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DD249712A1 - PROCESS FOR PREPARING LIPASE - Google Patents

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DD249712A1
DD249712A1 DD29106886A DD29106886A DD249712A1 DD 249712 A1 DD249712 A1 DD 249712A1 DD 29106886 A DD29106886 A DD 29106886A DD 29106886 A DD29106886 A DD 29106886A DD 249712 A1 DD249712 A1 DD 249712A1
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DD
German Democratic Republic
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lipase
enzyme
culture supernatant
cultivation
strain
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DD29106886A
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German (de)
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Inventor
Bernhard Fischer
Hans-Peter Kleber
Original Assignee
Univ Leipzig
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Abstract

Das Ziel der Erfindung besteht darin, ein Verfahren anzugeben, das ein Enzym hoher spezifischer Aktivitaet und Anreicherung liefert. Die Aufgabe wird darin gesehen, durch Zuechtung eines Bakterienstammes auf einem bisher nicht verwendeten Kultursubstrat das gewuenschte Enzym herzustellen. Das Wesen der Erfindung besteht darin, den Stamm Acinetobacter calcoaceticus auf wasserloeslichen Fettsaeureestern als einziger C-Quelle zu zuechten, bei deren Abbau Fettsaeuren entstehen.The object of the invention is to provide a method which provides an enzyme of high specific activity and enrichment. The object is seen to produce the desired enzyme by culturing a bacterial strain on a previously unused culture substrate. The essence of the invention consists in cultivating the Acinetobacter calcoaceticus strain on fatty acid esters of water-soluble fatty acids as the sole source of C, fatty acids being produced during their degradation.

Description

Ausführungsbeispielembodiment

Acinetobacter calcoaceticus (69V) wird bei 3O0C in Submerskultur in einem flüssigen Minimalmedium gezüchtet. Das Medium enthält pro Liter: 6,97K2HPO4,1,5g NaH2PO4, 0,2g MgSO4- 7H2O, 7,5mg FeSO4 · 7H2O, 0,75mg MnSO4 · 4H2O, 0,75mg ZnSO4- 7H2O, 0,15mg CuSO4- 5H2O, 0,15mg CoCI2 · 6H2O und 0,15mg Borsäure. Als Impfsuspension dient eine Abschwemmung von Bouillon-Agar. Als C-Quelle wie Polyoxyethylen-sorbitan-monooleat in einer Konzentration von 10 ml/l als einziger Kohlenstoffquelle und NH4Cl (3g/l) als N-Quelle verwendet.Acinetobacter calcoaceticus (69V) is grown at 3O 0 C in submerged culture in a liquid minimal medium. The medium contains per liter: 6.97K 2 HPO 4 , 1.5g NaH 2 PO 4 , 0.2g MgSO 4 - 7H 2 O, 7.5mg FeSO 4 .7H 2 O, 0.75mg MnSO 4 .4H 2 O , 0.75 mg of ZnSO 4 - 7H 2 O, 0.15 mg of CuSO 4 - 5H 2 O, 0.15 mg of CoCl 2 · 6H 2 O and 0.15 mg of boric acid. As a vaccine suspension is a flush of bouillon agar. Used as the C source such as polyoxyethylene sorbitan monooleate at a concentration of 10 ml / l as the sole carbon source and NH 4 Cl ( 3 g / l) as the N source.

