ES2201433T3 - Estereoisomeros de valnoctamida, metodo para su sintesis y separacion y uso de los mismos. - Google Patents
Estereoisomeros de valnoctamida, metodo para su sintesis y separacion y uso de los mismos.Info
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Abstract
LA PRESENTE INVENCION SE REFIERE EN GENERAL A LOS ESTEREOISOMEROS INDIVIDUALES DEL FARMACO VALNOCTAMIDA (UNA MEZCLA DE CUATRO TIPOS DE ESTEREOISOMEROS, VCD - VALMETAMIDA O 2 - ETIL - 3 METILPENTANAMIDA) UTILES EN EL TRATAMIENTO DE TRASTORNOS NEUROLOGICOS Y PSICOTICOS TALES COMO DIFERENTES TIPOS DE EPILEPSIA Y TRASTORNOS AFECTIVOS, UTILES COMO TRANQUILIZANTES Y PARA TRATAR EL DOLOR, Y A COMPOSICIONES FARMACEUTICAS QUE CONTIENEN, COMO INGREDIENTE ACTIVO, ESTOS ESTEREOISOMEROS. LA PRESENTE INVENCION TAMBIEN SE REFIERE A UN PROCEDIMIENTO PARA LA SEPARACION Y CUANTIFICACION ESTEREOSELECTIVAS DE LOS CUATRO ESTEREOISOMEROS A PARTIR DE UNA MEZCLA RACEMICA DE VCD O PLASMA DE PACIENTES TRATADOS CON EL FARMACO RACEMICO. LA PRESENTE INVENCION TAMBIEN SE REFIERE A UN PROCEDIMIENTO UNICO PARA LA SINTESIS DE LOS ESTEREOISOMEROS INDIVIDUALES.
Description
Esteroisómeros de valnoctamida, método para su
síntesis y separación y usos de los mismos.
La presente invención se refiere generalmente al
estereoisómero individual (2R)(3S) del fármaco valnoctamida (una
mezcla de cuatro tipos de estereoisómeros,
VCD-valmetamida o
2-etil-3-metil-pentanamida),
que se puede obtener mediante el procedimiento definido en la
reivindicación 1, útil en el tratamiento de trastornos neurológicos
y psicóticos, como diferentes tipos de epilepsia y trastornos
afectivos, y útil como tranquilizante y para tratar el dolor, y a
composiciones farmacéuticas que contienen, como ingrediente activo,
dicho estereoisómero. La presente invención se refiere además a un
método para la separación estereoselectiva y cuantificación de los
cuatro estereoisómeros desde una mezcla racémica de VCD o plasma de
pacientes tratados con el fármaco racémico.
La presente invención se refiere además a un
método único para la síntesis de los estereoisómeros individuales
(2S)(3S) y (2R)(3S).
La epilepsia es una enfermedad antigua que afecta
a aproximadamente 1% de la población global. A pesar del progreso
en la terapia antiepiléptica, aproximadamente 25% de los pacientes
epilépticos continúan padeciendo ataques incontrolados y toxicidad
de la medicación. En el presente existen cuatro fármacos
antiepilépticos principales en uso: fenobarbital, fenitoína,
carbamazepina y ácido valproico.
El ácido valproico (VPA) es uno de los fármacos
antiepilépticos principales. Tiene dos efectos secundarios
principales, teratogenicidad y hepatotoxicidad, que se han asociado
con la terapia de valproato.
La valnoctamida (VCD-valmetamida
o
2-etil-3-metil-pentanamida)
es un isómero de valpromida (VPD) y se vende sin receta médica en
muchos países europeos. Ha estado disponible clínicamente durante
muchas décadas y se usa todavía como un tranquilizante suave y,
ocasionalmente, como fármaco antiepiléptico (Chambon JP, Perio A,
Neurosci. Lett [Suppl]5: S327-S327, 1980). La
valpromida (VPD) se usa como agente anticonvulsivo y antipsicótico,
y en seres humanos es un profármaco del ácido valproico (VPA). La
VPD puede ser útil también en el tratamiento de trastornos
neurológicos y trastornos psicóticos o afectivos, como convulsiones
y epilepsia, y útil como tranquilizante y para tratar el dolor.
Recientemente, revivió el interés en la VCD por la observación de
que este compuesto posee una marcada actividad anticonvulsiva en
modelos animales.
Tanto la VCD como la VPD son tres veces más
potentes como anticonvulsivos que el VPA. Además la VPD, a
diferencia del VPA, no se ha encontrado que sea teratógena en
animales, posiblemente porque contiene un resto de carboxamida en
vez de ácido carboxílico. Sin embargo, en seres humanos la VPD actúa
como profármaco para el VPA y, por tanto, su superioridad sobre el
VPA en modelos animales no tiene implicaciones clínicas.
A diferencia de la VPD, la VCD actúa como un
fármaco por sí mismo tanto en animales como en seres humanos y sufre
sólo una transformación lenta y muy pequeña hasta su
correspondiente (menos activo) ácido valnóctico (VCA). Basándose en
su eficacia anticonvulsiva, estabilidad metabólica y ausencia de
teratogenicidad, la VCD se consideró que tenía potencial para
convertirse en un nuevo fármaco antiepiléptico.
Recientemente se descubrió, sin embargo, que la
VCD es un inhibidor de la enzima epóxido-hidrolasa.
Esta inhibición se consideró como un inconveniente para el
desarrollo de la VCD racémica como nuevo fármaco antiepiléptico.
En la presente invención, por primera vez, se
realizó la caracterización de la farmacocinética (PK) de los cuatro
estereoisómeros de la VCD en seres humanos. Esta caracterización
demuestra claramente que la farmacocinética de la VCD es
estereoselectiva, presentando un estereoisómero un aclaramiento
mucho mayor y una semivida más corta, comparado con los oros
estereoisómeros. La farmacocinética estereoselectiva se ha
demostrado previamente con diferentes fármacos, como el verapamil y
la mefentoína, pero es la primera vez que se ha demostrado dicha
estereoselectividad farmacocinética para una amida de un ácido graso
de cadena alifática corta.
La presente invención se refiere al
estereoisómero (2R)(3S) de valnoctamida, que se puede obtener
mediante el procedimiento definido en la reivindicación 1, útil
para el tratamiento de trastornos neurológicos y psicóticos como
diferentes tipos de epilepsia y trastornos afectivos, y útil como
tranquilizante y para tratar el dolor. La presente invención se
refiere además a un método para la separación estereoselectiva y la
cuantificación de los cuatro estereoisómeros de una mezcla racémica
de VCD y a un método para sintetizar los estereoisómeros de la VCD
2S,3S y 2R,3S.
