[go: up one dir, main page]

JP2020534788A - アデノ随伴ウイルスカプシド変異体及びその使用方法 - Google Patents

アデノ随伴ウイルスカプシド変異体及びその使用方法 Download PDF

Info

Publication number
JP2020534788A
JP2020534788A JP2019562303A JP2019562303A JP2020534788A JP 2020534788 A JP2020534788 A JP 2020534788A JP 2019562303 A JP2019562303 A JP 2019562303A JP 2019562303 A JP2019562303 A JP 2019562303A JP 2020534788 A JP2020534788 A JP 2020534788A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
aav
amino acids
virion
raav
fold
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
JP2019562303A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2020534788A5 (ja
Inventor
デビッド ブイ. シャッファー
デビッド ブイ. シャッファー
デビッド スティーブン オハラ
デビッド スティーブン オハラ
フィリップ エー. ロメロ
フィリップ エー. ロメロ
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
University of California
University of California Berkeley
Original Assignee
University of California San Diego UCSD
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by University of California San Diego UCSD filed Critical University of California San Diego UCSD
Publication of JP2020534788A publication Critical patent/JP2020534788A/ja
Publication of JP2020534788A5 publication Critical patent/JP2020534788A5/ja
Withdrawn legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/76Viruses; Subviral particles; Bacteriophages
    • A61K35/761Adenovirus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • A61K48/0008Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy characterised by an aspect of the 'non-active' part of the composition delivered, e.g. wherein such 'non-active' part is not delivered simultaneously with the 'active' part of the composition
    • A61K48/0025Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy characterised by an aspect of the 'non-active' part of the composition delivered, e.g. wherein such 'non-active' part is not delivered simultaneously with the 'active' part of the composition wherein the non-active part clearly interacts with the delivered nucleic acid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/28Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2227/00Animals characterised by species
    • A01K2227/10Mammal
    • A01K2227/105Murine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2267/00Animals characterised by purpose
    • A01K2267/03Animal model, e.g. for test or diseases
    • A01K2267/0393Animal model comprising a reporter system for screening tests
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14111Dependovirus, e.g. adenoassociated viruses
    • C12N2750/14122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14111Dependovirus, e.g. adenoassociated viruses
    • C12N2750/14133Use of viral protein as therapeutic agent other than vaccine, e.g. apoptosis inducing or anti-inflammatory
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14111Dependovirus, e.g. adenoassociated viruses
    • C12N2750/14141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2750/14143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14111Dependovirus, e.g. adenoassociated viruses
    • C12N2750/14141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2750/14145Special targeting system for viral vectors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2800/00Nucleic acids vectors
    • C12N2800/30Vector systems comprising sequences for excision in presence of a recombinase, e.g. loxP or FRT

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Psychiatry (AREA)
  • Hospice & Palliative Care (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

本開示は、変異カプシドタンパク質を有する組換え型アデノ随伴ウイルスビリオンを提供し、ここで、かかる組換え型AAV(rAAV)ビリオンは、対照AAVと比較して、神経細胞障壁を通過する高い能力、神経幹細胞への高い感染力、神経細胞への高い感染力、及び抗体による中和に対する低い感受性のうち1つ以上を示し、かつ、異種核酸を含む。本開示は、個体の神経幹細胞または神経細胞に遺伝子産物を送達する方法を提供する。本開示は、神経幹細胞内または神経細胞内に存在する標的核酸を修飾する方法も提供する。【選択図】なし

