JP2006525405A - 注入可能な架橋されたポリマー調製物およびその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
(a)アルギン酸ナトリウムを水または任意の他の好適な水性緩衝液に溶解する工程;
(b)工程(a)で得られたアルギン酸塩溶液を、好適な架橋剤を用いて、均一な架橋されたアルギン酸塩溶液が得られるまで激しく撹拌しながら、前記架橋剤の水溶液を加えることによって架橋する工程
を含む。
(a)本発明において規定されるような架橋されたポリマー溶液またはその組成物;
(b)必要としている患者の心臓部位に(a)のポリマー溶液を投与するための手段;
(c)前記ポリマー溶液をどのように使用するかの指示マニュアル;
を含む、損傷した組織を修復するためのキットを提供する。
図2は1%(w/v)のLVGアルギン酸塩水溶液(LVGの粘度=127cP)の定常剪断粘度に対するカルシウムイオン添加の影響を示すグラフである。略号:visc.、粘度;S.R.、剪断速度。
図3は1%(w/v)のLF5/60アルギン酸塩溶液の機械的スペクトルおよびカルシウムイオン架橋の効果を示すグラフである。図3A:カルシウムイオンなし。図3B:0.3%(w/v)のカルシウムイオン。図3C:0.4%(w/v)のカルシウムイオン。略号:Freq.、振動数
図4は1%(w/v)のLVGアルギン酸塩溶液の機械的スペクトルおよびカルシウムイオン架橋の効果を示すグラフである。図4A:カルシウムイオンなし。図4B:0.3%(w/v)のカルシウムイオン。略号:Freq.、振動数
図5は超音波心臓造影法によるLVリモデリングを示すグラフである。図5A:LV拡張期の大きさ、Mモード(アルギン酸塩)。図5B:LV拡張期の大きさ、Mモード(対照)。図5C:LV収縮期の大きさ(アルギン酸塩)。図5D:LV収縮期の大きさ(対照)。図5E:LV拡張期の面積(アルギン酸塩)。図5F:LV拡張期の面積(対照)。図5G:LV収縮期の面積(アルギン酸塩)。図5H:LV収縮期の面積(対照)。略号:B.、基準;2mo.、2ヶ月。
図6は2−D超音波心臓造影法によるLVリモデリングを示すグラフである。図6A:AW2−D(アルギン酸塩)。図6B:AW2−D(対照)。図6C:LV拡張期の大きさ2−D(アルギン酸塩)。図6D:LV拡張期の大きさ2−D(対照)。図6E:LV収縮期の大きさ2−D(アルギン酸塩)。図6F:LV収縮期の大きさ2−D(対照)。略号:B.、ベースライン;2mo.、2ヶ月。
図7は超音波心臓造影法によるLV機能を示すグラフである。図7A:LV縮まり率(アルギン酸塩)。図7B:LV縮まり率(対照)。図7C:LV面積変化率(アルギン酸塩)。図7D:LV面積変化率(対照)。略号:B.、ベースライン;2mo.、2ヶ月;T、時間。
図8はアルギン酸塩生体適合材料は集中的な血管新生を誘導し、瘢痕厚さを増大すること示す写真である。図8A:正常な心筋へのアルギン酸塩生体適合材料の注入。α−SMA抗体により、血管新生(矢印)および筋繊維芽細胞が同定される。図8B:梗塞した心筋へのアルギン酸塩生体適合材料の注入は、瘢痕を有する数多くの筋繊維芽細胞を明らかにし、瘢痕の厚さを増大させた(12.5倍の倍率)。図8C:集中的な血管新生(褐色の染色)を示す図8Bの高倍率像(100倍)。図8D:図8Bの高倍率像(200倍)は多くの筋繊維芽細胞および集中的な血管新生(褐色の染色)を明らかにした。
略号:Norm、正常。
図9は梗塞した心筋へのアルギン酸塩生体適合材料の注入はSDF−1(幹細胞に対する化学誘因物質)の発現を高めることを示す写真である。抗SDF−1抗体により免疫染色されたスライド切片の顕微鏡検査により、SDF−1タンパク質(褐色の色)の強い発現が、内皮細胞、SMC、繊維芽細胞において明らかにされ、また、予想外ではあったが、境界域の心筋細胞において明らかにされた。図9A:架橋されたアルギン酸塩生体適合材料による処置群から得られたサンプルの抗SDF−1染色(200倍)。図9B:対照(培養培地により処置された)から得られたサンプルの抗SDF−1染色(200倍)。図9C:梗塞した心筋と正常な心筋との間の境界域における染色された筋細胞に焦点を合わせた、アルギン酸塩生体適合材料による処置群から得られたスライド切片の抗SDF−1染色。略号:Cont.、対照。
図10は血管形成の(面積あたりの血管数での)定量を示すグラフである。略号:Ves.、血管;Alg、アルギン酸塩;cont.、対照。
図11はアルギン酸塩生体適合材料の注入は細胞の複製および再生を梗塞した心筋において誘導することを示す写真である。LAD閉塞後8週目の抗Ki67抗体による免疫染色。図11A:アルギン酸塩の注入を受けているブタは、DNA活性を有する内皮細胞(矢印)を高頻度で明らかにした。図11B:境界域の検査は、Ki67染色が陽性であるいくつかの筋細胞(細い矢印)、内皮細胞および繊維芽細胞を明らかにした。対照的に、生理的食塩水を受けている動物(データは示されず)では、梗塞域内のみ、繊維芽細胞の形態学を有し、Ki67との反応性を有する細胞が高頻度で存在した。略号:myoc.、心筋;Inf.、梗塞。