Nach einer Wachstumszeit von 12h werden die Bakterien durch Zentrifugation (2000 x g, 20min) separiert und derzellfreie Kulturüberstand gewonnen. Zu diesem Kulturüberstand wird NaCI zu einer Konzentration von 1 mol/l zugegeben und die Lösung bei 4°C auf eine Octyl-Sepharose-Säule aufgetragen. Die Lipaseaktivität verbleibt am Trägermaterial. Nacheinander wird der Träger mit 1 mol/l Natriumchloridlösung (in 50mmol/l Phosphatpuffer, pH7,5)xl gewaschen, bis kein Protein im Eluat nachweisbar ist. Das Enzym wird anschließend mit Triton X-100 (5g/l in 50mmol/l Phosphatpuffer, pH7,5) vom Träger gelöst. Das gewonnene Enzym ist diskelektrophor'etisch rein. Die Isolierung der Lipase ist in Tabelle 2 dargestellt, x) und Phosphatpuffer, pH7,5After a growth time of 12 h, the bacteria are separated by centrifugation (2000 × g, 20 min) and the cell-free culture supernatant is obtained. NaCI is added to this culture supernatant to a concentration of 1 mol / l and the solution is applied at 4 ° C. to an octyl-Sepharose column. The lipase activity remains on the carrier material. Successively, the carrier is washed with 1 mol / l sodium chloride solution (in 50 mmol / l phosphate buffer, pH 7.5) xl until no protein is detectable in the eluate. The enzyme is then dissolved with Triton X-100 (5 g / l in 50 mmol / l phosphate buffer, pH 7.5) from the carrier. The recovered enzyme is discrete electrophoretically pure. The isolation of the lipase is shown in Table 2, x) and phosphate buffer, pH 7.5

Tabelle 1Table 1

Volumenaktivität, Proteinkonzentration und spezifische Aktivität der Lipse im Kulturüberstand von Acinetobacter calcoaceticus nach Wachstum auf verschiedenen KultursubstratenVolume activity, protein concentration and specific activity of the lipids in the culture supernatant of Acinetobacter calcoaceticus after growth on different culture substrates

KultursubstratCulture substrate

Volumenaktivität (μιηοΙ/Γηίη/ΓηΙ)Volume activity (μιηοΙ / Γηίη / ΓηΙ)

Protein (mg/1)Protein (mg / l)

spezifische Aktivität (^mol/min/mg Protein)specific activity (^ mol / min / mg protein)

Bouillonbouillon

Polyoxyethylen-polyoxyethylene

sobitan-mono-sorbitan mono-

lauratlaurat

Polyoxyethylen-polyoxyethylene

sorbitan-mono-sorbitan mono-

palmitatpalmitate

Polyoxyethylen-polyoxyethylene

sorbitan-mono-sorbitan mono-

0,30.3

6,56.5

6,06.0

26,626.6

9,59.5

0,250.25

0,250.25

0,340.34

0,030.03

Tabelle 2Table 2

Reinigung der Lipase (Kultursubstrat: Polyoxyethylen-sorbitanmonooleat) von Acinetobacter calcoaceticusPurification of the lipase (culture substrate: polyoxyethylene sorbitan monooleate) of Acinetobacter calcoaceticus

Reinigungsstufecleaning stage • Volumen• Volume Proteinprotein Gesamtakt.Total act. spez.spec. Reinig.Cleaning. Ausbeuteyield Aktivitätactivity (ml)(Ml) (mg/ml)(Mg / ml) (jumol/min)(Jumol / min) (μΐτιοΙ/min/(ΜΐτιοΙ / min / (-fach)(-subject) (%)(%) mg Protein)mg protein) KulturüberstandCulture supernatant 190190 0,340.34 5 0545 054 78,278.2 Triton X-100Triton X-100 Fraktionfraction 3030 0,130.13 3 0403 040 779,2779.2 9,969.96 6060

Claims (4)