Description

相互参照
本願は、その出願が参照によりその全体が本明細書に組み込まれる、2017年8月28日に出願された米国仮特許出願第62/551,133号の利益を主張するものである。
緒言
アデノ随伴ウイルス(AAV)は、パルボウイルス(Parvoviridae)科ディペンドウイルス属に属し、この属のメンバーは、複製を促進するためにアデノウイルスのようなヘルパーウイルスとの重複感染を必要とし、ヘルパーが存在しない場合、AAVは潜伏感染状態となる。ビリオンは、25nmの正二十面体のカプシドで構成され、カプシドは、2つのオープンリーディングフレーム、rep及びcapを有する4.7kbの一本鎖DNAゲノムを包含する。非構造rep遺伝子は、ウイルス複製に不可欠な4つの調節タンパク質をコードし、capは、集合して60−merカプシド殻を構成する3つの構造タンパク質(VP1〜VP3)をコードする。このウイルスカプシドは、AAVベクターがウイルス形質導入の生物学的障壁の多くを克服する能力、例えば、細胞表面受容体結合、エンドサイトーシス、細胞内輸送、及び核内での脱殻などを仲介する。
当該技術分野には、細胞障壁を通過する高い能力を付与する変異カプシドタンパク質及び/または神経幹細胞を感染させる高い能力を付与する変異カプシドタンパク質及び/または神経細胞を感染させる高い能力を付与する変異カプシドタンパク質を有するAAVビリオンに対するニーズがある。
概要
本開示は、変異カプシドタンパク質を有する組換え型アデノ随伴ウイルスビリオンを提供し、ここで、かかる組換え型AAV(rAAV)ビリオンは、対照AAVと比較して、神経細胞障壁を通過する高い能力、神経幹細胞への高い感染力、神経細胞への高い感染力、及び抗体による中和に対する低い感受性のうち1つ以上を示し、かつ、異種核酸を含む。本開示は、個体の神経幹細胞または神経細胞に遺伝子産物を送達する方法を提供する。本開示は、神経幹細胞内または神経細胞内に存在する標的核酸を修飾する方法も提供する。
図1A〜Fは、最短経路問題としての組換え(RASPP)方法適用後の、SCHEMAに基づくキメラアデノ随伴ウイルス(AAV)ライブラリー設計を提供する。 構成体の設計及びAAV cap遺伝子増幅に使用されたプライマー配列を提供する。 SCHEMA AAVライブラリーのコンビナトリアルゴールデンゲートアセンブリ用に各配列ブロックを増幅させるために、j5 DNAアセンブリで設計されたプライマー配列を提供する。 図3−1の続きの図である。 図3−2の続きの図である。 SCHEMA AAVライブラリーのコンビナトリアルゴールデンゲートクローニングのためのポリメラーゼ連鎖反応(PCR)の反応を提供する。 pBluescriptベクター骨格へのコンビナトリアルゴールデンゲートクローニングを促進するため、ブロック接合部にサイレント変異を組み込むよう設計されたプライマーを提供する。 図6A〜Dは、AAV指向進化のCre依存的選択法を提供する。 リコンビナーゼ欠損大腸菌(E.coli)のSure2における細菌プラスミド増殖中の組換えレベルを示す。 SCH9カプシドのアミノ酸配列を提供する。 SCH2カプシドのアミノ酸配列を提供する。 SCH9及びSCH2のAAV capアミノ酸配列と親AAV血清型とのアミノ酸のアラインメントを提供する。SCH9のアミノ酸配列:配列番号1;SCH2のアミノ酸配列:配列番号2;AAV2のカプシドのアミノ酸配列:配列番号136;AAV6のカプシドのアミノ酸配列:配列番号11;AAV8のカプシドのアミノ酸配列:配列番号137;AAV9のカプシドのアミノ酸配列:配列番号138。 図10−1の続きの図である。 図10−2の続きの図である。 図10−3の続きの図である。 図11A、Bは、SCH9のカプシドの3次元モデルを提供する。 組換え型自己相補的AAVベクターのウイルスゲノムの収量を示す。 図13A〜Iは、脳室下帯(SVZ)の神経幹細胞の形質導入に対するSCH9の効果を示す。 図14A〜Cは、小脳のプルキンエ細胞におけるSCH9形質導入のマーカー発現を示す。 組換え型AAV1またはSCH9を深部小脳核へ片側注入後3週間目の小脳でのGFP発現を示す。 図16A〜Cは、SCH9のグリカン結合及び中和抗体耐性の特性解析を示す。 AAVRを利用することが既知である対照AAV2と比較した場合のSCH2及びSCH9の感染力を示す。 図18A〜Fは、化膿レンサ球菌(Streptococcus pyogenes)Cas9ポリペプチド及び変異体のアミノ酸配列を提供する。 図18Aに記載の通り。 図18Aに記載の通り。 図18Aに記載の通り。 図18Aに記載の通り。 図18Aに記載の通り。 黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)Cas9ポリペプチドのアミノ酸配列を提供する。 図20A〜Cは、さまざまなCpf1ポリペプチドのアミノ酸配列を提供する。 図20Aに記載の通り。 図20Aに記載の通り。 図21A〜Cは、AAVカプシドタンパク質ループIV(GHループ)領域のアミノ酸配列のアラインメントを提供する。挿入部位は太字で示され、下線が引かれている。 図21Aに記載の通り。 図21Aに記載の通り。
定義
本明細書で使用する場合、用語「神経幹細胞」(NSC)とは、増殖、自己複製をすることができ、脳の主要な成体神経細胞に分化することができる未分化の神経細胞を指す。NSCには、自己維持(自己複製)する能力があり、すなわち、各細胞分裂で1つの娘細胞もまた幹細胞となることを意味する。幹細胞ではないNSC子孫は神経前駆細胞と呼ばれる。1つの多能性NSCから発生した神経前駆細胞は、ニューロン、アストロサイト(I型及びII型)、及びオリゴデンドロサイトに分化する能力がある。したがって、NSCは、その子孫が神経細胞としての複数の運命を持っているため「多能性」である。このことから、NSCは、機能上、1)増殖する能力、2)自己複製する能力、及び3)中枢神経系に見られる3つの主要な細胞型、すなわち、ニューロン、アストロサイト及びオリゴデンドロサイトに分化することができる機能的子孫を産生する能力を有する細胞として定義され得る。NSCは一般に、成熟ニューロン、成熟グリア細胞、成熟オリゴデンドロサイト、及び成熟アストロサイトのマーカーに対して陰性である。
本明細書で使用する場合、用語「神経前駆細胞(neural progenitor cell)」または「神経前駆細胞(neural precursor cell)」とは、神経細胞(例えば、神経前駆体または成熟ニューロン)、グリア前駆細胞、成熟アストロサイト、または成熟オリゴデンドロサイトなどの子孫を産生することができる細胞を指す。典型的に、細胞は、神経系の特徴である表現型マーカーのいくつかを発現する。「神経前駆細胞(neuronal progenitor cell)」または「神経前駆細胞(neuronal precursor cell)」とは、成熟ニューロンである子孫を産生することができる細胞である。これらの細胞もまた、グリア細胞産生能力を有する場合と有さない場合がある。
本明細書で使用する場合、「神経細胞(neuronal cell)」は「神経細胞(neural cell)」と同じ意味で使用され、中枢神経系または末梢神経系のニューロン及びグリアを指す。用語「神経細胞」には、アストロサイト、オリゴデンドロサイト、及びシュワン細胞などの細胞が含まれる。かかる用語には、任意の脳組織(例えば、脳組織、例えば、大脳半球、大脳皮質、皮質下運動皮質、線条体、内包、視床、視床下部、海馬、中脳、脳幹、及び小脳など)の神経細胞が含まれる。成熟ニューロンは、成熟ニューロンのマーカーの1つ以上を発現することができ、そのようなマーカーには、例えば、ネスチン、NeuroD1、ニューロン特異的エノラーゼ(NSE)、ニューロン特異的核タンパク質(NeuN)、ニューロフィラメント(NF)、S100β、タウ、微小管関連タンパク質2(MAP2)、タウ、ダブルコルチン(DCX)等が含まれる。
「AAV」とは、アデノ随伴ウイルスに対する略語であり、ウイルスそれ自身またはその誘導体を指すために使用してよい。かかる用語は、特に定めのない限り、すべてのサブタイプならびに天然に生じる型及び組換え型の両方を包含する。略語「rAAV」とは、組換え型アデノ随伴ウイルスを指し、組換え型AAVベクター(または「rAAVベクター」)とも呼ばれる。用語「AAV」には、AAV1型(AAV−1)、AAV2型(AAV−2)、AAV3型(AAV−3)、AAV4型(AAV−4)、AAV5型(AAV−5)、AAV6型(AAV−6)、AAV7型(AAV−7)、AAV8型(AAV−8)、AAV9型(AAV−9)、AAV10型(AAV−10)、トリAAV、ウシAAV、イヌAAV、ウマAAV、霊長類AAV、非霊長類AAV、及びヒツジAAVが含まれる。「霊長類AAV」とは、霊長類から単離されたAAVを指し、「非霊長類AAV」とは、非霊長類の哺乳類から単離されたAAVを指し、「ウシAAV」とは、ウシである哺乳類(例えば、雌ウシ)から単離されたAAV等を指す。
本明細書で使用する場合、「rAAVベクター」とは、AAV由来ではないポリヌクレオチド配列(すなわち、AAVポリヌクレオチドとは異種のもの)、典型的には、標的細胞内に導入するための目的配列を含むAAVベクターを指す。一般に、異種ポリヌクレオチドには、少なくとも1つ、一般には2つのAAV末端逆位反復配列(ITR)を隣接させる。用語rAAVベクターには、rAAVベクター粒子及びrAAVベクタープラスミドの両方が包含される。
「AAVウイルス」または「AAVウイルス粒子」または「rAAVベクター粒子」とは、少なくとも1つのAAVカプシドタンパク質(典型的に、野生型AAVのすべてのカプシドタンパク質によるもの)及びカプシドに包まれたポリヌクレオチドrAAVベクターで構成されるウイルス粒子を指す。粒子が異種ポリヌクレオチド(すなわち、野生型AAVゲノム以外のポリヌクレオチド、例えば、哺乳類細胞に送達されるべき導入遺伝子など)を含む場合、その粒子は典型的に「rAAVベクター粒子」または単に「rAAVベクター」と呼ばれる。したがって、ベクターはrAAV粒子内に含有されるものであることから、rAAV粒子の作製には必然的にそのようなrAAVベクターの作製が含まれる。
「パッケージング」とは、AAV粒子のアセンブリ及びカプシド形成を生じさせる一連の細胞内事象を指す。
AAVの「rep」遺伝子及び「cap」遺伝子とは、アデノ随伴ウイルスの複製タンパク質及びカプシド形成タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列を指す。AAVのrep及びcapを本明細書ではAAV「パッケージング遺伝子」と呼ぶ。
AAVの「ヘルパーウイルス」とは、AAV(例えば、野生型AAV)が哺乳類細胞によって複製及びパッケージングされるようにするウイルスを指す。AAVのそのような多種多様なヘルパーウイルスは当該技術分野で公知であり、アデノウイルス、ヘルペスウイルス、及びワクシニアなどのポックスウイルスが含まれる。アデノウイルスには多数の異なるサブグループが包含されるが、サブグループCのアデノウイルス5型が最も一般的に使用されている。ヒト、非ヒト哺乳類及びトリを起源とする多数のアデノウイルスが公知であり、ATCCなどの寄託機関から利用可能である。ヘルペスウイルス科のウイルスには、例えば、単純ヘルペスウイルス(HSV)及びエプスタイン−バーウイスル(EBV)、ならびにサイトメガロウイルス(CMV)及び仮性狂犬病ウイルス(PRV)が含まれ、これらもATCCなどの寄託機関から利用可能である。
「ヘルパーウイルス機能(複数可)」とは、AAVの複製及びパッケージングを可能にする、ヘルパーウイルスゲノムでコードされる機能(複数可)(複製及びパッケージングのための本明細書に記載の他要件と併用)を指す。本明細書に記載のように、「ヘルパーウイルス機能」は多数の方法で提供されてよく、それには、ヘルパーウイルスの提供によるもの、または、例えば、必要機能(複数可)をコードするポリヌクレオチド配列をプロデューサー細胞にトランスで提供することによるものがある。
「感染性」のウイルスまたはウイルス粒子とは、ポリヌクレオチド成分を含むものであり、そのウイルス種が指向性である細胞内への送達能があるものである。かかる用語は必ずしもウイルスの複製能を意味するものではない。本明細書で使用する場合、「感染性」のウイルスまたはウイルス粒子は、標的細胞にアクセスすることができ、標的細胞を感染させることができ、標的細胞に異種核酸を発現させることができるものである。したがって、「感染力」とは、ウイルス粒子が標的細胞にアクセスし、標的細胞を感染させ、標的細胞に異種核酸を発現させる能力を指す。感染力とは、インビトロでの感染力またはインビボでの感染力のいずれも指し得る。感染性ウイルス粒子の計数アッセイは、本開示の他の箇所及び当該技術分野で記載がある。ウイルス感染力は、総ウイルス粒子に対する感染性ウイルス粒子の比として表すことができる。総ウイルス粒子は、ウイルスゲノム(vg)のコピー数として表すことができる。ウイルス粒子が細胞に異種核酸を発現させる能力は、「形質導入」と呼ばれ得る。ウイルス粒子が細胞に異種核酸を発現させる能力は多数の技術を使用してアッセイすることができ、それらには、マーカー遺伝子評価、例えば、緑色蛍光タンパク質(GFP)アッセイ(例えば、ウイルスが、GFPをコードするヌクレオチド配列を含む場合)という、ウイルス粒子に感染させた細胞でGFPを産生させ、それを検出及び/または測定するアッセイのような評価、または産生されたタンパク質の、例えば、酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)による測定が含まれる。ウイルス感染力は、総ウイルス粒子に対する感染性ウイルス粒子の比として表すことができる。総ウイルス粒子に対する感染性ウイルス粒子の比を求める方法は当該技術分野で公知である。例えば、Grainger et al.(2005)Mol.Ther.11:S337(感染価測定法TCID50を記載)、及びZolotukhin et al.(1999)Gene Ther.6:973を参照のこと。
「複製能を有する」ウイルス(例えば、複製能を有するAAV)とは、感染性であり、かつ、感染細胞内で(すなわち、ヘルパーウイルスまたはヘルパーウイルス機能の存在下で)複製されることもできる、表現型が野生型のウイルスを指す。AAVの場合、複製能には一般に、機能性AAVパッケージング遺伝子の存在を必要とする。一般に、本明細書に記載するrAAVベクターは、1つ以上のAAVパッケージング遺伝子が欠失していることから、哺乳類細胞(特にヒトの細胞)における複製能がない。典型的に、そのようなrAAVベクターでは、複製能を有するAAVが、AAVパッケージング遺伝子と入来rAAVベクター間の組換えによって発生する可能性を最小限に抑えるために、いかなるAAVパッケージング遺伝子配列も欠いている。一般に、本明細書に記載するrAAVベクター調製物は、複製能を有するAAV(rcAAV、RCAとも呼ばれる)をほとんど含有しないものである(例えば、rAAV粒子10あたりrcAAVが約1未満、rAAV粒子10あたりrcAAVが約1未満、rAAV粒子10あたりrcAAVが約1未満、rAAV粒子1012あたりrcAAVが約1未満、またはrcAAV不含)。
用語「ポリヌクレオチド」とは、ヌクレオチドの任意の長さの高分子形態を指し、これには、デオキシリボヌクレオチドもしくはリボヌクレオチド、またはその類似体が含まれる。ポリヌクレオチドは、修飾ヌクレオチド、例えば、メチル化ヌクレオチド及びヌクレオチド類似体を含んでよく、また非ヌクレオチド成分によって中断されていてよい。修飾が存在する場合、ヌクレオチド構造に対する修飾は、ポリマーアセンブリの前または後のいずれで付与してもよい。本明細書で使用する場合、ポリヌクレオチドという用語は、二本鎖分子及び一本鎖分子と同じ意味を指す。特に明記または定めのない限り、本明細書に記載する本発明のいかなる実施形態も、それがポリヌクレオチドである場合、二本鎖形態、及び二本鎖形態を構成することが既知であるかまたは予測される2本の相補的一本鎖形態各々の両方が包含される。
あるポリヌクレオチドまたはポリペプチドが、別のポリヌクレオチドまたはポリペプチドに対して特定の割合の「配列同一性」を有するとは、整列させた場合、その2つの配列を比較したときに、その特定の割合の塩基またはアミノ酸が同一であることを意味する。配列類似性は多数の異なる方法で決定することができる。配列同一性を決定するためには、ワールドワイドウェブでncbi.nlm.nih.gov/BLAST/にて利用可能なBLASTなど、各種方法及びコンピュータプログラムを使用して配列を整列させることができる。別のアラインメントアルゴリズムはFASTAといい、Oxford Molecular Group,Incの完全所有子会社であるGenetics Computing Group(GCG)パッケージ(Madison,Wisconsin,USA)で利用可能である。アラインメントの他の技術は、Methods in Enzymology,vol.266:Computer Methods for Macromolecular Sequence Analysis(1996),ed.Doolittle,Academic Press,Inc.,a division of Harcourt Brace & Co.,San Diego,California,USAに記載されている。特に興味深いのは、配列内のギャップを許容するアラインメントプログラムである。Smith−Watermanは、配列アラインメントにおいてギャップが許容されるアルゴリズムの一種である。Meth.Mol.Biol.70:173−187(1997)を参照のこと。また、Needleman and Wunschアラインメント法を使用するGAPプログラムを利用して配列を整列させることができる。J.Mol.Biol.48:443−453(1970)を参照のこと。
興味深いのは、Smith Watermanの局所相同性アルゴリズム(Advances in Applied Mathematics 2:482−489(1981))を使用して配列同一性を決定するBestFitプログラムである。ギャップ生成ペナルティは一般に1〜5、通常は2〜4の範囲、場合によっては3となる。ギャップ伸長ペナルティは一般に約0.01〜0.20の範囲となり、多くの場合0.10となる。プログラムには、比較対象として入力された配列により決定されるデフォルトのパラメータが備わっている。好ましくは、プログラムにより決定されたデフォルトのパラメータを使用して配列同一性を決定する。このプログラムは、Genetics Computing Group(GCG)パッケージ((Madison,Wisconsin,USA)からも利用可能である。
興味深い別のプログラムはFastDBアルゴリズムである。FastDBは、Current Methods in Sequence Comparison and Analysis,Macromolecule Sequencing and Synthesis,Selected Methods and Applications,pp.127−149,1988,Alan R.Liss,Incに記載されている。以下のパラメータに基づくFastDBで配列同一性パーセントを計算する。
ミスマッチペナルティ:1.00、
ギャップペナルティ:1.00、
ギャップサイズペナルティ:0.33、
ジョイニングペナルティ:30.0。
「遺伝子」とは、転写、翻訳された後に特定のタンパク質をコードすることができるオープンリーディングフレームを、少なくとも1つ含有しているポリヌクレオチドを指す。
本明細書で使用する場合、用語「ガイドRNA」とは、i)ガイドRNAが配向するエンドヌクレアーゼ(例えば、II型、V型、またはVI型のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼなどのクラス2のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼ)に結合して、そのRNA配向エンドヌクレアーゼを活性化させる、「アクチベーター」ヌクレオチド配列と、ii)標的核酸とハイブリダイズするヌクレオチド配列を含む「ターゲター(targeter)」ヌクレオチド配列とを含むRNAを指す。「アクチベーター」ヌクレオチド配列及び「ターゲター」ヌクレオチド配列は、別々のRNA分子(例えば、「二重ガイドRNA」)上、または同一RNA分子(「シングルガイドRNA」)上のいずれにあってもよい。
「低分子干渉」RNAまたは「短鎖干渉RNA」またはsiRNAは、目的遺伝子(「標的遺伝子」)に指向される、ヌクレオチドからなるRNA二重鎖である。「RNA二重鎖」とは、1つのRNA分子の2領域間で相補的に対形成されることにより形成される構造を指す。siRNAは遺伝子に「指向」され、そこでは、かかるsiRNAの二重鎖部分のヌクレオチド配列は、指向標的遺伝子のヌクレオチド配列に相補的となっている。場合によっては、siRNA二重鎖の長さは30ヌクレオチド未満である。場合によっては、二重鎖は、29、28、27、26、25、24、23、22、21、20、19、18、17、16、15、14、13、12、11または10のヌクレオチド長であり得る。場合によっては、二重鎖の長さは19〜25ヌクレオチド長である。siRNAのRNA二重鎖部分はヘアピン構造の一部であり得る。ヘアピン構造は、二重鎖部分に加えて、二重鎖を形成する2配列間に位置するループ部分を含有してよい。ループは長さが異なり得る。場合によっては、ループは5、6、7、8、9、10、11、12または13のヌクレオチド長である。ヘアピン構造は、3’または5’の突出末端部分を含有することもできる。場合によっては、突出末端は3’または5’の0、1、2、3、4もしくは5ヌクレオチド長の突出末端である。
本明細書で使用する場合、用語「マイクロRNA」とは、任意の種類の干渉RNAを指し、これには内因性マイクロRNA及び人工マイクロRNA(例えば、合成miRNA)が含まれるが、これに限定されるものではない。内因性マイクロRNAは、mRNAの生産的使用を調節することができる、ゲノムにおいて天然でコードされる小さなRNAである。人工マイクロRNAは、内因性マイクロRNA以外の任意の種類のRNA配列であってよく、mRNAの活性を調節することができる。マイクロRNA配列は、これらの配列のいずれか1つ以上で構成されるRNA分子であり得る。マイクロRNA(または「miRNA」)配列は、刊行物、例えば、Lim,et al.,2003,Genes & Development,17,991−1008、Lim et al.,2003,Science,299,1540,Lee and Ambrose,2001,Science,294,862、Lau et al.,2001,Science 294,858−861、Lagos−Quintana et al.,2002,Current Biology,12,735−739、Lagos−Quintana et al.,2001,Science,294,853−857、及びLagos−Quintana et al.,2003,RNA,9,175−179などに記載されている。マイクロRNAの例には、より大きいRNAの断片もしくはmiRNA、siRNA、stRNA、sncRNA、tncRNA、snoRNA、smRNA、shRNA、snRNA、または他の小さな非コードRNAである、任意のRNAが含まれる。例えば、米国特許出願第20050272923号、第20050266552号、第20050142581号、及び第20050075492号を参照のこと。「マイクロRNA前駆体」(または「pre−miRNA」)とは、中にマイクロRNA配列が組み込まれているステムループ構造をした核酸を指す。「成熟マイクロRNA」(または「成熟miRNA」)には、マイクロRNA前駆体(「pre−miRNA」)から切り出されたかまたは合成された(例えば、無細胞合成による実験室での合成)マイクロRNAが含まれ、長さは約19ヌクレオチド〜約27ヌクレオチドであり、例えば、成熟マイクロRNAは、長さが19nt、20nt、21nt、22nt、23nt、24nt、25nt、26nt、または27ntであり得る。成熟マイクロRNAは、標的mRNAに結合して、その標的mRNAの翻訳を阻害することができる。
「組換え」とは、ポリヌクレオチドに使用する場合、そのポリヌクレオチドは、クローニング、制限またはライゲーションステップ、及び自然界に見られるポリヌクレオチドとは異なる構成体をもたらす他の手順をさまざまなに組み合わせて得られた産物であることを意味する。組換え型ウイルスとは、組換えポリヌクレオチドを含むウイルス粒子である。かかる用語それぞれには、元のポリヌクレオチド構成体を複製したもの、及び元のウイルス構成体の子孫が含まれる。
「制御因子」または「制御配列」とは、ポリヌクレオチドの複製、重複、転写、スプライシング、翻訳、または分解など、ポリヌクレオチドの機能調節に寄与する分子相互作用に関与するヌクレオチド配列である。かかる調節は、その過程の頻度、速度、または特異性に影響を与え得、増強性または抑制性のいずれでもあり得る。当該技術分野で公知の制御因子には、例えば、プロモーター及びエンハンサーなどの転写制御配列が含まれる。プロモーターは、特定の条件下、RNAポリメラーゼと結合して、通常プロモーターの下流(3’方向)に位置するコード領域の転写を開始することができるDNA領域である。
「機能的に連結された(operatively linked)」または「機能的に連結された(operably linked)」とは、遺伝因子の並置を指し、ここで、かかる因子は、予測される様態でそれらが機能できるような関係にある。例えば、プロモーターがコード配列の転写開始を助ける場合、そのプロモーターはコード領域に機能的に連結されている。この機能的関係が維持されるのであれば、プロモーターとコード領域の間に介在残基があってよい。
「発現ベクター」とは、目的のポリペプチドをコードする領域を含むベクターであり、意図する標的細胞におけるタンパク質の発現を実施するために使用される。発現ベクターは、コード領域に機能的に連結された、標的でのタンパク質発現を促進する制御因子も含む。制御因子と、発現のためにそれらが機能的に連結されている遺伝子(複数可)との組み合わせは「発現カセット」と呼ばれる場合があり、それらの多くは当該技術分野で公知かつ利用可能であるか、または当該技術分野で利用可能な構成成分から容易に構築可能である。
「異種の」とは、遺伝子型が、比較対象実体の他の部分の遺伝子型とは異なる遺伝子型に由来することを意味する。例えば、遺伝子工学技術によって異なる種に由来するプラスミドまたはベクターに導入されたポリヌクレオチドは異種ポリヌクレオチドである。本来の天然コード配列から除去され、天然では連結が見られないコード配列に対して機能的に連結されているプロモーターは、異種プロモーターである。したがって、例えば、異種遺伝子産物をコードする異種核酸を含むrAAVは、通常は天然に生じる野生型AAVには含まれない核酸を含むrAAVであり、そのコードされた異種遺伝子産物は、通常は天然に生じる野生型AAVによりコードされない遺伝子産物である。別の例として、カプシドタンパク質のGHループに挿入された異種ペプチドを含む変異AAVカプシドタンパク質は、通常は天然に生じる野生型AAVには含まれないペプチドの挿入が含まれている変異AAVカプシドタンパク質である。
用語「遺伝子変化」及び「遺伝子改変」(及びその文法的変形)は本明細書では同じ意味で使用され、遺伝因子(例えば、ポリヌクレオチド)が有糸分裂または減数分裂以外によって細胞に導入される過程を指す。因子は、細胞にとって異種のものであっても、またはさらなるコピーであるかもしくは細胞にすでに存在する因子の改善型であってもよい。遺伝子変化は、例えば、当該技術分野で公知の任意の方法、例えば、電気穿孔法、リン酸カルシウム沈殿などによって組換えプラスミドもしくは他のポリヌクレオチドを細胞にトランスフェクトするか、またはポリヌクレオチド−リポソーム複合体と接触させることによって実施してよい。遺伝子変化は、例えば、DNAまたはRNAのウイルスまたはウイルスベクターを用いた形質導入または感染によって実施してもよい。一般に、遺伝因子は細胞の染色体またはミニ染色体内に導入されるが、細胞及びその子孫の表現型及び/または遺伝子型が変わる変化は、いずれもこの用語に含まれる。
遺伝子配列を用いて細胞が「安定に」変化させられた、形質導入された、遺伝子改変された、または形質転換されたというのは、インビトロでその細胞を長期培養した際に、かかる配列がその機能を実施するために利用可能な場合である。一般に、遺伝子変化が導入されたそのような細胞は「遺伝的に」変化させられ(遺伝子改変され)ており、変化した細胞の子孫にも遺伝性である。
用語「ポリペプチド」、「ペプチド」、及び「タンパク質」は本明細書では同じ意味で使用され、任意の長さのアミノ酸ポリマーを指す。かかる用語は、改変されているアミノ酸ポリマー、例えば、ジスルフィド結合形成、グリコシル化、脂質付加、リン酸化、または標識成分との複合体化などをも包含する。遺伝子産物を哺乳類の対象に送達するという観点で考察する場合、血管新生阻害ポリペプチド、神経保護ポリペプチド等のようなポリペプチド、及びそのための組成物とは、それぞれの無傷ポリペプチド、またはその任意の断片もしくは遺伝子操作による誘導体であって、その無傷タンパク質の所望の生化学的機能を保持しているものを指す。同様に、血管新生阻害ポリペプチドをコードする核酸、神経保護ポリペプチドをコードする核酸、及び哺乳類対象への遺伝子産物(レシピエント細胞に送達されるべき「導入遺伝子」と呼ばれ得る)の送達で使用するための他のそのような核酸への言及には、無傷ポリペプチドまたは所望の生化学的機能を有する任意の断片もしくは遺伝子操作による誘導体をコードするポリヌクレオチドが含まれる。
「単離された」プラスミド、核酸、ベクター、ウイルス、ビリオン、宿主細胞、または他の物質とは、その物質または類似物質が天然に生じるかまたはそれを元に最初に調製する場合に存在し得る他の構成成分のうち、少なくともいくつかを欠いている物質の調製物を指す。したがって、例えば、精製技術を使用して、供給源混合物から濃縮させることにより単離物質を調製してよい。濃縮は、溶液の体積あたりの質量のような絶対測定に基づくか、または元の混合物中に存在する第2の強力な妨害物質との関係で測定を行う、いずれの測定も可能である。本発明の実施形態の濃縮物が多いほど、より一層単離される。単離されたプラスミド、核酸、ベクター、ウイルス、宿主細胞、または他の物質は、場合によっては精製され、例えば、約80%〜約90%純粋であり、少なくとも約90%純粋であり、少なくとも約95%純粋であり、少なくとも約98%純粋であるか、もしくは少なくとも約99%、またはそれ以上純粋である。
用語「治療(treatment)」、「治療すること(treating)」、「治療する(treat)」等は本明細書では一般に、所望の薬理作用及び/または生理学的作用を得ることを指すために使用する。作用は、疾患またはその症状(複数可)を完全もしくは部分的に予防するという点で予防的であり得、及び/または、疾患及び/またはかかる疾患に起因する有害作用に対する部分的もしくは完全な安定化もしくは治癒という点で治療的であってよい。用語「治療(treatment)」とは、哺乳類、特にヒトの疾患の任意の治療を包含し、それには、(a)疾患または症状(複数可)にかかりやすい可能性はあるが、まだそのように診断されていない対象において、かかる疾患及び/または症状(複数可)の発現を予防すること、(b)疾患及び/または症状(複数可)を阻害すること、すなわち疾患及び/または関連症状の発症を停止させること、または(c)疾患及び関連症状(複数可)を軽減すること、すなわち疾患及び/または症状(複数可)を退縮させることが含まれる。治療を必要とする対象には、すでに苦しんでいる対象(例えば、神経性障害のある対象)ならびに予防が所望される対象(例えば、神経性障害に対する感受性が高い対象、神経性障害であることが疑われる対象、神経性障害の危険因子を1つ以上有する対象等)が含まれ得る。
用語「レシピエント」、「個体」、「対象」、「宿主」、及び「患者」は本明細書では同じ意味で使用され、診断、治療(treatment)、または治療(therapy)が所望される任意の哺乳類の対象、例えば、ヒトを指す。治療を目的とする場合の「哺乳類」とは、哺乳類に分類されている任意の動物を指し、これには、ヒト、飼育用及び家畜用動物、ならびに動物園用、競技用、またはペット用動物、例えば、非ヒト霊長類、イヌ、ウマ、ネコ、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ブタ、ラクダ等が含まれる。場合によっては、哺乳類はヒトである。
「治療的有効量」または「有効な量」とは、疾患の治療のために哺乳類または他の対象に投与した場合に、かかる疾患のそのような治療をもたらすために、別の薬剤との併用または単独で1つ以上の用量で十分である化合物の量を意味する。「治療的有効量」は、化合物、疾患及びその重症度ならびに治療すべき対象の年齢、体重等に応じて異なる。
用語「個体」、「宿主」、「対象」、及び「患者」は本明細書では同じ意味で使用されて哺乳類を指し、これには、サル及びヒトなどのヒト及び非ヒト霊長類、哺乳類の競技用動物(例えば、ウマ、ラクダなど)、哺乳類の家畜(例えば、ヒツジ、ヤギ、ウシなど)、哺乳類のペット(イヌ、ネコなど)、及びげっ歯類(例えば、マウス、ラット等)が挙げられるが、これに限定されるものではない。場合によっては、個体はヒトである。
本発明を詳述する前に、本発明は、記載される特定の実施形態に限定されるものではなく、そのような実施形態は当然ながら異なり得ることを理解されるべきである。本発明の範囲は添付の請求の範囲によってのみ限定されるため、本明細書で使用する用語は、あくまで個々の実施形態の記載のみを目的とするものであり、限定することを意図しないということも理解されるべきである。
値の範囲が提供されている場合、その範囲の上限と下限の間に介在する値のそれぞれ(文脈で特に明確な指示がない限り、下限の10分の1の単位まで)、及びその記述された範囲において記述されているか介在している任意の他の値は、本発明に包含されるものと理解される。これらの小範囲の上限及び下限は、その記述された範囲内に独立して含まれてよく、また、その記述された範囲で具体的に除外された任意の限界値に従って本発明に包含される。記述されている範囲に限界値のうち一方または両方が含まれる場合、その含まれた限界値のいずれかまたは両方を除外した範囲もまた本発明に含まれる。
特に明記しないかぎり、本明細書で使用する技術用語及び科学用語はいずれも、本発明の属する分野の当業者に共通して理解される意味と同一の意味を持つ。本発明の実施または試験に際し、本明細書に記載される方法及び材料と類似または同等の任意の方法及び材料も使用することができるが、ここにその好ましい方法及び材料を記載する。本明細書で言及される刊行物はすべて、方法及び/または材料を、引用されている刊行物と関連させて開示及び記載するために参照することにより本明細書に組み込まれる。
本明細書及び添付の請求の範囲で使用する場合、単数形「a」、「an」、及び「the」には、文脈で特に明確に指示されない限り、複数の指示対象が含まれることに留意しなければならない。したがって、例えば、「神経幹細胞」への言及には、そのような細胞の複数が含まれ、「rAAV」への言及には、当業者に公知の1つ以上のrAAV及びその同等物への言及が含まれるということになる。請求項は、いかなる任意選択の要素も除外するよう起案されてよいことにさらに留意されたい。したがって、本記述は、「唯一」、「のみ」等のような限定的用語を請求項要素の詳述との関連で使用すること、または「否定的」限定を使用することに対し前提となる根拠として使用されることが意図される。
分かりやすくするために別々の実施形態で記載されている本発明の特定の特徴は、それらの特徴を合せて単一の実施形態で提供してもよいことが認識される。逆に、簡潔にするために単一の実施形態で記載されている本発明のさまざまな特徴は、別々に、または適切な任意の部分的組み合わせで提供してもよい。本発明に関連する実施形態の組み合わせはすべて明確に本発明に包含され、それらは、ありとあらゆる組み合わせが個々別々に明示的に開示されているかの如く本明細書に開示される。さらに、さまざまな実施形態及びその要素のあらゆる部分的組み合わせもまた明確に本発明に包含され、それらは、ありとあらゆる、そのような部分的組み合わせが個々別々に明示的に本明細書に開示されているかの如く本明細書に開示される。
本明細書で論じる刊行物は、本出願の出願日前のそれらの開示のみを目的として提供されている。本明細書のいかなる記載も、本発明が先行発明を理由としてかかる刊行物に先行する権利がないことを承認するものと解釈すべきではない。さらに、提示される刊行日は実際の刊行日と異なる可能性があり、実際の刊行日を個別に確認する必要がある可能性がある。
詳細な説明
本開示は、変異カプシドタンパク質を有する組換え型アデノ随伴ウイルスビリオンを提供し、ここで、かかる組換え型AAV(rAAV)ビリオンは、対照AAVと比較して、神経細胞障壁を通過する高い能力、神経幹細胞への高い感染力、神経細胞への高い感染力、及び抗体による中和に対する低い感受性のうち1つ以上を示し、かつ、異種核酸を含む。本開示は、個体の神経幹細胞、神経前駆細胞、または神経細胞に遺伝子産物を送達する方法を提供する。本開示は、神経幹細胞内または神経細胞内に存在する標的核酸を修飾する方法も提供する。本開示はさらに、神経疾患を治療する方法を提供する。
変異カプシドポリペプチドを有する組換え型AAVビリオン
本開示は、(i)本開示の変異型AAVカプシドポリペプチドと、(ii)異種ポリペプチド(すなわち、非AAVポリペプチド)をコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸とを含む感染性rAAVビリオンを提供する。場合によっては、変異AAVカプシドタンパク質は、少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する少なくとも5つのセグメントを含み、ここで、各セグメントは長さが約50アミノ酸〜約160アミノ酸である。変異カプシドタンパク質は、以下の特性のうち1つ以上を付与する:(i)対応する親AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンによる神経幹細胞または神経前駆細胞への感染力と比較して、または野生型AAVビリオンと比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンと比較して、神経幹細胞または神経前駆細胞への感染力が高い、(ii)対応する親AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンによる神経細胞への感染力と比較して、または野生型AAVビリオンと比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンと比較して、神経細胞への感染力が高い、(iii)対応する親AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンが細胞障壁を通過する能力と比較して、または野生型AAVビリオンが細胞障壁を通過する能力と比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンと比較して、細胞障壁を通過する能力が高い、(iv)対応する親AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンにより示される耐性と比較して、または野生型AAVビリオンと比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンと比較して、ヒトAAV中和抗体に対する耐性が高い。
対照AAVビリオンは、親AAVカプシドタンパク質を含むことができる。対照AAVビリオンは、野生型AAVカプシドを含む、例えば、野生型カプシドのみを含む(および本開示のいかなる変異AAVカプシドも含まない)AAVビリオンであり得る。例えば、対照AAVビリオンは、野生型AAV2カプシドを含むことができる。別の例として、対照AAVビリオンは、野生型AAV6カプシドを含むことができる。別の例として、対照AAVビリオンは、野生型AAV9カプシドを含むことができる。
神経幹細胞または神経前駆細胞への高い感染力
本開示は、変異カプシドタンパク質を有するrAAVビリオンを提供し、かかるrAAVビリオンは、変異カプシドタンパク質を含まない対照親AAVが神経幹細胞(NSC)または神経前駆細胞を感染させる能力と比較して、または野生型AAVがNSCまたは神経前駆細胞を感染させる能力と比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンがNSCまたは神経前駆細胞を感染させる能力と比較して、NSCまたは神経前駆細胞への高い感染力を示し、かつ、かかるrAAVビリオンは異種核酸を含む。