図12は注入可能な組織工学は虚血性僧帽弁逆流を逆転させることを示す図である。図12A:僧帽弁の輪状拡張を伴う虚血性僧帽弁逆流の概略図。図12B:左心室の全体的な幾何形状の変化および僧帽弁尖の拘束を伴う虚血性僧帽弁逆流の概略図。図12C:梗塞したLVの後外側セグメント(矢印)へのアルギン酸塩に基づく生体適合材料の注入は、変位した乳頭筋の位置を以前の輪の方に戻して、拘束およびMRを軽減する。図12D:アルギン酸塩注入の概略図。
図13はポリマーは注入部位における細胞の保持を増大させ、血管形成を高めることを示すアルギン酸塩−筋芽細胞懸濁物の注入の写真である。図13A:抗デスミン抗体による免疫染色により、多核性筋芽細胞が同定された(褐色の染色、400倍)。図13B:アルギン酸塩溶液を伴う筋芽細胞懸濁物の注入により処置された心臓のH&E染色切片により、血管新生、および、赤血球で満たされた機能的な血管が明らかにされた(400倍)。図13C:4週間後の心筋内の筋芽細胞の生存および存在位置。抗骨格性早性ミオシン重鎖抗体による免疫染色により、注入部位における骨格性横紋化筋細胞(矢印)が明らかにされた(400倍)。
図14はアルギン酸塩生体適合材料の注入は、梗塞した心筋への幹細胞の呼び寄せを増強することを示す写真である。ヒト始原細胞についてのHLA−DR免疫染色(褐色の色)は、瘢痕組織(輸注後1週間)において、注入されたCD133+の始原体細胞が、架橋されたアルギン酸塩生体適合材料が注入された部位に向かい、その部位に定着したことを明らかにした。
下記の略号が本明細書において使用される:
BMP: 骨形態形成タンパク質
bFGF: 塩基性繊維芽細胞増殖因子
CHF: 慢性心不全
2−D: 二次元
DDW: 2回蒸留水
ECM: 細胞外マトリックス
EDA: 拡張期終期面積
ESA: 収縮期終期面積
GPC: ゲル浸透クロマトグラフィー
IGF: インスリン様増殖因子
LA: 左心房
LAD: 左前下行
LV: 左心室
LVEF: LV駆出率
LVID: LV内部大きさ
MALLS:多角度レーザー光散乱
MHC: ミオシン重鎖
MI: 心筋梗塞
Mn: 分子数
MR: 僧帽弁逆流
Mw: 分子量
PD: 多分散度
PM: 乳頭筋
SDF: 間質細胞由来因子
SMA: 平滑筋アクチン
TGF: トランスフォーミング増殖因子
VEGF: 血管内皮細胞増殖因子
WMSI: 壁運動スコア指数
(a)アルギン酸ナトリウムを水または任意の他の好適な水性緩衝液に溶解する工程;
(b)工程(a)で得られたアルギン酸塩溶液を、好適な架橋剤を用いて、均一な架橋されたアルギン酸塩溶液が得られるまで激しく撹拌しながら、前記架橋剤の水溶液を加えることによって架橋する工程
を含む。
(a)アルギン酸ナトリウムを水または任意の他の好適な水性緩衝液に溶解する工程;
(b)工程(a)で得られたアルギン酸塩溶液を、均一な溶液が得られるまで激しく撹拌しながら、好適な体積の2%(w/v)グルコン酸カルシウム溶液を加えることによってカルシウムイオンにより架橋する工程
を含む方法を提供する。
とを見出した。
(a)本発明において規定されるようなポリマー溶液またはその組成物;
(b)必要としている患者の心臓部位にポリマー溶液を投与するための手段;
(c)前記ポリマー溶液をどのように使用するかの指示マニュアル;
を含む、損傷した組織を修復するためのキットを提供する。
本研究は、ベングリオン大学動物管理使用委員会およびテルアビブ大学Sheba医療センターのガイドラインに従って行われ、アメリカ心臓学会および「実験室動物の管理および使用のためのガイド」(保険福祉省、NIH刊行物番号85−23)の方針に合致している。
アルギン酸ナトリウム(3kDa〜300kDaの範囲にあるMw;FMC Biopolymers、Drammen、ノルウェー)を2回蒸留水(DDW)に溶解して、2%(w/v)の最終濃度にした。このアルギン酸塩溶液を、よりなめらかな溶液が得られるまで激しく撹拌しながら、2%(w/v)のグルコン酸カルシウム溶液(D−グルコン酸、ヘミカルシウム塩;Sigma)を加えることによってカルシウムイオンにより架橋する。架橋されたアルギン酸塩溶液の粘度は、カルシウムイオンおよびアルギン酸塩の重量比を変化させることによって、そしてまた、ポリマーの分子量および組成(M/G比)を慎重に選択することによって操作することができる。それにもかかわらず、すべての場合において、架橋されたアルギン酸塩溶液は、注入することを可能にする粘度を有した。架橋はホモジナイザーによって行われた。
