JP2006510360A - 内皮細胞特異的結合ペプチド - Google Patents
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Abstract
Description
及び Rajotte, 2000;WO98/44938;WO00/06195)。
Henry 他、1994)。ファイバー媒介細胞付着の後に、ペントンベースがRGDモチーフを介して、avb3及びavb5インテグリン共受容体に結合し、内部化を可能にする(Bai他、1993;
Stewart 他、1999)。アデノウィルス粒子の再標的化により、標的細胞膜上のウィルスリガンド−受容体相互作用の数、及び標的細胞の細胞質に移動するウィルス粒子数を増加させることが仮定された。アデノウィルスファイバーのカルボキシ末端及びファイバーノブに存在ずるHIループは、標的細胞により発現される細胞表面受容体に特異的に認識されるペプチドモチーフの取り込みの為の場所の例である。環状RGDモチーフを含むように修飾されたHIループを有するアデノウィルスは、静脈に対する遺伝子運搬が増大したことが観察された(Hay
他、2001)。
Newby、1989; Kalan 及びRoberts、1990)。遺伝子治療、特に、導入遺伝子のアデノウィルス媒介運搬は、バイパス移植による新生脈管内膜の過形成(肥厚化)を防ぐために現在追求されている戦略である(Cable他、1999)。酸化窒素シンターゼ及びマトリックスメタロプロテインナーゼを含む様々な治療導入遺伝子が臨床前の挿入移植モデルで評価され、新生脈管内膜の形成を減少させることに効果的であることが示されてきた(Newby及びBaker、1999)。
Madison, Wisconsin)を使用するものである。Pileupを用いて標準設定で配列番号1−37を分析した結果、CXXPTPPXC(配列番号44)がが得られた。ここで、「X」は任意のアミノ酸である。即ち、本発明のもう一つの具体例として、配列番号44が含まれる。
1995を参照)。
他、1989)を用いて構造を作成することが可能である。もう一つのデータベースである、ケミカルヂレクトリー(Molecular Design Limited,
Information Systems; San Leandro Calif.)は、市販されている約100,000種の化合物を含み、ターゲティングペプチドの模倣ペプチド候補をサーチするのに使用することが出来る。
他、1985)、ウシパピローマウィルス(DiMAio 他、1982)、アデノウィルス(Morin 他、1987: Dai 他、1995: Yang 他、1996:
Tripathy 他、1991: Quantin 他、1992: Rosenfeld 他、1991: Wagner, 1992: Curiel 他1992:
Curiel, 1991: LeGal LaSalle 他、1993: Kass-Eisler 他、1993)、アデノ随伴ウィルス(Muzyczka,
1994: Xiao 他、1996)、単純疱疹ウィルス(Geller 他、1988: Huard他、1995: 米国特許第5,501,979)、レンチウィルス(Douglas 他、2001: Miyoshi 他、1999: Garvey 他、1990: Berkowitz 他、2001: PCT公開第WO 01/44458: 米国特許第6,277,633 及び第5,380,830)が含まれる。ターゲティングペプチドは任意の哺乳動物発現ベクターと共に使用し、適当な標的内皮細胞に発現系をターゲットすることが出来る。例えば、Wu他(1991)、Wu及びWu(1988)、Wu他(1989)、Zenke他(1990)、Wagner他(1990)を参照することができる。Grifman他(2001)は、腫瘍ターゲティングペプチドを組換えAAVキャプシド内への取り込みについて記載している。記載の目的でのみ、本具体例は好適な例である、アデノウィルスベクターのみに関して記載する。しかしながら、該具体例は、従来記載された任意のベクター系及び当業者に公知の他のベクター系に適用できることを理解されたい。