場合によっては、NSCは脳室下帯(SVZ)NSCである。SVZは、上衣細胞層に沿って位置し、この上衣細胞により脳室腔とSVZが隔てられている。SVZのNSCは一過性増殖前駆細胞を生じさせることができ、この細胞は数回分裂してから神経芽細胞となる。場合によっては、NSCは、海馬の歯状回内の顆粒細胞下帯(SGZ)にある。顆粒細胞層内側と歯状回門に挟まれた境界にあるSGZの放射状グリア様NSC(RGL)は中間前駆細胞(IPC)を生じさせるが、この前駆細胞は、神経芽細胞を生み出すまでの増殖回数が限られている。神経前駆細胞(NPC)には、一過性増殖細胞、RGL、IPC、及び神経芽細胞が含まれる。場合によっては、NSCは、海馬由来であるかまたは海馬に存在する。場合によっては、NSCは発達中の神経系に存在し、例えば、NSCは胚に存在する。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンのNSCへの感染力と比較して、変異カプシドポリペプチドを含まないAAVビリオンのNSCへの感染力と比較して、または野生型AAVビリオン(野生型AAVカプシドを含む)のNSCへの感染力と比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンのNSCへの感染力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いNSCへの感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかもしくは野生型AAVカプシドを含むAAVビリオン、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンを頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、もしくは静脈内注射によって投与した場合のNSCへの感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いNSCへの感染力を示す。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含むAAVビリオンのNPCへの感染力と比較して、変異カプシドポリペプチドを含まないAAVビリオンのNPCへの感染力と比較して、または野生型AAVビリオン(野生型AAVカプシドを含む)のNPCへの感染力と比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンのNPCへの感染力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いNPCへの感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含むAAVビリオンの神経芽細胞への感染力と比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンと比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い神経芽細胞への感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかもしくは野生型AAVカプシドを含むAAVビリオンの神経芽細胞への感染力と比較して、または頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合の野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンと比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い神経芽細胞への感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンの一過性増殖細胞への感染力と比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンと比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い一過性増殖細胞への感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンの一過性増殖細胞への感染力と比較して、または同一投与経路によって野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンを投与した場合の一過性増殖細胞への感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い一過性増殖細胞への感染力を示す。
所与のrAAVビリオンがNSCまたはNPCへの高い感染力を示すかどうかはインビトロでもインビボでも決定することができる。例えば、所与のrAAVビリオンがNSCへの高い感染力を示すかどうかは、NSCをインビトロでrAAVビリオンと接触させ、rAAVビリオンによりコードされる異種遺伝子産物のNSCでの発現を検出することによって決定することができる。異種遺伝子産物により検出可能シグナルを得ることができ、NSCにおけるその検出可能シグナルレベルから、所与のrAAVビリオンがNSCへの高い感染力を示すか否かに関する指標を得ることができる。
場合によっては、a)以下に記載のように、少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する、各セグメントが約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の少なくとも5つのセグメントを含む本開示の変異カプシドと、b)異種遺伝子産物をコードする異種ヌクレオチド配列とを含む本開示のrAAVビリオンは、個体に投与した場合、a)対照AAV(例えば、野生型AAVカプシド)と、b)異種遺伝子産物をコードする異種ヌクレオチド配列とを含む対照rAAVビリオンを個体に投与した場合に生じる神経幹細胞での遺伝子産物レベルより大きい、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上というレベルの異種遺伝子産物を神経幹細胞にもたらす。投与は、多数の経路を介した、例えば、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射を介した投与であり得る。
所与のrAAVビリオンがNSCへの高い感染力を示すかどうかは、NSCにおいてrAAVビリオンによりコードされる治療用遺伝子産物の治療効果を評価することによって決定することができる。治療効果には、例えば、a)神経発生の亢進、b)神経性の疾患または障害の症状の改善等が含まれ得る。例えば、a)本開示の変異カプシドと、b)異種の治療用遺伝子産物をコードする異種ヌクレオチド配列とを含む本開示のrAAVビリオンは、個体に投与した場合(例えば、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射を介して)、a)対照AAVカプシド(例えば、野生型AAVカプシド)と、b)異種の治療用遺伝子産物をコードする異種ヌクレオチド配列とを含む対照rAAVビリオンを同一投与経路で投与した場合に生じる治療用遺伝子産物の治療効果より大きい、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上の治療効果を神経幹細胞にもたらす。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路で投与した場合の、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンのNSCへの感染力と比較して、または野生型AAVビリオン(野生型AAVカプシドポリペプチドを含む)によるNSCへの感染力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いNSCへの感染力を示す。
神経細胞への高い感染力
上記のように、場合によっては、本開示のrAAVビリオンに存在する変異カプシドポリペプチドは、変異カプシドタンパク質を含まない対照親AAVまたは野生型AAVが神経細胞を感染させる能力と比較して、高い神経細胞への感染力をrAAVビリオンに付与する。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンによる神経細胞への感染力と比較して、または野生型AAVカプシドポリペプチドを含むAAVビリオンによる神経細胞への感染力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い神経細胞への感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路によって投与した場合の、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンの神経細胞への感染力と比較して、または野生型AAVによる神経細胞への感染力と比較して、または野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンと比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い神経細胞への感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、大脳半球、大脳皮質、皮質下運動皮質、線条体、内包、視床、視床下部、海馬、中脳、脳幹、または小脳の神経細胞への感染力が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンによる同一組織の神経細胞への感染力と比較して、または野生型AAVカプシドポリペプチドを含むAAVビリオンによる神経細胞への感染力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いことを示す。
一例として、場合によっては、対象rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンによるプルキンエ細胞への感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いプルキンエ細胞への感染力を示す。
一例として、場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路で投与した場合の、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンによるプルキンエ細胞への感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いプルキンエ細胞への感染力を示す。
一例として、場合によっては、対象rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンによるGABA作動性細胞への感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いGABA作動性細胞への感染力を示す。
一例として、場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路で投与した場合の、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンによるGABA作動性細胞への感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いGABA作動性細胞への感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンによるグリア細胞への感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いグリア細胞への感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路で投与した場合の、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンによるグリア細胞への感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いグリア細胞への感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンのアストロサイトへの感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いアストロサイトへの感染力を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンを頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合のアストロサイトへの感染力と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いアストロサイトへの感染力を示す。
所与のrAAVビリオンが神経細胞への高い感染力を示すかどうかは、インビトロでもインビボでも決定することができる。例えば、所与のrAAVビリオンが神経細胞への高い感染力を示すかどうかは、神経細胞をインビトロでrAAVビリオンと接触させ、rAAVビリオンによりコードされる異種遺伝子産物の神経細胞での発現を検出することによって決定することができる。異種遺伝子産物により検出可能シグナルを得ることができ、神経細胞におけるその検出可能シグナルレベルから、所与のrAAVビリオンが神経細胞への高い感染力を示すか否かに関する指標を得ることができる。
所与のrAAVビリオンが神経細胞への高い感染力を示すかどうかは、個体へのrAAVビリオンの投与の後、rAAVビリオンによりコードされる異種遺伝子産物の神経細胞での発現を検出することによって決定することができる。所与のrAAVビリオンが神経細胞への高い感染力を示すかどうかは、rAAVビリオンの頭蓋内投与、脳室内投与、髄腔内投与、大槽内投与、または静脈内投与の後、rAAVビリオンによりコードされる異種遺伝子産物の神経細胞での発現を検出することによって決定することができる。例えば、a)上記のように、少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する、各セグメントが約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の少なくとも5つのセグメントを含む本開示の変異カプシドと、b)異種遺伝子産物をコードする異種ヌクレオチド配列とを含む本開示のrAAVビリオンは、投与した場合、a)対照AAVカプシドまたは野生型AAVカプシドと、b)異種遺伝子産物をコードする異種ヌクレオチド配列とを含む対照rAAVビリオンを、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合に生じる神経細胞での遺伝子産物レベルより大きい、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上というレベルの異種遺伝子産物を神経細胞にもたらす。
所与のrAAVビリオンが神経細胞への高い感染力を示すかどうかは、神経細胞においてrAAVビリオンによりコードされる治療用遺伝子産物の治療効果を評価することによって決定することができる。治療効果には、例えば、(a)神経細胞機能の亢進、(b)神経性の疾患または障害の症状の改善等が含まれ得る。例えば、(a)上記のように、ペプチド挿入またはペプチド置換を含む本開示の変異カプシドと、(b)異種の治療用遺伝子産物をコードする異種ヌクレオチド配列を含む本開示のrAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、(a)ペプチド挿入またはペプチド置換を含まない対照AAVカプシドと、(b)異種の治療用遺伝子産物をコードする異種ヌクレオチド配列とを含む対照rAAVビリオンを同一投与経路で投与した場合に生じる、治療用遺伝子産物の神経細胞での治療効果より大きい、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上の治療効果を神経細胞にもたらす。
細胞障壁の通過
本開示は、変異カプシドタンパク質を有する組換え型アデノ随伴ウイルスビリオンを提供し、かかるrAAVビリオンは、細胞障壁、すなわち生理的障壁を通過する高い能力を示す。例えば、細胞障壁は、神経幹細胞が含まれない第1のコンパートメントと、神経幹細胞が含まれる第2のコンパートメントとの間にある細胞の層を含むことができる。そのような障壁には、例えば、側脳室の表面を覆う上衣細胞層、低細胞性層、アストロサイト細胞体層、血液脳関門、及び移行帯層が含まれる。したがって、本開示は、変異カプシドタンパク質を有するrAAVビリオンを提供し、かかるrAAVビリオンは、上衣細胞層、低細胞性層、アストロサイト細胞体層、及び移行帯層の1つ以上を通過する能力が、変異カプシドタンパク質を含まない対照AAVの層通過能力と比較して、または野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVの能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いことを示し、かつ、かかるrAAVビリオンは、異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸を含む。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドを含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照rAAVビリオンが、側脳室の表面を覆う上衣細胞層を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い上衣細胞層通過能を示す。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドを含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照rAAVビリオンが血液脳関門を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い血液脳関門通過能を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路で投与した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンが上衣細胞層を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い上衣細胞層通過能を示す。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドを含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照rAAVビリオンが低細胞性細胞層を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い低細胞性層通過能を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路で投与した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンが低細胞性層を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い低細胞性層通過能を示す。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドを含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照rAAVビリオンがアストロサイト細胞体層を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いアストロサイト細胞体層通過能を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路で投与した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンがアストロサイト細胞体層を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いアストロサイト細胞体層通過能を示す。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドを含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照rAAVビリオンが移行帯層を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い移行帯層通過能を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路で投与した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンが移行帯層を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い移行帯層通過能を示す。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドを含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照rAAVビリオンが脳実質を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い脳実質通過能を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射によって投与した場合、同一投与経路で投与した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含むAAVビリオンが脳実質を通過する能力と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い脳実質通過能を示す。
場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内投与、脳室内投与、髄腔内投与、大槽内投与、または静脈内投与で注入した場合、同一投与経路で注入した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンが上衣層を越えて局在する程度と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い、上衣層を越えた局在を示す。
例えば、場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内投与、脳室内投与、髄腔内投与、大槽内投与、または静脈内投与で注入した場合、同一投与経路で注入した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンが低細胞性層に局在する程度と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い低細胞性層への局在を示す。
別の例として、場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内投与、脳室内投与、髄腔内投与、大槽内投与、または静脈内投与で注入した場合、同一投与経路で注入した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンがアストロサイト細胞体層に局在する程度と比較して、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高いアストロサイト細胞体層への局在を示す。
別の例として、場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内投与、脳室内投与、髄腔内投与、大槽内投与、または静脈内投与で注入した場合、同一投与経路で注入した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンが移行帯層に局在する程度と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い移行帯層への局在を示す。
別の例として、場合によっては、対象rAAVビリオンは、頭蓋内投与、脳室内投与、髄腔内投与、大槽内投与、または静脈内投与で注入した場合、同一投与経路で注入した際に、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンが脳実質に局在する程度と比較して、少なくとも2倍、少なくとも5倍、少なくとも10倍、少なくとも15倍、少なくとも20倍、少なくとも25倍、少なくとも50倍、または50倍以上高い脳実質への局在を示す。
中和抗体による中和に対する感受性の低下
上記のように、場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、野生型AAVカプシドを含むAAVに対する中和抗体の結合と比較して、中和抗体への結合低下を示す。
中和抗体への結合低下は都合がよい。中和抗体は野生型カプシドタンパク質に結合する。中和抗体と野生型カプシドタンパク質が結合すると、ウイルス粒子内に野生型カプシドタンパク質を含むrAAVビリオンの滞留時間の制限、細胞表面へのウイルス結合の妨害、ウイルスの凝集、カプシドの構造変化の誘導、ならびにウイルスの分解及び脱殻(DNA放出に必要な段階)の妨害など、いくつかの影響を及ぼし得る。したがって、中和抗体への結合が低下しているrAAV粒子は、細胞を感染させる能力が高く、rAAVビリオンを用いた投与を受けた個体の体内での滞留時間が長い。そのため、遺伝子産物送達の有効持続時間が長くなる。
ある場合には、本開示のrAAVビリオンは、野生型AAV(「wt AAV」)または野生型カプシドタンパク質を含むAAVと比較して、中和抗体に対する高い耐性を示す。場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、中和抗体に対する耐性がwt AAVよりも約1.5倍〜約10倍、10,000倍高く、例えば、場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、中和抗体に対する耐性がwt AAVよりも約1.5倍〜約2倍、約2倍〜約2.5倍、約2.5倍〜約3倍、約3倍〜約4倍、約4倍〜約5倍、約5倍〜約6倍、約6倍〜約7倍、約7倍〜約8倍、約8倍〜約9倍、または約9倍〜約10倍高い。場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、中和抗体に対する耐性がwt AAVよりも約10倍〜約10,000倍高く、例えば、本開示のrAAVビリオンは、中和抗体に対する耐性が野生型AAVまたは野生型カプシドタンパク質を含むAAVよりも約10倍〜約25倍、約25倍〜約50倍、約50倍〜約75倍、約75倍〜約100倍、約100倍〜約150倍、約150倍〜約200倍、約200倍〜約250倍、約250倍〜約300倍、少なくとも約350倍、少なくとも約400倍、約400倍〜約450倍、約450倍〜約500倍、約500倍〜約550倍、約550倍〜約600倍、約600倍〜約700倍、約700倍〜約800倍、約800倍〜約900倍、約900倍〜約1000倍、約1,000倍〜約2,000倍、約2,000倍〜約3,000倍、約3,000倍〜約4,000倍、約4,000倍〜約5,000倍、約5,000倍〜約6,000倍、約6,000倍〜約7,000倍、約7,000倍〜約8,000倍、約8,000倍〜約9,000倍、または約9,000倍〜約10,000倍高い。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、野生型AAVカプシドタンパク質と結合する中和抗体への結合低下を示す。例えば、場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、野生型AAVカプシドタンパク質と結合する中和抗体に対し約10倍〜約10,000倍の結合減少を示す。例えば、場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、野生型AAVカプシドタンパク質に対する抗体の結合親和性と比較して、野生型カプシドAAVタンパク質と結合する中和抗体に対する約10倍〜約25倍、約25倍〜約50倍、約50倍〜約75倍、約75倍〜約100倍、約100倍〜約150倍、約150倍〜約200倍、約200倍〜約250倍、約250倍〜約300倍、少なくとも約350倍、少なくとも約400倍、約400倍〜約450倍、約450倍〜約500倍、約500倍〜約550倍、約550倍〜約600倍、約600倍〜約700倍、約700倍〜約800倍、約800倍〜約900倍、約900倍〜約1000倍、約1,000倍〜約2,000倍、約2,000倍〜約3,000倍、約3,000倍〜約4,000倍、約4,000倍〜約5,000倍、約5,000倍〜約6,000倍、約6,000倍〜約7,000倍、約7,000倍〜約8,000倍、約8,000倍〜約9,000倍、または約9,000倍〜約10,000倍の結合減少(例えば、親和性低下)を示す。
場合によっては、抗AAV中和抗体は、本開示のrAAVビリオンに結合し、親和性が約10−7M未満、約5×10−6M未満、約10−6M未満、約5×10−5M未満、約10−5M未満、約10−4M未満、またはそれより低い。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、野生型AAVと比較して長い生体内滞留時間を示す。例えば、場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、野生型AAVの滞留時間よりも長い、少なくとも約10%、少なくとも約25%、少なくとも約50%、少なくとも約100%、少なくとも約3倍、少なくとも約5倍、少なくとも約10倍、少なくとも約25倍、少なくとも約50倍、少なくとも約100倍、またはそれ以上である滞留時間を示す。
本開示の所与のrAAVが中和抗体に対する結合減少を示すか否かは、親和性決定に使用される多種多様ないずれの標準的結合アッセイを使用しても決定することができる。
選択的感染力
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは神経細胞を選択的に感染させ、例えば、本開示のrAAVビリオンは、神経細胞を、非神経細胞よりも10倍、15倍、20倍、25倍、50倍、または50倍以上特異的に感染させる。
場合によっては、本開示のrAAVビリオンは神経幹細胞を選択的に感染させ、例えば、対象rAAVビリオンは、神経幹細胞を、非神経幹細胞、例えば、間葉幹細胞、造血幹細胞等よりも10倍、15倍、20倍、25倍、50倍、または50倍以上特異的に感染させる。
変異カプシドポリペプチド
上記のように、本開示のrAAVビリオンは変異AAVカプシドタンパク質を含む。場合によっては、本開示のrAAVビリオンに存在する変異AAVカプシドタンパク質は、少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する少なくとも5つのセグメントを含み、各セグメントは、長さが約50アミノ酸〜約160アミノ酸である。
本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来するセグメントを含む。例えば、場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第1のセグメント、第2のAAV血清型のアミノ酸51〜アミノ酸320に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第2のセグメント、第3のAAV血清型のアミノ酸101〜アミノ酸480に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第3のセグメント、第2のAAV血清型のアミノ酸151〜アミノ酸640に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第4のセグメント、及び第2のAAV血清型のアミノ酸201からC末端までのアミノ酸に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第5のセグメントを含む。場合によっては、第1のAAV血清型はAAV6であり、第2のAAV血清型はAAV9であり、第3のAAV血清型はAAV8である。
場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第1のセグメント、第2のAAV血清型のアミノ酸51〜アミノ酸320に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第2のセグメント、第3のAAV血清型のアミノ酸101〜アミノ酸480に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第3のセグメント、第2のAAV血清型のアミノ酸151〜アミノ酸640に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第4のセグメント、及び第4のAAV血清型のアミノ酸201からC末端までのアミノ酸に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第5のセグメントを含む。場合によっては、第1のAAV血清型はAAV6であり、第2のAAV血清型はAAV9であり、第3のAAV血清型はAAV8であり、第4のAAV血清型はAAV2である。
場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、i)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV6のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸1〜アミノ酸160の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第1のセグメント、ii)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV9のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸1〜アミノ酸160の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第2のセグメント、iii)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV8のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸101〜アミノ酸480の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第3のセグメント、iv)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV9のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸151〜アミノ酸640の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第4のセグメント、v)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV9のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸201からC末端までのアミノ酸の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第5のセグメントを含む。
場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、i)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV6のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸1〜アミノ酸160の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第1のセグメント、ii)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV9のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸1〜アミノ酸160の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第2のセグメント、iii)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV8のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸101〜アミノ酸480の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第3のセグメント、iv)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV9のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸151〜アミノ酸640の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第4のセグメント、v)約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長であり、かつ、図10に示すAAV2のカプシドのアミノ酸配列のうちアミノ酸201からC末端までのアミノ酸の連続アミノ酸領域に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む、第5のセグメントを含む。
場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第1のセグメント、第2のAAV血清型の約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第2のセグメント、第3のAAV血清型の約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第3のセグメント、第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第4のセグメント、第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第5のセグメント、第4のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第6のセグメント、第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第7のセグメント、及び第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第8のセグメントを含む。場合によっては、第1のAAV血清型はAAV6であり、第2のAAV血清型はAAV9であり、第3のAAV血清型はAAV8であり、第4のAAV血清型はAAV2である。
場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、図10に示すSCH9アミノ酸配列に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む。場合によっては、変異カプシドタンパク質は、図10に示すSCH9アミノ酸配列のアミノ酸配列を含む。
場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、第1のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第1のセグメント、第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第2のセグメント、第3のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第3のセグメント、第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第4のセグメント、第4のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第5のセグメント、第4のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第6のセグメント、第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第7のセグメント、及び第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第8のセグメントを含む。場合によっては、第1の血清型はAAV6であり、第2のAAV血清型はAAV9であり、第3のAAV血清型はAAV8であり、第4のAAV血清型はAAV2である。
場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、図10に示すSCH2アミノ酸配列に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む。場合によっては、変異カプシドタンパク質は、図10に示すSCH2アミノ酸配列のアミノ酸配列を含む。
場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、図8に示すSCH9アミノ酸配列に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む。場合によっては、本開示の変異AAVカプシドタンパク質は、図9に示すSCH2アミノ酸配列に対する少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%を有するアミノ酸配列を含む。
