JP2011098971A - 細胞への物質送達の遠隔検出 - Google Patents

Abstract

【課題】エンドサイトーシス感受性プローブの開発、および細胞性エンドサイトーシスの遠隔測定法の提供。
【解決手段】プローブは、低い水透過性のナノ粒子またはリポソーム送達系、およびエンドサイトーシスによるバリアーの完全性の内生の分解性または崩壊性に基づく。イメージング剤を封入しているリポソームへの両親媒性の治療基剤のローディングのための電気化学的勾配を作るために陰イオンキレーターを用いる方法によるイオン的に結合した診断薬および治療薬の共封入により、治療的および診断的利用性を合わせて有するリポソーム。遠隔検出リポーター分子をリポソーム脂質層へ固定するリポポリマーを挿入することによる治療リポソームのイメージング法。疾患組織における分子指紋のイメージング、処置、および処置モニタリングを可能とする統合型の送達系。
【選択図】なし

Description

連邦政府による資金提供を受けた研究開発
国立衛生研究所により授与された助成金番号Ｎ０１−ＣＯ−２７１７６の条件により規定されているように、米国政府は、本発明に関し無償の実施権を有し、かつ一定の状況下において合理的な期間、特許権者に対して他の者に実施許諾を与えるように要求する権利を有する。

他の出願の相互参照
本出願は、２００３年７月９日出願の米国仮特許出願第６０／４８６，０８０号に優先権を主張し、その仮特許出願の内容全体を参照により本明細書に含む。

序論
発明の分野
本発明は、エンドサイトーシス感受性プローブの開発、および細胞エンドサイトーシスの遠隔測定のための方法を提供する。本発明はまた、治療的および診断的有用性を合わせて有するリポソームを提供する。本発明は、治療リポソームのイメージング法をさらに提供する。さらに、本発明は、疾患組織における分子指紋のイメージング、処置、および処置モニタリングを可能とする総合型送達系を可能とする。

発明の背景
常磁性イオンを含むリポソームは、磁気共鳴（ＭＲ）イメージングのための造影剤として研究されてきた。初めの頃の結果は、常磁性イオンの封入効率の悪さ、リポソームの不安定性、特定の封入剤の毒性、および緩和能の悪さなどの障害により妨げられていた（Caride, et al., Magn Reson Imaging, 2: 107−112, 1984; Magin et al., Magn Reson Med, 3: 440−447, 1986; Navon et al., Magn Reson Med, 3: 876−880, 1986; Unger et al., Invest Radiol, 20: 693−700, 1985）。緩和能とは、ＭＲ造影剤が、それが作用する物質の緩和時間を変える特性である。ＭＲイメージングに通常用いられる濃度にて、Ｔ１緩和に主に作用するＭＲ造影剤の効果は、ＭＲ造影剤の濃度に比例して初期緩和率を高める。結果として、Ｔ１０が初期Ｔ１緩和時間であり、ｒ１が緩和能である場合、前記薬剤の存在におけるＴ１緩和時間は、（１／Ｔ１）＝（１／Ｔ１０）＋ｒ１Ｃ［式中、ＣはＭＲ造影剤の濃度である］である。改善された緩和能は、ＭＲイメージング技術により得られた画像のコントラストを改善する結果となる。

使用された最初の方法の１つは、リポソームの水性空間内へのフェライト粒子または常磁性化合物などのＭＲ造影剤の封入であった。封入の利点は、フェライト粒子または遊離マンガンなどのＭＲ造影剤の毒性の低減である。臨床的に承認された造影剤であるガドリニウムジエチレントリアミンペンタ酢酸（ＧｄＤＴＰＡ）を封入しているリポソームの初期のインビトロＭＲ研究は、周囲の水からの常磁性中心の遮蔽により、遊離薬剤と比較して緩和能の減少を示した（Unger et al., Invest Radiol, 23: 928−932, 1988）。しかしながら、直径＜１００ｎｍのリポソームが、より大きな直径のリポソームよりも大きな緩和能を示すことも明らかにされた（Unger et al., MR imaging. Radiology, 171: 81−85, 1989）。これは、より小さなリポソームのより大きな表面積：容積率によって起こり得る、より多くの水のリポソーム膜の通過のためである。小さな単層リポソームに封入されたＧｄ−ＤＴＰＡの緩和能は、１／ｒ（ここで、ｒは、リポソーム膜の半径である）で変化することが発見されている（Tilcock et al., Biochim Biophys Acta, 1022: 181−186, 1990）。しかしながら、次第に小さな直径を有するリポソームを用いる限界は、封入される薬剤の量が二層中の脂質の量と比べて減少することである。コレステロール含有リポソームは、コレステロールなしのリポソームよりも低い緩和能を有することも示された。他の方法は、リポソームの表面への常磁性物質の結合である。常磁性重合リポソーム（ＰＰＬ）は、紫外線を照射したとき架橋する親水性の頭部基としてガドペンテト酸ジメグルミンの誘導体および疎水性アシル鎖のジアセチレン基を有する重合可能な脂質分子の型から合成されていた（Storrs et al., J Magn Reson Imaging, 5: 719−724, 1995）。ＰＰＬ（０．０１５ｍｍｏｌ／ｋｇ Ｇｄ^３＋）を注射したＬｅｗｉｓラットのＭＲ研究は、従来型のリポソームと比較して延長された血中半減期と整合して腎臓および肝臓における増大を示した。このことは、１９時間の血液プール半減期が測定された^１１１Ｉｎ標識ＰＰＬの研究で確認された。より最近の研究では、ＰＰＬをα_νβ_３（腫瘍悪性度と相関を示した内皮細胞インテグリン）に対するビオチン化抗体と結合させた。これらの免疫リポソームを腫瘍担持ラットに注射し、それは注射後２４時間で得られた画像の増強された腫瘍視覚化を示した。いくつかの画像にて、腫瘍血管形成の「ホットスポット」を検出することができた（Sipkins et al., Nat Med,4: 623−626,1998）。

発明の概要
本発明の１つの態様は、非侵襲的な方法（ＭＲＩ、放射性核種、生体内光学的イメージング）により疾患の診断に有用な、例えば、病理細胞によるエンドサイトーシスの遠隔検出のためのリポソームを提供する。そのリポソームは、そのシグナルが目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節される検出可能マーカー、例えば、常磁性金属（例えば、ガドリニウム）キレートと結合したリポポリマーを含み得る。好ましい態様にて、低い水透過性の膜内に封入されたガドリニウムＤＴＰＡ−ＢＭＡ、ガドリニウムＤＴＰＡ、またはガドリニウムＨＰ−ＤＯ３Ａ複合体を含むリポソームは、プロトン緩和能への影響が少ない。エンドサイトーシスにより、前記リポソームは分解され、キレートが放出され、同時に、ＭＲＩ法により遠隔検出されるプロトン緩和能への影響が増加する。あるいは、リポソームは、蛍光消光剤の存在下にまたは自己消光濃度にて封入された蛍光マーカーを伴い作製される。エンドサイトーシスおよび結果として生じたリポソームのリソソーム分解は、レーザーイメージング法により生体内で検出される蛍光の増加を伴う前記マーカーの放出を引き起こす。その検出を、マーカーに特異的な抗体などの細胞内在化可能リガンドの組み込みにより細胞表面マーカー分子を含む細胞に特異的に行う。エンドサイトーシス特異的なシグナル調節を改善するため、前記リポソームを、例えばｐＨ感受性リポポリマーの組み込みにより、低いｐＨなどの細胞内状態に感作性にする。

本発明はまた、（ａ）細胞を、そのシグナルがエンドサイトーシスが起こり得る条件下での目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節される検出可能マーカーと結合させたリポポリマーを含むリポソームと接触させること、そして（ｂ）エンドサイトーシス後の検出可能マーカーのシグナルを検出することを含む、リポソームのエンドサイトーシスの遠隔検出のための方法を提供する。好ましくは、検出可能マーカーは、ガドリニウムＤＴＰＡ−ＢＭＡ、ガドリニウムＤＴＰＡ、またはガドリニウムＨＰ−ＤＯ３Ａを含む常磁性ガドリニウムキレートである。本発明の好ましい態様は、レーザーイメージング法を用いて、蛍光マーカーおよび蛍光消光剤を封入するリポソームのエンドサイトーシスを検出することを含む。

本発明の他の態様は、治療薬および遠隔検出可能マーカーを組合せたリポソームを提供する。リポソームは、好ましくは治療薬およびリポポリマーと結合された遠隔検出可能マーカーを含む。前記治療薬を、リポポリマー−マーカー結合体とリポソームが安定に結合する条件下で結合したリポポリマーと一緒にインキュベートする。好ましい態様には、例えばジステアロイルアミノ−ＰＥＧ−（Ｌｙｓ−Ｇｄ−ＤＯＴＡ）_４などのリポポリマー結合体のキレートが含まれる。薬剤を充填したリポソームとのインキュベーションにより、前記リポポリマーはリポソーム膜にそれ自身固定され、患者の身体におけるリポソーム薬剤の非侵襲的なモニタリングを提供する。好ましい態様にて、前記治療薬はドキソルビシンなどの抗ガン剤である。

さらなる他の態様にて、本発明は、治療薬および遠隔検出可能マーカーを共に封入している改善されたリポソームを提供する。前記治療薬および検出可能マーカーは、イオン結合対のメンバーであり、すなわち、一方が陰イオンである場合、他方は陽イオンであり、またその逆もある。前記対のメンバーは、高効率の「遠隔ローディング」法により他のメンバーの封入を増強する、膜貫通のためのイオン性、化学的または電気的勾配を与える形態でリポソーム中に封入される。要すれば、２つのメンバーは、薬剤封入安定性および／または薬剤有効性も改善する安定なイオン複合体、または塩を形成する。態様の１つの例には、封入された陰イオン性ＭＲＩマーカーであるＧｄ−ＤＴＰＡを、ジアンモニウム塩の形態で有するリポソームが含まれる。リポソーム外のマーカーの除去により、アンモニウムイオンの膜貫通勾配は、同じリポソームにて、ドキソルビシンなどの陽イオン性抗ガン剤の高効率（例えば、＞９５％である）の共ローディングを可能とするように作られる。得られた二重ローディングされたリポソームは、患者における治療薬の非侵襲的なモニタリングを可能とする。

本発明のもう１つの局面は、患者の身体におけるリポソーム薬剤の非侵襲的なモニタリングのための方法である。前記方法には、（ａ）（ｉ）目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節されるシグナルを有する遠隔検出可能マーカー（ここで、該遠隔検出可能マーカーが、リポポリマーと結合されている）、および（ｉｉ）治療薬、を含むリポソームを投与すること、そして（ｂ）遠隔検出可能マーカーのシグナルを検出すること、が含まれる。

本発明の他の局面は、以下の明細書および特許請求の範囲を読むことにより当業者に明らかとなるであろう。

図面の簡単な説明
図１は、リポソーム膜を通過する水の交換がいかに膜を構成する脂質の相転移に非常に敏感であることを示す。 図２は、リポソーム膜の崩壊後のＧｄ^３＋造影剤の放出を示す。キレートの放出、またはより迅速な水の交換に関する膜バリアーの容易な崩壊が、薬剤についての緩和能（Ｒ）の劇的な増加をもたらす。 図３は、その４つのエステル結合のうちの１つの加水分解によりリン脂質を分解するためのホスホリパーゼの作用を示す；ホスホリパーゼＡ２は、ｓｎ−２位を切断し、ホスホリパーゼＣは、リン酸塩のグリセロール側を切断し、そしてホスホリパーゼＤは、リン酸エステルの頭部基側を切断する。 図４は、ポリ（ＮＩＰＡＭ−ｃｏ−ＭＡＡ−ｃｏ−ＤＯＤＡ）の化学的構造を示す。 図５は、ＮＩＰＡＭのコポリマーによるｐＨ誘発放出のメカニズムのスキーム図を提供する。 図６は、グルクロン酸消光Ｇｄ^３＋ＭＲＩ剤の酵素感受性を説明するスキームを提供する（スキーム１）。 図７は、酸加水分解性シトラコニルリンカーを用いたＧｄ^３＋についてのｐＨ感受性ＤＯＴＡキレーターの合成スキームを提供する（スキーム２）。 図８は、様々なｐＨで放出されるリポソーム内容物の成形工程中、ＤＳＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＳＰＥ（３：２：０．０１５）リポソームへのＤＯＤＡ−ポリ（ＮＩＰＡ−ｃｏ−ＭＡＡ）の組込みの効果を示す。リポソームを、様々なｐＨにて３７℃で５分間インキュベートし、その後、３１６ｎｍで励起後に５２０ｎｍでＨＰＴＳについて蛍光光度計で分析した。 図９は、異なるｐＨで放出されるリポソーム内容物の挿入による、ＤＳＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＳＰＥ（３：２：０．０１５）リポソームへのＤＯＤＡ−ポリ（ＮＩＰＡ−ｃｏ−ＭＡＡ）の組込みの効果を示す。リポソームを、様々なｐＨにて３７℃で５分間インキュベートし、その後、３１６ｎｍで励起後に５２０ｎｍでＨＰＴＳについて蛍光光度計で分析した。 図１０は、ビス−カルボキシメチル−ＰＥＧ モノ−（Ｎ，Ｎ−ジオクタデシル）アミドテトラ（カルボベンゾキシ−Ｌ−リシン）結合（ＤＳＡ−ＰＥＧ−（Ｚ−Ｌｙｓ）_４）の合成スキームを提供する（スキーム３）。 図１１は、Ｎ−ＤＯＴＡ−ポリ（エチレングリコール）−ジオクタデシルアミンの合成スキームを提供する（スキーム４）。 図１２は、コレステロール ヘミスクシナチル（hemisuccinatyl）−ポリ（エチレン）グリコールの合成スキームを提供する（スキーム５）。 図１３は、１，２−ジステアロイル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノール−Ｎ−アミノグルタル酸の合成スキームを提供する（スキーム６）。 図１４は、Ｏ−グルタリール−ジオクタデシルグリセロール（グルタリール−ＤＯＧ）の合成スキームを提供する（スキーム７）。 図１５は、マウスにおけるガドリニウムキレート（Ｇｄ−ＤＴＰＡ−ＢＭＡ）を含むリポソームの静脈投与後の、ＢＴ−４７４異種移植腫瘍におけるＭＲＩシグナル強度の変化を図示したものである。ＩＬ８０は、「水透過性」ＤＯＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＰＳＥ（３：１：１）抗ＨＥＲ２標的免疫リポソームであり、サイズは８０ｎｍである；ＩＬ５０は、「水透過性」ＤＯＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＰＳＥ（３：１：１）抗ＨＥＲ２標的免疫リポソームであり、サイズは５０ｎｍである；ＩＭＰＬｆ５は、「水不透過性」ＤＳＰＣ／ＤＰＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＰＳＥ（２．２：０．３：２：０．３）抗ＨＥＲ２標的免疫リポソームであり、サイズは約７５ｎｍである；ＩＭＰＬｎｔは、「水透過性」ＤＳＰＣ／ＤＰＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＰＳＥ（２．２：０．３：２：０．３）非標的免疫リポソームであり、サイズは約７５ｎｍである。 図１６は、ＨＥＲ２過剰発現ＳＫＢＲ３細胞に対する、遊離ドキソルビシン（“ＤＯＸ”）、Ｆ５ｓｃＦｖ−標的免疫リポソーム ドキソルビシン、またはＧｄ−ＤＴＰＡと共封入された非標的リポソーム ドキソルビシンのインビトロ細胞毒性を図説する。 図１７は、薬剤のローディングを補助する勾配を形成するための成分としてＴＥＡ−Ｇｄ−ＤＴＰＡを用いて充填されたリポソームにおけるドキソルビシン封入の血漿安定性を図示する。ドキソルビシン対リン脂質割合の変化が、リポソームからのドキソルビシンの喪失を示す。そのリポソーム試料を、３７℃における微量透析分析にて５０％ヒト血漿と一緒にインキュベートする。 図１８は、薬剤のローディングを補助する勾配を形成する成分としてＴＥＡ−Ｇｄ−ＤＴＰＡを用いて充填されたリポソームにおけるガドリニウム封入の血漿安定性を図示する。Ｇｄの量は、界面活性剤（トライトンＸ−１００）によるリポソームの分離後のプロトン緩和能の測定により計測される。Ｇｄ対リン脂質割合の変化は、リポソームからのＧｄの喪失を示す。前記リポソーム試料を、３７℃における微量透析分析にて５０％ヒト血漿と一緒にインキュベートする。