Los esteroisómeros tienen todas las ventajas y
más del fármaco racémico de valnoctamida, pero no tienen ninguno de
sus inconvenientes, haciéndolos preferibles para uso en el
tratamiento de convulsiones y epilepsia, y como un ingrediente
activo en composiciones farmacéuticas para el tratamiento de estos
últimos.
La presente invención se refiere además a un
método para separar los cuatro estereoisómeros de la valnoctamida
racémica. Este método es un nuevo ensayo estereoselectivo de
cromatografía de gases-espectrometría de masas
(GC-MS) que permite la cuantificación sensible y
específica de los estereoisómeros de valnoctamida en plasma humano.
Este método es el único disponible para investigar la
farmacocinética y la farmacodinámica de los estereoisómeros de
valnoctamida en muestras de plasma, investigaciones que pueden tener
importantes implicaciones prácticas para el desarrollo de un nuevo
fármaco anticonvulsivo para seres humanos.
La presente invención se refiere además a un
método único para la síntesis de los estereoisómeros individuales
(2S)(3S) y (2R)(3S).
La presente invención se refiere al
estereoisómero (2R)(3S) de valnoctamida (uno de los cuatro isómeros
de la valnoctamida), que se puede obtener mediante el procedimiento
definido en la reivindicación 1, útil en el tratamiento de
trastornos neurológicos y psicóticos, como diferentes tipos de
epilepsia y trastornos afectivos, y útil como tranquilizante y para
tratar el dolor, y a composiciones farmacéuticas que contienen como
ingrediente activo al menos el estereoisómero (2R)(3S) de
valnoctamida que se puede obtener mediante el procedimiento definido
en la reivindicación 1, útiles como fármacos anticonvulsivos o
tranquilizantes.
La presente invención se refiere además a un
método para separar los isómeros de valnoctamida, que comprende
someter una mezcla de valnoctamida racémica a cromatografía de
gases, preferiblemente con las siguientes condiciones de
programación de la temperatura del horno: 50ºC durante 1 minuto,
incrementando a una velocidad de 80ºC/minuto hasta 100ºC,
manteniendo durante un minuto y luego alcanzando la temperatura
final de 250ºC a una velocidad de 40ºC/minuto; la temperatura del
inyector es 240ºC y la temperatura de la tubería de transferencia
GC-MS es 250ºC; la presión de entrada es 34,47 KPa
con un caudal lineal de 20 cm/s y el gas portador de GC es helio. A
continuación, los isómeros se separan en una columna de fase
estacionaria quiral, que consiste preferiblemente en octakis
(3-O-butanoíl-2,6-di-o-pentil)-\gamma-ciclodextrina,
unida químicamente a través de un espaciador de
6-mono-octametileno a un
dimetilpolisiloxano, con el que se reviste una columna capilar de
sílice fundida de 25 m x 250 \mum revestida por 0,25 \mum de
octakis
(3-O-butanoíl-2,6-di-o-pentil)-\gamma-ciclodextrina.
La presente invención se refiere además a un
método para la síntesis estereoselectiva de los estereoisómeros de
valnoctamida (2S,3S) y (2R,3S), que comprende:
- (a)
- sintetizar ácido (3S)-metil-valérico a partir de L-isoleucina;
- (b)
- posteriormente, sintetizar cloruro de (3S)-metil-valeroílo; y
- (c)
- posteriormente, sintetizar ácido (2S,3S)-valnóctico o, posteriormente, sintetizar ácido (2R,3S)-valnóctico;
- (d)
- posteriormente, sintetizar (2S,3S)-valnoctamida o (2R,3S)-valnoctamida.
La presente invención se refiere al
estereoisómero (2R,3S) del fármaco valnoctamida
(VCD-valmetamida o
2-etil-3-metil-pentanamida),
que se puede obtener mediante el procedimiento definido en la
reivindicación 1, útil para el tratamiento de trastornos
neurológicos y psicóticos, como diferentes tipos de epilepsia y
trastornos afectivos, y útil como tranquilizante y para el
tratamiento del dolor, y a composiciones farmacéuticas que
contienen como ingrediente activo dicho estereoisómero.
La VCD, comparada con el fármaco antiepiléptico
bien conocido VPA, se retiene en el cuerpo durante un período
relativamente largo y los niveles plasmáticos de su ácido
correspondiente (VCA), son mucho más bajos que los del fármaco
original. En contraste con la VPD, que tiene una elevada velocidad
de extracción (metabólica) por el hígado, donde sufre un
metabolismo en el primer paso hasta su ácido correspondiente VPA,
la VCD no tiene una elevada afinidad para el metabolismo hepático.
Esto se refleja por su bajo aclaramiento oral y su semivida, que es
diez veces superior que la de la VPD (Bialer et al, Eur. J. Clin.
Pharmacol. 38: 289-291, 1990).
Basándose en su eficacia anticonvulsiva, su
estabilidad metabólica y su falta de teratogenicidad, se consideró
que la VCD tenía potencial para convertirse en un nuevo fármaco
antiepiléptico. Sin embargo, recientemente se descubrió (Pisani et
al, Epilepsia 34: 954-959, 1993) que la VCD es un
inhibidor de la enzima epóxido- hidrolasa. La inhibición de esta
enzima, que produce un aclaramiento reducido de la
CBZ-E en pacientes que se trataron con el fármaco
antiepiléptico carbamazepina (CBZ) junto con VCD, produjo en estos
pacientes señales que sugerían intoxicación por CBZ.
Esta inhibición se consideró como un
inconveniente para el desarrollo de la VCD racémica como nuevo
fármaco epiléptico, pero, debido a que la VCD tiene dos centros
quirales (como se representa en la Figura 1), y a que hay dos pares
de enantiómeros en la molécula de VCD, existe una posibilidad de que
su farmacocinética (PK) y su farmacodinámica (PD), incluyendo el
potencial toxicológico y la inhibición de la
epóxido-hidrolasa, sean estereoselectivos. Por sí
misma, la estereoselectividad de PK podría conducir a la
estereoselectividad de PD, y tiene implicaciones considerables para
el desarrollo posterior de un fármaco antiepiléptico.
El método para la separación estereoselectiva y
la cuantificación de los cuatro estereoisómeros desde una mezcla
racémica de la VCD o plasma de pacientes tratados con el fármaco
racémico de la presente invención, se desarrolló basándose en
estos antecedentes. Este método es un nuevo ensayo estereoselectivo
de cromatografía de gases-espectrometría de masas
(GC-MS), que permite la cuantificación específica y
sensible de los estereoisómeros de la VCD.