virus)ベクター(例えばHSV)、バキュロウイルス(baculoviral)ベクター、サイトメガロウイルス(cytomegalovirus:CMV)ベクター、パピローマウイルス(papillomavirus)ベクター、シミアンウイルス(SV40)ベクター、シンドビス(Sindbis)ベクター、セムリキ森林熱ウイルス(semliki
forest virus) ベクター、ファージベクター、アデノウイルス(adenoviral)ベクター、及びアデノ随伴ウイルス(adeno-associated
viral:AAV)ベクターが挙げられる。適切なウイルスベクターは、例えば米国特許第6,057,155号、5,543,328号及び5,756,086号に記載されている。
及びGreen, 2002,米国特許第6,004,798号及び第5,985,655号、及びPCT公開公報WO98/51700号及び WO94/111524号)。レトロウィルス又はレンチウィルスベースのベクターは当該技術分野で周知である(Curan 他、1982; Gazzit 他、1986; Miller 1992; Kavanaugh 他、1994; Smith他、1990;
PCT公開公報WO98/44938号、WO01/44458号、及び米国特許出願第60/353,177号)。ターゲティングペプチドは好適には、ウィルスエンベロープポリペプチドのようなウィルス表面蛋白質内に取り込まれ、内皮細胞にターゲットするレトロウィルス粒子を提供する。ターゲティングペプチドは、ターゲティングペプチドによる特異的なターゲティングを可能にする任意のウィルス表面蛋白質の任意の領域に位置させることが出来る。一具体例では、ターゲティングペプチドはウィルス表面蛋白質の二つの連続するアミノ酸残基の間に置かれる。或いは、ウィルス表面蛋白質のアミノ酸残基が除去され、ターゲティングペプチドにとって代わられる。
両種指向性腸可変ポリプロリン領域;及び同種指向性ボディ部分を表面蛋白質を含むものであり得る。第ニのレトロウィルスエンベロープは、上記のような、両種指向性エンベロープ、同種指向性エンベロープ、又は異種指向性エンベロープ、又は、異なる指向性を有するエンベロープであり得る。
pol及び野生型(未修飾)env 蛋白質をコードする核酸配列を含むパッケージングセルラインにトランスフェクトし、それによって野生型env蛋白質及び修飾エンベロープ蛋白質をコードする核酸配列を含むパッケージングセルラインを形成する。このようなパッケージングセルラインに異種たんぱく質又はペプチドをコードする核酸配列含むレトロウィルスベクターをトランスフェクトして、修飾エンベロープ蛋白質を含むレトロウィルスベクター粒子を生成する産生細胞(プロデューサー細胞)を形成する。このようなポリヌクレオチドは上記レトロウィルスベクター粒子に含まれるか、又は、上記レトロウィルスベクター粒子を生成する産生細胞に含まれる。
他、2002)のような治療用蛋白質又はペプチド内に取り込まれる。これらの融合蛋白質は内皮細胞に結合することが出来る。「融合蛋白質」は二つ又はそれ以上の異なる蛋白質、又は、同じ蛋白質由来で通常は連続していない二つ又はそれ以上の領域に由来するアミノ酸配列の部分を含むポリペプチドである。断片は、成長因子のような蛋白質の部分であって、成長因子活性を示すものを意味し、即ち、該成長因子断片は完全長の成長因子と実質的に同じ生物学的活性を保持している。更に、断片は、天然蛋白質と同一又は実質的に同一のアミノ酸配列を有することが出来る。「実質的に同一」とは、アミノ酸配列が、完全ではないが、ほぼ同じであり、関連する配列の機能活性を保持していることを意味する。一般的には、少なくとも85%同一、又は、配列中に保存変異があれば、二つのアミノ酸配列は実質的に同一、又は実質的に「ホモロガス」である。BLASTプログラム(Altshul他1990)のようなコンピュータープログラムを用いて、配列の同一性を比較し、ALOM(Klein他、1985)を用いて末端及び膜貫通領域の可能性のあるアミノ酸配列を分析することが出来る。
