JP2021506313A - 二価核酸リガンドおよびその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、国立衛生研究所から授与された認可番号R21NS098102、および全米科学財団から授与された認可番号CHE1039870のもとで政府支援を受けてなされた。政府は本発明に一定の権利を有する。
本願は、それぞれその全体が参照により本明細書中に組み込まれる同時係属中の、2017年12月21日に提出された米国仮特許出願第62/708,783号および2018年2月14日に提出された米国仮特許出願第62/710,262号の恩恵を請求する。
本明細書には、核酸および核酸オリゴマー組成物を使用して核酸を結合するための組成物が記載される。また、リピート伸長疾患(expanded repeat disease)、例えば、ハンチントン病などのPolyQ疾患を治療する方法も提供される。
RNA−リピート伸長(RNA-repeated expansion)は神経筋障害(または疾患)でよく見られる。その一例は、筋肉協調運動に影響を及ぼし、行動変化、認知低下、および認知症に至る常染色体優性障害である、ハンチントン病(HD)である。HDは、典型的には中年期に発症し、結果として発病後10〜20年で死に至る。これは、ハンチントン(htt)遺伝子の第一エクソンにおけるCAGリピートが、6〜29の正常範囲から40〜180の病原性範囲まで伸長することに起因する。CAGリピート伸長(CAGexp)の長さは、発病の年齢に反比例する。Httは、偏在的であるが主にCNSのニューロンにおいて発現し、胚発生および神経保護作用を含む多様な生理学的役割を有する348kDaのタンパク質をコードする。CAGリピートは、HttのN末端領域におけるポリグルタミン(polyQ)配列に翻訳される。分子機能障害および臨床症状の膨大な情報にもかかわらず、CAGexpがHDを引き起こす精密なメカニズムはまだ充分に理解されていない、しかしながら、新たに出現した証拠は、HDが多変量障害であることを示唆している。
一態様では、遺伝子認識試薬が提供される。前記試薬は、3以上のリボース、デオキシリボース、または、核酸アナログ骨格残基を含む核酸若しくは核酸アナログ骨格、前記骨格残基に結合した二価核酸塩基配列、を含み、ここで、前記二価核酸塩基配列は、二本の核酸鎖上のリピート伸長疾患(repeat expansion disease)の伸長されたリピートの単位標的配列、若しくは単位標的配列の1以上の逐次反復に結合する。別の態様では、遺伝子認識試薬と薬剤的に許容される担体とを含む組成物が提供される。
本出願で特定される様々な範囲での数値の使用は、特に明示しない限り、規定された範囲内の最小値と最大値のどちらの前にも「約」が付けられるかのように近似として示される。このように、規定された範囲の上下のわずかな変動を使用しても、前記範囲内の値と実質的に同一の結果を達成することができる。また、別段の指示がない限り、範囲の開示は、最小値と最大値との間のすべての値を含む連続的な範囲としても意図される。本明細書で使用される場合に、単数形("a" および "an")は一以上を指す。
ここで、Rはアミノ酸側鎖である。アミノ酸側鎖の非限定例を図3に示す。グリシン(H2N−CH2−C(O)OH)は側鎖を有さない。
または、その塩を本明細書中で記載する認識試薬骨格に結合させることができる。グアニジン含有基は、グアニジン部分を含む基であり、100個未満の原子、50個未満の原子、例えば、30個未満の原子を有し得る。一態様において、グアニジン含有基は構造:
ここで、Lは、本明細書中で記載する任意の態様にかかるリンカー、例えば、非反応性脂肪族ヒドロカルビルリンカー、例えば、メチレン、エチレン、トリメチレン、テトラメチレン、またはペンタメチレンリンカーである。いくつかの態様では、グアニジン含有基は、構造:
ここで、nは1〜5であり、例えば、グアニジン基はアルギニンであってよい。
ここで、oは1〜20であり、R6の各々は、独立して、アミノ酸側鎖であり、R7は−OHまたは−NH2である。
ここで、XはSまたはOであり、nは1以上から6以下の整数であり、mは0以上から4以下の整数であり、R1およびR2は、各々独立して、H、グアニジン含有基、例えば、
R3は、Hまたは脱離基であり、一態様では、生体適合性および/または無毒であり、例えば、置換若しくは非置換(C1〜C8)アルキル、置換若しくは非置換(C3〜C8)アリール、(C3〜C8)アリール(C1〜C6)アルキレン(C1〜C8)カルボキシ、アミノ酸側鎖で任意に置換されていてもよい、グアニジン含有基、または、
ここで、Rは、独立して、核酸塩基であり、Rの各々は、同一であるか、または異なる核酸塩基であり得、
nは、1〜6の範囲の整数、例えば、1、2、3、4、5、または6であり、
各Bは、独立して、リボース−5−ホスフェート残基、デオキシリボース−5−ホスフェート残基、または核酸アナログ骨格残基であり、一態様において、立体構造的に予め組織化された核酸アナログ、例えばγPNAまたはLNAの骨格残基であり、
Lは、独立して、リンカー、例えば、非反応性リンカーまたは非反応性、非巨大リンカーであり、Lの各々は、同一であるまたは異なり得、そして
Arの各々は、独立して、2〜5環縮合多環式芳香族部分、例えば、2〜5縮合環を有する置換若しくは非置換アリールまたはヘテロアリール部分、例えば、限定されるものではないが、非置換若しくは置換ペンタレン、インデン、ナフタレン、アズレン、ヘプタレン、ビフェニレン、as−インダセン、s−インダセン、アセナフチレン、フルオレン、フェナレン、フェナントレン、アントラセン、フルオランテン、アセフェナントリレン、アセアントリレン、トリフェニレン、ピレン、クリセン、ナフタセン/テトラセン、プレイアデン、ピセン、またはペリレンであって、O、N、および/またはSなどの1以上のヘテロ原子で任意に置換されていてもよく、例えば、キサンテン、リボフラビン(ビタミンB2)、マンゴスチン、またはマンギフェリンであり、同一であるかまたは異なっていてもよく、いくつかの態様では同一である。いくつかの態様では、認識試薬が標的核酸の隣接配列とハイブリダイズする場合、各Arは、隣接認識試薬のAr基とスタッキングする。
Rの各々は独立して、核酸塩基であり、Rの各々は同一であるかまたは異なる核酸塩基であり得、
nは1〜6の範囲の整数、例えば、1、2、3、4、5、または6であり、
R1およびR2は、各々独立して、H、グアニジン含有基、例えば、
アミノ酸側鎖、例えば、
R10またはR11の一方、およびR12、R13、またはR14のうちの一つは、−L−R3であり、ここで、R3の各々は、独立して、2〜5環縮合多環式芳香族部分、例えば、2〜5縮合環を有する、置換若しくは非置換アリールまたはヘテロアリール部分、例えば、限定されるものではないが、非置換若しくは置換ペンタレン、インデン、ナフタレン、アズレン、ヘプタレン、ビフェニレン、as−インダセン、s−インダセン、アセナフチレン、フルオレン、フェナレン、フェナントレン、アントラセン、フルオランテン、アセフェナントリレン、アセアントリレン、トリフェニレン、ピレン、クリセン、ナフタセン/テトラセン、プレイアデン、ピセン、またはペリレンであって、O、N、および/またはSなどの1以上のヘテロ原子で任意に置換されていてもよく、例えば、キサンテン、リボフラビン(ビタミンB2)、マンゴスチン、またはマンギフェリンであり、同一であるかまたは異なっていてもよく、いくつかの態様では同一であり、ある場合には、認識試薬が標的核酸の隣接配列とハイブリダイズする場合、隣接認識試薬のR3基とスタッキングし、
ここで、Lはリンカー、例えば、非反応性リンカーまたは非反応性、非巨大リンカーであり、Lの各々は、同一であるかまたは異なり得、アミノ酸残基、または置換若しくは非置換アルキル、置換若しくは非置換アルケニル、置換若しくは非置換アルキニル、アリールアルキル、アリールアルケニル、アリールアルキニル、ヘテロアリールアルキル、ヘテロアリールアルケニル、ヘテロアリールアルキニル、ヘテロシクリルアルキル、ヘテロシクリルアルケニル、ヘテロシクリルアルキニル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクリル、シクロアルキル、シクロアルケニル、アルキルアリールアルキル、アルキルアリールアルケニル、アルキルアリールアルキニル、アルケニルアリールアルキル、アルケニルアリールアルケニル、アルケニルアリールアルキニル、アルキニルアリールアルキル、アルキニルアリールアルケニル、アルキニルアリールアルキニル、アルキルヘテロアリールアルキル、アルキルヘテロアリールアルケニル、アルキルヘテロアリールアルキニル、アルケニルヘテロアリールアルキル、アルケニルヘテロアリールアルケニル、アルケニルヘテロアリールアルキニル、アルキニルヘテロアリールアルキル、アルキニルヘテロアリールアルケニル、アルキニルヘテロアリールアルキニル、アルキルヘテロシクリルアルキル、アルキルヘテロシクリルアルケニル、アルキルヘレロ(herero)シクリルアルキニル、アルケニルヘテロシクリルアルキル、アルケニルヘテロシクリルアルケニル、アルケニルヘテロシクリルアルキニル、アルキニルヘテロシクリルアルキル、アルキニルヘテロシクリルアルケニル、アルキニルヘテロシクリルアルキニル、アルキルアリール、アルケニルアリール、アルキニルアリール、アルキルヘテロアリール、アルケニルヘテロアリール、アルキニルヘレロ(herero)アリールを含んでもよく、1以上の炭素、例えば、メチレンまたはメチリジン(−CH=)は、任意に、ヘテロ原子、例えば、O、S、若しくはN、置換若しくは非置換アリール、置換若しくは非置換ヘテロアリール、置換若しくは非置換ヘテロ環が中断若しくは末端にあってもよく、
そして、R10、R11、R12、R13、およびR14の残りは、各々独立して、H、1以上の近接アミノ酸残基、グアニジン含有基、アミノ酸側鎖、直鎖若しくは分枝(C1〜C8)アルキル、(C2〜C8)アルケニル、(C2〜C8)アルキニル、(C1〜C8)ヒドロキシアルキル、(C3〜C8)アリール、(C3〜C8)シクロアルキル、(C3〜C8)アリール(C1〜C6)アルキレン、(C3〜C8)シクロアルキル(C1〜C6)アルキレンであって、1〜50個のエチレングリコール部分を含むエチレングリコール単位で任意に置換されていてもよい、−CH2−(OCH2−CH2)qOP1、−CH2−(OCH2−CH2)q−NHP1、−CH2−(SCH2−CH2)q−SP1、−CH2−(OCH2−CH2)r−OH、−CH2−(OCH2−CH2)r−NH2、−CH2−(OCH2−CH2)r−NHC(NH)NH2、または−CH2−(OCH2−CH2)r−S−S[CH2CH2]sNHC(NH)NH2であり、ここで、P1は、H、(C1〜C8)アルキル、(C2〜C8)アルケニル、(C2〜C8)アルキニル、(C3〜C8)アリール、(C3〜C8)シクロアルキル、(C3〜C8)アリール(C1〜C6)アルキレンまたは(C3〜C8)シクロアルキル(C1〜C6)アルキレンであり、qは0〜50の整数であり、rは1〜50の整数であり、sは1〜50の整数である。
nは、1、2、3、4、5、6、7、または8を含む1〜8の範囲の整数であり、
mは、1,2、3、4、または5を含む1〜5、例えば1〜3の範囲の整数であり、
R2は、グアニジン含有基、例えば
アミノ酸側鎖、例えば、
R3は、非置換縮合環多環式芳香族部分、例えば、ペンタレン、インデン、ナフタレン、アズレン、ヘプタレン、ビフェニレン、as−インダセン、s−インダセン、アセナフチレン、フルオレン、フェナレン、フェナントレン、アントラセン、フルオランテン、アセフェナントリレン、アセアントリレン、トリフェニレン、ピレン、クリセン、ナフタセン/テトラセン、プレイアデン、ピセン、またはペリレンであり、
R11、R13、およびR14の各々は独立して、H、グアニジン含有基、例えば、
アミノ酸側鎖、または1以上の近接アミノ酸残基、例えば1以上のArg残基である。一態様において、R3はピレンである。
