JP2008514208A - ヒト腫瘍抗原からの免疫原性tヘルパーエピトープおよび前記エピトープを使用する免疫療法の方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明の目的上、本明細書に引用されるところの全部の参考文献は、そっくりそのまま引用することにより組み込まれる。
Cheeverら、Annals N.Y.Acad.Sci.1993 690:101−112 Linehan WM、Walther MM、Zbar B.The genetic basis of cancer of the kidney.J Urol.2003 Dec;170(6 Pt 1):2163−72 McCarteyら Cancer Research 1998 15:58 2601−5 Disisら Ciba Found Symp.1994 187:198−211 McKaigら Head Neck 1998 20(3):250−65 Punwaneyら Head Neck 1999 21(1):21−9 Serthら Cancer Res.1999 15:59(4):823−5 Pagano,J.S.Proc.Assoc.Am.Physicians 1999 111(6):573−80 Gillespie,A.M.とColeman,R.E.Cancer Treat.Rev.1999 25(4):219−27 Segal−Eiras,A.とCroce,M.V.Allergol.Immunopathol.1997 25(4):176−81 Zhangら Clin.Cancer Res.1998 4:2669 Kawashimaら Hum.Immunol.1998 59:1 Chaux,P.、Vantomme,V.、Stroobant,V.、Thielemans,K.、Corthals,J.、Luiten,R.、Eggermont,A.M.、Boon,T.とvan der,B.P.(1999)J.Exp.Med.189、767−778 Marks,M.S.、Roche,P.A.、van Donselaar,E.、Woodruff,L.、Peters,P.J.とBonifacino,J.S.(1995)J.Cell Biol.131、351−369 Rodriguez,F.、Harkins,S.、Redwine,J.M.、de Pereda,J.M.とWhitton,J.L.(2001)J.Virol.75、10421−10430 Strubin,M.、Mach,BとLong,E.O.The comletesequence of the mRNA for the HLA−DR−associated invariant chain reveals a polypeptide with an unusual transmembrane polarity EMBO J.3(4)、869−872(1984) Rammensee H、Bachmann J、Emmerich NP、Bachor OA、Stevanovic S.SYFPEITHI:detabase for MHC ligands and peptide motifs.Immunogenetics.1999 Nov;50(3−4):213−9.総説 Kovatsら Eur J Immunol.1997 Apr;27(4):1014−21 Endlら J Clin Invest.1997 May 15;99(10):2405−15 ten Boschら Blood.1996 Nov;88(9):3522−7 Diepolderら J Virol.1997 Aug;71(8):6011−9 van der Burgら J Immunol.1999 Jan 1;162(1):152−60 Friedeら、Biochim Biophys Acta.1996 Jun 7;1316(2):85−101 Seeteら J Immunol.1993 Sep 15;151(6):3163−70. Hammerら Cell.1993 Jul 16;74(1):197−203. Hammerら J Exp Med.1995 May 1;181(5):1847−55 Meziereら(1997)J.Immunol.159、3230−3237 Luら(1981)J.Org.Chem.46、3433 Saikiら(1988)Science 239、487−491