さらなる変異
場合によっては、本開示の変異カプシドポリペプチドは、1つ以上のさらなる変異(例えば、アミノ酸置換、1つ以上のアミノ酸の挿入、1つ以上のアミノ酸の欠失)を含む。
例えば、場合によっては、本開示の変異カプシドポリペプチドは、対応する親AAVカプシドタンパク質に対し、カプシドタンパク質GHループに約5アミノ酸〜約20アミノ酸(例えば、5アミノ酸〜7アミノ酸、7アミノ酸〜10アミノ酸、10アミノ酸〜15アミノ酸、または15アミノ酸〜20アミノ酸)の挿入を含む。挿入部位は、AAVカプシドタンパク質のGHループまたはループIV内、例えば、AAVカプシドタンパク質のGHループまたはループIVの溶媒接近可能部分内であり得る。AAVカプシドのGHループ/ループIVについては、例えば、van Vliet et al.(2006)Mol.Ther.14:809;Padron et al.(2005)J.Virol.79:5047、及びShen et al.(2007)Mol.Ther.15:1955を参照のこと。
場合によっては、対応する親AAVカプシドタンパク質に対し、長さが約5アミノ酸〜約20アミノ酸(例えば、5アミノ酸〜7アミノ酸、7アミノ酸〜10アミノ酸、10アミノ酸〜12アミノ酸、12アミノ酸〜15アミノ酸、または15アミノ酸〜20アミノ酸)である異種ペプチドを、カプシドタンパク質のGHループまたはループIV内の挿入部位に挿入する。例えば、挿入部位は、図21A〜21Cに示すような、AAVカプシドタンパク質のアミノ酸411〜アミノ酸650内であっても、または本開示の変異AAVカプシドタンパク質の対応する領域であっても可能である。図21A〜21Cにアミノ酸配列が示されているので、当業者は本開示の変異カプシド内の適切な挿入部位を容易に決定することができる。例えば、挿入部位は、AAV2のアミノ酸587とアミノ酸588の間、またはAAV2のアミノ酸588とアミノ酸589の間、または別のAAV血清型のカプシドサブユニットの対応する位置、または本開示の変異AAVカプシドのカプシドサブユニットの対応する位置であり得る。挿入部位587/588は、AAV2カプシドタンパク質に基づくものであることに留意すべきである。長さが5アミノ酸〜約20アミノ酸(例えば、5アミノ酸〜7アミノ酸、7アミノ酸〜10アミノ酸、10アミノ酸〜12アミノ酸、12アミノ酸〜15アミノ酸、または15アミノ酸〜20アミノ酸)である異種ペプチドは、AAV2以外のAAV血清型(例えば、AAV8、AAV9等)の対応する部位、または本開示の変異AAVカプシドのカプシドサブユニットの対応する位置に挿入することができる。当業者であれば、さまざまなAAV血清型のカプシドタンパク質アミノ酸配列の比較に基づいて、任意の所与のAAV血清型のカプシドタンパク質、または本開示の変異AAVカプシドのカプシドサブユニットの対応する位置にある「AAV2のアミノ酸587〜アミノ酸588に相当する」であろう挿入部位が分かるであろう。例えば、AAV1の場合はGenBank受託番号NP_049542、AAV4の場合はGenBank受託番号NP_044927、AAV5の場合はGenBank受託番号AAD13756、AAV6の場合はGenBank受託番号AAB95459、AAV7の場合はGenBank受託番号YP_077178、AAV8の場合はGenBank受託番号YP_077180、AAV9の場合はGenBank受託番号AAS99264、AAV10の場合はGenBank受託番号AAT46337、またAAVrh10の場合はGenBank受託番号AAO88208を参照のこと。例えば、祖先AAVカプシドについてはSantiago−Ortiz et al.(2015)Gene Ther.22:934を参照のこと。
場合によっては、本開示の変異カプシドポリペプチドは、
Figure 2020534788
から選択されるアミノ酸配列を含む挿入を含む。
場合によっては、本開示の変異カプシドポリペプチドは、
Figure 2020534788
から選択されるアミノ酸配列を含む挿入を含む。場合によっては、ペプチド挿入はTGVMRSTNSGLN(配列番号153)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGEVDLAGGGLS(配列番号154)である。場合によっては、ペプチド挿入はTSPYSGSSDGLS(配列番号155)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGGHDSSLDGLS(配列番号156)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGDGGTTMNGLS(配列番号157)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGGHGSAPDGLS(配列番号158)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGMHVTMMAGLN(配列番号159)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGASYLDNSGLS(配列番号160)である。場合によっては、ペプチド挿入はTVVSTQAGIGLS(配列番号161)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGVMHSQASGLS(配列番号162)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGDGSPAAPGLS(配列番号163)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGSDMAHGTGLS(配列番号164)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGSDGTRDHGLSPVTWT(配列番号166)である。場合によっては、ペプチド挿入はNGAVADYTRGLSPATGT(配列番号167)である。場合によっては、ペプチド挿入はTGGDPTRGTGLSPVTGA(配列番号168)である。場合によっては、ペプチド挿入はLQKNARPASTESVNFQ(配列番号169)である。場合によっては、ペプチド挿入はLQRGVRIPSVLEVNGQ(配列番号170)である。場合によっては、ペプチド挿入はLQRGNRPVTTADVNTQ(配列番号171)である。場合によっては、ペプチド挿入はLQKADRQPGVVVVNCQ(配列番号172)である。
場合によっては、挿入部位は、AAV2のアミノ酸587とアミノ酸588の間、AAV1のアミノ酸590とアミノ酸591の間、AAV5のアミノ酸575とアミノ酸576の間、AAV6のアミノ酸590とアミノ酸591の間、AAV7のアミノ酸589とアミノ酸590の間、AAV8のアミノ酸590とアミノ酸591の間、AAV9のアミノ酸588とアミノ酸589の間、またはAAV10のアミノ酸588とアミノ酸589の間である。
別の例として、場合によっては、本開示の変異カプシドポリペプチドは、親AAVカプシドタンパク質と比較するとアミノ酸置換を含んでいる。アミノ酸置換(複数可)は、カプシド内の溶媒接近可能部位、例えば、溶媒接近可能ループに位置させることができる。例えば、アミノ酸置換(複数可)は、AAVカプシドタンパク質のGHループに位置させることができる。場合によっては、変異カプシドタンパク質は、AAV6カプシド(配列番号11)のアミノ酸配列、またはAAV6以外の血清型の対応するアミノ酸と比較して、アミノ酸451及び/またはアミノ酸532におけるアミノ酸置換を含む。場合によっては、変異カプシドタンパク質は、AAV6カプシド(配列番号11)のアミノ酸配列、またはAAV6以外の血清型の対応するアミノ酸と比較して、アミノ酸319及び/またはアミノ酸451及び/またはアミノ酸532及び/またはアミノ酸642におけるアミノ酸置換を含む。場合によっては、変異カプシドタンパク質は、AAV6カプシド(配列番号11)のアミノ酸配列と比較して、次の置換I319V、N451D、D532N、及びH642Nの1つ以上を含む。
異種遺伝子産物
上記のように、本開示のrAAVビリオンは、1つ以上の遺伝子産物(1つ以上の異種遺伝子産物)をコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸を含む。場合によっては、遺伝子産物はポリペプチドである。場合によっては、遺伝子産物はRNAである。場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、異種核酸遺伝子産物及び異種ポリペプチド遺伝子産物の両方をコードする異種ヌクレオチド配列を含む。遺伝子産物がRNAである場合、場合によっては、RNA遺伝子産物はポリペプチドをコードする。遺伝子産物がRNAである場合、場合によっては、RNA遺伝子産物はポリペプチドをコードしない。場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、単一の異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含む単一異種核酸を含む。場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、2つの異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含む単一異種核酸を含む。単一異種核酸が2つの異種遺伝子産物をコードする場合、場合によっては、かかる2つの異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列は同一プロモーターに機能的に連結される。単一異種核酸が2つの異種遺伝子産物をコードする場合、場合によっては、かかる2つの異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列は2つの異なるプロモーターに機能的に連結される。場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、3つの異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含む単一異種核酸を含む。単一異種核酸が3つの異種遺伝子産物をコードする場合、場合によっては、かかる3つの異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列は同一プロモーターに機能的に連結される。単一異種核酸が3つの異種遺伝子産物をコードする場合、場合によっては、かかる3つの異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列は2つまたは3つの異なるプロモーターに機能的に連結される。場合によっては、本開示のrAAVビリオンは、各々が異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含む2つの異種核酸を含む。
場合によっては、遺伝子産物はポリペプチドをコードするRNAである。場合によっては、遺伝子産物は干渉RNAである。場合によっては、遺伝子産物はマイクロRNA(miRNA)である。場合によっては、遺伝子産物はアプタマーである。場合によっては、遺伝子産物はポリペプチドである。場合によっては、遺伝子産物は治療用ポリペプチド、例えば、臨床的利益を提供するポリペプチドである。場合によっては、遺伝子産物は、遺伝子機能を部位特異的にノックダウンさせる部位特異的ヌクレアーゼである。場合によっては、遺伝子産物は、標的核酸の修飾を提供するRNA誘導型エンドヌクレアーゼである。場合によっては、遺伝子産物は、i)標的核酸の修飾を提供するRNA誘導型エンドヌクレアーゼ、及びii)標的核酸内の標的配列に結合する第1のセグメントと、RNA誘導型エンドヌクレアーゼに結合する第2のセグメントとを含むガイドRNAである。場合によっては、遺伝子産物は、i)標的核酸の修飾を提供するRNA誘導型エンドヌクレアーゼ、ii)標的核酸内の第1の標的配列に結合する第1のセグメントと、RNA誘導型エンドヌクレアーゼに結合する第2のセグメントとを含む第1のガイドRNA、及びiii)標的核酸内の第2の標的配列に結合する第1のセグメントと、RNA誘導型エンドヌクレアーゼに結合する第2のセグメントとを含む第1のガイドRNAである。
核酸遺伝子産物
遺伝子産物が干渉RNA(RNAi)である場合、適切なRNAiには、細胞でのアポトーシス因子または血管新生因子レベルを低下させるRNAiが含まれる。例えば、RNAiは、細胞でのアポトーシスを誘導または促進する遺伝子産物のレベルを低下させる、shRNAまたはsiRNAであり得る。その遺伝子産物がアポトーシスを誘導または促進する遺伝子を本明細書では「アポトーシス促進遺伝子」と呼び、それらの遺伝子の産物(mRNA;タンパク質)を「アポトーシス促進遺伝子産物」と呼ぶ。アポトーシス促進遺伝子産物には、例えば、Bax、Bid、Bak、及びBadなどの遺伝子産物が含まれる。例えば、米国特許第7,846,730号を参照のこと。
一例として、場合によっては、干渉RNAは、欠陥アレルのRNA及び/またはポリペプチド産物のレベルを特異的に低下させる。例えば、場合によっては、RNAiは、ハンチンチンをコードするRNAレベルを特異的に低下させる、及び/またはハンチンチンポリペプチドのレベルを特異的に低下させる。
別の例として、場合によっては、miRNAは、欠陥アレルのRNA及び/またはポリペプチド産物のレベルを特異的に低下させる。
別の例として、場合によっては、RNAiは、例えば、SOD1のRNA及びポリペプチドが欠陥アレルによりコードされる場合、スーパーオキシドジスムターゼ1(SOD1)RNAをコードするRNAのレベルを特異的に低下させる、及び/または、SOD1ポリペプチドのレベルを特異的に低下させる。
別の例として、場合によっては、RNAiは、例えば、SMN1のRNA及びポリペプチドが欠陥アレルによりコードされる場合、生存運動ニューロン1(SMN1)RNAをコードするRNAのレベルを特異的に低下させる、及び/またはSMN1ポリペプチドのレベルを特異的に低下させる。
干渉RNAはまた、血管新生産物、例えば、血管内皮細胞増殖因子(VEGF)(例えば、Cand5;例えば、米国特許公開第2011/0143400号、米国特許公開第2008/0188437号、及びReich et al.(2003)Mol.Vis.9:210を参照のこと);VEGF受容体−1(VEGFR1)(例えば、Sirna−027;例えば、Kaiser et al.(2010)Am.J.Ophthalmol.150:33、及びShen et al.(2006)Gene Ther.13:225を参照のこと);またはVEGF受容体−2(VEGFR2)(Kou et al.(2005)Biochem.44:15064)にも対抗可能であろう。米国特許第6,649,596号、第6,399,586号、第5,661,135号、第5,639,872号、及び第5,639,736号、ならびに米国特許第7,947,659号及び第7,919,473号も参照のこと。
遺伝子産物がアプタマーである場合、例示的な目的アプタマーにはVEGFに対抗するアプタマーが含まれる。例えば、Ng et al.(2006)Nat.Rev.Drug Discovery 5:123、及びLee et al.(2005)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 102:18902を参照のこと。例えば、VEGFアプタマーは、ヌクレオチド配列5’−cgcaaucagugaaugcuuauacauccg−3’(配列番号12)を含むことができる。血小板由来増殖因子(PDGF)特異的アプタマー、例えば、E10030も使用に好適であり、例えば、Ni and Hui(2009)Ophthalmologica 223:401、及びAkiyama et al.(2006)J.Cell Physiol.207:407を参照のこと)。
ポリペプチド遺伝子産物
遺伝子産物がポリペプチドである場合、場合によっては、ポリペプチドは、神経幹細胞、神経前駆細胞、または神経細胞の機能を高めるポリペプチドである。
場合によっては、遺伝子産物は、神経幹細胞の分化を誘導する、例えば、神経幹細胞がニューロン、グリア細胞、アストロサイト、またはオリゴデンドロサイトに分化するのを誘導するポリペプチドである。神経幹細胞の分化を誘導するポリペプチドの非限定的な例には、achaete−scuteファミリー塩基性ヘリックス−ループ−ヘリックス転写因子1(MASH1;Deng et al.(2010)Biochem.Biophys.Res.Commun.392:548)、ペアード様ホメオボックス2a(PHOX2A)、ニューロジェニン1(NGN1)、ペアードボックス6(PAX6)、性決定領域Yボックス1(SOX1)、neurogenic differentiation 1(NeuroD1)、NeuroD関連因子(NDRF)、オリゴデンドロサイト転写因子2(Olig2)が含まれる。例えば、Ohtsuka et al.(1998)Cell Tissue Res.293:23、及びBond et al(2015)Cell Stem Cell 17:385を参照のこと。
例示的ポリペプチドには、神経保護ポリペプチド(例えば、グリア細胞株由来神経栄養因子(GDNF)、毛様体神経栄養因子(CNTF)、ニューロトロフィン4(NT4)、神経成長因子(NGF)、及びニュールツリン(NTN));芳香族L−アミノ酸脱炭酸酵素;グルタミン酸脱炭酸酵素;トリペプチジルペプチダーゼ;アスパルトアシラーゼ;血管新生阻害ポリペプチド(例えば、可溶性VEGF受容体;VEGF結合抗体;VEGF結合抗体断片(例えば、一本鎖抗VEGF抗体);エンドスタチン;タムスタチン;アンジオスタチン;可溶性Fltポリペプチド(Lai et al.(2005)Mol.Ther.12:659);可溶性Fltポリペプチドを含むFc融合タンパク質(例えば、Pechan et al.(2009)Gene Ther.16:10を参照のこと);毛様体神経栄養因子;下垂体アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド;組織メタロプロテアーゼ阻害物質3(TIMP−3);転写因子、例えば、neurogenic differentiation 1(Neuro D1)、オリゴデンドロサイト転写因子1(Olig1)、オリゴデンドロサイト転写因子2(Olig2)、Achaete−ScuteファミリーBHLH転写因子1(ASCii)、DNA−タンパク質阻害因子ID−1(Id1)、DNA−タンパク質阻害因子ID−2(Id2)、ニューロジェニン、シグナル伝達兼転写活性化因子3、NK2転写因子様タンパク質B等などが含まれる。適切なポリペプチドには、グリア由来神経栄養因子(GDNF)、線維芽細胞増殖因子、線維芽細胞増殖因子2、ニュールツリン(NTN)、毛様体神経栄養因子(CNTF)、神経成長因子(NGF)、ニューロトロフィン4(NT4)、脳由来神経栄養因子(BDNF)、上皮成長因子、X連鎖アポトーシス抑制因子、及びソニック・ヘッジホッグが挙げられるが、これに限定されるものではない。
部位特異的エンドヌクレアーゼ
場合によっては、目的遺伝子産物は、遺伝子機能を部位特異的にノックダウンさせる部位特異的エンドヌクレアーゼであり、例えば、その場合、かかるエンドヌクレアーゼは神経疾患に関連したアレルをノックアウトする。例えば、顕性アレルが、野生型では神経構造タンパク質である遺伝子についての欠陥コピーをコードする、及び/または正常な神経機能を提供するという場合、部位特異的エンドヌクレアーゼを欠陥アレルに指向させ、欠陥アレルをノックアウトすることができる。場合によっては、部位特異的エンドヌクレアーゼはRNA誘導型エンドヌクレアーゼである。
部位特異的ヌクレアーゼを使用して、欠陥アレルによりコードされるタンパク質の機能性コピーをコードするドナーDNAとの相同組換えを刺激することができる。したがって、例えば、対象rAAVビリオンを使用して、欠陥アレルをノックアウトする部位特異的エンドヌクレアーゼを送達することができ、また、対象rAAVビリオンを使用して、欠陥アレルの機能性コピーを送達し、欠陥アレルの修復を生じさせ、それにより神経機能タンパク質を産生させることができる。場合によっては、対象rAAVビリオンは、部位特異的エンドヌクレアーゼをコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸と、欠陥アレルの機能性コピーをコードし、その機能性コピーが機能性神経タンパク質をコードする異種ヌクレオチド配列とを含む。
神経性の疾患及び障害に関連するかまたはそれを生じさせる変異が含まれ得る遺伝子の例には、ヒポキサンチングアニンホスホリボキシルトランスフェラーゼ(phosphoriboxyltransferase)(HPRT1)、神経線維腫症II型(NF2)、ATP1A3(Na/K−ATPアーゼのα3サブユニットをコードする)、DYNC1H1(細胞質ダイニン1の重鎖をコードする)、HTT(ハンチンチンをコードする)、SOD1、SMN1、ATX3(脊髄小脳失調症3をコードする)、FXN/X25(フラタキシンをコードする)、DMPK(筋強直性ジストロフィープロテインキナーゼをコードする)、ATXN2(アタキシン2をコードする)、アトロフィン1、NR4A2(核内受容体サブファミリー4、グループA、メンバー2タンパク質をコードする)、PINK1(PTEN誘導推定キナーゼ1をコードする)、LRRK2(ロイシンリッチリピートキナーゼ2をコードする)、MeCP2(メチル化CpG結合タンパク質2をコードする)等が挙げられるが、これに限定されるものではない。
使用に好適な部位特異的エンドヌクレアーゼには、例えば、ジンクフィンガーヌクレアーゼ(ZFN)、メガヌクレアーゼ、及び転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ(TALEN)などが含まれるが、そのような部位特異的エンドヌクレアーゼは天然には生じないものであり、特定の遺伝子を標的とするよう改変されている。そのような部位特異的ヌクレアーゼは、ゲノム内部の特定の位置を切断するよう人工的に操作することができ、その後、非相同末端結合は、いくつかのヌクレオチドの挿入または欠失を行いながら切断を修復することができる。その後、そのような部位特異的エンドヌクレアーゼ(「インデル(INDEL)」とも呼ばれる)は、そのタンパク質をフレームから破棄し、遺伝子を有効にノックアウトする。例えば、米国特許公開第2011/0301073号を参照のこと。適切な部位特異的エンドヌクレアーゼには、人工メガヌクレアーゼをさらに操作したホーミングエンドヌクレアーゼが含まれる。適切なエンドヌクレアーゼにはI−Tevlヌクレアーゼが含まれる。適切なメガヌクレアーゼには、I−Sce1(例えば、Bellaiche et al.(1999)Genetics 152:1037を参照のこと)、及びI−Cre1(例えば、Heath et al.(1997)Nature Structural Biology 4:468を参照のこと)が含まれる。
RNA誘導型エンドヌクレアーゼ
場合によっては、遺伝子産物はRNA誘導型エンドヌクレアーゼである。場合によっては、遺伝子産物は、RNA誘導型エンドヌクレアーゼをコードするヌクレオチド配列を含むRNAである。場合によっては、遺伝子産物はガイドRNA、例えば、シングルガイドRNAである。場合によっては、遺伝子産物は、1)ガイドRNA、及び2)RNA誘導型エンドヌクレアーゼである。ガイドRNAは、a)RNA誘導型エンドヌクレアーゼに結合するタンパク質結合領域、及びb)標的核酸に結合する領域を含むことができる。RNA誘導型エンドヌクレアーゼは本明細書では「ゲノム編集ヌクレアーゼ」とも呼ばれる。
RNA誘導型エンドヌクレアーゼの例は、CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、クラス2のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼ、例えば、II型、V型、またはVI型のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼなど)である。適切なゲノム編集ヌクレアーゼは、CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、クラス2のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼ、例えば、II型、V型、またはVI型のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼなど)である。場合によっては、適切なRNA誘導型エンドヌクレアーゼはクラス2のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼである。場合によっては、適切なRNA誘導型エンドヌクレアーゼは、クラス2のII型CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、Cas9タンパク質)である。場合によっては、ゲノム指向組成物には、クラス2のV型CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、Cpf1タンパク質、C2c1タンパク質、またはC2c3タンパク質など)が含まれる。場合によっては、適切なRNA誘導型エンドヌクレアーゼは、クラス2のVI型CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、C2c2タンパク質;「Cas13a」タンパク質とも呼ばれる)である。また、CasXタンパク質も使用に好適である。また、CasYタンパク質も使用に好適である。
場合によっては、ゲノム編集エンドヌクレアーゼはII型CRISPR/Casエンドヌクレアーゼである。場合によっては、ゲノム編集エンドヌクレアーゼはCas9ポリペプチドである。Cas9タンパク質は、標的核酸配列(例えば、染色体配列または染色体外配列、例えば、エピソーム配列、ミニサークル配列、ミトコンドリア配列、葉緑体配列等)とCas9ガイドRNAのタンパク質結合セグメントとが会合することにより、かかる配列内の標的部位へと誘導される(例えば、標的部位にて安定化される)。場合によっては、Cas9ポリペプチドは、図18Aに示す化膿レンサ球菌Cas9に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または99%以上であるアミノ酸配列を含む。場合によっては、本開示の組成物または方法に使用するCas9ポリペプチドは黄色ブドウ球菌Cas9(saCas9)ポリペプチドである。場合によっては、saCas9ポリペプチドは、図19に示すsaCas9アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%であるアミノ酸配列を含む。
場合によっては、適切なCas9ポリペプチドは高忠実度(HF)Cas9ポリペプチドである。Kleinstiver et al.(2016)Nature 529:490。例えば、図18Aに示すアミノ酸配列のアミノ酸N497、R661、Q695、及びQ926は、例えばアラニンなどで置換される。例えば、HF Cas9ポリペプチドは、図19Aに示すアミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%であるアミノ酸配列を含むことができ、その場合、アミノ酸N497、R661、Q695、及びQ926は、例えばアラニンなどで置換される。適切なCas9ポリペプチドは、図18A〜18Fのいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含む。
場合によっては、適切なCas9ポリペプチドは、変化したPAM特異性を示す。例えば、Kleinstiver et al.(2015)Nature 523:481を参照のこと。
場合によっては、ゲノム編集エンドヌクレアーゼはV型CRISPR/Casエンドヌクレアーゼである。場合によっては、V型CRISPR/CasエンドヌクレアーゼはCpf1タンパク質である。場合によっては、Cpf1タンパク質は、図20に示すCpf1アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも30%、少なくとも35%、少なくとも40%、少なくとも45%、少なくとも50%、少なくとも55%、少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも90%、または100%であるアミノ酸配列を含む。
場合によっては、ゲノム編集エンドヌクレアーゼはCasXまたはCasYポリペプチドである。CasXポリペプチド及びCasYポリペプチドは、Burstein et al.(2017)Nature 542:237に記載されている。
RNA誘導型エンドヌクレアーゼ
RNA誘導型エンドヌクレアーゼは本明細書では「ゲノム編集ヌクレアーゼ」とも呼ばれる。適切なゲノム編集ヌクレアーゼの例は、CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、クラス2のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼ、例えば、II型、V型、またはVI型のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼなど)である。適切なゲノム編集ヌクレアーゼは、CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、クラス2のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼ、例えば、II型、V型、またはVI型のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼなど)である。場合によっては、適切なゲノム編集ヌクレアーゼはクラス2のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼである。場合によっては、適切なゲノム編集ヌクレアーゼは、クラス2のII型CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、Cas9タンパク質)である。場合によっては、適切なゲノム編集ヌクレアーゼは、クラス2のV型CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、Cpf1タンパク質、C2c1タンパク質、またはC2c3タンパク質)である。場合によっては、適切なゲノム編集ヌクレアーゼは、クラス2のVI型CRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、C2c2タンパク質;「Cas13a」タンパク質とも呼ばれる)である。また、CasXタンパク質も使用に好適である。また、CasYタンパク質も使用に好適である。
場合によっては、ゲノム編集ヌクレアーゼは、異種ポリペプチド(「融合パートナー」とも呼ばれる)に融合する融合タンパク質である。場合によっては、ゲノム編集ヌクレアーゼを、細胞内局在を提供するアミノ酸配列(融合パートナー)、すなわち、融合パートナーは細胞内局在配列(例えば、核へ指向させるための1つ以上の核局在化シグナル(NLS)、2つ以上のNLS、3つ以上のNLS等)であるアミノ酸配列と融合させる。
場合によっては、ゲノム編集エンドヌクレアーゼはII型CRISPR/Caseエンドヌクレアーゼである。場合によっては、ゲノム編集エンドヌクレアーゼはCas9ポリペプチドである。Cas9タンパク質は、標的核酸配列(例えば、染色体配列または染色体外配列、例えば、エピソーム配列、ミニサークル配列、ミトコンドリア配列、葉緑体配列等)とCas9ガイドRNAのタンパク質結合セグメントとが会合することにより、かかる配列内の標的部位へと誘導される(例えば、標的部位にて安定化される)。場合によっては、Cas9ポリペプチドは、図18Aに示す化膿レンサ球菌Cas9に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または99%以上であるアミノ酸配列を含む。場合によっては、本開示の組成物または方法に使用するCas9ポリペプチドは黄色ブドウ球菌Cas9(saCas9)ポリペプチドである。場合によっては、saCas9ポリペプチドは、図19に示すsaCas9アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%であるアミノ酸配列を含む。
場合によっては、適切なCas9ポリペプチドは、図18Aに示す化膿レンサ球菌Cas9に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または99%以上であるが、K848A、K1003A、及びR1060Aという置換を有するアミノ酸配列を含む。Slaymaker et al.(2016)Science 351:84−88。場合によっては、適切なCas9ポリペプチドは図18Eに示すアミノ酸配列を含む。適切なCas9ポリペプチドは、図18A〜18Fのいずれか1つに示すアミノ酸配列を含む。
場合によっては、適切なCas9ポリペプチドは高忠実度(HF)Cas9ポリペプチドである。Kleinstiver et al.(2016)Nature 529:490。例えば、図18Aに示すアミノ酸配列のアミノ酸N497、R661、Q695、及びQ926は、例えばアラニンなどで置換される。例えば、HF Cas9ポリペプチドは、図18Aに示すアミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%であるアミノ酸配列を含むことができ、その場合、アミノ酸N497、R661、Q695、及びQ926は、例えばアラニンなどで置換される。場合によっては、適切なCas9ポリペプチドは、図18Fに示すアミノ酸配列を含む。
場合によっては、適切なCas9ポリペプチドは、変化したPAM特異性を示す。例えば、Kleinstiver et al.(2015)Nature 523:481を参照のこと。
場合によっては、ゲノム編集エンドヌクレアーゼはV型CRISPR/Casエンドヌクレアーゼである。場合によっては、V型CRISPR/CasエンドヌクレアーゼはCpf1タンパク質である。場合によっては、Cpf1タンパク質は、図20Aに示すCpf1アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも30%、少なくとも35%、少なくとも40%、少なくとも45%、少なくとも50%、少なくとも55%、少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも90%、または100%であるアミノ酸配列を含む。場合によっては、Cpf1タンパク質は、図20Bに示すCpf1アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも30%、少なくとも35%、少なくとも40%、少なくとも45%、少なくとも50%、少なくとも55%、少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも90%、または100%であるアミノ酸配列を含む。場合によっては、Cpf1タンパク質は、図20Cに示すCpf1アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも30%、少なくとも35%、少なくとも40%、少なくとも45%、少なくとも50%、少なくとも55%、少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも90%、または100%であるアミノ酸配列を含む。
酵素的に不活性なRNA誘導型エンドヌクレアーゼ
また、酵素活性が低いRNA誘導型エンドヌクレアーゼも使用に好適である。そのようなRNA誘導型エンドヌクレアーゼは「デッド(dead)」RNA誘導型エンドヌクレアーゼと呼ばれ、例えば、実質的にエンドヌクレアーゼ活性を全く示さないが、ガイドRNAと複合体を形成させた際に依然として標的核酸に結合するような特定のアミノ酸置換を含むCas9ポリペプチドは、「デッド」Cas9または「dCas9」と呼ばれる。場合によっては、「デッド」Cas9タンパク質は、標的二本鎖核酸の相補鎖及び非相補鎖の両方を切断する能力が低下している。例えば、「ヌクレアーゼ欠損」Cas9は、機能性RuvCドメインを欠き(すなわち、標的二本鎖DNAの非相補鎖を切断しない)、また機能性HNHドメインを欠く(すなわち、標的二本鎖DNAの相補鎖を切断しない)。非限定的な例として、場合によっては、ヌクレアーゼ欠損Cas9タンパク質は、かかるポリペプチドが、標的核酸の相補鎖及び非相補鎖の両方に対する切断能が低くなる(例えば、切断しない)よう、配列番号40の残基D10及びH840(またはCas9のホモログの対応残基)に対応するアミノ酸位置に変異を有する(例えば、D10A及びH840A)。そのようなCas9タンパク質は、標的核酸(例えば、一本鎖または二本鎖の標的核酸)を切断する能力は低くなっているが、標的核酸と結合する能力は保持されている。標的核酸を切断することができないCas9タンパク質(例えば、RuvCドメイン及びHNHドメインの触媒ドメインでの、例えば、1つ以上の変異のため)は、「ヌクレアーゼ欠損Cas9」、「デッドCas9」または単に「dCas9」と呼ばれる。他の残基を変異させて上記の効果を達成する(すなわち、ヌクレアーゼ部分のいずれか一方を不活性化させる)ことができる。非限定的な例として、化膿レンサ球菌Cas9の残基D10、G12、G17、E762、H840、N854、N863、H982、H983、A984、D986、及び/またはA987(またはCas9ホモログの対応するアミノ酸)を変化させる(すなわち、置換する)ことができる。場合によっては、化膿レンサ球菌Cas9のD10、E762、H840、N854、N863、及びD986の2つ以上(またはCas9ホモログの対応するアミノ酸)を置換する。場合によっては、化膿レンサ球菌Cas9のD10及びN863(またはCas9ホモログの対応するアミノ酸)は、Alaで置換する。また、アラニン置換以外の変異も適している。
場合によっては、ゲノム編集エンドヌクレアーゼは、Cas9相乗的活性化メディエーター(Cas9−SAM)として知られる、RNA誘導型エンドヌクレアーゼ(及び対応するガイドRNA)である。Cas9−SAMシステムのRNA誘導型エンドヌクレアーゼ(例えば、Cas9)は、転写活性化ドメイン(ここで、適切な転写活性化ドメインには、例えば、VP64、p65、MyoD1、HSF1、RTA、及びSET7/9が含まれる)または転写リプレッサードメイン(ここで、適切な転写リプレッサードメインには、例えば、KRABドメイン、NuEドメイン、NcoRドメイン、SIDドメイン、及びSID4Xドメインが含まれる)に融合させた「デッド」Cas9である。Cas9−SAMシステムのガイドRNAは、転写アクチベータードメイン(例えば、VP64、p65、MyoD1、HSF1、RTA、またはSET7/9)または転写リプレッサードメイン(例えば、KRABドメイン、NuEドメイン、NcoRドメイン、SIDドメイン、またはSID4Xドメイン)に融合させたアダプタータンパク質と結合するループを含む。例えば、場合によっては、ガイドRNAは、sgRNAの1つまたは2つのループ内に挿入されたMS2 RNAアプタマーを含むシングルガイドRNAであり、dCas9は、VP64に融合させたdCas9を含む融合ポリペプチドであり、アダプター/機能性タンパク質は、i)MS2、ii)p65、及びiii)HSF1を含む融合ポリペプチドである。例えば、米国特許公開第2016/0355797号を参照のこと。
また、a)デッドRNA誘導型エンドヌクレアーゼと、b)融合異種ポリペプチドとを含むキメラポリペプチドも使用に好適である。適切な融合異種ポリペプチドの例には、例えば、メチラーゼ活性、デメチラーゼ活性、転写活性化活性、転写抑制活性、転写終結因子活性、ヒストン修飾活性、RNA切断活性、DNA切断活性、DNA組込み活性、または核酸結合活性などを有するポリペプチドが含まれる。
ガイドRNA
クラス2のCRISPR/Casエンドヌクレアーゼ(例えば、Cas9タンパク質;V型またはVI型のCRISPR/Casタンパク質;Cpf1タンパク質等)に結合し、かかる複合体を標的核酸内の特定の位置に指向させる核酸を、本明細書では「ガイドRNA」または「CRISPR/Casガイド核酸」または「CRISPR/CasガイドRNA」と呼ぶ。ガイドRNAは、指向セグメントを含めることにより標的特異性を複合体(RNP複合体)に与え、かかるセグメントには、標的核酸の配列に相補的なヌクレオチド配列であるガイド配列(本明細書では標的指向配列とも呼ばれる)が含まれる。