La presente invención se refiere además a un
método para la síntesis estereoselectiva de los estereoisómeros de
valnoctamida (2S,3S) y (2R,3S). Dicho método de síntesis comprende
las siguientes etapas:
- (a)
- sintetizar ácido (3S)-metil-valérico (véase figura 6(I)), a partir de L-isoleucina;
- (b)
- sintetizar cloruro de (3S)-metil-valeroílo (véase figura 7(II));
- (c)
- sintetizar ácido (2S,3S)-valnóctico (véase figura 8 (III')) o, posteriormente, sintetizar ácido (2R,3S)-valnóctico (véase figura 8 (III));
- (d)
- sintetizar (2S,3S)-valnoctamida (véase figura 8 (V')) o (2R,3S)-valnoctamida (véase figura 8(V)).
La citada invención se ilustrará adicionalmente
mediante los siguientes ejemplos. Estos ejemplos no pretenden
limitar el alcance de la invención, sino sólo demostrarla y
clarificarla.
El método de separación de la presente invención
se aplicó para investigar la farmacocinética de los estereoisómeros
de la VCD en muestras de plasma de siete sujetos sanos y seis
pacientes epilépticos.
Siete voluntarios masculinos sanos, de
20-31 años de edad, que pesaban de 61 a 85 kg,
recibieron 2 x 200 mg de comprimidos de valnoctamida (Nirvanil®) a
las 8:00, tras ayunar durante la noche. Se tomaron muestras de
sangre venosa mediante un catéter permanente, 0, 0,5, 1, 2, 3, 4,
5, 6, 8, 10, 12 y 24 horas tras la dosificación. La comida se evitó
durante 4 horas tras la dosificación.
Se estudiaron seis pacientes epilépticos (cuatro
hombres y dos mujeres de 23-35 años de edad, con un
peso corporal de 56-85 kg). Todos habían estado
recibiendo una dosis constante de carbamazepina
(800-1200 mg/día) durante al menos tres meses. Un
paciente estuvo recibiendo también fenitoína (250 mg/día) y un
segundo paciente, fenobarbital (150 mg/día). Cada paciente recibió
un complemento de VCD durante ocho días consecutivos a una dosis de
400 mg en el día 1 (día de dosis única), seguido de 200 mg tres
veces al día (tid) durante siete días. En el último día, sólo se
administraron las dosis de la mañana y del medio día. Se recogieron
muestras de sangre para los niveles plasmáticos de VCD a las horas
0, 0,25, 0,5, 1, 1,5, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 10, 12 y 24, tras la
primera y la última dosis de la mañana. Se tomaron muestras
adicionales a las 0, 0,5, 1 y 2 horas tras la dosis de la mañana en
el último día de tratamiento.
Las muestras de plasma se separaron
inmediatamente mediante centrifugación a 2.000 g durante 10 minutos
y se almacenaron a -20ºC hasta el ensayo (la VCD es estable a
-20ºC). Las muestras plasmáticas de VCD se analizaron mediante un
sistema de datos GC-MS de cromatógrafo gaseoso (HP
5890 serie II)-espectrómetro de masas (HP 5989A),
equipado con una comuna capilar quiral. El espectrómetro de masas
se accionó en modo El a 70eV, la temperatura fuente del MS se
mantuvo a 200ºC y el cuádruple a 100ºC. Las unidades de masa y su
abundancia relativa se calibraron con perfluorotributilamina
(PFTBA). Se recogieron espectros en el intervalo de 35 a 350 MHz, y
el análisis quiral comenzó 18 minutos después de la inyección.
Las condiciones de programación de la temperatura
del horno del cromatógrafo de gases (GC) fueron las siguientes:
50ºC durante 1 minuto, incrementándose luego a una velocidad de
8ºC/minuto hasta 100ºC, manteniéndose durante un minuto, luego a
4ºC/minuto hasta alcanzar una temperatura final de 250ºC. La
temperatura del inyector es 240ºC y la temperatura de la tubería de
transferencia GC-MS es 250ºC. La presión de entrada
es 34,47 KPa con un caudal lineal de 20 cm/s. Se usó helio como gas
portador.
La resolución cromatográfica de los
estereoisómeros de la VCD se logró mediante separación directa en
una columna de fase estacionaria quiral (CSP). La CSP estaba
formada por Chirasil-\gamma-Dex
(octakis
(3-O-butanoíl-2,6-di-o-pentil)-\gamma-ciclodextrina,
unida químicamente a través de un espaciador de
6-mono-octametileno, a un
dimetilpolisiloxano. El
Chirasil-\gamma-Dex de 0,25 \mum
se utilizó para revestir una columna capilar de sílice fundida de
25 m x 250 \mum (id). Esta CSP de un derivado de ciclodextrina
permite la resolución de la línea base completa de los cuatro
estereoisómeros (\alpha = 1,04, Rs = 2,0-2,4) en
24 minutos, como se representa en la figura 2. La variabilidad
intra e inter-diaria en los tiempos de retención de
los cuatro estereoisómeros de la VCD fue inferior a 10%. Se
estableció una curva de calibrado activando muestras de plasma
exentas de fármaco con cantidades conocidas de VCD racémica a un
intervalo de concentración de 0,2 mg/l a 8 mg/l (o de 0,05 mg/l a 2
mg/l de cada uno de los cuatro estereoisómeros de VCD).
La VCD (mezcla racémica) se obtuvo de Clin Midy
(Italia). La propilisopropilacetamida (PID), sintetizada previamente
por Haj-Yehia y Bialer (Pharm. Res. 6:
683-9, 1989), se usó como estándar interno (IS). La
solución de reserva de VCD (mezcla racémica) se preparó disolviendo
el fármaco en cloroformo a una concentración de 5 mg/ml. Las
soluciones de reserva se almacenaron a -20ºC.