好ましくは、本発明のペプチドは、配列番号1ないし配列番号338若しくはそれらのバリアントのいずれかのアミノ酸配列より本質的になる。
あるいは、こうした選択可能な特質の遺伝子は、所望の宿主細胞を共形質転換するのに使用する別のベクター上にあってよい。
本発明は今や、以下の図面、配列表および実施例を参照してより詳細に記述されることができる。以下の実施例は、具体的説明の目的上のみ提供され、そして本発明を制限することを意図していない。
配列番号1ないし配列番号338は、本発明の、MHCクラスIIにより提示されるペプチドを含有するT細胞エピトープのペプチド配列を示す。
配列番号339ないし配列番号350は、実施例で使用されるところのプライマーの配列を示す。
Ab:抗体
Ag:抗原
APC:抗原提示細胞
CD:表面抗原分類
cpm:1分あたりカウント
DC:樹状細胞
EBV:エプスタイン−バーウイルス
ESI:エレクトロスプレーイオン化
HLA:ヒト白血球抗原
HPLC:高速液体クロマトグラフィー
IFN:インターフェロン
Ii:インバリアント鎖(CD74)
IL:インターロイキン
MALDI:マトリックス支援レーザー脱離/イオン化
MHC:主要組織適合遺伝子複合体
MS:質量分析法
OD450:450nmの波長での光学密度
PBMC:末梢血単核細胞
PCR:ポリメラーゼ連鎖反応
PHA:フィトヘマグルチニン
SDS−PAGE:ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動
S.I.:刺激指数
TOF:飛行時間
ヒトBリンパ芽球様細胞株Awells(IHW−No.9090;HLA−DRB1*0401、HLA−DRB4*0101)を、10%FCS(Pan、独国アイデンバッハ)を含有しかつ2mM L−グルタミン(BioWhittaker、ベルギー・ヴェルヴィエ)、100U/mlペニシリンおよび100μg/mlストレプトマイシン(BioWhittaker)を補充したRPMI 1640(C.C.Pro、独国ノイシュタット)培地中で維持した。トランスフェクトした細胞クローンに関しては0.8mg/mlのG418(PAA Laboratories、オーストリア・リンツ)を添加した。安定形質転換体をAwells細胞の電気穿孔(280V、975μF;Gene Pulser II、Biorad、独国ミュンヘン)により作製し、次いで制限希釈法を使用してクローン化した。抗体L243(抗HLA−DR)(Lampson,L.AとLevy,R.(1980)J.Immunol.125、293−299)およびW6/32(抗HLAクラスI)(Brodsky,F.M.とParham,P.(1982)J.Immunol.128、129−135)を、プロテインA−セファロースビーズ(Pharmacia、スウェーデン・ウプサラ)を使用してハイブリドーマ培養上清から精製した。Th細胞株は、10%ヒトAB血清(Pel−Freez Clinical Systems、LLC、米国ウィスコンシン州ミルウォーキー)を含有しかつ100U/mlペニシリンおよび100μg/mlストレプトマイシン、2mM L−グルタミンならびに50μM β−メルカプトエタノールを補充したIMDM(BioWhittaker)中で誘導かつ培養した。フローサイトメトリー分析で使用した抗体はPharMingen(米国カリフォルニア州サンディエゴ)からであった。
Iiの80のN末端アミノ酸を含有するcDNA(NCBI、GenBank受入番号X00497)を、A.Melms(Malcherek,G.、Wirblich,C.、Willcox,N.、Rammensee,H.G.、Trowsdale,J.とMelms,A.(1998)Eur.J.Immunol.28、1524−1533)から得たベクターpBluescript II KS(+)41−1(Stratagene、独国ハイデルベルク)からPCR反応で増幅し、そして、5'プライマーATCGAAGCTTCCAAGATGCACAGGAGGAGAAGC(配列番号339)および3'プライマーATCGGGATCCTTTGTCCAGCCGGCCCTGCTG(配列番号340)を使用して、pcDNA3のHind IIIおよびBamH I部位にサブクローニングした(pcDNA3−Ii;Invitrogen、独国カールスルーエ)。