JP2013139474A - 新生細胞における新規なグリコシル化ペプチド標的 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】本発明は、ポリペプチド、核酸及び他の組成物を提供する。ポリペプチド、核酸及び他の組成物は、処置及び診断方法において有用である。一処置方法は、過剰増殖細胞の成長若しくは増殖を阻害する工程、又は細胞過剰増殖障害の細胞などの過剰増殖細胞の退行を誘発する工程又はLDL若しくはoxLDLのレベルを低下させる工程を含む。一実施形態では、SAM−6受容体(SAM−6/R)として示される単離精製糖蛋白質、即ち、SAM−6/R糖蛋白質が提供される。一実施形態では、SAM−6/R糖蛋白質は、変性ゲル電気泳動により決定される約80〜82キロダルトン(kDa)の範囲の見かけ上の分子量、Grp78と異なる少なくとも1つの窒素(N)又は酸素(O)−結合炭水化物部分を有し、SAM−6として示される抗体がSAM−6/R糖蛋白質に特異的に結合する。
【選択図】なし
Description
この出願は、2006年11月27日に出願された、米国仮出願第60/867,285号
(これは、明確にその全体が参考として本明細書に援用される)への優先権を主張する。
本発明は、SAM−6として公知の抗体に結合するグリコシル化ペプチド又は糖蛋白質に関する。SAM−6受容体(SAM−6/R)として示される糖蛋白質、即ち、SAM−6/R糖蛋白質は、Grp78(グルコース調節蛋白質78)ポリペプチド配列と見かけ上の配列相同性を有し、且つ同一性を共有する。
新生物、腫瘍及び癌を含む細胞過剰増殖障害などの望ましくない、又は異常な細胞増殖を処置する方法の必要性がある。本発明は、この必要性に対処するとともに関連する利益を提供する。
例えば、本願発明は以下の項目を提供する。
(項目1)
SAM−6受容体(SAM−6/R)として示される単離又は精製糖蛋白質であって、該SAM−6/R糖蛋白質が、変性ゲル電気泳動により決定される約80〜82キロダルトン(kDa)の範囲の見かけ上の分子量を有し、Grp78と異なる少なくとも1つの窒素(N)又は酸素(O)−結合炭水化物部分を有し、SAM−6として示される抗体が該糖蛋白質に特異的に結合する、糖蛋白質。
(項目2)
SAM−6受容体(SAM−6/R)として示される単離又は精製糖蛋白質であって、該SAM−6/R糖蛋白質が、変性ゲル電気泳動により決定される約80〜82キロダルトン(kDa)の範囲の見かけ上の分子量を有し、Grp78の炭水化物部分と異なる少なくとも1つの窒素(N)又は酸素(O)−結合炭水化物部分を有し、配列番号1に示されるGrp78とのポリプペチド配列相同性を有する、糖蛋白質。
(項目3)
上記糖蛋白質が約655個のアミノ酸の配列を含む、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目4)
上記糖蛋白質が約17個のアミノ酸の膜貫通ドメインを有する、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目5)
上記糖蛋白質が約220個のアミノ酸の細胞外ドメインを有する、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目6)
上記糖蛋白質が約411個のアミノ酸の細胞内ドメインを有する、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目7)
上記炭水化物部分が、配列番号1のアスパラギン残基、セリン残基又はトレオニン残基に結合される、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目8)
SAM−6として示される抗体が上記糖蛋白質に特異的に結合する、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目9)
上記SAM−6抗体が、上記N若しくはO−結合炭水化物部分を含む上記糖蛋白質の一部、又は該N若しくはO−結合炭水化物部分に結合する、項目8に記載の糖蛋白質。
(項目10)
グリコシダーゼ酵素による上記糖蛋白質の処理が、該糖蛋白質へのSAM−6抗体の結合を低減する、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目11)
上記グリコシダーゼ酵素がO−グリコシダーゼを含む、項目10に記載の糖蛋白質。
(項目12)
上記グリコシダーゼ酵素がN−グリコシダーゼを含む、項目10に記載の糖蛋白質。
(項目13)
上記N又はO−結合炭水化物部分が、1つ以上のガラクトース、アセチルガラクトース、マンノース、フコース、グルコース、アセチルグルコース、シアル酸、N−アセチルガラクトサミン又はN−アセチルグルコサミンを含む、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目14)
上記糖蛋白質のグリコシダーゼ酵素との接触が、約1〜5キロダルトン(kDa)だけ該糖蛋白質の見かけ上の分子量を減少させる、項目1に記載の糖蛋白質。
(項目15)
上記グリコシダーゼ酵素がO−グリコシダーゼを含む、項目14に記載の糖蛋白質。
(項目16)
エンドグリコシダーゼH又はエンドグリコシダーゼFによる処理が、上記糖蛋白質の見かけ上の分子量を減少させる、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目17)
項目2に記載の糖蛋白質の部分配列であって、該部分配列は、N又はO−結合炭水化物部分を含む項目1に記載の糖蛋白質の一部を含む、部分配列。
(項目18)
少なくとも60%、70%、80%、90%、95%若しくはそれを超える配列番号1との同一性を有するか又は配列番号1の部分配列を有する、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目19)
上記糖蛋白質が、新生細胞、癌細胞又は腫瘍細胞上に発現すると特徴づけられる、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目20)
上記糖蛋白質が、それぞれ、BXPC−3(ATCC寄託番号CRL−1687)又は23132/87(DSMZ寄託番号ACC201)として示される膵臓癌細胞株又は胃癌細胞株上に発現すると特徴づけられる、項目2に記載の糖蛋白質。
(項目21)
項目2に記載の糖蛋白質をコードする核酸配列。
(項目22)
配列番号1をコードする核酸配列と少なくとも75〜90%若しくはそれを超えて相補的であるか又は相同的である核酸配列。
(項目23)
Grp78の炭水化物部分と異なる少なくとも1つの窒素(N)又は酸素(O)−結合炭水化物部分を結合させることが可能な項目1に記載の糖蛋白質又はその部分配列をコードすることが可能な核酸配列であって、約10〜20、20〜30、30〜50、50〜100、100〜150、150〜200、200〜250、250〜300、300〜400、400〜500、500〜1000、1000〜2000ヌクレオチド長を有する、核酸配列。
(項目24)
項目21から23のいずれか一項に記載の核酸配列と特異的にハイブリダイズする核酸配列。
(項目25)
項目21に記載の核酸配列と特異的にハイブリダイズし、項目2に記載のポリペプチド配列の発現を低減する、アンチセンスポリヌクレオチド、低分子干渉RNA又はリボザイム核酸。
(項目26)
上記ポリヌクレオチドが、約10〜20、20〜30、30〜50、50〜100、100〜150、150〜200、200〜250、250〜300、300〜400、400〜500、500〜1000、1000〜2000ヌクレオチド長を有し、配列番号1をコードする核酸配列と少なくとも90%相補的又は相同的である、項目25に記載のアンチセンスポリヌクレオチド。