詳細な説明
例えば、常磁性または超磁性ＭＲＩプローブなどの遠隔検出可能なプローブは、腫瘍細胞結合および内在化によりシグナル生成（“オン”）を可能とするように、非シグナリング（“オフ”）構造でリポソーム内部に封入され得る。内在化は、非特異的または特異的な受容体仲介エンドサイトーシスの結果であり得る。リガンド受容体認識および腫瘍細胞内在化に基づく標的プローブ送達は、ガン細胞の主要かつ機能的分子特性を検出するための強力な方法を提供する。これらの修飾は、表面結合放射性核種および内部封入ＭＲＩ剤の両方を有する多機能の免疫リポソームリポーター内に容易に結合され得る。この免疫リポソームリポーターは免疫リポソーム薬剤と同じモジュール構造およびターゲティング技術に基づくため、その２つを、イメージング、処置、および処置モニタリングのための密接に統合された方法における使用のために共に開発することができる。

本発明は、標的細胞における内在化および放出により遠隔シグナリングを可能とする診断リポソームを提供する。この方法は、例えば、患者の身体内の細胞における病理学的マーカーの存在に依存するエンドサイトーシスの遠隔検出を可能とし、その目的のために、エンドサイトーシスによって誘発される検出可能シグナルを有するリポソームを、リガンド依存性の細胞内送達のための標的と結合する。本方法は、非侵襲的な方法で身体の疾患状態を検出するのに有用である。

本発明はまた、治療的および診断的有用性を合わせて有するリポソームを提供する。１つの好ましい態様にて、リポソームを治療薬と一緒に充填する。次に、前記リポソームを、リポソームと安定な結合となるようにリポポリマーが結合するのを可能とする条件下で、遠隔検出可能な官能基と結合したリポポリマーと接触させる。治療薬の一例は、細胞毒性の抗ガン剤または遺伝子であり、診断化合物は、ガドリニウム（ＩＩＩ）などの常磁性イオン、またはガリウム６７もしくはインジウム１１１などの放射活性イオンと結合した脂質−ポリ（エチレングリコール）−キレーター結合複合体などの遠隔検出可能なリポポリマー複合体である。故に、かかるリポソームの例は、非侵襲的な放射活性走査または磁気共鳴イメージング（ＭＲＩ）により患者の腫瘍への処置剤の送達を医者がモニタリングするのを可能とし、その結果、それぞれの患者のための治療法を最適化することができるであろう。好ましくは、遠隔検出特性を有する前記診断化合物、および治療化合物が、イオン的に結合する一対のメンバーであり、すなわち、一方が陰イオンであるとき、他方が陽イオンであり、またはその逆である。かかるイオン的に結合する対の１つのメンバーを、その後の“活性ローディング”法による第二のメンバーのローディングを補助し得る膜貫通イオンまたは電気化学勾配を生じるような方法で、まず初めにリポソームに充填する。例えば、ＭＲＩ造影特性を有する遠隔検出化合物は、ジアンモニウムガドリニウムジエチレントリアミンペンタ酢酸（ＮＨ_４）_２Ｇｄ−ＤＴＰＡであり得る。リポソームに封入され、さらにリポソーム外媒体から除去されるとき、この化合物はまた、Ｇｄ−ＤＴＰＡとイオン対を形成する陽イオン性抗ガン剤であるドキソルビシンの高効率（事実上定量的）共ローディングをもたらすアンモニウムイオン勾配を提供する。驚いたことに、この方法にて、高充填治療薬および高充填遠隔マーカーを有するリポソームを効率よく作製することができることが発見された。これらの二重に充填したリポソームを、自己報告（self−reporting）として、遠隔検出可能な薬剤自体、またはリガンド特異的に病理細胞を標的とした組合せに用いることができる。

細胞内在化に感受性を有する遠隔検出可能なプローブを封入するリポソーム
上記のように、本発明の１つの局面は、目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節されるシグナルを有する検出可能マーカーを含む、エンドサイトーシスの遠隔検出のためのリポソームである。好ましくは、前記検出可能マーカーは、常磁性金属キレートであるかまたはガドリニウムＤＴＰＡ−ＢＭＡ、ガドリニウムＤＴＰＡ、またはガドリニウムＨＰ−ＤＯ３Ａなどのリポポリマーと結合した常磁性金属キレートである。前記リポソームは低い水透過性の膜を含み得、前記検出可能マーカーは蛍光マーカーであり得る。前記検出可能マーカーが蛍光マーカーであるとき、それは自己消光濃度で存在し得るかまたはリポソームが蛍光消光剤をさらに含む。好ましくは、前記リポソームは、ｐＨ感受性リポポリマーを含む。

多数の研究により、蛍光プローブおよび治療薬の細胞内放出を増大するためのｐＨ感受性または還元依存性リポソームの開発に至った（Chu et al., Pharm. Res. 7, 824−834, 1990; Drummond et al., Biophys. J. 64, A72, 1993; Drummond et al., Biophys. J. 72, A13, 1997; Drummond et al., Progress in Lipid Research 39, 409−60, 2000; Dauzgaunes et al., Biochemistry 24, 3091−3098, 1985; Dauzgaunes et al., (1991) in Membrane Fusion (Wilschut, J. and Hoekstra, D., eds.), pp. 713−730, Marcel Dekker, Inc., New York; Kirpotin et al., FEBS Lett. 388, 115−118、1996; Leroux et al., J. Controlled Rel. 72, 71−84, 2000; Meyer et al., FEBS Lett. 421, 61−64, 1998; Straubinger et al., FEBS Lett。179、148−154, 1985; ＆ Zignani et al., Biophys. Acta 1463, 383−394, 2000）。これらの研究は、インビボにおける好ましい薬物動態学的特性を維持しながらの、細胞内放出についての重要な方法に関する手引きを提供する。これまでにｐＨ感受性リポソームおよびエンドサイトーシス感受性リポソームの設計には、リポソーム表面の多数の修飾が必要とされ、結果として静脈内投与による急速な除去が起こり、故に利用可能性が制限されていた。しかしながら、本発明は、膜表面の大幅な修飾を必要とすることなく全体の薬剤をｐＨまたは酵素感受性にし、よってリポソーム担体がその好ましい薬物動態学的特性を維持することを可能とするためのいくつかの方法を提供する。本発明は、結果として造影剤、すなわち検出可能マーカーの漏出をもたらすか、もしくは水の透過性を単に増大するリポソーム膜自体の酵素感受性か、またはリポソームの内部で保護された消光剤の酵素またはｐＨ感受性に依存する。これらの方法は、プローブが治療薬としてのいくつかの薬物動態学的特性を有することを可能とし、故にこの薬剤による処置の適切性が事実上予測される。

コレステロールおよび高い相転移の脂質からなるＧｄ^３＋含有リポソームは、これらの膜を通過する水のゆっくりした拡散のために、Ｇｄ^３＋の比較的低い緩和能を示す。しかしながら、コレステロールおよび低い相転移のリン脂質（それらは理論的には３７℃で液晶相である）からなるリポソームは、高い緩和能およびＭＲＩにより容易に検出可能なシグナルを示す。２つの調製物間のＴ１の差違は、約１２倍であった。実際には、単一の生体内分布および腫瘍局在の目的に関して、これらのリポソームは、それらの増大したシグナル強度のために好適である。しかしながら、効率的に消光されるシグナルは、高い相転移のリポソームの場合、プローブがリポソーム担体から放出されるまで検出可能シグナルを“囲う”ための特異な機会を提供する。図１を参照、これは、３７℃で一般的にゲル相であるリン脂質からなるリポソームはリポソーム膜を通過する水の比較的ゆっくりとした拡散を有し、結果として非常に低下した緩和能を生じ、故に効率よくＧｄ^３＋プローブを消光することを記載する。しかしながら、一般に、液晶相（より液体状態）であるリン脂質からなるリポソームは、リポソーム膜を通過する水の流速の著しい増加、およびそれ故の増強された緩和能を有する。

本発明の１つの態様にて、このことは、受容体過剰発現ガン細胞およびエンドサイトーシスによるリガンド標的リポソームの認識に一致する。エンドサイトーシスにより、脂質膜はリソソーム中で分解され、効率的にマーカー、すなわち、ＭＲＩプローブを“囲いから出し”、結果として検出可能なシグナルのかなりの増加となり得る。実際には、リポソーム担体は、Ｇｄ^３＋キレートが担体内から漏出し得る程度まで分解される必要はないが、膜を通過する水のより迅速な交換を可能とする程度まで分解される必要がある（図２）。故に、リポソームを結合し、かつ内在化する細胞のみが、この技術を用いて効果的にイメージングされ得る。

多くの研究が、マクロファージ、繊維芽細胞、内皮細胞、および腫瘍細胞による内在化後の、脂質、および封入または結合タンパク質どちらかの両方の分解を証明している（Straubinger et al., 1983; Dijkstra et al., Exp. Cell Res. 150, 161−176, 1984; Jett et al., Cancer Res. 45, 4810−4815, 1985; Storm et al., Biochim. Biophys. Acta 965, 136−145, 1988; Derksen et al., Biochim. Biophys. Acta 971, 127−136, 1988; Trubetskaya et al., FEBS Lett. 228, 131−134, 1988; Chu et al., Pharm. Res. 7, 824−834, 1990）。リポソームからのドキソルビシンの増大された放出は、腹腔マクロファージの取り込み後に見られ、集められた上清は、かなりの増殖阻害活性を有することが示された（Storm et al., Biochim. Biophys. Acta 965, 136−145, 1988）。分解率はリポソームの脂質組成に依存して変化し、高い相転移リン脂質（遅い放出）を含むリポソームは、低い相転移リン脂質を含むリポソームよりもゆっくりと分解された（rapid−release; Storm et al., Biochim. Biophys. Acta 965, 136−145, 1988）。

本発明のもう１つの態様は、ｐＨ感受性コポリマーで修飾された低下した透過性のリポソームを提供する。ｐＨ応答性コポリマーは、それらが、ほとんどすべての組成物のリポソームの製造に用いられ得るために、薬物動態学における修飾および内容物漏出の影響を低下させる点で、ｐＨ感受性リポソームを作製するための多くの他の方法よりも有利である。酸滴定の結果、ポリマー構造の修飾およびリポソーム膜とのその結合が起こり、結果としてその不安定化および内容物漏出をもたらす（図５）。Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡＭ）およびメチルアクリル酸（ＭＡＡ）のコポリマーは、ｐＨ感受性コポリマーの一例として用いられている。これらのコポリマーは、オクタデシルアクリレート（ＯＤＡ）などの疎水性アンカーを用いてリポソーム膜に固定され得る。これらのコポリマーであるポリ（ＮＩＰＡＭ）ｃｏ−ＭＡＡ−ｃｏ−ＯＤＡの１つの例を、図４に示す。ｐＨ感受性コポリマーの他の例には、スクシニル化ポリ（グリシドール）、ポリ（アクリル酸）誘導体、およびポリ（ヒスチジン）が含まれる。