目的の遺伝子は、それぞれ、ケラチン18(NCBI、GenBank受入番号X12881)について5'プライマーATCGGAATTCTGAGCTTCACCACTCGCTCC(配列番号341)および3'プライマーATCGGCGGCCGCTTAATGCCTCAGAACTTTGGT(配列番号342)、ならびにサイクリンD1(NCBI、GenBankX59798)について5'プライマーATCGGAATTCTGGAACACCAGCTCCTGTGC(配列番号343)および3'プライマーATCGGCGGCCGCTCAGATGTCCACGTCCCGCAC(配列番号344)を使用して、悪性腎組織からのcDNAからPCR反応で増幅した。得られたcDNAを、TOPO TAクローニング(Invitrogen、独国カールスルーエ)を使用してサブクローニングし、そして最後に、Ii配列とインフレームでpcDNA3−IiのEcoR 1およびNot I部位に挿入した。
細胞からのRNAを、製造元の推奨に従ってTRIzol試薬(Invitrogen、独国カールスルーエ)を使用して単離した。cDNAを1μgの全RNAから合成した。リアルタイム定量的PCR(qPCR)を、ABI PRISM 7000配列検出装置(Applied Biosystems、独国ダルムシュタット)を使用して実施した。SYBR Green PCRマスターミックス(Applied Biosystems)を、PCR増幅およびPCR産物のリアルタイム検出に使用した。プライマー配列は後に続くとおりである:18S rRNA、5'プライマーCGGCTACCACATCCAAGGAA(配列番号345)および3'プライマーGCTGGAATTACCGCGGCT(配列番号346);ケラチン18、5'プライマーGAGCCTGGAGACCGAGAAC(配列番号347)および3'プライマーTTGCGAAGATCTGAGCCC(配列番号348);サイクリンD1、5'プライマーCACGATTTCATTGAACACTTCC(配列番号349)および3'プライマーTGAACTTCACCATCTGTGGCAC(配列番号350)。PCR反応は300nMの各プライマーを含む20μl中で実施した(18Sリバースプライマー:50nMのみ)。全部のサンプルを二検体ずつ増幅した。多様な遺伝子についてのトランスフェクトした細胞と野性型細胞の間の発現の差違を、比較閾値周期(comparative threshold cycle)(CT)法(http://docs.appliedbiosystems.com/pebiodocs/04303859.pdfで読み出し可能)を使用する相対定量により、PCR増幅曲線から計算した。18SリボソームRNAを標準化のための参照遺伝子として選んだ。
融合タンパク質は、Iiのアミノ酸残基12−28に結合するmAb PIN.1(Stressgen,Biomol、独国ハンブルク)を使用するウエスタンブロット分析により検出した。簡潔には、細胞を記述された(Hsieh,C.S.、deRoos,P.、Honey,K.、Beers,C.とRudensky,A.Y.(2002)J.Immunol.168、2618−2625)とおり溶解し、ライセートをLaemmli添加液中で沸騰させ、12%SDS−PAGEで分離し、そしてニトロセルロースメンブレンに転写した。BSAでの飽和段階後に、メンブレンをmAb PIN.1(1μg/ml)とともに室温で1時間インキュベートした。タンパク質を、ペルオキシダーゼ結合ヒツジ抗マウスIgG(Amersham Pharmacia、独国フライブルク)を使用して可視化した。いくつかの場合には、トランスフェクトした細胞を、融合タンパク質のエンドソーム/リソソームターゲッティングを検討するために、10〜100μMのクロロキン(Sigma、独国シュタインハイム)の存在下で培養した。細胞をその後溶解し、そしてタンパク質を上述されたとおりウエスタンブロットにより検出した。
凍結細胞ペレット(3.5ないし5×1010細胞)を、以前に記述された(Schirle,M.、Keilholz,W.、Weber,B.、Gouttefangeas,C.、Dumrese,T.、Becker,H.D.、Stevanovic,S.とRammensee,H.G.(2000)Eur.J.Immunol.30、2216−2225)とおり処理し、そして、ペプチドを、標準的プロトコル(Seeger,F.H.、Schirle,M.、Keilholz,W.、Rammensee,H.G.とStevanovic,S.(1999)Immunogenetics 49、996−999)に従い、HLA−DR特異的mAb L243(Lampson,L.A.とLevy,R.(1980)J.Immunol.125、293−299)を使用して単離した。