場合によっては、ガイドRNAには、2つの別個の核酸分子、すなわち、「アクチベーター」と「ターゲター」が含まれ、本明細書では「二重ガイドRNA」、「ダブル分子ガイドRNA」、「2分子ガイドRNA」、または「dgRNA」と呼ぶ。場合によっては、ガイドRNAは1つの分子であり(例えば、一部のクラス2のCRISPR/Casタンパク質では、対応するガイドRNAは単一分子であり、場合によっては、アクチベーターとターゲターは、例えば、介在ヌクレオチドを介して、互いに共有結合で連結されている)、かかるガイドRNAを「シングルガイドRNA」、「単一分子ガイドRNA」、「1分子ガイドRNA」、または単に「sgRNA」と呼ぶ。
遺伝子産物がRNA誘導型エンドヌクレアーゼである、またはRNA誘導型エンドヌクレアーゼとガイドRNAの両方である場合、この遺伝子産物は標的核酸を修飾することができる。場合によっては、例えば、標的核酸が欠陥アレルに有害変異(例えば、神経細胞の標的核酸における有害変異)を含む場合、RNA誘導型エンドヌクレアーゼ/ガイドRNA複合体を、有害変異を修正するヌクレオチド配列を含むドナー核酸(例えば、欠陥アレルによりコードされるタンパク質の機能性コピーをコードするヌクレオチド配列を含むドナー核酸)と共に使用して、例えば、相同組換え型修復(HDR)により有害変異を修正することができる。
場合によっては、遺伝子産物は、RNA誘導型エンドヌクレアーゼ及び2つの別個のsgRNAであり、その場合、2つの別個のsgRNAが非相同末端結合(NHEJ)を介して標的核酸を欠失させる。
場合によっては、遺伝子産物は、i)RNA誘導型エンドヌクレアーゼ、及びii)1つのガイドRNAである。場合によっては、ガイドRNAは、単一分子(または「シングルガイド」)ガイドRNA(「sgRNA」)である。場合によっては、ガイドRNAは、二重分子(または「二重ガイド」)ガイドRNA(「dgRNA」)である。
場合によっては、遺伝子産物は、i)RNA誘導型エンドヌクレアーゼ、及びii)2つの別個のsgRNAであり、その場合、2つの別個のsgRNAが非相同末端結合(NHEJ)を介して標的核酸を欠失させる。場合によっては、ガイドRNAはsgRNAである。場合によっては、ガイドRNAはdgRNAである。
場合によっては、遺伝子産物は、i)Cpf1ポリペプチド、及びii)ガイドRNA前駆体であり、これらの場合、前駆体をCpf1ポリペプチドにより切断して、2つ以上のガイドRNAを作製することができる。
本開示は、個体における神経細胞の、有害変異を含む標的核酸を修飾する方法を提供し、かかる方法は、本開示のrAAVビリオンを個体に投与することを含み、ここで、rAAVビリオンは、i)RNA誘導型エンドヌクレアーゼ(例えば、Cas9エンドヌクレアーゼ)をコードするヌクレオチド配列と、ii)標的核酸に相補的であるヌクレオチド配列を含むsgRNAをコードするヌクレオチド配列と、iii)有害変異を修正するヌクレオチド配列を含むドナーDNA鋳型をコードするヌクレオチド配列とを含む異種核酸を含む。rAAVビリオンの投与により、HDRによる標的核酸での有害変異の修正がもたらされる。
本開示は、個体における神経細胞の、有害変異を含む標的核酸を修飾する方法を提供し、かかる方法は、本開示のrAAVビリオンを個体に投与することを含み、ここで、rAAVビリオンは、i)RNA誘導型エンドヌクレアーゼ(例えば、Cas9エンドヌクレアーゼ)をコードするヌクレオチド配列と、ii)標的核酸内の第1の配列に相補的なヌクレオチド配列を含む第1のsgRNAをコードするヌクレオチド配列と、iii)標的核酸内の第2の配列に相補的なヌクレオチド配列を含む第2のsgRNAをコードするヌクレオチド配列とを含む異種核酸を含む。rAAVビリオンの投与により、NHEJによる標的核酸での有害変異の除去がもたらされる。
本開示は、個体における神経幹細胞の、有害変異を含む標的核酸を修飾する方法を提供し、かかる方法は、本開示のrAAVビリオンを個体に投与することを含み、ここで、rAAVビリオンは、i)RNA誘導型エンドヌクレアーゼ(例えば、Cas9エンドヌクレアーゼ)をコードするヌクレオチド配列と、ii)標的核酸に相補的であるヌクレオチド配列を含むsgRNAをコードするヌクレオチド配列と、iii)有害変異を修正するヌクレオチド配列を含むドナーDNA鋳型をコードするヌクレオチド配列とを含む異種核酸を含む。rAAVビリオンの投与により、HDRによる標的核酸での有害変異の修正がもたらされる。
本開示は、個体における神経幹細胞の、有害変異を含む標的核酸を修飾する方法を提供し、かかる方法は、本開示のrAAVビリオンを個体に投与することを含み、ここで、rAAVビリオンは、i)RNA誘導型エンドヌクレアーゼ(例えば、Cas9エンドヌクレアーゼ)をコードするヌクレオチド配列と、ii)標的核酸内の第1の配列に相補的なヌクレオチド配列を含む第1のsgRNAをコードするヌクレオチド配列と、iii)標的核酸内の第2の配列に相補的なヌクレオチド配列を含む第2のsgRNAをコードするヌクレオチド配列とを含む異種核酸を含む。rAAVビリオンの投与により、NHEJによる標的核酸での有害変異の除去がもたらされる。
医薬組成物
本開示は、a)上記のような対象rAAVビリオンと、b)薬理学的に許容される担体、希釈剤、添加剤、または緩衝剤とを含む医薬組成物を提供する。場合によっては、薬理学的に許容される担体、希釈剤、添加剤、または緩衝剤はヒトでの使用に好適である。
そのような添加剤、担体、希釈剤、及び緩衝剤には、過度の毒性を伴わずに投与可能な任意の医薬品が含まれる。薬理学的に許容される添加剤には、水、生理食塩水、グリセロール及びエタノールなどの液剤が挙げられるが、これに限定されるものではない。その中に薬理学的に許容される塩を含めることができ、例えば、塩酸塩、水素酸塩、リン酸塩、硫酸塩等のような鉱酸塩、及び酢酸塩、プロピオン酸塩、マロン酸塩、安息香酸塩等のような有機酸の塩を含めることができる。さらに、そのようなビヒクル中に湿潤剤または乳化剤、pH緩衝物質等のような助剤が存在してよい。多種多様な薬理学的に許容される添加剤が当該技術分野で公知であり、本明細書での詳しい考察を要しない。薬理学的に許容される添加剤は、例えば、A.Gennaro(2000)“Remington:The Science and Practice of Pharmacy”,20th edition,Lippincott,Williams,& Wilkins、Pharmaceutical Dosage Forms and Drug Delivery Systems(1999)H.C.Ansel et al.,eds.,7th ed.,Lippincott,Williams,& Wilkins、及びHandbook of Pharmaceutical Excipients(2000)A.H.Kibbe et al.,eds.,3rd ed.Amer.Pharmaceutical Assocなど、さまざまな刊行物に十分に記載されている。
方法
遺伝子産物の送達方法
本開示は、個体の神経細胞に遺伝子産物を送達する方法を提供し、かかる方法は、上記のように個体に対象rAAVビリオンを投与することを含む。遺伝子産物は、上記のようなポリペプチドもしくは干渉RNA(例えば、shRNA、siRNA等)、アプタマー、または部位特異的エンドヌクレアーゼ(例えば、RNA誘導型エンドヌクレアーゼ)であり得る。神経細胞に遺伝子産物を送達することにより神経疾患の治療を提供することができる。
本開示は、神経細胞の標的核酸を修飾する方法を提供し、かかる方法は、1)ガイドRNAと結合するRNA誘導型エンドヌクレアーゼをコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸を含む、本開示のrAAVビリオンと、2)ガイドRNAとに、神経細胞を接触させることを含む。本開示は、神経細胞の標的核酸を修飾する方法を提供し、かかる方法は、i)ガイドRNAと結合するRNA誘導型エンドヌクレアーゼと、ii)ガイドRNAとをコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸を含む、本開示のrAAVビリオンに、神経細胞を接触させることを含む。場合によっては、方法は、神経細胞をドナーDNA鋳型と接触させることを含む。場合によっては、RNA誘導型エンドヌクレアーゼはCas9ポリペプチドである。場合によっては、ガイドRNAはシングルガイドRNAである。
本開示は、個体のNSC細胞に遺伝子産物を送達する方法を提供し、かかる方法は、上記のような対象rAAVビリオンを個体に投与することを含む。遺伝子産物は、上記のようなポリペプチドもしくは干渉RNA(例えば、shRNA、siRNA等)、アプタマー、または部位特異的エンドヌクレアーゼ(例えば、RNA誘導型エンドヌクレアーゼ)であり得る。NSCに遺伝子産物を送達することにより、神経疾患の治療を提供することができる。
本開示は、NSCの標的核酸を修飾する方法を提供し、かかる方法は、1)ガイドRNAと結合するRNA誘導型エンドヌクレアーゼをコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸を含む、本開示のrAAVビリオンと、2)ガイドRNAとに、神経幹細胞を接触させることを含む。本開示は、NSCの標的核酸を修飾する方法を提供し、かかる方法は、i)ガイドRNAと結合するRNA誘導型エンドヌクレアーゼと、ii)ガイドRNAとをコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸を含む、本開示のrAAVビリオンに、NSCを接触させることを含む。場合によっては、方法は、NSCをドナーDNA鋳型と接触させることを含む。場合によっては、RNA誘導型エンドヌクレアーゼはCas9ポリペプチドである。場合によっては、ガイドRNAはシングルガイドRNAである。
本開示は、神経疾患(例えば、神経疾患)を治療する方法を提供し、かかる方法は、上記のような対象rAAVビリオンの有効量を、それを必要とする個体に投与することを含む。対象rAAVビリオンは、頭蓋内注射による投与、または他の好都合な任意の投与方法もしくは投与経路による投与のいずれでも可能である。他の好都合な投与方法または投与経路には、例えば、脳室内、髄腔内、大槽内、または静脈内等が含まれる。
「治療的有効量」は、実験及び/または臨床試験を介して決定され得る比較的広い範囲となるであろう。例えば、生体内注射、すなわち、脳内に直接注入する場合、治療的に有効な用量は約10〜約1015のrAAVビリオン、例えば、約10〜1012rAAVビリオン程度となろう。インビトロの形質導入では、細胞に送達されるべきrAAVビリオンの有効量は約10〜約1013rAAVビリオン程度となろう。他の有効用量は、用量反応曲線を作成する日常的試験を介して当業者が容易に確立することができる。
場合によっては、2回以上の投与(例えば、2回、3回、4回、またはそれ以上の投与)を用いて、所望レベルの遺伝子発現を達成してよい。場合によっては、2回以上の投与をさまざまな間隔、例えば、1日1回、週1回、月2回、月1回、3か月に1回、6か月に1回、年1回等で投与する。場合によっては、複数投与を1か月〜2か月、2か月〜4か月、4か月〜8か月、8か月〜12か月、1年〜2年、2年〜5年、または5年以上という期間にわたり投与する。
神経性の疾患または障害を治療する方法
対象方法を使用して治療され得る神経性疾患には、中枢神経系(CNS)の神経性の疾患及び障害、ならびに末梢神経系(PNS)の神経性の疾患及び障害が含まれる。
神経性の疾患及び障害には、びまん性軸索損傷、周産期低酸素性虚血性損傷、外傷性脳損傷、脳卒中、虚血性梗塞、塞栓症、及び高血圧性出血;CNS毒素への曝露、中枢神経系の感染、例えば、細菌性髄膜炎など;代謝性疾患、例えば、低酸素性虚血性脳症、末梢神経障害、及び糖原病などに関与するもの;または多発性硬化症、レビー小体認知症、アルツハイマー病、パーキンソン病、及びハンチントン病が含まれるがこれに限定されない慢性の神経損傷もしくは神経変性疾患に由来するものが挙げられるが、これに限定されるものではない。
神経性の疾患及び障害には、パーキンソン病、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症、フリードライヒ運動失調症、レビー小体病、脊髄性筋萎縮症、多系統萎縮症、認知症、統合失調症、麻痺、多発性硬化症、脊髄損傷、脳損傷、脳神経障害、末梢性感覚ニューロパチー、てんかん、プリオン病、クロイツフェルト・ヤコブ病、アルパース病、小脳/脊髄小脳変性症、バッテン病、大脳皮質基底核変性症、ベル麻痺、ギラン−バレー症候群、ピック病、レット症候群、前頭側頭型認知症、及び自閉症が挙げられるが、これに限定されるものではない。
PNSの神経性の疾患及び障害には、例えば、糖尿病性神経障害、多発ニューロパチー、慢性炎症性脱髄性多発神経炎(CIPD)等が含まれる。
本開示は、神経障害を治療する方法を提供する。場合によっては、方法は、本開示のrAAVビリオン、または本開示のrAAVビリオンを含む組成物を、それを必要とする個体の脳に投与することを含む。
当業者は、神経性の疾患または障害に関連する症状など、1つ以上のパラメータに対する効果を試験することにより、rAAVビリオンの有効量を容易に決定することができる。場合によっては、本開示のrAAVビリオンの有効量を投与することにより、脳機能、解剖学的完全性、または脳健康の喪失率の低下、例えば、2倍、3倍、4倍、または5倍以上の喪失率の低下、ひいては疾患の進行低下がもたらされ、例えば、喪失率、ひいては疾患の進行低下が10倍以上低下する。場合によっては、本開示のrAAVビリオンの有効量を投与することにより、脳機能の獲得、脳の解剖学的形態もしくは健康の改善、及び/または脳機能の安定化がもたらされ、例えば、脳機能、脳の解剖学的形態もしくは健康が2倍、3倍、4倍または5倍以上改善され、例えば、脳機能、脳の解剖学的形態もしくは健康、及び/または脳の安定性が10倍以上改善する。
核酸及び宿主細胞
本開示は、上記のような対象変異アデノ随伴ウイルス(AAV)カプシドタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含む単離された核酸を提供する。
対象組換え型AAVベクターを使用して、上記のような対象組換え型AAVビリオンを作製することができる。したがって、本開示は、適切な細胞内に導入した場合に、対象組換え型AAVビリオンの産生を提供することができる組換え型AAVベクターを提供する。
本開示はさらに、対象核酸を含む宿主細胞、例えば、単離された(遺伝子改変)宿主細胞を提供する。対象宿主細胞は、単離された細胞、例えば、インビトロ培養の細胞であり得る。対象宿主細胞は、以下に記載のように、対象rAAVビリオン作製に有用である。対象rAAVビリオンを産生させるために対象宿主細胞を使用する場合、その細胞を「パッケージング細胞」と呼ぶ。場合によっては、対象宿主細胞は、対象核酸で安定に遺伝子が組み換えられる。他の場合には、対象宿主細胞は、対象核酸で一過性に遺伝子が組み換えられる。
対象核酸は、電気穿孔法、リン酸カルシウム沈殿、リポソームを用いたトランスフェクション等が含まれるがこれに限定されない確立された技術を使用して、安定または一過性に宿主細胞に導入される。安定な形質転換では一般に、対象核酸にさらに選択マーカー、例えば、ネオマイシン耐性のようないくつかの周知の選択マーカー等のいずれかなどが含まれるであろう。
対象宿主細胞は、例えば、例としてマウス細胞及び霊長類細胞(例えば、ヒト細胞)などが含まれる、哺乳類細胞など、多種多様な細胞のいずれかに対象核酸を導入することによって作製される。適切な哺乳類細胞には、初代細胞及び細胞株が挙げられるが、これに限定されるものではなく、その場合、適切な細胞株には、293細胞、COS細胞、HeLa細胞、Vero細胞、3T3マウス線維芽細胞、C3H10T1/2線維芽細胞、CHO細胞等が含まれるが、これに限定されるものではない。適切な宿主細胞の非限定的な例には、例えば、HeLa細胞(例えば、American Type Culture Collection(ATCC)番号CCL−2)、CHO細胞(例えば、ATCC番号CRL9618、CCL61、CRL9096)、293細胞(例えば、ATCC番号CRL−1573)、Vero細胞、NIH3T3細胞(例えば、ATCC番号CRL−1658)、Huh−7細胞、BHK細胞(例えば、ATCC番号CCL10)、PC12細胞(ATCC番号CRL1721)、COS細胞、COS−7細胞(ATCC番号CRL1651)、RAT1細胞、マウスL細胞(ATCC番号CCLI.3)、ヒト胎児由来腎臓(HEK)細胞(ATCC番号CRL1573)、HLHepG2細胞等が含まれる。対象宿主細胞は、Sf9細胞のような昆虫細胞を感染させるバキュロウイルスを使用して作製することもでき、その細胞にAAVを産生させる(例えば、米国特許第7,271,002号、米国特許出願第12/297,958号を参照のこと)。
場合によっては、対象の遺伝子改変宿主細胞には、上記のような、変異AAVカプシドタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含む核酸に加え、1つ以上のAAV repタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含む核酸が含まれる。他の場合には、対象宿主細胞はさらにrAAVベクターを含む。rAAVビリオンは、対象宿主細胞を使用して作製することができる。rAAVビリオンを作製する方法は、例えば、米国特許公開第2005/0053922号及び米国特許公開第2009/0202490号に記載されている。
開示の非限定的態様例
上記の本願主題の実施形態などの態様は、単独でも、または1つ以上の他の態様もしくは実施形態と組み合わせても有益であり得る。上述の記載を限定するものではないが、1〜65の番号を付した特定の非限定的な開示態様を以下に記載する。本開示を読むと当業者には明らかとなるように、個々別々に番号付けされた態様の各々を使用しても、またはそれより前もしくは後の個々別々に番号付けされた態様と組み合わせてもいずれでもよい。これは、態様のそのような組み合わせをすべて支持することを意図しており、下記で明示的に提供する態様の組み合わせに限定するものではない。
態様1.
組換え型アデノ随伴ウイルス(rAAV)ビリオンであって、
a)少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する、各セグメントが約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の少なくとも5つのセグメントを含み、かつ、i)神経幹細胞への感染力が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して高い、ii)ニューロンへの感染力が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンによるニューロンへの感染力と比較して高い、iii)ヒトAAV中和抗体に対する耐性が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンが示す耐性と比較して高い、という特性のうち1つ以上を付与する、変異AAVカプシドタンパク質、及び
b)異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸
を含む、前記組換え型アデノ随伴ウイルスビリオン。
態様2.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、N末端からC末端に向かって順に、第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第1のセグメント、第2のAAV血清型のアミノ酸51〜アミノ酸320に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第2のセグメント、第3のAAV血清型のアミノ酸101〜アミノ酸480に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第3のセグメント、前記第2のAAV血清型のアミノ酸151〜アミノ酸640に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第4のセグメント、及び前記第2のAAV血清型のアミノ酸201からC末端までのアミノ酸に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第5のセグメントを含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様3.
前記第1のAAV血清型はAAV6である、態様2に記載のrAAVビリオン。
態様4.
前記第2のAAV血清型はAAV9である、態様2に記載のrAAVビリオン。
態様5.
前記第3のAAV血清型はAAV8である、態様2に記載のrAAVビリオン。
態様6.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、N末端からC末端に向かって順に、第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第1のセグメント、第2のAAV血清型のアミノ酸51〜アミノ酸320に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第2のセグメント、第3のAAV血清型のアミノ酸101〜アミノ酸480に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第3のセグメント、前記第2のAAV血清型のアミノ酸151〜アミノ酸640に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第4のセグメント、及び第4のAAV血清型のアミノ酸201からC末端までのアミノ酸に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第5のセグメントを含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様7.
前記第1のAAV血清型はAAV6である、態様6に記載のrAAVビリオン。
態様8.
前記第2のAAV血清型はAAV9である、態様6に記載のrAAVビリオン。
態様9.
前記第3のAAV血清型はAAV8である、態様6に記載のrAAVビリオン。
態様10.
前記第4のAAV血清型はAAV2である、態様6に記載のrAAVビリオン。
態様11.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、N末端からC末端に向かって順に、第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第1のセグメント、第2のAAV血清型の約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第2のセグメント、第3のAAV血清型の約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第3のセグメント、前記第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第4のセグメント、前記第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第5のセグメント、第4のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第6のセグメント、前記第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第7のセグメント、及び前記第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第8のセグメントを含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様12.
前記第1のAAV血清型はAAV6である、態様11に記載のrAAVビリオン。
態様13.
前記第2のAAV血清型はAAV9である、態様11に記載のrAAVビリオン。
態様14.
前記第3のAAV血清型はAAV8である、態様11に記載のrAAVビリオン。
態様15.
前記第4のAAV血清型はAAV2である、態様11に記載のrAAVビリオン。
態様16.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、N末端からC末端に向かって順に、第1のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第1のセグメント、第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第2のセグメント、第3のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第3のセグメント、前記第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第4のセグメント、第4のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第5のセグメント、前記第4のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第6のセグメント、前記第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第7のセグメント、及び前記第2のAAV血清型に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の第8のセグメントを含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様17.
前記第1のAAV血清型はAAV6である、態様16に記載のrAAVビリオン。
態様18.
前記第2のAAV血清型はAAV9である、態様16に記載のrAAVビリオン。
態様19.
前記第3のAAV血清型はAAV8である、態様16に記載のrAAVビリオン。
態様20.
前記第4のAAV血清型はAAV2である、態様16に記載のrAAVビリオン。
態様21.
前記rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む前記対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して、少なくとも5倍高い神経幹細胞への感染力を示す、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様22.
前記対照AAVビリオンはAAV9である、態様21に記載のrAAVビリオン。
態様23.
前記対照AAVビリオンはAAV2である、態様21に記載のrAAVビリオン。
態様24.
前記rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む前記対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して、少なくとも10倍高い神経幹細胞への感染力を示す、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様25.
前記対照AAVビリオンはAAV9である、態様24に記載のrAAVビリオン。
態様26.
前記対照AAVビリオンはAAV2である、態様24に記載のrAAVビリオン。
態様27.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、配列番号1に記載の(及び図8に示す)アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも約90%であるアミノ酸配列を含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様28.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、配列番号1に記載の(及び図8に示す)アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも約95%であるアミノ酸配列を含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様29.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、配列番号1に記載の(及び図8に示す)アミノ酸配列を含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様30.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、配列番号2に記載の(及び図9に示す)アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも約90%であるアミノ酸配列を含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様31.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、配列番号2に記載の(及び図9に示す)アミノ酸配列に対するアミノ酸配列同一性が少なくとも約95%であるアミノ酸配列を含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様32.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、配列番号2に記載の(及び図9に示す)アミノ酸配列を含む、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様33.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む前記対照AAVビリオンが示す耐性と比較して高い耐性を示す、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様34.
前記対照AAVビリオンはAAV9である、態様34に記載のrAAVビリオン。
態様35.
前記対照AAVビリオンはAAV2である、態様34に記載のrAAVビリオン。
態様36.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む前記対照AAVビリオンが示す耐性と比較して少なくとも約1.5倍高い耐性を示す、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様37.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む前記対照AAVビリオンが示す耐性と比較して少なくとも約3倍高い耐性を示す、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様38.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む前記対照AAVビリオンが示す耐性と比較して少なくとも約5倍高い耐性を示す、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様39.
前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む前記対照AAVビリオンが示す耐性と比較して少なくとも約10倍高い耐性を示す、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様40.
前記神経幹細胞は脳室下帯由来である、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様41.
前記プルキンエ細胞は小脳由来である、態様1に記載のrAAVビリオン。
態様42.
前記遺伝子産物は、干渉RNAまたはアプタマーである、態様1〜41のいずれか1態様に記載のrAAVビリオン。
態様43.
前記遺伝子産物はポリペプチドである、態様1〜41のいずれか1態様に記載のrAAVビリオン。
態様44.
前記ポリペプチドは、神経保護ポリペプチド、血管新生阻害ポリペプチド、神経幹細胞の分化を誘導するポリペプチド、または神経幹細胞の機能を高めるポリペプチドである、態様43に記載のrAAVビリオン。
態様45.
前記ポリペプチドは、セレブロライシン、ラミニン−IKVAV、cripto、下垂体アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド、神経成長因子、脳由来神経栄養因子、グリア由来神経栄養因子、線維芽細胞増殖因子2、ニュールツリン、毛様体神経栄養因子、上皮成長因子、X連鎖アポトーシス抑制因子、またはソニック・ヘッジホッグである、態様43に記載のrAAVビリオン。
態様46.
前記ポリペプチドはゲノム編集酵素である、態様43に記載のrAAVビリオン。
態様47.
前記ゲノム編集酵素は、Cas9ポリペプチド、ジンクフィンガーヌクレアーゼ、TALEN、または酵素的に不活性なII型CRISPR/Casポリペプチドである、態様46に記載のrAAVビリオン。
態様48.
前記ポリペプチドは、II型CRISPR/Casポリペプチド、V型CRISPR/Casポリペプチド、及びVI型CRISPR/Casポリペプチドから選択されるRNA誘導型エンドヌクレアーゼである、態様47に記載のrAAVビリオン。
態様49.
前記遺伝子産物は、RNA誘導型エンドヌクレアーゼ及びガイドRNAである、態様1〜41のいずれか1態様に記載のrAAVビリオン。
態様50.
a)態様1〜49のいずれか1態様に記載の組換え型アデノ随伴ウイルスビリオン、及びb)薬理学的に許容される添加剤を含む、医薬組成物。
態様51.
個体の神経幹細胞に遺伝子産物を送達する方法であって、態様1〜49のいずれか1態様に記載の組換え型アデノ随伴ウイルス(rAAV)ビリオンまたは態様50に記載の組成物を前記個体に投与することを含む、前記方法。
態様52.
前記投与は、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射による、態様51に記載の方法。
態様53.
前記遺伝子産物は、短鎖干渉RNAまたはアプタマーである、態様51に記載の方法。
態様54.
前記遺伝子産物はポリペプチドである、態様51に記載の方法。
態様55.
前記ポリペプチドは、神経保護ポリペプチド、血管新生阻害ポリペプチド、または神経幹細胞の機能を高めるポリペプチドである、態様43に記載の方法。
態様56.
前記ポリペプチドは、セレブロライシン、ラミニン−IKVAV、cripto、下垂体アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド、神経成長因子、脳由来神経栄養因子、グリア由来神経栄養因子、線維芽細胞増殖因子2、ニュールツリン、毛様体神経栄養因子、上皮成長因子、X連鎖アポトーシス抑制因子、芳香族L−アミノ酸脱炭酸酵素、グルタミン酸脱炭酸酵素、トリペプチジルペプチダーゼ、アスパルトアシクラーゼ(aspartoacylase)、またはソニック・ヘッジホッグである、態様44に記載のrAAVビリオン。
態様57.
前記ポリペプチドはゲノム編集酵素である、態様54に記載の方法。
態様58.
前記ゲノム編集酵素は、Cas9ポリペプチド、ジンクフィンガーヌクレアーゼ、TALEN、または酵素的に不活性なII型CRISPR/Casポリペプチドである、態様57に記載の方法。
態様59.
前記ポリペプチドは、II型CRISPR/Casポリペプチド、V型CRISPR/Casポリペプチド、及びVI型CRISPR/Casポリペプチドから選択されるRNA誘導型エンドヌクレアーゼである、態様57に記載の方法。
態様60.
前記遺伝子産物は、RNA誘導型エンドヌクレアーゼ及びガイドRNAである、態様51に記載の方法。
態様61.
神経性障害を治療する方法であって、態様1〜49のいずれか1態様に記載の組換え型アデノ随伴ウイルス(rAAV)ビリオンまたは態様50に記載の組成物の有効量を、それを必要とする個体に投与することを含む、前記方法。
態様62.
前記神経性障害は、脊髄小脳失調症、ハンチントン病、パーキンソン病、アルツハイマー病、リソソーム蓄積障害、フリードライヒ運動失調症、神経膠芽腫、レット症候群、前頭側頭型認知症、またはてんかんである、態様62に記載の方法。
態様63.
変異アデノ随伴ウイルス(AAV)カプシドタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含む単離された核酸であって、
前記変異AAVカプシドタンパク質は、少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する、各セグメントが約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の少なくとも5つのセグメントを含み、かつ、i)神経幹細胞への感染力が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して高い、ii)ニューロンへの感染力が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンによるニューロンへの感染力と比較して高い、iii)ヒトAAV中和抗体に対する耐性が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む前記対照AAVビリオンが示す耐性と比較して高い、という特性のうち1つ以上を付与する、前記核酸。
態様64.
態様63に記載の核酸を含む、単離された遺伝子改変宿主細胞。
態様65.
変異アデノ随伴ウイルス(AAV)カプシドタンパク質であって、少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する、各セグメントが約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長の少なくとも5つのセグメントを含み、かつ、i)神経幹細胞への感染力が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して高い、ii)ニューロンへの感染力が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンによるニューロンへの感染力と比較して高い、iii)ヒトAAV中和抗体に対する耐性が、対応する親AAVカプシドタンパク質を含むかまたは野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンが示す耐性と比較して高い、という特性のうち1つ以上を付与する、前記変異アデノ随伴ウイルスカプシドタンパク質。
以下の例は、本発明の作製及び使用方法についての完全な開示及び説明を当業者に提供するために提示するものであり、発明者らが自身の発明であると見なす範囲を限定することも、また、下記実験が実施した全てまたは唯一の実験であると表すことも意図しない。使用する数字(例えば、量、温度など)に関して正確さを保証するべく試みがなされたが、実験上の一部の誤差及び偏差を考慮するべきである。特に指定しない限り、部は重量部、分子量は重量平均分子量、温度はセ氏、及び圧力は大気圧または大気圧近傍圧である。例えば、bp、塩基対(複数可);kb、キロベース(複数可);pl、ピコリットル(複数可);sまたはsec、秒(複数可);min、分(複数可);hまたはhr、時間(複数可);aa、アミノ酸(複数可);kb、キロベース(複数可);bp、塩基対(複数可);nt、ヌクレオチド(複数可);i.m.、筋肉内(に);i.p.、腹腔内(に);s.c.、皮下(に)等、標準的略語を使用してよい。
実施例1:SCHEMAに基づくキメラAAVライブラリー設計
材料及び方法
特に記載がない限り、本明細書に記載の実施例で提示されている結果には一般に以下の材料及び方法が適用される。
SCHEMAライブラリー設計
キメラAAVのライブラリーは、複数の系統分岐群を表す(例えば、Gao et al.(2004)J.Virol.78を参照のこと)SCHEMAスコアリング関数及びRASPPアルゴリズム(例えば、Voigt et al.(2002)Nature Struct.Mol.Biol.6、及びEndelman et al.(2004)PEDS 17を参照のこと)を使用して設計されたが、これは、さまざまな受容体結合特性を有しており(例えば、Asokan et al.(2012)Mol.Ther.20を参照のこと)、臨床において多少の効果が享受された(例えば、Kotterman et al.(2015)Annu.Rev.Biomed.Eng.17を参照のこと)。MUSCLE(例えば、Edgar et al.(2004)Nucleic Acids Res.32を参照のこと)を使用してAAV2、4、5、6、8、及び9のアミノ酸配列を整列させ、親配列アラインメントを生成した。多量体AAVカプシドにおけるサブユニットアミノ酸内の接触及びサブユニットアミノ酸同士の接触の両方が考慮されるようSCHEMAを変更したが、ここで、一対の残基が接触しているのは、それらに水素以外の原子が4.5オングストローム以内に含有されている場合である。AAV2(1LP3)、AAV4(2G8G)、AAV5(3NTT)、AAV6(3OAH)、AAV8(2QA0)、及びAAV9(3UX1)の結晶構造を使用して、接触残基の位置を計算した。最終接触マップは、これらの6つの親構造の少なくとも50%で接触している残基対を含有した。ライブラリーの高い多様性を達成するため、6つの交差を含有するライブラリーをカプシドの結晶化領域内に設計するべきであり、7つ目の交差を、その位置での組換えが成功している先の例に基づき、位置128の非結晶化VP1領域(アミノ酸1〜アミノ酸216)に設計する。例えば、Excoffon et al.(2009)Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.106を参照のこと。6種の親血清型由来のカプシドタンパク質ブロックを8つ含有するライブラリーから、理論上、160万(6)を越えるキメラ変異型というライブラリー多様性が得られる。キメラカプシドのSCHEMA破壊<E>は、親配列のいずれにも存在しない、アミノ酸の新しい組み合わせを含有する接触の数であった。キメラカプシドの<m>は、最も近い親配列からの変異の数であった。