NMR、X線、および生化学的研究によって、rCAG−ヘアピン構造がカノニカルRNAデュプレックスと比較して比較的動的であり、A−A内部隆起が大振幅運動を示すことが明らかになった。道路の「深い穴」と類似した、すべての二つのカノニカルG−C/C−G塩基対での内部A−Aミスマッチ(図1(A))を含むそのような分子スカフォールドは、外因的リガンドの異なる生存可能な受容体様結合部位を提供する。rCAG−ヘアピン構造を標的とする比較的短い核酸リガンドが開発された(図1(B))。ヤヌス塩基(J塩基、すなわちJB)、E、I、およびF(図1(C))を使用し、これらは、立体構造的に予め組織化されたMPyPNA骨格を有する、RNA二重らせんの両鎖において核酸塩基と二価H結合相互作用を形成できる(図1(DおよびE))。本明細書中で記載するJ塩基は、合計で16であり、16すべての可能なRNA塩基対組み合わせと結合するように設計された、両面核酸認識要素のより大きなセットの一部である(図5A〜5C)。それらは、形状、サイズ、および化学官能性が均一である点で「ヤヌス−ウェッジ」を含む他のJ塩基とは、異なり、したがって、モジュラーフォーマットと組み合わせて、RNA塩基対の任意の組み合わせを認識することができる。
二価認識デザイン概念の実行可能性を評価するために、四つのrCAGリピートを含むRNAデュプレックスと結合したリガンドLG1のMDシミュレーションを実施した。C末端リジン残基を除外し、MP側鎖をメチル基と置換して(MeγPNA)、コンピュータによるモデル化を単純化した。CEO、AIA、およびGFCトライアドを構築し、6−31基底系によって最適化し、各RNAおよびMeγPNA骨格上にグラフトした。結合したRNA−LGl−RNA複合体の構造を、AmbertoolのNABモジュールを使用して創出した。最終構造を水分子およびイオンで溶媒和させ、エネルギーを最小化し、100nsについてシミュレーションした。結果として得られた複合体はシミュレーション全体にわたってかなり安定なままであり、四つの別個のLG1リガンドが二つのRNA鎖間にぴったりと、はまっている(図6(A))。H結合の数は、CEOおよびGFCトライアドの各々については5であり、AIAについては4であるが(図6(B))、シミュレーションの間変わらないままであった(図6(C))。しかしながら、4より少ないLG1リガンドとの結合をシミュレートする試みは失敗に終わった。複合体が解かれ、末端塩基対が不安定であるために一部はねじ曲がった構造を形成した(図6(DおよびE))。
J塩基EおよびFを、対応するJB−MPγPNAモノマー1〜3と共に合成した(図7)。J塩基Iは市販されているので調製しなかった。EおよびFを、それぞれ、スキーム1(図8)およびスキーム2(図9)にしたがって合成した。化合物5〜9におけるBoc保護/脱保護配列は、NBS反応の化学収率の向上およびその後の縮合および環化ステップにおける副反応の抑制に好ましいことが判明した。Stilleカップリングが円滑に進行するためには、12のさらなる保護が好ましいことが見いだされた。これは、Boc無水物を用い、高温で実施して達成された。みかけの嵩高さにもかかわらず、EのMPγPNA骨格へのカップリングまたはMBHA樹脂上の対応するモノマーのアセンブリにおいて何ら問題はなかった。F、4−アミノ−2−(メチルチオ)ピリジン−5−カルボニトリル(17)のコア構造を、公開されたプロトコルにしたがって調製した。その後にシアノ基からアミジンへ変換し、続いてBoc保護することで21を得た。様々な条件下で環外アミンを大過剰のBoc無水物で完全に保護することを試みたが失敗に終わった。これにより、カラムクロマトグラフィーによって分離するのが困難な異なる数のBoc基を有するTLC上の複数のスポットの形成に至ったからである。この課題に取り組むために、二ステップでBoc保護を実施した。22を酸化および加水分解に供し、続いてアルキル化および水素化分解を行ってFを得た。一旦調製されたら、E(15)、F(26)、およびI(27)をMPγPNA骨格にカップリングさせた(図10,スキーム3)。Alloc保護基の除去により、所望のモノマー1〜3を得た。リガンドLG1、LG2、およびLG3を、LG2と逆(平行)配向であるLG2Pと共に、PALリンカーおよびHBTUをカップリング試薬として使用してMBHA樹脂上で調製した。LG2Pは、親LG2リガンドがrCAGリピートを結合するのに最も高い見込みを示したので、負の対照として含めた。リジン残基をC末端で組み入れて、水溶解度を改善した。最後のモノマーカップリングが完了したら、リガンドを樹脂から切断し、ジエチルエーテルで沈殿させ、RP−HPLCによって精製し、MALDI−TOF質量分析によって確認した(表D)。
一連のモデルRNA標的を結合研究のために選択した(図11)。R11Xシリーズは24のrCXGリピートを含み(図11(A))、これは、二次ヘアピン構造をとると、リガンドに対して11個の結合部位を提供した(図11(B))。R11Aは完全マッチ(A−A)を含み、その一方で、R11UおよびR11Cはリガンド結合のU−UおよびC−C各々のミスマッチを含んでいた。R11G(X=G)は確認されなかった。なぜなら、それはG−四本鎖並びにヘアピン構造を形成することが示されており、これは実験結果の解釈を混乱させ得るからである。LG2結合部位に下線を施した、一本鎖RNA標的であるWS(ワトソン鎖)およびCS(クリック鎖)(図11(C))、並びに単一リガンド結合部位を含む二本鎖ヘアピンHP(図11(D))も調べた。サンプルは、プレアニーリングされたRNAを0.1×PBS緩衝液(1mM NaPi、13.7mM NaCl、0.27mM KCl、pH7.4)中37℃で各リガンドと共にインキュベートすることによって調製した。この特定の緩衝液を我々の初期スクリーンに基づいて選択し、ここで、我々は、R11Aが安定なヘアピン構造をとることと、リガンドが結合できることを見出した。
UV−Visおよび円偏光二色性(CD)の組み合わせを用いて、リガンドの結合特性を決定した。UV−Vis測定によって、三つのリガンドすべてがR11Aと結合できることが明らかになった。それらの相互作用の証拠は、252および330nmでの[R11A+リガンド]の吸収における淡色効果および深色移動から集めることができる。275〜375nmレジームにおけるUV吸収は、E塩基のπ−π*遷移に相当する。この発見は、約270nmのシグナルにおける顕著な増加および赤方偏移を明らかにするCDデータによって裏付けられた。このシリーズのうち、LG2はCD振幅において最大の相違を示した。LG2のR11AでのCD滴定は、R11Aのリガンド結合部位の予測される数と一致する11:1比で飽和点に達した(図12)。R11Aはリガンドの添加前に熱によりアニーリングされるので、均一なヘアピン構造をとるという仮説を立てた、しかしながら、分子内および分子間折り畳みの他の組み合わせも可能である。これに対して、LG2のミスマッチR11U(図13(A))およびR11C(データは不掲載)、一本鎖WSおよびCS(図13(B))、単結合部位を含む二本鎖HP(図13(C))、またはミスマッチオリエンテーションLG2PとR11A(図13(D))とのインキュベーション後にCDシグナルにおいて有意差は観察されなかった。R11UおよびR11Cミスマッチの結果は、あらゆる点でほぼ同一であったので、これ以降は塩基ミスマッチに関する考察のすべてはR11Uに集中する。まとめると、これらの結果から、リガンドとRNAとの間の相互作用は、配列特異的および配向特異的方式で起こり、一本鎖RNA標的よりも二本鎖が優先され、孤立したものよりも複数の連続した結合部位を有するものが有利であることがわかる。
UV−VisおよびCDの知見をさらに実証するために、330nm(E塩基のλmax)での励起後にRNA標的の有無でリガンドの蛍光シグナルを測定した。LG1およびLG2と比較してLG3の著しい蛍光クエンチングが観察された。蛍光シグナルのそのような劇的な減少は、光誘起電子移動クエンチングのためであり得、これは、フルオロフォア(E)が二つの他のJ塩基間にスタッキングされるのでLG3にとって最も効率的であると予想される。この解釈は、LG3の蛍光シグナルが加熱することにより完全に回復されるという観察結果(データは不掲載)と一致する。三つのリガンドすべてで、発光シグナルは、R11Aの添加によりさらに減少したが、LG2で最も劇的であり、LG1およびLG3でそれぞれ35および33%であるのに対してLG2では60%の減少であった。LG2とR11U、[WS+CS]、HP、およびLG2PとR11Aのインキュベーションにより類似した蛍光クエンチングパターンが観察された(図14)が、LG2とR11Aの蛍光クエンチングパターンほど劇的ではなかった。関連するクラスの二環式ピリミジンアナログで同様の観察を行い、これらの縮合環フルオロフォアの蛍光収率が局所環境に対して感受性が高いことが示された。リガンドのRNAに対する非特異的結合が蛍光クエンチングに至り得るという仮説を検証するために、各RNA標的をペンタミジンとインキュベートした後、LG2を添加し、また逆も行った。データから、LG2とR11Uおよび[WS+CS]の蛍光シグナル、並びにLG2PとR11Aの蛍光シグナルが、抑制されたままであったLG2とR11Aの場合(図14、挿入画)を除いて、完全に回復されたことがわかった。この結果は、ペンタミジンとは異なるモードによる、おそらくは規定の二価H結合相互作用を介してR11Aと結合するLG2と一致する(図1BおよびC)。
LG2の結合モードの洞察を得るために、LG2、R11A、および組み合わせで用いて一連の多核および多次元NMR実験を実施した。サンプルは、9:1体積比のH2O:D2Oを含有する以前と同一である0.1×PBS緩衝液中で調製した。NOESYデータを300、200、および100msの混合時間で集めて、プロトン間距離を得、一方、COSY実験を実施して、各残基のプロトンスピンシステムをマッピングした。LG2とR11Aとの間のH結合相互作用は、塩基対開放に起因するカノニカルG−C/C−G対のイミノプロトンシグナルの線幅拡大およびダウンフィールド化学シフト、並びにリガンドとRNAとの間のH結合の形成に起因してイミノプロトンシグナルの新規セットの出現をもたらすことが予想された。CDデータと一致して、1H−NMR実験によって、R11Aは12.35ppmでのシャープなイミノプロトンシグナルにから明らかなように、0.1×PBS緩衝液中で安定なヘアピン構造をとることが明らかになった。可変温度測定によって、この化学シフト帰属がさらに裏付けられ、温度の上昇と共にピーク強度が徐々に減衰し、その一方で、交換不可能なプロトンのピーク強度はほぼ一定のままであったことが示された。核酸塩基プロトンの部分帰属をNOESY実験によって行った。予想されるように、LG2の添加により、R11Aのイミノプロトンシグナルが徐々に拡大され、ダウンフィールドシフトした(図15)。さらに、C4−NHおよびG2−NHの化学シフトは著しく影響を受け、このことは、それらのリガンドとの相互作用を示すものである。努力したにもかかわらず、反復配列における縮重のために、R11Aに対してLG2を滴定する際にA6−NHの化学シフトの帰属、ひいてはモニタリングはできなかった。それにもかかわらず、結果は、G−C/C−G塩基対開放がリガンドによって媒介されることを示す。しかしながら、リガンドとRNAとの間のH結合形成について予想されるように、10〜20ppmレジームにおいて任意の新規イミノプロトンシグナルは観察されなかった。