様々なサンプルを、Waters606ポンプと、その後に直列につながれた2つのPSS Supremaゲル浸透カラムとを含むクロマトグラフィーシステムで分離した。カラムの説明:大きさ、300x8mm2;粒子サイズ、10mm;多孔性、3000Aおよび10000A。流速は0.5mL/分であった。カラムは、Techlab K−4の制御された加熱炉の内側で25℃の一定の温度で保たれた。このクロマトグラフィーシステムは、632.8nmで作動するHe/Neレーザー、K5屈折セル、および14°〜163°の角度での18個の検出器を備えるDawn DSP(Wyatt Technology Corporation)多角度レーザー光散乱(MALLS)光度計に取り付けられた。濃度を、校正された干渉分光法屈折計Optilab DSP(Wyatt Technology Corporation)によってモニターした。データ処理およびモル質量の計算を、Wyatt ASTRAソフトウェア(バーション4.7)を用いて行った。各サンプルは、再現性を保証するために3回注入された。アルギン酸塩のdn/dcは、Wyatt dn/dcソフトウェアによって制御されるOptilab DSPを用いて測定されたとき、0.155mL/g(水性緩衝液)であることが見出された。緩衝液水溶液を、0.1MのNaNO3、0.02%(w/v)のNaN3および10mMのイミダゾールが補充された超純水(0.055μs/cm、USF SERAL Purelab RO75、それに続くUSF SERAL Purelab UV)から調製した。緩衝液をNaNO3により滴定してpH7.0にし、0.1μmのフィルター(Gelman Sciences VacuCap60)によりろ過した。
レオロジー測定を、コーンプレートモード(1°および4°のコーン角度、60mmおよび40mmの直径をそれぞれ有する)で操作されるCarriMed CLS50制御の応力レオメーター(CarriMed Instruments Ltd.、Dorking、英国)において行った。小さい振幅の振動剪断の実験(0.1Hz〜10Hz)を線形粘弾性限界内で行った。振動数走査を、サンプルに対する損傷を防止するためにできる限り低い応力で行った。応答の直線性を、線形の粘弾性を確認するために連続してモニターした。
MIモデルは本発明者らによって以前に記載された[Etzion他(2001)、同上;Leor他(1996)、同上]。オスSprague−Dawleyラット(250gまで)を40mg/kgのケタミンおよび10mg/kgのキシラジンの組合せで麻酔し、ラットは挿管され、機械的に通気された。胸部を左開胸術によって開き、心膜を除き、近位左冠状動脈を壁内縫合により永続的に閉塞させた。梗塞後1週間目に、ラットを麻酔し、無菌技術下で胸部を開いた。梗塞した領域を、表面の瘢痕および壁運動の無動に基づいて目視により確認した。ラットを、27ゲージのニードルを使用する100μL〜200μLのアルギン酸塩系生体適合材料または無血清培養培地のいずれかの注入に対して選択した。瘢痕内への注入の後、手術による切開を縫合して閉じた。
注入後8週で、動物を過剰量のフェノバルビタールで屠殺した。心臓を集め、組織学的検査および免疫組織学的検査のために処理した。隣接するブロックをパラフィンに包埋し、5μmの薄片に切片化し、ヘマトキシリンおよびエオシンにより染色した。連続した切片を、胚性心筋細胞に存在するが、成体の正常な心筋細胞には存在しないα−アクチン平滑筋(SMA)イソ型[Leor,J,他(1996)、Circulation、94:II332〜336]に対する抗体、早性ミオシン重鎖(MHC)に対する抗体(Sigma)、Ki67に対する抗体(Novocastra Ltd)、SDF−1(R&D systems)に対する抗体により免疫標識した。
梗塞した心筋および梗塞周囲の心筋における血管新生に対するアルギン酸塩注入の影響を、周細胞および細動脈に対する抗α−SMA抗体(Sigma)による代表的なスライド片の免疫組織学的染色によって評価した。低倍率での検査の後、5つの連続した隣接する視野を200倍の倍率で各切片から写真撮影した。血管の数を、コンピュータ処理された画像分析によって顕微鏡写真から評価して、移植群および対照群の心臓において、血管の数を数え、かつ血管密度(1mm2あたりの毛細管および細動脈の平均数)を計算した。
経胸壁超音波心臓造影法を、MI後24時間以内(ベースラインとなる心エコー図)およびMI後8週においてすべての動物に対して行った。以前の報告では、ラットにおける経胸壁超音波心臓造影法の正確性および再現性が明らかにされている[Etzion他(2001)、同上;Leor,J.他(2000)、同上;Litwin,S.E.他(1994)、Circulation、89:345〜354;Schwarz,E.R.他(1998)、Basic Res.Cardiol、93:477〜486]。心エコー図を、以前に報告されたように、12MHzフェーズドアレイ変換器を備える市販の超音波心臓造影法システム(Hewlett Packard)を用いて行った。測定されたパラメーターは下記の通りであった:LV前壁の厚さ;LV拡張終期の最大の大きさ;Mモードおよび2D画像化における左心室収縮終期の最小の大きさ;ならびに、収縮期機能の尺度としての縮まり率(これはFS(%)=[(LVIDd−LVIDs)/LVIDd]x100として計算された;式中、LVIDはLVの内部の大きさを示し、sは収縮期であり、dは拡張期である)。LV面積の変化指数(%)が[(EDA−ESA)/EDA]x100として計算された(式中、EDAはLV拡張終期の面積を示し、ESAはLV収縮終期の面積を示す)[Mehta,P.M.他(1988)、J.Am.Coll.Cardiol.、11:630〜636]。すべての測定は、3回の連続した心臓周期について平均化され、処置群について知らされていない経験豊かな技師によって行われた。