(項目27)
発現制御配列を更に含む、項目21に記載の核酸。
(項目28)
項目2に記載の糖蛋白質をコードする核酸を含むベクター。
(項目29)
ウイルスベクター、細菌ベクター、真菌ベクター又は哺乳動物ベクターを含む、項目28に記載のベクター。
(項目30)
項目28に記載の核酸又はベクターで形質転換された宿主細胞。
(項目31)
真核細胞である、項目30に記載の宿主細胞。
(項目32)
項目21又は28に記載の核酸又はベクターで安定又は一過性に形質転換される、項目30に記載の宿主細胞。
(項目33)
過剰増殖細胞、不死化細胞、新生細胞、腫瘍細胞又は癌細胞である、項目30に記載の宿主細胞。
(項目34)
項目1若しくは2に記載の糖蛋白質又は項目1若しくは2に記載の糖蛋白質の免疫原性部分配列に特異的に結合する単離又は精製抗体。
(項目35)
項目2に記載の糖蛋白質の少なくとも1つのN又はO−結合炭水化物部分を含むエピトープに特異的に結合する単離又は精製抗体。
(項目36)
項目2に記載の糖蛋白質へのSAM−6の結合に対して競合するか、又は項目2に記載の糖蛋白質へのSAM−6の結合を阻害若しくはブロックする抗体。
(項目37)
ELISAアッセイで決定される、項目2に記載の糖蛋白質へのSAM−6の結合を阻害又は阻止する抗体。
(項目38)
ELISAアッセイで決定される、項目1に記載の糖蛋白質へのSAM−6の結合の少なくとも50%を阻害する抗体。
(項目39)
低密度リポ蛋白質(LDL)又は酸化LDL(oxLDL)に結合する、項目34から38のいずれか一項に記載の単離又は精製抗体。
(項目40)
上記糖蛋白質を発現する細胞への上記抗体の結合が、細胞死、溶解又はアポトーシスを刺激又は誘導する、項目34から39のいずれか一項に記載の単離又は精製抗体。
(項目41)
上記糖蛋白質を発現する新生細胞、癌細胞又は腫瘍細胞への上記抗体の結合が、細胞死、溶解又はアポトーシスを刺激又は誘導する、項目34から39のいずれか一項に記載の単離又は精製抗体。
(項目42)
BXPC−3又は23132/87細胞への上記抗体の結合が、BXPC−3若しくは23132/87細胞の成長若しくは増殖を阻害し、又はBXPC−3若しくは23132/87の細胞死、溶解若しくはアポトーシスを刺激若しくは誘導する、項目34から39のいずれか一項に記載の単離又は精製抗体。
(項目43)
上記糖蛋白質を発現する細胞への上記抗体の結合が、カスパーゼの活性化を引き起こす、項目34から39のいずれか一項に記載の単離又は精製抗体。
(項目44)
上記カスパーゼが、カスパーゼ3、カスパーゼ8又はカスパーゼ9を含む、項目43に記載の単離又は精製抗体。
(項目45)
N又はO−結合炭水化物部分を含むエピトープに結合しない、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目46)
O−グリコシダーゼによる上記糖蛋白質の処理が、該糖蛋白質への上記抗体の結合を低減する、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目47)
SAM−6の重鎖及び軽鎖配列と同一の重鎖及び軽鎖配列を有さない、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目48)
SAM−6の重鎖又は軽鎖可変配列と同一の重鎖又は軽鎖可変配列を有さない、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目49)
配列番号18として示される重鎖可変領域アミノ酸配列のCDR3(ARDRLAVAGRPFDY;配列番号17)と100%の同一性を有するCDRを含む重鎖可変配列を含む、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目50)
配列番号18として示される重鎖可変領域アミノ酸配列と100%の同一性を有する重鎖可変配列を含む、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目51)
ポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体である、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目52)
IgG,IgA,IgM,IgE及びIgDから選択される、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目53)
上記IgGが、IgG1,IgG2,IgG3又はIgG4である、項目52に記載の抗体。
(項目54)
IgMを含む、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目55)
SAM−6の結合親和性の約1〜5000倍以内の上記糖蛋白質に対する結合親和性を有する、項目34に記載の単離又は精製抗体。
(項目56)
SAM−6のKD約10 −6 M〜KD約10 −13 M以内の上記糖蛋白質に対する結合親和性を有する、項目34に記載の抗体。
(項目57)
上記糖蛋白質細胞外ドメインに結合する、項目34に記載の抗体。
(項目58)
上記糖蛋白質を発現している細胞に特異的に結合する、項目34から57のいずれか一項に記載の抗体。
(項目59)
上記糖蛋白質又は免疫原性断片に結合する抗体部分配列を含む、項目34に記載の抗体。
(項目60)
上記部分配列が、Fab、Fab’、F(ab’) 2 、Fv、Fd、単鎖Fvs(scFv)、ジスルフィド連結されたFvs(sdFv)及びV L 若しくはV H から選択される、項目59に記載の抗体。
(項目61)
SAM−6抗体の重鎖又は軽鎖可変領域配列に対して90%〜95%、96%、97%、98%、99%又はそれを超える同一性を有さない、項目34に記載の抗体。
(項目62)
上記SAM−6/R糖蛋白質又は抗体が異種ドメインを更に含む、項目1若しくは2に記載のSAM−6/R糖蛋白質又は項目34から61のいずれか一項に記載の抗体。
(項目63)
上記異種ドメインが、検出可能な標識、タグ又は細胞傷害剤を含む、項目62に記載のSAM−6/R糖蛋白質又は抗体。
(項目64)
上記検出可能な標識又はタグが、酵素;酵素基質;リガンド;受容体;放射性核種;T7−タグ、His−タグ、myc−タグ、HA−タグ若しくはFLAG−タグ;高電子密度試薬;エネルギー伝達分子;常磁性標識;フルオロフォア;発色団;化学発光剤;及び生物発光剤を含む、項目63に記載のSAM−6/R糖蛋白質又は抗体。
(項目65)
項目34に記載の抗体及び項目2に記載の糖蛋白質を検出するための取扱説明書を含むキット。
(項目66)
項目1若しくは2に記載のSAM−6/R糖蛋白質又は項目34に記載の抗体及び項目2に記載の糖蛋白質に結合する抗体で処置可能な状態を処置するための取扱説明書を含むキット。
(項目67)
上記取扱説明書が、望ましくない細胞増殖又は過剰増殖を処置するためのものである、項目66に記載のキット。
(項目68)
上記取扱説明書が、新生物、腫瘍又は癌を処置するためのものである、項目66に記載のキット。
(項目69)
抗細胞増殖又は免疫増強処置若しくは治療剤を更に含む、項目66に記載のキット。
(項目70)
抗新生物剤、抗癌剤又は抗腫瘍剤を更に含む、項目66に記載のキット。
(項目71)
上記取扱説明書がラベル又は添付文書上にある、項目66に記載のキット。
(項目72)
製品を更に含む、項目66に記載のキット。
(項目73)