LG2およびR11Aで観察されるような、リガンドのRNAとの弱く一時的な相互作用は重要な生物学的応答をもたらす可能性が低い。LG2の結合親和性をさらに改善するために、第二のLG2誘導体、LG2N(図16(A))を合成し、これはC末端チオエステルおよびN末端シスチンを含んでいた。このリガンドは、第二世代N−アシル尿素リンカーを使用して調製した。二重機能プローブデザインは、二つの官能基がジスルフィド結合の還元に際して自発的に互いに反応するのを防止する際にMPγPNAの立体構造的にプレオーガナイゼーションを利用する。シスチン基を用いて、プローブ取り扱いをよりよく制御した。以前の研究で、全ての天然の核酸塩基を含む同じ長さのリガンドは、生理的温度(37℃)で約1時間の減少した(非環式)半減期を有することが明らかになった。LG2N*について同様の半減期が予想された。図16(B)は、ジスルフィド結合の還元後のLG2Nの反応経路、還元性細胞内環境におけるLG2Nの予想された化学状態を示す。RNA標的の存在下で、リガンドは、分子間塩基スタッキング(ステップ2)の結果として、隣り合うRNA標的の核酸塩基と一時的二価H結合相互作用を形成することが予想された。ジスルフィド結合が切断されると、リガンドは鋳型介在性NCLを受けて、RNA鋳型をよりしっかりと結合する連結された生成物を形成する(ステップ3)。RNA標的の非存在下で、リガンドは分子内NCL反応を受けて環状生成物を形成することによって自己失活する(ステップ4)。
LG2NがrCAGexpを正常なリピートから区別できるか否かを判定するために、競合的結合アッセイを実施した。正常(R24A、n=24、R11Aと同じ)および病原性(R127A、n=127)範囲内のr(CAG)nリピートをミスマッチr(CUG)96対照(R96U)と共に含む二つのRNA標的を用いた。各ヘアピンモチーフを採用すると、これらのRNA転写産物はLG2Nについて11、62、および47の結合部位を提供する。二セットのサンプルを、一方は0.1×PBS中で、もう一方は生理学的に関連する緩衝液(10mM NaPi、150mM KCl、2mM MgCl2、pH7.4)中で調製した。両セットにおいて、R24A(100nM鎖濃度、1.1μM結合部位)およびR127A(18nM鎖濃度、1.1μM結合部位)の等モル混合物を様々な濃度のLG2Nと、4MPおよびTCEPと共に37℃で24時間インキュベートした。TCEPを含めて、ジスルフィド結合が完全に還元されることを確実にした。反応混合物をアガロースゲルにより分析し、可視化のためにSYBR−Goldで染色した。図19の調査によって、レーン2〜5において一番下のバンドと比べて、上の二つのバンドの消失速度が速いことによって明らかなように、LG2Nは、R24AよりもR127Aに対して優先的に結合することが明らかになった。そのような結合事象は、還元剤の存在下、および完全にマッチしたRNA標的でのみ起こった。なぜなら結合の証拠は4MPおよびTCEPの非存在下(レーン6とレーン1を比較)およびミスマッチR96U(レーン8とレーン7を比較)で観察されなかったからである。リガンドとRNAの複合体化について予想されるように、シフトしたバンドが形成されることは観察されなかった。このことは、SYBRGoldがRNA−リガンド複合体をインターカレートできなかったことを示唆する。リガンド結合はRNAの立体構造において劇的な変化を引き起こすことが知られていることを考慮すると、この観察は以外ではなかった(図6)。これに対して、生理学的に関連するイオン強度で起こるリガンド結合の証拠は観察されず(図20)、そのような条件下で、RNAヘアピンは鋳型介在性リガンドオリゴマー化を媒介できなかったことを意味する。
UV溶融分析
すべてのUV溶融サンプルは、リガンドをRNA標的と0.1×PBS緩衝液中、表示された濃度にて混合することによって調製し、90℃で5分間インキュベーションすることによってアニーリングし、続いて室温まで徐々に冷却した。熱電気的に制御されたマルチセルホルダーを備えたAgilent Cary UV−Vis300分光計を用いてUV溶融曲線を集めた。260nmにて、加熱実験では25℃から95℃まで、そして冷却実験では95℃から25℃まで、どちらも1分あたり1℃の割合でUV吸収をモニタリングすることによって、UV溶融スペクトルを集めた。冷却および加熱曲線はほぼ同じであり、ハイブリダイゼーションプロセスは可逆性であることを意味する。記録されたスペクトルを、20点隣接平均化アルゴリズム(20-point adjacent averaging algorithm)を使用して平滑化した。溶融曲線の一次導関数を利用して、複合体の溶融温度を決定した。
サンプルを0.1×PBS緩衝液中で調製した。すべてのスペクトルは、1cmパス長のキュベット中、25℃で、200〜375nmの間で100nm/minの割合で集めた、少なくとも15回のスキャンの平均を表す。緩衝溶液からのCDスペクトルを、サンプルスペクトルから差し引き、これを次に、5点隣接平均アルゴリズムによって平滑化した。定常状態蛍光測定。リガンドをRNAと0.1l×PBS緩衝液中、表示された濃度での混合によってすべての定常状態蛍光サンプルを調製し、90℃で5分間インキュベーションすることによってアニーリングし、続いて37℃まで徐々に冷却した。サンプルを37℃で1時間インキュベーションした後、測定をした。定常状態蛍光データを、Cary Eclipse Fluorescence分光計によって25℃で集めた。(εex=330nm、εem=340〜600nm)。
R24AをIDTから購入した。R127A[r(CAG)127]およびR96U[r(CUG)96]を先に記載したようにして調製した。R24A、R126A、およびR96Uを0.1×PBS緩衝液中で調製し、90℃で5分間加熱することによってアニーリングし、続いて室温まで徐々に冷却した。リガンドおよびRNAを表示された濃度で混合し、37℃で24時間インキュベートした。サンプルを次いで1×トリス−ホウ酸塩緩衝液を用いて2%アガロースゲル上にロードし、100Vにて25分間、電気泳動法で分離した。ゲルをSYBR−Goldで染色し、UV−Transilluminatorで可視化した。
手順は、添付した、本明細書中に組み込まれる補足情報に提示されている。
すべての出発物質および化学物質は、特に記載しない限り、商業的供給業者から購入し、さらに精製することなく使用した。すべての反応は、特に記載しない限り、無水条件下で乾燥溶媒を用い、窒素雰囲気下で実施した。真空中での溶媒の除去とは、高真空ポンプに取り付けたロータリーエバポレーターを用いた蒸留を指す。固体、シロップ、または液体として得られた生成物を高真空下で乾燥させた。分析的薄層クロマトグラフィーをあらかじめコーティングしたシリカプレート(60F−254、厚さ0.25mm)上で実施し、化合物を、UV光によるかまたはニンヒドリン若しくはヨウ素での染色、または現像手段としての熱によって可視化した。NMRスペクトルを、300または500MHzのいずれかで、溶媒としてのCDCl3、DMSO、およびD2O並びに内部標準としてのTMSを用いて記録した。多重度を説明するために以下の略号を使用した、s=一重項、d=二重項、t=三重項、q=四重項、m=多重項、ddt=三重項の二重項の二重項、dt=三重項の二重項、td=二重項の三重項、ABq=AB四重項、dd=二重項の二重項、tt=三重項の三重項、br=ブロードwtc。ESI−ESI−TOF質量分析器およびDART分析器を使用して高分解能質量分析法(HRMS)を実施した。ESI−Ion Trap−MS質量分析器を用いて低分解能質量分析(LRMS)を実施した。特に明記しない限り、RP−HPLCでのオリゴマー精製については1.0mL/minの流量にて、40分で95%H2O(0.01%TFA)から95%MeCN(0.01%TFA)への線形溶出勾配(方法A)でC18(15cm×2.1mm、5μm粒子)カラムを使用した。MALDIスペクトルは、TOF/TOF分光計を使用して測定した。吸収プロファイルをUV−Vis分光光度計で記録した。円偏光二色性(CD)スペクトルをSpectropolarimeterで記録した。蛍光(発光)を蛍光Spectrophotometerで記録した。
C末端リジン残基をγPNAから除外し、MP側鎖をメチル基と置換した(MeγPNA、公開されたX線結晶構造、PDB−ID3PA0)。CEG、AIA、およびGFCトライアドを、キメラ1を用いて構築し、ガウス分布で設定されたHF/6−31G*基準により最適化した。結合したRNA−HD1−RNA複合体のらせん構造は、AmbertoolのNABモジュールを使用してトライアドから創出され、結晶構造からの修飾MeγPNA骨格をらせん構造上にグラフトした(図2Aに示すとおり、初期構造)。RNAが四つのrCAGリピートを含むデュプレックスであり、RNAに結合したHD1リガンドの数が1から4まで変動する四つのそのようなRNA−HD1−RNA複合体が得られた。各RNA−(HDl)n−RNA複合体をTIP3P4水分子で溶媒和させ、イオンを付加して、電荷を中和した。システムをエネルギー最小化し、次いでRNAおよびHD1リガンドの原子に関して25Kcal/mol/Åの高調波抑制下で300Kまで加熱した。抑制を一連の六回の短いシミュレーションにおいて徐々に解除し、最終的に抑制されていないNPTシミュレーションを、300Kおよび1バールの圧力で100ns、それぞれNose−HooverサーモスタットおよびParinello−Rahmanバロスタットを使用して実施した。静電相互作用は、粒子メッシュEwald法を使用して処理し、すべてのシミュレーションは、χOL3修正付GROMACS Amber99−parmbsc0力場をRNAに使用して実施し、一般的amber力場を使用して、HD1リガンドの力場パラメータを創出した。
1gのMBHA樹脂(1mmol/g、Peptide International、RMB−2100−PI)を反応容器中のDCMに1時間浸し、次いでDCM(3×)およびDCM中5%DIEA(3×)で洗浄した。図21を参照。Kaiser試験によってアミン基が中和されたことを確認したら(青色)、15mLカノニカル管中に以下の溶液を順次添加した、3.5mLのNMP、450μLの溶液A、460μLの溶液B、および550μLの溶液C。混合物を10秒間ボルテックスし、3分間放置した後、反応容器中の樹脂に添加した。穏やかに振盪しながら、反応を1時間進行させた。反応混合物を陽空気圧(possitive air pressure)で廃棄し、樹脂をDMF(3×)、DCM(3×)、DCM中5%DIEA(1×)、およびDCM(3X)で洗浄した。キャッピング溶液を反応容器に添加することによって樹脂をキャッピングし、容器を45分間穏やかに撹拌した(2X)。最後のキャッピング溶液を廃棄した後、樹脂をDCM(3×)で洗浄し、キャッピングの完了をKaiser試験によって確認した(淡黄色)。
溶液B:913μLのピリジン中87μLのDIEA(0.500M)
溶液C:750μLのNMP中55mgのHATU(0.201M)
キャッピング溶液(Ac2O/NMP/ピリジン:112/2):2mL Ac2O、4mL NMP、および4mLピリジン
樹脂をDMF中20%ピペリジン溶液(2×)でそれぞれ7分間処理し、続いてDMF(3×)およびDCM(3×)で洗浄することによって、Fmoc保護基を除去した。Kaiser試験によってFmocが首尾よく除去されたことを確認(青色)したら、以下の材料を混合することによってカップリング溶液を調製した、3mLの0.2Mモノマー溶液、1.5mLの0.52M DIEA溶液、および1.5mLの0.39M HBTU溶液。混合物を3分間活性化した後、樹脂に添加した。反応容器を穏やかに撹拌しながら、反応を30分間進行させた。反応の完了をKaiser試験によって確認した(淡黄色)。樹脂をDMF(3×)、5%DIEA溶液(1×)、およびDCM(1×)で洗浄し、キャッピング溶液を樹脂に添加することによって未反応アミンをキャッピングし、反応容器を30分間穏やかに撹拌した。キャッピング溶液を除去したら、樹脂を20%ピペリジン(2×)、DMF(2×)、およびDCM(2×)で洗浄した。
DIEA溶液:3.638mLのDMF中364μLのDIEA(0.52M)
HBTU溶液:5mLのDMF中740mgのHBTU(0.39M)
キャッピング溶液:(Ac2O/NMP/ピリジン:1/25/25vol)
Fmoc保護基は、樹脂をDMF中20%ピペリジン(50mg樹脂に対して0.5mL)溶液(2×)で各々7分間処理し、続いてDMF(3×)およびDCM(3×)で洗浄することによって除去した。Fmoc脱保護はKaiser試験によって確認した(青色)。