図1.
RASPPアルゴリズムを使用して、平均構造破壊<E>と平均配列多様性<m>のバランスのとれたライブラリーを設計した。SCHEMAスコアリング関数をさらに変更して、ライブラリー構築のコンビナトリアルゴールデンゲートアセンブリの影響を受けやすい交差位置について検索したが、これには、すべてのAAV親配列を通じて保存されている4つのヌクレオチド領域を要した。可能な交差部位の数を増やして、より大きい配列空間をインシリコで探索するために、4つのヌクレオチド領域は、ライブラリーアセンブリ中はサイレント変異させて、すべての親配列で同一となるように含めた。ライブラリー設計では、最小許容配列ブロック長は20アミノ酸及び最大長さは250アミノ酸を検討した。最終ライブラリーは、その<E>が低いもの、その均一なブロックサイズ、及びカプシドの主要構造特徴の組み換えに基づいて選択した。
SCHEMAライブラリー構築
図2.
II型の制限酵素BsaIを用いたコンビナトリアルゴールデンゲートクローニングを容易に行うために、pBluescript SK(+)、AAV2、4、5、6、8、及び9に見られるBsaI認識部位をすべて、部位特異的変異導入のQuikChangeによりサイレント変異させた。
図3及び図4.
シャッフルしたブロックそれぞれに相当する48のDNA配列を、DNAアセンブリ設計オートメーションソフトウェアのj5で設計したPCRプライマーを使用して、親cap遺伝子からPCR増幅させた。例えば、Hillson et al.(2012)ACS Synth.Biol.1を参照のこと。
図5.
プライマーは、ブロック接合部にサイレント変異を組み込んでpBluescriptベクター骨格へのゴールデンゲートクローニングを促進するよう設計された。ゴールデンゲート反応物をエレクトロコンピテントなDH10B大腸菌に形質転換し、理論上の多様性である6クローンより大きなライブラリーサイズを達成した。その後、ライブラリーを、制限酵素HindIII及びNotIを使用してpBluescriptからAAVパッケージングプラスミドpSub2FloxCapにサブクローニングした。
Illuminaシークエンシングを使用して、パッケージング前後のSCHEMAライブラリーを分析した。AAV cap遺伝子を含有する2.5kb断片を、HindIII部位及びNotI部位を使用してpSub2FloxCapベクターから切り出し、ゲル抽出した。これらのゲル抽出したインサートを、Nextera XT DNA Sample Prep Kit(Illumina)への投入物として使用した。各種インデックスプライマーを使用して各試料をバーコード化した。得られるライブラリーを、高感度Bioanalyzerチップ(Agilent)、Qubit Assay Kit(Invitrogen)、最後に定量PCR(Kapa Biosystems)を使用して定量した。平均配列断片は約1,400bpであった。2ライブラリーを等モル比でプールし、MiSeq、バージョン3、2×300、5% PhiX対照スパイクインを用いたランを使用して配列決定した。AAV親すべてに対し、読み取られたシークエンシングのマッピングをBowtie2を使用して行い(例えば、Langmead et al.(2009)Genome Biol.10を参照のこと)、読取り位置と親に対する配列同一性とを考慮して、存在する特定配列ブロックを決定した。
Cre依存的選択のためのAAV構成体の設計
構成体設計及びcap増幅に使用したPCRプライマーは図2に提示されている。pSub2RepKO及びpRepヘルパーを使用した。AAVパッケージングプラスミドpSub2でrepをノックアウトさせたpSub2RepKO(例えば、Maheshri et al.(2006)Nature Biotechnol.24を参照のこと)を、SgraI及びBamHIを用いた消化、クレノウ反応、及び平滑末端ライゲーションにより作製した。AAVパッケージングの際にRepをトランスで供給するために使用するpRepHelperを、PmeI及びBsmIを用いたpAAV2/rh10の連続消化、クレノウ反応、及び平滑末端ライゲーションにより創製した。lox66をcapの5’部位に挿入するため、プライマーBglIIFwd及びBglIIRevを使用した部位特異的変異導入により、pSub2RepKOに固有BglII部位を導入した。オリゴヌクレオチドLox66Fwd及びLox66Revをアニールし、pSub2RepKOのBglII部位及びHindIII部位に連結してpSub2Lox66を形成した。lox71をcapの3’部位に挿入するため、プライマーXhoIFwd/XhoIRev及びKpnIFwd/KpnIRevをそれぞれ用いた部位特異的変異導入により、固有XhoI部位及び固有KpnI部位をpSub2Lox66に導入した。オリゴヌクレオチドSOELox71Fwd及びSOELox71Revをオーバーラップエクステンションでスプライスして組み立て、Lox71Fwd及びLox71Revを用いて増幅した。得られる断片及びpSub2Lox66をXhoI及びKpnIで消化させ、連結してpSub2Floxを創製した。この選択で使用するpSub2Flox及びAAV capライブラリーをHindIII及びNotIで消化させ、連結してウイルスパッケージング用pSub2FloxCapライブラリーを産生した。
AAVベクター作製
HEK293T細胞をAmerican Type Culture Collection(Manassas,VA)から入手し、10%ウシ胎児血清(Invitrogen)及び1%ペニシリン/ストレプトマイシン(Invitrogen)添加ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM、Gibco)で37℃、5%COで培養した。先にKoerber et al.(2008)Mol.Ther.16、及びMaheshri et al.(2006)Nature Biotechnol.24に記載のように、サイトメガロウイルス初期エンハンサー/ニワトリベータアクチン(CAG)プロモーターの制御下で緑色蛍光タンパク質(GFP)もしくはCreリコンビナーゼの発現を誘導する、AAVライブラリーまたは自己相補的組換え型AAVベクターを、HEK293T細胞にパッケージングした。簡単に言えば、一過性トランスフェクション、イオジキサノールの密度勾配遠心分離による精製、及びAmiconでのろ過によるリン酸緩衝食塩水(PBS)へのバッファー交換を、3回繰り返してAAVベクターを作製した。DNase耐性ウイルスゲノム力価を、Biorad iCycler(Bio−Rad、Hercules,CA)を使用して定量的リアルタイムPCRで測定した。
SCHEMA AAV変異体のインビボ選択及び特性解析
7週齢のGFAP−Cre73.12(Jackson Laboratory Stock 012886)、C57BL/6J(Jackson Laboratory Stock000664)、またはAi9 tdTomatoマウス(Jackson Laboratory Stock 007909)をイソフルランで麻酔し、定位固定装置に置いた。切開を行って頭蓋骨を露出させ、ドリルで注入用の穴を作製した。ライブラリー選択では、先に記載の100のように、AAVライブラリーの等モル混合物(1×1010ウイルスゲノム/μl)5マイクロリットルを、GFAP−Creマウス(n=3)の右側脳室内、座標がブレグマより0.05mm後ろ、1.0mm側方、深さ2.5mmにハミルトンシリンジを使用して定位的に注入した。マウス脳アトラス(Franklin and Paxinos,2007)を使用して注入座標を選択し、0.1%FastGreen色素(Sigma)を用いて試験注入をしてから調整した。試験期間を通しての注入精度は、脈絡叢内及び対側の側脳室周辺のレポーター発現により確認された。注入から3週間後にマウスを屠殺し、脳組織を採取した。乳鉢及び乳棒を使用してドライアイス上で注射部位の対側半球を均質化した。プロテアーゼK(New England Biolabs)及びRNase A(ThermoFisher)を添加したHirt溶解バッファー中で均質化組織を55℃にて3時間消化させ、先のArad et al.(1998)BioTechniques 24に記載のようなHirt法を使用して染色体外DNAを単離した。PCRプライマーCap_ISF及びCap_Rを使用して逆位capを増幅させ、プライマーCap_NSF及びCap_Rで非逆位capを特異的に増幅させた。逆位capの増幅が困難な場合はネステッドPCRでプライマーInternal_Cap_ISF及びInternal_Cap_Rを使用してよい。選択を3ラウンド行った後、サンガー法による配列決定(UC Berkeley DNA Sequencing Facility)でカプシド配列を決定し、優性変異体をHindIII及びNotIで消化し、pXX2Notに連結して組換え型AAVパッケージングに供した。
インビボでのSCH9及びAAV9の特徴を明らかにするため、GFPまたはCreを発現している自己相補的組換えベクター(1×1010ウイルスゲノム/μl)5マイクロリットルを、C57BL/6またはAi9 tdTomatoマウスそれぞれの右側脳室内、座標がブレグマより0.05mm後ろ、1.0mm側方、深さ2.5mmにハミルトンシリンジを使用して定位的に注入した。Ai9マウスは、一本鎖SCH9 CAG−Creの注入に先立ち、50mg/kgのBrdU(Sigma−Aldrich)の注入を3日間連続で受けた。深部小脳核への注入では、GFPを発現している組換え型AAVベクター(2×10ウイルスゲノム/μl)4マイクロリットルを、右半球内、座標がブレグマより6.0mm後ろ、2.0mm側方、小脳表面から深さ2.2mmにハミルトンシリンジを使用して定位的に注入した。動物処置法は、UC Berkeley Laboratory Animal Care and Use Committeeにより承認されたものであり、動物管理に関するNIHガイドラインに従って実施された。
免疫組織染色
マウスを、ケタミン100mg/kg及びキシラジン10mg/kgの腹腔内注射により麻酔し、0.9%生理食塩水で経心腔的灌流を行った後、4%パラホルムアルデヒドで経心腔的灌流を行った。脳を4%パラホルムアルデヒド中で4℃にて一晩、灌流後固定を行い、PBSで洗浄し、脳が沈んでくるまで30%ショ糖中で保存した。冠状断または矢状断での連続切片を、Series 8000スライディングミクロトーム(Bright)で厚さ40μmにカットして作製し、使用時まで凍結保護剤中で−20℃にて保存した。浮遊切片をPBS中で3回洗浄し、ブロッキング溶液(10%ロバ血清、1% Triton X−100含有PBS)と共に室温で2時間インキュベートし、一次抗体を用いてブロッキング溶液中で4℃にて72時間染色した。本試験では以下の一次抗体を使用した:マウス抗カルビンジン(1:2000;Abcam、ab82812)、ウサギ抗GFP(1:1000;Life Technologies、A−11122)、ヤギ抗GFAP(1:750;Abcam、ab53554)、モルモット抗DCX(1:1000、EMD Millipore、AB2253)、ラット抗VCAM1(1:50;EMD Millipore、MAB2627)、ニワトリ抗GFAP(1:750;Abcam、ab4674)、ラット抗BrdU(1:750;Abcam、ab6326)、及びウサギ抗tdTomato(1:750、Rockland、600−401−379)。PBS中で3回洗浄した後、切片を二次抗体と共に室温で2時間インキュベートし、DAPI(Thermo Fisher)で10分間染色した。染色した切片をPBS中で3回洗浄し、VectaShield HardSet Antifade Mounting Medium(Vector Laboratories)を使用してスライドガラス上に封入した。
画像処理及び解析
Zeiss Axio Scan.Z1または共焦点Zeiss LSM 880 NLO AxioExaminer(UC Berkeley Molecular Imaging Center)を使用して画像を取得した。画像解析はすべて、同等の設定で取得した原画像で実施した。データは、平均±SEMとして提示され、統計的有意性は両側スチューデントのt検定により確証された。
SVZは、上衣細胞、成体NSC(B型細胞)、一過性増殖細胞(C型細胞)、神経芽細胞(A型細胞)、及び成熟アストロサイトなど、複数の細胞型で構成される。例えば、Lim et al.(2016)Cold Spring Harb.Perspect.Biol.8を参照のこと。SVZにおけるNSCの形質導入の有効性を評価するため、NSC内に選択的に発現させた分子マーカーを最初に評価した。ほとんどのマーカーは、細胞系譜が進行する間の遺伝子発現の連続体を反映して、SVZ内の複数の細胞型で発現されるが、血管細胞接着分子1(VCAM1)は、脳室と接する、NSCのエンドフィートに特異的に局在する。例えば、Kokovay et al.(2012)Cell Stem Cell 11を参照のこと。
SVZの形質導入体積を決定するため、SVZでGFPを発現している表面積を、1群につきマウス3匹の、側脳室前角から前交連までのSVZに及ぶ6冠状断でCellProfilerを使用して(例えば、Carpenter et al.(2006)Genome Biol.7を参照のこと)閾値処理画像から定量化した。総表面積に、切片厚さ(40μm)と切片間距離を掛け、形質導入体積を得た。同じ閾値処理画像は、CellProfilerを使用した、GFP発現の積分強度の定量化に使用された。
吻側移動経路のtdTomato陽性神経芽細胞の割合を定量化するため、吻側移動経路におけるダブルコルチン及びtdTomatoに陽性の細胞体の閾値、セグメント、及びスコアに対しCellProfilerのセルセグメンテーション能を適用した。各群ともマウス4〜5匹を用い、動物それぞれにおいて吻側移動経路を含有している2〜5枚の矢状方向組織切片から測定を行った。成体神経幹細胞への形質導入を評価するため、脳室下帯のすべてのBrdU陽性細胞の同一性を、tdTomato及びGFAPまたはDCXとの共局在によりスコア化した。マウス5匹のSVZに及ぶ矢状断切片を動物1体につき4〜5枚採取し、切片5枚ごとの共焦点画像でカウントを実施した。
tdTomato陽性である、カルビンジン染色面積の割合を計算するため、CellProfilerパイプラインを用いて、カルビンジン染色の閾値処理マスクを生成した。このマスクを、閾値処理したtdTomato画像に適用し、tdTomato陽性面積を総カルビンジン面積で割った。カルビンジンマスク内の閾値処理tdTomatoの積分強度も記録した。各群のマウス4〜5匹で、小脳に及ぶ40μmの矢状方向組織切片4〜7枚の測定を行った。
SCHEMA AAV変異体のインビトロ特性解析
特に断りのない限り、細胞株はすべて、10%ウシ胎児血清(Invitrogen)及び1%ペニシリン/ストレプトマイシン(Invitrogen)を添加したDMEM(Gibco)で37℃、5%COにて培養した。SCH9、SCH2、及び野生型AAV2のヘパリン親和性を、先のJang et al.(2011)Mol.Ther.19に記載のように決定した。1ml HiTrapヘパリンカラム(GE Healthcare Sciences)を、150mM NaCl及び50mM Tris、pH7.5で平衡化した。1×1011の精製ウイルスゲノム粒子をカラムに担持させ、50mMのNaClを最終濃度950mMまで段階的に増加させて溶出を行い、その後、1M NaClで洗浄した。各溶出画分を使用してHEK293T細胞を感染させ、感染から48時間後、Guava EasyCyte 6HTフローサイトメーター(EMD/Millipore)(UC Berkeley Stem Cell Center,Berkeley,CA)を使用してGFP陽性細胞の割合を定量化した。
細胞の形質導入に対する、AAVによるガラクトース及びヘパラン硫酸プロテオグリカンの利用を、先のShen et al.(2013)J.Biol.Chem.288に記載のように特徴付けした。細胞表面に末端ガラクトース残基を提示するCHO−Lec2細胞をUniversity of California(Berkeley)の組織培養施設から入手し、10%ウシ胎児血清(Invitrogen)及び1%ペニシリン/ストレプトマイシン(Invitrogen)を添加したMEM αヌクレオシド(Gibco)で、37℃、5%COで培養した。播種の翌日、細胞を4℃で30分間インキュベートし、その後、100μg/mLのErythrina cristagalliレクチン(ECL)(Vector Labs)添加または無添加のMEMで完全に培地交換を行った。自己相補的rAAV CAG−GFPビリオンに、可溶性ヘパリン(500μg/mL)含有PBSによる処理または偽処理を1時間行い、その後、ゲノムMOI 12,000(n=3)で使用して細胞を感染させた。ウイルスと1時間インキュベーションした後、Lec2細胞を冷やしたPBSで3回洗浄して未結合AAVを除去し、感染から72時間後にGFP発現細胞の割合をフローサイトメトリーで定量化した。
抗体回避特性を分析するため、SCH9、AAV2、AAV6、AAV8、及びAAV9を、熱非働化処理IVIG(Gammagard)の系列希釈と共に37℃で1時間インキュベートし、その後、先のSantiago−Ortiz et al.(2015)Gene Ther.22に記載のように、ゲノムMOI 8,000(n=3)で使用してHEK293T細胞を感染させた。感染から48時間後にGFP発現細胞の割合をフローサイトメトリーで定量化した。中和抗体価は、GFP発現の50%以上の減少が観察された最初のIVIG濃度として記録された。
AAVRへの依存を検討するため、野生型のHeLaまたはAAVRKO細胞(クローンKIAA0319L)を、SCH9、SCH2、または自己相補的CAG−GFPを保持するAAV2にゲノムMOI 20,000(n=6)で感染させた。感染から72時間後にGFP発現細胞の割合をフローサイトメトリーで定量化した。
結果
6つの天然の血清型−AAV2、4、5、6、8、及び9を組み換えたキメラAAVライブラリーを設計した。
図1.
設計パラメータを指定した後、RASPPによる方法(最短経路問題としての組換え)(例えば、Endelman et al.(2004)PEDS 17を参照のこと)を適用して、変異レベルの範囲にわたり、最も破壊の少ない160のライブラリー設計(7つの交差位置からなる各種セット)を短時間で同定した。これらの設計それぞれについて、平均ライブラリー破壊スコア<E>及び最も近い親血清型に対する導入されたアミノ酸変異数<m>を計算し(図1A)、すべてのRASPP設計の交差位置を図1Bに提示した。いくつかの理由から、カプシドの結晶化領域のサブユニットあたりの平均破壊スコア<E>が59、平均変異数<m>が82である最終設計(図1A−C)を選択した。第1に、この設計は、<E>における極小を高レベルの変異で表すRASPPライブラリークラスター内にあった(図1A)。第2に、選択した設計では、表面露出ループ及び天然のAAV血清型の進化において最も可変な領域を表す超可変領域など、カプシドの主要な構造的特徴がシャッフルされていた(図1C)。接触に富むこれらの領域内での組換えにより大きな破壊がもたらされたが、新規かつ興味深い機能を有するAAVキメラを生じさせる可能性も高かった。例えば、ブロック5とブロック6を合わせることにより有意に低い破壊スコアの達成が可能と考えられたが、そのようにすることで、単一親配列由来の表面露出ループ領域を有するカプシドが生じることが考えられた。最終的に、ブロックサイズの分布が比較的均等に得られることから、このセットの交差位置を選択した。20〜250アミノ酸の許容ブロックサイズ範囲が考慮されるようRASPPをプログラムした。<E>が最も低い設計の大部分には2つの長ブロック(ブロック3及びブロック4で175アミノ酸超)、それに続く一連の短ブロック(ブロック5〜7で30アミノ酸未満)(図1B)が含有されていた。対照的に、選択された交差位置セット(図1C)では、ブロックサイズの分布がさらに均等に得られ、これにより、多様性に限界がある親配列の少数領域内に交差を限定する場合とは対照的に、カプシド全体のシャッフリングが保証された。
選択されたライブラリー設計をコンビナトリアルゴールデンゲートクローニングで構築し(例えば、Engler et al.(2013)Methods Mol.Biol.1073を参照のこと)、エレクトロコンピテントな大腸菌にクローニングして5×10超の形質転換体を得、AAVビリオンにパッケージングした。ウイルスパッケージングの前後で、各ブロック位置における親血清型の頻度をディープシークエンシングにより分析した(図1F)。ウイルスパッケージング前には各ブロック位置にて各親血清型配列は良好に表れ、分布していたが、パッケージングにより、恐らく安定なカプシドに有意な選択圧がかかり、それにより、ライブラリー組成に劇的な変更が生じたと考えられる。例えば、AAV4及びAAV5の頻度はそれぞれ、パッケージングされたライブラリーを通じて平均で348倍及び372倍低下しており、これは、ライブラリーアセンブリに使用した他のAAV親より、これらの血清型のアミノ酸配列同一性が平均して低かった(AAV4:60%、AAV5:65%)ことによると考えられる。パッケージング時のライブラリー組成の変更もまた、結晶化サブユニットあたりの平均破壊スコア<E>が59から4に減少し、平均変異数<m>が82から28に減少したことに反映されていた。したがって、Meyer et al.(2006)PEDS 19、及びOtey et al.(2004)Chem.& Biol.11に記載のSCHEMAに関する先行出願と一致して、<E>が低いキメラはライブラリーにおいて重度に濃縮されていた。AAV2の選択性はブロック5及びブロック6に、AAV9の選択性はブロック8にあった。今後、これらの傾向を使用すれば合理的なカプシド操作を導くことができるであろう。
実施例2:AAV指向進化のCre依存的選択法
NSCを特異的に指向させるため、SVZのNSCを感染させたAAV変異体の陽性選択を誘導するよう、インビボのCre依存的指向進化及び選択法を設計した。本試験の期間中、概念上は似ているが別個のCre依存的システムが報告された。Deverman et al.(2016)Nature Biotechnol.34を参照のこと。
細胞型特異的プロモーターの制御下でCre発現を誘導した300を超えるトランスジェニックマウスを作製した。例えば、Heffner et al.(2012)Nature Commun.3を参照のこと。
図6.
AAV cap遺伝子の選択的回収を仲介するよう、cap遺伝子を一対のloxP部位で挟むことによりCre発現の細胞型特異性を形成させた。Creを発現している細胞をAAVに感染させて2本目のAAVゲノムを合成させ、floxedになっていたcapの逆位を生じさせ、逆位になった遺伝子鋳型でのみフォワードプライマーとリバースプライマーの対として機能するPCRプライマーを使用して、Cre逆位cap遺伝子を脳組織から選択的に回収した(図6A、B)。変異loxP部位であるlox66及びlox71 40を用いて、Cre組換えの平衡を一方向性逆位に誘導した。最初、loxP部位をcapの3’UTRに挿入したが、その際、Cre依存的回収に使用するリバースプライマー用の標的配列を含有した短いスタッファー配列にloxP部位を隣接させた。図7に示すように、細菌プラスミドの増殖中、組換えは少量出現し、リコンビナーゼ欠損大腸菌のSure2でも低かった。インビボ選択の際、こうした望ましくない逆位cap回収がないようにするため、loxP部位がcapに隣接するよう位置を決め直し、ベクタープラスミドライブラリーの細菌増殖の際の人工的逆位が、ウイルスタンパク質をコードしない逆位cap配列を生じさせて、293細胞にそれ以上パッケージングが行われないようにしたが、これは、別の設計には含まれていない規定である。例えば、Deverman et al.(2016)Nature Biotechnol.34を参照のこと。loxP部位をcap遺伝子に隣接させて挿入したことにより、rep遺伝子の読み枠が変化したことに留意されたい。したがって、repの翻訳開始コドンを除去し、cap発現を誘導したウイルスプロモーターは維持した(図6A)が、その代わりに、repをコードする別個のヘルパーを一過性にトランスフェクションすることにより、ウイルスパッケージングにrepをトランスで供給した。ウイルスパッケージングプラスミドに対するこれらの修飾により、qPCRで定量化したAAVウイルスゲノムの収量は高かった(図6C)。
SVZの成体NSCはグリア細胞のマーカーを発現し、これらには、グリア線維性酸性タンパク質(GFAP)(例えば、Doetsch et al.(1999)Cell 97を参照のこと)、グルタミン酸・アスパラギン酸トランスポーター(GLAST)(例えば、Platel et al.(2009)Glia 57を参照のこと)、及び脳型脂質結合タンパク質(BLBP)(例えば、Giachino et al.(2014)Stem Cells 32を参照のこと)が含まれる。成体NSCの形質導入用に選択するため、マウスGFAPプロモーターによりCreリコンビナーゼ発現が制御されるGFAP−Cre73.12マウス系統を用いた。GFAPを発現している成体神経幹細胞及び成熟アストロサイトでCre発現が観察された。例えば、Garcia et al.(2004)Nature Neurosci.7を参照のこと。Creは、神経幹細胞に加えアストロサイトでも発現したが、脳室内(ICV)投与経路は、神経幹細胞が存在するSVZへの選択的形質導入をもたらし、GFAPはNSC固有性に関する重要なマーカーとして機能した。例えば、Doetsch et al.(1999)Cell 97を参照のこと。capのCre依存的回収を確認するため、floxedのcap遺伝子を含有するAAVライブラリー(pSub2FloxCap)をGFAP−Cre73.12またはC57BL/6J対照マウスに脳室内注入で送達した。逆位capは、Creを発現しているマウスの脳組織からしか増幅させることができなかったが、非逆位capは両群に存在していた(図6D)。Cre組換えが生じるためには、治療用導入遺伝子発現に必要とされるように、AAVゲノムは二本鎖形態になければならない。したがって、GFAP陽性細胞を感染させなかったカプシドを示すGFAP−Cre73.12マウスから増幅させたcap遺伝子の非逆位プールは、ウイルスの生活環という側面(例えば、カプシド脱殻、エンドソーム脱出)の一部で欠陥があった、または第2鎖合成が完了しなかったのだと考えられた。このことから、Cre依存的選択法では、標的細胞型における確実な導入遺伝子発現に必要な全ステップを完了するカプシド変異体に限定して回収した。
実施例3:インビボでのライブラリー選択から優性SCHEMA AAV変異体が絞られる
capのCre依存的回収を確認した後、6つのAAVライブラリーの等モル混合物を使用してインビボ選択を開始し、ライブラリーの各々は、10〜10の特有の変異体、すなわち、(i)新規SCHEMA AAV、(ii)エラーが起こりやすいAAV9、(iii)祖先AAV(例えば、Santiago−Ortiz et al.(2015)Gene Ther.22を参照のこと)、(iv)DNase Iにより消化し、AAV1、2、4、5、6、8、及び9を再構築することによる、シャッフルAAVの作製(例えば、Koerber et al.(2008)Mol.Ther.16を参照のこと)、(v)エラーが起こりやすいAAV2(例えば、Koerber et al.(2006)Nature Protoc.1を参照のこと)、及び(vi)アミノ酸588に7merペプチドの挿入があるAAV2(例えば、Muller et al.(2003)Nature Biotechnol.21を参照のこと)を含有した。ライブラリーiii〜viは、これまでの本発明者らの指向進化選択では高感染性クローンを与え、進化的なSCHEMAライブラリー競争をした。例えば、Dalkara et al.(2013)Sci.Transl.Med.5;Tervo et al.(2016)Neuron;Steines et al.(2016)JCI Insight 1;Koerber et al.(2008)Mol.Ther.16;及びSantiago−Ortiz et al.(2015)Gene Ther.22を参照のこと。ライブラリーを合わせて成体GFAP−Creマウス(n=3)の右側脳室内に脳室内投与で注入し、両半球のSVZ全体にわたりNSCに形質導入した。対照的に、SVZへの直接注入は局所組織に対しより破壊的であり、同量の組織体積を網羅するためには複数注入を要し得たであろう。
注入から3週間後、対側の脳半球を採取してゲノムDNAを抽出し、Creにより組み換えられたAAV cap変異体をGFAP発現細胞からPCRで回収した。対側半球を採取し、皮質上方から側脳室にかけての注入路に関連する形質導入からは、cap変異体は回収されなかったことを確認した。3ラウンドのインビボ選択の後、24のクローンをサンガー法による配列決定で解析したところ、SCHEMAライブラリーに由来する2つの変異体に絞られることが明らかになった。SCH9(キメラ6、9、8、9、9、2、9、9;<E>9、<m>49)は回収されたクローンの54%を表し、SCH2(キメラ6、9、8、9、2、2、9、9;<E>4、<m>37)は33%を表した。それ以外のクローンは、AAV2 7mer挿入(8%)及び祖先ライブラリー(4%)に由来した。SCH9は最も近い親であるAAV9とは異なり、総変異数58(アミノ酸同一性92%)である。これら(<m>)のうち49はカプシドの結晶化領域にあり、9は非結晶化領域にある。SCH9、SCH2、及び複数の親AAV血清型の各配列のアミノ酸アラインメントはそれぞれ図8、9、及び10に記載されている。2つのSCHEMA変異体はブロック5のみが異なり、18アミノ酸の相違がある。
図11.
SCH9の3次元構造モデルにより、AAV9はカプシド表面のループVR−IVに、AAV2はループV〜ループVIIIに、AAV8は5回回転対称軸の細孔構造に示された。これらの興味深い特徴、及び選択プールに対するその優位性に基づき、SCH9のインビボ特性解析を行った。
実施例4:SCH9は成体マウスのSVZの成体神経幹細胞に効率的に形質導入する
SVZでのSCH9の形質導入特性を評価するため、自己相補的CAG−GFPカセットを保持するrAAVを首尾よくパッケージングし(組換え型AAVパッケージングの収量は図12に報告されている)、成体C57BL/6Jマウスの右側脳室に送達した。AAV9はCNSで広く使用されており、髄腔内注入後、脳脊髄液(CSF)から脳実質へ形質導入する能力があることから、AAV9を基準にSCH9を評価した。例えば、Samaranch et al.(2012)Hum.Gene Ther.23、及びSchuster et al.(2014)Front.Neuroanat.8を参照のこと。さらに、天然血清型のうち、AAV9がSCH9に最も近縁の配列である。
図13.
注入から4週間後に対側半球の形質導入を解析したところ、GFP発現は脳室周辺領域に主に関連しており、その強度は脳室下帯で最も強かった(図13A)。形質導入効率を、GFP発現強度、及びGFP陽性であったSVZの総体積の両方によって評価した。SCH9では、組込みGFPの蛍光強度は24倍高く、またGFPは、AAV9と比べて12倍大きいSVZ形質導入体積で発現した(図13B、C)。初回特性解析として、脳室下帯でGFP/GFAP/VCAM1陽性成体神経幹細胞にSCH9により形質導入した(図13D)。
組換え型AAVゲノムはエピソームに維持され、SVZでの成体神経発生の特徴であるように細胞分裂の際に徐々に失われていった。具体的に、神経幹細胞から嗅球介在ニューロンまでの系譜の進行では7回を超える細胞分裂が行われた。例えば、Ponti et al.(2013)Cell Cycle 12を参照のこと。AAVゲノムが希釈されていった結果、注入後の後半の測定ポイントにおいて導入遺伝子の発現を続ける細胞の大部分は、ゆっくりと分裂するNSCまたは分裂終了細胞であった。さらに、レトロウイルスベクターの組み込みを使用した先の研究では、神経芽細胞が吻側移動経路を横切って嗅球へ達するまでに要する時間は9日であったこと、また、注入時にSVZに存在していた一過性増殖細胞及び神経芽細胞はいずれも嗅球に分化及び/または遊走し、注入後30日までに樹状突起を形成したことが示された。例えば、Petreanu et al.(2002) J.Neurosci.22;及びLois et al.(1994)Science 264を参照のこと。これらの結果から、注入後、後半の測定ポイントで吻側移動経路に存在していた神経芽細胞はNSCに由来していたことが示され、レンチウイルスまたはウイルス以外によるSVZのNSCへの形質導入の確証にこれまで用いられた結論であることが示された。例えば、Consiglio et al.(2004)Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.101、及びBarnabe−Heider et al.(2008)Nature Methods 5を参照のこと。NSCの形質導入の指標として、注入後30日にtdTomatoを発現している移動神経芽細胞数を決定する同様の系譜解析法を設計した。Creリコンビナーゼをコードする組換え型SCH9またはAAV9を成体Ai9 floxed STOP tdTomatoマウスの右側脳室内に注入した(例えば、Madisen et al.(2010)Nature Neurosci.13を参照のこと)が、それらのマウスでは、Cre活性によって形質導入細胞及びその子孫でtdTomatoの発現がもたらされた。Cre発現SCH9の注入から30日後の吻側移動経路において、神経芽細胞の大部分(右半球に注入が83.2±3.6%、左半球に注入が50.3±4.4%)がtdTomato陽性であり(図13E、G)、AAV9の形質導入を4倍以上超えていた。さらに、大量のtdTomato陽性神経芽細胞が嗅球で放射状移動し、顆粒細胞ニューロンの形態をとることが観察された(図13F)。
NSCの形質導入をさらに特徴づけるため、一本鎖SCH9 CAG−Creの注入に先立ち、チミジンアナログであるBrdU(5−ブロモ−2’−デオキシウリジン)を投与して、SVZの分裂細胞を標識した。2週間のウォッシュアウト期間の後、tdTomato発現と、GFAP NSCへのBrdUの取り込みとの共局在を分析した(図13H)。SVZでtdTomatoを発現している成体NSC(GFAP+、BrdU+、ダブルコルチン−)、一過性増殖細胞(GFAP−、BrdU+、ダブルコルチン−)、及び神経芽細胞(GFAP−、BrdU+、ダブルコルチン+)の割合を定量化した(図13I)。両半球共にNSCの約60%が形質導入されており、一本鎖フォーマット及び自己相補的フォーマットの両方を使用する、NSCへの遺伝子送達についてのSCH9の有効性を支持している。
実施例5:SCH9は小脳のプルキンエ細胞指向性も示す
標的細胞型の感染を高めるカプシド変異は脳の他の領域での形質導入を同時に改善することができる。
図14.
脳室内注入の後のSCH9による形質導入は主にSVZに関連しているが、脳脊髄液中を循環するベクターに直接接近可能な脳の領域である小脳のプルキンエ細胞において、レポーター発現の増加も観察された(図14A)。プルキンエ細胞は、脊髄小脳失調症など神経変性疾患に対する遺伝子治療の主要標的である。例えば、Orr et al.(2012)J.Cell Biol.197を参照のこと。CellProfilerで定量化したところ、SCH9−Creの送達によりtdTomatoレポーター発現はAAV9−Creよりも12.2倍強く活性化し、カルビンジン陽性領域は9.3倍広い領域を占めた(図14B、C)。
脳脊髄液からのプルキンエ細胞への形質導入にSCH9が成功したことから、SCH9が持つ、小脳への遺伝子送達ベクターとしての可能性が示唆された。小脳の遺伝子治療には、プルキンエ細胞から抑制性入力を受ける小脳回路の主な中心部である深部小脳核に対するrAAVによる送達が利用されている。例えば、Keiser et al.(2015)Brain:J.Neurol.138、及びDodge et al.(2008)Mol.Ther.16を参照のこと。この回路を使用して、深部小脳核にrAAVを単回注入すれば、逆行性輸送ベクターにより小脳皮質全体にわたってプルキンエ細胞に形質導入することができるであろう。
図15.
小脳への遺伝子送達に最も一般的に使用される血清型であるAAV1の形質導入パターンとSCH9の形質導入パターンを、右半球深部小脳核内への片側注入の後、比較した。両ベクターとも、同側半球の小脳全体にわたりプルキンエ細胞への強い形質導入を支持したことから、SCH9は逆方向に輸送され得ることが示された。
実施例6:SCH9はヘパラン硫酸プロテオグリカン及びガラクトースのどちらも細胞形質導入に利用することができる
SCH9の感染特性が有望であることから、その複数の親血清型の受容体結合能を調節することによりSCH9に選択的長所を付与し得るか否かを決定するため、そのキメラとしての性質を次に調べた。SCH9のブロック6はAAV2カプシドのヘパリン結合ポケットを含有した。例えば、Kern et al.(2003)J.Virol.77を参照のこと。さらに、ブロック2及びブロック5は、AAV9のガラクトース結合残基D271、N272、N470、及びY446を含有し、ブロック6は残基W503を保存していた。例えば、Bell et al.(2012)J.Virol.86を参照のこと。対照的に、SCH2は、ブロック5でAAV9がAAV2で置換されたため主要ガラクトース結合残基を2つ欠いた。
図16.
両SCHEMA変異体のヘパリン親和性がAAV2に匹敵することを示すため、最初にクロマトグラフィーを利用し、これにより、ヘパリンポケット外側のキメラ配列構成は結合親和性に有意な影響を与えないことが示された(図16A)。次に、末端ガラクトース残基及びHSPGを細胞表面に発現するCHO−Lec2細胞を感染させ、ヘパラン硫酸プロテオグリカン(HSPG)とガラクトースとを二重に利用する可能性を評価した。先にShen et al.(2013)J.Biol.Chem.288に記載されるように、Erythrina cristagalliレクチン(ECL)を付加すると末端ガラクトースは遮断されたが、ウイルスを可溶性ヘパリンとインキュベーションすると、HSPGを細胞への進入に利用するAAV血清型を競合的に阻害した。予測通り、AAV2及びAAV9の対照ベクターはそれぞれ、HSPG及びガラクトースを利用した。興味深いことに、SCH2はもっぱらHSPG依存的であったが、SCH9はHSPG及びガラクトースの双方を使用することができたため、実際には、細胞へ形質導入しないよう双方を遮断する必要があった(図16B)。SCH2及びSCH9の異なるグリカン結合特性を特徴付けた後、天然のAAV血清型でAAV感染に重要な、新たに記載されたタンパク質受容体であるAAVRの利用を両変異体が保持したか否かを決定するため、これらの変異体を調べた。例えば、Pillay et al.(2016)Nature 530を参照のこと。
図17.
SCH2、SCH9、及びAAV2対照はいずれも、明らかにAAVRに依存していた。
最後に、DNAシャッフリングは中和抗体エピトープを破壊することが示されていたため(例えば、Maheshri et al.(2006)Nature Biotechnol.24、及びGrimm et al.(2008)J.Virol.82を参照のこと)、天然AAV血清型に対する抗体混合物のポリクローナル抗体であるヒト静注用免疫グロブリン(IVIG)に対するSCH9の耐性を定量化した。本明細書で表1に示されているように、SCH9の中和に要する抗体価は、それが由来する親配列よりも2〜10倍高かった(図16C)。注目すべきことに、改善倍率が最も大きかったのは、最も近縁の親配列であるAAV9に対してであった。
(表1)SCH9及び由来元の親血清型の中和IVIG抗体価。中和抗体価は、GFP発現の50%以上の減少が観察された最初のIVIG濃度を表す。
Figure 2020534788
参考文献
Figure 2020534788
Figure 2020534788
Figure 2020534788
Figure 2020534788
Figure 2020534788
Figure 2020534788
本発明をその具体的な実施形態を参照にして記載してきたが、本発明の真の趣旨及び範囲から逸脱することなくさまざまな変更及び同等物での置き換えを行ってよいことを当業者は理解するべきである。さらに、特定の状況、材料、物質組成、処理、処理ステップまたは複数ステップを本発明の目的、趣旨及び範囲に適応させるために、多数の修正を行ってよい。そのような修正はいずれも、本明細書に添付の請求の範囲内であることが意図される。