酵素的に囲われた常磁性キレート
本発明の他の態様にて、ｐＨまたは酵素感受性遮蔽基を、キレート化イオンの常磁性特性を“囲う”ために用いることができる。低いｐＨ、またはリソソームもしくは後期エンドソームなどの細胞内オルガネラにある酵素への曝露による遮蔽基の細胞内への放出は、水分子の緩和能に変化をもたらすであろう。ミード（Ｍｅａｄｅ）と同僚は、最近、ＭＲＩを用いて非侵襲的にβ−ガラクトシダーゼ遺伝子の発現を検出するために用いられたβ−ガラクトシダーゼ感受性Ｇｄ^３＋キレーターについて記載している（Moats et al., Angew Chem. Intl. Edn. Engl., 726−728, 1997; Louie et al., Nature Biotechnology 18, 321−5, 2000）。この化合物において、ガラクトピラノース分子は、前記キレーターにＧｄ^３＋の最後の配位部位を水から遮蔽するように結合され、かつ配置され、故に３つまでの因子による緩和能を効果的に低下させる。ガラクトピラノース分子の加水分解は、この最後の配位部位の利用可能性および緩和能の増加をもたらす。グルクロニダーゼにより切断され得る同じシリーズの化合物が合成され、それらは緩和能に同じく効果があることが証明された。グルクロニダーゼは、リソソームおよびおそらく細胞の後期エンドソームに存在し（Dutton, (1966) Glucuronic acid, free and combined, Academic Press, New York; Fishman, (1970) Metabolic conjugation and metabolic hydrolysis ,Academic Press、New York）、故に、エンドサイトーシスが起こったことを示す有効なトリガーとなり得る。それはまた、腫瘍から放出され；その後、腫瘍間質にあることが示された。しかしながら、細胞外に誘導されたグルクロニダーゼを利用するのではなく、リソソーム酵素を利用するリポソーム内部への結合キレーターの封入は、酵素がその基質に近づくために脂質バリアーの破壊を必要とするため、エンドサイトーシスによりシグナルを増幅するだろう。

ｐＨにより囲われた常磁性キレート
最後に、陽電子放射断層撮影（ＰＥＴ）、電子常磁性共鳴（ＥＰＲ）イメージング、およびＭＲＩによる非侵襲的なイメージングのためのｐＨ感受性プローブが、記載されている（Helpern et al., Magnetic Resonance in Medicine 5, 302−5, 1987; Morikawa et al., Investigative Radiology 29, 217−23, 1994; Mehta et al., Bioconjugate Chemistry 7, 536−40, 1996; Khramtsov et al., Cellular & Molecular Biology 46, 1361−74, 2000; Mikawa et al., Journal of Biomedical Materials Research 49, 390−5, 2000; Witt et al., Biomaterials 21, 931−8, 2000）。水素イオンに対して半透性膜のリポソームへのこれらの薬剤の封入（Biegel et al., Biochemistry 20, 3474−3479, 1981; Clement et al., Biochemistry 20, 1534−1538, 1981）は、インビボでのエンドサイトーシスの非侵襲的な検出を可能とするだろう。カルセインおよびピラニンを含むｐＨ感受性蛍光プローブは、蛍光顕微鏡により定性的にかまたは蛍光比イメージングにより定量的にエンドサイトーシスを観察するために細胞培養にて従来から用いられている（Daleke et a., Biochim. Biophys. Acta 1024, 352−366, 1990; Straubinger et al., Biochemistry 29, 4929−4939, 1990; Lee et al., Biochemistry 32, 889−899, 1993; Kirpotin et al., Biochemistry 36, 66−75, 1997）。しかしながら、リポソームのエンドサイトーシスの非侵襲的なインビボモニタリングは、困難な問題を有している。本発明は、既述の酵素感受性リンカーと同様の方法でＧｄ^３＋−ＤＴＰＡキレートを可逆的に“囲う”ための、ｐＨ感受性シトラコニル（citraconyl）−（スキーム２、図７記載）またはヒドラジドまたはリンカーを記載する。

シトラコニルと結合した結合体の合成に関して、Ｎ−ブロモスクシンイミドを等モル量の無水シトラコン酸と合わせ、その後、四塩化炭素中の触媒量のベンゾイルペルオキシド（反応開始剤）を加えた。混合物を加熱台の上に移し、反応物を一晩還流し、２−無水ブロモシトラコン酸（ＩＩ）を形成させた。精製した産物を減圧蒸留後に回収し、最終収量が６０％であった。１，４，７，１０−テトラシクロドデカン−１，４，７−トリス（酢酸ｔ−ブチルエステル）（I, Macrocyclics; Dallas, TX）を、精製した２−無水ブロモシトラコン酸（ＩＩ）で誘導体化し、中間体ＩＩＩを形成させることができた。その後、シトラコン酸の官能基を、取り込まれたグルコサミンおよびガドリニウムと反応させ、ｐＨ感受性Ｇｄ−ＤＯＴＡ造影剤（ＩＶ）を形成させ得る。リソソームまたは後期エンドソームに見られるような酸性条件下、シトラコン酸リンカーを分子内反応に付し、その結果消光剤（グルコサミン）および遊離Ｇｄ−ＤＯＴＡキレートの放出を生じる。

ガドリニウムのポリアミノポリカルボキシルキレートの非キレート基は、結合した水分子の交換可能性に実質的な影響を有しており、この現象をｐＨ応答性のガドリニウムプローブの構築に用いることができることが示されている（Zhang et al. Invest. Radiol. 36:82−86, 2001）。Ｇｄ−ＤＯＰＡ複合体のカルボキシル基と結合したポリオール（ガラクトース）が、常磁性コアへの水の到達を阻害することにより緩和能を低下し、そしてこれらのポリオール基の除去によりＧｄ−ＤＯＴＡ複合体の高い緩和能が回復することが示されているミードの基（Louie、et al.、Nature Biotechnology 18、321−5、2000）. Willner, et al. （Bioconj. Chem. 4 ,521−527 ,1993）は、中性ｐＨで比較的安定であって、エンドソームおよびリソソームに一般的なｐＨ５．０−５．５で分離するヒドラゾン結合を用いる生体結合体で示されている。生体分子の“ｐＨ囲い込み(caging)”法は、一般に証明されている（Drummond, 2001）。本発明は、エンドサイトーシス検出プローブ（その緩和能は、エンドソームおよび／またはリソソームの酸性環境にて不可逆的にかつ極めて増大する）を作製する“ｐＨで囲われた”常磁性キレートを提供する。そのため、ＤＴＰＡモノ−およびビス−ヒドラジドを、無水エタノール中でＤＴＰＡ環状無水物（ＤＴＰＡ−ｃａ）と１または２当量のヒドラジンを反応させることにより合成する。モノおよびポリ置換ＤＯＴＡヒドラジドを、ジオキサン／ジメトキシエタン中ＤＣＣの存在下で調製したＤＯＴＡのＮＨＳ−エステルへのヒドラジンの作用により合成することができる。これらのヒドラジドキレーターを、常套的な方法でガドリニウムに結合させることができる。異なるカルボニル反応基を有するポリオール基を担持するカルボニルを、ＤＭＦ中トリエチルアミンの存在下にてケト酸（レブリン酸、アセト酢酸、またはピルビン酸）のＮＨＳエステルとアミノ糖（グルコサミン、ガラクトサミン）を反応させることにより調製することができる。“囲われた”結合体を、アルコール中、糖ケトアシルアミドのケト酸基とヒドラジドキレートのヒドラジド基間にヒドラゾン結合を形成することにより製造することができる。

遮蔽方法は、非内在化リポソームからの基準シグナルを抑制するのに十分であり得る。しかしながら、シグナルの増加がｐＨまたは酵素感受性ＭＲＩプローブを含む非遮蔽リポソームを用いて２〜４倍しか達成されないならば、この相違のみでは標的細胞における十分なシグナル調節をもたらすことはできない。とりわけ見込みがあると思われる方法は、上記の比較的不透過性のリポソーム（“ＩＬ”）膜の内在化により誘発されるエンドソーム分解を伴う。本研究者らの初期の研究は、内在化対非内在化ＩＬを区別するための実質的な能力を提供する本方法のシグナルの少なくとも２０倍の増加を示唆する。この増加は、標的部位特異的に活性化されたイメージング剤を用いる他の方法で報告されるよりも数倍大きい。組合せた方法が、とりわけ強力であり得る：記載したリポソーム遮蔽方法を、同様に本質的に活性化可能な封入プローブと併用することができ、結果として可能性のある添加剤またはシグナル強度における相乗効果をもたらす。

蛍光マーカーとは、本発明のリポソームに用いるために好適な遠隔検出可能マーカーのもう１つの群である。遠赤色光または光スペクトルの赤外領域に最大励起を有するマーカーが、当技術分野で公知の生体の赤外線レーザーイメージング系を用いることができる組織を通る励起および発光放射線のより深部への侵入のためにとりわけ好適である。インドカルボシアニン緑などのカルボシアニン色素（血管イメージングおよび心血管診断に用いられる蛍光色素）が、とりわけ好適である。２ｍＭ以上の濃度でリポソームに内包されるとき、これらの色素は、リポソームからの放出による蛍光の増大が驚くほど大きい。特定の作用機序に制約されることなく、この現象はリポソームに封入される色素の自己消光により理論的に説明され得る。目的の細胞によるエンドサイトーシスにより、かかるポソームは分解され、色素が放出され、そして細胞のかかる取り込みの存在を示す蛍光が経時的に増加する。

細胞特異的イメージングおよび薬剤送達のための放射性核種またはＭＲＩ剤結合リポソーム
あるリガンドを取り込むための細胞の能力は、これらの細胞の病理学的性質を決定するのに役立ち、故に、疾患の診断および／または処置を改善するのに役立つ。本発明により、エンドサイトーシス感受性リポソームプローブを、ガン細胞に特異的なリガンドへの付着によりガン細胞などの特定の型の細胞に特異的で、かつ好ましくは、エンドサイトーシスも高効率で誘導するように作製する。細胞特異的リガンドおよびそれらの認識分子の種類は、当技術分野でよく知られている。１つの好ましい場合にて、かかるリガンドは、抗体および抗体断片である。抗体または抗体断片と結合したリポソームを、免疫リポソームと称す。

効率的な結合方法は、比較的非反応性のリポソームを標的細胞内在化可能免疫リポソームに形質転換するために必須である。抗体および抗体断片などの標的基とリポソームの結合は、いかなる公知の方法または当技術分野で公知となる方法によっても達成され得る。例えば、前もって成形した薬剤を充填したリポソームに、抗体断片などのタンパク質の結合を２工程で行うミセル取り込み法が、既述［米国特許番号第６，２１０，７０７号（それは、参照により本明細書に含まれる）、およびKirpotin et al., 1999の図２ｃを参照のこと］である。本方法によれば、Ｆａｂ’またはｓｃＦｖなどの断片をまず、溶液中、末端に誘導体化されたＰＥＧ−ホスファチジルエタノールアミンリンカーと共有結合させ、ミセル形成免疫結合体を生じさせる。次に、前記結合体を、薬剤を充填したリポソーム中に共インキュベーションにより組み込み、ＰＥＧ鎖の末端に共有結合したＭＡｂ断片を生じさせ、リポソーム表面にそれらの脂質基を介して固定した。本方法により産される抗ＨＥＲ２ ＩＬ−ドキソルビシンは、結合、内在化、および前記の方法により産される抗ＨＥＲ２ ＩＬ−ドキソルビシンに対するインビボ効果にて同等であって、ここでＭＡｂ断片は、官能基部位を含む特別に構築されたリポソームと結合された（Park et al., J. Control.Release (suppl.), 74: 95−113, 2001)。同様の“ミセル挿入”法を、ペプチドおよびオリゴ糖（oligisaccharide）などのより小さな標的リガンドのリポソーム付着に適用することができる(Zalipsky et al., 1998）。

本発明は驚くべきことに、例えば、ポリアルキルエーテル、例えば、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ化脂質）で誘導体化される脂質などの異なるリポポリマーと共有結合されたキレート化イメージング剤が、そのイメージング能の損失のなく、かつリポソーム封入薬剤の損失なく、前もって成形したリポソームまたは他の脂質に基づく微粒子に結合することを証明する。かかるリポポリマー結合遠隔検出プローブとの共インキュベーションは、標的もしくは非標的リポソームまたはリポソーム治療薬を、様々な分子事象、一般的には生体内分布、または治療有効性を報告し得るイメージング剤へ効率よく変換する。これは、イメージング剤へのリポソーム送達系の変換に新規かつ有効な方法である。リポポリマーに固定されたキレート剤系には、様々な脂質アンカーおよび連結基が含まれる。例えば、ジステアリールアミド（Ｃ１８）基などのジ（Ｃ１２−Ｃ２０）アルキルアミド、コレステロールなどのステロール、およびジステアロイルホスホコリンなどのジ（Ｃ１２−Ｃ２０）−アシルグリセロール誘導体は、好適な脂質アンカーである；ポリ（エチレングリコール）などのポリ（アルキルエーテル）は親水性ポリマーに適し、ＮＴＡ、ＥＤＴＡ、ＤＴＰＡ、ＤＯ３ＡまたはＤＯＴＡ、ならびにそれらの類似体（例えば、ホスホン酸類似体）および誘導体は放射性核種または常磁性金属イオンのためのキレート基に適する。

上記のように、本発明の他の局面は、（ａ）遠隔検出可能マーカー、および（ｂ）治療薬を含むリポソームである。リポソームは上記のように構成され、検出可能マーカーが、目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節されるシグナルを有する検出可能マーカーであり、治療薬が抗ガン剤である。１つの態様にて、治療薬および検出可能マーカーはイオン結合対のメンバーであり、すなわち、リポソーム内部にて、一方が陰イオンの形である場合、他方は陽イオンの形であり、またはその逆である。前記一対のメンバーはまず、高効率の“遠隔ローディング”法により他のメンバーの封入を増大する膜貫通のためのイオン、化学、または電気化学勾配を提供する形態でリポソームに封入される。要すれば、２つのメンバーは、安定な、例えば、沈殿またはゲル様のイオン複合体、または塩を形成し、薬剤封入の安定性および／または薬剤有効性も改善する。驚くべきことに、治療薬、例えば抗ガン剤とのかかるイオン対のメンバーとして、マーカー、例えばＧｄ−ポリアミノポリカルボキシル酸常磁性キレートが、その検出能力を大部分保持していることが発見された。多様な陰イオン性常磁性キレートが、薬剤−マーカーイオン対のメンバーとして適する。例えば、ポリアミノポリカルボン酸（ニトリロ三酢酸（nitrilotroacetate）、エチレンジアミンテトラ酢酸、ジエチレントリアミンペンタ酢酸）の常磁性金属複合体、その陰イオン誘導体およびホスホン酸類似体が適する。一般に、陰イオン性常磁性複合体の溶液、例えば、遊離酸の形態、緩衝（例えば、アルカリで部分的に中和された）酸溶液、またはアンモニウムもしくは置換アンモニウム塩の形態のキレートが、リポソームへの封入に最初に用いられる。陰イオン性常磁性複合体溶液の濃度は、一般に、少なくとも０．０１Ｍであるが、少なくとも０．０５Ｍ、０．１Ｍ、または０．２Ｍであって良く、そして上限は常磁性複合体の溶解性により変わるが、通常、１．０Ｍまたは２．０Ｍまでであり、一般に３．０Ｍ未満である。陰イオン性常磁性金属複合体は、いずれかの適した方法により、例えばこの溶液中への脂質の水和によりリポソームに封入され、続いて、機械的な剪断または膜排出により微粉化される。その後、リポソーム外のキレートを通常、例えば、透析またはゲルろ過により除去し、リポソームを、薬剤が共封入されるために十分な時間の間、緩衝または非緩衝水溶液中でインキュベートする。一般に、約５分から約２時間のインキュベート時間で、かつ周囲温度（約２０℃）から約８０℃が、薬剤の共封入を効率的にするために適する。リポソーム系と混合可能ないずれかの治療薬が有用である場合、電離により陽イオン電荷を達成し得る薬剤、例えばドキソルビシンなどが好ましいことが発見されている。本発明に適する他の治療薬は、例えば、“Goodman and Gilman’s The Pharmacological Basis of Therapeutics,” Tenth Edition, edited by Hardman and Limbirdに記載されている。１３８１−１４６０頁の抗ガン剤が有用である。これらの頁は参照により本明細書に含まれる。本質的に両性の治療薬が特に有用である。

