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ES2212833T3 - Utilizacion de al menos un fucano para la obtencion de un medicamento destinado al tratamiento de las patologias periodontales. - Google Patents

Utilizacion de al menos un fucano para la obtencion de un medicamento destinado al tratamiento de las patologias periodontales.

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ES2212833T3
ES2212833T3 ES98962487T ES98962487T ES2212833T3 ES 2212833 T3 ES2212833 T3 ES 2212833T3 ES 98962487 T ES98962487 T ES 98962487T ES 98962487 T ES98962487 T ES 98962487T ES 2212833 T3 ES2212833 T3 ES 2212833T3
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ES
Spain
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fibroblasts
fucano
proliferation
cell
cells
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Expired - Lifetime
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ES98962487T
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English (en)
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Karim Senni
Bernard Pellat
Bruno Gogly
Catherine Blondin
Didier Letourneur
Jacqueline Jozefonvicz
Corinne Sinquin
Sylvia Colliec-Jouault
Patrick Durand
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Institut Francais de Recherche pour lExploitation de la Mer (IFREMER)
Universite Paris Descartes
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Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Institut Francais de Recherche pour lExploitation de la Mer (IFREMER)
Universite Paris Descartes
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Abstract

Utilización de, por lo menos, un fucano, para la obtención de un medicamento destinado al tratamiento de las patologías periodentales.

Description

Utilización de al menos un Fucano para la obtención de un medicamento destinado al tratamiento de las patologías periodontales.
La invención se refiere a nuevos usos de los fucanos en el marco de la reparación de lesiones del tejido conjuntivo, en particular para la regulación de las funciones fibroblásticas.
Los fibroblastos desempeñan un papel esencial en el equilibrio y la reparación de los tejidos conjuntivos. En particular, son los responsables de la renovación de la matriz extracelular, mientras que sus funciones son reguladas por las sustancias presentes en dicha matriz.
En particular, en el proceso de cicatrización y remodelación de tejidos que interviene tras una herida, el tejido conjuntivo constituye el marco de intercambios constantes entre todas las células que intervienen en dicho proceso. Estos intercambios se efectúan, especialmente, por medio de citoquinas o mediadores solubles, transmitidos por la matriz extracelular.
Por ejemplo, en los tejidos conjuntivos de recubrimiento, tales como los tejidos gingivales y cutáneos, el proceso de cicatrización se inicia, tras la formación de una matriz provisional (trombo rojo), mediante la atracción de células inflamatorias (leucocitos, macrófagos y polinucleares), que inician una fase de destrucción del tejido dañado.
Dichas células inflamatorias participan en la destrucción:
-
segregando proteasas matriciales, tales como la colagenasa (MMP8), la elastasa leucocitaria o la catepsina G,
-
liberando citoquinas, especialmente la interleuquina 1 (IL1), que estimulan la proliferación y la migración de los fibroblastos y las células epiteliales, y la expresión, por dichas células, de ciertas metaloproteasas, tales como la colagenasa intersticial (MMP1) o la gelatinasa B (MMP9).
Esta fase de destrucción, que se inicia muy temprano tras la herida, termina cuando se ha reconstituido el epitelio y su membrana basal.
Esta fase se prolonga por medio de las fases de reparación y resolución, en las que los fibroblastos reconstruyen y reorganizan la trama de colágeno; especialmente se observa la expresión, por parte de los fibroblastos, de la gelatinasa A (MMP2), una metaloproteasa matricial que participa activamente en todos los fenómenos de remodelación de los tejidos.
Algunas patologías están acompañadas por un estado inflamatorio crónico del tejido conjuntivo, en el que se rompe el equilibrio entre las fases de destrucción, reparación y resolución, lo que conduce a una reconstrucción defectuosa del tejido dañado.
Este fenómeno se observa, especialmente, en el caso de las enfermedades periodontales o periodontopatías.
