[go: up one dir, main page]

CZ182399A3 - Enzymatický způsob přípravy 7ß-(4-karboxybutanamido)cefalosporanové kyseliny pomocí modifikované oxidázy D-aminokyselin z Trigonopsis variabilis produkované v Escherichia coli - Google Patents

Enzymatický způsob přípravy 7ß-(4-karboxybutanamido)cefalosporanové kyseliny pomocí modifikované oxidázy D-aminokyselin z Trigonopsis variabilis produkované v Escherichia coli Download PDF

Info

Publication number
CZ182399A3
CZ182399A3 CZ991823A CZ182399A CZ182399A3 CZ 182399 A3 CZ182399 A3 CZ 182399A3 CZ 991823 A CZ991823 A CZ 991823A CZ 182399 A CZ182399 A CZ 182399A CZ 182399 A3 CZ182399 A3 CZ 182399A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
leo
gene
ser
glee
enzyme
Prior art date
Application number
CZ991823A
Other languages
English (en)
Inventor
Lopez José Luis Garcia
Rubio Estrella Cortes
Palacios Jorge Alonso
Duran Encarnación Mellado
Garcia Bruno Diez
Seijas José Manuel Guisan
Maldonado Francisco Salto
Fuente José Luis Barredo
Original Assignee
Antibioticos, S. A. U.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Antibioticos, S. A. U. filed Critical Antibioticos, S. A. U.
Publication of CZ182399A3 publication Critical patent/CZ182399A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0012Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.6, 1.7)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0012Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.6, 1.7)
    • C12N9/0014Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.6, 1.7) acting on the CH-NH2 group of donors (1.4)
    • C12N9/0022Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.6, 1.7) acting on the CH-NH2 group of donors (1.4) with oxygen as acceptor (1.4.3)
    • C12N9/0024D-Amino acid oxidase (1.4.3.3)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P35/00Preparation of compounds having a 5-thia-1-azabicyclo [4.2.0] octane ring system, e.g. cephalosporin
    • C12P35/06Cephalosporin C; Derivatives thereof

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Enzymatický způsob přípravy 7β-(4-karboxybutanamido)cefalosporanové kyseliny pomocí modifikované oxidázy Daminokyselin z Trigonopsis variabilis produkované v
Escherichia coli
Oblast vynálezu
Vynález popisuje enzymatický způsob přípravy 7β-(4karboxybutanamido)cefalosporanové kyseliny. Podrobněji řečeno vynález popisuje způsob izolace genu kódujícího enzym s oxidázovou aktivitou na D-aminokyseliny pomocí technik rekombinantní DNA, klonování uvedeného genu do mikroorganismu rodu Escherichia, modifikaci uvedeného enzymu pomocí způsobů proteinového inženýrství, hyperprodukci tohoto upraveného enzymu kultivací uvedených mikroorganismů a extrakci upraveného enzymu pro přípravu 7β-(4-karboxybutanamiido) cefalosporanové kyseliny. Tato kyselina je meziproduktem pro přípravu 7-aminocefalosporanové kyseliny, která slouží dále jako meziprodukt pro přípravu široké škály antibakteriláních látek z rodiny cefalosporinů.
Dosavadní stav techniky .
7β-(4-karboxybutanamido)cefalosporanová kyselina je rovněž nazývána kyselina glutaryl-7-aminocefalosporanová a z tohoto důvodu je v dalším textu zkracována jako GL-7ACA. Pro produkci 7β-(4-karboxybutanamido)cefalosporanové kyseliny z cefalosporinů C se používá oxidáza D-aminokyselin (dále zkracovaná jako DAOj z různých mikroorganismů jako například z Trigonopsis variabilis (Biochem. Biophys. Res. Commun. (1993) 31; strana 709), Rhodotorula gracilis (J. Biol. Chem. (1994) 269; strana 17809) a Fusarium solani (J. Biochem. (1990) 108: strana 1063). Produkce DAO pomocí těchto mikroorganismů má mnohé nevýhody. Zaprvé úroveň vykazované DAO aktivity je velmi nízká, a zadruhé tyto •9 99··
-29099 · • 9 • 900 «
► 91
999
00 » 9 9 9 » 0 0 9
009 009 organismy vykazují spolu s uvedeným enzymem další nežádoucí enzymatické aktivity jako například esterázovou a katalázovou. První jmenované nežádoucí enzymatická aktivita rozkládá kyselinu GL-7ACA, čímž dochází ke snížení výnosu a tím i zvýšení nákladů na purifikaci produktu. Druhá jmenovaná enzymatická aktivita odbourává peroxid vodíku, který je nutný pro katalýzu. Je tudíž nezbytné do fermentační nádoby přidávat peroxid vodíku, čímž dochází k dalšímu zdražování produkce a současně to způsobuje ztráty v aktivitě enzymu, což znemožňuje jeho opakovaného použití.
Uvedenému enzymatickému znečištění se lze vyhnout se pouze purifikaci DAO aktivity, což však výrazně zvyšuje náklady a ztěžuje- enzymatický způsob získávání GL-7ACA z cefalosporinu C.
V poslední době byl popsán způsob izolace genu kódujícího DAO v T. variabilis a jeho exprese v E. coli a v T. variabilis (viz japonská patentová přihláška č. 71180/1988; Evropská patentová přihláška č.93202219.7, Kromě toho byl rovněž klonován a coli a A-Chremonium chrysogenum gen solani (viz japonská patentová publikace č. 0583817A2) exprimován v buňkách E. kódující DAO aktivitu z F.
přihláška č. 2000181/1990; 1063, Bio/Technology (1991)
J. Biochem. (1990) 108: strana
9: strana 188) a teprve nedávno
R.
byl klonován a exprimován E. coli gen kódující DAO z gracilis (viz španělský patent P9600906).