本発明に有用な抗ガン剤には、以下に列記するものが含まれる。
構造に基づく群：フルオロピリミジン−５−ＦＵ、フルオロデオキシウリジン、フトラフール、５’−デオキシフルオロウリジン、ＵＦＴ、ｓ−１カペシタビン；ピリミジンヌクレオシド−デオキシシチジン、シトシンアラビノシド、５−アザシトシン、ゲムシタビン、５−アザシトシン−アラビノシド；プリン−６−メルカプトプリン、チオグアニン、アザチオプリン、アロプリノール、クラドリビン、フルダラビン、ペントスタチン、２−クロロアデノシン；プラチナ類似体−シスプラチン、カルボプラチン、オキサリプラチン、テトラプラチン、プラチナ−ＤＡＣＨ、オルマプラチン、ＣＩ−９７３、ＪＭ−２１６；アントラサイクリン／アントラセンジオンおよび誘導体−エピルビシン、ドキソルビシン、ダウノルビシン、マイトマイシンＣ、ピラルビシン、ルビドマイシン、カルシノマイシン、ｎ−アセチルアドリアシン、ルビダゾン、５−イミドダウノマイシン、ｎ−アセチルダウノマイシン、ダウノリリン（ｄａｕｎｏｒｙｌｉｎｅ）、マイトキサントロン；エピポドフィロトキシン−エトポシド、テニポシド；カンプトテシンおよび誘導体−イリノテカン、トポテカン、ルウトテカン（ｌｕｒｔｏｔｅｃａｎ）、シラテカン（ｓｉｌａｔｅｃａｎ）、９−アミノカンプトテシン、１０，１１−メチレンジオキシカンプトテシン、９−ニトロカンプトテシン、ＴＡＳ １０３、７−（４−メチル−ピペラジノ−メチレン）−１０，１１−エチレンジオキシ−２０（Ｓ）−カンプトテシン、７−（２−Ｎ−イソプロピルアミノ）エチル）−２０（Ｓ）−カンプトテシン、７−エチルカンプトテシン、１０−ヒドロキシカンプトテシン、９−ニトロカンプトテシン、１０，１１−メチレンジオキシカンプトテシン、９−アミノ−１０，１１−メチレンジオキシカンプトテシン、９−クロロ−１０，１１−メチレンジオキシカンプトテシン、（７−（４−メチルピペラジノメチレン）−１０，１１−エチレンジオキシ−２０（Ｓ）−カンプトテシン、７−（４−メチルピペラジノメチレン）−１０，１１−メチレンジオキシ−２０（Ｓ）−カンプトテシン、７−（２−ｎ−イソプロピルアミノ）エチル）−（２０Ｓ）−カンプトテシン；ホルモンおよびホルモン類似体−ジエチルスチルベストロール、タモキシフェン、トレメフィン（ｔｏｒｅｍｅｆｉｎｅ）、トルムデックス（ｔｏｌｍｕｄｅｘ）、チミタック（ｔｈｙｍｉｔａｑ）、フルタミド、ビカルタミド、フィナステリド、エストラジオ−ル、トリオキシフェン、ドロロキシフェン（ｄｒｏｌｏｘｉｆｅｎｅ）、酢酸メドロキシプロゲステロン、酢酸メゲステロール、アミノグルテチミド、テストラクトンおよびその他；酵素、タンパク質および抗体−アスパラギナーゼ、インターロイキン、インターフェロン、ロイプロイド、ペグアスパルガーゼ、およびその他；ビンカアルカノイド−ビンクリスチン、ビンブラスチン、ビノレルビン、ビンデシン；タキサン−パクリタキセル、ドセタキセル。

作用に基づく群：抗ホルモン剤−ホルモンおよびホルモン類似体の分類を参照のこと、アナストロゾール；葉酸拮抗剤−メトトレキサート、アミノプテリン、トリメトレキサート、トリメトプリム、ピリトレキシム、ピリメタミン、エダトレキセート、ｍｄａｍ；抗微小管剤−タキサンおよびビンカアルカノイドおよび誘導体；アルキル化剤（古典的および非−古典的）−窒素マスタード（メクロルエタミン、クロラムブシル、メルファラン、ウラシルマスタード）、オキサザホスホリン（イホスファミド、シクロホスファミド、ペルホスファミド、トロホスファミド）、アルキルスルホン酸（ブスルファン）、ニトロソウレア（カルムスチン、ロムスチン、ストレプトゾシン）、チオテパ、ダカルバジンおよびその他；代謝拮抗薬−プリン、ピリミジンおよびヌクレオシド（上述）；抗生物質−アンスラサイクリン／アントラセンジオン、ブロマイシン、ダクチノマイシン、マイトマイシン、プリカマイシン、ペントスタチン、ストレプトゾシン；トポイソメラーゼ阻害剤−カンプトテシンおよび誘導体（トポＩ）、エピポドフィロトキシン、ｍ−ＡＭＳＡ、エリプチシンおよび誘導体（トポＩＩ）、エリプチシン、６−３−アミノプロピル−エリプチシン、２−ジエチルアミノエチル−エリプチシニウムおよびその塩、ダテリプチウム（ｄａｔｅｌｌｉｐｔｉｕｍ）、レテリプチン（ｒｅｔｅｌｌｉｐｔｉｎｅ）；抗ウイルス薬−ＡＺＴ、ザルシタビン、ゲムシタビン、ジダノシン、およびその他；多様な細胞毒性薬−ヒドロキシ尿素、ミトタン、融合トキシン、ＰＺＡ、ブリオスタチン、レチノイド、酪酸および誘導体、ペントサン、フマジリン、およびその他。

上記に加え、抗ガン剤には、任意のトポイソメラーゼ阻害剤、ビンカアルカノイド、例えば、ビンクリスチン、ビンブラスチン、ビノレルビン、ビンフルニン、およびビンポセチン、微小管脱重合剤または不安定化剤、微小管安定化剤、例えば、タキサン、パクリタキセルまたはドセタキセルのアミノアルキルまたはアミノアシル類似体、例えば、２’−［３−（Ｎ，Ｎ−ジエチルアミノ）プロピオニル］パクリタキセル、７−（Ｎ，Ｎ−ジメチルグリシル）パクリタキセル、および７−Ｌ−アラニルパクリタキセル、アルキル化剤、受容体−結合剤、チロシンキナーゼ阻害剤、ホスファターゼ阻害剤、サイクリン依存性キナーゼ阻害剤、酵素阻害剤、オーロラキナーゼ阻害剤、ヌクレオチド、ポリヌクレオチド（polynicleotide）、およびファルネシルトランスフェラーゼ阻害剤が含まれるが、それらに限定されない。
本発明のリポソーム組成物に含まれる他の治療薬には、ワートマニン（ｗｏｒｔｍａｎｎｉｎ）、その類似体および誘導体、またはオーロラキナーゼ阻害タンパク質を有するピラゾロピリミジン化合物が含まれる。

上位局面にて、本発明のリポソームの使用に適する治療薬には、いくつかの以下：抗ヒスタミンエチレンジアミン誘導体（ブロムフェニファミン、ジフェンヒドラミン）；抗原虫薬：キノロン（ヨードキノール）；アミジン（ペンタミジン）；駆虫薬（ピランテル）；抗−住血吸虫薬（oxaminiquine）；抗菌剤トリアゾール誘導体（ｆｌｉｃｏｎａｚｏｌｅ、イトラコナゾール、ケトコナゾール、ミコナゾール）；抗菌性セファロスポリン（セファゾリン、セフォニシド、セフォタキシム、セフォタジミド（ceftazimide）、セフォキシム（cefuoxime））；抗菌性ベータ−ラクタム誘導体（アズトレパム、セフメタゾール、セフォキシチン）；エリスロマイシン群の抗菌剤（エリスロマイシン、アジスロマイシン、クラリスロマイシン、オレアンドマイシン）；ペニシリン（ベンジルペニシリン、フェノキシメチルペニシリン、クロキサシリン、メチシリン、ナフシリン、オキサシリン、カルベニシリン）；テトラサイクリン；他の抗菌性抗生物質、ノボビオシン、スペクチノマイシン、バンコマイシン；抗抗酸菌薬：アミノサリチル酸（salicyclc acid）、カプレオマイシン、エタンブトール、イソニアジド、ピラジナミド、リファブチン、リファンピン、クロファジメ（ｃｌｏｆａｚｉｍｅ）；抗ウイルス性アダマンタン：アマンタジン、リマンタジン；キニジン誘導体：クロロキン、ヒドロキシクロロキン、プロマキネ（ｐｒｏｍａｑｕｉｎｅ）、キノン（ｑｉｏｎｏｎｅ）；抗菌剤キノロン（ｑｉｏｎｏｌｏｎｅ）：シプロフロキサシン、エノキサシン、ロメフロキサシン、ナリジクス酸、ノルフロキサシン、オフロキサシン；スルホンアミド；尿路抗菌薬：メテナミン、ニトロフラントイン、トリメトプリム；ニトロイミダゾール：メトロニダソール；コリン作用性 第４級アンモニウム化合物（アンベチニウム（ａｍｂｅｔｈｉｎｉｕｍ）、ネオスチグミン、フィゾスチグミン）；抗アルツハイマー薬 アミノアクリジン（タクリン）；抗パーキンソン病薬（ベンズトロピン、ビペリデン、プロサイクリジン、トリヘキシルヘニジル）；抗ムスカリン作用薬（アトロピン、ヒオスシアミン、スコポラミン、プロパンテリン）；アドレナリン作用性ドーパミン（アルブテロール、ドブタミン、エフェドリン、エピネフリン、ノルエピネフリン、イソプロテレノール、メタプロペノール（ｍｅｔａｐｒｏｐｅｒｅｎｏｌ）、サルメトロール（ｓａｌｍｅｔｒｏｌ）、テルブタリン）；エルゴタミン誘導体；筋弛緩剤またはクラネ（ｃｕｒａｎｅ）シリーズ；中枢作用筋弛緩剤；筋弛緩剤（ｂａｃｌｏｐｈｅｎ）、シクロベンゼピン（ｃｙｃｌｏｂｅｎｚｅｐｉｎｅ）、デントロレン（ｄｅｎｔｒｏｌｅｎｅ）；ニコチン；ベータ−アドレナリン受容体ブロッカー（ａｃｅｂｕｔｉｌ、アミオダロン）；ベンゾジアゼピン（ジチアゼム）；抗不整脈薬（ジイソピラミド、エンカイジン（ｅｎｃａｉｄｉｎｅ）、局部麻酔薬シリーズ−プロカイン、プロカインアミド、リドカイン、フレカイミド（ｆｌｅｃａｉｍｉｄｅ））、キニジン；ＡＣＥ阻害剤：カプトプリル、エネラプリラット（ｅｎｅｌａｐｒｉｌａｔ）、フォシノプロール（ｆｏｓｉｎｏｐｒｏｌ）、キナプリル、ラミプリル；抗高脂血症薬：フルバスタチン、ジェミフィブロシル（ｇｅｍｆｉｂｒｏｓｉｌ）、ＨＭＧ−ｃｏＡ阻害剤（プラバスタチン）；血圧降下薬：クロニジン、グアナベンズ、プラゾシン、グアネチジン、グラナドリル（ｇｒａｎａｄｒｉｌ）、ヒドララジン；および、非冠拡張薬：ジピリダモールが含まれるが、それらに限定されない。

態様の例には、アンモニウムまたは置換アンモニウムの形態、例えばトリエチルアンモニウム塩の形態で封入された陰イオン性ＭＲＩマーカーであるＧｄ−ＤＴＰＡを含むリポソームが含まれる。リポソーム外のマーカーの除去により、アンモニウムイオンの膜貫通勾配を、同じリポソームにて、例えばドキソルビシンなどの陽イオン性抗ガン剤の共ローディングを高い効率（例えば、＞９５％）で可能とするように作る。得られた二重充填リポソームは、インビボでの薬剤および常磁性マーカーの両方の漏出に対して安定であり、抗体結合薬剤マーカーを共充填したリポソームによる抗原発現腫瘍細胞を標的とした細胞死により証明されるような薬剤の細胞毒性特性を保持しており、そしてその磁性緩和能により、患者における治療薬の非侵襲的なモニタリングを可能とする。

本発明の方法
本発明の他の局面は、以下：（ａ）（ｉ）リポポリマーと結合されたそのシグナルが目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節される遠隔検出可能マーカー、および（ｉｉ）治療薬を含むリポソームを投与すること、そして（ｂ）遠隔検出可能マーカーのシグナルを検出することを含む、患者の身体におけるリポソーム薬剤の非侵襲的なモニタリングのための方法である。上記のリポソームは特に本方法に有用である。