心筋梗塞を生じさせるために使用された方法は、以前に記載された方法[Yau,T.M.他(2003)、Ann Thorac Surg、75:169〜176;Watanabe,E.他(1998)、Cell Transplant、7:239〜246]と同じであった。簡単に記載すると、メスSincklaire(ミニ)ブタを使用した(体重、30kg〜40kg)。ブタに対するすべての手術処置は全身麻酔下および連続した心電図記録法モニターリングのもとで行われた。動物は、4%イソフルランによる麻酔誘導の前にケタミン(20mg/kg〜30mg/kg、筋肉内)で準備投薬された。麻酔をイソフルラン(1%〜2.5%)で維持した。右大腿動脈を単離し、導入シースによりカニューレ挿入した。これを介して、X線透視装置による誘導のもとで、心臓カテーテルを左前下行動脈(LAD)の中央部分に入れ、塞栓形成コイル(Boston Scientific、米国)をガイドワイヤによりカテーテルから押し出し、LADの遠位部分に設置した。この手法は血栓を誘導し、これにより、血管造影法および心電図記録法により確認される左心室における心筋梗塞を生じさせた。電気的DCの電気的除細動を必要なときには与えた。
僧帽弁逆流を、回旋冠状動脈のコイル塞栓形成の後、広範囲の後部MIを生じさせることによって発生させた。
アルギン酸塩の注入をMI後7日目〜10日目に行った。ブタに麻酔し、無菌条件下で胸部を開いた。梗塞した領域を、表面の瘢痕および壁運動の異常に基づいて目視により確認した。ブタを、梗塞した心筋への2回〜3回のアルギン酸塩の注入(2.5mLまで)、または対照としての生理的食塩水の注入(2.5mLまで)に無作為に割り当てた。空気を胸部から追い出して、手術による切開を縫合して閉じた。最初の一連の先導実験において、この手法の技術的側面を改善した。移植後8週目に、ブタをフェノバルビタールの過剰量で安楽死させた。心臓を組織学および免疫組織化学のために集め、切片化して、処理した。
超音波心臓造影法を、(2.5MHz)フェーズドアレイ変換器を超音波システム(Sonos5500、Hewlett−Packard、Andover、Massachusetts)とともに使用して、MI直後、移植前、MI後10日目、ならびにMI後の30日目および60日目に麻酔下で行った。画像をVHSビデオテープに記録した。拡張終期および収縮終期のフレームを先端および胸骨近辺の標準的な図から選択した。
心室機能の浸襲的研究が終了した後、心臓を塩化カリウムにより停止させ、速やかに摘出した。心房を除き、心臓の重量を測定した。その後、冠状動脈を100mLの10%ホルムアルデヒドにより灌流し、心臓を、7日間、ホルムアルデヒド溶液中で30mmHgの心室内圧力を用いて拡張期の状態で固定処理し、その後、組織学のために切片化した。固定処理後、心臓を5mm厚の薄片に薄片化し、各切片を写真撮影した。各切片における平均瘢痕長さを心外膜瘢痕長さおよび心内膜瘢痕長さの平均値として計算した。その後、瘢痕面積を、0.5cmを乗じたその切片に対する平均瘢痕長さとして計算した。総瘢痕面積をすべての切片についての瘢痕面積の和として計算した。瘢痕の厚さを各切片において計算し、瘢痕体積を、平均瘢痕厚さを乗じた総瘢痕面積として計算した。一辺が5mmである梗塞域の中心部からの組織立方体をパラフィンに包埋し、ヘマトキシリンおよびエオシンによる染色のために5μmの切片に切断した。免疫組織化学研究のために、組織薄片を、トルエンによる脱パラフィン化の後、100%、95%および70%のエタノールにおいて連続的に水和した。サンプルにおける内因性ペルオキシダーゼをブロッキング処理し、サンプルを抗体により染色した。隣接するブロックをパラフィンに包埋し、5μmの薄片に切片化し、ヘマトキシリンおよびエオシンにより染色した。連続した切片を、SMAに対する抗体、遅性MHCに対する抗体(Sigma)、Ki67に対する抗体(Novocastra Ltd.)、およびSDF−1に対する抗体(R&D Systems)により免疫標識した。
対照群と処置群との間における一変量差を、連続変数についてのt検定を用いて評価した。両群における各ラットはそれ自身の対照として使用されたため、対照群および処置群におけるベースラインと8週目との間での変化を、ペアードt検定を用いて評価した。対照群および処置群におけるベースラインから8週目の変化の比較を、Windows用GraphPad Prism(バージョン4.00)(GraphPad Software、San Diego、California、米国)を使用して、反復測定によるANOVAを用いて行った。ANOVAモデルには、対照対処置およびベースライン対8週目が因子として含められ、また、これら2つの因子の間での相互作用が含められた[Perin,E.C.他(2003)、Circulation、107:2294〜2302]。p≦0.05の確率値を統計学的に有意であると見なした。