Se zřetelem k velkému průmyslovému významu, který má dostupnost přečištěné DAO aktivity pro produkci GL-7ACA, je cílem vynálezu produkce enzymu s DAO aktivitou, který by byl navíc snadno purifikovatelný. ' V této souvislosti je známo, že jeden z nejúčinnějších způsobů purifikace proteinů je afinitní . chromatografie (Sassenfeld, Η. M, (1990), Trends Biotechnol. 8: strana 88). Pro afinitní chromatografií je nutno najít vhodné chromatografické médium, které umožňuje • · 4 4 4 4 4 4 4 44 44 ···· 444 4444 • 4 4 4 4 4 4 4 44 4 • 444 4 44 444 444
4 4 4 4 4 4
4444 444 44 444 44 44 selektivní vazbu a/nebo eluci požadovaného proteinu. Uvedené médium musí obsahovat nějakou rozpoznávací molekulu nebo ligand ligand pro uvedený protein tak, aby interakce mezi proteinem a jeho ligandem byla dostatečně specifická a silná, aby umožnila selektivní eluci proteinu. Vývoj média pro afinitní chrornatografii není jednoduchý a proto nebyl dodnes popsán žádný způsob ' afinitní purifikace DAO enzymatické aktivity v jednom kroku.
Dále je známo, že některé postupy genového inženýrství dovolují modifikovat proteiny tak, že dojde ke zlepšení určitých vlastností, které pak usnadní purifikaci proteinu. Například byly vyvinuty různé systémy modifikace' struktury proteinu umožňující jeho afinitní purifikaci (viz Sii, D. a Sadana, (1991) J. Biotechnol. 19: strana 83; Narayanan, S.
J. (1990) Trends Biotechnol. 8: strana 12; (1991) Curr. Opinion Biotechnol. 2: strana Η. M. (1990) Trends Biotechnol. É
R. a Crane, L. Scouten, W. H. 37; Sassenfeld, strana
88). V podstatě tyto modifikace spočívají ve fúzi proteinu s polypeptidem, který specifickou interakcí s určitým chromatografickým médiem usnadňuje afinitní purifikaci tohoto fúzního proteinu. Jednou z těchto modifikací je například fúze požadovaného proteinu s polyhist.idinovou .sekvencí. Tuoto modifikací získává fúzní protein schopnost purifikace pomocí afinitní chromatografie na médiu, které obsahuje ionty dvojmocného kovu (Arnols,
Bio/Technology 9: strana 151; Bio/Technology 6: strana 1321).
Hochuli
F. H.
další,
:.1991(
1988' proteinu v principu se zlepšenými j ednoduché a
Ačkoli získání fúzního purifiakčními vlastnostmi je efektivní, hlavní nevýhoda této techniky spočívá ve skutečnosti, že modifikace primární struktury proteinu znamená změny, které mohou výrazným způsobem ovlivnit i jeho sekundární, terciální a kvartérní strukturu. Takové změny struktury mohou ovlivnit protein takovou měrou, že částečně «« ···· ··
-4nebo úplně ztratí funkčnost. Výsledkem je pak protein, který je nepoužitelný pro funkci, pro kterou byl navržen. Proto je získávání fuzních proteinů vždy spojeno se značnou měrou nejistoty, protože vlastnosti konečného produktu jsou velmi nepředvídatelné. Tato nejistota je o to větší, jde-li o první fúzní experiment, tj. v případě kdy není známý výsledek předchozí fúze. Právě v této .nejistotě konečného výsledku při získávání fúzního proteinu spočívá novost vynálezu, protože v současnosti nelze předpovídat s určitostí co bude výsledkem experimentu, při němž dojde k fúznímu spojení proteinů.
I.
Ve vědecké literatuře není popsán žádný způsob přípravy enzymu DAO z T. variabilis geneticky upraveného takovým způsobem, který by umožňoval jeho. purifikaci v jediném kroku, a rovněž umožňoval jeho hyperprodukci v aktivní formě buď v E. coli nebo v libovolném jiném mikroorganismu..
Podstata vynálezu
Výchozím bodem vynálezu je kvasinka T. variabilis ATCC 20931 jakožto zdroj deoxyribonukleové kyseliny (dále označované zkratkou DNA)· Z této' kvasinky byla získána genomová DNA, obsahující gen nesoucí -genetickou informaci související se syntézou DAO (v dalším textu označovaný též jako dáo-gen). Zmiňovaná DNA byla použita k vytvoření DNA knihovny v E. Analýza DNA hybridizačnimi coli za použití fágového vektoru k-GEM12. knihovny byla provedena standardními technikami. Jako sondy byly použity syntetické oligonukleotidy, navržené na základě oblastí podobnosti zjištěných mezi různými DAO. Tímto způsobem byly získány sady rekombinantních klonů E. coli, jež obsahovaly fragment DNA původem z T. variabilis, kódující dao-gen.
• ·
-5• ······ AA ·· • AAA A A · · • A A A A A · · A · • · · · * A A * A AAA
AAAA A A ·· AA AAA AA AA
Takto získaný fragment DNA byl nakloňován do plazmidového vektoru získaného· z kmene E. coli. Rekombinantní vektor byl použit pro získání sekvence fragmentu DNA obsahujícího daogen kvasinky T. variabilis (viz Sekvence id.č.: 1). Analýza zmiňované sekvence umožnila charakterizaci dao-genu, jenž sestává ze dvou exonů a jednoho intronu.