本発明の他の局面は、リポソームのエンドサイトーシスの遠隔検出のための方法である。本方法には、（ａ）細胞を、そのシグナルがエンドサイトーシスが起こる条件下で目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節される検出可能マーカーと結合したリポポリマーを含むリポソームと接触させること、そして（ｂ）エンドサイトーシス後に検出可能マーカーのシグナルを検出することが含まれる。本方法は特によく用いられており、ここで検出可能マーカーは、ガドリニウムＤＴＰＡ−ＢＭＡおよびガドリニウムＨＰ−ＤＯ３Ａを含む常磁性ガドリニウムキレートであり、リポソームは低い水透過性の膜を含む。前記方法の検出工程は、ＭＲＩ法によるプロトン緩和能の増強を有利に用いる。検出可能マーカーは、好ましくは蛍光マーカーであり、リポソームは蛍光消光剤をさらに含む。故に、増加した蛍光活性はレーザーイメージング法により検出される。あるいは、検出可能マーカーは蛍光マーカーであり、自己消光濃度で存在する。増大された蛍光活性は、レーザーイメージング法により検出される。その方法は、リポソームが細胞内在化可能リガンドを含むときに特に有用である。

実施例
以下の実施例は、本発明の一部として包含される代表的化合物を提供するために供される。実施例はまた、前記化合物の有用性を決定するのに役立つ、インビトロおよびインビボ分析の説明を供する。

実施例１
囲われたリポソーム担体の製造
低透過性Ｇｄリポソームの多数の剤形を製造した。Ｇｄキレートの多数のリポソーム剤形を製造した。これらのリポソームは、ジステアロイルホスファチジルコリン（ＤＳＰＣ）、コレステロール、およびＮ−ポリ（エチレングリコール）−ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン（ＰＥＧ２０００−ＤＳＰＥ）またはＤＳＰＣ、ジパルミトイルホスファチジルコリン（ＤＰＰＣ）、およびコレステロールの混合物（リン脂質：コレステロール（３：２））を含んでなる。ＤＰＰＣを、エンドソームに達するまでの拡散速度を増加させるために低モル比で加えた。しかしながら、ＤＰＰＣはＤＳＰＣよりも低い相転移を有し、リポソーム膜を通過する水分子の拡散速度を増加させるであろう。どの程度までこの修飾が封入による緩和能に変化を有し得るかは不明である。これは現在研究されており、脂質の分解および水透過性の速度を最適化しようとする様々な脂質組成物の他のリポソームと比較されるだろう。最後に、コレステロールおよび低い相転移のリン脂質、例えば卵細胞由来ホスファチジルコリンまたはジオレイオイルホスファチジルコリンを含む対照リポソームを製造した。

それらの製造方法には、前もって形成したリポソームを市販されているガドリニウムキレートであるオムニスキャン（造影剤）（Amersham Health; Princeton, NJ）で水和すること、そして規定の孔サイズ（０．０５−０．１μｍ）のポリカーボネートフィルターを通して得られた脂質懸濁物を成形することが含まれる。得られたリポソームのサイズは、用いた前記フィルターの孔サイズにより７９−１１５ｎｍの間で変わる。非封入造影剤を、ゲルろ過クロマトグラフィーと透析を組み合わせて除去した。抗ＨＥＲ２ ｓｃＦｖ（Ｆ５）−ＰＥＧ−ＤＳＰＥを、既述の（Kirpotin et al., Biochemistry 36, 66−75, 1997, Nielsen et al., Biochimica et Biophysica Acta 1591:109−118, 2002）のとおりに製造し、ミセル結合によりこれらのリポソームに挿入した。簡単には、その結合体を、リポソーム造影剤と混合し、その後、ミセルからリポソーム膜の外側単層中への結合の自然な転移を可能とするため６０℃で３０分間インキュベートした。その後、結合物質を含むリポソームを、セファロース４Ｂサイズ排除カラムで精製し、すべての非挿入結合または遊離ｓｃＦｖを除去した。

重要な修飾を、ガドリニウムジエチレントリアミンペンタ酢酸ビスメチルアミド（Ｇｄ−ＤＴＰＡ−ＢＭＡ）（OMNISCAN, Amersham Health）をＧｄ−１０−（２−ヒドロキシ−プロピル）−１，４，７，１９−テトラアザシクロドデカン−１，４−７−トリアセテート（ＨＰ−ＤＯ３Ａ）（PROHANCE, Bracco Diagnostics）で置換することにより行った。ＯＭＮＩＳＣＡＮと比較してＰＲＯＨＡＮＣＥのカルシウム含有量の５倍の減少に伴うイオン特性の変化は、脂質１つに対し２倍以上のリポソームガドリニウム剤形の製造を可能とする。より正確には、ＮＭＲにより測定されるリン脂質対Ｇｄ比は、ＯＭＮＩＳＣＡＮについて約４、ＰＲＯＨＡＮＣＥについて１．７−１．８であった。

リポソームＰＲＯＨＡＮＣＥを、ＤＳＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＳＰＥ（３：２：０．０１５、ｍｏｌ：ｍｏｌ：ｍｏｌ）脂質組成物および希釈されていないＰＲＯＨＡＮＣＥ（２７９．３ｍｇ／ｍｌ ガドテリドール、０．２３ｍｇ／ｍｌ カルテリドール、１．２１ｍｇ／ｍｌ トロメチルアミン、６４０ｍモル浸透圧、ｐＨ７．４）を用いて形成し、得られた脂質懸濁液を規定の孔サイズ（０．０５−０．１μｍ）のポリカーボネートフィルターを通して成形した。得られたリポソームのサイズは、用いたフィルターの穴サイズに依存して７９−１１５ｎｍの間で変わる。非封入造影剤をＨｅｐｅｓ緩衝食塩水（ｐＨ６．５）で溶出しながらセファデックスＧ−７５を用いてゲルろ過クロマトグラフィーにより除去した。抗ＨＥＲ２ ｓｃＦｖ（Ｆ５）−ＰＥＧ−ＤＳＰＥを、必要であれば６０℃で３０分間、ミセル結合によりこれらのリポソームに挿入した。その後、結合した物質を含むリポソームをセファロース４Ｂサイズ溶出カラムで精製し、非挿入結合体または遊離のｓｃＦｖを除去した。

エンドソームまたはリソソームルーメンの酸性化によりそれらの成分の迅速な放出が可能となるいくつかのｐＨ感受性リポソーム剤形もまた製造した。これらの剤形は、リポソーム剤形へのｐＨ感受性コポリマーであるポリ（ＮＩＰＡＭ−ｃｏ−ＭＡＡ−ｃｏ−ＤＯＤＡ）（図６）の０．０５−０．３（ｗ／ｗ コポリマー：全脂質）の割合での組み込みを必要とした。ジオクタデシルアクリル酸は、脂質膜へのｐＨ感受性コポリマーの固定を補助した。合成されたＤＯＤＡ−ポリ（ＮＩＰＡ−ｃｏ−ＭＡＡ）は、メチルアクリル酸（ＭＡＡ）を５％有し、分子量は約１５，０００であった。

コポリマーには、リポソーム膜の両方の単層を通過したか、または６０℃で３０分間のインキュベートによるリポソーム形成後にリポソーム外小葉に挿入された、リポソーム調製物中のどちらもが含まれた。リポソーム調製の間の封入のために、コポリマーを直接プロハンスに溶解し、プロハンス溶液のｐＨを約７．４に維持した。リポソーム形成後の挿入のため、コポリマーを、Ｈｅｐｅｓ緩衝デキストロース（５ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、５％デキストロース、ｐＨ７．４）に溶解した。前記概念は、酸性ｐＨにて、メチルアクリル酸がプロトン化され、コポリマーが膜の保全を破壊し混乱させ（図７）、それは、緩和能の迅速な変化の正味の効果を有し、リポソーム内容物または一般には単に水の膜の透過性を増加させるという考えによる。

インビボ放出特性
上記図２に説明したように、リポソームからの放出による緩和能における大きな変化が予期される。いくつかの研究にて、細胞内放出条件（初めは低いｐＨ）がリポソームからのＧｄ放出に効果があるものを検討した。初め、常時ＮＭＲによりＧｄを測定するなら感受性および処理量がかなり大きいであろうから、消光蛍光色素を充填したリポソームをインビトロ放出のスクリーニングに用いた。故に、多くの条件を効率的にスクリーニングすることが可能であり、特性化のためには本研究の磁気共鳴が最もよく選択されている。封入された蛍光プローブの放出は、封入されたイメージング剤のそれと同様であると予期される。蛍光分析にて、水溶性ピラニンス（ｐｙｒａｎｉｎｃｅ）（またはＨＰＴＳ）は、水溶性消光剤であるｐ−キシレン−ビス−臭化ピリジニウム（ＤＰＸ）と一緒に共封入されている。消光の程度は距離に依存するため、リポソームからの放出およびプローブの希釈により、蛍光の大幅な増加がある。

ｐＨは、様々な比のコポリマー対脂質（０．０５−３ｗ／ｗ；図８および９）にてｐＨ感受性コポリマーで修飾されたリポソームからのＨＰＴＳの放出に効果を有し得る。ＤＯＤＡ−ポリ（ＮＩＰＡ−ｃｏ−ＭＡＡ）。両図にて、非修飾ＤＳＰＣ／ＣｈｏｌリポソームがいかなるｐＨにおいても非常に安定であることが明らかとなる。これらのインキュベーションは短時間であるが、８時間もの長い間のインキュベーションは、これらのリポソームからの微々たる漏出しかもたらさない。しかしながら、コポリマーでのリポソームの修飾は、コポリマー対脂質の比が０．１５−０．３（ｗ／ｗ）にてＨＰＴＳの迅速かつ大量の放出をもたらした。ｐＨ４．５での放出の範囲は、コポリマーの存在下におけるリポソーム製造について約７３−７８％であり（図８）、コポリマーがリポソーム形成後に挿入された場合のリポソーム製造について４０−４５％であった（図９）。中性ｐＨでの放出は、両場合にて微々たるものであり、安定性を示すｐＨ値にて、腫瘍に達し、かつエンドサイトーシスされるより前の血漿に移動する間に封入され得る。

その後、コポリマー修飾リポソームを、ＤＳＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＳＰＥ リポソーム（３：２：０．０１５）からのＧｄの放出におけるその効果ごとに特徴付けた。この場合に、リポソーム試料を３０分間３７℃でインキュベートし、その後、ＮＭＲにより特徴付けた。インキュベートした試料における緩和能の最初の測定後、リポソームをトライトン−Ｘ１００の付加により可溶化し、そして緩和能を再び測定後、７０℃で５分間インキュベーションした。結果を以下に示す。非修飾リポソームのこの期間の放出は少しもないことが容易に明らかとされ得る。Ｇｄ放出量または増大した水透過性は、コポリマーが成形の間に組み込まれたリポソーム、および組み込まれるコポリマーの量が増大するとき、コポリマーが挿入により組み込まれたリポソームの両方で増加するようことが明らかである。ｐＨ５．０における変化の程度は、挿入の間に組み込まれたリポソームよりも成形の間に組み込まれたコポリマーを有するリポソームで顕著に大きかった。しかしながら、コポリマーが成形の間に組み込まれたリポソームについて、ｐＨ７．４でも顕著な漏出または増加した透過性となることが明らかにされた。ヒト血漿中により長い期間安定に存在するものを探すより包括的な研究は、中性ｐＨでの安定性とｐＨ感受性の間の妥協点を発見するための研究でもある。

実施例２
ビス−カルボキシメチル−ＰＥＧ６００−モノ（Ｎ，Ｎ−ジオクタデシル）アミド（ＤＳＡ−ＰＥＧ−ＣＯＯＨ）の合成
３．０３９ｇのビス−カルボキシメチル−ポリ（エチレングリコール）（分子量６００； Ａｌｄｒｉｃｈ ｐ／ｎ ４０，７０３−８）を、２０ｍＬのクロロホルムに溶解し、２５０ｍｇのＤＣＣと一緒に室温で１時間撹拌した。沈殿した尿素を、ガラス繊維フィルターを用いてろ過により除去し、ろ液を氷浴中で冷却し、１ｍＬの無水トリエチルアミン、および５２０ｍｇのジオクタデシルアミン（Ｆｌｕｋａ ｐ／ｎ ４２３５８）と混合した。反応混合物を、全てのアミンがアルゴン下で溶解するまで撹拌しながら４０−４５℃にし、そして室温で一晩撹拌する。沈殿したさらなる量のＤＣＵをフィルターで除去し、ろ液を２０ｍＬのクロロホルムで希釈し、次に１００ｍＬの水（３回）、１００ｍＬの飽和ＮａＨＣＯ_３（１回）、そして１００ｍＬの水（３回）で洗浄した。有機相を硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒をロータリーエバポレーターで除去し、そしてさらに１−２ｍｍＨｇで５０℃で３０分間乾燥した。粗産物の収量は８８６ｍｇであった。この産物は、ＴＬＣ（シリカ、クロロホルム−メタノール ８０：２０；ヨウ素蒸気により作製）により２つのスポットを示した（主、Ｒｆ＝０．３４；副、Ｒｆ＝０．７４）。この産物を５ｍｌのクロロホルムに溶解し、クロロホルム−メタノール ８０：２０（量にして）中に２０ｇのセレクトシリカを含むカラムに用い、同じ混合液で溶出した。１０ｍｌの画分を集めた。画分３−６に現れる産物は、Ｒｆ０．７４成分を含んでいた。クロマトグラフィーにより精製された産物を含む画分７−１９を合わせ、乾燥させ、そして減圧乾燥し、３１７．５ｍｇの産物を得た。この物質を、３．１ｍＬのクロロホルムに溶解し、１００ｍｇ／ｍＬ溶液を得、０．２−μｍＰＴＦＥフィルターを通して、−２０℃で保存した。