上記製品が、抗体、抗細胞増殖又は免疫増強処置若しくは治療剤を被験体の局所、局部又は全身に送達するためのものである、項目72に記載のキット。
(項目74)
項目1または2に記載のSAM−6/R糖蛋白質又は項目34から61のいずれか一項に記載の抗体及び医薬的に許容可能な担体若しくは賦形剤を含む医薬組成物。
(項目75)
処置を必要とする被験体における細胞過剰増殖障害を処置するための方法であって、該被験体における細胞過剰増殖障害を処置するのに有効な量にて、項目1若しくは2に記載のSAM−6/R糖蛋白質又は項目34から61のいずれか一項に記載の抗体を該被験体に投与する工程を含む方法。
(項目76)
上記細胞過剰増殖障害が、脳、頭頸部、乳房、食道、口、鼻咽頭、鼻若しくは洞、胃、十二指腸、回腸、空腸、肺、肝臓、膵臓、腎臓、副腎、甲状腺、膀胱、結腸、直腸、前立腺、子宮、子宮頸部、卵巣、骨髄、リンパ、血液、骨、精巣、皮膚若しくは筋肉又は造血系を冒すか、或いは少なくともその一部に存在する、項目75に記載の方法。
(項目77)
上記細胞過剰増殖障害が、新生物、腫瘍又は癌を含む、項目75に記載の方法。
(項目78)
上記新生物、腫瘍又は癌が転移性又は非転移性である、項目77に記載の方法。
(項目79)
上記新生物、腫瘍又は癌が、乳房、肺、甲状腺、頭頸部、鼻咽頭、鼻若しくは洞、脳、脊椎、副腎、甲状腺、リンパ、消化管、口、食道、胃、十二指腸、回腸、空腸、小腸、結腸、直腸、尿生殖路、子宮、卵巣、子宮頸部、膀胱、精巣、陰茎、前立腺、腎臓、膵臓、副腎、肝臓、骨、骨髄、リンパ、血液、筋肉又は皮膚を冒すか、或いは少なくともその一部に存在する、項目77に記載の方法。
(項目80)
上記新生物、腫瘍又は癌が造血性である、項目77に記載の方法。
(項目81)
上記新生物、腫瘍又は癌が、肉腫、癌腫、腺癌、黒色腫、骨髄腫、芽細胞腫、神経膠腫、リンパ腫又は白血病を含む、項目77に記載の方法。
(項目82)
上記新生物、腫瘍又は癌が、肺腺癌、肺癌、びまん性若しくは間質性胃癌、結腸腺癌、前立腺腺癌、食道癌、乳癌、膵臓腺癌、卵巣腺癌又は子宮腺癌を含む、項目77に記載の方法。
(項目83)
上記新生物、腫瘍又は癌が、I,II,III,IV又はV期の転移性又は非転移性の腫瘍又は癌を含む、項目77に記載の方法。
(項目84)
上記新生物、腫瘍又は癌が進行的に悪化している、項目77に記載の方法。
(項目85)
上記新生物、腫瘍又は癌が寛解期にある、項目77に記載の方法。
(項目86)
上記新生物、腫瘍又は癌が固形又は液性である、項目77に記載の方法。
(項目87)
上記抗体を上記被験体に対して局所、局部又は全身に投与する、項目77に記載の方法。
(項目88)
上記処置が、上記細胞過剰増殖障害又は上記新生物、腫瘍若しくは癌と関連する1つ以上の有害身体症状の緩和又は改善をもたらす、項目75又は77に記載の方法。
(項目89)
上記処置が、新生物、腫瘍若しくは癌の体積を低減もしくは減少させ、新生物、腫瘍若しくは癌の体積の増加を阻害若しくは阻止し、新生物、腫瘍若しくは癌の進行若しくは悪化を阻害し、新生物、腫瘍若しくは癌の細胞溶解若しくはアポトーシスを刺激し、又は新生物、腫瘍若しくは癌の増殖若しくは転移を阻害、低減若しくは減少させる、項目77に記載の方法。
(項目90)
上記処置が上記被験体の寿命を長くするか、又は延ばす、項目75又は77に記載の方法。
(項目91)
上記処置が上記被験体の生活の質を改善する、項目75又は77に記載の方法。
(項目92)
上記被験体が、抗新生物、抗腫瘍、抗癌若しくは免疫増強の処置若しくは治療の候補者であるか、それを受けているか、又はそれを受けたことがある、項目75又は77に記載の方法。
(項目93)
抗細胞増殖又は免疫増強の処置又は治療を上記患者に施す工程を更に含む、項目75又は77に記載の方法。
(項目94)
上記処置又は治療が、外科的切除、放射線治療、放射線療法、化学療法、免疫療法又は温熱療法を含む、項目93に記載の方法。
(項目95)
上記抗細胞増殖処置又は治療が、アルキル化剤、代謝拮抗剤、植物抽出物、植物アルカロイド、ニトロソ尿素、ホルモン、ヌクレオシド又はヌクレオチド類似体を含む、項目
93に記載の方法。
(項目96)
上記抗細胞増殖処置又は治療が、シクロホスファミド、アザチオプリン、シクロスポリンA、プレドニゾロン、メルファラン、クロラムブシル、メクロレタミン、ブスルファン、メトトレキサート、6−メルカプトプリン、チオグアニン、5−フルオロウラシル、シトシンアラビノシド、AZT、5−アザシチジン(5−AZC)及び5−アザシチジン関連化合物、ブレオマイシン、アクチノマイシンD、ミトラマイシン、マイトマイシンC、カルムスチン、ロムスチン、セムスチン、ストレプトゾトシン、ヒドロキシウレア、シスプラチン、ミトタン、プロカルバジン、ダカルバジン、タキソール、ビンブラスチン、ビンクリスチン、ドキソルビシン並びにジブロモマンニトールから選択される、項目93に記載の方法。
(項目97)
上記免疫増強処置又は治療が、リンパ球、形質細胞、マクロファージ、樹状細胞、NK細胞又はB細胞を含む、項目93に記載の方法。
(項目98)
上記免疫増強処置又は治療が、抗体、細胞増殖因子、細胞生存因子、細胞分化因子、サイトカイン又はケモカインを含む、項目93に記載の方法。
(項目99)
上記免疫増強処置又は治療が、IL−2、IL−1α、IL−1β、IL−3、IL−6、IL−7、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GMCSF)、IFN−γ、IL−12、TNF−α、TNFβ、MIP−1α、MIP−1β、RANTES、SDF−1、MCP−1、MCP−2、MCP−3、MCP−4、エオタキシン、エオタキシン−2、I−309/TCA3、ATAC、HCC−1、HCC−2、HCC−3、LARC/MIP−3α、PARC、TARC、CKβ、CKβ6、CKβ7、CKβ8、CKβ9、CKβ11、CKβ12、C10、IL−8、GROα、GROβ、ENA−78、GCP−2、PBP/CTAPIIIβ−TG/NAP−2、Mig、PBSF/SDF−1及びリンホタクチンから選択される、項目93に記載の方法。
(項目100)
上記抗体を、上記抗細胞増殖又は免疫増強の処置又は治療の施行前、その施行と実質的に同時又はその施行後に投与する、項目93に記載の方法。
(項目101)
上記被験体が哺乳動物である、項目75から100のいずれか一項に記載の方法。
(項目102)
上記被験体がヒトである、項目101に記載の方法。
(項目103)
上記被験体が、細胞過剰増殖障害の処置若しくは治療を受けているか、又はそれを受けたことがある、項目75から100のいずれか一項に記載の方法。
(項目104)
望ましくない又は過剰なLDL若しくはoxLDLレベルと関連するか、或いはそれによって引き起こされる障害又は疾患を処置するための方法であって、被験体における望ましくない又は過剰なLDL若しくはoxLDLレベルと関連するか、或いはそれによって引き起こされる障害又は疾患を処置するのに有効な量にて、SAM−6/R糖蛋白質に特異的に結合する抗体を該被験体に投与する工程を含む、方法。
(項目105)
項目1又は2に記載のポリペプチドを検出又はスクリーニングする方法であって、
a)項目1又は2に記載のポリペプチドへの抗体の結合を可能にする条件下にて生物学的な物質又は試料を項目34又は35に記載の抗体と接触させる工程と、
b)該ポリペプチドへの該抗体の結合をアッセイする工程であって、該ポリペプチドへの該抗体の結合が、項目1又は2に記載のポリペプチドの存在を検出する、工程と
を含む、方法。
(項目106)
上記ポリペプチドが細胞又は組織上に存在する、項目105に記載の方法。
(項目107)