Claims (65)

  1. 組換え型アデノ随伴ウイルス(rAAV)ビリオンであって、
    (a)少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する、各セグメントが約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する少なくとも5つのセグメントを含み、かつ、
    (i)野生型AAVビリオンを含む対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して前記神経幹細胞への感染力が高い、
    (ii)野生型AAVビリオンを含む対照AAVビリオンによる神経細胞への感染力と比較して前記神経細胞への感染力が高い、
    (iii)野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンが細胞障壁を通過する能力と比較して前記細胞障壁を通過する能力が高い、
    (iv)ヒトAAV中和抗体に対する耐性が、野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンが示す耐性と比較して高い、
    という特性のうち1つ以上を付与する、変異AAVカプシドタンパク質、及び
    (b)異種遺伝子産物をコードするヌクレオチド配列を含む異種核酸
    を含む、前記組換え型アデノ随伴ウイルスビリオン。
  2. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、N末端からC末端に向かって順に、
    (a)第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第1のセグメント、
    (b)第2のAAV血清型のアミノ酸51〜アミノ酸320に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第2のセグメント、
    (c)第3のAAV血清型のアミノ酸101〜アミノ酸480に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第3のセグメント、
    (d)前記第2のAAV血清型のアミノ酸151〜アミノ酸640に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第4のセグメント、及び
    (e)前記第2のAAV血清型のアミノ酸201からC末端までのアミノ酸に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第5のセグメント
    を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  3. 前記第1のAAV血清型はAAV6である、請求項2に記載のrAAVビリオン。
  4. 前記第2のAAV血清型はAAV9である、請求項2に記載のrAAVビリオン。
  5. 前記第3のAAV血清型はAAV8である、請求項2に記載のrAAVビリオン。
  6. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、N末端からC末端に向かって順に、
    (a)第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第1のセグメント、
    (b)第2のAAV血清型のアミノ酸51〜アミノ酸320に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第2のセグメント、
    (c)第3のAAV血清型のアミノ酸101〜アミノ酸480に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第3のセグメント、
    (d)前記第2のAAV血清型のアミノ酸151〜アミノ酸640に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第4のセグメント、及び
    (e)第4のAAV血清型のアミノ酸201からC末端までのアミノ酸に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第5のセグメント
    を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  7. 前記第1のAAV血清型はAAV6である、請求項6に記載のrAAVビリオン。
  8. 前記第2のAAV血清型はAAV9である、請求項6に記載のrAAVビリオン。
  9. 前記第3のAAV血清型はAAV8である、請求項6に記載のrAAVビリオン。
  10. 前記第4のAAV血清型はAAV2である、請求項6に記載のrAAVビリオン。
  11. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、N末端からC末端に向かって順に、
    (a)第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第1のセグメント、
    (b)第2のAAV血清型のアミノ酸51〜アミノ酸320に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第2のセグメント、
    (c)第3のAAV血清型のアミノ酸101〜アミノ酸480に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第3のセグメント、
    (d)前記第2のAAV血清型のアミノ酸151〜アミノ酸640に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第4のセグメント、及び
    (e)第4のAAV血清型のアミノ酸201〜アミノ酸800に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第5のセグメント、
    (f)前記第4のAAV血清型のアミノ酸251〜アミノ酸960に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第6のセグメント、
    (g)前記第2のAAV血清型のアミノ酸301〜アミノ酸1120に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第7のセグメント、及び
    (h)前記第2のAAV血清型のアミノ酸351からC末端までのアミノ酸に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第8のセグメント
    を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  12. 前記第1のAAV血清型はAAV6である、請求項11に記載のrAAVビリオン。
  13. 前記第2のAAV血清型はAAV9である、請求項11に記載のrAAVビリオン。
  14. 前記第3のAAV血清型はAAV8である、請求項11に記載のrAAVビリオン。
  15. 前記第4のAAV血清型はAAV2である、請求項11に記載のrAAVビリオン。
  16. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、N末端からC末端に向かって順に、
    (a)第1のAAV血清型のアミノ酸1〜アミノ酸160に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第1のセグメント、
    (b)第2のAAV血清型のアミノ酸51〜アミノ酸320に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第2のセグメント、
    (c)第3のAAV血清型のアミノ酸101〜アミノ酸480に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第3のセグメント、
    (d)前記第2のAAV血清型のアミノ酸151〜アミノ酸640に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第4のセグメント、及び
    (e)第4のAAV血清型のアミノ酸201〜アミノ酸800に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第5のセグメント、
    (f)前記第4のAAV血清型のアミノ酸251〜アミノ酸960に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第6のセグメント、
    (g)前記第2のAAV血清型のアミノ酸301〜アミノ酸1120に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第7のセグメント、及び
    (h)前記第2のAAV血清型のアミノ酸351からC末端までのアミノ酸に由来する約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する第8のセグメント
    を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  17. 前記第1のAAV血清型はAAV6である、請求項16に記載のrAAVビリオン。
  18. 前記第2のAAV血清型はAAV9である、請求項16に記載のrAAVビリオン。
  19. 前記第3のAAV血清型はAAV8である、請求項16に記載のrAAVビリオン。
  20. 前記第4のAAV血清型はAAV2である、請求項16に記載のrAAVビリオン。
  21. 前記rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含む前記対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して、少なくとも5倍高い前記神経幹細胞への感染力を示す、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  22. 前記対照AAVビリオンはAAV9である、請求項21に記載のrAAVビリオン。
  23. 前記対照AAVビリオンはAAV2である、請求項21に記載のrAAVビリオン。
  24. 前記rAAVビリオンは、対応する親AAVカプシドタンパク質を含む前記対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して、少なくとも10倍高い前記神経幹細胞への感染力を示す、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  25. 前記対照AAVビリオンはAAV9である、請求項24に記載のrAAVビリオン。
  26. 前記対照AAVビリオンはAAV2である、請求項24に記載のrAAVビリオン。
  27. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、図8に示すアミノ酸配列に対する少なくとも約90%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  28. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、図8に示すアミノ酸配列に対する少なくとも約95%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  29. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、図8に示すアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  30. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、図9に示すアミノ酸配列に対する少なくとも約90%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  31. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、図9に示すアミノ酸配列に対する少なくとも約95%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  32. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、図9に示すアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  33. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、野生型AAVカプシドタンパク質を含む対照AAVビリオンが示す耐性と比較して高い耐性を示す、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  34. 前記対照AAVビリオンはAAV9である、請求項33に記載のrAAVビリオン。
  35. 前記対照AAVビリオンはAAV2である、請求項33に記載のrAAVビリオン。
  36. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンが示す耐性と比較して少なくとも約1.5倍高い耐性を示す、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  37. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンが示す耐性と比較して少なくとも約3倍高い耐性を示す、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  38. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンが示す耐性と比較して少なくとも約5倍高い耐性を示す、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  39. 前記変異AAVカプシドタンパク質は、ヒトAAV中和抗体に対し、野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンが示す耐性と比較して少なくとも約10倍高い耐性を示す、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  40. 前記神経幹細胞は脳室下帯由来である、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  41. 前記神経幹細胞は小脳由来である、請求項1に記載のrAAVビリオン。
  42. 前記遺伝子産物は、干渉RNAまたはアプタマーである、請求項1〜41のいずれか1項に記載のrAAVビリオン。
  43. 前記遺伝子産物はポリペプチドである、請求項1〜41のいずれか1項に記載のrAAVビリオン。
  44. 前記ポリペプチドは、神経保護ポリペプチド、血管新生阻害ポリペプチド、神経幹細胞の分化を誘導するポリペプチド、または神経幹細胞の機能を高めるポリペプチドである、請求項43に記載のrAAVビリオン。
  45. 前記ポリペプチドは、セレブロライシン、ラミニン−IKVAV、cripto、下垂体アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド、神経成長因子、脳由来神経栄養因子、グリア由来神経栄養因子、線維芽細胞増殖因子2、ニュールツリン、毛様体神経栄養因子、上皮成長因子、X連鎖アポトーシス抑制因子、芳香族L−アミノ酸脱炭酸酵素、グルタミン酸脱炭酸酵素、トリペプチジルペプチダーゼ、アスパルトアシクラーゼ、またはソニック・ヘッジホッグである、請求項43に記載のrAAVビリオン。
  46. 前記ポリペプチドはゲノム編集酵素である、請求項43に記載のrAAVビリオン。
  47. 前記ゲノム編集酵素は、Cas9ポリペプチド、ジンクフィンガーヌクレアーゼ、TALEN、または酵素的に不活性なII型CRISPR/Casポリペプチドである、請求項46に記載のrAAVビリオン。
  48. 前記ポリペプチドは、II型CRISPR/Casポリペプチド、V型CRISPR/Casポリペプチド、及びVI型CRISPR/Casポリペプチドから選択されるRNA誘導型エンドヌクレアーゼである、請求項47に記載のrAAVビリオン。
  49. 前記遺伝子産物は、RNA誘導型エンドヌクレアーゼ及びガイドRNAである、請求項1〜41のいずれか1項に記載のrAAVビリオン。
  50. (a)請求項1〜49のいずれか1項に記載の組換え型アデノ随伴ウイルスビリオン、及び
    (b)薬理学的に許容される添加剤
    を含む、医薬組成物。
  51. 個体の神経幹細胞に遺伝子産物を送達する方法であって、
    請求項1〜49のいずれか1項に記載の組換え型アデノ随伴ウイルス(rAAV)ビリオンまたは請求項50に記載の組成物を前記個体に投与することを含む、前記方法。
  52. 前記投与は、頭蓋内注射、脳室内注射、髄腔内注射、大槽内注射、または静脈内注射による、請求項51に記載の方法。
  53. 前記遺伝子産物は、短鎖干渉RNAまたはアプタマーである、請求項51に記載の方法。
  54. 前記遺伝子産物はポリペプチドである、請求項51に記載の方法。
  55. 前記ポリペプチドは、神経保護ポリペプチド、血管新生阻害ポリペプチド、神経幹細胞の分化を誘導するポリペプチド、または神経幹細胞の機能を高めるポリペプチドである、請求項54に記載の方法。
  56. 前記ポリペプチドは、セレブロライシン、ラミニン−IKVAV、cripto、下垂体アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド、神経成長因子、脳由来神経栄養因子、グリア由来神経栄養因子、線維芽細胞増殖因子2、ニュールツリン、毛様体神経栄養因子、上皮成長因子、X連鎖アポトーシス抑制因子、またはソニック・ヘッジホッグである、請求項54に記載の方法。
  57. 前記ポリペプチドはゲノム編集酵素である、請求項54に記載の方法。
  58. 前記ゲノム編集酵素は、Cas9ポリペプチド、ジンクフィンガーヌクレアーゼ、TALEN、または酵素的に不活性なII型CRISPR/Casポリペプチドである、請求項57に記載の方法。
  59. 前記ポリペプチドは、II型CRISPR/Casポリペプチド、V型CRISPR/Casポリペプチド、及びVI型CRISPR/Casポリペプチドから選択されるRNA誘導型エンドヌクレアーゼである、請求項57に記載の方法。
  60. 前記遺伝子産物は、RNA誘導型エンドヌクレアーゼ及びガイドRNAである、請求項51に記載の方法。
  61. 神経性障害を治療する方法であって、
    請求項1〜49のいずれか1項に記載の組換え型アデノ随伴ウイルス(rAAV)ビリオンまたは請求項50に記載の組成物の有効量を、それを必要とする個体に投与することを含む、前記方法。
  62. 前記神経性障害は、脊髄小脳失調症、ハンチントン病、パーキンソン病、アルツハイマー病、リソソーム蓄積障害、フリードライヒ運動失調症、神経膠芽腫、レット症候群、前頭側頭型認知症、またはてんかんである、請求項61に記載の方法。
  63. 変異アデノ随伴ウイルス(AAV)カプシドタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含む単離された核酸であって、
    前記変異AAVカプシドタンパク質が、少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する、各セグメントが約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する少なくとも5つのセグメントを含み、かつ
    前記変異カプシドタンパク質が、野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して、前記神経幹細胞への高い感染力を付与する、
    前記核酸。
  64. 請求項63に記載の核酸を含む、単離された遺伝子改変宿主細胞。
  65. 変異アデノ随伴ウイルス(AAV)カプシドタンパク質であって、
    少なくとも3つの異なるAAV血清型に由来する、各セグメントが約50アミノ酸長〜約160アミノ酸長を有する少なくとも5つのセグメントを含み、かつ
    野生型AAVカプシドを含む対照AAVビリオンによる神経幹細胞への感染力と比較して、前記神経幹細胞への高い感染力を付与する、
    前記変異アデノ随伴ウイルスカプシドタンパク質。
JP2019562303A 2017-08-28 2018-08-22 アデノ随伴ウイルスカプシド変異体及びその使用方法 Withdrawn JP2020534788A (ja)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201762551133P 2017-08-28 2017-08-28
US62/551,133 2017-08-28
PCT/US2018/047561 WO2019046069A1 (en) 2017-08-28 2018-08-22 ADENO-ASSOCIATED VIRUS CAPSID VARIANTS AND METHODS OF USE