Jelikož součástí takto získaného fragmentu DNA, obsahujícího genomovou sekvenci dao-genu původem z T. variabilis, byl i jeden intron, nemohl být tento fragment DNA přímo použit pro expresi v E. coli. Byly proto podniknuty x kroky ke získání dao-genu neobsahujícího zmiňovaný intron. Za tím účelem byl dao-gen amplifikován pomocí PCR za užití dvou syntetických oligonukleotidů. První z nich byl navržen takovým způsobem, aby obsahoval následující prvky: vazebné místo pro ribozóm, iniciační mísLo translace, úplnou sekvenci prvního exonu a počáteční nukleotidy 5'-konce druhého exonu. Druhý oligonukleotid zahrnoval komplementární sekvenci 3'-konce odpovídající druhému exonu dao-genu včetně terminačního kodónu translace. Tyto syntetické oligonukleotidy obsahovaly též různá restrikční místa vhodná ke klonování fragmentů DNA. Tímto způsobem byl získám nový fragment DNA, který byl po izolaci nakloňován do plazmidového vektoru E. coli (viz obrázek 1) . S využitím vytvořených restrikčních míst byl fragment DNA, obsahující úplný dao-gen bez zmiňovaného intronu, dále klonován do různých plazmidových vektorů E. coli. Tyto plazmidové vektory obsahovaly promotory, umožňující' velmi silnou genovou expresi v hostitelské bakterii (hyperprodukci). Aktivita DAO produkované různými klony byla stanovena kolorimetrickými metodami a HPLC chromatografii.
• to • to to • ••to • toto ««toto ·· toto <· · · » · · · · • · · · · · ···· to · · · *· ··· ··· • · · to toto • toto ·· ·« to toto toto
Tak byly získány řekombinantní klony E. coli, produkující velké množství aktivního enzymu DAO.
Poté byl dao-gen modifikován připojením nukleotidové sekvence kódující polyhistidin. Za tím účelem byl plazmid obsahující dao-gen vystaven působení restrikčního enzymu, jenž štěpil v místě iniciačního kodónu translace, a štěpením vzniklé konce DNA byly zarovnány Klenowovým fragmentem DNA polymerázy I z E. coli. Zarovnané konce byly poté spojeny za přítomnosti syntetického linkeru obsahujícího kodóny polyhistidinu. Tak byl vytvořen plazmid nesoucí modifikovaný dao-gen na 5'-konci své kódující oblasti (Sekvence id.č: 2). Takto vytvořený řekombinantní plazmid byl přenesen do kmene E. coli a selektován hybridizačními metodami za použití oligonukleotidů polyhistidinového linkeru jako sond. Vznik požadovaného fúzního genu byl ověřen sekvenováním modifikovaného dao-genu.
Produkce DAO modifikované polyhistidinovým řetězcem (v dalším textu označované jako hisDAO) byla poté zkoumána s využitím různých kmenů E. coli jakožto hostitelských buněk rekombinantních plazmidů. Tímto způsobem bylo ověřeno, že modifikovaný enzym hisDAO je aktivní.
Předem vyselektované řekombinantní klony E’. coli využité k produkci hisDAO se kultivují na médiu, obsahujícím zdroj uhlíku, zdroj dusíku a anorganické soli. Inkubační teplota by se měla pohybovat od 18°C do 37°C a pH musí být udržováno v rozmezí 5 až 9. Pro kultivaci v malém měřítku lze použít baňky různých objemů -. od 50 až do 1000 ml, přičemž množství kultivačního média by mělo činit 10% až 50% objemu baňky.. Doba kultivace může sahat od 12 do 90 hodin.
·· · «· ···· ·· ·· ·»·· ··· ««·· • · · · ··· 4 · « · * · · · · · · ··· ··· • · · · · · · ···· ««· ·· ··· ·· ·· . Výsledky produkce DAO prostřednictvím rekombinantních mikroorganismů mohou být ještě zlepšeny volbou kultivačních podmínek vhodných pro zachování stability rekombinantních vektorů. Toho je dosaženo přídavkem antibiotik, pro něž rekombinantni vektor s dao-genem obsahuje markér rezistence, jako např. ampicilin, chloramfenikol, kanamycin, tetracyklin apod. Kromě stabilizace produkce se tak předejde i možnému zamoření kultivačního média jinými nežádoucími mikroorganismy a navíc se tím eliminují ty kmeny, jež přestaly produkovat DAO v důsledku ztráty rekombinantního vektoru.
Rekombinantni . buňky produkující hisDAO byly od kultivačního média odděleny centrifugací a poté byly rozrušeny či permeabilizovány působením chemických, enzymatických či mechanických procesů. Pro získání enzymového extraktu o vyšší čistotě byla hisDAO přečištěna v jednom kroku za použití áfinitní chromatografie na koloně Co2+-IDA. Za tímto účelem byl hrubý enzymový extrakt nanesen na kolonu naplněnou Co2+-IDA pryskyřicí a znečišťující proteiny byly vymyty 20 mM fosfátovým pufrem o pH 7,0 obsahujícím 0,2 M NaCl. Enzym hisDAO byl pak eluován 10 mM roztokem imidazolu.
V případě, že se jako chromatografický sorbent použije Cu2+-IDA nebo Zn2+-IDA namísto Co^+-IDA, enzym hisDAO zůstane pevně navázán na nosič v aktivní formě a není možné jej eluovat ani vysokými koncentracemi imidazolu. Tak lze vhodným výběrem sorbentu po vymytí znečišťujících proteinů vytvořit imobilizovaný enzymový systém.