Los parámetros farmacocinéticos se calcularon
mediante análisis no compartimental, según la teoría del momento
estadístico. Las concentraciones de plasma máximas (Cmax) y los
tiempos máximos (tmax) se derivaron directamente desde los valores
medidos. Se calcularon las pendientes terminales lineales
(\lambda) de la concentración logarítmica de cada estereoisómero
de VCD frente a las curvas de tiempo, mediante el procedimiento de
depuración de datos. Los valores de semivida (t_{1/2}) se
calcularon como 0,693/\lambda. Las áreas bajo la curva de
concentración de plasma frente a tiempo (AUC), tras una
dosificación única, se calcularon mediante la regla trapezoidal con
extrapolación al infinito, dividiendo la última concentración medida
por la pendiente terminal. Durante la administración repetida, la
AUC se calculó sobre los dos últimos intervalos de dosificación,
usando la regla trapezoidal. El tiempo de residencia medio (MRT) se
calculó tras una dosificación única como AUMC/AUC, en la que AUMC es
el área bajo la curva de concentración x tiempo de producto frente
a la curva de tiempo desde cero a infinito. A continuación de la
primera dosificación, se calcularon el aclaramiento oral (CL/F, en
la que F es la disponibilidad oral) y el volumen aparente de
distribución en estado de régimen (Vss/F), como dosis/AUC y como MRT
x CL/F, respectivamente. Después de dosificación repetida, se
calculó CL/F del cociente de la dosis (200 mg) y el AUC obtenido
durante un intervalo de dosificación (definido como la mitad del
AUC calculado durante dos intervalos de dosificación consecutivos).
La comparación de los parámetros farmacocinéticos de los cuatro
estereoisómeros de la VCD la realizó ANOVA.
Los estereoisómeros de la VCD se identificaron
como A, B, C y D, basándose en sus tiempos de retención
respectivos, como se muestra en la figura 1. Como etapa hacia la
caracterización, se separaron pares enantioméricos de
diastereoisómeros mediante cristalización repetida de la VCD
racémica. Tras ocho recristalizaciones, una fracción de un par de
enantiómeros (A y C) contenía sólo 12% del otro par enantiomérico
(B y C). Los coeficientes de variación intra- e interdiaria para
cada analito fueros inferiores a 10%.
La figura 2 muestra un cromatograma
GC-MS típico, que representa la elevada resolución
de los cuatro estereoisómeros (picos A, B, C y D) de VCD. El
espectro de masas de cada uno de los cuatro estereoisómeros de VDC
era idéntico. Las concentraciones plasmáticas medias de los cuatro
estereoisómeros después de una dosificación oral única de VCD
racémica a sujetos sanos y a pacientes epilépticos, se muestran en
las figuras 3 y 4, mientras que la figura 5 representa las
concentraciones plasmáticas medias de los estereoisómeros durante el
último día tras ocho días de dosificación oral repetida de VCD
racémica en pacientes epilépticos. La figura 5 presenta picos
primarios y secundarios debido al hecho de que en el último día
sólo 2 horas separaban a las dosis de la mañana y del medio día. Los
parámetros farmacocinéticos individuales y medios de los
estereoisómeros en sujetos sanos y pacientes epilépticos se
proporcionan en las tablas 1 a 3. En sujetos sanos, el
estereoisómero B tenía el aclaramiento oral más elevado (CL/F = 8,7
\pm 0,9 L/H) y su semivida (t_{1/2}) y tiempo de residencia
medio (MRT) eran los más cortos de todos los estereoisómeros de
VCD.
Después de las dosis únicas de VCD en pacientes
epilépticos, el estereoisómero B mostró también el aclaramiento
oral mayor (80 \pm 20 l/h) y el volumen de distribución mayor
(Vss/F = 349 \pm 60 l), comparado con todos los demás
estereoisómeros. Para todos los estereoisómeros, los valores de CL/F
en pacientes epilépticos eran aproximadamente diez veces mayores
que aquellos determinados en sujetos sanos que recibieron la misma
dosis bajo idénticas condiciones. Los valores de Vss/F eran también
mucho mayores en pacientes que en sujetos sanos. Debido a sus
semividas cortas, todos los estereoisómeros mostraron una
acumulación despreciable durante la dosificación repetida (figura 5
y tabla 3). Tras una dosificación de 7 días, sin embargo, los
valores de CL/F en estado de régimen eran inferiores que los
determinados en los mismos pacientes tras una dosis única.
Este estudio proporciona la primera
caracterización de PK de los cuatro estereoisómeros de VCD en el
hombre. Cuando la concentración de los isómeros individuales en el
plasma se sumó en cada momento de muestreo, los valores resultantes
estuvieron en estrecho acuerdo con aquellos determinados previamente
en las mismas muestras usando un ensayo GC no estereoselectivo
(Pisani et al, Epilepsia 34: 954-959, 1993).
Esto proporciona evidencia confirmatoria acerca de la fiabilidad del
ensayo usado en este estudio y de la estabilidad de la VCD bajo las
condiciones de almacenamiento indicadas.
La evaluación de las propiedades cinéticas de los
isómeros individuales en sujetos sanos y en pacientes epilépticos
que recibían terapia anticonvulsiva concomitante, demostró
claramente que la farmacocinética de la VCD es estereoselectiva,
presentando un isómero (estereoisómero B) un aclaramiento mucho
mayor y una semivida más corta, comparado con otros isómeros. De
hecho, se observó una diferencia pronunciada en el comportamiento
de PK, no sólo entre el estereoisómero B y sus diastereoisómeros A y
B, sino también entre los enantiómeros individuales
B y D.
B y D.
Estudios previos han mostrado que la VCD se
absorbe completamente y se elimina predominantemente por
metabolismo. Por tanto, la diferencia en las propiedades de PK
entre estereoisómeros individuales tiene que implicar un
procedimiento estereoselectivo en el metabolismo del fármaco. A este
respecto, el volumen de distribución (Vss/F) aparente mayor del
estereoisómero B, que era más claramente evidente en los pacientes
epilépticos, podría estar relacionado con el mayor metabolismo en el
primer paso de este isómero, produciendo una biodisponibilidad oral
reducida.
Comparados con los sujetos testigo sanos, los
pacientes epilépticos presentaban un aclaramiento oral aparente
(CL/F) aproximadamente 10 veces mayor para cada uno de los cuatro
estereoisómeros. Los pacientes epilépticos mostraban también
semividas más cortas, comparados con el testigo (aproximadamente 3 h
frente a 10 h para los estereoisómeros A, C y D, y aproximadamente
3 h frente a 5,8 h para el estereoisómero B). El destacado
aclaramiento de la VCD entre sujetos sanos y pacientes epilépticos
se podría explicar por inducción del metabolismo oxidativo de los
estereoisómeros de VCD mediante carbamazepina, que es un potente
inductor del citocromo P450. En efecto, la excreción urinaria mínima
de VCD no metabolizada y su hidrólisis metabólica menor que la de
su ácido correspondiente VCA, sugiere que las vías metabólicas
oxidativas juegan un papel importante en el aclaramiento de la VCD.