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2020534788A true JP2020534788A (ja) 2020-12-03
JP2020534788A5 JP2020534788A5 (ja) 2021-09-30

Family

ID=65525930

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2019562303A Withdrawn JP2020534788A (ja) 2017-08-28 2018-08-22 アデノ随伴ウイルスカプシド変異体及びその使用方法

Country Status (10)

Country Link
US (1) US11680249B2 (ja)
EP (1) EP3676373A4 (ja)
JP (1) JP2020534788A (ja)
KR (1) KR20200039617A (ja)
CN (1) CN110709511A (ja)
AU (1) AU2018324477A1 (ja)
BR (1) BR112020003571A2 (ja)
CA (1) CA3059995A1 (ja)
MX (1) MX2020001997A (ja)
WO (1) WO2019046069A1 (ja)

Families Citing this family (32)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SI3693025T1 (sl) 2011-04-22 2022-04-29 The Regents Of The University Of California Virioni adeno-povezanega virusa z varianto kapsida in postopki za njihovo uporabo
US11136557B2 (en) 2013-05-31 2021-10-05 The Regents Of The University Of California Adeno-associated virus variants and methods of use thereof
CN106414474B (zh) 2014-03-17 2021-01-15 阿德夫拉姆生物技术股份有限公司 用于视锥细胞中增强的基因表达的组合物和方法
EP3151866B1 (en) 2014-06-09 2023-03-08 Voyager Therapeutics, Inc. Chimeric capsids
EP3490531A4 (en) 2016-07-29 2020-06-03 The Regents of The University of California ADENO ASSOCIATED VIRUS VIRIONS WITH VARIABLE CAPSIDE AND METHOD FOR USE THEREOF
AU2017345470B2 (en) 2016-10-19 2023-08-03 Adverum Biotechnologies, Inc. Modified AAV capsids and uses thereof
BR112019019015A2 (pt) 2017-06-30 2020-04-14 Univ California vírions de vírus adeno-associado com capsídeos variantes e seus métodos de uso
KR102850887B1 (ko) 2017-08-03 2025-08-28 보이저 테라퓨틱스, 인크. Aav의 전달을 위한 조성물 및 방법
JP2020534788A (ja) 2017-08-28 2020-12-03 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア アデノ随伴ウイルスカプシド変異体及びその使用方法
MX2020003042A (es) 2017-09-29 2020-11-18 Voyager Therapeutics Inc Rescate del fenotipo neurológico central y periférico de la ataxia de friedreich mediante administración intravenosa.
US12054724B2 (en) 2018-04-10 2024-08-06 President And Fellows Of Harvard College AAV vectors encoding clarin-1 or GJB2 and uses thereof
SG11202103102WA (en) 2018-09-26 2021-04-29 California Inst Of Techn Adeno-associated virus compositions for targeted gene therapy
EP3856762A1 (en) 2018-09-28 2021-08-04 Voyager Therapeutics, Inc. Frataxin expression constructs having engineered promoters and methods of use thereof
KR20210143869A (ko) * 2019-03-28 2021-11-29 더 제너럴 하스피탈 코포레이션 트랜스진 발현을 위한 조작된 아데노-연관 (aav) 벡터
TW202102526A (zh) * 2019-04-04 2021-01-16 美商銳進科斯生物股份有限公司 重組腺相關病毒及其用途
KR20220007056A (ko) * 2019-04-11 2022-01-18 캘리포니아 인스티튜트 오브 테크놀로지 뇌에서 증진된 특이성을 갖는 바이러스 조성물
MX2021013913A (es) * 2019-05-14 2022-03-17 Univ Duke Composiciones y metodos para el tratamiento de enfermedades mediadas por atpasa.
US20230048732A1 (en) * 2020-05-26 2023-02-16 Shape Therapeutics Inc. High throughput engineering of functional aav capsids
CA3179597A1 (en) * 2020-05-29 2021-12-02 John G. Flannery Adeno-associated virus virions with variant capsids and methods of use thereof
US12129287B2 (en) 2020-09-14 2024-10-29 President And Fellows Of Harvard College Recombinant adeno associated virus encoding clarin-1 and uses thereof
CN113717248B (zh) * 2020-09-30 2022-07-08 广州派真生物技术有限公司 腺相关病毒突变体及其应用
US20220154223A1 (en) 2020-10-15 2022-05-19 Hoffmann-La Roche Inc. Nucleic acid constructs for simultaneous gene activation
CN113025658B (zh) * 2021-03-10 2022-04-22 华侨大学 一种神经干细胞特异性基因的递送载体及其应用
CN113121651B (zh) * 2021-04-19 2023-11-17 信念医药科技(上海)有限公司 低中和抗体腺相关病毒衣壳蛋白
US20240342311A1 (en) * 2021-07-30 2024-10-17 University Of Florida Research Foundation, Incorporated Engineering aav vectors with improved cns targeting
CN114057840B (zh) * 2021-10-14 2022-09-20 和元生物技术(上海)股份有限公司 包含变异的aav9衣壳蛋白的重组腺相关病毒颗粒
US20250161486A1 (en) * 2022-02-22 2025-05-22 The University Of North Carolina At Chapel Hill Chimeric neurotropic aav capsids
CN119894920A (zh) * 2022-07-22 2025-04-25 上海天泽云泰生物医药有限公司 用于靶向神经系统的新型aav衣壳及其用途
CN116789738B (zh) * 2022-12-08 2023-12-19 广州派真生物技术有限公司 腺相关病毒突变体及其应用
CN117012275A (zh) * 2023-08-11 2023-11-07 瑞诺元(苏州)生物科技有限公司 一种腺相关病毒测序数据的分析方法及系统
WO2025147741A1 (en) * 2024-01-11 2025-07-17 Children's Medical Research Institute Aav capsids and vectors for transduction of cells
WO2026024045A1 (ko) * 2024-07-22 2026-01-29 한국생명공학연구원 변이체 캡시드를 포함하는 아데노-연관 바이러스 및 이의 용도

Family Cites Families (84)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9206016D0 (en) 1992-03-19 1992-04-29 Sandoz Ltd Improvements in or relating to organic compounds
US6440425B1 (en) 1995-05-01 2002-08-27 Aventis Pasteur Limited High molecular weight major outer membrane protein of moraxella
US6001650A (en) 1995-08-03 1999-12-14 Avigen, Inc. High-efficiency wild-type-free AAV helper functions
US6096548A (en) 1996-03-25 2000-08-01 Maxygen, Inc. Method for directing evolution of a virus
CA2251738A1 (en) 1996-04-16 1997-10-23 Immusol Incorporated Targeted viral vectors
US6710036B2 (en) 1997-07-25 2004-03-23 Avigen, Inc. Induction of immune response to antigens expressed by recombinant adeno-associated virus
AU9319198A (en) 1997-09-19 1999-04-05 Trustees Of The University Of Pennsylvania, The Methods and vector constructs useful for production of recombinant aav
EP1030861A4 (en) 1997-10-31 2001-09-05 Maxygen Inc MODIFICATION OF VIRUSTROPISMIUS AND THE ECONOMIC SPECTRUM BY VIRAL GENOM MIXING
US6410300B1 (en) 1998-01-12 2002-06-25 The University Of North Carolina At Chapel Hill Methods and formulations for mediating adeno-associated virus (AAV) attachment and infection and methods for purifying AAV
US6551795B1 (en) 1998-02-18 2003-04-22 Genome Therapeutics Corporation Nucleic acid and amino acid sequences relating to pseudomonas aeruginosa for diagnostics and therapeutics
DE19827457C1 (de) 1998-06-19 2000-03-02 Medigene Ag Strukturprotein von AAV, seine Herstellung und Verwendung
US6451594B1 (en) 1998-09-11 2002-09-17 The Regents Of The University Of California Recombinant adenovirus for tissue specific expression in heart
DE69941905D1 (de) 1998-11-10 2010-02-25 Univ North Carolina Virusvektoren und verfahren für ihre herstellung und verabreichung.
US6943153B1 (en) 1999-03-15 2005-09-13 The Regents Of The University Of California Use of recombinant gene delivery vectors for treating or preventing diseases of the eye
US6498244B1 (en) 1999-05-28 2002-12-24 Cell Genesys, Inc. Adeno-associated virus capsid immunologic determinants
US7314912B1 (en) 1999-06-21 2008-01-01 Medigene Aktiengesellschaft AAv scleroprotein, production and use thereof
DE19933288A1 (de) 1999-07-15 2001-01-18 Medigene Ag Strukturprotein von Adeno-assoziiertem Virus mit veränderter Antigenität, seine Herstellung und Verwendung
DE19933719A1 (de) 1999-07-19 2001-01-25 Medigene Ag Strukturprotein in Adeno-assoziiertem Virus mit veränderten chromatographischen Eigenschaften, seine Herstellung und Verwendung
US8232081B2 (en) 1999-09-21 2012-07-31 Basf Se Methods and microorganisms for production of panto-compounds
US6855314B1 (en) 2000-03-22 2005-02-15 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services AAV5 vector for transducing brain cells and lung cells
US7749492B2 (en) 2001-01-05 2010-07-06 Nationwide Children's Hospital, Inc. AAV vectors and methods
WO2002053703A2 (en) 2001-01-05 2002-07-11 Children's Hospital, Inc. Aav2 vectors and methods
EP1386004A4 (en) 2001-04-05 2005-02-16 Ribozyme Pharm Inc MODULATION OF GENE EXPRESSION ASSOCIATED WITH INFLAMMATORY PROLIFERATION AND GROWTH OF NEURITIES BY METHODS INVOLVING NUCLEIC ACID
US20030129203A1 (en) 2001-08-27 2003-07-10 Nautilus Biotech S.A. Mutant recombinant adeno-associated viruses
US7647184B2 (en) 2001-08-27 2010-01-12 Hanall Pharmaceuticals, Co. Ltd High throughput directed evolution by rational mutagenesis
JP4677187B2 (ja) * 2001-11-13 2011-04-27 ザ・トラステイーズ・オブ・ザ・ユニバーシテイ・オブ・ペンシルベニア 新規なアデノ随伴ウイルス(aav)7配列、それを含むベクターおよびそれらの使用
JP2005512569A (ja) 2001-12-21 2005-05-12 メディジーン・アクチェンゲゼルシャフト 目的とする細胞指向性をもつウイルスクローンの同定に有用な修飾した構造遺伝子またはキャプシド修飾した粒子のライブラリー
US20060292117A1 (en) 2002-04-17 2006-12-28 Loiler Scott A Improved rAAv vectors
AU2003223775A1 (en) 2002-04-30 2003-11-17 Duke University Adeno-associated viral vectors and methods for their production from hybrid adenovirus and for their use
AU2003237159A1 (en) 2002-04-30 2003-11-17 University Of Florida Treatment for phenylketonuria
US7071172B2 (en) 2002-04-30 2006-07-04 The University Of North Carolina At Chapel Hill Secretion signal vectors
US7254489B2 (en) 2002-05-31 2007-08-07 Microsoft Corporation Systems, methods and apparatus for reconstructing phylogentic trees
US7220577B2 (en) 2002-08-28 2007-05-22 University Of Florida Research Foundation, Inc. Modified AAV
US20070172460A1 (en) 2003-03-19 2007-07-26 Jurgen Kleinschmidt Random peptide library displayed on aav vectors
WO2004108922A2 (en) 2003-04-25 2004-12-16 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Use of aav comprising a capsid protein from aav7 or aav8 for the delivery of genes encoding apoprotein a or e genes to the liver
EP1486567A1 (en) 2003-06-11 2004-12-15 Deutsches Krebsforschungszentrum Stiftung des öffentlichen Rechts Improved adeno-associated virus (AAV) vector for gene therapy
HUE034597T2 (en) 2003-06-19 2018-02-28 Genzyme Corp Reduced immunoreactivity of AAV virions and their applications
EP1644038A2 (en) 2003-06-23 2006-04-12 A & G Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for restoring sensitivity of tumor cells to antitumor therapy and inducing apoptosis
US9233131B2 (en) 2003-06-30 2016-01-12 The Regents Of The University Of California Mutant adeno-associated virus virions and methods of use thereof
US9441244B2 (en) 2003-06-30 2016-09-13 The Regents Of The University Of California Mutant adeno-associated virus virions and methods of use thereof
US20050019927A1 (en) 2003-07-13 2005-01-27 Markus Hildinger DECREASING GENE EXPRESSION IN A MAMMALIAN SUBJECT IN VIVO VIA AAV-MEDIATED RNAi EXPRESSION CASSETTE TRANSFER
EP1670897A4 (en) 2003-09-24 2008-02-27 Univ Leland Stanford Junior IGF-1 FORM OF NERVOUS STEM CELLS OF THE CENTRAL NERVOUS SYSTEM ADULTS PLURIPOTENT TO AN OLIGODENDROGICAL LINE
NZ545628A (en) 2003-09-30 2009-04-30 Univ Pennsylvania Adeno-associated virus (AAV) clades, sequences, vectors containing same, and uses therefor
US7427396B2 (en) 2004-06-03 2008-09-23 Genzyme Corporation AAV vectors for gene delivery to the lung
ES2385837T3 (es) 2004-12-15 2012-08-01 The University Of North Carolina At Chapel Hill Vectores quiméricos
WO2006101634A1 (en) 2005-02-17 2006-09-28 The Regents Of The University Of California Müller cell specific gene therapy
EP2359866B1 (en) 2005-04-07 2013-07-17 The Trustees of The University of Pennsylvania Modified AAV rh48 capsids, compositions containing same and uses thereof
WO2007089632A2 (en) 2006-01-27 2007-08-09 The University Of North Carolina At Chapel Hill Heparin and heparan sulfate binding chimeric vectors
WO2007120542A2 (en) 2006-03-30 2007-10-25 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Aav capsid library and aav capsid proteins
CA2685900A1 (en) 2006-05-04 2007-11-15 Wayne State University Restoration of visual responses by in vivo delivery of rhodopsin nucleic acids
CN1966082B (zh) 2006-11-03 2010-06-30 许瑞安 一种防治结直肠癌的基因药物及其制备方法和用途
US9725485B2 (en) 2012-05-15 2017-08-08 University Of Florida Research Foundation, Inc. AAV vectors with high transduction efficiency and uses thereof for gene therapy
CA2683443A1 (en) 2007-04-13 2008-10-23 Catalyst Biosciences, Inc. Modified factor vii polypeptides and uses thereof
EP1985708B1 (en) 2007-04-27 2015-04-15 Universität Rostock Selective targeting of viruses to neural precursor cells
WO2009137006A2 (en) 2008-04-30 2009-11-12 The University Of North Carolina At Chapel Hill Directed evolution and in vivo panning of virus vectors
US20120093772A1 (en) 2008-05-20 2012-04-19 Alan Horsager Vectors for delivery of light sensitive proteins and methods of use
EP2297185A1 (en) 2008-06-17 2011-03-23 Amsterdam Molecular Therapeutics (AMT) B.V. Parvoviral capsid with incorporated gly-ala repeat region
EP2396343B1 (en) 2009-02-11 2017-05-17 The University of North Carolina At Chapel Hill Modified virus vectors and methods of making and using the same
CN101532024A (zh) 2009-04-30 2009-09-16 许瑞安 一种用于基因治疗的新型细胞特异性内含microRNA结合序列的基因HAAVmir
WO2010138263A2 (en) 2009-05-28 2010-12-02 University Of Massachusetts Novel aav 's and uses thereof
WO2011117258A2 (en) 2010-03-22 2011-09-29 Association Institut De Myologie Methods of increasing efficiency of vector penetration of target tissue
US8663624B2 (en) 2010-10-06 2014-03-04 The Regents Of The University Of California Adeno-associated virus virions with variant capsid and methods of use thereof
SI3693025T1 (sl) 2011-04-22 2022-04-29 The Regents Of The University Of California Virioni adeno-povezanega virusa z varianto kapsida in postopki za njihovo uporabo
WO2013029030A1 (en) * 2011-08-24 2013-02-28 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University New aav capsid proteins for nucleic acid transfer
WO2013170078A1 (en) 2012-05-09 2013-11-14 Oregon Health & Science University Adeno associated virus plasmids and vectors
TWI698240B (zh) 2012-05-15 2020-07-11 澳大利亞商艾佛蘭屈澳洲私營有限公司 使用腺相關病毒(aav)sflt-1治療老年性黃斑部退化(amd)
CN104937100B (zh) 2012-12-25 2020-04-03 宝生物工程株式会社 Aav 变体
WO2014124282A1 (en) 2013-02-08 2014-08-14 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Enhanced aav-mediated gene transfer for retinal therapies
AU2014273085B2 (en) 2013-05-29 2020-10-22 Cellectis New compact scaffold of Cas9 in the type II CRISPR system
US11136557B2 (en) 2013-05-31 2021-10-05 The Regents Of The University Of California Adeno-associated virus variants and methods of use thereof
WO2014207190A1 (en) 2013-06-28 2014-12-31 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Methods for expressing a polynucleotide of interest in the retina of a subject
EP3633041A3 (en) 2013-09-26 2020-07-29 University of Florida Research Foundation, Inc. Synthetic combinatorial aav capsid library for targeted gene therapy
LT3459965T (lt) 2013-10-11 2021-03-10 Massachusetts Eye & Ear Infirmary Viruso prototipo sekų ir jų panaudojimo prognozavimo metodai
GB201403684D0 (en) 2014-03-03 2014-04-16 King S College London Vector
CN106414474B (zh) 2014-03-17 2021-01-15 阿德夫拉姆生物技术股份有限公司 用于视锥细胞中增强的基因表达的组合物和方法
PL3137497T5 (pl) 2014-05-02 2025-06-09 Genzyme Corporation Wektory AAV do terapii genowej siatkówki i OUN
WO2015191693A2 (en) 2014-06-10 2015-12-17 Massachusetts Institute Of Technology Method for gene editing
CN108347932B (zh) 2015-02-20 2022-09-13 衣阿华大学研究基金会 用于治疗遗传性眼病的方法和组合物
BR112017018846A2 (pt) 2015-03-02 2018-07-31 Adverum Biotechnologies, Inc. composições e métodos para entrega intravítrea de polinucleotídeos a cones retinianos.
ES2806054T3 (es) 2015-03-06 2021-02-16 Massachusetts Eye & Ear Infirmary Terapias de aumento génico de la degeneración retiniana causada por mutaciones en el gen PRPF31
US20190000940A1 (en) * 2015-07-31 2019-01-03 Voyager Therapeutics, Inc. Compositions and methods for the treatment of aadc deficiency
PT4206216T (pt) 2016-05-13 2025-12-03 4D Molecular Therapeutics Inc Cápsides variantes de vírus adeno-associado e métodos de utilização das mesmas
MA44546B1 (fr) 2016-06-15 2021-03-31 Univ California Virus adéno-associés variants et procédés d'utilisation
JP2020534788A (ja) 2017-08-28 2020-12-03 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア アデノ随伴ウイルスカプシド変異体及びその使用方法

Also Published As

Publication number Publication date
CA3059995A1 (en) 2019-03-07
EP3676373A4 (en) 2021-06-09
KR20200039617A (ko) 2020-04-16
CN110709511A (zh) 2020-01-17
US20200095559A1 (en) 2020-03-26
EP3676373A1 (en) 2020-07-08
US11680249B2 (en) 2023-06-20
WO2019046069A1 (en) 2019-03-07
MX2020001997A (es) 2020-07-20
AU2018324477A1 (en) 2019-10-17
BR112020003571A2 (pt) 2020-08-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2020534788A (ja) アデノ随伴ウイルスカプシド変異体及びその使用方法
JP7612767B2 (ja) アデノ随伴ウイルスベクター
JP7706582B2 (ja) 変異カプシドを有するアデノ随伴ウイルスビリオン及びその使用方法
JP2023126919A (ja) バリアントカプシドを有するアデノ随伴ウイルスビリオン及びその使用方法
Ojala et al. In vivo selection of a computationally designed SCHEMA AAV library yields a novel variant for infection of adult neural stem cells in the SVZ
CN115023242B (zh) 腺相关病毒载体变体
Pignataro et al. Adeno-associated viral vectors serotype 8 for cell-specific delivery of therapeutic genes in the central nervous system
TW202039854A (zh) 治療威爾遜氏病的組合物和方法
CN111718420A (zh) 一种用于基因治疗的融合蛋白及其应用
US20220098254A1 (en) NEUROD1 and DLX2 VECTOR
Woodbury et al. Gene delivery and gene therapy for Alzheimer’s disease
WO2023184688A1 (zh) 功能性β-半乳糖苷酶变体、AAV介导的人β-半乳糖苷酶表达载体及其用途
WO2024191877A2 (en) Human central nervous system (cns) targeting aav variants
JP2025508059A (ja) 肺向性が改善されたアデノ随伴ウイルス変異体カプシドおよびその使用
CN120187407A (zh) 重组aav载体及其用途
HK40019369A (en) Adeno-associated virus vector
Duan Molecular characterization of adeno-associated virus for the gene therapy of submucosal gland in cystic fibrosis
WO2020187272A1 (zh) 一种用于基因治疗的融合蛋白及其应用
HK1226768B (zh) 腺相关病毒载体
HK1226768A1 (zh) 腺相關病毒載體

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20200311

RD04 Notification of resignation of power of attorney

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7424

Effective date: 20210617

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20210819

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20210819

A761 Written withdrawal of application

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A761

Effective date: 20220721