上記生物学的な物質又は試料が哺乳動物被験体から得られる、項目105に記載の方法。
(項目108)
項目34又は35に記載の抗体がSAM−6抗体と異なる、項目105に記載の方法。(項目109)
新生物、腫瘍若しくは癌を有するか、又はそれを有する危険性が高い被験体を診断する方法であって、
c)該被験体由来の生物学的な物質又は試料を提供する工程と、
d)項目1又は2に記載のポリペプチドへの抗体の結合を可能にする条件下にて該生物学的な物質又は試料を項目34又は35に記載の抗体と接触させる工程と、
e)該ポリペプチドへの該抗体の結合をアッセイする工程であって、該ポリペプチドへの該抗体の結合が、該被験体が新生物、腫瘍若しくは癌を有するか、又はそれを有する危険性が高いと診断する、工程と
を含む方法。
(項目110)
上記生物学的な物質又は試料がヒトから得られる、項目109に記載の方法。
(項目111)
上記生物学的な物質又は試料が生検材料を含む、項目109に記載の方法。
(項目112)
生物学的な物質又は試料が、肺、膵臓、胃、乳房、食道、卵巣又は子宮の生検材料を含む、項目109に記載の方法。
(項目113)
項目34又は35に記載の抗体がSAM−6抗体と異なる、項目109に記載の方法。(項目114)
SAM−6受容体(SAM−6/R)として示される糖蛋白質に特異的に結合する抗体を作製する方法であって、
a)変性ゲル電気泳動により決定される約80〜82キロダルトン(kDa)の範囲の分子量、少なくとも1つのO−結合炭水化物部分を有し、且つGrp78に対して少なくとも部分的な配列相同性を有するポリペプチド、又はその断片を動物に投与する工程と、
b)該ポリペプチドに結合する抗体の発現について該動物をスクリーニングする工程と、c)該ポリペプチド又はその断片に結合する抗体を産生する動物を選択する工程と、
d)該選択された動物から該抗体を単離する工程と
を含む方法。
(項目115)
SAM−6/R抗体を作製する方法であって、
a)変性ゲル電気泳動により決定される約80〜82キロダルトン(kDa)の範囲の見かけ上の分子量、少なくとも1つのN又はO−結合炭水化物部分を有し、且つGrp78に対して少なくとも部分的な配列相同性を有するポリペプチド又はその断片を動物に投与する工程と、
b)該ポリペプチド又はその断片に結合する抗体の発現について該動物をスクリーニングする工程と、
c)該ポリペプチドに結合する抗体を産生する動物を選択する工程と、
d)該選択された動物から該抗体を単離する工程と
を含む方法。
(項目116)
ヒトモノクローナルSAM−6/R抗体を作製する方法であって、
a)変性ゲル電気泳動により決定される約80〜82キロダルトン(kDa)の範囲の見かけ上の分子量、少なくとも1つのN又はO−結合炭水化物部分を有し、且つGrp78に対して少なくとも部分的な配列相同性を有するポリペプチド又はその断片を、ヒト免疫グロブリンを発現することが可能な動物に投与する工程と、
b)該ポリペプチド又はその断片に結合する抗体を産生する動物から脾臓細胞を単離する工程と、
c)該脾臓細胞を骨髄腫細胞と融合させてハイブリドーマを作製する工程と、
d)ポリペプチド又はその断片に結合するヒトモノクローナル抗体の発現について該ハイブリドーマをスクリーニングする工程と
を含む方法。
(項目117)
上記断片が、N又はO−結合炭水化物部分を含む項目1又は2に記載のポリペプチド配列の一部を含む、項目114から116のいずれか一項に記載の方法。
本発明は、SAM−6受容体(SAM−6/R)と称される糖蛋白質、即ち、SAM−6/R糖蛋白質に少なくとも部分的に基づく。SAM−6/R糖蛋白質は、変性ゲル電気泳動により決定される約80〜82キロダルトン(KDa)の範囲の見かけ上の分子量を有する。SAM−6/R糖蛋白質の非限定的で例示的な特徴は、Grp78と異なる少なくとも1つの窒素(N)又は酸素(O)−結合炭水化物部分の結合である。SAM−6/R糖蛋白質の非限定的で例示的な別の特徴は、SAM−6として示される抗体がSAM−6/R糖蛋白質に特異的に結合することである。
Biological Analyses,Plenum Press社、Kennett,McKearn及びBechtol(編)、1980、並びにHarlowら、Antibodies:A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory Press社、第2版、1988も参照されたい)。
and Cell Cultures)、ドイツBraunschweig38124,Inhoffenstrase 7B)などの細胞から得ることができる。
処置可能な新生物、腫瘍及び癌の具体的な非限定例は、悪性及び非悪性新生物、腫瘍及び癌並びに転移を含む。詳細には、任意の病期(例えば、IA、IB、IIA、IIB、IIIA、IIIB又はIV期)又はグレード(例えば、G1、G2又はG3グレード)の黒色腫、胃組織、肺扁平上皮癌、肺腺癌細胞及び鼻癌細胞。転移の具体的な非限定例は、肺扁平上皮癌及び腺癌のリンパ節及び脳への転移;乳癌(浸潤性乳管癌)のリンパ節への転移;結腸腺癌の肝臓及びリンパ節への転移;SAM−6/R糖蛋白質は胃腺癌(腸管及びびまん性)のリンパ節への転移において検出された;膵臓腺癌のリンパ節への転移;頭頸部扁平上皮癌のリンパ節への転移;並びに黒色腫の直腸、食道、皮膚、耳下腺、結腸、副腎及び鼻上皮への転移を含む。
of Pharmacy、第20版、Lippincott,Williams & Wilkins社(2000);Anselら、Pharmaceutical Dosage Forms and Drug Delivery Systems、第7版、Lippincott Williams & Wilkins Publishers社(1999);Kibbe(編)、Handbook of Pharmaceutical Excipients American Pharmaceutical Association、第3版(2000);及びRemington’s Pharmaceutical Principles of Solid Dosage Forms,Technonic Publishing Co.,Inc.、ペンシルベニア州ランカスター(Lancaster)(1993)参照)。
本実施例では種々の典型的な材料及び方法について述べる。
10%熱不活性化FCS(PAA社、オーストリア、ウィーン)、2mM L−グルタミン及びペニシリン/ストレプトマイシン(共に1%、PAA社)が補充されたRPMI1640(PAA社、オーストリア・ウィーン)で、ヒト膵臓癌細胞株BXPC−3及びヒト胃腺癌細胞株23132/87を培養した。AIM/V血清不含培地((Invitrogen社、ドイツKarlsruhe)での細胞培養フラスコ(175cm2)内でSAM−6抗体産生ハイブリドーマ細胞を増殖させた。すべての細胞を7%CO2の加湿大気中にて37℃でインキュベートした。
SAM−6抗体の精製のため、細胞培養上清を回収し、高速液体クロマトグラフィ装置(FPLC)を用いた陽イオン交換カラム(HiTrap SP FFカラム、Amersham Bioscience社、ドイツFreiburg)を介して精製した。開始緩衝液(20mMリン酸緩衝液(pH5.9))によるカラム平衡化後、細胞培養上清(同pH)をカラムに添加した。非結合蛋白質は開始緩衝液で溶出し、一方、結合抗体は75%溶出緩衝液(20mMリン酸緩衝液、1M NaCl(pH8.0))で塩分濃度の上昇によって移動した。画分を含む抗体を0.9%塩化ナトリウムで希釈し、滅菌濾過し、使用するまで−70℃で保存した。抗体の純度をSDSゲル電気泳動により求め、活性を免疫組織化学(immunhistochemistry)及び機能アッセイにより確認した。