Za použití enzymu hisDAO získaného a přečištěného z rekombinantních klonů E. coli, jež exprimovaly příslušný chimérický gen, byla z cefalosporinu C získána GL-7ACA.
• ·
Dialvzované a koncentrované enzymové extrakty získané chromatografii na Co“+-IDA nosiči mohou být imobilizovány rovněž tak, že se nechají zreagovat s·jinými vhodnými inertními sorbenty, přičemž imobilizovanou hisDAO je možno používat opakovaně.
Novost vynálezu spočívá ve skutečnosti, že byl poprvé ukázán způsob exprese enzymu DAO z kvasinky T. variabilis modifikovaného hisDAO v prokaryotických orgamismech (jako je například E. coli) v aktivní formě a dále' způsob jeho izolace v jediném kroku pomocí afinitní chromatografie. Nadto bylo dosaženo přírůstku v produkci DAO. vzhledem ke množství získanému u T. variabilis, což usnadní použití tohoto enzymu v průmyslovém měřítku. Možnost produkce hisDAO v různých kmenech E. coli, jež nevytvářejí nežádoucí enzymy, jako například katalázu nebo různé esterázy, a též možnost zvyšování její stability a zlepšení katalytických vlastností, docílené dalšími modifikacemi za použití technik proteinového inženýrství, jsou dalšími aspekty umocňujícími novost tohoto vynálezu.
Vynález bude dále 'podrobně ilustrován na příkladech uvedených v dalším textu.
Příklad 1: Stanovení aktivity DAO
Stanovení aktivity DAO bylo provedeno postupem popsaným v literatuře (J. Biol. Chem. (1967) 242: strana 3957). Jako substrát byl použit 25 mM D-fenylglycin. Směs , byla inkubována v 50 mM fosfátovém pufru o pH 8,0 po dobu 15 až 30 minut, poté byla reakce zastavena přídavkem 1/10 objemu čisté kyseliny octové. Aktivita enzymu je dána změnou • · 0 0 0 0 • 0
0 0 0
0 0
-9absorbance při 252 nm. Benzoylmravenčí kyselina, jež při reakci vzniká, přitom vykazuje při vlnové délce 252 nm a množství 89,77 nmol absorbanci 1,0.
2. Příprava DNA vektorů a kompetetních buněk E. coli pro transformaci
Plazmidové vektory pBluescript I KS (+)' (Apr) (Stratagene) and pKK233.2 (Apr) (Pharmacia) byly připraveny alkalickou lýzou (viz Sambrook a další (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, USA). Kmeny E. coli nesoucí zmiňované plazmidy inkubovány po dobu 16 hodin v 500 ml LB média s přídavkem ampicilinu (100 pg/ml) při 37°C za současného protřepávání na orbitální třepačce při 250 otáčkách/min. Tato plazmidová DNA byla přečištěna centrifugací na CsCl gradientu.
Kompetentní buňky E. coli TG1 a E. coli DH5a byly získány postupem využívajícím RbCl (viz Sambrook a další (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, USA).
3. Příprava donorové DNA nesoucí genetickou informaci vztahující se, k biosyntéze DAO
Kmen T. variabilis (ATCC 20931) byl kultivován na médiu YPMG (0,3 % sladového výtažku, 0,3 % kvasničného výtažku, 0,5 % peptonu a 1 % glukózy) . Směs byla inkubována po dobu 3 6 hodin (OD66o = 5,0) při teplotě 30°C na orbitální třepačce při 250 min-1.
4·· ···
-10Buňky byly poté ponechány sedimentovat, promyty a rozrušeny, zymolyázou. Deoxyribonukleová kyselina byla extrahována způsobem popsaným v literatuře (Sherman a kol. (1986): Laboratory Course for Methods in Yeast Genetics, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York) . Za účelem dosažení vyšší čistoty byla DNA vystavena působení RNA-ázy, několikrát extrahována fenolem a směsí chloroformu s isoamylalkoholem (CIA) v poměru 24:1 a poté vysrážena isopropanolem. Vysr^žená DNA byla promyta nejprve 100% ethanolem, poté 70% ethanolem a nakonec byla rozpuštěna v 10 mM Tris-HCl pufru o pH = 7,5, obsahujícím 1 mM EDTA (dále pufr TE).
Příklad 2:
1. Vytvoření DNA knihovny kvasinky T. variabilis
Celková DNA T. variabilis kmene ATCC 20931 byla získána postupem popsaným ve třetí části příkladu 1. 300 pg ž celkové DNA bylo částečně rozštěpeno 20 jednotkami restrikčního enzymu .Sau3AI v reakčním objemu 600 μΐ při teplotě 37°C. Ze směsí byly odebrány tři vzorky po 200 μΐ, a to 45 s, 1 minutu a 2 minuty od zahájení reakce. Štěpení bylo zastaveno přidáním vychlazené 20mM EDTA. Výsledek štěpení byl ověřen elektroforézou na 0,7% agarózovém gelu. Vzorky byly poté spojeny a po dobu 10 minut zahřívány při teplotě 68°C. Směs byla ponechána zvolna vychladnout na pokojovou teplotu a následně navrstvena na 38 ml sacharózového gradientu o koncentraci 10 až 40 %. Gradient byl centrifugován při 26000 min'1 po dobu 24 hodin při teplotě 15°C. Směs byla poté rozdělena na vzorky o objemu 0,5 ml a 10 μΐ z každého vzorku bylo analyzováno na 0,4% • · · · • · • · · · · · • · ·· ··
-11agarózovém gelu. Vzorky, v nichž velikost fragmentů DNA dosahovala velikosti 18 až 22 kb, byly spojeny a zředěny destilovanou vodou tak, aby výsledná koncentrace sacharózy byla asi 10%. Poté, byla DNA vysrážena ethanolem a suspendována v 50 μΐ TE pufru, přičemž 3 μΐ roztoku byly analyzovány na 0,4% agarózovém gelu. Tim bylo ověřeno, že fragmenty- DNA dosahují požadované velikosti a že jejich koncentrace činí přibližně 50 ng/μΐ.'