El periodonto representa el conjunto de estructuras (encía, ligamento dentoalveolar, hueso alveolar y cemento) que aseguran la sujeción del diente, en su alvéolo dental.
Las periodontopatías se manifiestan por medio de episodios inflamatorios de origen infeccioso, más o menos localizados, a menudo reincidentes, al término de los cuales el tejido periodontal no se reconstruye correctamente.
En esta patología, el inicio de la respuesta inflamatoria y la proliferación celular en respuesta a la lesión infecciosa se desarrollan de forma más o menos normal. Por el contrario, la fase de resolución es rara vez satisfactoria; en el mejor de los casos, se observa una reparación del tejido destruido, pero no su regeneración completa, y cada episodio de la enfermedad se traduce por una pérdida de tejido.
Las periodontopatías no tratadas evolucionan hacia la movilidad y la pérdida de los dientes, en el caso del adulto mayor de cuarenta años. En la medida en que estas enfermedades periodontales, en forma más o menos extendida, afectan a alrededor del 10 al 15% de la población, tienen importantes consecuencias en términos de salud pública.
Actualmente, la mayoría de los tratamientos propuestos están orientados a desbridar mecánicamente la lesión y a reducir la agresión microbiana, mediante la administración de antisépticos o antibióticos.
Otra aproximación terapéutica consistiría en mejorar la calidad del proceso de reparación, con el fin de permitirle alcanzar una regeneración completa. Sin embargo, esta aproximación requiere, en particular, estar en condiciones de estimular, en el momento deseado, la población celular adecuada, para orientar la proliferación celular y controlar, de este modo, el proceso de remodelación del tejido.
A tal efecto, los Inventores han estudiado la acción de distintos polisacáridos; se sabe que algunas de estas moléculas, como los glicosaminoglicanos, entran en la composición de los proteoglicanos presentes en la interfaz célula/matriz extracelular, y desempeñan un papel en la regulación de las funciones celulares. Se sabe, asimismo, que ciertos glicosaminoglicanos en forma soluble, como la heparina o derivados del dextrano, pueden modificar las funciones celulares, por medio de su interacción con distintos constituyentes de la matriz extracelular.
Por ejemplo, en el caso de la heparina, se ha demostrado un efecto estimulante de la proliferación celular, en el caso de fibroblastos pulmonares en el hámster, de células epiteliales de cristalino de bovino [ULRICH y otros, Biochem. Biophys. Res. Commun., 139, págs. 728-732, (1986)] o de células endoteliales capilares [SUDLALTER y otros, J. Biol. Chem., 264, págs. 6892-6897, (1989)].
Por el contrario, se ha observado, asimismo, que la heparina inhibe, de forma dosis dependiente, la proliferación de ciertos tipos celulares; se ha estudiado este efecto antiproliferante, especialmente en el caso de las células musculares lisas (CML), para las cuales la inhibición se manifiesta para concentraciones de 1 \mug/ml de heparina en los medios de cultivo. La heparina se opone, al mismo tiempo, a la migración y a la proliferación de las CML, pero no afecta a la reendotelialización, ni al volumen del tejido conjuntivo [CLOWES y CLOWES, Lab. Invest., 52, págs. 611-615, (1985); CLOWES y CLOWES, Circ. Res., 58, págs. 839-845, (1986); CLOWES y otros, J. Cell. Biol., 107, págs. 1939-1945, (1988)].
Asimismo, se ha observado una inhibición de la proliferación para otros tipos celulares como, por ejemplo, los fibroblastos de la esclerótica [DEL VECCHIO y otros, Invest. Ophtalmol. Vis. Sci., 29, págs. 1272-1276, (1988)], los fibroblastos 3T3 (fibroblastos de embriones de ratón, que conservan una inhibición de contacto) [PAUL y otros, Thromb. Res., 18, págs. 883-888, (1980)], las células epiteliales del cuello del útero de la rata [LYONS-GIORADANO y otros, Biochem. Biophys. Res. Commun., 148, págs. 1264-1269, (1987)], los fibroblastos dérmicos humanos.