注入可能な架橋されたアルギン酸塩生体適合材料の調製およびレオロジー評価
生物ポリマーであるアルギン酸塩の分子量(Mw)およびその多分散度(PD)(分子量の分布範囲の目安)は、得られる絡み合った網目組織の形成速度および構造に対する影響を有し得る。従って、GPC−MALLSを(実験手法において記載されるように)使用して、アルギン酸塩のMwおよびPDを特徴づけた(表1)。
アルギン酸塩ゲルは、永続的でもなく、また、共有結合による架橋ほど強くない物理的な架橋が形成される物理的ゲルの範疇に含まれる。
粘度ηは、流れに対する流体の抵抗の尺度である。粘度ηは、剪断速度γに対する剪断応力τの比として定義される。
(1) η=τ/γ
材料(本件ではポリマー、すなわち、アルギン酸塩溶液)に関するレオロジー情報を得るために、動的粘弾性測定が使用される。動的粘弾性測定は、材料の構造が乱されず、また、材料の粘性特性および弾性特性の両方についての情報が得られるため、粘度測定法による測定よりも好ましい。測定は、振動数fの正弦波状の応力または歪みをサンプルに加え、その応答を測定することによって行われる。応答は、(i)加えられた応力または歪みと一致する弾性部分と、(ii)一致しない粘性部分とに分けられる。これら2つの成分のために、複素表記法が使用される。複素剪断弾性係数が、下記の式によって定義されるG*によって示される:
G*=G’+jG”
(式中、G’は貯蔵弾性係数(すなわち、弾性部分)であり、G”は損失弾性係数(粘性部分)であり、j2=−1)。
MIのラットモデルにおけるアルギン酸塩生体適合材料と心臓細胞移植との治療効果の比較
広範囲のMIの7日後、ラットを、心筋瘢痕内への、アルギン酸塩に基づく生体適合材料の注入、胚性心筋細胞(1.5x106個)の埋め込み、または培地注入に無作為に割り当てた。上記で記載されたように、アルギン酸塩生体適合材料はカルシウム架橋され、それにもかかわらず、注入条件のもとでは依然として流動した。超音波心臓造影法研究を埋め込み前ならびに埋め込み後の1ヶ月および2ヶ月において行って、LVリモデリングおよび機能を評価した。心臓を組織学的評価のために埋め込み後2ヶ月において集めた。
カルシウム架橋されたアルギン酸塩生体適合材料により処置されるMIの動物モデル
合計で39匹のラットが本研究に含まれた。13匹のラットが、MIを誘導するための手術処置の後で死亡した。超音波心臓造影法研究および分析が24匹のラットに対して行われた。15匹のラットがアルギン酸塩生体適合材料の注入により処置され、対照群(n=9)は無血清培養培地の注入を受けた。2匹のラットが、正常な心筋におけるその安全性および影響を調べるために、正常な心臓へのアルギン酸塩の注入を受けた。
アルギン酸塩生体適合材料の注入は瘢痕厚さを著しく増大させた(表4、p<0.0001)。さらに、アルギン酸塩生体適合材料の注入は、広範囲の前壁MIを合併するLV拡張の典型的な経過を効率的に弱めた(図5、表4)。
正常な心筋へのアルギン酸塩生体適合材料の注入は、α−SMAに対する抗体による免疫染色によって示されるように、集中的な血管形成および筋芽細胞の遊走をもたらした(図8A)。アルギン酸塩の注入により処置された梗塞した心臓の切片の検査では、集中した血管新生、および、梗塞した心筋に存在する数多くの筋繊維芽細胞が示された(図8B、図8C、図8D)。注入可能なアルギン酸塩生体適合材料により処置された動物の抗Ki67抗体による免疫染色(図11)では、内皮内の陽性の染色および梗塞部位における心筋細胞が明らかにされた。このことはDNA活性および複製を示している。従って、アルギン酸塩が、心臓の再生に関連する細胞複製を誘導することは明らかである。
アルギン酸塩の注入による心筋梗塞のブタモデルの処置
合計で18匹のブタが本研究に含まれた。周術期死亡率は27%であった(18匹中5匹)。超音波心臓造影法研究および分析が、前壁MIを有する10匹のブタに対して行われた。5匹のブタがアルギン酸塩の注入により処置され、対照群(n=5)はPBSの注入を受けた。4匹のブタが後側部MI(MR研究)に付された。
LAD閉塞または回旋閉塞(MR研究)の8週間後、アルギン酸塩の注入を受けているブタでは、Ki67に対して反応性のモノクローナル抗体による免疫染色によって明らかにされるように、高頻度の内皮細胞(図11A)および心筋細胞(図11B)がDNA活性を伴って明らかにされた。対照的に、生理的食塩水を受けている動物では、繊維芽細胞の形態学およびKi67との反応性を有する高頻度の細胞が梗塞域内にのみ認められた。これらの結果は、アルギン酸塩生体適合材料は、成体の心臓ではこの活性を通常の場合には有しない心筋細胞などの細胞において細胞増殖を誘導する能力を有することを示唆している。そのような現象は通常、心臓再生に関連する。
超音波心臓造影法による機能的研究:逆転した心室リモデリングは虚血性僧帽弁学流(MR)を低下させる