factor)」は細胞間でシグナルを伝達する任意のぺプチドを意味する。従って、「成長因子」という用語は、サイトカイン、リンホカイン、モノカイン、インターフェロン、コロニー刺激因子及びケモカインを含む。成長因子の例には、以下のものに限定されないが、アンジオポエチン‐1、上皮増殖因子(EGF)、肝細胞増殖因子(HGF)、腫瘍壊死因子(TNF−α)、血小板由来内皮細胞増殖因子(PD−ECGF)、血小板由来増殖因子(PDGF)、インシュリン様成長因子(IGF)、インターロイキン‐8、成長ホルモン、アンジオポエチン、血管内皮細胞増殖因子(VEGF)、酸性及び塩基性線維芽細胞増殖因子(FGFs)、形質転換増殖因子α(TGF−α)、CYR61及び血小板由来増殖因子(PDGF)がある。更に、追加の成長因子に関しては、McKay
及びLeigh (1993) を参照されたい。
他の配列とは独立して分離した分子(例えば、cDNA)として存在する、組換えDNAを意味する。本発明のヌクレオチドは、リボヌクレオチド又はデオキシリボヌクレオチド、又はこれらヌクレオチドの修飾形態であり得る。
このようなベクターは当業者に周知である。該ベクターを含む形質転換細胞も本具体例で提供される。適当な細胞には原核細胞又は真核細胞があり、これらは全て当該技術分野で周知である。最後に、本具体例は、当該技術分野で周知の技術に従い、形質転換細胞内で、融合蛋白質をコードする核酸を発現するおとにより、該融合蛋白質を生産することを提供する。該融合蛋白質は従来技術により単離・精製される。
Garnett(1995)に記載され、例えば、グリシングリシンリンカー、アラニンアラニンリンカー又はグリシン、アラニン又は他のアミノ酸を含むほかのリンカーがある。
Wilchek, 1980)。
米国特許第6,316.024参照)、アンピシリンのような抗生物質、リバビリンのような抗ウィルス剤、アンチセンス核酸分子、又は、プロテアーゼインヒビターのような薬(ドラッグ)である、任意の生物学的に有効な剤である。例えば、ドキソルビシンのような薬をターゲティングペプチドにEDC及びNHSを用いて結合させる(Bauminger
及びWilcheck, 1980; Arap他、1998)。結合体は従来技術を用いて単離・精製される。ターゲティングペプチド‐小分子結合体の医薬組成物は従来技術で調製される。医薬組成物又は結合体は当該技術分野で周知のプロセスに従い投与される。
Haan 他、(1996); Gorlach (1996); Benameur 他(1995); Bonanomi他(1987); 及びZekorn他(1995)参照。以下の記載において、リポソームは例示的にのみ使用される。この具体例はリポソームに限定されるものではないことを理解されたい。
5,395,619号に記載あれており、これらは引用文献として本明細書に取り込まれる。親水性ポリマーは安定的に脂質に結合し、又は、ポリマー鎖の不安定なリンケージを介して結合し、それによって、血流中で循環しているとき又は刺激に応答する際に、被覆リポソームがポリマー鎖を捨てることが可能となることが理解されよう。
イオン化薬剤を内部/外部リポソームpH勾配にかけること、がある。逆蒸発相リポソーム調製のようなほかの方法も適当である。治療又は診断剤、核酸のような従来からリポソームに含有されていた任意剤であり得る。例えば、米国特許第6,316,024号を参照されたい。
該ポリマーに結合したターゲティングペプチドから構成される。例えば、米国特許第6,316,024号を参照されたし。ターゲティングペプチドはベシクル形成脂質に末端で付着している親水性ポリマー鎖の自由先端末端に共有結合で付着される。選択した親水性ポリマーを選択した脂質に結合させ、未結合の自由なポリマー末端を選択したリガンドとの反応の為に活性化する技術には様々なものがあり、特に親水性ポリマーであるポリエチレングリコール(PEG)は広範囲に使用されている(Allen 他、1995; Zalipsky 1993;