Patentansprüche:claims: 1. Verfahren zur Herstellung von Lipase, dadurch gekennzeichnet, daß der Stamm Acinetobacter calcoaceticus gezüchtet wird und dabei als einzige C-Quelle wasserlösliche Fettsäureester eingesetzt werden.1. A process for the preparation of lipase, characterized in that the strain Acinetobacter calcoaceticus is grown and are used as the only C source water-soluble fatty acid esters. 2. Verfahren nach Punkt 1, dadurch gekennzeichnet, daß der Stamm Acinetobacter calcoaceticus bei Temperaturen von 20—400C in Submerskultur in einem flüssigen Minimalmedium gezüchtet wird, nach einer Wachstumszeit von 5-4Oh die Bakterien separiert werden und das Enzym aus dem Kulurüberstand abgetrennt wird.2. The method according to item 1, characterized in that the strain Acinetobacter calcoaceticus is grown at temperatures of 20-40 0 C in Submerskultur in a liquid minimal medium, after a growth time of 5-4Oh the bacteria are separated and the enzyme separated from the culture supernatant becomes. 3. Verfahren nach Punkt 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß als einzige C-Quelle, bei deren Abbau Fettsäuren entstehen, wasserlösliche Fettsäureester wie z. B. Polyoxyethylensorbitan-monooleat, -laurat,-palmiat oder-oleat verwendet werden.3. The method according to item 1 and 2, characterized in that the only C source, in the degradation of fatty acids, water-soluble fatty acid esters such. As polyoxyethylene sorbitan monooleate, laurate, palmitate or oleate can be used. 4. Verfahren nach Punkt 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß aus dem zellfreien Kulturüberstand durch Chromatographie an einem hydrophoben Träger wie z. B. Octyl-Sepharose eine Isolierung des Enzyms bis zur diskelektrophoretischen Reinheit erfolgt.4. The method according to item 1 to 3, characterized in that from the cell-free culture supernatant by chromatography on a hydrophobic support such. B. Octyl Sepharose an isolation of the enzyme to the disk electrophoretic purity. Anwendungsgebiet der ErfindungField of application of the invention Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Lipase(die in der Praxis zur Hydrolyse von Fettsäureestern verwendet werden kann.The invention relates to a process for the preparation of lipase ( which can be used in practice for the hydrolysis of fatty acid esters. Charakteristik der bekannten technischen LösungenCharacteristic of the known technical solutions Es ist bereits bekannt, Lipase herzustellen. Zu diesem Zweck werden verschiedene Bakterien- und Hefestämme bzw. Pilze auf komplexen Medien (u.a. Bouillon, Molke, Maisquellwasser) kultiviert, die Bakterien durch Zentrifugation separiert und die Kulturüberstände zur Lipasegewinnung aufbereitet (Literatur z.B. Lipases, ed. B. Borgström und H.Brockman, Elsevier, Amsterdam, 1984). Die dargestellten Verfahren haben den Nachteil, daß durch die Züchtung auf komplexen Medien die Lipase stark verunreinigt und zu ihrer Isolierung mehrere aufwendige Reinigungsstufen notwendig sind.It is already known to produce lipase. For this purpose, various bacteria and yeast strains or fungi on complex media (including bouillon, whey, corn steep liquor) are cultured, the bacteria separated by centrifugation and prepared the culture supernatants for lipase production (literature, for example, Lipases, ed. B. Borgström and H.Brockman , Elsevier, Amsterdam, 1984). The illustrated methods have the disadvantage that the lipase is heavily contaminated by the cultivation on complex media and their isolation several complex purification stages are necessary. Ziel der ErfindungObject of the invention Die Erfindung hat das Ziel, mit einem bisher nicht verwendeten Bakterienstamm ein Verfahren zur Enzymproduktion anzugeben, das es gestattet, ein Enzym mit wesentlich höherer Reinheit und spezifischer Aktivität zu gewinnen und so die Isolierung aus den Kulturüberstand zu vereinfachen.The invention aims to provide a process for enzyme production with a hitherto unused bacterial strain, which makes it possible to obtain an enzyme with substantially higher purity and specific activity and thus to simplify the isolation from the culture supernatant. Darlegung des Wesens der ErfindungExplanation of the essence of the invention Die Erfindung hat die Aufgabe, wesentliche bekannte Merkmale der bisherigen Verfahrensweise zu verändern und durch den Einsatz eines bisher nicht verwendeten Stammes sowie spezieller Kultivierungssubstrate das gewünschte Enzym mit hoher spezifischer Aktivität zur Verfügung zu stellen.The