ペプチドを逆相高速液体クロマトグラフィー(HPLC、SMART装置、μRPC C2/C18 SC 2.1/10;Amersham Pharmacia Biotech、独国フライブルク)により分離し、そして、Bruker Reflex III質量分析計(Bruker Daltonik)を使用するMALDI−TOF質量分析(MS)により画分を分析した。差次的に提示されたペプチドを、記述された(Schirle,M.、Keilholz,W.、Weber,B.、Gouttefangeas,C.、Dumrese,T.、Becker,H.D.、Stevanovic,S.とRammensee,H.G.(2000)Eur.J.Immunol.30、2216−2225)ところのハイブリッド四重極直交加速型飛行時間タンデム質量分析計(Q−TOF;Micromass、英国マンチェスター)でのナノESI(エレクトロスプレーイオン化)タンデムMSによりさらに分析した。
ペプチドは、Fmoc/tBuストラテジーに従って、自動ペプチド合成機EPS221(Abimed、独国ランゲンフェルト)で合成した。TFA/フェノール/エタンジチオール/チオアニソール/水(容量で90/3.75/1.25/2.5/2.5)での1時間若しくは3時間(アルギニン含有ペプチド)の処理による樹脂の除去後に、ペプチドをメチル−ターシャリブチルエーテル(methyl−tert. butyl ether)から沈殿し、メチル−ターシャリブチルエーテルで1回およびジエチルエーテルで2回洗浄し、そして凍結乾燥前に水に再懸濁した。合成産物をHPLC(Varian star、Zinsser analytics、独国ミュンヘン)およびMALDI−TOF質量分析(future、GSG、独国ブルフザール)により分析した。80%未満の純度のペプチドを分取用HPLC(preparative HPLC)により精製した。
末梢血単核細胞(PBMC)を、古典的手順に従い、HLA−DRB1*0408、HLA−DRB1*1101、HLA−DRB3*0202、HLA−DRB4*01陽性ドナーから調製した。樹状細胞(DC)は、使用した培地が血清を含まないX−VIVO 15(BioWhittaker)であったことを除き、以前に記述された(Bender,A.、Sapp,M.、Schuler,G.、Steinman,R.M.とBhardwaj,N.(1996)J.Immunol.Methods.196、121−135)とおり、GM−CSFおよびIL−4の存在下で6日間培養したプラスチック付着性PBMCから得た。第6日に、未熟DCを、CD1a、CD11c、CD14、CD40、CD83、CD86、ならびにHLA−DRの細胞表面発現について、CELLQuestソフトウェアを伴うFACScalibur装置(Becton Dickinson、カリフォルニア州マウンテンビュー)でのフローサイトメトリーにより分析した。DCをその後、50μg/mlポリイノシン酸−ポリシチジル酸(ポリI/C、Amersham Pharmacia、スウェーデン・ウプサラ)および10ng/ml TNF−α(PharMingen)の存在下で更に2日間成熟させ、そして、CD14、CD80、CD83およびCD86の細胞表面発現についてフローサイトメトリーにより再度分析した。成熟DCは、CD80、CD83およびCD86分子の明瞭な上方制御を示した。
3×105の成熟DCに、10μMのペプチドNPPSMVAAGSVVAAVを24ウェルプレート中で2時間添加し、そして十分に洗浄した。その後、4×106の新鮮自己PBMCを、Th−1発生に有利であるために10ng/mlのIL−12p70の存在下でDCに添加した。PBMCを、10U/mlのIL−2および5ng/mlのIL−7の存在下で、ペプチドを負荷した照射した自己PBMCで毎週再刺激した。3および5回の再刺激後にT細胞を合わせ、そしてペプチドの存在下で自己PBMCに対し試験した。Tヘルパー細胞株をその後、1μg/mlのPHA、25〜50U/mlのIL−2および5ng/mlのIL−7の存在下に、照射した同種PBMCで1〜2週ごとに増幅し、そしてその後、トランスフェクトした細胞株の認識について試験した。3ないし4週ごとに、Tヘルパー細胞株を、10μMのペプチド、10U/mlのIL−2および5ng/mlのIL−7の存在下に、照射した自己PBMCで再刺激した。