SAM−6抗原(SAM−6/R糖蛋白質)の精製のため、ProteoExtract(商標)天然膜蛋白質抽出キット(M−PEK)(Calbiochem社、ドイツDarmstadt)を用いて、ヒト胃腺癌細胞株23132/87から膜蛋白質を単離した。内在性膜結合蛋白質の天然2工程抽出の全手順を4℃又は氷上で実施した。必要な緩衝液及び試薬はすべてM−PEKに備わっていた。
標準プロトコルを用いて膜蛋白質の還元SDS−PAGEゲル(8%)及びウエスタンブロッティングを実施した。要するに、ブロットされた0.2μmのニトロセルロース膜を、0.05%(v/v)Tween−20及び5%(w/v)低脂肪粉乳を含むPBSでブロックし、次に、20μg/mlのSAM−6ヒトIgM抗体又は無関連ヒト対照IgM(Chrompure IgM、Dianova社、ドイツ・ハンブルク)と1時間インキュベートした。Pierce社(Perbio Science Deutschland GmbH、ドイツ・ボン)製SuperSignal化学発光キットで、二次抗体(ペルオキシダーゼ結合ウサギ抗ヒトIgM抗体1:1,000;Dianova社)を検出した。
SAM−6抗体の抗原を精製するため、M−PEKによる抽出後に腫瘍細胞株23132/87から得られた膜画分を用いた。精製の第1工程では、サイズ排除クロマトグラフィを用いた。スーパーループシステム及び高速蛋白質液体クロマトグラフィ装置(FPLC)(Amersham Pharmacia Biotech社、ドイツFreiburg)を用いて1ml/分の流量にて10mlのM−PEK抽出物(1mg/ml)をSuperdex200カラム(XK16/60;Amersham Biosciences社、スウェーデンUppsala)に注入した。カラムを緩衝液A(100mM Tris/HCl(pH7.5)、40mM NaCl、2mM EDTA、1% TritonX−100)で事前に平衡化し、2ml/分の流量にて同じ緩衝液で溶出した。各々2mlの画分を回収し、SAM−6受容体活性のピークに対応する画分を結合し、平衡化陰イオン交換カラム(HiTrap(商標)Sepharose Q XL,5ml;Amersham Biosciences社、スウェーデンUppsala)に添加した。非結合要素は緩衝液Aで溶出し、一方、結合蛋白質は緩衝液B(100mM Tris/HCl(pH7.5)、1M NaCl、2mM EDTA、1% TritonX−100)を用いて線形ステップ勾配を介して塩濃度の上昇によって放出された。
TopLab(ドイツMartinsried)により、蛋白質配列決定を行った。クーマシー染色による一次元SDS−PAGE後、推定分子量80kDaを有する蛋白質バンドを切り取り、ヨードアセトアミドによる還元及びアルキル化後、バンドをトリプシンでゲル中消化した。トリプシンペプチドのプールを、ZipTipC18を介して脱塩し、マトリックス支援レーザー脱離イオン化(MALDI)質量分析法(Voyager−DE STR;Applied Biosystems社、米国カリフォルニア州)により分析し、次に、データバンクリサーチを行った(Profound及びMascot対NCBI)。Basic Local Alignment Search Toolを用いて、最適マッチング蛋白質候補物質のヒット(1.00の確率)を比較した。
低分子干渉RNA(siRNA)によるトランスフェクション後、SAM−6受容体結合の検討について細胞株BXPC−3を用いた。標的分子Grp78をサイレンシングするための事前設計且つ実証されたsiRNAである、ヒトHSPA5に対するSiGENOME SMARTpool試薬をDharmacon社(米国コロラド州ラファイエット(Lafayette))から購入した。siRNA導入によって生じる遺伝子発現に対する非特異的作用の対照として、Silencer(商標)陰性対照をAmbion社(英国ケンブリッジ)から購入した。
ヒトGRP78に対するSiGENOME siRNAを腫瘍細胞株BXPC−3にトランスフェクトした。トリプシン/EDTA(PAA社、オーストリア、ウィーン)による穏やかな剥離により、1日及び3日後に細胞を採取した。1日及び3日後、FACS分析によりGRP78の蛋白質濃度をモニタリングした。2×105個の細胞を、それぞれ、SAM−6抗体(100μg/ml)、抗GRP78抗体(100μg/ml;クローンET−21、Sigma社、ドイツTaufkirchen)又は抗CD55抗体(1:50;クローン143−30、DPC Biermann社、ドイツBad Naunheim)と30分間氷上でインキュベートした。無関連ヒトIgM(Chrompure IgM、Dianova社、ドイツ、ハンブルク)及びウサギ/マウスIgG(Sigma社、ドイツTaufkirchen)が陰性対照として機能した。FITC標識二次抗体(ウサギ抗ヒトIgM抗体、Dako社、ドイツ、ハンブルク;ヤギ抗ウサギIgG又はヤギ抗マウスIgG、共にAcris社、ドイツHiddenhausen)との15分間のインキュベーションが引き続いた。WinMDIソフトウェアを用いたフローサイトメトリー(FACScan;Becton Dickinson社、カリフォルニア州サンノゼ)により、細胞を分析した。
GRP78siRNAによるトランスフェクション前後のBXPC−3細胞における抗体誘導アポトーシスの程度を、製造業者のプロトコルに従って細胞死検出ELISAPLUS(Roche社、ドイツMannheim)によって検出した。トランスフェクションの48時間後、1×104個の細胞を96ウェルプレート上に播種し、100μg/mlのSAM−6抗体又は無関連IgM対照(ChrompureヒトIgM、Dianova社、ドイツ、ハンブルク)の存在下、加湿大気中にて37℃及び7%CO2で4時間インキュベートした。正常な増殖を実証するため、細胞に完全増殖培地を補充した。
100mm細胞培養プレート上で細胞株BXPC−3を集密度80%まで増殖させた。リン酸緩衝食塩水(pH7.4)(PBS)で培養プレートを2回洗浄し、PBS中にて接着細胞を採取し、次に、1,500rpmで5分間遠心分離した。細胞を氷冷低張緩衝液(20mM HEPES、3mM KCl、3mM MgCl2)中に再懸濁させ、15分間インキュベートし、次に、5分間の超音波震動を行った。10,000×gで10分の遠心分離により、核及び細胞骨格をペレット化した。上清を、ミクロソームペレットを生じさせるためにSW28ローターにて100,000×gで30分間遠心分離し、最終的に、改変溶解緩衝液(50mM Tris−HCl(pH7.4);150mM NaCl;1mM EDTA;1%ノニデット(Nonidet)NP−40及び0.25%デオキシコール酸ナトリウム)中に再懸濁させた。16,000×gで10分間の遠心分離により、不溶性物質を除去した。破片ペレットを攪乱せずに上清を新たな試料管に移した。ウシ血清アルブミンを基準として用いたBCA法による蛋白質含量の測定後、アリコートを−20℃で保存した。全手順を4℃又は氷上で行った。完全プロテアーゼ阻害剤錠(Roche Biochemicals社、Mannheim)を全溶液に加えた。