FERRAO y MASON [Biochim. Biophis. Acta. 1180, 225-230, (1993)] estudiaron la acción de distintos polisacáridos sobre la proliferación de fibroblastos dérmicos humanos, e indican que en concentraciones del orden de
100 \mug/ml, la heparina, el heparan sulfato, el pentosan polisulfato y un fucoidano inhiben dicha proliferación, mientras que el condroitin sulfato, el dermatan sulfato y el hialuronato no tienen efecto. Se indica que el efecto inhibidor de la proliferación implica una estimulación de la síntesis del colágeno del tipo I. Por el contrario, se observa una inhibición de la síntesis del colágeno I cuando se añaden los polisacáridos a cultivos llegados a confluencia.
Se revela, pues, que la acción de los polisacáridos sobre las funciones celulares es compleja, pudiendo variar según el polisacárido, el tipo celular y el tejido afectado, así como según la concentración de polisacárido utilizada y el estado de las células.
En el marco de la investigación orientada a explicar el mecanismo de acción de distintos polisacáridos sobre las funciones fibroblásticas, especialmente aquellas implicadas en la regeneración tisular, los inventores se interesaron, en particular, por los fucanos.
Los fucanos son polisacáridos sulfatados que entran en la constitución de las paredes celulares de los talos de algas pardas (Feoficeas); asimismo, están presentes en algunos animales marinos, tales como el erizo y el pepino de mar. El fucano bruto, también denominado fucoidano, obtenido mediante extracción ácida a partir de las paredes celulares de los talos de algas pardas, está formado por una población heterogénea de moléculas que incluye, principalmente, polímeros de L-fucose sulfatado, de masa molar media elevada (100.000 a 800.000 g/mol).
Los fucanos realizan actividades biológicas variadas: se ha demostrado que realizan actividades anticaída del cabello y cicatrizante de la piel (EP-A-0 730 867), anticoagulante, antitrombótica [T. NISHINO y T. NAGUMO, Carbohydr. Res. 229, págs. 355-362, (1992); Solicitud EP 0403 377; S. COLLIEC y otros, Thromb. Res. 64, págs. 143-154, (1991); S. SOEDA y otros, T hromb. Res. 72, págs. 247-256, (1993); MAURAY y otros, Thromb. Haemost. (5) 1280-1285, (1995)], antivírica [(M. BABA y otros, J. AIDS, 3, págs. 493-492, (1990)], antiangiogénica [R. HAHNENBERGER y A. M. JACKOBSON, Glycoconjugate J., 8, 350-353 (1991)] y anticomplementaria [C. BLONDIN y otros, Mol. Immunol., 31, págs. 247-253, (1994). Se ha observado, asimismo, que podían actuar como moduladores de la síntesis del colágeno (D. LOGEART y otros, J. Biomed. Materials. Res., 30, 4, 1996, págs. 501-508), de la adhesión celular [C.G. GLABE y otros, J. Cell Sci, 61, págs. 475-490, (1993)], de la separación de factores de crecimiento [D.A. BELFORT y otros, J. Cell. Physiol. 157, págs. 184-189, (1993)], de la proliferación de células tumorales [M. ELLOUALI y otros, Anticancer Res., 13, pág. 2011-2020, (1993); D.R. COOMBE y otros, Int. J. Cancer, 39, págs. 82-90, (1987); D. RIOU y otros, Anticancer Res., 16, 1213-1218, (1996)], y de células musculares lisas vasculares [LOGEART y otros, Eur. J. Cell. Biol., 74, págs. 376-384, (1997)], y bloquear las interacciones espermatozoide/óvulo en distintas especies [M.C. MAHONY y otros, Anticoncepción, 48, págs. 277-289, (1993)].