FmocがKaiser試験によって首尾よく除去されたことを確認したら(青色)、樹脂をDMF(4×)およびDCM(5×)で洗浄した。カップリング溶液は、以下の材料を混合することによって調製した、150μLの0.2Mモノマー溶液、75μLの0.52M DIEA溶液、および75μLの0.39M HBTU溶液。混合物を10分間活性化した。樹脂をピリジン(1×)で洗浄した後、モノマー溶液を樹脂に添加した。反応容器を穏やかに撹拌しながら、反応を2〜4時間進行させた。反応の完了は、Kaiser試験によって確認した(淡黄色)。樹脂をDMF(3×)およびDCM(3×)で洗浄した。
未反応アミンを新たに調製したキャッピング溶液でキャッピングした。キャッピング溶液(1:25:25、無水酢酸:NMP:Py)を樹脂に添加し、反応容器を4分間撹拌した。樹脂をDMF(4×)およびDCM(5×)で洗浄した。
最終Fmoc脱保護ステップ後、樹脂をDMF(5×)およびDCM(8×)で洗浄した。樹脂を真空下で15分間乾燥させた。乾燥樹脂に、新たに調製した95%TFA:5%m−クレゾール(50mg樹脂に対して0.6mL)を添加し、反応容器をスタンドバイモードで保持した。室温で1時間後、TFA溶液をカノニカル遠心分離管中に集めた。再度、切断溶液(50mg樹脂に対して0.5mL)を樹脂に添加し、反応容器を30分間放置した。TFA溶液を先に集めた溶液と組み合わせた。
集めたTFA溶液に、冷乾燥ジエチルエーテル(−60℃、14mL)を添加し、振盪した。30分以内に沈殿が生じた。沈殿したオリゴマーを遠心分離により集め、冷ジエチルエーテル(2×)で洗浄した。
粗オリゴマーを0.5mLの95%水、5%アセトニトリル、および0.1%のTFA中に溶解させた。結果として得られた溶液を逆相分析カラムによって精製した。
パラジウムテトラキス(トリフェニルホスフィン)(28.22mg、24.42μmol)をフェニルシラン(0.12mL、0.98ミリモル)およびアリルモノマー29a(0.60g、0.49ミリモル)の無水ジクロロメタン(10mL)中混合物に室温で添加した。出発物質の対応する酸への完全な変換が15時間にわたるTLC(溶離液:EA:Hex(SO:SO)、29aのRf0.6、生成物のRf=0.0(ドラッギング))により観察された。反応混合物にシリカゲルを室温で添加し、そして溶媒をロータリーエバポレーターで除去した。シリカゲル吸収粗生成物をフラッシュシリカゲルクロマトグラフィーにより精製して、所望の生成物を得た。収量:0.44g、7S%。1H NMR(S00.13 MHz,DMSO−d6,回転異性体):δ 1.08/1.09(s/s,9H),1.25−1.28(m,18H),1.37−1.38(m,18H),1.41/1.6S(s/s,9H),3.12−3.64(m,13H),3.77−3.90(m,2H), 3.90−4.00(m,2H),3.99−4.4.34(m,4H),7.21−7.49(m,5H),7.54−7.79(m,2H),7.89(d,J=7.2 Hz,2H),8.55/8.64(s/s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6,回転異性体):δ 27.2−27.6(18C,tBu),35.8,46.7,54.9,59.7,60.6/60.6(2C),65.6/65.6,69.6/69.6,69.8/69.9,70.4/70.4,72.2/72.2,82.1(3C),82.2,83.2,83.4,86.2,108.1,120.1(2C),125.2,127.0(4C),127.6(4C),140.7(2C),143.8/143.8,147.9,149.2/149.3,149.3,149.5,149.7,155.0/155.9,156.3/156.5,162.3,166.6/166.6、HRMS:[C61H85N7O17+H]のm/zの計算値:1188.6080、実測値:1188.6071。
化合物1についての上記の手順を用い、出発物質としての化合物29b(3.10g、4.39ミリモル)から出発して、この化合物を調製した。TLC(溶離液:MeOH:DCM(5.95)、29bのRr=0.2、2のRf=0.0)。収量:2.22g、76%。1H NMR(300.13 MHz,DMSO−d6):δ 1.09(bs,9H),3.11−3.52(m,15H),3.87−3.96(m,2H),4.24(dd,J=13.4,5.4 Hz,4H),7.19−7.44(m,SH),7.69(d,J=7.5 Hz,2H),7.89(d,J=7.4 Hz,2H),10.71−10.75(m,1H),11.06(bs,1H),12.46(bs,1H)、13C NMR(126 MHz,DMSO−d6,回転異性体):δ 27.8(3C),47.2/47.2,61.1(3C),65.6/66.0,70.1(2C),70.3/70.4,70.9(3C),72.7,107.8,120.6−128.1(10C),139.7/140.1,141.2(2C),144.3,151.8,156.3,164.6,170.9、HRMS:[C34H42N4O10+H]のm/zの計算値:667.2979、実測値:667.2988。
化合物1についての上記の手順を用い、出発物質としての化合物29c(2.50g、2.00ミリモル)から出発して、この化合物を調製した。TLC(溶離液:EA:Hex(50:50)、29cのRf=0.6、3のRf=0.0(ドラッギング))。収量:1.94g、80%。1H NMR(300.13 MHz,DMSO−d6,回転異性体):δ 1.08(s,9H),1.35(s,9H),1.36(s,9H),1.41/1.42(s/s,18H),3.20−3.62(m,20H),3.77−4.15(m,4H),4.18−4.34(m,4H),4.82−5.35(m,2H),7.17−7.46(m,5H),7.70(d,J=7.0 Hz,2H),7.88(d,J=7.5 Hz,2H),8.93/8.95(s/s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6,回転異性体):δ 27.3−27.5(18C,tBu),46.7/46.7,60.6(2C),60.7(2C),69.6(2C),69.7,69.9,70.4(3C),72.2,82.1,82.1,82.9,82.9,83.3,83.4,108.0,110.8,118.4,120.1(2C),123.1,125.2/125.3,127.0(4C),127.6(4C),140.7(2C),143.8,146.9,149.5,156.6,157.1,162.4/162.4.HRMS:[C60H85N7O19+H]のm/zの計算値:1208.5980、実測値:1208.5959。
氷浴中、2−アミノ−4−クロロピリジン(1)(50.00g、0.39mol)の556mLの無水THF中撹拌溶液に、Et3N(81.37mL、0.58mol)を10分にわたって不活性雰囲気中で滴下した。同じ温度でさらに10分間撹拌した後、THF(100mL)中Boc2O(84.88g、0.39mol)を30分にわたって滴下し、続いて触媒量のDMAP(4.75g、0.04mol)を添加した。室温で一晩撹拌した後、反応混合物を酢酸エチル(200mL)で希釈した。組み合わせた有機層を焼結漏斗でろ過し、ろ液をNaHCO3の飽和溶液で洗浄し、Na2SO4で乾燥させた。溶媒をロータリーエバポレーターで除去して、純粋な生成物を得た。収量:67.59g、76%。1H NMR(300.13 MHz,CDCl3):δ 1.54(s,9H),6.95(dd,J=5.5,1.8 Hz,1H),8.12(d,J=1.9 Hz,1H),8.24(d,J=5.5 Hz,1H),9.96(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 28.5(3C),81.5,112.9,118.7,146.2,148.3,152.6,153.8、ESI−MS:[C10H13ClN2O2+H]のm/zの計算値:229.1、実測値:229.2。
ドライアイス−アセトン浴(−78℃)中、(4−クロロ−ピリジン−2−イル)カルバミン酸tert−ブチルエステル(30.50g、0.13mol)の534mL
の無水THF中撹拌溶液に、n−BuLi(24.86mL、0.27mol、11M)を不活性雰囲気中、1時間にわたって滴下した。さらに30分間−78℃で撹拌した後、ClCO2Et(13.93mL、0.15mol)を10分間にわたって滴下した。反応進行をTLCでチェックし、出発物質が完全に消費された後、反応混合物を1%HCl(200mL)でゆっくりとクエンチした。結果として得られた反応混合物を、10%HCl(50mL)およびEA(200mL)を入れた分液漏斗に移した。粗生成物をEAで水層から抽出し、組み合わせた有機層をNa2SO4で乾燥させた。結果として得られた溶媒をロータリーエバポレーターで除去し、得られた粗物質をカラムクロマトグラフィーによって精製して、2−((tert−ブトキシカルボニル)アミノ)−4−クロロニコチン酸エチルを淡黄色固体として得た。収量:29.68g、74%。1H NMR(500.13 MHz,CDCl3):δ 1.40(t,J=7.2 Hz,3H),1.50(s,9H),4.41(q,J7.2 Hz,2H),7.08(d,J=5.2 Hz,1H),8.31(d,J=5.2 Hz,1H),8.62(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 14.1,28.3(3C),62.3,81.8,120.8,144.7,149.9,150.0,151.3,151.8,164.9、HRMS:[C13H17ClN2O4+Na]のm/zの計算値:323.0774、実測値:323.0777。
2−((tert−ブトキシカルボニル)アミノ)−4−クロロニコチン酸エチル(29.00g、0.10mol)を濃HCl(52.60mL、0.58mol)とジクロロメタン(64mL)との混合物に室温で添加した(ゆっくり添加)。室温で2時間後、出発物質の完了をTLCによってモニタリングし、次いで反応混合物を0℃に冷却し、2N NaOH溶液で中和した。反応混合物を、100mLのジクロロメタンを入れた分液漏斗に移し、化合物を水層から有機層中に抽出した。組み合わせたジクロロメタン層を無水Na2SO4で乾燥し、濃縮した。粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製して、純粋な2−アミノ−4−クロロニコチン酸エチルを白色固体として得た。収量:18.38g、95%。1H NMR(500.13 MHz,CDCl3):δ 1.41(t,J=7.1Hz,3H),4.42(q,J=7.1 Hz,2H),6.13(bs,2H),6.68(d,J=5.3 Hz,1H),7.97(d,J=5.4 Hz,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCCl3):δ 14.2,61.8,108.3,115.9,145.6,151.2,159.9,166.4、HRMS:[C8H9ClN2O2+H]のm/zの計算値:201.0431、実測値:201.0422。