Zalipsky 他、1994; Zalipsky 他、1995; Zalipsky 1995)。
他、1996)。循環する好中球の移動がavb3インテグリンの内皮細胞発現により指示されること、及び、この指示される移動はavb3インテグリン相互作用をRGD含有ペプチドで中和することにより、排除できることが示された(Rainger 他、1999)。avインテグリンの発現の増加が単離されたヒト伏在静脈セグメント(Meng 他、1999)及びウサギ静脈で観察され、RGD含有ペプチドでインテグリン相互作用を阻害することを目指す戦略により、新生内膜形成を減少させた(Racanelli
他、2000)。従って、炎症(Wickham 他、1997)及び血管外傷の間に上調節される血管受容体により特異的に認識される分子リガンドを遺伝子的に取り込むことにより、ウィルスベクター粒子を再ターゲティングすることは、治療用移入遺伝子のアデノウィルス媒介運搬の為の顕著な効果を示すことが出来る戦略であり得る。本明細書に記載のように、本発明のターゲティングペプチドをファイバーHIループ内に挿入することにより、遺伝子移入及びヒト臍静脈内皮細胞における発現が増大される。
他、1999)。細胞結合及び内部化を担うウィルス成分(フィバー及び/又はペントンベース)の遺伝子工学操作のような、エキソビボのアデノウィルスベクター運搬を最大限にする実験戦略により、遺伝子移入及びこれらベクターの治療効果の効率が改善される。
2001)。
Publishing Co., Easton, PA)を参照されたし。典型的には、活性成分のアンタゴニー量を薬学的に許容されるキャリヤと予混合する。キャリヤは、経静脈、経口、非経口又は髄腔内のような投与に望まれる調製の形態に応じて広範囲な形態をすることが出来る。運搬方法の例として、参照として本明細書中に取り込まれる米国特許第5,844,077号を参照されたし。
他に指示のない場合には、本発明は、当該技術分野に属する化学、分一生物学、微生物学、組換えDNA、遺伝学、免疫学、細胞生物学、細胞培養及び遺伝子移入生物学の従来技術を用いて実施さあれる。以下の文献を参照のこと。Maniatis et al., 1982; Sambrook et al., 1989; Sambrook 及びRussell,
2001; Ausubel et al., 1992; Glover, 1985; Anand, 1992; Guthrie Fink, 1991;
Harlow Lane, 1988; Jakoby 及びPastan, 1979; Nucleic Acid Hybridization (B.D.
Hames eds. 1984); Culture of Animal Cells (R.I. Freshney, Alan R. Liss, Inc.,
1987); Immobilized Cell and Enzymes (IRL Press, 1986); B. Perbel, A Practical
Guide To Molecular Cloning (1984); 専門書、Methods In Enzymology (Academic Press,
Inc., N.Y.); Gene Transfer Vectors For Mammalian Cells (J.H. Miller and
M.P.Calos eds., 1987, Cold Spring Harbor Laboratory); Methods in Enzymology,
Vols. 154 & 155 (Wu et al. eds.), Immunochemical Methods in Cell and
Moleculra Biology (Mayer Walker, eds., Academic Press, London, 1987); Handbook