Souběžně byla způsobem podle Sambrook a další (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, USA, s mírnýni úpravami připravena DNA bakteriofága. λ-ΘΕΜ12 (Promega). Za tím účelem byly pěstovány bakterie E. coli kmene NM538 po dobu 10 hodin na médiu NZCYM s přídavkem 0,2 % maltózy. Byla měřena optická denzita suspenze při 600 nm. Objem kultury odpovídající 3 χ 109 buněk byl 10 minut centrifugován rychlostí 4000 min-1 při 4°C na stolní centrifuze a následně byly buňky suspendovány v 1,2 ml SM - pufru. K těmto buňkám bylo přidáno 3 χ 10' PFU (plak formujících jednotek) fága λ-ΘΕΜ12 a směs byla bez protřepávání inkubována při 37°C po dobu 30 min. Do připravených 500 ml baněk obsahujících 100 ml NZCYM-0,2% maltózového média a temperovaných na 37°C bylo naočkováno po 200 μΐ suspenze infikovaných buněk. Baňky byly inkubovány při 37°C, dokud nedošlo k lýze kultivovaných buněk (po 5 až 6 hodinách). K lyzátu byla přidána DNA-áza (1 pg/ml) a RNA-áza (2 pg/ml) a enzymy byly ponechány působit 45 minut při pokojové teplotě. Poté bylo k.lyzátu přidáno 5,8 g NaCl na každých 100 ml objemu a směs byla ponechána 60 min. v ledové lázni. Po uplynutí uvedené doby byl lyzá,t filtrací zbaven buněčných zbytků a po přídavku 20 ml 50% PEG-6000 na 100 ml lyzátu byla směs chlazena 60 min v ledové • ·
-12lázni a následně odstřeďována po dobu 20 min při 10000 x g a 4°C. Precipitát byl poté suspendován v 1 ml TE - pufru a dvakrát extrahován CIA za účelem odstranění zbytků PEG-6O00, aniž by se přitom, porušil vlastní ,fág. Následovala dvojnásobná extrakce neutrálním fenolem, jednou směsí fenol - CIA a jednou samotným CIA. K vodné fázi bylo přidáno tolik 4M roztoku NaCl, až jeho koncentrace dosáhla -0,5 M, a DNA byla vysrážena dvojnásobným objemem ethanoiu při teplotě -20°C. Po 20 min odstřelování v minicentrifuze při 12000 min“1 a teplotě 4°C byla precipitovaná DNA promyta 70% ethanolem, vysušena a suspendována v 50 μΐ TE - pufru.
Padesát pg bakteriofágové DNA bylo po dobu 2 hodin štěpeno endonukleázami BamHI a Xbal při teplotě ' 37°C. Rozštěpená DNA byla extrahována směsí fenol - CIA a samotným CIA, vysrážena ethanolem a suspendována v 50 μΐ TE - pufru. Po odebrání 2 μΐ vzorku byl ke zbylé směsi přidáván MgCl2 až do dosažení 10 mM koncentrace a směs byla inkubována hodinu při 42°C, aby bylo podpořeno spojování kohezních konců vektoru do cyklické struktury. Znovu byly odebrány μΐ směsi, jež byly společně s dříve odebraným vzorkem analyzovány na 0,5% agarózovém gelu. Poté co byla ověřena recirkularizace vektoru spojením kohezních konců, byla směs navrstvena na 38 ml 10-ti až 40% sacharózového gradientu, v tomto- případě nebyla DNA před navrstvením na gradient zahřívána na 68°C, neboť by to vedlo k separaci kohezních konců. Gradient byl centrifugován při 26000 min“1 a 15°C. po dobu 24 hodin a následně byl beze zbytku rozdělen na frakce po 0,5 ml, přičemž z každé bylo 15 μΐ analyzováno na 0,5% agarózovém gelu. Ty frakce, jež neobsahovaly postradatelný centrální fragment (neboli vycpávku), byly spojeny a zředěny destilovanou vodou tak, aby koncentrace sacharózy • Β ·· ·· ♦ · · « • ·
Β
-13činila zhruba 10 %. Poté byla DNA vysrážena ethanolem a suspendována v 50 μΐ TE - pufru, přičemž 2 μΐ vzniklého roztoku byly použity pro elektroforézu na 0,5% agarózovém gelu, aby se ověřila nepřítomnost centrálního fragmentu a aby bylo možno' odhadnout přibližnou koncentraci DNA, jež činila asi 100 ng/μΐ.
Dále byla provedena série ligací za použití 0,25 pg inzertu a množství vektoru v rozmezí od 0,25 do 0,75 pg, tj. při proměnlivém poměru inzert/vektor. Reakční směsi byly inkubovány při teplotě 12 až 14°C po dobu 16 hodin. Poté, co bylo na 0,4% agarózovém gelu ověřeno, že ligační reakcí vznikly fragmenty DNA o větších rozměrech než byla velikost vektoru či inzertu, byly všechny reakční směsi spojeny, vysráženy ethanolem a suspendovány ve 4 μΐ ligačního pufru.