La inducción del metabolismo en el primer paso mediante
carbamazepina podría explicar también los mayores volúmenes de
distribución (Vss/F) de los estereoisómeros de la VCD en pacientes
con epilepsia. La reducción en el aclaramiento oral aparente de los
isómeros de VCD que se observó durante la dosificación repetida en
pacientes epilépticos, por otra parte, sugiere cambios dependientes
del tiempo en la disposición de la VCD, posiblemente relacionados
con el metabolismo dependiente de la concentración del fármaco.
Aunque la farmacodinámica estereoselectiva no
está asociada necesariamente con la estereoselectividad de PK, las
diferencias en el comportamiento de PK de los estereoisómeros de la
VCD incrementan la verosimilitud de que existan diferencias
asimismo en su actividad anticonvulsiva o en propiedades no deseadas
como la teratogenicidad, hepatotoxicidad e inhibición de la
epóxido-hidrolasa.
Se desarrolló un método único para la síntesis de
un estereoisómero individual y su configuración absoluta se
resolvió mediante análisis de difracción de rayos X, como se
muestra en la figura 9.
El método para la síntesis asimétrica de los
estereoisómeros de la VCD 2S,3S y 2R,3S, se describirá más a fondo
mediante los siguientes ejemplos:
Se añadió gota a gota una solución de nitrito
sódico (35 g en 100 ml de agua), a una solución enfriada (0ºC) de
L-isoleucina (66 g) disuelta en HBr (6N, 500 ml).
La reacción se agitó durante la noche a temperatura ambiente y luego
se extrajo con EtOAc (3 x 150 ml). Los extractos orgánicos
combinados se lavaron con solución de bisulfito sódico al 10%,
agua, salmuera saturada, se secaron sobre MgSO_{4}, se filtraron
y se concentraron. El producto, un aceite amarillento (53,9 g), se
obtuvo con un rendimiento de 55%. (El producto se puede purificar
mediante destilación y cristalización desde PE). (Véase figura
6).
Se añadió lentamente polvo de zinc (36 g) a una
solución de ácido
(3S)-metil-valérico (53,9 g),
disuelto en ácido sulfúrico (1N, 800 ml). La reacción se agitó
durante dos horas, se filtró y se extrajo con Et_{2}O (3 x 200
ml). Los extractos orgánicos combinados se lavaron con agua,
salmuera saturada, se secaron sobre MgSO_{4} y se concentraron.
El aceite amarillento obtenido se purificó mediante destilación
bajo presión reducida (666,61 Pa, punto de ebullición = 55ºC). El
producto, un aceite incoloro (18,5 g) se obtuvo con un rendimiento
de 58%. (Véase figura 6).
Se añadió gota a gota una solución de nitrito
sódico (35 g en 100 ml de agua), a una solución enfriada (0ºC) de
L-isoleucina (40 g) disuelta en HCl (5N, 750 ml).
La reacción se agitó durante la noche a temperatura ambiente
(\sim23ºC), se añadió lentamente Na_{2}CO_{3} (31 g) y la
mezcla de reacción se extrajo con EtOAc (3 x 150 ml). Los extractos
orgánicos combinados se lavaron con agua, salmuera semisaturada, se
secaron sobre MgSO_{4}, se filtraron y concentraron. El producto,
un aceite amarillento, se destiló bajo presión reducida (666,61 Pa,
punto de ebullición = 111ºC), produciendo un aceite incoloro (32
g), obtenido con un rendimiento de 70%. (Véase figura 6).
Se añadió cuidadosamente LAH (50 g) pulverulento,
a una solución de ácido
(2S,3S)-2-cloro-3-metil-valérico
(66 g) disuelto en 2500 ml de Et-{2}O seco. La reacción se trató
a reflujo durante 7-10 días. El LAH en exceso se
neutralizó mediante adición cuidadosa de EtOAc (250 ml), metanol
(100 ml), DDW (100 ml) y una mezcla (100 ml) de un ácido sulfúrico
1:1 y agua. La fase etérea se separó y la fase acuosa se extrajo
con EtOAc (3 x 200 ml). Los extractos orgánicos combinados se
lavaron con una solución de NaHCO_{3} al 10%, agua, salmuera
semisaturada, se secaron sobre MgSO_{4} y se concentraron. El
producto, un aceite verde, se purificó mediante destilación al
vacío (666,61 Pa, punto de ebullición = 42ºC), produciendo un aceite
incoloro (27,3 g), rendimiento 61%. (Véase figura 6).
Se añadieron lentamente 1200 ml del reactivo de
oxidación (240 g de Na_{2}Cr_{2}O_{7}, 177 ml de
H_{2}SO_{4} al 97% y DDW, hasta completar hasta 1200 ml) a una
solución fría (0ºC) de
(3S)-metil-pentanol (37,9 g),
disuelto en 1500 ml de Et_{2}O. La reacción se agitó durante la
noche a temperatura ambiente (\sim23ºC) y se extrajo con
Et_{2}O (3 x 150 ml). Los extractos orgánicos combinados se
lavaron con solución de HCl al 5% (3 x 50 ml), seguido de
alcalinización con solución de NaOH 2N. La fase acuosa alcalina se
separó, se acidificó con HCl concentrado (pH = 2) y se extrajo con
EtOAc (3 x 100 ml). Los extractos orgánicos combinados se secaron
sobre MgSO_{4} y se concentraron, produciendo un aceite oscuro
que se purificó mediante destilación al vacío (666,61 Pa, punto de
ebullición = 110ºC), produciendo un aceite incoloro (25,2 g),
rendimiento de 58%. (Véase figura 6).
Se añadió gota a gota cloruro de oxalilo (7,3 ml
en 50 ml de CDM seco), a una solución enfriada (0ºC) de ácido
(3S)-metil-valérico (10 g) y DMF
seco (6,7 ml) disuelto en DCM seco (50 ml). Tras agitar una hora, se
evaporaron el DCM y el cloruro de oxalilo en exceso mediante
corriente de N2. El producto bruto se lavó con DCM seco (2 x 20
ml), que se evaporó mediante corriente de N_{2}. La mezcla de
reacción se disolvió en THF (20 ml) seco enfriado (0ºC) y se usó
sin purificación ulterior en la siguiente etapa. (Véase figura
7).