Se han obtenido, por ejemplo mediante hidrólisis ácida preparada de fucano de masa molar elevada (Patente EP 0 403 377 a nombre de IFREMER) o mediante despolimerización radicalar (Solicitud PCT WO/9708206 a nombre de IFREMER y CNRS), preparados de fucanos de masa molar media inferior a 20.000, incluso a 10.000 g/mol, lo que facilita su uso en un marco terapéutico.
En la siguiente exposición, el término "fucano" abarca tanto los fucanos de masa molar elevada, como los preparados de masa molar más baja obtenidos a partir de aquellos.
Los inventores comprobaron que los fucanos poseían un perfil de actividad sobre las funciones fibroblásticas distinto del de la heparina. Comprobaron, en particular, probando estos dos polisacáridos en las mismas condiciones que, mientras que la heparina inhibe, al mismo tiempo, la proliferación de los fibroblastos dérmicos y la de los fibroblastos gingivales, los fucanos activan la proliferación de los fibroblastos dérmicos, a la vez que inhiben la de los fibroblastos gingivales. Además, los inventores comprobaron, asimismo, que los fucanos modifican la morfología de los fibroblastos dérmicos, que se redondean, mientras que los fibroblastos gingivales conservan un morfotipo fibroblástico.
Los inventores comprobaron, asimismo, que los fucanos aumentaban la cantidad de proteínas en la capa celular, la actividad de la MMP-2 (gelatinasa A), e inhibían la elastasa leucocitaria.
Estos efectos se manifiestan tanto en los fibroblastos dérmicos, como en los fibroblastos gingivales.
Los fucanos permiten modular la expresión y/o la actividad de las metaloproteinasas fibroblásticas, en particular, de la MMP-2, e inhibir la elastasa leucocitaria.
De este modo, los fucanos permiten controlar la actividad proteolítica en los tejidos conjuntivos, tales como los tejidos dérmicos y gingivales y, en particular, limitar la actividad elastasa, que presenta un potencial destructor importante frente a las estructuras macromoleculares conjuntivas, a la vez que favorece, por el contrario, la actividad de las proteasas que participan en la reconstrucción tisular, como la MMP-2. La presente invención tiene, pues, por objeto la utilización de, por lo menos, un fucano, para la obtención de un medicamento destinado al tratamiento de las patologías periodentales y, más concretamente, a la regeneración de los tejidos gingivales.
Dicho medicamento es capaz de inhibir la proliferación de los fibroblastos gingivales, y de activar su síntesis colagénica. Ello permite el tratamiento de las patologías periodentales, por medio de una mejora de la fase de resolución.
En efecto, debido a que la combinación de una regulación de las actividades proteolíticas (en particular, activación de la MMP-2 e inhibición de la elastasa) con una inhibición de la proliferación de los fibroblastos gingivales, un aumento de la síntesis de una matriz fisiológica, y la conservación del morfotipo fibroblástico, los fucanos permiten conducir dichos fibroblastos en la vía de la remodelación, necesaria para cualquier proceso de reparación o regeneración tisular.
Los medicamentos obtenidos de conformidad con la invención pueden administrarse por vía general (oral o parenteral). Asimismo, pueden administrarse localmente, en forma de gel, crema, pomada, loción, pastillas de chupar, enjuagues bucales, etc.
Asimismo, pueden administrarse in situ por medio de substratos, dispositivos absorbibles o no, tales como, por ejemplo, soportes de liberación retardada o esponjas de desagregación lenta.
La presente invención se entenderá mejor mediante el complemento de descripción siguiente, el cual se refiere a ejemplos que demuestran la actividad de fucanos sobre fibroblastos dérmicos y gingivales.
Ejemplo 1 Acción del fucano sobre la proliferación de fibroblastos gingivales y dérmicos Polisacáridos Fucano
El fucano utilizado es una fracción de masa molar media de 20.000\pm2.000 obtenida a partir del alga parda marina Ascophylum nodosum, según el procedimiento descrito en la Patente EP 0 403 377. Este fucano tiene una tasa elevada de fucose (44\pm5%), poca cantidad de ácido urónico (7\pm3%), 28\pm3% de grupos sulfatos y ninguna proteína.