Pakážování rekombinantní fágové DNA, vzniklé předchozí ligační reakcí, bylo provedeno za pomoci in vitro sady pakážovacích extraktů Packagene (Promega). Produkt pakážovací reakce, suspendovaný v 500 μΐ SM - pufru, byl použit k infikování E. coii kmene NM538. Tato infekce posloužila k titraci množství vzniklých fágů. Dále byly infikovány buňky E. coii kmene NM539 (Promega) s cílem určit procentní zastoupení rekombinantních fágů. Bakterie E. coii kmene NM539 jsou lysogenní vzhledem .k fágu P2 a produkují lytické plaky pouze . pokud fág, jenž je napadl, nenese postradatelný centrální fragment. Vytvořená DNA - knihovna obsahovala asi 200 000 PFU a okolo 85% fágů neslo exogenní fragment DNA.
Po provedení těchto výpočtů byly infikovány E. coii NM539 a vzniklá úplná genetická knihovna byla kultivována na Petriho miskách o průměru 150 mm.
«* • · 0 · • 0 ·
-142. Identifikace klonů obsahujících dao-gen
Úplná DNA knihovna byla přenesena na nitrocelulózové filtry a proces výběru pozitivních fágů byl proveden v literatuře popsaným, hybridi začním postupem (Sambrook a další (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, USA). Proces začal prehybridizací nitrocelulózových filtrů'. Ty byly· inkubovány po 3 hodiny při 42°C v hybridizačnim pufru. Hybridizace byla provedena po odstranění pufru použitého při' prehybridizaci, a to přidáním nového hybridizačního pufru spolu s 10 pmol oligonukleotidů OA (5'-TCTTGTCCTCGACACC-3') a OB (5'GACGTGGATTGTCAACTG-3'). Oligonukleotidy byly předtím standardním postupem (Sambrook a další (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, USA) označeny na 5'- koncích izotopem 32P za použití T4 polynukleotid-kinázy a [γ-32Ρ]ΑΤΡ (ICN Biochemicals) . Filtry byly inkubovány 16 h při' 42°C, dvakrát promývány po dobu 20 minut při pokojové teplotě 2 X SSC-0,1% SDS pufrem a následně dvakrát 0,1 X SSC-0,1% SDS pufrem po dobu dalších 20 minut při hybridizační teplotě. Nakonec byly nitrocelulózové filtry exponovány s rentgenovým filmem Hyperfilm-MP (Amersham) mezi reflexními deskami. Expozice trvala 48 hodin a probíhala při -70°C.
Poté, co byl dokončen proces prehybridizace, hybridizace, promývání. a autoradiografie, bylo vybráno ' 63 klonů dávajících pozitivní signál s oligonukleotidovými sondami OA a OB. Pasteurovou pipetou bylo jednotlivě odebráno pouze devět pozitivních lytických plaků a každý z nich byl suspendován v 1 ml SM - pufru s přídavkem 50 μΐ chloroformu. Fágy přítomné v roztoku byly ztitrovány. Za tím účelem bylo třeba zmiňovaný roztok 5000-krát zředit, tak aby .
9 9 • 9 9
9 9' • · · ·« 99··
9 9 9 9·
-1520 μΐ tohoto roztoku po infekci dalo vniknout 500 až 1000 lytických plaků na jednu Petriho misku. Poté, co byl obsah každé Petriho misky přenesen na odpovídající nitrocelulózový filtr, bylo znovu přikročeno k hybridizaci s týmiž sondami OA a OB. Autoradiografii bylo zjištěno, že 20 až 50% fágů z každé Petriho misky dává pozitivní hybridizační signál. Proto bylo nutné přečistit každý z pozitivních.fágů v třetím hybridizačním cyklu. Za tím účelem byly Pasteurovou pipetou odebrány ty lytické plaky, jež byly znatelně izolovány od sousedních nebo byly obklopeny jinými rovněž pozitivními lytickými plaky. Následně byly suspendovány v 1 ml SM pufru s přídavkem 50 μΐ chloroformu. Po zředění takto připraveného fágového roztoku na stonásobný objem byly 15 μΐ alikvoty použity pro infekci bakteriální kultury. Titry fágového roztoku odpovídaly cca 300 lytickým plakům na Petriho misku. Zpracováním lytických plaků stejným postupem jako v předchozích dvou cyklech bylo dosaženo toho, že 100% fágů na každé Petriho misce bylo pozitivních. Takto bylo přečištěno 9 samostatných lytických plaků. Každý z nich byl suspendován ve 100 μΐ SM -' pufru s přídavkem 10 μΐ chloroformu. Ze 2 μΐ tohoto roztoku byly získány souvislé lytické plaky s cílem namnožit zmiňované pozitivní fágy na pevném nosiči. Povrchová vrstva agarózy byla odebrána a jejím suspendováním v 5 ' ml SM - pufru byly pro každý z pozitivních fágů získán roztok o-přibližné koncentraci. 10? PFU/μΙ.
Výše zmiňované oligonukleotidy OA a OB byly využity v Southernově blotu (Sambrook a další (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York', USA) též jako sondy k určení fragmentů genomové DNA nesoucích dao-gen T. variabilis. Za
4
4 • 44
-16-.