7(18.00g、0.09mol)の無水DMF中溶液に、NBS(18.36g、0.10mol)を室温で数回に分けて添加した。結果として得られた溶液のTLCによる分析から、8が4時間後に完全に消費されたことが分かった。結果として得られた混合物を水(100mL)でクエンチし、酢酸エチル(EA、2×100mL)で抽出した。組み合わせた有機層を塩水で洗浄し、無水硫酸ナトリウム(Na2SO4)で乾燥させ、ろ過し、濃縮した。結果として得られた残留物をシリカゲル上カラムクロマトグラフィー(100〜200メッシュ)によって精製して、2−アミノ−4−クロロ−5−ブロモニコチン酸エチル(8)のみを淡黄色固体として得た。収量:22.07g、88%。1H NMR(500.13 MHz,CDCl3):δ 1.41(t,J=7.1 Hz,3H),4.43(q,J=7.1 Hz,2H),5.86(s,2H),8.24(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 14.2,62.3,109.7,110.4,144.4,152.8,158.0,165.9.HRMS:[C8H8BrClN2O2+H]のm/zの計算値:278.9536、実測値:278.9541。
8(20.00g、71.55ミリモル)の無水ジクロロメタン(CH2Cl2)中氷冷溶液に、ジイソプロピルエチルアミン(DIEA、27.42mL、157.41ミリモル)を添加し、続いてトリホスゲン(7.64g、25.76ミリモル)を添加した。0℃で1時間後、tert−ブタノール(33.96mL、357.76ミリモル)を5分間にわたって添加し、そして氷浴を取り外した。反応の進行をTLCによってモニタリングし、室温で24時間後、出発物質は完全に消費された。結果として得られた混合物を水でクエンチし、そしてジクロロメタンで抽出した(CH2Cl2、2×100mL)。集めた有機層を塩水、重炭酸ナトリウム(NaHCO3)の飽和溶液で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、ろ過し、濃縮した。得られた粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(100〜200メッシュ)により精製して、2−((tert−ブトキシカルボニル)アミノ)−4−クロロ−5−ブロモニコチン酸エチル(5)を白色固体として得た。収量:13.58g、50%。1H NMR(500.13 MHz,CDCl3):δ 1.41(t,J=7.2 Hz,3H),1.50(s,9H),4.42(q,J7.2 Hz,2H),8.37(s,1H),8.57(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 14.1,28.3(3C),62.6,82.2,113.9,116.3,119.9,144.0,149.5,151.7,164.2、HRMS:[C13H16BrClN2O4+H]のm/zの計算値:379.0060、実測値:379.0063。
41.41mLの1M水酸化ナトリウム(118.53ミリモル)を9(10.00g、26.34ミリモル)のエタノール:THF(3:1、76mL)中混合物に0℃で15分にわたって添加した。TLCでモニタリングして出発物質が完全に消費された後、反応混合物を濃縮した。得られた粗物質を、水(200mL)を入れた分液漏斗に移し、EA(1×100mL)で抽出し、有機層を廃棄した。水層に、10%HCl(200mL)およびEA(100mL)を慎重に添加した(PH約3〜5)。化合物をEA層中に抽出し、無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮して、純粋な5−ブロモ−2−((tert−ブトキシカルボニル)アミノ)−4−クロロニコチン酸(10)を淡黄色固体として得た。収量:6.02g、65%。1H NMR(500.13 MHz,DMSO−d6):δ 1.43(s,9H),8.69(s,1H),9.88(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6):δ 27.9(3C),80.1,116.3,124.5,141.2,148.8,150.8,152.6,164.1、HRMS:[C11H12BrClN2O4+H]のm/zの計算値:350.9747、実測値:350.9712。
10(5.00g、11.07ミリモル)の無水ジメチルホルムアミド(DMF、28mL)中氷冷溶液に、N−メチルモルホリン(NMM、1.64mL、14.94ミリモル)を添加し、続いてギ酸クロロエチル(chloroethylformate)(1.63mL、13.84ミリモル)を添加した。0℃で1時間後、Boc−グアニジン(2.38g、14.94ミリモル)を一度に添加し、そして氷浴を取り外した。反応の進行をTLCによってモニタリングし、室温で24時間後、出発物質は完全に消費された。結果として得られた混合物を濃縮乾固させて、Boc−グアニジン付加物を粗混合物として得、これに対して水を添加し、10分間室温で撹拌した。得られた固体をろ紙でろ過し、そして真空下で一晩乾燥させた。結果として得られた固体の無水DMF中前記氷冷溶液に、NaH(60%、1.77g、44.28ミリモル)を慎重に添加した。24時間後、DMFを真空下で除去し、そして水を慎重に添加した。結果として得られた固体をろ過によって集め、真空中で乾燥させた。得られた粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(100〜200メッシュ)により精製して、12を黄色固体として得た。収量:3.64g、72%(二ステップにわたって)。1H NMR(500.13 MHz,DMSO−d6):δ 1.48(s,9H),1.50(s,9H),8.54(s,1H),10.85(s,1H),11.58(s,1H),11.78(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6):δ 27.7(3C),27.8(3C),80.3,83.2,103.2,109.2,149.0,150.4,152.0,152.6,153.7,154.2,161.7、HRMS:[C17H22BrN5O5+H]のm/zの計算値:456.0883、実測値:456.0890。
12(3.10g、6.79ミリモル)の無水THF中溶液に、DIEA(3.50mL、20.38ミリモル)およびDMAP(0.17g、1.36ミリモル)を添加し、続いてBoc2O(5.93g、27.18ミリモル)を室温で添加した。室温で4時間後、Boc2O(2.97g、13.59ミリモル)を添加し、反応混合物を50℃まで温めた。出発物質の消費をTLCによってモニタリングし、24時間後、反応混合物を次いでNaHCO3の飽和溶液およびEAで希釈した。有機層を水層から分離し、硫酸ナトリウム上で乾燥させた。溶媒を真空下で除去し、得られた粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製して、純粋な13を白色固体として得た。収量:3.15g、65%。1H NMR(500.13 MHz,DMSO−d6):δ 1.27(s,18H),1.45(s,18H),1.65(s,9H),9.06(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6):δ 27.2(6C),27.4(6C),27.5(3C),82.7(2C),83.8(2C),87.6,109.7,118.2,148.7,148.8(2C),149.6(2C),150.8,155.0,156.4,166.5、HRMS:[C31H46BrN5O9+H]のm/zの計算値:712.2557、実測値:712.2540。
13(3.00g、4.21ミリモル)の無水トルエン(21mL)中撹拌・脱気溶液に、アリルトリブチルスズ(2.79g、8.42ミリモル)、続いてテトラキストリフェニルホスフィンパラジウム(0)(0.49g、0.42ミリモル)を室温で添加した。結果として得られた溶液をアルゴンでフラッシュして、不活性雰囲気を創出し、溶液を15時間125℃で灌流させた。結果として得られた混合物を室温まで冷却し、シリカゲルを添加し、溶媒を真空下で除去し、スラリーをシリカゲルカラムクロマトグラフィーにロードして、14を淡黄色固体として得た。収量:1.70g、60%。1H NMR(500.13 MHz,CDCl3):δ 1.32(s,18H),1.47(s,18H),1.71(s,9H),3.78(dq,J=6.6,1.3 Hz,2H),4.94−5.15(m,2H),6.09(ddt,J=16.7,10.1,6.4 Hz,1H),8.49(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 27.8(6C),27.9(6C),28.2(3C),32.4,82.4(2C),83.3(2C),86.3,108.8,116.5,131.4,136.0,148.1(2C),149.8(2C),150.3(2C),155.6,156.8,167.1、HRMS:[C34H51N5O9+H]のm/zの計算値:674.3765、実測値:674.3746。
14(1.00g、1.48ミリモル)のCH3CN:CCl4:H2O(23:23:34mL)中氷冷撹拌溶液に、NalO4(2.54g、11.87ミリモル)を添加し、続いて塩化ルテニウム(III)水和物(0.07g、0.30ミリモル)を添加した。0℃で2時間後、反応混合物をセライト床でろ過し、真空下、35℃で3/4の体積まで濃縮した。この混合物に、水(20mL)およびEA(20mL)を25℃で添加した。有機層を水層から分離し、硫酸ナトリウム上で乾燥させた。結果として得られた溶媒を真空下で除去し、得られた粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製して、15(E)を明褐色固体として得た。収量:0.51g 50%。1H NMR(300.13 MHz,CDCl3):δ 1.34(s,18H),1.56(s,18H),1.71(s,9H),4.03(s,2H),8.62(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 28.0(6C),28.1(6C),28.3(3C),37.1,83.2(2C),85.1(2C),87.7,109.0,124.5,149.6,149.9(2C),150.1,155.9(2C),156.5(2C),167.4,170.4、HRMS:[C33H49N5O11+H]のm/zの計算値:692.3507、実測値:692.3491。
2−(エトキシメチレン)マロノニトリル(100.00g、0.82mol)、S−メチルイソチオ尿素ヘミ硫酸塩(73.81g、0.82mol)、トリエチルアミン(370.92mL、2.66mol)の無水エタノール(819mL)中混合物を室温で撹拌した。二日後、溶媒を真空下で除去し、結果として得られた残留物を水で洗浄して、所望の化合物を白色固体として得た。収量:122.48g、90%。1H NMR(500.13 MHz,DMSO−d6):δ 2.45(s,3H),7.87(s,2H),8.43(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6):δ 13.4,85.3,115.6,160.5,161.4,174.6、ESI−MS:[C6H6N4S+H]のm/zの計算値:167.0、実測値:167.1。
17(50.00g、0.30mol)、ヒドロキシルアミン塩酸塩(24.04g、0.35mol)、およびトリエチルアミン(83.92mL、0.60mol)のメタノール(602mL)中前記混合物を75℃で還流させた。二日後、反応混合物を室温まで冷却し、沈殿した固体をろ過により集め、メタノールおよびヘキサンで洗浄して、18を淡黄色固体として得た。収量:46.15g、77%。1H NMR(500.13 MHz,DMSO−d6):δ 2.43(s,3H),5.96(s,2H),7.59(s,1H),8.10(s,1H),8.35(s,1H),9.87(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6):δ 13.2,103.6,149.9,152.8,159.6,169.3、ESI−MS:[C6H9N5OS+H]のm/zの計算値200.1、実測値:200.0。