Células
Los fibroblastos utilizados se han obtenido a partir de explantes de tejidos dérmicos y gingivales sanos, procedentes de tres donantes distintos (con edades de entre 15 y 30 años).
Cultivo
El protocolo de cultivo es el mismo para los fibroblastos gingivales y los fibroblastos dérmicos.
A partir del explante, se cultivan las células en un medio de cultivo DMEM (DULBECCO'S Modified Eagle Medium) con un contenido de D-glucosa de 1 g/l y GLUTAMAX de 0,862 g/l, un antibiótico (penicilina-estreptomicina 1.000 U/ml), fungizona (250 U/ml de amfotericina B; GIBCO BRL) y un 20% de suero de ternera fetal (SVF).
Las muestras se extraen del medio de transporte. Tras enjuagarlas tres veces en el medio de cultivo, se cortan en pequeños trozos de alrededor de 1 mm^{2}. Se disponen de tal forma que la capa epitelial se encuentre orientada hacia arriba, mientras que la capa conjuntiva se encuentra debajo, en contacto con la caja de cultivo de 25 cm^{2}. La caja se coloca verticalmente en una incubadora, a 37ºC (95% de aire y 5% de CO_{2}), durante media hora, de manera a favorecer la adhesión.
Tras añadir una gota de medio sobre cada fragmento tisular, la caja se introduce de nuevo en la incubadora, donde estará una noche.
Al día siguiente, se sustituye el medio de cultivo por el mismo medio fresco. Se deja la caja en la incubadora durante cuatro días.
A continuación, se sustituye el medio cada tres días, retirándose los explantes en cuanto los fibroblastos se adhieren a la pared. Cuando los fibroblastos han invadido todo el fondo de la caja, se da por terminado el primocultivo.
Pasos posteriores
Se elimina el medio de cultivo, y se enjuaga la caja tres veces con DPBS (DULBECCO'S Phosphate Buffer Saline), para eliminar cualquier traza de SVF, y se tripsiniza (tripsina diluida en DPBS al 0,05% y filtrada). Al cabo de 5 minutos, los fibroblastos se despegan y redondean.
Las células se reparten en 3 cajas, con DMEM (10 a 12 ml) al 10% de SVF, y 1.000 U/ml de penicilina-estreptomicina.
Se sustituye el medio con regularidad, hasta la completa colonización de la nueva caja.
Protocolo de proliferación celular
Las células confluyentes son tripsinizadas, suspendidas en DMEM a razón de 7.000 a 10.000 células/ml, y repartidas en los pocillos de placas de 24 pocillos. Los pocillos se completan con medio al 10% de SVF, y las placas sembradas se colocan de nuevo en la incubadora durante dos horas, para permitir la adhesión. Tres horas después de la siembra, se sustituyen los medios por un medio DMEM/10% SVF (grupo testigo) o DMEM/10% SVF con 1, 10 ó 100 \mug/ml del polisacárido probado (fucano o heparina). Se cuentan las células cada día, hasta el 4º día.
El porcentaje de proliferación se calcula mediante la relación:
%P = (proliferación neta con producto -1) / proliferación neta de los testigos x 100.
Si el valor calculado es positivo, existe proliferación celular; si es negativo, existe inhibición de la proliferación celular.
Los resultados relativos al porcentaje de proliferación en presencia de distintas concentraciones de fucano se ilustran mediante las Tablas Ia (fibroblastos gingivales) y Ib (fibroblastos dérmicos) siguientes:
TABLA Ia
1
TABLA Ib
2
Estos resultados muestran que el fucano influye de distinta manera sobre la proliferación de los fibroblastos gingivales y los fibroblastos dérmicos.