Se añadió gota a gota una solución de
n-BuLi (13 ml, 1,6 M en hexano), a una solución
enfriada (-78ºC) de
(4S)-bencil-2-oxazolidinona
(3,65 g) disuelta en THF (50 ml) seco. Tras agitar durante 30 min,
se añadió de una vez a través de una cánula, una solución enfriada
(-78ºC) de cloruro de
(3S)-metil-valeroílo (2,8 g),
disuelto en THF seco (20 ml). La mezcla de reacción se templó
lentamente hasta 0ºC, se agitó durante 2 horas y se enfrió
rápidamente mediante adición de una solución de NH_{4}Cl
saturada. El THF se evaporó y la fase acuosa se extrajo con DCM (3 x
50 ml). Los extractos orgánicos combinados se lavaron con agua,
salmuera semisaturada, se secaron sobre MgSO_{4} y se
concentraron. El producto (3,9 g) se cristalizó desde EtOAc al 5%
en PE, rendimiento de 69%. (Véase figura 7).
Síntesis mediante el mismo procedimiento que la
(4S,2'R)-3-(2'-isopropil-1'-oxopentil)-4-bencil-2-oxazolidinona,
usando
(4S,3'S)-3-(3'-metil-1'-oxopentil)-4-bencil-2-oxazolidinona
y sulfonato de etil-trifluorometano. (Véase
figura 7).
figura 7).
Se sintetizó
(4R,5S,2'S)-3-(2'-isopropil-1'-oxopentil)-4-metil-5-fenil-2-oxazolidinona
a partir de
(4R,5S)-3-(1'-oxopentil)-4-metil-5-fenil-2-oxazolidinona
y triflato de isopropilo mediante el mismo procedimiento que la
(4S,2'S)-3-(2'-isopropil-1'-oxopentil)-4-bencil-2-oxazolidinona.
El producto (5,53 g) se obtuvo con un rendimiento de 32%. (Véase
figura 8).
Se añadió gota a gota una solución de cloruro de
oxalilo (34,3 ml, solución 2,0 M en DCM) en N_{2}, a una solución
enfriada (0ºC) de (2R)-PIA (3,3 g) disuelta en DCM
seco (100 ml) y DMF seco (1,77 ml). Tras agitar durante una hora, el
DCM y el cloruro de oxalilo en exceso se evaporaron mediante
corriente de N_{2}. A fin de eliminar trazas de cloruro de
oxalilo, el producto bruto se trató con DCM seco (2 x 20 ml) que se
evaporó mediante corriente de N_{2}. Se añadió NH_{4}OH (20 ml,
solución al 25% en agua) a la mezcla de reacción bruta disuelta en
DCM (100 ml) seco, enfriado (0ºC), y la mezcla de reacción se agitó
durante una hora. La fase orgánica se lavó con agua y salmuera
semisaturada, se secó sobre MgSO_{4}, se filtró y se concentró. El
producto se cristalizó desde EtOAc al 20% en PE, produciendo 2,14
g, rendimiento de 65%.
La síntesis de (2R,3S)-VCD se
realizó usando los mismos procedimientos que para la síntesis de
(2S,3S)-VCD, excepto por el coadyuvante quiral, que
es
(4R,5S)-4-metil-5-fenil-2-oxazolidinona.
\newpage
Sujetos | ||||||||
CP | CG | ML | GM | VL | BV | GL | Media \pm SD | |
Estereoisómero A | ||||||||
t1/2 (h) | 8,8 | 13,6 | 8,1 | 10,7 | 9,5 | 8,5 | 12,5 | 10,2 \pm 2,1 |
Cmax (mg/l) | 2,0 | 1,5 | 1,8 | 1,8 | 1,7 | 1,8 | 1,5 | 1,7 \pm 0,2 |
tmax (h) | 1 | 0,5 | 1 | 1 | 0,5 | 0,5 | 0,5 | 0,7 \pm 0,3 |
CL/F (l/h) | 3,6 | 4,5 | 4,1 | 3,7 | 4,6 | 4,2 | 3,5 | 4,2 \pm 0,6 |
Vss/F (l) | 46 | 89 | 48 | 55 | 62 | 52 | 63 | 59 \pm 15 |
MRT (h) | 13 | 20 | 12 | 15 | 13 | 12 | 18 | 15 \pm 3 |
Estereoisómero B | ||||||||
t1/2 (h) | 4,7 | 7,3 | 4,6 | 6,0 | 5,8 | 5,2 | 7,1 | 5,8 \pm 1,1* |
Cmax (mg/l) | 1,5 | 1,1 | 1,4 | 1,4 | 1,4 | 1,5 | 1,1 | 1,3 \pm 0,2 |
tmax (h) | 1 | 0,5 | 1 | 1 | 0,5 | 0,5 | 0,5 | 0,7 \pm 0,3 |
CL/F (l/h) | 7,9 | 9,2 | 7,9 | 8,4 | 10,2 | 8,1 | 9,3 | 8,7 \pm 0,9* |
Vss/F (l) | 57 | 94 | 58 | 73 | 83 | 62 | 91 | 74 \pm 16 |
MRT (h) | 7,0 | 10 | 7 | 9 | 8 | 8 | 10 | 8 \pm 1 |
Estereoisómero C | ||||||||
t1/2 (h) | 8,4 | 13 | 8,0 | 10 | 11,1 | 9,2 | 12,4 | 10,3 \pm 1,9 |
Cmax (mg/l) | 1,8 | 1,4 | 1,7 | 1,7 | 1,6 | 1,8 | 1,5 | 1,6 \pm 0,2 |
tmax (h) | 1 | 0,5 | 1 | 1 | 0,5 | 0,5 | 0,5 | 0,7 \pm 0,3 |
CL/F (l/h) | 4,0 | 5,1 | 4,3 | 4,1 | 4,6 | 4,1 | 3,9 | 4,3 \pm 0,4 |
Vss/F (l) | 49 | 93 | 50 | 58 | 72 | 55 | 70 | 64 \pm 16 |
MRT (h) | 12 | 18 | 12 | 14 | 16 | 13 | 18 | 15 \pm 3 |
Estereoisómero D | ||||||||
t1/2 (h) | 8,7 | 12,9 | 8,0 | 13,0 | 9,5 | 7,9 | 13 | 10 \pm 2 |