虚血性MRは、遅発性死亡率を2倍にする冠状動脈疾患の一般的な合併症である[Lamas、G.A.他(1997)、Circulation、96:827〜833]。広範囲の証拠により、虚血性MRが、乳頭筋(PM)の位置をずらし、僧帽弁尖を先端で拘束し、これにより僧帽弁の閉鎖を制限する左心室のゆがみから生じることが示されている。しかしながら、虚血性MRのための治療は依然として問題である。僧帽弁輪の輪状形成術がバイパス手術時に適用されることが多いが、これは僧帽弁の輪状サイズを減少させ、しかし、拘束による虚血性LVゆがみのより広い問題には直接的には対処していない。従って、その利益は、特にLVリモデリングが手術後も進行し続けているときには、不完全である。不確かな利益、ならびに心房切開および心肺バイパスに対する必要性は手術による修復を躊躇させ得る。外部からのデバイスを使用してPMを正常な位置に戻すことにより、虚血性MRを軽減することができる。
架橋されたアルギン酸塩溶液における骨格性筋芽細胞懸濁物の、ラットの正常な心臓への注入
アルギン酸塩生体適合材料を、血管形成を促進させ、細胞移植物の保持および生存を改善するために心臓の筋肉に注入した。本実施例は、アルギン酸塩生体適合材料の注入が、同時注入された細胞(例えば、骨格性筋芽細胞など)の長期間の保持のために好都合であり得ることを示す。
架橋されたアルギン酸塩生体適合材料の注入は梗塞した心筋への幹細胞の呼び寄せを高める
無胸腺ヌードラットを心筋梗塞にさらし、その後、架橋されたアルギン酸塩生体適合材料を梗塞した組織に注入した。梗塞後1週目に、動物を、ヒト臍帯血由来のCD133+の始原体細胞(2〜4x106個の細胞)の静脈内注入により処置した。輸注後1週間で、心臓を集め、代表的な切片を固定処理または凍結切片化のいずれかに供した。受容心臓におけるヒトドナー細胞の存在を、HLA−DRについての免疫染色によって確認した。HLA免疫染色(図14、褐色の色)では、注入されたドナー細胞が、架橋されたアルギン酸塩を瘢痕組織において注入した部位に向かい、定着したことが明らかにされた。この実験は、架橋されたアルギン酸塩の損傷した組織への注入が幹細胞の呼び寄せを高めたことを明瞭に明らかにしている。このことは、注入部位におけるSDF−1の強い発現と一致している。
Claims (66)
- 架橋されたポリマー水溶液であって、その弾性応答が、小さい変形の振動周期が加えられたとき、その粘性応答と同等またはそれ以上になり、かつ、べき乗則の関係の剪断弱化挙動を示す架橋されたポリマー水溶液。
- 均一な、架橋されたポリマー水溶液であって、その弾性応答が、小さい変形の振動周期が加えられたとき、その粘性応答と同等またはそれ以上になり、かつ、べき乗則の関係の剪断弱化挙動を示す架橋されたポリマー水溶液。
- 前記ポリマーは、共有結合、イオン結合および水素結合のいずれかによって架橋され、これにより水分子を捕捉する構造化された網目組織を生じさせる請求項1または2に記載の溶液。
- 前記ポリマーは、二価または多価のカチオンにより架橋される請求項3に記載の溶液。
- 前記カチオンは、カルシウム、銅、アルミニウム、マグネシウム、ストロンチウム、バリウム、スズ、亜鉛、クロム、または有機カチオン、ポリ(アミノ酸)、ポリ(エチレンイミン)、ポリ(ビニルアミン)、ポリ(アリルアミン)および多糖類である請求項4に記載の溶液。
- 前記ポリマーは、ヒドロゲル形成ポリマーである請求項1〜5のいずれか一項に記載の溶液。
- 前記ポリマーが多糖である請求項6に記載の溶液。
- 前記ポリマーはアルギン酸塩である請求項7に記載の溶液。
- 前記アルギン酸塩は10Kダルトン〜300Kダルトンの間の範囲の、より好ましくは25Kダルトン〜150Kダルトンの間の範囲の分子量を有する請求項8に記載の溶液。
- 前記溶液は、ニュートン挙動を示し、かつ、小さい変形の振動周期が加えられたとき、その粘性応答がその弾性応答よりも大きいアルギン酸塩前駆体溶液を架橋することによって得ることができる請求項9に記載の溶液。
- 前記の加えられた小さい変形の振動周期は粘弾性限界の範囲内である請求項10に記載の溶液。
- 前記の加えられた小さい変形の振動周期は0.01Hz〜100Hzの範囲内、好ましくは、0.1Hz〜10Hzの範囲内である請求項11に記載の溶液。
- 0.1%〜4%(w/v)の架橋されたアルギン酸塩を含む請求項7〜12のいずれか一項に記載の溶液。
- 前記溶液は貯蔵安定性であり、その溶液形態およびシリンジ注入性を長期間にわたって維持する請求項7〜13のいずれか一項に記載の溶液。
- 少なくとも24時間の期間にわたって、好ましくは7日間にわたって、さらに好ましくは1年にわたって貯蔵安定性である請求項14に記載の溶液。
- 注入可能である請求項7〜15のいずれか一項に記載の溶液。
- 前記溶液が対象に投与されたときにインビボでゲルを形成する請求項13〜16のいずれか一項に記載の溶液。
- 架橋されたアルギン酸塩水溶液であって、その弾性応答が、小さい変形の振動周期が加えられたとき、その粘性応答と同等またはそれ以上になり、かつ、べき乗則の関係の剪断弱化挙動を示す架橋されたアルギン酸塩水溶液を調製する方法であって、