Tヘルパー細胞活性化は、チミジン取り込みならびにサイトカイン分泌により推定されるところの細胞増殖により試験した。簡潔には、2×105細胞を、10μMのペプチド若しくは3μg/mlのPHAの存在若しくは非存在下に3検体ずつ96ウェルプレート中で2×105の照射した自己PBMCとともにインキュベートした。24時間後に2部分の50μlの上清を収集かつ凍結し、そして50μlの新鮮培地を細胞に添加した。54時間後に、50μlのトリチウム化チミジン含有培地(0.074MBq/ウェル、Hartmann Analytic、独国ブラウンシュヴァイク)を添加し、そして、チミジンの取り込みを、シンチレーションカウンター(Microbeta、Wallac、独国フライブルク)を使用して72時間に測定した。細胞増殖は、比:(刺激したT細胞のcpmの平均)/(未刺激のT細胞のcpmの平均)に対応する刺激指数(S.I.)として表す。IL−2分泌は、IL−2依存性CTLL−2細胞株を使用して測定した。簡潔には、104細胞を上清の存在下に20〜24時間インキュベートした。その後、チミジン含有培地(0.055MBq/ウェル)を追加の7〜8時間添加し、そしてチミジンの取り込みを上述したとおり測定した。結果はまたS.I.として表す。
トランスフェクタントに対するT細胞の検出可能な非自己反応の非存在を、多様な細胞数の照射したトランスフェクタントの存在下で該Tヘルパー株を生成させるのに使用したドナーからの新鮮PBMCを共培養することにより立証した。細胞増殖ならびにIL−2、IL−4、IL−6およびIFN−γ分泌を上述したとおり測定し、そして、さらなる実験で使用されるべきエフェクター/標的比をかように決定した。
融合タンパク質を発現する細胞クローンの生成
われわれは、挿入物の3'端の後に一般的クローニング部位(GCS)が続いたような方法で、ベクターpcDNA3中にIiの80のN末端アミノ酸をコードするcDNAをクローン化した。これは、われわれに、Iiおよび目的の遺伝子の融合タンパク質を発現するための融通の利くベクターを与えた。Iiとインフレームで、われわれは、サイクリンD1のcDNA、ならびに対照としてのケラチン18をクローン化した。
IiのN末端が、タンパク質の標的をMHCクラスII経路に向けるのに十分であることが既に記述されている(Sanderson,S.、Frauwirth,K.とShastri,N.(1995)Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A 92、7217−7221、Wang,R.F.、Wang,X.、Atwood,A.C.、Topalian,S.L.とRosenberg,S.A.(1999)Science 284、1351−1354、Malcherek,G.、Wirblich,C.、Willcox,N.、Rammensee,H.G.、Trowsdale,J.とMelms,A.(1998)Eur.J.Immunol.28、1524−1533)。われわれの構築物がAgプロセシングのその経路に実際に従ったかどうかを試験するため、われわれは、トランスフェクタントを、増大する量のクロロキン(リソソームのpHを上げることによりタンパク質のリソソーム分解を阻害する細胞傷害性の薬物)(Kaplan,J.とKeogh,E.A.(1981)Cell 24、925−932、Tietze,C.、Schlesinger,P.とStahl,P.(1982)J.Cell.Biol.92、417−424、Seglen,P.O.(1983)Methods Enzymol.96:737−64.、737−764)とともに4時間インキュベートした。細胞をその後溶解し、そして融合タンパク質をウエスタンブロットにより検出した。図2は、タンパク質バンドが、クロロキンの量を増大させるにつれてますます強くなることを示し、融合タンパク質の量がクロロキン濃度とともに増大することを示し、そして従って融合タンパク質がMHCクラスIIのタンパク質分解経路に従うことを提供する。