18(31.00g、0.16mol)の氷酢酸中溶液に、無水酢酸(51.48mL、0.55mol)を室温で添加した。結果として得られた溶液のTLCによる分析から、18が15時間後に完全に消費されたことが分かった。酢酸を真空下で除去し、この粗物質に、飽和重炭酸ナトリウム溶液およびEA(それぞれ200mL)を添加した(PH−8〜9)。水層をEAで二回抽出し、有機層を硫酸ナトリウムで乾燥させた。EAを真空下で除去して、純粋な19を白色固体として得た。収量:28.02g、90%。1H NMR(500.13 MHz,DMSO−d6):δ 2.15(s,3H),2.45(s,3H),6.89(s,2H),7.78(s,1H),7.96(s,1H),8.40(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6):δ 13.3,19.5,102.4,154.5,154.6,159.8,167.9,171.3、HRMS:[C8H11N5O2S+H]のm/zの計算値242.0712、実測値:242.0718。
19(25.00g、0.10mol)、ギ酸(97.73mL、2.59mol)、および木炭上のパラジウム(10%、5.51g、5.18ミリモル)のメタノール(130mL)中混合物を80℃で還流させた。15時間後、反応混合物を室温まで冷却し、溶媒を真空下で除去して、所望の生成物をギ酸塩として得た。生成物のギ酸塩としての収量:29.96g、80%。(NMR分析の場合:結果として得られた粗物質(1g)に、メタノール(10mL)およびTEA(5mL、pH−9〜10)を添加し、15分間撹拌した。結果として得られた固体をろ過により集め、ヘキサンで洗浄した。1H NMR(500.13 MHz,DMSO−d6):δ 2.43(s,3H),5.96(s,2H),7.59(s,1H),8.11(s,1H),8.36(s,1H),9.87(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6):δ 13.3,103.6,149.9,152.9,159.6,169.4、HRMS:[C6H9N5S+H]のm/zの計算値184.0657、実測値:184.0664。
ギ酸塩としての20(22.00g、68.47ミリモル)のTHF:水(100:125mL)中氷冷撹拌溶液に、重炭酸ナトリウムを数回に分けて添加した(34.51mL、0.41mol)。結果として得られた溶液のpHが8〜9に達したら、25mlのTHF中Boc−無水物(17.19g、78.74ミリモル)をゆっくりと添加した。結果として得られた溶液のTLCによる分析から、20は24時間後に完全に消費されたことが分かった。反応混合物を、100mLの水と200mLのEAとを含む分液漏斗に移した。EA(2×)を使用して水層を抽出し、組み合わせたEA層を硫酸ナトリウム上で乾燥させた。EAを真空下で除去し、混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーによって精製して、純粋な21を白色固体として得た。収量:15.71g、81%。1H NMR(300.13 MHz,CDCl3):δ 1.51(s,9H),2.50(s,3H),7.61(s,2H),8.42(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 13.9,28.1(3C),79.6,104.6,155.2(2C),161.1(2C),173.9、HRMS:[C11H17N5O2S+H]のm/zの計算値284.1181、実測値:284.1189。
21(15.00g、52.94ミリモル)のTHF(106mL)中氷冷撹拌溶液に、DIPEAを一度に添加し(46.11mL、264.69ミリモル)、DMAP(1.29g、10.59ミリモル)、続いて25mlのTHF中Boc−無水物(57.77g、264.69ミリモル)を添加した(ゆっくりと添加)。反応の進行をTLCによってモニタリングし、21が24時間後に完全に消費されたことが分かった。反応混合物を、200mLの水と100mLのEAとを含む分液漏斗に移した。混合物をEAで抽出し(2×)、組み合わせたEA層を硫酸ナトリウムで乾燥させた。EAを真空下で除去し、粗混合物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製して、純粋な22を白色固体として得た。収量:28.96g、80%。1H NMR(500.13 MHz,CDCl3):δ 1.44(s,l8H),1.45(s,18H),1.51(s,9H),2.61(s,3H),8.69(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 14.6,28.0(6C),28.1(6C),28.1(3C),83.2,83.7(2C),84.9(2C),119.2,148.3,150.1,157.3(2C),158.8,159.5(2C),160.4,176.1、HRMS:[C31H50N5O10S+H]のm/zの計算値684.3278、実測値:684.3275.
22(15.00g、21.94ミリモル)のDCM(55mL)中氷冷撹拌溶液に、mCPBAを数回に分けて添加した(10.60g、61.42ミリモル)。反応の進行をTLCによって分析し、22が3時間後に完全に消費されたことが分かった。反応混合物を、200mLの重炭酸ナトリウムの飽和溶液と100mLのDCMとを含む分液漏斗に移した。混合物をDCM(2×)で抽出し、組み合わせたDCM層を硫酸ナトリウム上で乾燥させた。DCMを真空下で除去し、粗混合物をさらに精製することなく次のステップで使用した。
粗23(15.00g)のTHF(55mL)中氷冷撹拌溶液に、2N NaOH(54.84mL、109.68ミリモル)をゆっくりと添加した。出発物質の消費をTLCによってモニタリングした。30分後、反応混合物を、200mLの1%HClと100mLのEAとを含む分液漏斗に移した。水層をEA(2×)で抽出し、組み合わせたEA層を硫酸ナトリウム上で乾燥させた。EAを真空下で除去し、粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフィーによって精製した。収量:10.75g、二ステップにわたって75%。1H NMR(300.13 MHz,DMSO−d6):δ 1.37(s,18H),1.39(s,18H),1.41(s,9H),8.65(s,1H),12.80(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6):δ 27.4(15C),82.0,82.9(2C),83.5(2C),108.0,145.2,147.5(2C),149.1(2C),152.8,155.0,157.0,162.9、HRMS:[C30H47N5O11+H]のm/zの計算値654.3350、実測値:654.3359。
化合物24(10.00g、15.30ミリモル)およびK2CO3(4.23g、30.59ミリモル)の無水DMF(75mL)中混合物に、2−ブロモ酢酸ベンジル(2.42mL、15.30ミリモル)を10分間にわたって滴下した。反応の進行をTLCによってモニタリングし、反応は4時間後に完了することが判明した。焼結漏斗を通して反応混合物をろ過し、DMFを真空下で蒸発させた。結果として得られた粗物質に、水を添加し、5分間撹拌した。得られた沈殿(precipitated)をろ過によって集め、水およびヘキサンで洗浄して、純粋な化合物25を白色固体として得た。(注:化合物が充分沈殿しないならば、抽出が化合物を得るための代替法となり、必要ならば、短床カラム(short bed column)を行って純粋な化合物を得る)。収量:10.92g、89%。1H NMR(500.13 MHz,CDCl3):δ 1.46(s,18H),1.48(s,18H),1.50(s,9H),4.75(s,2H),5.22(s,2H),7.27−7.47(m,5H),7.95(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 27.8(6C),27.9(6C),28.0(3C),51.0,68.2,83.0,83.7(2C),85.2(2C),110.6,128.6(3C),128.7(2C),128.8,134.5,148.2,149.5(2C),152.0(2C),154.4,157.1,163.9,166.1、HRMS:[C39H55N5O13+H]のm/zの計算値802.3875、実測値:802.3882。
木炭上のパラジウム(10%ローディング、0.66g、0.62ミリモル)を、25(5.00g、6.24ミリモル)のEA(50mL)中溶液に、アルゴンバルーン下で慎重に添加した。5分後、アルゴンバルーンを水素バルーンと置換し、反応混合物を同じ雰囲気下でさらに1時間撹拌した。出発物質の完全消耗をTLCによって判断した。結果として得られた反応混合物は、セライト床を通して慎重にろ過し、ろ液をロータリーエバポレーターで蒸発させて、純粋な化合物26を白色固体として得た。収量:3.99g、90%。1H NMR(500.13MHz、DMSO−d6):δ1.36(s,18H)、1.41(s,18H)、1.42(s,9H)、4.85(s,2H)、9.10(s,1H)、13.45(s,1H)、13C NMR(125.77MHz,DMSO−d6):0 27.4(6C)、27.4(6C)、27.5(3C)、50.9、82.2、83.0(2C)、83.3(2C)、108.3、145.1、146.9(2C)、149.4(2C)、154.1、156.1、157.0、162.5、168.4、HRMS:[C32H49N5O13+H]のm/z計算値:712.3405、実測値:712.3386。
この化合物を商業的に利用可能な供給源から購入した。
N−Fmoc(O−MP(tブチル)−L−セリノール(5.00g、10.93ミリモル)の飽和DCM:水(28mL)中冷却溶液に、デス・マーチン・ペルヨージナン(9.96g、23.49ミリモル)を数回に分けて添加した。反応混合物を同じ温度でさらに30分間、室温で1時間撹拌して、アルコールをアルデヒドに完全に変換させた。反応混合物をエーテル、重炭酸ナトリウムの飽和溶液、10%チオ硫酸ナトリウムで希釈し、そして5分間撹拌した。全反応混合物を分液漏斗に移し、有機化合物をエーテル(2x)中に抽出した。エーテル層を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、ロータリーエバポレーターで除去して、粗アルデヒドを得た。アルデヒドをさらに精製することなく次のステップで使用した。無水DCM(44mL)中のアルデヒドに、グリシン酸アリルPTSA塩(6.28g、21.86ミリモル)およびDIEA(5.90mL、33.89ミリモル)を添加し、1時間反応させた。NaB(OAc)3H(5.79g、27.33ミリモル)を反応混合物に一度に添加した。室温で一晩撹拌した後、反応混合物をDCM(100mL)および重炭酸ナトリウムの飽和溶液で希釈した。反応混合物を分液漏斗に移し、層を水層から分離した。組み合わせた有機層を硫酸ナトリウムで乾燥させ、ロータリーエバポレーターで除去し、そして粗混合物をフラッシュシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製した。収量:4.85g、85%。1H NMR(500.13 MHz,CDCl3):δ 1.19(s,9H),2.77−2.92(m,2H),3.49−3.69(m,13H),3.88(bs,1H),4.23(t,J=6.9 Hz,1H),4.39(d,J=7.5 Hz,2H),4.64(dt,J=5.9,1.4 Hz,2H),5.23−5.36(m,2H),5.73(d,J=8.4 Hz,1H),5.92(ddt,J=17.3,10.4,5.8 Hz,1H),7.32(td,J=7.5,1.2 Hz,2H),7.36−7.43(m,2H),7.60−7.68(m,2H),7.74−7.79(m,2H)、13C NMR(125.77 MHz,CDCl3):δ 27.5(3C),47.3,50.3,50.5,50.6,50.7,61.2,65.5,66.7,70.5,70.8,71.2,71.4,73.1,118.7,119.9,120.0,120.0,125.2,127.0,127.6,127.7,131.8,141.3,144.0,144.0,156.4,171.8,174.3、ESI−MS:[C31H42N2O71+H]のm/zの計算値555.3、実測値:555.3。