Of Experimental Immunology, Volumes I-IV (D.M. WeirC.C. Blackwell, eds., 1986);
Riott, Essential Immunology, 6th Edition, Blackwell Scientific
Publications, Oxford, 1988; Hogan
et al., Manipulating the Mouse Embryo, (Cold Spring Harbor Press, Cold Spring
Harbor, N.Y., 1986)
内皮細胞に特異的なペプチドの配列(配列(SEQUENCE)及び配列番号(SEQ ID NO:))
PD1ペプチド(配列番号1(SEQ ID NO:1))を核局在化βガラクトシダーゼリポーター遺伝子を含むアデノウィルスのファイバーノブのHIループ内に遺伝学的に挿入することによって、アデノウィルスAv3nBgPD1を作製した。インビトロ形質導入実験を実施し、PD1標的化ウィルス粒子の初代ヒト内皮細胞及び3種類のヒト癌セルラインに対する結合特性を決定した。Av3nBgPD1アデノウィルス粒子は初代内皮細胞及び非小細胞癌セルラインであるH460細胞への形質導入を顕著に増強させた。これらのデータは、該ペプチドがアデノウィルスを血管内皮細胞及び幾つかの癌細胞にターゲッティングさせるのに有効であることを示唆するものである。
S8細胞は、別個のデキサメタゾン誘導性プロモーター下でアデノウィルスE1及びE2a遺伝子でトランスフェクトしたA549細胞である(Gorziglia 他,1996)。S8細胞は10%熱不活性化ウシ胎児血清(HIFBS)添加のIMEM培地(Biofluids,
Rockville, MD)で培養された。ウィルス保護の為に、細胞は0.3uMデキサメタゾンと共に培養され、E1及びE2a遺伝子の発現が誘導された。H460細胞は、ヒト非小細胞肺癌(ATCC,
Manassas, VA)であり、10%HIFBS添加のRPMI培地1640(Life Technologies, Gaitherburg, MD)中で培養された。PC3細胞は、ヒト前立腺癌セルライン(ATCC)であり、10%HIFBS添加のRPMI培地1640中で培養された。HeLa細胞は、ヒト子宮ガンセルライン(ATCC)であり、10%HIFBS添加のDMEM培地中で培養された。初代内皮細胞、特に、ヒト臍静脈内皮細胞(HUVECs)はClonetics Corporation (Walkerville, MD: AC-7018)から入手した。これらの細胞は奨励される培地で培養した。
核局在化βガラクトシダーゼ及びファイバーノブのHIループ内にPD1ペプチドを含むアデノウィルスである、Av3nBgPD1をラピッドツープラスミドシステム(rapid two plasmid system)で作製した。簡潔に記載すると、HIループ内に挿入されたPD1ペプチドで修飾されたファイバー遺伝子を有するアデノウィルス血清型5ゲノムの29Kb右腕部分を含むプラスミド、pNDSQ3.1PD1をCla1を用いて直線化した。第二のプラスミドである、pAdmireRSVnBg、はRSVでプロモートされる核局在化βガラクトシダーゼcDNA及び相同組換えを可能にする重複配列を含むアデノウィルスゲノムの左末端をコードしている。pAdmireプラスミドをPcaI及びSalIで消化し、プラスミド中のITR及びE.coli配列を放出させた。消化されたプラスミドをカチオン性脂質リポフェクタミンプラスシステム(Life Technologies, Gaitherburg, MD)を使用して誘導されたS8細胞内にコトランスフェクトした。トランスフェクトされたS8細胞はこの結果得られた組換えアデノウィルスの増殖を助けた。図1BはAv3nBgPD1アデノウィルスを作製するためのpNDSQ3.1PD1プラスミドを示す。