実施例３
ビス−カルボキシメチル−ＰＥＧモノ−（Ｎ，Ｎ−ジオクタデシル）アミドテトラ（カルボベンズオキシ−Ｌ−リシン）結合（ＤＳＡ−ＰＥＧ−（Ｚ−Ｌｙｓ）_４）の合成（図１０）
０．５５ｍＬのクロロホルム中５５ｍｇのＤＳＡ−ＰＥＧ−ＣＯＯＨを、７．９ｍｇのＮ−ヒドロキシスクシンイミドのクロロホルム溶液０．５ｍＬと合わせた。室温で撹拌し、０．３ｍＬのクロロホルム中１３．１ｍｇのＤＣＣをこの溶液に滴下し、２時間撹拌した。ジシクロヘキシル尿素の沈殿を、ＧＦ／ｃガラス繊維フィルターを通してろ過により分離した。ろ液を、５０ｍｇのポリ（Ｎ−カルボベンゾキシ−Ｌ−リシン）（分子量１，０００（Ｓｉｇｍａ））の無水ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）溶液０．５ｍＬと混合した。クロロホルムを真空下で除去し、さらに１ｍＬのＤＭＦを残渣に加えた。０．０４２ｍｌのトリエチルアミンをこの溶液に加え、アルゴン下で一晩撹拌した。溶媒を、５０℃にて真空下（１−２ｍｍＨｇ）で除去した。残渣を、カルボベンゾキシ基の除去のため、氷酢酸中、４Ｍ ＨＢｒで処理した。

ＩＩＩの脱保護を、室温で８時間撹拌しながら酢酸中３０ｗｔ％ＨＢｒ（４Ｍ）（Aldrich）４ｍｌ中で行った。溶媒を真空下で除去し、その後、４ｍｌの水を加え、１Ｍ ＮａＯＨでｐＨ７に合わせた。前記物質を４５℃で１５分間加熱しながら溶解し、遠心（１０，０００ＲＰＭで５分間）により精製した。上清を１１５ｍｌ セファデックスＧ７５カラムでクロマトグラフィーし、４ｍｌの画分に集めた。２５０ｎｍでの分光光度測定による強度の分散により決定した試料を含む画分を合わせ、溶媒を真空下で除去し、７１．６ｍｇの脱保護された物質を得た。

１，４，７，１０−テトラアザシクロドデカノン−１，４，７−トリス（酢酸−ｔ−ブチルエステル）−１０−酢酸モノ（Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジルエステル）を、Macrocyclics社（Dallas, TX）から入手した。１１９ｍｇのＤＯＴＡ−ＮＨＳ（２３８μｍｏｌ、５０％過剰量）および２．１４ｍｍｏｌのトリエチルアミンを、無水ＤＭＦ中７１．６ｍｇのＮ−ポリ（リシン）−ポリ（エチレングリコール）−ジオクタデシルアミンに加えた。反応混合物を、４５℃で６時間温めた。ＤＭＦをロータリーエバポレーターで除去後、ＩＶを４ｍｌの水に溶解し、ＮａＯＨでｐＨ７に滴定し、その後、４５℃で１５分間加熱した。溶液を遠心（１０，０００ＲＰＭで５分間）により分離した。上清を１１５ｍｌセファデックスＧ７５カラムでクロマトグラフィーし、４ｍｌの画分を集めた。試料を含む画分を、２５０ｎｍの分光光度法による測定による強度の分散およびＴＬＣにより決定した。溶媒を除去し、１５２ｍｇの淡黄色の薄片状の物質を得た。産物の純度をＴＬＣを用いて確認した。クロマトグラフィー条件：ＥｔＯＨ／Ｈ_２Ｏ（４：１）移動相、Ｒｆ＝０．３１、ＥｔＯＨ／Ｈ_２Ｏ（１：１）移動相、Ｒｆ＝０．９１を用いたＣ−１８逆相シリカ。産物は、完全な１級アミン官能基を示すフルオレサミン色素に負の応答を示した。

実施例４
Ｎ−ＤＯＴＡ−ポリ（エチレングリコール）−ジオクタデシルアミンの合成（図１１）
１．６ｇの粉砕した無水コハク酸を、２０ｍＬの無水ピリジンに溶解した。２．６２ｇのジオクタデシルアミンをアルゴン下で加え、アミンが溶解するまで４０−４５℃まで温め、室温で一晩撹拌した。ピリジンをロータリーエバポレーターを用いて５０℃にて減圧（１−２ｍｍＨｇ）下で除去し、乾燥残渣を５０ｍＬの二塩化メチレンに溶解した。その溶液を、１００ｍＬの１Ｍ 重炭酸トリエチルアミンで３回洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、溶媒をロータリーエバポレーターで除去し、固形の物質を減圧（０．４ｍｍＨｇ）下で室温にて一晩乾燥した。前記産物は、ＴＬＣにて１つのスポットを示した（シリカ、クロロホルム−メタノール ９０：１０）、Ｒｆ＝０．８２；同じ系にてＮ，Ｎ−ジオクタデシルアミン、Ｒｆ＝０．６４。収量 ２．７０９ｇ（理論値の８７％）。分析データ：¹H−NMR (CDCl₃, 400 MHz) δ 0.88 (t ,6H, CH₂−CH₃), 1.26 (s, 60H, CH₂), 1.56 (q, 4H, OC−N(CH₂−CH₂−CH₂)₂), 2.69 (s, 4H, CO−CH₂−CH₂−CO), 3.23 (t, 2H, OC−N(CH₂−CH₂−CH₂)₂), 3.32 (t, 2H, OC−N(CH₂’−CH₂−CH₂)₂), 11.9 (br, 1H, COOH)。

３６．５ｍｇ（１７７μｍｏｌ、１０％過剰量）ジシクロヘキシルカルボジイミド（９９％Aldrich, Milwaukee, WI）を、無水ＣＨＣｌ_３／エチレングリコール ジメチルエーテル（３：１）に溶解した１００ｍｇのコハク酸ジオクタデシル（１６１μｍｏｌ）および２０．３ｍｇ（１７７μｍｏｌ、１０％過剰量）Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（９７％Aldrich, Milwaukee, WI）に加えた。室温で１２時間撹拌後、混合物は、白色沈殿（ジシクロヘキシル尿素（ＤＣＵ））を含む無色の溶液を形成した。反応混合物を、３６８ｍｇ（２４２μｍｏｌ、５０％過剰量）のビス（３−アミノプロピル）末端ポリ（エチレングリコール）（Aldrich, Milwaukee, WI）を含む無水ＣＨＣｌ_３／エチレングリコール ジメチルエーテル（３：１）溶液に直接フィルター処理して加えた。１２時間撹拌後、溶媒をロータリーエバポレーションにより除去した。得られた物質を３ｍｌの水に溶解し、１００ｍｌセファデックスＧ７５カラムでクロマトグラフィーし、そして４ｍｌの画分で集めた。ＴＬＣにより決定した画分を含む試料を合わせ、そして溶媒を真空下で除去し、８２．５ｍｇの白色薄片産物（アミノポリ（エチレングリコール）ジオクタデシルアミン）を得た。２３．９ｍｇの１，４，７，１０−テトラアザシクロドデカノン−１，４，７−トリス（酢酸−ｔ−ブチルエステル）−１０−酢酸モノ（Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジルエステル）（４７．６μｍｏｌ、２０％過剰量）および４４３μｍｏｌのトリエチルアミンを、無水ＤＭＦ中８２．５ｍｇのアミノポリ（エチレングリコール）ジオクタデシルアミンに加えた。１２時間室温で撹拌後、溶媒を真空下で除去し、淡褐色のケイクを得た。４ｍｌの水を固形のケイクに加え、ＮａＯＨでｐＨ７に滴定し、４５℃で１０分間加熱した。溶液を遠心（１０，０００ＲＰＭで５分間）により分け、淡黄色の上清を１００ｍｌセファデックスＧ７５カラムでクロマトグラフィーし、４ｍｌの画分を集めた。ＴＬＣを、産物を含む画分を決定するために用い、それらを合わせ、溶媒を真空下で除去し、２９．９ｍｇの白色の薄片状の物質として得た。産物の純度を、ＴＬＣを用いて確認した。クロマトグラフィー条件：ＣＨＣｌ_３／ＭｅＯＨ（４：１）移動相、Ｒｆ＝０．９１を用いたＣ−１８逆相シリカ。産物は、完全な１級アミン官能基を示すフルオレサミン色素に負の応答を示した。

実施例５
コレステロール ヘミスクシナチル（ｈｅｍｉｓｕｃｃｉｎａｔｙｌ）−ポリ（エチレン）グリコールの合成（図１２）
１００ｍｇ（２０５μｍｏｌ）のコレステロール ヘミコハク酸塩（ＣＨＥＭＳ）（Sigma, St. Louis, MO）を、ＣＨＣｌ_３／エチレングリコールジメチルエーテル（３：１）に溶解し、そこへ２６ｍｇの（２２６μｍｏｌ、１０％過剰量）Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（９７％ Aldrich）（ＮＨＳ）および４６．５ｍｇの（２２６μｍｏｌ、１０％過剰量）ジシクロヘキシルカルボジイミド（９９％ Aldrich）（ＤＣＣ）を加え、室温で６時間撹拌し、白色沈殿を含む無色の溶液を得た。反応混合物を、４６８ｍｇ（３０７μｍｏｌ、５０％過剰量）のビス（３−アミノプロピル）末端ポリ（エチレングリコール）（Ａｌｄｒｉｃｈ）を含むＣＨＣｌ_３／エチレングリコール ジメチルエーテル（３：１）溶液に直接フィルター処理し、室温で１２時間撹拌した。溶媒をロータリーエバポレーター処理で除去し、淡黄色のケイクを得た。産物をさらなる精製なしにＴＬＣで確認した。クロマトグラフィー条件：順相のシリカおよびＣＨＣｌ３／ＭｅＯＨ（４：１）からなる移動相を用いた、産物Ｒｆ＝０．５９。アミノ−ポリ（エチレングリコール）−コレステロールを、１，４，７，１０−テトラアザシクロドデカノン−１，４，７−トリス（酢酸−ｔ−ブチルエステル）−１０−酢酸モノ（Ｎ−ヒドロキシスクシニミジルエステル）で修飾し、ＤＯＴＡ−ＰＥＧ−Ｃｈｏｌ誘導体を得る。その後、ガドリニウムを、ｐＨ７−８にて一晩９５℃で酸化ガドリニウムと一緒に合わせてインキュベートすることによりキレートに挿入する。その後、遊離ガドリニウムをセファデックスＧ−７５カラムで除去した。

実施例６
１，２−ジステアロイル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノール−Ｎ−アミノグルタル酸の合成（図１３）
１，２−ジステアロイル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミン（ＤＳＰＥ）を、Ｓｙｇｅｎａから購入した。グルタル酸無水物（９７％）およびトリエチルアミン（９９．５％）をＡｌｄｒｉｃｈから購入した。すべての試薬をさらなる精製なしに用いた。３倍モル過剰量のグルタル酸無水物（４６５ｍｇ、４．０８ｍｍｏｌ）および４倍モル過剰量のトリエチルアミン（５．４４ｍｍｏｌ）を無水クロロホルム中ＤＳＰＥ（１．０２ｇ、１．３６ｍｍｏｌ）に加え、得られた混合物をアルゴン下で室温にて１２時間撹拌した。反応混合物を０．１％酢酸（２）および水（２）で洗浄し、ｐＨ９ ＮａＨＣＯ_３ ＣＨＣｌ_３画分を、ヘキサン／酢酸エチル（２：１）を用いてシリカカラムでクロマトグラフした。溶媒を真空下で除去し、白色ケイクを得た（４６０ｍｇ、理論値の３９．３％）。産物の純度を、ＴＬＣおよび^１Ｈ−ＮＭＲにより確認した。産物は、完全な１級アミン官能基を示すフルオレサミン色素に負の応答を示した。分析データ：ＴＬＣ移動相 ヘキサン／酢酸エチル（２：１） Ｒｆ＝０．４５、¹H−NMR (CDCl₃, 400 MHz) δ 0.883 (t, 3H, CH₂−CH₃), 1.26 (s, 56H, CH₂), 1.61 (br, 4H, O−OC−CH₂−CH₂), 1.95 (q, 2H, CO−CH₂−CH₂−CH₂−CO), 2.30 (m, 4H, CO−CH₂−CH₂−CH₂−CO, 4H, O−OC−CH₂−CH₂), 3.37 (q, 4H, P−O−CH₂−COH₂), 4.16 (q, 1H, CO−O−CH₂−CHOCH₂), 4.38 (q, 1H, CO−O−CH₂’−CHOCH₂), 5.23 (br, 1H, CO−O−CH₂−CHOCH₂)。

Ｇｌｕ−ＤＳＰＥ誘導体は、ＮＨＳ／ＤＣＣで活性化され得、ビス（３−アミノプロピル）末端ポリ（エチレングリコール）（Aldrich, Milwaukee, WI）で修飾され得る。アミノ−ポリ（エチレングリコール）−ＤＳＰＥは、１，４，７，１０−テトラアザシクロドデカノン−１，４，７−トリス（酢酸−ｔ−ブチルエステル）−１０−酢酸モノ（Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジルエステル）で修飾され得、ＤＯＴＡ−ＰＥＧ−ＤＳＰＥ誘導体を得る。その後、ガドリニウムを、ガドリニウムオキシドと一緒に合わせて９５℃で一晩ｐＨ７−８にてインキュベートすることによりキレートに挿入した。その後、遊離ガドリニウムをセファデックスＧ−７５カラムで除去した。