各クローンおよびトランスフェクトされていない細胞株からの3.5ないし5×1010細胞を増殖させ、そして、HLA−DRに結合したペプチドを、以前に記述された(Seeger,F.H.、Schirle,M.、Keilholz,W.、Rammensee,H.G.とStevanovic,S.(1999)Immunogenetics 49、996−999)とおりにHPLCを介して単離かつ分離した。トランスフェクトされていない細胞株およびAwells−Ii−サイクリンD1クローンのHPLCクロマトグラムを比較した(図3)。HLA−DRで提示されるペプチドレパートリーの小さなほとんど定量的な差違は、図3に示されるところのわずかに異なるUV痕跡になった。われわれの実験から期待されたとおり、明瞭なUVシグナルは、トランスフェクタントにより独占的に提示されるペプチドに割り当て得なかった。Awellsとトランスフェクトした株の間のHLA−DR拘束性ペプチド提示のただわずかな差違は、HPLC画分の大部分が同一のパターンを含有したMALDI−TOF分析によってもまた可視的になった。図4は、ケラチン18でトランスフェクトした株から溶出されたペプチド混合物中にのみ存在しかつケラチン18由来ペプチドを表した顕著な個別のシグナル(m/z:1732.96)を含む唯一の画分の質量分析を示す。図5では、1370.1のm/zシグナルは、サイクリンD1トランスフェクタントからの独占的に提示される1ペプチドを示す。双方のペプチドをナノフローESI MS/MS(タンデムMS)によりより詳細に分析した。発明者は、それぞれ2種のトランスフェクトされた融合タンパク質由来のペプチドNPPSMVAAGSVVAAV(配列番号1)(サイクリンD1198−212)(図6)およびSHYFKIIEDLRAQI(配列番号2)(ケラチン18126−139)を同定することが可能であった。該配列を、対応する合成ペプチドの質量スペクトルにより確認した。
新規のHLAクラスII由来の腫瘍関連および推定で免疫原性のペプチドの同定のための概念の証明を確立するために、同定されたサイクリンD1ペプチドに特異的なT細胞を、HLA−DR4+樹状細胞に負荷した対応する合成ペプチドでのin vitro刺激により誘導した。それぞれ第3および5回のin vitro(再)刺激後に、Tヘルパー細胞株の特異性を試験した。T細胞を、図7(上図)に示されるとおりサイクリンD1ペプチドにより特異的に刺激した。T細胞は、サイクリンD1ペプチドを負荷した自己PBMCに応答して増殖した(S.I.=5.4)。陽性対照として、PHAは強いT細胞増殖を誘導した(S.I.=330)。発明者は次に、どの型のTヘルパー細胞(Th1対Th2)がペプチドに応答して刺激されたかを、サイトカインプロファイルを検査することにより分析した。図7(下図)に示されるとおり、T細胞はペプチドに応答して低い程度までとは言えIL−2を産生した一方、それらはPHA刺激に対しなお感受性であった。対照的に、ペプチドで誘導したT細胞刺激は、強いIFN−γ分泌(3250pg/ml、図7C)をもたらしたが、しかしIL−4若しくはIL−6分泌をもたらさなかった。とは言え、T細胞はなお、PHAで誘導されるサイトカイン分泌に対しそれぞれ高度におよび中程度に感受性であった。HLA−DR4/サイクリンD1 198−212 に特異的なT細胞受容体でのCD4+ Tヘルパー細胞の最終的な非特異的活性化についての陰性対照としての無関係のペプチドでの刺激を表8に提示する。結論として、確立されたCD4+ Tヘルパー細胞株は、サイクリンD1198−212ペプチドに特異的でありかつTh1型のものである。この型は、腫瘍細胞の排除における特異的CD8+キラーT細胞の援助においてとりわけ重要である。
Awells細胞およびT細胞株は完全にHLAが適合しているわけではないため、われわれは最初に、双方を共培養することによりいずれかの非自己反応が生じ得るかどうかを試験した。簡潔には、多様な細胞数の照射したAwells−Ii−ケラチン18若しくはAwells−Ii−サイクリンD1トランスフェクタントを、T細胞ドナーからの固定した数のPBMCの存在下で共培養し、そして、細胞増殖ならびにIL−2、IL−4、IL−6およびIFN−γ分泌を測定した。中程度のT細胞増殖が高細胞数の双方のトランスフェクタントにより誘導されたが、しかし、サイトカイン分泌は観察されなかった(データは示されない)。従って、われわれは、サイトカイン分泌の非存在下でわずかなT細胞増殖のみが観察された5/1という(エフェクターT細胞)/(標的細胞)比を使用することを決定した。結果として、サイトカイン分泌をもたらすT細胞活性化は、トランスフェクタントにより提示される同族の抗原によってのみ特異的に誘導され得た。