PD1配列、CPDLHHHMC(配列番号1)は、核局在化βガラクトシダーゼ遺伝子をコードするE1/E2a欠失アデノウィルスベクターにおいて、Ad5ファイバーのHIループ内のD544及びT545の間に挿入された。挿入は、PD1ペプチドを含有するオリゴヌクレオチドと、リガンド挿入を可能にする為にHIループ内に作られたBclI及びBsrG1部位用のオーバーハングをアニーリングすることにより行われた。該リゴヌクレオチドは以下のとおりである。
34マー、5.0μg/μl
5’-
GATCAATGTCCTGACCTACACCACCACATGTGTT-3’ (配列番号38)
34マー、4.0μg/μl
5’-
GTACAACACATGTGGTGGTGTAGGTCAGGACATT-3’ (配列番号39)
Viral Lysate:CVL)を適用した。CVLを37℃インキュベーターで3時間ロックした。2mlの増殖培地及びデキサメタゾンを各ウェルに添加し、プレートをを37℃、CO2インキュベーター内に置いた。7日後に第2回目の増幅を行った。CPEが観察されたら、ウィルスを誘導されたS8細胞を含む15枚の150cmプレートにスケールアップした。Av3nBgPD1のウィルス調製物は標準的なCsCl遠心により調製された。1ml当りのウィルス粒子数は顕微鏡により測定した(Mitterefer 他、1996)。
Av3nBgPD1の形質導入効率は、初代ヒト臍静脈内皮細胞(HUVEC)及び、HeLa,PC3及びH460細胞を含むヒト癌セルラインを用いて調査した。各細胞型は、キメラファイバー含有ウィルスであるAv3nBgPD1又は野生型ファイバーのコントロールウィルスであるAv3nBgで形質導入した。HUVECは細胞当り全粒子(PPC)が0、10、100、及び1000で形質導入し、3種のヒト癌セルラインは0,50,100及び1000のPPCで形質導入した。全ての細胞は2%HIFBS含有培養培地(全容量2ml)中で37℃で1時間形質導入し、10%HIFBS含有完全培地(1ml)を添加した。細胞を更に24時間インキュベートしてアデノウィルス媒介でβ‐ガラクトシダーゼ発現をさせた。細胞単層をPBS中の0.5%グルタルアルデヒドで固定し、約24時間のX−gal染色でインキュベートした。X−gal染色は、PBS中の1mg/mlの5−ブロモ-4−クロロ-3−インドリル-β-D−ガラクトシダーゼ(X−gal、DMSO中の50mg/mlストック)、5mMフェロシアナイドカリウム、5mMフェリシアナイドカリウム、及び、2mMMgCl2から成る。形質導入の割合(%)は光学顕微鏡で、すでに記載したように区画当りの陽性形質導入青色細胞数を計数することにより測定した(Stevenson
他、1997)。
PD1ペプチド:CPDLHHHMC(配列番号1)はファイバーノブのHIループにおける544及び545番目のアミノ酸の間に遺伝子学的に挿入されるように設計された。コトランスフェクションはpNDSQ3.1PD1及びpAdmireRSVnBgを用いて、各局在化したβ-ガラクトシダーゼcDNA及びファイバーノブ中のPD1ペプチドを含むAv3nBgPD1を作製して実施した。
sCARのC末端にターゲティングペプチドをコードする発現プラスミドを構築するために、相補的なオリゴヌクレオチド対を合成し、アニールして、所望のターゲティングペプチドをコードするDNA二重鎖を形成させた。該DNA二重鎖はその両端にNotI適合性オーバーハングを含み、該断片をpCIネオ-sCARb(WO02/29072)のNotI部位に挿入することが出来る。ペプチド:CPDLHHHMC(配列番号1)をsCAR末端に融合するか、又は、標的細胞に該ターゲティングペプチドを特異的に結合されることを可能にする位置に取り込ませる。ペプチド:CPDLHHHMC(配列番号1)を生じるように合成されたオリゴヌクレオチドは以下のとおりである。
5’-GGCCTGTCCTGATCTTCATCATCATATGTGTGC-3’
(配列番号40)及び
5’-GGCCGCACACATATGATGATGAAGATCAGGACA-3’
(配列番号41)