実施例７
Ｏ−グルタリール−ジオクタデシルグリセロール（グルタリール−ＤＯＧ）の合成（図１４）
１，２−Ｏ−ジオクタデシル−ｓｎ−グリセロール（９９＋％）をＢＡＣＨＥＭ（King of Prussia，PA）から購入した。グルタル酸無水物（９７％）および４−ジメチルアミノピリジン（９９＋％）を、Ａｌｄｒｉｃｈ（Milwaukee, WI）から購入した。すべての試薬をさらなる精製なしに用いた。２倍モル過剰量のグルタル酸無水物（７６．４ｍｇ、０．７６ｍｍｏｌ）および４−ジメチルアミノピリジン（８１．８ｍｇ、０．７６ｍｍｏｌ）を、無水クロロホルム中１，２−Ｏ−ジオクタデシル−ｓｎ−グリセロール（０．２ｇ、０．３３５ｍｍｏｌ）に加え、得られた混合物を室温で１２時間アルゴン下にて撹拌した。溶媒をロータリーエバポレーター処理で除去し、産物を、シリカカラムにてヘキサン／酢酸エチル（２：１）で溶出することにより精製した。産物を含む画分を合わせ、溶媒をロータリーエバポレーターで除去し、１１５ｍｇ（０．１６２ｍｍｏｌ、理論値の４８．４％）のＯ−グルタリール−ジオクタデシルグリセロールを得た。産物の純度を、ＴＬＣおよび^１Ｈ−ＮＭＲにより確認した。分析データ：ＴＬＣ 移動相 ヘキサン／酢酸エチル（２：１） Ｒｆ＝０．４５、¹H−NMR (CDCl₃, 400 MHz) δ 0.866 (t, 3H, CH₂−CH₃), 1.26 (s, 60H, CH₂), 1.55 (q, 4H, O−CH2−CH₂−CH₂), 1.95 (q, 2H, CO−CH₂−CH₂−CH₂−CO), 2.40 (s, 4H, CO−CH₂−CH₂−CH₂−CO), 3.47 (q, 4H, O−CH₂−CH₂), 3.57 (t, 2H, CHO−CH₂−O), 3.64 (q, 1H、O−CH(CH₂)−O), 4.10 (q, 1H, CO−O−CH₂−CHOCH₂), 4.23 (q, 1H, CO−O−CH₂’−CHOCH₂), 7.39 (s, 1H, COOH)。

Ｇｌｕ−ＤＯＧ誘導体を、ＮＨＳ／ＤＣＣで活性化し、ビス（３−アミノプロピル）末端ポリ（エチレングリコール）（Aldrich, Milwaukee, WI）で修飾することができる。アミノ−ポリ（エチレングリコール）−ＤＯＧを、１，４，７，１０−テトラアザシクロドデカノン−１，４，７−トリス（酢酸−ｔ−ブチルエステル）−１０−酢酸モノ（Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジルエステル）で修飾し、ＤＯＴＡ−ＰＥＧ−ＤＯＧ誘導体を与えることができる。その後、ガドリニウムを、ｐＨ７−８にて９５℃で一晩ガドリニウムオキシドと一緒にインキュベートすることによりキレートに挿入することができる。その後、遊離ガドリニウムをセファデックスＧ−７５カラムで除去する。

実施例８
イメージング能を有する治療リポソーム：免疫リポソームへのイメージング剤および治療薬の共封入
リポソームをエタノール注入により形成させ、その後０．１μｍ ポリカーボネートフィルターを通して繰り返し成形した。簡単には、乾燥させた脂質（ＤＳＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＳＰＥ、３：２：０．０１５、ｍｏｌ：ｍｏｌ：ｍｏｌ）を、６０℃で加熱しながら０．５ｍｌのエタノールに溶解した。ジエチレントリアミンペント酢酸、ガドリニウム（ＩＩＩ）（Ｇｄ−ＤＴＰＡ）およびクエン酸アンモニウム鉄（ＩＩＩ）をＡｌｄｒｉｃｈ（Milwaukee, WI）から購入した。Ｇｄ−ＤＴＰＡのジアンモニウム塩を、Ｇｄ−ＤＴＰＡ水溶液を水酸化アンモニウムで滴定することにより形成させた。リポソームを、５００ｍＭ ジアンモニウム−ジ−Ｇｄ−ＤＴＰＡまたは２５０ｍＭ クエン酸アンモニウム鉄（ＩＩＩ）の存在下で水和し、当技術分野で公知のイオン勾配遠隔ローディング法を用いてローディングした（Lasic et al., 1992; Haran et al., 1993）。しかしながら、我々の知識では、これはＧｄ（ＩＩＩ）またはＦｅ（ＩＩＩ）キレーターおよび薬剤トラップ剤の二役でキレート化剤を用いる最初の例であり、本方法の使用は、薬剤およびイメージング剤の両方をインビボ治療およびその同時モニタリングのために必要な濃度で効率よく封入することを可能にする。

５００ｍＭ アンモニウム−Ｇｄ−ＤＴＰＡまたは２５０ｍＭ クエン酸アンモニウム鉄（ＩＩＩ）溶液（４．５ｍｌ）を６０℃まで加熱し、その後、エタノール性の脂質溶液（０．５ｍｌ、３００μｍｏｌ ＰＬ）に速やかに注入し、水和した脂質溶液を形成させた。その後、エタノールをロータリーエバポレーターで除去し、脂質懸濁液を、２枚重ねのポリカーボネートフィルター（０．１μｍ）を１５回通して押し出し成形した。成形後に、非封入アンモニウム−Ｇｄ−ＤＴＰＡまたはクエン酸アンモニウム鉄（ＩＩＩ）を、Ｈｅｐｅｓ緩衝食塩水（ｐＨ６．５）で溶出したセファデックスＧ−７５カラムで除去した。その後、リン脂質（ＰＬ）含有量をリン酸塩分析（Bartlett, 1959）により決定し、ドキソルビンを１μｍｏｌ ＰＬに対して１５０μｇの薬剤の割合で加えた。薬剤を、薬剤とリポソームを６０℃で３０分間インキュベートすることにより充填し、その後１５分間氷上で反応をクエンチした。非封入薬剤を、第二のセファデックスＧ−７５ゲルろ過カラムで除去し、またＨｅｐｅｓ緩衝食塩水、ｐＨ６．５で溶出した。精製したリポソーム試料中の薬剤の量を、酸イソプロパノール（９０％ イソプロパノール、１０％ １Ｎ ＨＣｌ）中に薬剤を充填したリポソームを溶解後、吸光測定（λｅｘ＝４９０ｎｍ、λｅｍ＝５５０ｎｍ）にて鉄（ＩＩＩ）の干渉による蛍光により定量し、そしてリン脂質含有量を標準的なリン酸塩分析（Bartlett, 1959）により決定した。薬剤充填効率を、１μｍｏｌのリン脂質に対して１μｇの薬剤を発現する絶対量、および加えた初期量の薬剤と比較して充填された１％の薬剤を発現する相対量を両方とも測定した。ドキソルビシンのローディング効率は、１μｍｏｌのリン脂質に対して１５０μｇの薬剤を最初に加えたとき、９２−１００％の範囲であった。リポソームサイズを光子相関分光法により決定し、それは１０５−１２０ｎｍの範囲であった。以下のドキソルビシン封入効率を得た：

その後、これらのリポソームを、可溶化による緩和能の変化、または薬剤およびイメージング剤の両方の完全な放出を決定するためにＮＭＲにより特徴付けた。磁性ＧｄまたはＦｅ（ＩＩＩ）が薬剤沈殿を起こした場合、これはＤＳＰＣ／Ｃｈｏｌ リポソームの低下した水透過性の影響によると見られるよりもさらに大きな程度で緩和能に作用し得るという仮説をたてた。しかしながら、以下の表に見られるように、無傷（ｉｎｔ）リポソームと可溶化（ｓｏｌ）リポソームのτ_１緩和能（ΔＲ１）の割合、ΔＲ１ｓｏｌ／ΔＲ１ｉｎｔは、薬剤を充填していないリポソーム（Ｌｓ−Ｇｄ−ＨＰ−ＤＯ３Ａ）について上記で観察されるのと同様であった。故に、前記リポソームは、１個の抗ガン剤の高封入と遠隔エンドサイトーシス検出特性を兼ね備えている。

実施例９
ＧｄＤＴＰＡ−ＢＭＡ封入 抗−ＨＥＲ２免疫リポソームの改善されたＭＲ検出能および腫瘍ＭＲシグナル強度の変化を標的とした抗体の貢献度の検出
本研究の目的（ａｌｓ）は、ＭＲ腫瘍シグナル強度（ＳＩ）のより大きな増加を達成するために抗ＨＥＲ２免疫リポソーム組成物を修飾すること、腫瘍シグナル強度を増すために抗ＨＥＲ２標的の貢献度を測定すること、およびシグナル強度と測定されたＴ１の変化の関係を決定することである。腫瘍ＳＩのかなりの増加が、従前の剤形と比較して新規のリポソームリン脂質組成物にて観察されたが、しかしながらリポソーム直径の減少は、腫瘍ＳＩに大きな影響は与えなかった。標的の付加は、非標的リポソームと比較して腫瘍ＳＩで増加するという結果となった。シグナル強度は、測定されたＴ１と相関することが発見された。

ハーセプチンおよび抗ＨＥＲ２免疫リポソームなどの腫瘍標的治療剤は、ガンの選択的処置に重要な役割を果たす可能性を有する。標的剤の分布を非侵襲的に測定する能力は、新規の標的治療剤の開発および評価を助長し得る。現在の研究にて、腫瘍の「透過性」ＩＬのＭＲ検出能／可視度を改善する方法が検討されており、リポソーム注入後に見られた腫瘍ＳＩの増大への抗体標的化の貢献を評価するために「不透過性」リポソームを利用する。本研究にて、直径（８０ｎｍおよび５０ｎｍ）の新規の組成物の透過性（Ｐ）ＧｄＤＴＰＡ−ＢＭＡ封入抗ＨＥＲ２免疫リポソーム（ＩＬ）を、ヒト乳ガンのマウスモデルにおける標的（ＩＬ）および非標的（ＮＴＬ）水−不透過性（ＩＭＰ）リポソームの両方で測定し比較した。

ＧｄＤＴＰＡ−ＢＭＡ封入リポソームの４つの型を合成した：「透過性」ＤＯＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＰＳＥ（３：１：１）抗ＨＥＲ２標的免疫リポソーム（ＩＬ）の２つのサイズ（平均直径８０および５０ｎｍ）、および「不透過性」ＤＳＰＣ／ＤＰＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＰＳＥ（２．２：０．３：２：０．３）リポソーム（ＩＬおよび非標的、平均直径〜７５ｎｍ）。ＩＬは、viaおよびＦ５ ｓｃＦｖ抗体を標的とした。ヌードマウスに、ＨＥＲ２／ｎｅｕを過剰に発現するヒト乳ガン系ＢＴ４７４を移植した。腫瘍の容量を合わせ、マウスを２匹１組で、Ｇｄ−リポソーム組成物（０．０５ｍｍｏｌ ＧｄＤＴＰＡ−ＢＭＡ／ｋｇ）の１種を静脈内注射前および注射後１５６時間までイメージングした。イメージングの間、マウスを１．５％イソフルランで麻酔した。イメージングを常套的な腕輪および特注の動物ホルダーを用いて１．５Ｔ ＧＥ Ｓｉｇｎａ スキャナ（General Electric Medical Systems、Milwaukee、WI）で行った。高い解像度の冠状３ＤＦＧＲＥイメージがそれぞれの時間点で得られ（ＴＲ／ＴＥ１７／４．２ｍｓ、ＦＯＶ ８ｃｍ、マトリックス ５１２×２５６、４ＮＥＸ）、Ｔ１もまた、３Ｄ可変フリップ角 高速勾配エコー技術を用いて測定した。シグナル強度を、全腫瘍容量および血中に及ぶ目的の領域（ＲＯＩＳ）について測定した。Ｔ１もまた、腫瘍ＲＯＩについて測定した。ＭＲ腫瘍容量は、３Ｄイメージの連続した薄片で腫瘍を描くことにより測定される。

結果：ＰＯＰＣのＤＯＰＣへの置換は、ＰＯＰＣ剤形で２４時間にて見られる＋８％の増加と比較して、２４時間で＋３１％（ｎ＝５）の平均腫瘍ＳＩ変化という著しい増加を生じた。８０から５０ｎｍへのリポソーム直径の減少は、２４時間で腫瘍ＳＩの大きな相違を生じなかった（３１％対２８％）。ＩＭＰ−ｌＬおよびＩＭＰ−ＮＴＬ（ｎ＝４）は共に、「透過性」ｌＬの血中ＳＩ（２４５％）と比較して注射後５分で同じくらい増加した（平均１１５％）。ＩＭＰ−ＮＴＬ（＋１２％）と比較したＩＭＰ−ＩＬ（＋１７％）の２４時間での腫瘍ＳＩの平均の変化の相違は、有意である（ｐ＝０．０５）。

考察：改善された増加が、ＰＯＰＣよりも水透過性であるＤＯＰＣ層を有するリポソーム組成物に見られる腫瘍シグナル強度で発見された。５０ｎｍ Ｐ−ＩＬおよび８０ｎｍ Ｐ−ＩＬが腫瘍イメージングに関して等しく有効であった事実は、７０−８０ｎｍがリポソームのＧｄ封入、緩解および生体内分布特性に関与する、イメージングの最適サイズであることを示し得る。Ｐ−ＩＬからのシグナル強度の変化は、ＤＯＰＣと比較して、水に対するＤＳＰＣ リン脂質二重層の低下した透過性によると予期され得るように、ＩＭＰ−ＩＬよりも血液および腫瘍の両方で比例的に高かった。驚くべきことに、血中ＳＩの変化はＩＭＰ−ＩＬおよびＩＭＰ−ヌルで両方とも同じであったが、ＩＭＰ−ＩＬは腫瘍にてより大きなＳＩ増加を生じ、それは、細胞へのＩＬのエンドサイトーシスにより誘発されるマーカーの放出を示し得る。

実施例１０
ドキソルビシンおよび常磁性マーカーであるＧｄ−ＤＴＰＡ−（ビス）トリエチルアンモニウムまたはクエン酸アンモニウム鉄のリポソームへの共ローディング、および得られる薬剤とマーカーを共ローディングしたリポソームの特性
リポソームをエタノール注入により形成させ、次に０．１μｍ ポリカーボネートフィルターを通して繰り返し押し出し成形した。簡単には、乾燥させた脂質（ＤＳＰＣ／Ｃｈｏｌ／ＰＥＧ−ＤＳＰＥ、モル比 ３：２：０．０１５）を、６０℃に加熱することにより０．５ｍｌのエタノールに溶解した。Ｇｄ−ＤＴＰＡ（ＴＥＡ−Ｇｄ−ＤＴＰＡ）のトリエチルアンモニウム塩を、Ｇｄ−ＤＴＰＡ二塩基酸の水溶液（Alrdich Corp., Milwakee, USA）とトリエチルアミン原液でｐＨ５．０−５．４に滴定することにより形成させた。リポソームを、５００ｍＭ ＴＥＡ−Ｇｄ−ＤＴＰＡの存在下にて水和した。