(a)アルギン酸ナトリウムを水または他の好適な水性緩衝液に溶解する工程;
(b)工程(a)で得られたアルギン酸塩溶液を、好適な架橋剤を用いて、均一な架橋されたアルギン酸塩溶液が得られるまで激しく撹拌しながら、前記架橋剤の水溶液を加えることによって架橋する工程
を含む方法。 - 前記架橋剤は、カルシウム、銅、アルミニウム、マグネシウム、ストロンチウム、バリウム、スズ、亜鉛、クロム、または有機カチオン、ポリ(アミノ酸)、ポリ(エチレンイミン)、ポリ(ビニルアミン)、ポリ(アリルアミン)および多糖類である請求項18に記載の方法。
- 前記カルシウムの塩はグルコン酸カルシウムである請求項19に記載の方法。
- 架橋されたアルギン酸塩溶液であって、その弾性応答が、小さい変形の振動周期が加えられたとき、その粘性応答と同等またはそれ以上になり、かつ、べき乗則の関係の剪断弱化挙動を示す架橋されたアルギン酸塩水溶液を調製する方法であって、
(a)アルギン酸ナトリウムを水または他の好適な水性緩衝液に溶解する工程;
(b)工程(a)で得られたアルギン酸塩溶液を、カルシウムイオンを用いて、均一な架橋されたアルギン酸塩溶液が得られるまで激しく撹拌しながら、好適な量の2%(w/v)グルコン酸カルシウム溶液を加えることによって架橋する工程
を含む方法。 - 請求項17〜21のいずれか一項に記載の方法によって得ることができる、均一な架橋されたアルギン酸塩溶液。
- 損傷した心臓組織の修復および再生を促進させるための請求項1〜16および22のいずれか一項に記載の溶液。
- 前記ポリマーはアルギン酸塩である請求項23に記載の溶液。
- 請求項1〜16および22のいずれか一項に記載の溶液を有効成分として含む組成物。
- 損傷した組織の修復および再生を促進させるための請求項25に記載の組成物。
- 前記ポリマーはアルギン酸塩である請求項25または26に記載の組成物。
- 前記組織が心臓組織である請求項27に記載の組成物。
- 前記心臓組織が左心室壁である請求項28に記載の組成物。
- 前記損傷は、心筋梗塞、虚血性心筋損傷、毒性心筋損傷、炎症性心筋損傷または機械的心筋損傷からなる群から選択される請求項27〜29のいずれか一項に記載の組成物。
- 心筋の損傷、リモデリングおよび機能不全から生じる状態の防止および/または処置における使用のための請求項27〜30のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記状態は、左心室リモデリング、梗塞拡大、心不全および虚血性僧帽弁逆流からなる群から選択される請求項31に記載の組成物。
- リエントリー性不整脈の処置における使用のための請求項27〜30のいずれか一項に記載の組成物。
- 治療的血管形成において使用するための請求項27〜30のいずれか一項に記載の組成物。
- 幹細胞の走化性および/または幹細胞を向かわせることにおける使用のための請求項27〜30のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記組成物はさらに、必要に応じてさらなる治療薬剤を含有する請求項27〜35のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記さらなる治療薬剤は、抗生物質、増殖因子、抗炎症性薬物、ホルモン、抗アポトーシス薬物、成長刺激因子および幹細胞刺激因子からなる群から選択される請求項36に記載の組成物。
- さらに細胞を含む請求項27〜37のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記細胞は、筋芽細胞、心筋細胞、繊維芽細胞、内皮細胞、始原細胞、幹細胞または心臓の血管形成および再生を促進させることができる他の好適な細胞である請求項38に記載の組成物。
- 損傷した組織の修復および再生を促進させるための医薬組成物の調製における請求項1〜17および23のいずれか一項に記載のポリマー溶液の使用。
- 前記ポリマーはアルギン酸塩である請求項40に記載の使用。
- 前記組織は心臓組織である請求項41に記載の使用。
- 前記心臓組織は左心室壁である請求項42に記載の使用。
- 前記損傷は心筋梗塞、虚血性心筋損傷、毒性心筋損傷、炎症性心筋損傷および機械的心筋損傷からなる群から選択される請求項41〜43のいずれか一項に記載の使用。
- 前記組成物はさらに、必要に応じてさらなる治療薬剤を含有する請求項41〜44のいずれか一項に記載の使用。
- 前記さらなる治療薬剤は、抗生物質、増殖因子、抗炎症性薬物、ホルモン、抗アポトーシス薬物、成長刺激因子および幹細胞刺激因子からなる群から選択される請求項45に記載の使用。
- 心筋の損傷、リモデリングおよび機能不全から生じる状態の防止および/または処置における請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の溶液の使用。
- 前記状態は、左心室リモデリング、梗塞拡大、心不全および虚血性僧帽弁逆流からなる群から選択される請求項48に記載の使用。