ターゲティングペプチド:CPDLHHHMC(配列番号1)が取り込まれることにより修飾された修飾表面蛋白質を有するレトロウィルス粒子をWO98/44938記載のように調製した。修飾表面蛋白質をコードする核酸を作成するのに、ターゲティングペプチドをコードするヌクレオチド配列:TGTCCTGATCTTCATCATCATATGTGT(配列番号42)を使用した。レトロウィルス粒子は内皮細胞に特異的に結合した。本実施例は、配列番号1のペプチドを用いた本発明の一具体例を示すものであり、本発明の任意のターゲティングペプチド(配列番号2−37及び44;表2)も同様に使用することが出来ることを理解されたい。
血管内皮細胞成長因子及びCPDLHHHMC(配列番号1)から成る融合蛋白質をコードする核酸及びこの核酸を含有する発現ベクターをWO00/06195に記載の方法で調製した。この融合蛋白質は該発現ベクターでトランスフェクトされた宿主細胞において発現し、従来技術を用いて単離された。該融合蛋白質は特異的に内皮細胞に結合した。本実施例は、配列番号1のペプチドを用いた本発明の一具体例を示すものであり、本発明の任意のターゲティングペプチド(配列番号2−37及び44;表2)も同様に使用することが出来ることを理解されたい。
ターゲティングドメインとしてのCPDLHHHMC(配列番号1)及びプロ−アポトーシスドメインとしてD(KLAKLAKKLAKLAK)(配列番号43)を含む二重機能性ペプチドであって、プロ−アポトーシスドメインにおける全てのアミノ酸残基がDエナンチオマーである、二重機能性ペプチドを調製した。二つドメインの間のグリシン−グリシン架橋を有する二重機能性ペプチドの合成は従来の固相技術を用いて実施された。この二重機能性ペプチドは内皮細胞に対する結合選択性を保持していた。本実施例は、配列番号1のペプチドを用いた本発明の一具体例を示すものであり、本発明の任意のターゲティングペプチド(配列番号2−37及び44;表2)も同様に使用することが出来ることを理解されたい。
ドキソルビシン塩酸塩(1モル等量)をジイソプロピルアミン(2モル等量)含有ジメチルホルムアミド(DMF)に懸濁させた。N−ヒドロキシサクシニミジル−マレイミドプロピオネート(1モル等量)を添加し、20分間インキュベートした。CPDLHHHMC(配列番号1)を含有するチオール(DMF中に可溶化したシステイン又はアミノ末端3−メルカプトプロピオン酸)を反応混合物に添加し、20分間インキュベートした。ペプチド及び結合体に対する受容基準は、分子量及び質量分析器に対する断片パターンによれば、HPLC純度で>98%であった。
部分的水素化大豆ホスファチジルコリン(PHPC,ヨウ価:35、Lipoid (Ludwigshafen, Germany))、コレステロール(Croda(Fullerton, Calif.))及びmPEG−DSPE(Zalipsky,
1993に記載のように調製)を、丸底フレスコ内のクロロホルム及び/又はメタノール中で、モル比55:40:3で混合することによってリポソームを調製した。溶媒を回転エバポレーターで除去し、得られた乾燥脂質フィルムをリン酸ナトリウム緩衝液(10mM,140mM NaCl,pH7)又はHEPES緩衝液(25mM,150mMNaCl,pH7)で水和し、大きな多層ベシクルを製造した。得られたベシクルを、Counter
N4MD (Hialeah, Fla.) を用いる動的光散乱によりモニターして、平均直径分布が約100nmになるまで(米国特第6,316,024B1号)、圧力下に0.2、0.1及び0.05m孔径のポリカーオネート膜に繰り返し通した。
Claims (35)
- CPDLHHHMC(SEQ ID NO:1)、CLGQHAFTC(SEQ ID NO:2)、CSSNTAPHC(SEQ ID NO:3)、CHVLPNGNC(SEQ ID NO:4)、CKPQYPSLC(SEQ ID NO:5)、CQTARTPAC(SEQ ID NO:6)、及びCXXPTPPXC(SEQ ID NO:44)から成る群から選択される、請求項1記載のペプチド。