Cmax (mg/l) | 1,6 | 1,3 | 1,6 | 1,5 | 1,4 | 1,8 | 1,5 | 1,5 \pm 0,2 |
tmax (h) | 1 | 0,5 | 1 | 1 | 0,5 | 0,5 | 0,5 | 0,7 \pm 0,3 |
CL/F (l/h) | 4,3 | 5,6 | 4,6 | 3,8 | 5,4 | 4,7 | 4,1 | 4,6 \pm 0,7 |
Vss/F (l) | 54 | 102 | 53 | 70 | 72 | 55 | 76 | 69 \pm 17 |
MRT (h) | 13 | 18 | 12 | 18 | 13 | 12 | 19 | 15 \pm 3 |
(*p < 0,05 vs estereoisómeros A, C y D) |
Pacientes | |||||||
CA | CC | DFR | PA | SG | CCA | Media \pm SD | |
Estereoisómero A | |||||||
t1/2 (h) | 2,8 | 3,6 | 2,5 | 3,6 | 8,3 | 3,8 | 4,1 \pm 2,1 |
Cmax (mg/l) | 0,71 | 0,94 | 0,71 | 0,82 | 0,88 | 0,67 | 0,78 \pm 0,10 |
tmax (h) | 1,5 | 0,5 | 1,5 | 0,5 | 0,5 | 0,5 | 0,8 \pm 0,5 |
CL/F (l/h) | 40 | 27 | 35 | 32 | 20 | 35 | 32 \pm 7 |
Vss/F (l) | 175 | 138 | 148 | 172 | 169 | 182 | 164 \pm 17 |
MRT (h) | 4,4 | 5,1 | 4,3 | 5,3 | 8,3 | 5,1 | 5,4 \pm 1,5 |
Pacientes | |||||||
CA | CC | DFR | PA | SG | CCA | Media \pm SD | |
Estereoisómero B | |||||||
t1/2 (h) | 1,4 | 4,0 | 1,3 | 3,0 | 4,0 | 4,1 | 3,0 \pm 1,3 |
Cmax (mg/l) | 0,31 | 0,56 | 0,3 | 0,48 | 0,51 | 0,32 | 0,41 \pm 0,12 |
tmax (h) | 1 | 0,5 | 1,5 | 0,5 | 0,5 | 0,5 | 0,75 \pm 0,41 |
CL/F (l/h) | 108 | 60 | 94 | 84 | 56 | 79 | 80 \pm 20* |
Vss/F (l) | 386 | 307 | 307 | 365 | 287 | 444 | 349 \pm 60* |
MRT (h) | 3,6 | 5,2 | 3,3 | 1,3 | 5,1 | 5,6 | 4,0 \pm 1,6 |
Estereoisómero C | |||||||
t1/2 (h) | 2,8 | 3,4 | 2,6 | 3,7 | 3,5 | 3,7 | 3,3 \pm 0,5 |
Cmax (mg/l) | 0,55 | 0,82 | 0,56 | 0,76 | 0,8 | 0,7 | 0,7 \pm 0,12 |
tmax (h) | 1,5 | 0,5 | 1,5 | 0,5 | 0,5 | 0,5 | 0,83 \pm 0,5 |
CL/F (l/h) | 50 | 31 | 44 | 38 | 28 | 41 | 39 \pm 8 |
Vss/F (l) | 215 | 147 | 186 | 208 | 141 | 197 | 181 \pm 31 |
MRT (h) | 4,4 | 4,8 | 4,2 | 5,4 | 5,0 | 4,8 | 4,8 \pm 0,4 |
Estereoisómero D | |||||||
t1/2 (h) | 1,2 | 3,8 | 2,7 | 3,8 | 3,9 | 3,8 | 3,3 \pm 1,1 |
Cmax (mg/l) | 0,51 | 0,72 | 0,51 | 0,69 | 0,72 | 0,51 | 0,61 \pm 0,11 |
tmax (h) | 1,5 | 0,5 | 1,5 | 0,5 | 0,5 | 0,5 | 0,83 \pm 0,51 |
CL/F (l/h) | 60 | 35 | 45 | 42 | 30 | 42 | 46 \pm 11 |
Vss/F (l) | 195 | 183 | 198 | 233 | 161 | 226 | 202 \pm 22 |
MRT (h) | 3,3 | 5,2 | 4,5 | 5,6 | 5,4 | 5,3 | 4,7 \pm 1,0 |
Pacientes | |||||||
CA | CC | DFR | PA | SG | CCA | Media \pm SD | |
Estereoisómero A | |||||||
t1/2 (h) | 2,2 | 2,7 | 3,8 | 2,4 | 4,8 | 3,8 | 2,8 \pm 0,7 |
Cmax (mg/l) | 0,9 | 1,1 | 0,72 | 0,86 | 0,8 | 1,2 | 0,9 \pm 0,2 |
tmax (h) | 2,0 | 1,5 | 1,5 | 1,0 | 1,75 | 1,5 | 1,5 \pm 0,3 |
CL/F (l/h) | 23 | 19 | 20 | 29 | 19 | 19 | 21 \pm 4 |
Estereoisómero B | |||||||
t1/2 (h) | 2,0 | 1,9 | 2,9 | 2,1 | 4,3 | 4,3 | 2,2 \pm 0,5 |
Cmax (mg/l) | 0,4 | 0,5 | 0,3 | 0,3 | 0,4 | 0,5 | 0,4 \pm 0,1 |
tmax (h) | 2,0 | 1,5 | 1,5 | 1,0 | 1,25 | 1,5 | 1,4 \pm 0,3 |
CL/F (l/h) | 7,9 | 50 | 52 | 71 | 46 | 50 | 58 \pm 14* |
Estereoisómero C | |||||||
t1/2 (h) | 2,2 | 3,0 | 4,1 | 2,3 | 5,0 | 4,1 | 2,9 \pm 0,9 |
Cmax (mg/l) | 0,81 | 0,9 | 0,62 | 0,7 | 0,6 | 1,0 | 0,8 \pm 0,2 |
tmax (h) | 2,0 | 1,5 | 1,5 | 1,0 | 1,25 | 1,5 | 1,4 \pm 0,3 |
CL/F (l/h) | 26 | 23 | 24 | 36 | 28 | 23 | 27 \pm 5 |
Pacientes | |||||||
CA | CC | DFR | PA | SG | CCA | Media \pm SD | |
Estereoisómero D | |||||||
t1/2 (h) | 2,1 | 2,8 | 5,2 | 2,5 | 5,3 | 4,6 | 3,2 \pm 1,4 |
Cmax (mg/l) | 0,7 | 0,8 | 0,6 | 0,6 | 0,6 | 0,5 | 0,6 \pm 0,1 |
tmax (h) | 2,0 | 1,5 | 1,5 | 1,0 | 1,25 | 1,5 | 1,4 \pm 0,3 |
CL/F (l/h) | 36 | 25 | 26 | 38 | 24 | 25 | 29 \pm 6 |
(*p < 0,05 vs. estereoisómeros A, C y D) |
Claims (10)
1. Estereoisómero (2R) (3S) de valnoctamida, útil
en el tratamiento de trastornos neurológicos y psicóticos, y
trastornos afectivos, y útil como tranquilizante y para tratar el
dolor, que se puede obtener mediante un procedimiento que
comprende:
- (a)
- sintetizar ácido (3S)-metil-valérico (1), a partir de isoleucina;
- (b)
- posteriormente, sintetizar cloruro de (3S)-metil-valeroílo (II);
- (c)
- posteriormente, sintetizar ácido (2S, 3S)-valnóctico (III); y
- (d)
- posteriormente, sintetizar (2R, 3S)-valnoctamida (V).