分画遠心により調製したBXPC−3細胞の膜抽出物をグリコシル化の検討に用いた。あらゆるタイプのN又はO−結合炭水化物鎖を切断するため、95℃で3分間、1%ドデシル硫酸ナトリウム(sodium dedecylsulfate)及び1% β−メルカプトエタノールを含む緩衝液中にて膜抽出物を変性させた。変性抽出物を反応緩衝液(PBS(pH7.4)、1%ノニデット(nonidet)NP−40、1% β−メルカプトエタノール)で0.5mg/mlの最終蛋白質濃度に希釈した。O及びN−結合炭水化物の脱グリコシル化のため、100μlのアリコートを10U N−グリコシダーゼF(Roche Applied Science社、ドイツMannheim)又は5mU O−グリコシダーゼ(Roche Applied Science社、ドイツMannheim)と37℃で一晩インキュベートした。反応緩衝液中の非処理抽出物が対照として機能した。SDS−Page及びウエスタンブロッティング法により、脱グリコシル化の程度を分析した。
4×105個のヒト膵臓癌細胞(BXPC−3)を洗浄し、1mlのダルベッコ(Dulbecco’s)リン酸緩衝食塩水(pH7.2)(Sigma社、ドイツTaufkirchen)中に再懸濁させた。5U/ml N−グリコシダーゼ又は20mU/ml
O−グリコシダーゼ(共にRoche Applied Science社、ドイツMannheim)との37℃で4時間のインキュベーションが引き続いた。リン酸緩衝液中の非処理細胞が対照として機能した。100μlの対応するアリコートを洗浄し、500rpmで2分間、カバーガラス上で回転させた。乾燥サイトスピンをアセトンで固定し、免疫組織化学的に染色した。
乾燥サイトスピンをアセトンで(10分)固定し、低脂肪粉乳/PBS(4%)で30分間ブロックした。Tris/NaClによる洗浄後、カバーガラスを抗体SAM−6(50μg/ml)又は対照抗体で30分間インキュベートした。陰性対照として同濃度の非処理ヒトIgM(Chrompure IgM、Dianova社、ドイツ、ハンブルク)が、また、陽性対照として抗CD55抗体(1:30;クローン143−30、DPC Biermann社、ドイツBad Naunheim)が機能した。Tris/NaClによる洗浄後、二次抗体との30分間のインキュベーションが引き続いた(ペルオキシダーゼ標識ウサギ抗ヒト又はウサギ抗マウスコンジュゲート 1:50)。最終的なTris/NaClによる洗浄及びPBS中での10分間のインキュベーション後、室温で10分間、ジアミノベンジジン(0.05%)−過酸化水素(0.02%)で染色を行った。反応を水道水下で停止し、カバーガラスをヘマトキシリンで対比染色した。グリセロール−ゼラチンによる封入後、光学顕微鏡法を用いて脱グリコシル化の程度を視覚的に分析した。
ヒト膵臓癌細胞株BXPC−3においてSAM−6抗体のエンドサイトーシスを求めた。免疫蛍光検査のため、製造業者のプロトコルに従って、Fluoro Tag FITCコンジュゲーションキット(Sigma−Aldrich社、米国セントルイス)によるモノクローナル抗体SAM−6及びアイソタイプ対照IgM(Chrompure IgM、Dianova社、ドイツ、ハンブルク)のコンジュゲーションを行った。
ヒト膵臓癌細胞株BXPC−3においてSAM−6抗体に対するエンドサイトーシスを求めた。上述のように、Fluoro Tag FITCコンジュゲーションキット(Sigma−Aldrich社、米国セントルイス)により、モノクローナル抗体SAM−6(精製)及びアイソタイプ対照(Chrompure IgM、Dianova社、ドイツ、ハンブルク)をコンジュゲートした。40μg/mlの最終濃度でのコンジュゲート抗体を1×106個の細胞に直接付与し、37℃で30、60、120分間インキュベートした。細胞を採取、すすぎ、リン酸緩衝食塩水(pH7.4)(PBS)中に再懸濁させた。100μlの各細胞懸濁液をスライドに固定した。最後に、スライドを蛍光封入剤(DakoCytomation社、米国カーピンテリア(Carpinteria))で封入し、共焦点顕微鏡法により分析した。
細胞内脂質染色のため、膵臓癌細胞BXPC−3をスライドグラス上で増殖させた。接着細胞を、100μg/mlのSAM−6抗体、抗Grp78(クローンET−21、Sigma社、ドイツTaufkirchen)又は無関連対照(Chrompure IgM、Dianova社、ドイツ、ハンブルク)と48時間インキュベートした。PBSによる2回の洗浄工程後、60%イソプロパノールで細胞を5分間固定した。使用前にスダンIII原液の60%溶液(100%イソプロパノール中、0.5%スダンIII)を一晩熟成させ、濾過し、固定細胞に加えた。40分後、細胞を蒸留水で洗浄し、60%イソプロパノール中で分化させ、再度洗浄し、ヘマトキシリンで6分間対比染色した。最後に、細胞を10分間すすぎ、グリセロールゼラチンで封入した。光学顕微鏡法を用いて脂質含有の程度を可視化した。
SAM−6に誘導されたアポトーシス時にシトクロムcが放出されたかをスクリーニングするため、シトクロムC ELISAキット(Calbiochem社、米国ラ・ホーヤ(LaJolla))を用いた。要するに、1.5×106個の胃腺癌細胞(23132/87)を200μg/mlの精製SAM−6又は無関連IgM抗体と、それぞれ1時間、4時間インキュベートした。トリプシン処理後、細胞を冷PBSで3回洗浄し、溶解緩衝液中に再懸濁させ、穏やかな混合により室温で1時間インキュベートした。氷冷PBSによる3回の洗浄工程及び1,000×gで15分間の遠心分離後、上清を新鮮チューブに移し、Calibrator Diluent RD5P(1×)で希釈した(1:10)。次に、Calibrator Diluent RD5P(1×)で希釈した各試料の混合物(1:1)を、キットで送達されるマイクロタイタープレートに加えた。室温での2時間のインキュベーション、次に、0.4%洗浄緩衝液による洗浄が引き続いた。次に、シトクロムCコンジュゲートを各ウェルに入れた。インキュベーション及び洗浄工程を以前のように繰り返した。各ウェルへの基質溶液(発色試薬A及びBの1:1混合物)の添加後、プレートを室温で30分間インキュベートした。停止液の添加後、415nm(基準波長540nm)での測定を行った。
カスパーゼ2、3、6、8及び9活性について抗体処理細胞をスクリーニングするため、供給業者のマニュアルに従って、Apo Target(商標)比色プロテアーゼアッセイサンプラーキット(Colorimetric Protease Assay Sampler Kit)(Calbiochem社、米国ラ・ホーヤ(LaJolla))を用いた。要するに、3×106個の胃癌細胞(23132/87)を200μg/mlの精製SAM−6又は無関連IgM抗体と、それぞれ1時間、4時間インキュベートした。トリプシン処理後、細胞を冷溶解緩衝液中に再懸濁させた。それらを氷上で10分間インキュベートし、10,000×gで1分間遠心分離した。細胞溶解物中の蛋白質の量を求めるため、Bradfordアッセイを用いた。各細胞質抽出物を4μg/mlの蛋白質濃度に希釈した。次に、DTT含む反応緩衝液及び種々のコンジュゲートしたプロテアーゼ基質を、96ウェルマイクロタイタープレートにおける試料に加えた。溶解及び反応緩衝液の混合物(1:1)はブランクとして機能した。加湿CO2インキュベータにおける37℃及び7%CO2で2時間のインキュベーション後、ELISAリーダーにて415nmで、吸収、従って、カスパーゼ活性の程度を測定した。カスパーゼ3阻害剤に関する実験では、上述のように同様の条件を用いて、供給業者のマニュアルに従って、カスパーゼ3細胞活性アッセイキット(Calbiochem社、米国ラ・ホーヤ(LaJolla))を用いた。
インビボにおける腫瘍細胞増殖に対するSAM−6抗体の効果を判定するため、ヌードマウス/ヒト胃癌細胞系を用いた。簡潔には、2×106個の胃癌細胞(23132/87)を6〜7週齢のNMRI−nu/nuマウス(Harlan Winkelmann