4444 • 4
444 • 4 4
4
444 tím účelem byla za dále popsaných podmínek provedena hybridizace s D.NA rozštěpenou restrikčními endonukleázami (Pharmacia) BamHI, EcoRI, HindlII, Knpl, Pstl,· PvuII, Xbal a Xhol a rozdělenou na agarózovém gelu. Gel, použitý k rozdělení fragmentů DNA na základě rozdílné velikosti molekul, byl následně inkubován 15 min v 0,25 M HCI za mírného protřepávání a při pokojové teplotě, dále 1 hodinu v denaturujícím a 1 hodinu v neutralizujícím roztoku. Gel byl poté položen na sloupec filtračních papírů Whatman 3 MM navlhčených 10 x SSC pufrem. Na něj byl přiložen nitrocelulózový filtr BA85 (.0, 45 pm, Schleicher & Schuell) týchž rozměrů, navlhčený 2 x SSC,. přičemž bylo třeba se vyvarovat tvorby bublin. Nitrocelulózový filtr byl dále překryt dvěma listy papíru Whatman 3 MM navlčenýmí 2 x SSC pufrem a vrstvou suchých filtračních papírů stejného rozměru, přičemž tloušťka této vrstvy činila 8 až 10 cm. Takto vytvořený balík byl nahoře zatížen závažím o hmotnosti zhruba 500 g. Přenos byl ponechán probíhat 16 hodin. Jakmile byla DNA přenesena, nitrocelulózový filtr byl opatrně ponořen na 5 minut do 6 x SSC, poté 1 hodinu vysoušen při pokojové teplotě. Poté byl filtr zapékán ve vakuu mezi dvěma listy papíru Whatman 3 MM při teplotě 80°C po dobu 3 hodin tak, aby DNA pevně přilnula k filtru. Poté byla provedena prehybridizace a hybridizace za podmínek popsaných při screeningu DNA knihovny. Výsledky autoradiografie poukázaly na výskyt specifických hybridizačních pásů pro každý ze štěpů. Velikost těchto pásů byla konkrétně následující: 10,2 kb pro EcoRI štěp, 3,7 kb pro BamHI, 3,5 kb pro HindlII, 11,6 kb pro KpnI, 11,3 kb pro Pstl, 4,8 kb pro PvuII, 2,8 kb pro Xbal a 4,7 kb pro Xhol.
-17·· ···· ·« ·* ϊ · · » · · · • ♦ ··· · · · « • · · · ··· ··· • · » , .
·· »·· »· .«
3. Klonování fragmentu DNA kódujícího dao-gen
Po přečištění fágové DNA, v podstatě stejným způsobem, jako bylo popsáno v části 1 příkladu 2 pro bakteriofág' X-GEM12, bylo provedeno její štěpení endonukleázou Sáli, zjištěný proužek o velikosti 9 kb byl překlonován do plazmidů pBluescript I KS ( + ) (Stratagene) rozštěpeného Sáli. K tomu byly použity DNA ligáza fágu T4 (Amersham) , ATP a pufr doporučený dodavatelem enzymu. Výsledná ligační směs byla inkubována po dobu 5 hodin při 12°C a poté byla použita k transformaci vhodných buněk E. coli TG1 (Amersham). Transformanti byli selektováni na plotnách s LB médiem s přídavkem ampicilinu (100 pg/ml), X-gal (40 μς/ιαΐ) a 0,2mM IPTG. Z klonů s bílým selekčním fenotypem byl izolován plazmid pALTl. S použitím Southernova postupu a sondy.OB byl dao-gen lokalizován v 3,7 kb BamHI fragmentu obsaženém v plazmidů pALTl. Tento BamHI fragment byl překlonován do plazmidů pBluescript I KS (+) (Stratagene) rozštěpeného endonukleázou BamHI. Tak byly izolovány plazmidy pALT2 a pALT3, nesoucí 3,7 kb BamHI fragment v obou orientacích (obr. 1) .
4. Sekvenování fragmentu nesoucího dao-gen
Nukleotidová sekvence fragmentu neseného plazmidem pALT2 byla určena s použitím téhož plazmidů postupem popsaným v literatuře (Sanger a kol. (1977) Proč. Nati. Aca. Sci. USA 74, strana 5463 až 5464) s použitím sekvenační sady s T7 DNA polymerázou (Pharmacia) a [35S]dATP. Určená sekvence je zobrazena v Sekv.id. č. : . 1. Analýzy této sekvence a její porovnání s ostatními známými sekvencemi z mezinárodních
444(
I · 4 » 4 4 4 4 » 4 « » 4 (
4 4 · 4 • 4
-18*4 44 ► 4 4 4 * 4 4 4
444 444 databází (GeneBank/EMBL) ukázaly, že klonovaný fragment kóduje dao-gen T. variabilis.
Příklad 3:
1. - Eliminace intronu z dao-genu pomocí PCR
Vzorek DNA z plazmidů pALT2 o hmotnosti 0,15 pg byl smíchán s 10 μΐ (25 μΜ) každého z těchto oligonukleotidů: DAO1 (5'CATGCCATGGCTAAAATCGTTGTTATTGGGGCCGGTGTTGCCGGTTTAAC-3') , j enž kóduje úplnou sekvenci prvního exonu a první nukleotidy na 5'- konci druhého exonu a obsahuje jedno restrikční místo pro Ncol, a DAO2 (5'-CCCAAGCTTCTAAAGGTTTGGACGAG-3'), obsahující restrikční místo pro HindlII a sekvenci 3'-konce, odpovídající druhému exonu dao-genu, včetně terminačního kodónu translace. K této směsi byly přidány 2,5 jednotky Taq-polymerázy (Perkin - Elmer) spolu s vhodným, dodavateli doporučeným, pufrem a preparát byl podroben amplifikačnímu procesu v PCR cykleru Gene-ATA.Q (Pharmacia) ve 30 cyklech. Každý cyklus se skládal z fáze při 95°C (1 min) , 50°C (2 min) a 72°C (2,5 min). Výsledek amplifikace byl po provedení elektroforézy na 1% agarózovém gelu zviditelněn barvením ethidiumbromidem.