2. Estereoisómero (2R, 3S) de valnoctamida según
la reivindicación 1, en el que dicho trastorno afectivo consiste en
convulsiones o epilepsia.
3. Una composición farmacéutica que contiene como
ingrediente activo al menos el estereoisómero (2R) (3S) de
valnoctamida, que se puede obtener mediante el procedimiento
definido en la reivindicación 1.
4. Composiciones farmacéuticas según la
reivindicación 3, las cuales son útiles como fármacos
anticonvulsivos o tranquilizantes y en el tratamiento de trastornos
neurológicos o psicóticos y trastornos afectivos, y para tratar el
dolor.
5. Un método para separar la línea base de los
cuatro isómeros de valnoctamida, que consiste en someter una mezcla
de valnoctamida racémica a cromatografía de gases y separar los
isómeros en una columna de fase estacionaria quiral,
caracterizado porque dicha columna de fase estacionaria
quiral comprende
Chirasil-\gamma-Dex
(octakis(3-O-butanoíl)-2,6-di-o-pentil)-\gamma-ciclodextrina),
unida químicamente a través de un espaciador de
6-mono-octametileno a un
dimetilpolisiloxano y porque dicho
Chirasil-\gamma-Dex está aplicado
como revestimiento en una columna capilar de sílice fundida.
6. Un método según la reivindicación 5, en el que
la cromatografía de gases tiene las siguientes condiciones de
programación de la temperatura del horno: 50ºC durante 1 minuto,
incrementándose a una velocidad de 8ºC/minuto hasta 100ºC,
manteniéndose durante un minuto, alcanzando después la temperatura
final de 250ºC a una velocidad de 4ºC/minuto; la temperatura del
inyector es 240ºC y la temperatura de la tubería de transferencia
GCMS es 250ºC; la presión de entrada es 34,47 KPa, con un caudal
lineal de 20 cm/s y el gas portador de GC es helio.
7. Un método según la reivindicación 5, en el que
la columna capilar de sílice fundida es de 25 m x 250 \mum,
revestida con 0,25 \mum de
Chirasil-\gamma-Dex
(octakis(3-O-butanoíl)-2,6-di-o-pentil)-\gamma-ciclodextrina).
8. Un método según la reivindicación 5, en el que
la mezcla de valnoctamida racémica se obtiene de plasma sanguíneo de
pacientes tratados con valnoctamida, o del propio fármaco
valnoctamida.
9. Un método para la síntesis estereoselectiva de
los estereoisómeros de valnoctamida (2S, 3S) y (2R, 3S), que
comprende:
- (a)
- sintetizar ácido (3S)-metil-valérico (1) a partir de L- isoleucina;
- (b)
- posteriormente, sintetizar cloruro de (3S)-metil-valeroílo (II);
- (c)
- posteriormente, sintetizar ácido (2S, 3S)-valnóctico (III') o posteriormente sintetizar ácido (2R, 3S)-valnóctico (III); y
- (d)
- posteriormente, sintetizar (2S, 3S)-valnoctamida (V') o (2R, 3S)-valnoctamida (V).
10. Un método para la síntesis estereoselectiva
de valnoctamida según la reivindicación 9, en el que:
la etapa (a) comprende disolver
L-isoleucina en HBr o HCl y añadir gota a gota
NaNO_{2} para obtener ácido
(2S)-bromo-(3S)-metil-valérico
o ácido
(2S)-cloro-(3S)-metil-valérico,
disolver el ácido
(2S)-bromo-(3S)-metil-valérico
en H_{2}SO_{4} y añadir Zn, para obtener el compuesto (I)
mediante extracción, o añadir LiAlH_{4} al ácido
(2S)-cloro-(3S)-metil-valérico
y tratarlo a reflujo para obtener
(3S)-metil-pentanol y,
posteriormente, oxidar el
(3S)-metil-pentanol para obtener el
compuesto (I) mediante extracción; y
la etapa (b) comprende añadir gota a gota cloruro
de oxalilo al compuesto (I) y DMF seco, disolver el producto de
reacción en THF para obtener el compuesto (II); y
la etapa (c) comprende añadir
n-BuLi a la
(4S)-bencil-3-(1-oxo-(2S)-etil-(3S)-metil-valeroíl)-2-oxazolidinona
(IV') fría, enfriar el compuesto (II) y añadirlo de una vez al
compuesto (IV') para obtener
(4S)-bencil-3-(oxo-(2S)-etil-(3S)-metil-valeroíl)-2-oxazolidinona,
o añadir gota a gota n-BuLi (IV) a
(4R)-metil-(5S)-fenil-3-(1-oxo-(3S)-metil-valeroíl)-2-oxazolidinona
fría, enfriar el compuesto (II) y añadirlo de una vez a (IV) para
obtener
(4R)-metil-(5S)-fenil-3-(1-oxo-(3S)-metil-(2R)-etil-valeroíl)-2-oxazolidinona;
y
la etapa (d) comprende añadir H_{2}O_{2} y
LiOH a dicha
(4S)-bencil-3-(oxo-(2S)-etil-(3S)-metil-valeroíl)-2-oxazolidinona
enfriada en una mezcla de THF:DDW o añadir H_{2}O_{2} y LiOH a
dicha
(4R)-metil-(5S)-fenil-3-(1-oxo-(3S)-metil-valeroíl)-2-oxazolidinona
enfriada, calentar la mezcla resultante hasta temperatura ambiente,
enfriar hasta 0ºC, detener la reacción mediante sulfito sódico,
extraer con DCM, obtener el coadyuvante quiral,
(4S)-bencil-2-oxazolidinona
o el coadyuvante quiral (4R,
5S)-4-metil-5-fenil-2-oxazolidinona,
y añadir gota a gota cloruro de oxalilo disuelto en DCM seco,
añadir DCM y NH_{4}OH en seco, para obtener el compuesto (V') o
el compuesto (V) mediante extracción orgánica.
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