- リエントリー性不整脈の処置における使用のための請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の使用。
- 治療的血管形成における請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の溶液の使用。
- 幹細胞の走化性における請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の溶液の使用。
- 請求項1〜17および23のいずれか一項に記載の架橋されたポリマー溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物を必要性のある対象に投与することを含む、損傷した組織を処置する方法。
- 前記ポリマーはアルギン酸塩である請求項52に記載の方法。
- 前記組織は心臓組織である請求項53に記載の方法。
- 請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の架橋されたアルギン酸溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物を必要性のある対象に投与することを含む、SDF−1の発現を増強する方法。
- 請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の架橋されたアルギン酸溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物を必要性のある対象に投与することを含む、幹細胞の走化性を導くか、または、損傷した心筋に向かわせる方法。
- 請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の架橋されたアルギン酸溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物を必要性のある対象に投与することを含む、血管新生を誘導する方法。
- 請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の架橋されたアルギン酸溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物を必要性のある対象に投与することを含む、治療的血管形成を誘導する方法。
- 請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の架橋されたアルギン酸溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物を必要性のある対象に投与することを含む、心筋の損傷、リモデリングおよび機能不全から生じる状態を防止する方法。
- 前記状態は、左心室リモデリング、梗塞拡大、心不全および虚血性僧帽弁逆流からなる群から選択される請求項59に記載の方法。
- 請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の架橋されたアルギン酸溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物を必要性のある対象に投与することを含む、限局性不整脈またはリエントリー性不整脈を処置する方法。
- 請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の架橋されたアルギン酸溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物を必要性のある対象に投与することを含む、心筋の収縮性を改善する方法。
- 心臓細胞の増殖を誘導する方法であって、インビボまたはインビトロにおいて、前記細胞を請求項8〜17および22のいずれか一項に記載の架橋されたアルギン酸溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物と接触させることを含む方法。
- (a)請求項1〜17および22のいずれか一項に記載の架橋されたポリマー溶液または請求項25〜39のいずれか一項に記載の組成物;
(b)必要としている患者の心臓部位に架橋されたポリマー溶液を投与するための手段;
(c)前記ポリマー溶液をどのように使用するかの指示マニュアル;
を含む、損傷した組織を修復するためのキット。 - 前記ポリマーはアルギン酸塩である請求項64に記載のキット。
- 架橋されたポリマー溶液を投与するための前記手段は、18G〜27Gのニードルを有するシリンジ、電気機械的な位置決めカテーテルまたはMRI誘導カテーテルを含む、ガイドワイヤを有する心臓送達デバイスを含む任意の好適な経皮心臓送達システム、および、左心室腔、動脈または静脈の冠状系を介して心筋を評価するために設計された任意の経皮心臓デバイスのいずれかであり得る請求項65に記載のキット。
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