-
Fibroblastos gingivales (Tabla Ia): se puede observar una inhibición de la proliferación, que alcanza su máximo en fase exponencial de crecimiento. Esta inhibición parece ser dosis dependiente.
-
Fibroblastos dérmicos (Tabla Ib): los distintos experimentos muestran un efecto proliferativo del fucano sobre los cultivos de fibroblastos dérmicos. Este efecto es máximo el 4º día de cultivo, siendo 10 \mug/ml la concentración más eficaz.
Ejemplo 2 Influencia del fucano sobre la actividad de la mmp-2 (gelatinasa a) y sobre la morfología de los fibroblastos
Las células se siembran en placas de 24 pocillos (7.000 a 10.000 células/ml) y se cultivan en presencia de DMEM/10% SVF. En la confluencia, se sustituye el medio por DMEM para los testigos o DMEM con las distintas concentraciones de fucano (1, 10, 100 \mug/ml), durante 24 horas. A continuación, se recuperan los medios, para la detección de la actividad gelatinolítica de la pro-MMP-2, y se cuentan y analizan las células fijadas y teñidas (metanol/GIEMSA) mediante morfometría con módulo BIOCOM 200.
Determinación de la actividad gelatinolítica
Las actividades gelatinolíticas presentes en los medios de cultivo se detectan mediante zimografía, tras electroforesis, en condiciones no reductoras, en gel de poliacrilamida-SDS + gelatina, y eliminación del SDS.
Los resultados se cuantifican mediante análisis de imagen semiautomática con módulo BIOCOM 200. Para cada banda que aparece en el gel, se determina el producto de la densidad de grises (D) por la superficie de la banda (S). Este producto, llevado al número de células, permite apreciar y comparar las distintas actividades gelatinolíticas.
Los resultados se ilustran en la Tabla II siguiente:
TABLA II
3
\newpage
Estos resultados muestran que el fucano aumenta significativamente, desde las concentraciones más pequeñas, la secreción de la pro-MMP-2 en los dos tipos de fibroblastos estudiados.
Morfometría celular
Se estudian cuatro parámetros: el perímetro (expresado en \mum), la superficie de la célula (expresada en \mum^{2}), su diámetro equivalente (expresado en \mum), y su factor de forma.
El diámetro equivalente es el diámetro del menor círculo que contiene totalmente a la célula. Éste define la mayor longitud de la célula.
El factor de forma se determina mediante la razón 4\piS/P2, donde S representa la superficie y P el perímetro: cuando tiende hacia cero, traduce una estructura alargada; cuando aumenta, traduce un redondeo de la forma.
Los resultados se ilustran mediante las Tablas IIIa (fibroblastos gingivales) y IIIb (fibroblastos dérmicos) siguientes:
TABLA IIIa
4
TABLA IIIb
5
Estos resultados muestran que los fibroblastos gingivales y dérmicos reaccionan de distinta manera al fucano:
-
Fibroblastos gingivales: Se reduce la superficie, así como el diámetro de estas células, mientras que aumenta su perímetro. Estos parámetros permiten calcular un factor de forma que tiende hacia cero, lo que implica una célula alargada, del tipo fibroblástico.
-
Fibroblástos dérmicos: Bajo la influencia del fucano, aumenta la superficie y el diámetro de estas células, mientras que su perímetro queda constante. Aumenta el factor de forma, lo que implica que las células se redondean.
Ejemplo 3 Influencia del fucano sobre la actividad de la elastasa leucocitaria
La actividad de la elastasa leucocitaria en presencia de fucano (1 \mug/ml o 10 \mug/ml) o heparina H108 (1 UI/ml o 10 UL/ml) se mide utilizando como substrato el péptido sintético:
N-MeO-Succ-Ala-Ala-Pro-Val-PA,
según el protocolo descrito por BIZOT-FOULON y otros [International Journal of Cosmetic Science, 17, págs. 255-264, (1995)].