GmbH、ドイツBorchen)に皮下(s.c.)注入し、次に、腫瘍が可視サイズに達すると、抗体SAM−6抗体を注入した。癌細胞注入後9、11、14、16及び17日目に、それぞれ、50、250、500又は750μgの抗体を腹腔内投与した。対照マウスには750μgの無関連ヒトIgM(Chrompure IgM、Dianova社、ドイツ、ハンブルク)を注入した。可視腫瘍増殖は実験時に肉眼的に測定した。腫瘍が最大許容サイズに達すると(18日目)、試験を終了し、その際、マウスを殺処分し、それぞれ、腫瘍体積、腫瘍重量を測定し、腫瘍の拡散及び他の変化について臓器及び組織を検査した。
本実施例はSAM−6/R糖蛋白質の精製及び分析の記述を含む。
腫瘍細胞株23132/87及びBXPC−3に対してSAM−6抗原の単離及び特徴づけを行った。SAM−6抗体は約80kDaの相対分子量で抗原に結合した(図3)。両方の細胞株において、ウエスタンブロットでは出現するバンドのパターンにおける類似結果を示した。また、試料を調製するために分画遠心法又はMPEK法を用いようとも、有意な相違はなかった。しかし、抗原の精製のため、低分子量におけるより高い富化及びより少ない非特異的バンドにより、天然膜抽出キットの方法を用いた。IgM抗体の非特異的結合を見出すため、無関連ヒトIgMを対照に用いた。非特異的結合は約50kDaにて認められうる。約60及び100kDaの分子量での更なる著明な蛋白質バンドが、調製時の膜分画由来の不純物として形成した。
ウエスタンブロットでSAM−6抗体に結合する80kDa蛋白質を同定すべく、蛋白質を精製するために2工程のカラムクロマトグラフィを、また、蛋白質を同定するためにMALDI質量分析を用いた。図4は最初の工程(サイズ排除クロマトグラフィ)後の代表的なクロマトグラムを示す。SAM−6抗体に結合する蛋白質を含む画分をSDS−PAGEにより分析し、次に、ウエスタンブロット及びクーマシー染色により分析した。陽性画分は図5及び6に挙げられている。陰イオン交換クロマトグラフィを用いて第2工程が続いた(クロマトグラム、図7参照)。SDS−PAGEによる引き続いての分析を図8及び9に示す。矢印は80kDa蛋白質を表すバンドを示し、これは最終的に切り取り、配列決定した。TopLab(ドイツMartinsried)により、蛋白質配列決定を行った。
スイスバイオインフォマティクス研究所(Swiss Institute of Bio informatics)(www.expasy.org)のExPASy(Expert Protein Analysis System)のプロテオミクスサーバーの配列解析ツールを用いて、潜在的膜貫通領域及びグリコシル化部位の構造解析を行った。アミノ酸1〜17及び650〜654におけるシグナル領域以外に、Grp78は、アミノ酸220〜237の膜貫通領域の可能性並びにアミノ酸残基166及び184における細胞外O−グリコシル化部位の潜在性を示す。N−グリコシル化部位を決定することはできなかった(図11)。
本実施例はsiRNAによるGrp78発現阻害試験の記述を含む。
Grp78のノックダウンと一体となったGrp78遺伝子のサイレンシングが、BXPC−3腫瘍細胞におけるSAM−6抗体の結合を低減するかを検討するため、試験を行った。Grp78 siRNAによる腫瘍細胞株BXPC−3のトランスフェクションは、蛋白質発現及びSAM−6抗体の結合を低減した。陰性silencer(商標)siRNA(無関連siRNA)をトランスフェクトされた細胞上では、インキュベーション時全体でSAM−6及び対照抗体の強い結合が検出可能であり、Grp78発現の有意な作用を示さない。Grp78 siRNAをトランスフェクトされた細胞は、抗Grp78(76%の低減)及びSAM−6(70%の低減)の結合低減を示す。サイレンシングは他の細胞表面膜分子の発現に影響しなかった。トランスフェクション後の抗CD55の結合は以前と同様に強かった(図12及び13)。表面に存在するGrp78のノックダウンは、標的蛋白質発現及びSAM−6抗体の結合を低減する(図12及び13)。
トランスフェクト腫瘍細胞の抗体誘導性アポトーシスの程度を示すため、細胞死検出ELISAPLUS(Roche社)により、アポトーシス活性を測定した。トランスフェクト細胞を100μg/mlのSAM−6抗体と4時間インキュベートした。同濃度の無関連ヒトIgMが陰性対照であった。ヒトGrp78に対するsiRNAをトランスフェクトされた腫瘍細胞は、無関連細胞及び無関連siRNAをトランスフェクトされた細胞と比べ、SAM−6抗体に誘導されるアポトーシス活性の明確な低下を示す(図14)。アポトーシス細胞含量の計算は、完全培地で増殖される細胞の含量と関連した。
本実施例は、SAM−6抗体結合に対するSAM−6/R糖蛋白質のグリコシダーゼ処理の効果に関する試験の記述を含む。
O−結合炭水化物におけるSAM−6抗体の結合を確認するため、腫瘍細胞株BXPC−3の膜抽出物の脱グリコシル化の効果について検討した。膜抽出物を、O又はN−グリコシダーゼによる還元条件下にて一晩脱グリコシル化し、その後、SDS−Pageを介して分離し、ウエスタンブロッティングにより分析した。グリコシダーゼとのインキュベーション後、著明な80kDa蛋白質の分子量は明確に減少し、SAM−6の結合活性も低下する(図15)。これらの結果は、SAM−6/R糖蛋白質へのSAM−6抗体の結合に糖類が関与していることを示す。
腫瘍細胞表面上のO−結合炭水化物部分におけるSAM−6抗体の結合を確認するため、サイトスピンにおいてグリコシダーゼアッセイを行った。ヒト膵臓癌細胞(BXPC−3)をN−グリコシダーゼ又はO−グリコシダーゼとインキュベートした。サイトスピンの調製後、SAM−6抗体及び抗CD55に関して染色を行った。
本実施例は、細胞上に存在するSAM−6/R糖蛋白質へのSAM−6抗体結合の試験の記述を含む。
SAM−6抗体は細胞膜SAM−6/R糖蛋白質に結合する。この抗体/受容体結合は脂質の蓄積及びアポトーシスカスケードを開始する。SAM−6抗体はoxLDLにも結合し、これを癌細胞中に運搬する。通常、リポ蛋白質は受容体媒介性エンドサイトーシスによって取り込まれる。SAM−6抗体が癌細胞膜に結合した後、何が生じるのかを検討するため、SAM−6抗体及びアイソタイプ対照にFITCをコンジュゲートした。LDLの存在下、コンジュゲート抗体をヒト膵臓癌細胞株BXPC−3に直接付与し、30、60、120分間インキュベートした。最終的に、細胞を共焦点顕微鏡法により分析した。SAM−6抗体との30分間のインキュベーション後、細胞表面への結合を認めることができた(図17A)。60分後、SAM−6抗体は膜に集中し、「キャッピング」の典型的な形成として認められる(図17B)。1時間後、SAM−6抗体は細胞内に完全に取り込まれる。対照的に、標識対照抗体は同様の事象を示さなかった(図17D、E、F)。oxLDLは抗体と共に細胞内に運搬されると想定することができる。
SAM−6抗体誘導性の細胞内脂質蓄積を検討するため、スダンIIIによる染色を行った。この色素は中性脂肪及び脂肪酸の検出に特異的である。図18は、膵臓癌細胞株BXPC−3においてSAM−6抗体、抗Grp78又は無関連ヒト対照IgMとの48時間のインキュベーション後に得られたデータを示す。SAM−6抗体で処理されると、腫瘍細胞は抗体誘導性の中性脂肪滴の蓄積を明確に示す(図18)。対照的に、それぞれ、抗Grp78及び無関連対照抗体で処理された細胞は、脂質の有意な蓄積を示さない。これらのデータは、脂質の細胞内蓄積がSAM−6抗体に媒介される直接的作用であることを示す。