活性化型細胞傷害性Tリンパ球(CTL)は、HLA−DRクラスII分子、およびサイクリンD1198−212(配列番号1)からのペプチドを使用して製造する。
一般に、PCT特許出願WO 93/17095号に記述される方法を使用してCTLを製造する。Awells細胞を使用してペプチド抗原をCTLに提示する。HLA−DR分子はAwells細胞により発現される。試験されるべきペプチドを、Applied Biosystemsの合成機、ABI 431A(米国カリフォルニア州フォスターシティ)で合成し、そしてその後HPLCにより精製する。WO 93/17095号に詳細に記述されるとおり、特異的細胞傷害性T細胞の生成のためin vitro条件を最適化するために、刺激体細胞の培養物を適切な培地中で維持する。刺激体細胞は、好ましくは無血清培地(例えばExcell 400)中で維持されるAwells細胞である。
活性化型CD4+細胞は、処置されている個体への該CD4+細胞の投与前に、Awells細胞培養物から収集する。
Honsikへの米国特許第4,844,893号明細書およびRosenbergへの米国特許第4,690,915号明細書に例示されるもののような細胞成分の再導入方法を使用する。例えば、静脈内注入を介する活性化型CD8細胞の投与が適切である。
Claims (32)
- 配列番号1ないし配列番号338若しくはそれらのバリアントのいずれかの最低1種の配列を含んでなるペプチドの群から選択されるが、但し該ペプチドは無傷のヒトの腫瘍関連ポリペプチドでない、腫瘍関連ペプチド。
- ペプチドが、配列番号1ないし配列番号338若しくはそれらのバリアントのいずれかのアミノ酸配列より本質的になる、請求項1に記載の該腫瘍関連ペプチド。
- 前記ペプチドが9から30アミノ酸の全体長を示す、請求項1若しくは2に記載の該腫瘍関連ペプチド。
- 配列番号1ないし配列番号338のいずれかのアミノ酸配列よりなる、請求項1ないし3のいずれかに記載の該腫瘍関連ペプチド。
- ヒト主要組織適合抗原複合体(MHC)クラスIIの分子、とりわけHLA−DR4に結合する能力を有する、請求項1ないし4のいずれかに記載の該腫瘍関連ペプチド。
- HLA−DRに結合される場合に、結合されたペプチドが、所定のアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドを異常に発現する細胞を認識する細胞傷害性Tリンパ球(CTL)の産生を導き出すことが可能である、請求項5に記載の該腫瘍関連ペプチド。
- 該ペプチドが非ペプチド結合を包含する、請求項1ないし6のいずれかに記載の該腫瘍関連ペプチド。
- 該ペプチドが、とりわけHLA−DR抗原関連インバリアント鎖(Ii)のN末端アミノ酸を含んでなる融合タンパク質である、請求項1ないし7のいずれかに記載の該腫瘍関連ペプチド。
- 請求項1ないし8のいずれか1つに記載ペプチドをコードする核酸。
- DNA、cDNA、PNA、CNA、RNA若しくはそれらの組合せである、請求項9に記載の該核酸。
- 請求項9若しくは10に記載の核酸を発現することが可能な発現ベクター。
- 請求項9若しくは10に記載の核酸または請求項11に記載の発現ベクターを含んでなる宿主細胞。
- 組換えAwells細胞である、請求項12に記載の該宿主細胞。
- 請求項1ないし8のいずれか1つに記載の腫瘍関連ペプチドの製造方法であって、請求項13に記載の宿主細胞を培養すること、および該ペプチドを宿主細胞若しくはその培地から単離することを含んでなる、製造方法。
- 請求項1ないし8のいずれか1つに記載の腫瘍関連ペプチド、請求項9若しくは10に記載の核酸、または請求項11に記載の発現ベクター、および薬学的に許容される担体を含んでなる医薬組成物。
- 医薬品での使用のための、請求項1ないし8のいずれか1つに記載の腫瘍関連ペプチド、請求項9若しくは10に記載の核酸、または請求項11に記載の発現ベクター。
- 請求項1ないし8のいずれか1つに記載の腫瘍関連ペプチド、請求項9若しくは10に記載の核酸、または請求項11に記載の発現ベクターを含んでなる癌ワクチン。