Los resultados se muestran en la Tabla IV siguiente:
TABLA IV
6
Estos resultados muestran que, en el caso de la heparina, la inhibición de la elastasa leucocitaria es limitada, y que el efecto inhibidor disminuye cuando la concentración de heparina aumenta; por el contrario, en el caso del fucano, la inhibición es mucho más importante desde la concentración de 1 \mug/ml.
Ejemplo 4 Influencia del fucano sobre la biosíntesis de los colágenos fibrilares
La biosíntesis de los colágenos se mide tras la incorporación de prolina tritiada (3H-Pro).
Las células se cultivan en DMEM/10%SVF, hasta su confluencia. A continuación, se sustituyen los medios por DMEM con ácido ascórbico (50 \mug/ml) y 3H-Pro (25 \muCi/ml) para los testigos, o este mismo medio con fucano a distintas concentraciones (1, 10, 100 \mug/ml), o heparina H108 en una concentración de 400 \mug/ml. Después de 24 horas, se recuperan los medios y la capa celular.
La extracción específica de la prolina y la hidroxiprolina radiomarcadas mediante el método de ROJKIND y GONZALES [Anal. Biochem, 57; 1-7 (1974)] permite la determinación de la relación síntesis colagénica total/síntesis proteica total.
Los resultados se ilustran en las Tablas Va (fibroblastos gingivales) y Vb (fibroblastos dérmicos) siguientes:
TABLA Va
7
TABLA Vb
8
Estos resultados muestran que los dos tipos de fibroblastos tienden, bajo el efecto del fucano, a sintetizar una matriz que se deposita preferiblemente en la capa celular. Este depósito matricial parece afectar al conjunto de proteínas, no sólo al colágeno, lo que excluye, para los dos tipos celulares, cualquier riesgo fibrótico.
-
Fibroblastos gingivales: La relación síntesis colagénica global/síntesis proteica global no varía. El porcentaje de colágenos de la capa celular aumenta paralelamente al porcentaje de proteínas, de manera dosis dependiente.
-
Fibroblastos dérmicos: El porcentaje de colágenos presentes en la capa celular (intra y pericelular) aumenta con dosis pequeñas, y no varía con 100 \mug/ml, mientras que la cantidad de proteínas presentes en este compartimento aumenta con la concentración de fucano. La relación síntesis colagénica global/síntesis proteica global disminuye.
Influencia del fucano o de la heparina sobre el depósito de colágenos pericelulares sintetizados por los fibroblastos gingivales
Las células se cultivan como se ha descrito anteriormente, en presencia de prolina tritiada; se añade fucano en una concentración de 100 \mug/ml o heparina H108 (masa molar media 21.000\pm2.000, actividad 173 Ul/mg, comercializada por CHOAY SANOFI) en una concentración de 400 \mug/ml.
Para estimar la cantidad de colágeno fibrilar, se procede a la extracción diferencial de los colágenos intracelulares y pericelulares mediante el deoxicholate (que extrae esencialmente el procolágeno intracelular) y el SDS (que solubiliza el colágeno pericelular acumulado en la matriz extracelular).
Los resultados se ilustran en la tabla VI siguiente:
TABLA VI
9
Estos resultados permiten confirmar que el aumento de los colágenos en la capa celular se debe a un depósito matricial (es decir, pericelular) y no a una retención intracelular excesiva. Además, muestran que dicho depósito matricial es más importante en presencia de fucano que en presencia de heparina.

Claims (3)

1. Utilización de, por lo menos, un fucano, para la obtención de un medicamento destinado al tratamiento de las patologías periodentales.
2. Utilización, según la reivindicación 1, caracterizada porque dicho medicamento está destinado a la regeneración de los tejidos gingivales.
3. Utilización, según la reivindicación 1 ó 2, caracterizada porque dicho fucano se incorpora a un dispositivo de liberación retardada.
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