15(E)(0.50g、0.72mmol)およびDIEA(163.67μL、0.94ミリモル)の無水DMF(6mL)中混合物に、HBTU(0.32g、0.83mmol)を一度に室温で添加した。室温で10分後、DMF(4mL)中の骨格28(0.60g、1.08ミリモル)を上記反応混合物に添加した。TLCによってモニタリングした反応の進行(溶離液:EA:Hex(50:50)、骨格のRf=0.2、生成物のRf=0.6、EのRf=0.1)。出発物質が完全に消費された後、DMFを真空下、45℃で除去した。結果として得られた粗物質に、1%HCl(20mL)およびEA(20mL)を添加し、有機層(2x)を、分液漏斗を用いて水層から分離した。組み合わせた有機層を乾燥し、除去し、獲得した粗物質をフラッシュシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製した。収量:0.62g、70%。1H NMR(500.13 MHz,DMSO−d6,回転異性体):δ 1.08/1.09(s,9H),1.211.33(m,18H),1.36/1.38(s,18H),1.41/1.65(s,9H),3.36−3.70(m,10H),3.82−4.27(m,8H),4.32(bs,2H),4.41−4.71(m,2H),5.13−5.41(m,2H),5.81−6.01(m,1H),7.30−7.57(m,5H),7.71/7.73(d,J=9.7 Hz,2H),7.89/7.99(d,J=7.5 Hz,2H),8.56/8.60(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6,回転異性体):δ 27.2−27.6(18C),46.7,59.7,60.6/60.6,64.7,65.3,65.5,69.6,69.6,69.8,70.0,70.4,70.4,72.2,81.8−86.3(6C),108.1,117.7,118.2,120.l(2C),125.1,127.0(2C),127.3,127.6(2C),127.8/127.9,132.1,132.3,140.7,143.8,147.9,149.3,149.5,149.6,155.0/155.1,155.9,156.5,166.6,168.8,169.2,170.2、HRMS:[C64H89N7O17+H]のm/zの計算値:1228.6393、実測値:1228.6398。
この化合物は、化合物27(1.00g、5.88ミリモル)および骨格28(4.08g、7.35mmol)を出発物質として使用して化合物29aについての上記の手順を使用して調製した。TLC(溶離液:5%MeOH:DCM(5:95)、骨格のRf=0.6、生成物のRf=0.2、27のRf=0.0).収量:3.5g、84%。1H NMR(500.13 MHz,DMSO−d6,回転異性体):δ 1.10/1.10(s,9H),3.30−3.59(m,14H),3.744.13(m,2H),4.174.42(m,4H),4.60(dd,J=33.4,4.8 Hz,2H),5.00−5.44(m,2H),5.82−6.01(m,1H),7.10−7.55(m,6H),7.69(d,J=7.4 Hz,2H),7.89(d,J=7.5 Hz,2H),10.75(bs,1H),11.08(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6,回転異性体)δ 27.2(3C),46.7,60.6(2C),64.7,65.2,65.5,69.6,69.8,69.9,70.4(2C),72.2,107.2,117.7,118.1,120.1(2C),125.2,127.0(2C),127.3,127.6(2C),132.2/132.3,139.2,139.7,140.7,143.8/143.8,151.2/151.3,155.8,164.1/164.1,168.9,169.4,170.6、HRMS:[C37H46N4O10+H]のm/zの計算値:707.3292、実測値:707.3290。
この化合物は、化合物26(3.50g、4.92mmol)および骨格28(3.41g、6.15ミリモル)を出発物質として使用して化合物29aについての上記の手順を使用して調製した。TLC(溶離液:EA:Hex(40:60)、骨格のRf=0.1、生成物のRf=0.7、26のRf=0.1)。収量:4.80g、78%。1H NMR(300 MHz,DMSO−d6):δ 1.09(bs,9H),1.34/13.6(s,18H),1.41/1.42(s,27H),3.35−3.59(m,14H),4.07−4.49(m,4H),4.61(dd,J=37.6,5.4 Hz,3H),4.97−5.42(m,3H),5.77−6.04(m,1H),7.32(t,J=7.5 Hz,2H),7.50−7.57(m,3H),7.89(d,J=7.5 Hz,2H),7.99(d,J=8.4 Hz,2H),8.94/8.96(s,1H)、13C NMR(125.77 MHz,DMSO−d6,回転異性体):δ 27.2−27.5(18C),46.7,60.2/60.7(2C),64.7,65.5,69.5,69.6,69.8,69.9,70.4/70.4(2C),72.2,82.2−83.4(6C),108.1,117.7,120.1(2C),124.4,125.1,127.0(2C),127.4,127.6(2C),127.8,132.2(2C),140.7(2C),143.8(2C),145.1,146.9(2C),149.5(2C),157.0,162.5,166.5,168.4、HRMS:[C63H89N7O19+H]の計算値dm/z1248.6291,実測値:1248.6256.
JB3核酸塩基、JB6核酸塩基、およびJB4核酸塩基、
JB6核酸塩基、JB4核酸塩基、およびJB3核酸塩基、
または、JB4核酸塩基、JB3核酸塩基、およびJB6核酸塩基、
または、前記の2以上の逐次反復、
の順序で有する、条項1〜5のいずれか一項に記載の遺伝子認識試薬。
JB3若しくはJB3b、JB6若しくはJB6b、およびJB4、JB4b、JB4c、JB4d、若しくはJB4e、
JB6若しくはJB6b、JB4、JB4b、JB4c、JB4d、若しくはJB4e、およびJB3若しくはJB3b、または
JB4、JB4b、JB4c、JB4d、若しくはJB4e、JB3若しくはJB3b、および、JB6またはJB6b、
または、前記の2以上の逐次反復、
の順序で有する、条項6に記載の遺伝子認識試薬。
JB3、JB6、およびJB4、
JB6、JB4、およびJB3、または
JB4、JB3、およびJB6、
または、前記の2以上の逐次反復、
の順序で有する、条項1〜5のいずれか一項に記載の遺伝子認識試薬。
アミノ酸側鎖、例えば、
R3は、H、または脱離基、例えば、直鎖若しくは分枝(C1〜C8)アルキル、置換若しくは非置換(C3〜C8)アリール、(C3〜C8)アリール(C1〜C6)アルキレン、(C1〜C8)カルボキシ、アミノ酸側鎖で任意に置換されていてもよい、または、グアニジン含有基、または、
R4は、(C1〜C10)二価炭化水素または1以上のN若しくはO部分、例えば−O−、−OH、−C(O)−、−NH−、−NH2、−C(O)NH−で置換された(C1〜C10)二価炭化水素であり、
R5は、−OH、−SHまたはジスルフィド保護基であり、そして、
Rの各々は、独立して、1以上の標的核酸中の核酸塩基の単位標的配列に対して相補的な核酸塩基の配列を生成し、したがって、複数の認識モジュールの各々が、鋳型核酸上の核酸塩基の標的配列に結合し、互いにライゲーションする核酸塩基である、を有するか、またはその薬剤的に許容される塩である、条項1〜14のいずれか一項に記載の遺伝子認識試薬。
ここで、Rの各々が、独立して、核酸塩基であり、Rの各々が、同一であるか、または異なる核酸塩基であり得、
nが1〜6の範囲の整数、例えば、1、2、3、4、5、または6であり、
R1およびR2が、各々独立して、H、グアニジン含有基、例えば、
アミノ酸側鎖、例えば、
R10またはR11の一方、およびR12、R13、若しくはR14のうちの一つは−L−R3であり、ここで、R3の各々は、独立して、2〜5環縮合多環式芳香族部分、例えば、非置換若しくは置換ペンタレン、インデン、ナフタレン、アズレン、ヘプタレン、ビフェニレン、as−インダセン、s−インダセン、アセナフチレン、フルオレン、フェナレン、フェナントレン、アントラセン、フルオランテン、アセフェナントリレン、アセアントリレン、トリフェニレン、ピレン、クリセン、ナフタセン/テトラセン、プレイアデン、ピセン、またはペリレン、O、N、および/またはSなどの1以上のヘテロ原子で任意に置換されていてもよく、例えば、キサンテン、リボフラビン(ビタミンB2)、マンゴスチン、またはマンギフェリンであり、各々は、認識試薬が標的核酸の隣接配列とハイブリダイズする場合、隣接認識試薬のR3基とスタッキングすることができ、
Lはリンカーであり、そして
R10、R11、R12、R13、およびR14の残りが、各々独立して、H、1以上の連続したアミノ酸残基、例えば1以上のArg残基、グアニジン含有基、例えば、
アミノ酸側鎖、例えば、
その薬剤的に許容される塩である、条項2に記載の遺伝子認識試薬、
Claims (39)
- 核酸若しくは核酸アナログ骨格を含み、3以上のリボース、デオキシリボース、または核酸アナログ骨格残基、前記骨格残基に結合した二価核酸塩基の配列を含む遺伝子認識試薬であって、前記二価核酸塩基の配列が、二本の核酸鎖上のリピート伸長疾患の伸長されたリピートの単位標的配列、または、単位標的配列の1以上の逐次反復と結合する、遺伝子認識試薬。
- 前記核酸若しくは核酸アナログ骨格が第一末端と第二末端とを含み、前記骨格の前記第一末端に結合した第一連結基、前記第一連結基と非共有結合するかまたはセルフライゲーションする、前記第二末端に結合した第二連結基をさらに含む、請求項1に記載の遺伝子認識試薬。
- 二価核酸塩基の前記配列が、前記二本の鎖を逆平行配向でアライントさせた場合、前記二本の鎖の各々の上のリピート伸長疾患の伸長されたリピートの、単位標的配列または前記単位標的配列の2以上の逐次反復と結合する、請求項2に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記単位標的配列が、前記二本の鎖の両方の上で、(GAA)n、(CGG)n、(CCG)n、(CAG)n、(CTG)n、(CCTG)n、(ATTCT)n、若しくは(GGGGCC)nの逐次反復、または、前記のいずれかに対して相補性である配列により形成される、請求項3に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記単位標的配列がC/G−A/A−G/Cである、請求項3に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記核酸塩基配列を、
JB3核酸塩基、JB6核酸塩基、およびJB4核酸塩基、
JB6核酸塩基、JB4核酸塩基、およびJB3核酸塩基、
JB4核酸塩基、JB3核酸塩基、およびJB6核酸塩基、
JB3またはJB3b、JB6またはJB6b、およびJB4、JB4b、JB4c、JB4d、またはJB4e、
JB6若しくはJB6b、JB4、JB4b、JB4c、JB4d、若しくはJB4e、およびJB3若しくはJB3b、