５００ｍＭ ＴＥＡ−Ｇｄ−ＤＴＰＡ（４．５ｍｌ）を６０℃に加熱し、その後、すばやくエタノール性脂質溶液（０．５ｍｌ、３００μｍｏｌ ＰＬ）に注入し、水和した脂質溶液を形成させた。その後エタノールをロータリーエバポレーターで除去し、脂質懸濁液を、２枚重ねのポリカーボネートフィルター（０．１μｍ）を１５回通して押し出し成形した。成形後、非封入ＴＥＡ−Ｇｄ−ＤＴＰＡまたはクエン酸アンモニウム鉄（ＩＩＩ）をＨＥＰＥＳ緩衝食塩水（ｐＨ６．５）で溶出したセファデックスＧ−７５カラムで除去した。その後、リン脂質（ＰＬ）含有量を、リン酸塩の分光学的分析により決定し、次に酸消化し（Bartlett GR. 1959. J. Biol. Chem. 234: 466−468）、ドキソルビシン塩化水素を、１μｍｏｌ ＰＬに対して１５０μｇ 薬剤の割合でリポソームに加えた。薬剤を、薬剤とリポソームを６０℃で３０分間インキュベートすることによりローディングし、その後、氷上で１５分間で反応をクエンチした。非封入薬剤を、第二のセファデックスＧ−７５ゲルろ過カラムで除去し、Ｈｅｐｅｓ緩衝食塩水、ｐＨ６．５で溶出した。精製したリポソーム試料中の薬剤の量を、酸イソプロパノール（９０％ イソプロパノール、１０％ １Ｎ ＨＣｌ）中への薬剤ローディングリポソームの溶解後に蛍光（λｅｘ＝４９０ｎｍ、λｅｍ＝５５０ｎｍ）により定量し、リン脂質含有量をＢａｒｔｌｅｔｔ（１９５９）による方法により決定した。薬剤ローディング効率を、１μｍｏｌのリン脂質に対して１μｇの薬剤が発現されたときの絶対量、および加えた最初の量の薬剤と比較してローディングした１％の薬剤が発現されたときの相対量の両方を測定した。１μｍｏｌのリン脂質に対して１５０μｇの薬剤を最初に加えたとき、ドキソルビシンのローディング効率は、９２−１００％の範囲であった。リポソームサイズを、光子相関分光法により決定し、それは１０５−１２０ｎｍであった。

Ｇｄ−ＤＴＰＡ／ドキソルビシンをどちらも含む前記の間に構築されたリポソームを、保存中の安定性についてモニタリングした。３ヶ月後、Ｇｄ−ＤＴＰＡ／ドキソルビシンリポソームは、それらが製造されたときと同じサイズであった（１２３．９±２３．８ 対 １２１．０±２０．７ｎｍ）。

Ｇｄ−ＤＰＴＡ／ドキソルビシンをまた、ＨＥＲ２過剰発現ＳＫＢＲ３細胞を用いたインビトロ細胞毒性分析にて特徴付けた。結果を図１６に示す。ＨＥＲ２標的免疫リポソームを封入するＧｄ−ＤＴＰＡ／ドキソルビシンは、遊離薬剤と同じくらい活性であって、非標的リポソーム剤形よりも１００倍ほど活性であった。この活性は、常套的なＨＥＲ２標的硫酸アンモニウムを充填したドキソルビシンリポソームで見られるのと同程度であり、その活性および安定性の両方を維持したＧｄ^３＋を含むリポソームを示す。

血漿安定性の研究は、微量透析分析を用いて３７℃で５０％ヒト血漿の存在下で行った。５０％血漿中のリポソーム試料を、３０ｎｍ ポリカーボネート膜を有する３２ｍＬ 主チャンバーから分け、Ｓｐｅｃｔｒａ／Ｐｏｒ Ｍｉｃｒｏｄｉａｌｙｚｅｒ（Spectrum Labs; Gardena, CA）の試料ウェル（各０．４ｍｌ）に入れた。そのチャンバーを、５０％（ｖ／ｖ）のヒト血漿（ＨＥＰＥＳ緩衝生理食塩水で希釈）で無菌的に満たした。血漿タンパク質、遊離（非封入）薬剤、および遊離イメージング剤は膜を自由に通過し、かつ一番低いチャンバーに蓄積する。前記透析器を、３７℃で振とうしながらインキュベートした。所定の時間点で、各ウェル由来の試料のアリコートを取り出し、サイズ除去クロマトグラフィーにより精製し、漏出または遊離薬剤からのリポソーム薬剤またはイメージング剤をさらに分離する。単離されたリポソームを、リン脂質（ＰＬ）、ドキソルビシン（ＤＯＸ）、およびＧｄ^３＋について分析し、初期試料からのＤｏｘ−対−ＰＬまたはＧｄ^３＋−対−ＰＬの変化を、リポソームから漏出する薬剤および／または検出可能マーカーの測定として計測した。ドキソルビシンを、７０％ 酸イソプロパノール中４９８ｎｍで分光学的分析により決定し、リン脂質を、Ｂａｒｔｌｅｔｔの方法（１９５９）の変法を用いてリン酸分析により決定した。Ｇｄ濃度を、界面活性剤（１％トライトンＸ−１００）の存在下６０℃で５分間リポソームの溶解後、プロトン緩和能におけるＧｄの効果に基づくＮＭＲにより決定した。以前観察された結果と同様に、ドキソルビシン封入の安定性は非常に良く、４８時間後にリポソームと結合して残っているドキソルビシンは８０％以上であった（図１７を参照のこと）。図は、薬剤をトラップする物質としてＧｄ−ＤＴＰＡまたはクエン酸Ｆｅ（ＩＩＩ）をどちらも用いてローディングされたリポソーム中におけるドキソルビシン封入の血漿安定性を示す。ドキソルビシン対リン脂質比の変化は、リポソームからのドキソルビシンの喪失に直接関係する。リポソーム試料を、上記のように３７℃で微量透析分析において５０％ヒト血漿とインキュベートした。

Ｇｄ−対−リン脂質の変化は、時間が経つにつれて同様の傾向がみられた。７２時間インキュベーション後に封入されて残ったＧｄの量は、ドキソルビシンのそれと近かった（７５％ 保有）。故に、本発明の二重薬剤−常磁性マーカーを共ローディングしたリポソームは、両成分に関して活性であるのみでなく、ヒト血漿の存在下でリポソームからの成分の漏出に対して安定でもあった。

図１８は、ドキソルビシンをトラップするための物質としてＧｄ−ＤＴＰＡを用いてローディングされたリポソームにおけるガドリニウム封入の血漿安定性を示す。Ｇｄ−対−リン脂質の割合の変化は、リポソームからのＧｄの喪失と直接関係し得る。リポソーム試料を、３７℃における微量透析分析にて５０％ヒト血漿と一緒にインキュベートした。

本明細書中、上記のすべての刊行物および特許は、参照により本明細書に含まれる。記載した方法の様々な改良法および変法、ならびに本発明の系は、本発明の範囲および精神を逸脱することなく当業者に理解されるだろう。本発明は、特定の好ましい態様について記載されているが、本発明の請求の範囲はかかる特定の態様に限定されると不当に介されるべきでないことが理解されるべきである。実際、当業者に明らかな本発明を実行するための記載した方法の様々な改良法が、上記の特許請求の範囲内に意図されている。

Claims (49)

1. 目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節されるシグナルを有する検出可能マーカーを含む、エンドサイトーシスの遠隔検出のためのリポソーム。
2. 前記検出可能マーカーが、常磁性金属キレートであるかまたはリポポリマーと結合した常磁性金属キレートである、請求項１に記載のリポソーム。
3. 前記検出可能マーカーが、ガドリニウムＤＴＰＡ−ＢＭＡ、ガドリニウムＤＴＰＡおよびガドリニウムＨＰ−ＤＯ３Ａからなる群から選択される、請求項２に記載のリポソーム。
4. 前記リポソームが低い水透過性の膜を含んでなる、請求項２に記載のリポソーム。
5. 前記検出可能マーカーが蛍光マーカーであり、前記リポソームが蛍光消光剤をさらに含む、請求項１に記載のリポソーム。
6. 前記検出可能マーカーが蛍光マーカーであり、そして自己消光濃度で存在する、請求項１に記載のリポソーム。
7. 細胞内在化可能リガンドをさらに含んでなる、請求項１に記載のリポソーム。
8. 該細胞内在化可能リガンドが抗体断片である、請求項７に記載のリポソーム。
9. 該リポソームが、末端に誘導体化されたＰＥＧ−ホスファチジルエタノールアミンリンカーと共有結合した抗体を含んでなる、請求項８に記載のリポソーム。
10. 前記検出可能マーカーがリポポリマーと結合している、請求項１に記載のリポソーム。
11. 前記リポソームがｐＨ感受性リポポリマーを含んでなる、請求項１に記載のリポソーム。
12. （ａ）エンドサイトーシスが起こり得る条件下で、細胞をそのシグナルが目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節される検出可能マーカーを含むリポソームと接触させること、そして
    （ｂ）エンドサイトーシス後に検出可能マーカーのシグナルを検出すること
    を含む、リポソームのエンドサイトーシスの遠隔検出のための方法。
13. 前記検出可能マーカーが、ガドリニウムＤＴＰＡ−ＢＭＡ、ガドリニウムＤＴＰＡおよびガドリニウムＨＰ−ＤＯ３Ａからなる群から選択される、請求項１２に記載の方法。
14. 前記リポソームが低い水透過性の膜を含んでなる、請求項１２に記載の方法。
15. 該検出工程が、ＭＲＩ法によるプロトン緩和能の増強を含む、請求項１２に記載の方法。
16. 前記検出可能マーカーが蛍光マーカーであり、前記リポソームが蛍光消光剤をさらに含む、請求項１２に記載の方法。
17. 該検出工程が、レーザーイメージング法による増強された蛍光活性の検出を含む、請求項１６に記載の方法。
18. 前記検出可能マーカーが蛍光マーカーであり、かつ自己消光濃度で存在する、請求項１２に記載の方法。
19. 該検出工程が、レーザーイメージング法による増強された蛍光活性の検出を含む、請求項１８に記載の方法。
20. 前記リポソームが細胞内在化可能リガンドを含んでなる、請求項１２に記載の方法。
21. 前記検出可能マーカーがリポポリマーと結合している、請求項１２に記載の方法。
22. （ａ）遠隔検出可能マーカー；および
    （ｂ）治療薬
    を含む、リポソーム。
23. 該遠隔検出可能マーカーが、目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節されるシグナルを有する検出可能マーカーである、請求項２２に記載のリポソーム。
24. 前記遠隔検出可能マーカーがリポポリマーと結合している、請求項２２に記載のリポソーム。
25. 該結合された検出可能マーカーが、ジステアロイルアミノ−ＰＥＧ−（Ｌｙｓ−Ｇｄ−ＤＯＴＡ）_４である、請求項２４に記載のリポソーム。
26. 該治療薬が抗ガン剤である、請求項２２に記載のリポソーム。
27. 該抗ガン剤がドキソルビシンである、請求項２６に記載のリポソーム。
28. 該治療薬および該遠隔検出可能マーカーが一緒になって一対のイオン結合対である、請求項２２に記載のリポソーム。
29. 該治療薬が陽イオンであり、該遠隔検出可能マーカーが陰イオンである、請求項２８に記載のリポソーム。
30. 該治療薬が陰イオンであり、該遠隔検出可能マーカーが陽イオンである、請求項２８に記載のリポソーム。
31. 細胞内在化可能リガンドをさらに含む、請求項２２に記載のリポソーム。
32. 該細胞内在化可能リガンドが抗体断片である、請求項３１に記載のリポソーム。
33. 該リポソームが、末端に誘導体化されたＰＥＧ−ホスファチジルエタノールアミンリンカーと共有結合した抗体断片を含んでなる、請求項３２に記載のリポソーム。
34. 該抗体断片が抗ＨＥＲ２抗体断片であり、前記治療薬がドキソルビシンである、請求項３２に記載のリポソーム。
35. （ａ）（ｉ）目的の細胞へのリポソームのエンドサイトーシスにより調節されるシグナルを有する遠隔検出可能マーカー、および
    （ｉｉ）治療薬
    を含むリポソームを投与すること、そして
    （ｂ）遠隔検出可能マーカーのシグナルを検出すること
    を含む、患者の身体におけるリポソーム薬剤の非侵襲的なモニタリングのための方法。
36. 前記検出可能マーカーが、ガドリニウムＤＴＰＡ−ＢＭＡおよびガドリニウムＨＰ−ＤＯ３Ａを含む常磁性ガドリニウムキレートである、請求項３５に記載の方法。
37. 前記リポソームが低い水透過性の膜を含む、請求項３６に記載の方法。
38. 該検出工程が、ＭＲＩ法によるプロトン緩和能の増強を含む、請求項３５に記載の方法。
39. 前記検出可能マーカーが蛍光マーカーであり、前記リポソームが蛍光消光剤をさらに含む、請求項３５に記載の方法。
40. 該検出工程が、レーザーイメージング法による増強された蛍光活性の検出を含む、請求項３９に記載の方法。
41. 前記検出可能マーカーが蛍光マーカーであり、かつ自己消光濃度で存在する、請求項３５に記載の方法。
42. 該検出工程が、レーザーイメージング法による増強された蛍光活性の検出を含む、請求項４１に記載の方法。
43. 前記リポソームが細胞内在化可能リガンドを含んでなる、請求項３５に記載の方法。
44. 該治療薬および該遠隔検出可能マーカーが一緒になって一対のイオン結合対である、請求項３５に記載の方法。
45. 該治療薬が陽イオンであり、該遠隔検出可能マーカーが陰イオンである、請求項４４に記載の方法。
46. 該治療薬が陰イオンであり、該遠隔検出可能マーカーが陽イオンである、請求項４４に記載の方法。
47. 該治療薬が抗ガン剤である、請求項３５に記載の方法。
48. 該抗ガン剤がドキソルビシンである、請求項４７に記載の方法。
49. 該遠隔検出可能マーカーがリポポリマーと結合している、請求項３５に記載の方法。

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