヌクレアーゼ（ＳＡＮ、Ａｒｔｉｃ Ｅｎｚｙｍｅｓ、Ｎｏｒｗａｙ）で、室温において一晩、さらに処理した。その酵素、加えてＤＮＡ断片およびより小さい不純物を、ホローファイバーを用いる溶出バッファーに対するダイアフィルトレーションにより除去した。

実施例９
感染単位の決定
ニューカッスル病ウイルス（ＮＤＶ）の感染力価を、ベロ細胞上で決定した。２ｍＭ ＧｌｕｔａＭＡＸ Ｉ（Ｇｉｂｃｏ）および５％ ウシ胎仔血清（Ｂｉｏｃｈｒｏｍ）を含有するＤＭＥＭ：Ｆ１２培地（Ｇｉｂｃｏ）中の１．５×１０^６個の細胞を、ＣｅｌｌＢＩＮＤ ９６ウェルプレート（Ｃｏｒｎｉｎｇ）へ１００μｌの細胞懸濁液で播種した。次の日、２ｍＭ ＧｌｕｔａＭＡＸ Ｉおよび１．５μｇ／ｍｌトリプシン（ｔｙｐｅ ＩＸ−Ｓ、Ｓｉｇｍａ Ｔ０３０３）を含有するが、ウシ胎仔血清を含有しないＤＭＥＭ：Ｆ１２へ培地を置き換えた。ＮＤＶ試料の１０個ずつの段階希釈物を、血清を含まないＤＭＥＭ：Ｆ１２培地中に調製し、希釈物のそれぞれ１０μｌを、ベロ培養物へ加えた。３７℃で７２時間、ウイルスを複製させた。ＮＤＶ複製の検出を、免疫染色により容易にした：細胞を、メタノール中、１０分間、固定し、完了まで乾燥させ、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０を含有するＰＢＳで再水和させた。１％ウシ胎仔血清を含有するＰＢＳ中１：２０００の希釈率でのＮＤＶ抗血清（ＧＤ Ａｎｉｍａｌ Ｈｅａｌｔｈ Ｄｅｖｅｎｔｅｒ、ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）を加え、室温で１時間、インキュベートした。ＰＢＳでの２回の洗浄後、二次抗体（１μｇ／μｌにおける抗ニワトリ、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８標識、宿主ウサギ、Ｄｉａｎｏｖａ、３０３−５４５−００３）を、１：２０００の希釈率で、外界温度で２時間、または４℃で一晩、加えた。感染したウェルを、ＰＢＳでの２回の洗浄後、蛍光により同定した。ＴＣＩＤ５０値の計算を、Ｒｅｅｄら（Ｒｅｅｄ ＬＪ，Ｍｕｅｎｃｈ Ｈ．Ａ ｓｉｍｐｌｅ ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ ｅｓｔｉｍａｔｉｎｇ ｆｉｆｔｙ ｐｅｒ ｃｅｎｔ ｅｎｄｐｏｉｎｔｓ．Ａｍ Ｊ Ｈｙｇ １９３８；２７：４９３−４９７）に従って実施した。

Claims (15)

1. （ｉ）調製物に含まれるエンベロープウイルスを混合モードクロマトグラフィー担体と結合させるステップと、
   （ｉｉ）前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体から溶出するステップと、を含み、
   前記混合モードクロマトグラフィー担体が疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、エンベロープウイルスの精製方法。
2. ステップ（ｉ）における前記エンベロープウイルスを含む調製物が、前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体と結合させる前に、以下のステップ：
   （ａ）細胞溶解と、
   （ｂ）ウイルス清澄化と、
   （ｃ）ヌクレアーゼ処理と、
   からなる群から選択される１または複数のステップに供せられる、請求項１に記載の方法。
3. 前記混合モードクロマトグラフィー担体が平衡バッファーで平衡化されている、請求項１または２に記載の方法。
4. （ｉｉｉ）前記混合モードクロマトグラフィー担体を洗浄バッファーで洗浄するステップであって、前記エンベロープウイルスが前記混合モードクロマトグラフィー担体と結合したままであるステップをさらに含む、請求項１から３のいずれか一項に記載の方法。
5. 前記エンベロープウイルスが、前記混合モードクロマトグラフィー担体から溶出バッファーで溶出される、請求項１から４のいずれか一項に記載の方法。
6. ステップ（ｉｉ）における前記溶出が、
   前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーよりも高い塩濃度を有する溶出バッファー、
   前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーよりも高いｐＨを有する溶出バッファー、または、
   前記平衡バッファーおよび前記洗浄バッファーよりも高い塩濃度および高いｐＨを有する溶出バッファー、のいずれかを用いて達成される、請求項３から５のいずれか一項に記載の方法。
7. 前記溶出バッファーがアルギニンを含む、請求項５または６に記載の方法。
8. ステップ（ｉｉ）において、前記エンベロープウイルスを前記混合モードクロマトグラフィー担体から溶出することにより、混合モード溶出液が形成される、請求項１から７のいずれか一項に記載の方法。
9. 前記溶出液が、以下のステップ：
   （ａ）濾過と、
   （ｂ）クロマトグラフィーと、
   （ｃ）ヌクレアーゼ処理と、
   からなる群から選択される１または複数のステップにさらに供せられる、請求項８に記載の方法。
10. 請求項１から９のいずれか一項に記載の方法により得られるエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルス。
11. 医薬での使用のための請求項１０に記載のエンベロープウイルスまたは複数のエンベロープウイルス。
12. アルギニンを含む溶出バッファー。
13. エンベロープウイルスを溶出するための、アルギニンを含むバッファーの使用。
14. （ｉ）疎水性イオン交換クロマトグラフィー担体である、混合モードクロマトグラフィー担体と、
    （ｉｉ）平衡バッファー、洗浄バッファー、および溶出バッファーのうちの１または複数のバッファーと、
    （ｉｉｉ）任意で、ヌクレアーゼと、
    を含む、エンベロープウイルスを精製するためのキット。
15. 前記溶出バッファーがアルギニンを含む、請求項１４に記載のキット。

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