JB4、JB4b、JB4c、JB4d、若しくはJB4e、JB3若しくはJB3b、およびJB6若しくはJB6b、JB3、JB6、およびJB4、
JB6、JB4、およびJB3、または
JB4、JB3、およびJB6、または、前記の2以上の逐次反復、
の順序で有する請求項5に記載の遺伝子認識試薬。 - 表Cに列挙された単位認識試薬配列の核酸塩基配列を有する、請求項1に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記二本の鎖がどちらも同一の核酸分子のものである、請求項1に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記二本の鎖がどちらもRNAである、請求項1に記載の遺伝子認識試薬。
- 3、4、5、6、7、または8個の核酸塩基などの3〜8個の核酸塩基の配列からなる、請求項1に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記骨格残基が核酸アナログ骨格残基である、請求項1に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記骨格残基が立体構造的に予め組織化されている、請求項11に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記骨格残基がロックド核酸残基である、請求項14に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記骨格残基がペプチド核酸(PNA)残基である、請求項14に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記骨格残基がγPNA残基である、請求項14に記載の遺伝子認識試薬。
- 構造:
ここで、XはSまたはOであり、nは1から6の整数であり、mは0から4の整数であり、R1およびR2は、各々独立して、H、グアニジン含有基、例えば、
アミノ酸側鎖、例えば、
R3は、H、または脱離基、例えば、直鎖若しくは分枝(C1〜C8)アルキル、置換若しくは非置換(C3〜C8)アリール、(C3〜C8)アリール(C1〜C6)アルキレン、(C1〜C8)カルボキシ、アミノ酸側鎖で任意に置換されていてもよい、または、グアニジン含有基、または、
R4は、(C1〜C10)二価炭化水素または1以上のN若しくはO部分、例えば−O−、−OH、−C(O)−、−NH−、−NH2、−C(O)NH−で置換された(C1〜C10)二価炭化水素であり、
R5は、−OH、−SHまたはジスルフィド保護基であり、そして、
Rの各々は、独立して、1以上の標的核酸中の核酸塩基の単位標的配列に対して相補的な核酸塩基の配列を生成し、したがって、複数の認識モジュールの各々が、鋳型核酸上の核酸塩基の標的配列に結合し、互いにライゲーションする核酸塩基である、または、
その薬剤的に許容される塩である、請求項1に記載の遺伝子認識試薬。 - 前記R1または前記R2が、−(OCH2−CH2)qOP1、−(OCH2−CH2)q−NHP1、−(SCH2−CH2)q−SP1、−(OCH2−CH2)r−OH、−(OCH2−CH2)r−NH2、−(OCH2−CH2)r−NHC(NH)NH2、または−(OCH2−CH2)r−S−S[CH2CH2]sNHC(NH)NH2で置換された(C1〜C6)アルキルであり、ここで、P1は、H、(C1〜C8)アルキル、(C2〜C8)アルケニル、(C2〜C8)アルキニル、(C3〜C8)アリール、(C3〜C8)シクロアルキル、(C3〜C8)アリール(C1〜C6)アルキレンまたは(C3〜C8)シクロアルキル(C1〜C6)アルキレンであり、qは0〜50の整数であり、rは1〜50の整数であり、sは1〜50の整数である、請求項18に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記R5が、−SH、OH、またはS−S−R8であり、ここで、前記R8は、1以上のアミノ酸残基、アミノ酸側鎖、グアニジン含有基、非置換若しくは置換(C1〜C8)アルキル、(C2〜C8)アルケニル、(C2〜C8)アルキニル、(C1〜C8)ヒドロキシアルキル、(C3〜C8)アリール、(C3〜C8)シクロアルキル、(C3〜C8)アリール(C1〜C6)アルキレン、または(C3〜C8)シクロアルキル(C1〜C6)アルキレンである、請求項18に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記R1がHであり、前記R2はHではないか、または、前記R2がHであり、前記R1はHではない、請求項18に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記R1がHであり、前記R2がポリオキシエチレン部分を含む、請求項18に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記R5が−SHであり、前記XがSである、請求項18に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記R5が、リジン残基、アルギニン残基、またはグアニジン含有基を含む、請求項18に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記R4がメチレンであり、前記R5が−SHであり、前記XがSであり、そして、前記R5が、ヒドロキシル置換(C1〜C8)アルキル、例えば−CH2−CH2−OHである、請求項18に記載の遺伝子認識試薬。
- 認識試薬が標的核酸の隣接配列とハイブリダイズする場合、前記第一連結基および前記第二連結基が、独立して、隣接する認識試薬のアリール部分とスタッキングする2〜5環縮合多環式芳香族部分である、請求項2に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記2〜5環縮合多環式芳香族部分が、非置換若しくは置換ペンタレン、インデン、ナフタレン、アズレン、ヘプタレン、ビフェニレン、as−インダセン、s−インダセン、アセナフチレン、フルオレン、フェナレン、フェナントレン、アントラセン、フルオランテン、アセフェナントリレン、アセアントリレン、トリフェニレン、ピレン、クリセン、ナフタセン/テトラセン、プレイアデン、ピセン、またはペリレンであって、O、N、および/またはSなどの1以上のヘテロ原子で任意に置換されていてもよく、例えば、キサンテン、リボフラビン(ビタミンB2)、マンゴスチン、またはマンギフェリンである、請求項24に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記2〜5環縮合多環式芳香族部分が同一である、請求項24に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記認識試薬が構造:
ここで、
Rの各々が、独立して、核酸塩基であり、Rの各々が、同じかまたは異なる核酸塩基であり得、
nが1〜6の範囲の整数、例えば、1、2、3、4、5、または6であり、
R1およびR2が、各々独立して、H、グアニジン含有基、例えば、
n=1、2、3、4、または5であり、
アミノ酸側鎖、例えば、
R10またはR11の一方、およびR12、R13、若しくはR14のうちの一つは−L−R3であり、ここで、R3の各々は、独立して、2〜5環縮合多環式芳香族部分、例えば、非置換若しくは置換ペンタレン、インデン、ナフタレン、アズレン、ヘプタレン、ビフェニレン、as−インダセン、s−インダセン、アセナフチレン、フルオレン、フェナレン、フェナントレン、アントラセン、フルオランテン、アセフェナントリレン、アセアントリレン、トリフェニレン、ピレン、クリセン、ナフタセン/テトラセン、プレイアデン、ピセン、またはペリレン、O、N、および/またはSなどの1以上のヘテロ原子で任意に置換されていてもよい、例えば、キサンテン、リボフラビン(ビタミンB2)、マンゴスチン、またはマンギフェリンであり、各々は、認識試薬が標的核酸の隣接配列とハイブリダイズする場合、隣接認識試薬のR3基とスタッキングすることができ、
Lはリンカーであり、そして
R10、R11、R12、R13、およびR14の前記残りが、各々独立して、H、1以上の連続したアミノ酸残基、例えば1以上のArg残基、グアニジン含有基、例えば、
n=1、2、3、4、または5であり、
アミノ酸側鎖、例えば、
その薬剤的に許容される塩である、請求項2に記載の遺伝子認識試薬。 - 1以上のR1、R2、R10、R11、R12、R13、またはR14が、−(OCH2−CH2)qOP1、−(OCH2−CH2)q−NHP1、−(SCH2−CH2)q−SP1、−(OCH2−CH2)r−OH、−(OCH2−CH2)r−NH2、−(OCH2−CH2)r−NHC(NH)NH2、または−(OCH2−CH2)r−S−S[CH2CH2]sNHC(NH)NH2で置換された(C1〜C6)アルキルであり、ここで、P1が、H、(C1〜C8)アルキル、(C2〜C8)アルケニル、(C2〜C8)アルキニル、(C3〜C8)アリール、(C3〜C8)シクロアルキル、(C3〜C8)アリール(C1〜C6)アルキレンまたは(C3〜C8)シクロアルキル(C1〜C6)アルキレンであり、qが0〜50の整数であり、rが1〜50の整数であり、sが1〜50の整数である、請求項27に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記R4および前記R7がーL−R3である、請求項27に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記リンカーが、約5〜25個の原子、例えば、5〜20個、5〜10個、例えば、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、若しくは20個の原子、または合計1〜10個、例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、若しくは10個のCおよびヘテロ原子、例えばO、P、N、若しくはS原子を含む、請求項27に記載の遺伝子認識試薬。
- 前記R3のいずれの場合も、同一の2〜5環縮合多環式芳香族部分を含む、請求項27に記載の遺伝子認識試薬。
- リピート伸長疾患に関連する伸長されたリピートを含有する核酸を結合する方法であって、前記伸長されたリピートを含む核酸を、請求項1〜32のいずれか一項に記載の遺伝子認識試薬と接触させることを含む、方法。
- 前記核酸が、前記二本の鎖の両方の上の(GAA)n、(CGG)n、(CCG)n、(CAG)n、(CTG)n、(CCTG)n、(ATTCT)n、もしくは(GGGGCC)nの逐次反復によって形成される単位標的配列、または前記のいずれかに対して相補的である配列を含む、請求項33に記載の方法。
- 前記核酸が、前記二本の鎖の両方の上の(CAG)nの逐次反復によって形成された単位標的配列、またはそれに対して相補的な配列を含む、請求項33に記載の方法。
- 前記核酸が、リピート伸長障害を有する患者から得られる、請求項33に記載の方法。
- 患者から得られるサンプルにおけるリピート伸長疾患に関連する伸長されたリピートを含む核酸の存在を特定する方法であって、前記患者から得た核酸サンプルを、請求項2〜32のいずれか一項に記載の遺伝子認識試薬と接触させ、前記サンプルがリピート伸長疾患に関連する伸長されたリピートを含む核酸を含むことを示す、前記遺伝子認識試薬の結合および連結が起こるか否かを判定し、そして任意に前記患者を前記リピート伸長疾患について治療することを含む、方法。
- 請求項1〜32のいずれか一項に記載の遺伝子認識試薬と薬剤的に許容される担体とを含む組成物。
- 細胞においてリピート伸長疾患に関連する伸長されたリピートを含有する遺伝子の発現をノックダウンする方法であって、前記伸長されたリピートを含む、RNAなどの核酸を、請求項1〜32のいずれか一項に記載の遺伝子認識試薬と接触させることを含む、方法。
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