object of the invention is to modify essential known features of the previous procedure and to provide the desired enzyme with high specific activity by using a hitherto unused strain and special cultivation substrates. Die Aufgabe wird erfindungsgemäß dadurch gelöst, daß das Enzym Lipase aus dem Stamm Acinetobacter calcoaceticus hergestellt wird. Die Stammhaltung geschieht bevorzugt auf 3%igem Bouillon-Agar bei 4°C im Dunklen. Die Kultivierung von Acinetobacter calcoaceticus erfolgt nach Beimpfen bei einer Temperatur von 20—400C, vorzugsweise bei 300C, in Submerskultur in einem flüssigen Minimalmedium. Die Züchtung wird erfindungsgemäß auf wasserlöslichen Fettsäureestern als einziger C-Quelle durchgeführt, bei deren Abbau Fettsäuren gebildet werden. Solche C-Quellen sind z. B. Polyoxyethylen-sorbitan-laurat, -paImitat oder-oleat u.a. Als N-QuelIe wird NH4CI, (NH4I2 o.dgl. verwendet. Nach einer Wachstumszeit von 5-40 Stunden —je nach physioloiigischen Zustand und Menge des Impfmaterials — werden die Bakterien z. B. durch Zentrifugation separiert und der zellfreie Kulturüberstand gewonnen. Das im zellfreien Kulturüberstand bei erfindungsgemäßer Züchtung erhaltene Enzym ist im Gegensatz zu Kultivierungen auf komplexen Medien nur gering mit Fremdstoffen verunreinigt und besitzt eine hohe spezifische Aktivität (Tabelle 1). Die Isolierung des Enzyms aus dem Kulturüberstand erfolgt an einem hydrophoben Trägermaterial, wie z. B. Octyl-Sepharose, wie folgt: Der gewonnene zellfreie Kulturüberstand wird bei 4°C mit kristallinem NaCI zu einer Konzentration von 1 mmol/l versetzt. Die Lösung wird auf eine mit Octyl-Sepharose gefüllte Glassäule gegeben. Die Lipase adsorbiert dabei an dem hydrophoben Träger. Fremdproteine werden nur gering gebunden. Nach einander wird die Säule m it lmol/I NaCI in Phosphatpuffer (50mmol/l, pH7,5) und 50mmol/l Phosphatpuffer (pH7,5) gewaschen. Die Lipase wird durch eine 0,5%ige Lösung von Triton X-100 in 50 mmol/l Phosphatpuffer, pH 7,5, von der Octyl-Sepharose abgelöst. 60% der ursprünglichen Lipase werden dabei 10fach angereichert gefunden. Das so erhaltene Lipasepräparat ist diskelektrophoretisch rein. Die Erfindung soll nachstehend an einem Ausführungsbeispiel näher erläutert werden.The object is achieved in that the enzyme lipase from the strain Acinetobacter calcoaceticus is produced. The stock is preferably on 3% bouillon agar at 4 ° C in the dark. The cultivation of Acinetobacter calcoaceticus takes place after seeding at a temperature of 20-40 0 C, preferably at 30 0 C, in submerged culture in a liquid minimal medium. The cultivation is carried out according to the invention on water-soluble fatty acid esters as the sole C source, in the degradation fatty acids are formed. Such C sources are z. Polyoxyethylene sorbitan laurate, palmitate or oleate, etc. As N-source, NH 4 Cl, (NH 4 I 2 or the like is used, after a growth time of 5-40 hours, depending on the physiological state and amount of Inoculum - the bacteria are separated by centrifugation, for example, and the cell-free culture supernatant is obtained The enzyme obtained in the cell-free culture supernatant in the cultivation according to the invention is only slightly contaminated with foreign substances and has a high specific activity, in contrast to cultivations on complex media (Table 1). The isolation of the enzyme from the culture supernatant is carried out on a hydrophobic carrier material, such as, for example, octyl-Sepharose, as follows: The obtained cell-free culture supernatant is treated with crystalline NaCl at 4 ° C. to a concentration of 1 mmol / l is added to a glass column filled with octyl-Sepharose, whereby the lipase adsorbs to the hydrophobic carrier, and foreign proteins are only slightly bound. Successively, the column is washed with 1 mol / l NaCl in phosphate buffer (50 mmol / l, pH 7.5) and 50 mmol / l phosphate buffer (pH 7.5). The lipase is replaced by a 0.5% solution of Triton X-100 in 50 mmol / l phosphate buffer, pH 7.5, of the octyl Sepharose. 60% of the original lipase are found 10 times enriched. The lipase preparation thus obtained is diskelectrophoretically pure. The invention will be explained in more detail below using an exemplary embodiment.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4933287A (en) * 1985-08-09 1990-06-12 Gist-Brocades N.V. Novel lipolytic enzymes and their use in detergent compositions
WO2009037488A2 (en) * 2007-09-21 2009-03-26 Statoilhydro Asa Biodiesel

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