- 請求項1記載の内皮細胞ターゲティングペプチド及び生物学的剤の結合体。
- 生物学的剤が、薬剤、ペプチド、蛋白質、放射性核種、核酸、遺伝子運搬ベクター、及びリポソームからなる群から選択される、請求項3記載の結合体。
- 生物学的剤が、SV40ウィルス、ウシパピローマウィルス、アデノウィルス、アデノ随伴ウィルス、及び単純疱疹ウィルスからなる群から選択される遺伝子運搬ベクターである、請求項3記載の結合体。
- 遺伝子運搬ベクターがアデノウィルスである、請求項5記載の結合体。
- アデノウィルスが内皮細胞ターゲティングペプチドを含有するように修飾されたファイバー蛋白質をコードする核酸を含む、請求項6記載の結合体。
- 生物学的剤がレトロウィルスである遺伝子運搬ベクターである、請求項4記載の結合体。
- レトロウィルスが内皮細胞ターゲティングペプチドを含有するように修飾された表面蛋白質をコードする核酸を含む、請求項8記載の結合体。
- 蛋白質が成長因子又は成長因子断片である、請求項4記載の結合体。
- 請求項1記載のペプチドを含有するように修飾された蛋白質をコードする核酸を含むウィルスベクター。
- ベクターが、SV40ウィルス、ウシパピローマウィルス、アデノウィルス、アデノ随伴ウィルス、及び単純疱疹ウィルスからなる群から選択されるウィルスに由来する、請求項11記載のウィルスベクター。
- 該ウィルスがアデノウィルスである、請求項12記載のウィルスベクター。
- 修飾蛋白質がファイバー蛋白質である、請求項13記載のウィルスベクター。
- 該ウィルスがレトロウィルスである、請求項12記載のウィルスベクター。
- 修飾蛋白質が表面蛋白質である、請求項15記載のウィルスベクター。
- 請求項1記載のペプチドを含有するように修飾された蛋白質を含むウィルスベクター粒子。
- ベクター粒子が、SV40ウィルス、ウシパピローマウィルス、アデノウィルス、アデノ随伴ウィルス、及び単純疱疹ウィルスからなる群から選択されるウィルスに由来する、請求項17記載のウィルスベクター粒子。
- 該ウィルスがアデノウィルスである、請求項18記載のウィルスベクター粒子。
- 修飾蛋白質がファイバー蛋白質である、請求項19記載のウィルスベクター粒子。
- 修飾蛋白質がCARである、請求項19記載のウィルスベクター粒子。
- 該ウィルスがレトロウィルスである、請求項17記載のウィルスベクター粒子。
- 修飾蛋白質が表面蛋白質である、請求項22記載のウィルスベクター粒子。
- 請求項1記載のペプチドを含む修飾ウィルス蛋白質をコードする核酸。
- ウィルス蛋白質が、SV40ウィルス、ウシパピローマウィルス、アデノウィルス、アデノ随伴ウィルス、及び単純疱疹ウィルスからなる群から選択されるウィルスに由来する蛋白質である、請求項24記載の核酸。
- ウィルス蛋白質がファイバー蛋白質である、請求項25記載の核酸。
- ウィルス蛋白質がレトロウィルス由来の蛋白質である、請求項24記載の核酸。
- ウィルス蛋白質が表面蛋白質である、請求項27記載の核酸。
- 請求項1記載のペプチド及び生物学的活性ペプチド又は蛋白質を含む融合蛋白質をコードする核酸。
- 生物学的活性ペプチド又は蛋白質が成長因子、毒素、血管由来ペプチド、抗血管由来ペプチド、及びプロアポトーシスペプチドからなる群から選択される、請求項29記載の核酸。
- 請求項1記載のペプチド及び生物学的活性ペプチド又は蛋白質を含む融合蛋白質。
- 生物学的活性ペプチド又は蛋白質が成長因子、毒素、血管由来ペプチド、抗血管由来ペプチド、及びプロアポトーシスペプチドからなる群から選択される、請求項31記載の融合蛋白質。
- 生物学的剤が細胞毒性薬剤である薬剤である、請求項4記載の結合体。
- 請求項3−33のいずれか一項に記載の結合体及び薬学的許容可能なキャリヤを含む医薬組成物。
- 請求項34記載の医薬組成物を投与することから成る、内皮細胞に治療物質をターゲットする方法。
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