- 請求項1ないし6のいずれかに示されるところのアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドを標的細胞が異常に発現している患者における標的細胞の死滅方法であって、有効量の請求項1ないし8のいずれか1つに記載のペプチド、または請求項9若しくは10に記載の核酸、または請求項11に記載の発現ベクターを患者に投与することを含んでなり、前記ペプチドの量若しくは前記核酸の量若しくは前記発現ベクターの量は、前記患者で抗標的細胞免疫応答を惹起するのに有効である、上記方法。
- 請求項1ないし6のいずれかに示されるところのアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドを標的細胞が異常に発現している患者中の標的細胞を死滅させるための医薬品の製造における、請求項1ないし8のいずれか1つに記載の腫瘍関連ペプチド、または請求項9若しくは10に記載の核酸、または請求項11に記載の発現ベクターの使用。
- 活性化型細胞傷害性Tリンパ球(CTL)のin vitroの製造方法であって、前記CTLを抗原特異的様式で活性化するのに十分な時間、適する抗原提示細胞の表面上に発現された抗原を負荷したヒトクラスII MHC分子とCTLをin vitroで接触させることを含んでなり、該抗原が請求項1ないし8のいずれか1つに記載のペプチドである、製造方法。
- 該抗原が、十分な量の該抗原を抗原提示細胞と接触させることにより、適する抗原提示細胞の表面上で発現されたクラスII MHC分子に負荷される、請求項20に記載の方法。
- 抗原提示細胞が請求項11に記載の発現ベクターを含んでなる、請求項20に記載の方法。
- クラスII MHC分子がHLA−DR4である、請求項20ないし22のいずれか1つに記載の方法。
- 請求項1ないし6のいずれか1つに示されるアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドを異常に発現する細胞を選択的に認識する、請求項20ないし23のいずれか1つに記載の方法により製造された活性化型細胞傷害性Tリンパ球(CTL)。
- 請求項1ないし6のいずれか1つに示されるアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドを異常に発現する細胞を認識するT細胞受容体(TCR)であって、該TCRが、請求項23若しくは24の細胞傷害性Tリンパ球(CTL)、または該TCRに機能上同等な分子から得ることができる、TCR。
- 請求項24若しくは25に記載のT細胞受容体(TCR)をコードする核酸。
- 請求項24若しくは25に記載のT細胞受容体(TCR)を発現することが可能な発現ベクター。
- 請求項1ないし6のいずれか1つに示されるアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドを標的細胞が異常に発現している患者における標的細胞の死滅方法であって、請求項24若しくは25に定義されるところの有効な数の細胞傷害性Tリンパ球(CTL)を患者に投与することを含んでなる、上記方法。
- 請求項1ないし6のいずれかに示されるところのアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドを標的細胞が異常に発現している患者における標的細胞の死滅方法であって、
(1)患者から細胞傷害性Tリンパ球(CTL)を得る段階;
(2)前記細胞に、請求項24若しくは25に定義されるところのT細胞受容体(TCR)若しくは機能上同等な分子をコードする核酸を導入する段階;および
(3)段階(2)で製造した細胞を患者に導入する段階
を含んでなる、上記方法。 - 標的細胞が癌細胞である、請求項18、28若しくは29のいずれか1つに記載の患者における標的細胞の死滅方法。
- 癌が、請求項1ないし6のいずれかに示されるところのアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドを異常に発現する腎癌である、請求項36に記載の患者における標的細胞の死滅方法。
- 請求項1ないし6のいずれか1つに示されるアミノ酸配列を含んでなるポリペプチドを標的細胞が異常に発現している患者において標的細胞を死滅させるための医薬品の製造における、請求項24若しくは25に定義されるところの細胞傷害性Tリンパ球の使用。
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