SAM−6誘導性アポトーシスは脂質ホメオスタシスの撹乱の結果でありうる。しかし、これまでのところ、抗体結合脂質蓄積と最終的な細胞死との間の経路についても、カスパーゼが活性化されるのかについても何も知られていなかった。SAM−6によって活性化されるシグナリング経路の更なる理解は、癌との闘いのための革新的な治療法に更に寄与するであろう。従って、カスパーゼはSAM−6誘導性アポトーシスプロセス時の活性について検討した。それぞれ、AM−6抗体及び対照IgMとのインキュベーション後、シトクロムCが胃癌細胞内に放出されたかを検討するため、シトクロムC ELISAキットを用いた。サンドイッチ酵素イムノアッセイ法は、1時間後にシトクロムCが無関連ヒトIgMで処理された細胞よりSAM−6抗体で処理された細胞において高いレベルにて放出されることを示した。加えて、両方の試料におけるポリペプチドの量は4時間のインキュベーション後に更に異なった。更に認められることは、4時間後のSAM−6試料の減少である(図19)。これは、SAM−6誘導性経路においてミトコンドリアの撹乱が生じ、外膜の破壊をもたらし、シトクロムCの放出となることを明確に示す。SAM−6抗体処理された細胞におけるシトクロムCレベルは、4時間のインキュベーション後、対照のレベルに近づき、ミトコンドリアの損傷が経路の初期のみに生じたことを意味する。カスパーゼがSAM−6抗体に誘導されるのか、また、どのカスパーゼがSAM−6抗体に誘導されるのかを判定するため、Apo Target(商標)比色プロテアーゼアッセイサンプラーキット(Colorimetric Protease Assay Sampler Kit)を用いた。抗体との1時間のインキュベーション後、カスパーゼ2、3、6、8及び9の活性を測定した。イニシエータカスパーゼ8及び9(2は違う)は、既に1時間後、無関連ヒトIgM対照で処理された細胞と比べ、SAM−6抗体で処理された細胞において活性化した(図20A)。加えて、4時間後、エフェクターカスパーゼ3及び6の活性化を検出することができた。
本実施例は悪性黒色腫のインビトロ試験の記述を含む。
本実施例はインビボ試験の記述を含む。
Claims (21)
- 被験体における骨髄腫を処置または予防するための組成物であって、該組成物は、配列番号13において示される軽鎖可変領域配列および配列番号18において示される重鎖可変領域配列を含む抗体によって結合される、骨髄腫細胞上のエピトープに結合する抗体またはその結合断片を含む、組成物。
- 前記骨髄腫が多発性骨髄腫である、請求項1に記載の組成物。
- 請求項1または2に記載の組成物であって、ここで、前記抗体または結合断片が、以下:
(a)重鎖可変領域配列であって、以下:
(i)配列番号18において示される全長配列に対して少なくとも90%同一である、配列、および、
(ii)配列番号17において示されるCDR3(ARDRLAVAGRPFDY)に対して100%同一である、相補性決定領域(CDR)、
を含む該重鎖可変領域配列、ならびに、
(b)軽鎖可変領域配列であって、配列番号13において示される全長配列に対して少なくとも90%同一である配列を含む、軽鎖可変領域配列、
を含む、組成物。 - 請求項3に記載の組成物であって、ここで、前記重鎖可変領域配列は、配列番号18において示されるアミノ酸配列の3つのCDRを含む、組成物。
- 請求項1から4のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記骨髄腫細胞への前記抗体あるいは結合断片の結合が、細胞死、溶解又はアポトーシスを刺激又は誘導する、組成物。
- 請求項1から5のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記抗体がポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体である、組成物。
- 請求項1から6のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記抗体が、IgG,IgA,IgM,IgE及びIgDから選択される、組成物。
- 請求項1から7のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記結合断片が、Fab、Fab’、F(ab’) 2 、Fv、Fd、単鎖Fvs(scFv)、ジスルフィド連結されたFvs(sdFv)及びV L 若しくはV H から選択される、組成物。
- 請求項1から8のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記抗体または結合断片が、以下:
(a)配列番号15において示される重鎖可変領域配列;および/または
(b)配列番号13において示される軽鎖可変領域配列
に対して90%〜95%、96%、97%、98%、99%又はそれを超える同一性を有さない、組成物。 - 請求項1から9のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記被験体に対して局所、局部又は全身に投与されるものであることを特徴とする、組成物。
- 請求項1から10のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記処置が、前記骨髄腫と関連する1つ以上の有害身体症状の緩和又は改善をもたらす、組成物。
- 請求項1から11のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記処置が、骨髄腫腫瘍の体積を低減もしくは減少させるか、骨髄腫腫瘍の体積の増加を阻害若しくは阻止するか、骨髄腫の進行若しくは悪化を阻害するか、骨髄腫の細胞溶解若しくはアポトーシスを刺激するか、又は、骨髄腫細胞の増殖若しくは転移を阻害、低減若しくは減少させる、組成物。
- 請求項1から12のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記処置が前記被験体の寿命を長くするか、又は延ばす、組成物。
- 請求項1から13のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記処置が前記被験体の生活の質を改善する、組成物。
- 請求項1から14のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記被験体が、抗新生物、抗腫瘍、抗癌若しくは免疫増強の処置若しくは治療の候補者であるか、それを受けているか、又はそれを受けたことがある、組成物。
- 請求項1から15のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、抗細胞増殖又は免疫増強の処置又は治療と組み合わせて投与されるものであることを特徴とする、組成物。
- 請求項16に記載の組成物であって、ここで、前記処置又は治療が、外科的切除、放射線治療、放射線療法、化学療法、免疫療法又は温熱療法を含む、組成物。
- 請求項16または17に記載の組成物であって、ここで、前記抗細胞増殖処置又は治療が、アルキル化剤、代謝拮抗剤、植物抽出物、植物アルカロイド、ニトロソ尿素、ホルモン、ヌクレオシド又はヌクレオチド類似体を含む、組成物。
- 請求項16から18のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記組成物は、前記抗細胞増殖又は免疫増強の処置又は治療の施行前、その施行と実質的に同時又はその施行後に投与されるものであることを特徴とする、組成物。
- 請求項1から19のいずれか一項に記載の組成物であって、ここで、前記被験体が哺乳動物である、組成物。
- 請求項20に記載の組成物であって、ここで、前記被験体がヒトである、組成物。
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