DNA
Fragment o velikosti cca 9 kb získaný prostřednictvím PCR byl přečištěn extrakcí z agarózového gelu s použitím β-agarázy (Biolabs) v souladu s doporučeními výrobce. Množství 0,2 pg přečištěného fragmentu bylo spojeno s 1 μg vektoru M13tgl30 (Amersham), rozštěpeného enzymem HincII (Pharmacia). K ligací byla použita T4-DNA ligáza (Amersham), ATP a pufr doporučený výrobcem. Tímto způsobem byl vytvořen fág M13DA0 (obr. 1), jenž byl' poté sekvenován, • · • · ·
-19aby se ověřilo, zda byl intron skutečně odstraněn. Nukleotidová- sekvence fragmentu obsaženého ve fágu M13DA0 byla určena na tomtéž rekombinantním fágu postupem popsaným v literatuře (Sanger a kol. (1977) Proč. Nati. Aca. Sci. USA 74, strana 5463 až 5464) s využitím sekvenační sady s T7 DNA polymerázou (Pharmacia) a [35S]dATP. Nukleotidová sekvence ukázala, že klonovaný fragment má velikost 0,9 kb a obsahuje sekverici dao-genu z T. variabilis bez zmiňovaného intronu.
2. Nakloňování dáo-genu bez intronu do plazmidů pKK233.2 Vzorek DNA o hmotnosti 0,1 pg z plazmidů pKK233.2 byl štěpen restrikčními endonukleázami Ncol a HindlII (Pharmacia) při 37°C v pufru doporučovaném dodavateli po dobu 1 hodiny a poté byl zahříván na 65°C po dobu 10 min, aby se reakce ukončila. Rozštěpený plazmid byl smíšen s 0,2 pg fágu M13DA0 štěpeného týmiž, výše zmíněnými, restrikčními endonukleázami, a obě DNA byly spojeny prostřednictvím T4 DNA-ligázy (Amersham) za přítomnosti ATP a v pufru doporučeném výrobcem.
Výsledná ligační směs byla použita k transformaci kompetetních buněk E. coli kmene TG1. Transformantů byli izolováni na LB médiu s přídavkem ampicilinu (100 pg/ml). Tímto postupem byl získán klon obsahující rekombinantní plazmid pKDAO3 (obr. 1), jenž nesl fragment DNA o velikosti 0,9 kb vytvořený amplifikací s využitím PCR. Tento fragment se nacházel mezi restrikčními místy Ncol a HindlII plazmidů pKK233.2, tj. byl exprimován pod kontrolou trc promotoru.
·· ·· • · • · ··
-20• ·
4 44 ··
Příklad 4
1. Vytvoření chimérického DAO enzymu obsahujícího navíc histidinových zbytků
Za účelem připojení polyhistidinové sekvence na N-konec enzymu DAO z T. variabi.lis bylo 0,1 pg plazmidu pKDA03 štěpeno restrikční endonukleázou Ncol (Pharmacia) po dobu 1 hodiny při teplotě 37°C a za podmínek doporučených dodavatelem. Reakce byla zastavena zahřátím směsi na 65°C a udržováním této teploty po dobu 10 minut. Takto rozštěpený plazmid byl zarovnán Klenowovým fragmentem DNA-polymerázy I z E. coli (Pharmacia) v souladu s doporučeními dodavatele a reakce byla opět ukončena zahříváním směsi při 65°C podobu 10 minut. Výsledný linearizovaný plazmid byl spojen s fragmentem DNA, obsahujícím nukleotidovou sekvenci kódující 6 histidinových zbytků. Reakce byla katalyzována T4 DNA ligázou (Amersham) za přítomnosti ATP a s použitím pufru doporučeného výrobcem. Fragment kódující 6 histidinových zbytků byl získán smíšením' 1,5 pg dvou komplementárních oligonukleotidů, nazvaných HIS1 (5'CATCATCACCACCATCACTT-3') a HIS2 (5'-AAGTGATGGTGGTGATGATG-3'), jež byly zahřívány při 100°C po dobu 5 minut a poté ochlazeny na pokojovou teplotu, čímž došlo k hybridizaci a zformování dvouvláknového fragmentu DNA.
Výsledná ligační směs byla použita k transformaci kompetetních buněk E. coli kmene TG1. Transformanti byli izolováni na LB médiu s přídavkem ampicilinu (100 pg/ml). Tímto postupem byl získán klon obsahující rekombinantni plazmid pKDAOHIS, jenž nesl dao-gen spojený na 5'-konci se sekvencí 18 nukleotidů kódujících 6 histidinových zbytků. Aby se ověřilo, zda plazmid pKDAOHIS (viz obrázek 1) obsahuje očekávanou chimérickou konstrukci, byla postupem
9
999 • 9 9 9
9 9 9
··
9 9
219
9999 9 popsaným v literatuře (Sanger a kol. (1977) Proč. Nati. Acad. Sci. USA 74, strana 5463 až 5464) zjištěna sekvence tohoto rekombinantního plazmidů. Přitom bylo využito sekvenační sady s T7 DNA polymerázou (Pharmacia) a [:'3]dATP. Zjištěná sekvence je uvedena v Sekv. id.č.: 2.
Kmen E. coli TG1 transformovaný plazmidem pKDAOHIS byl 20 hodin kultivován na médiu LB při teplotě 25°C a při 250 min“1. Buňky byly poté odděleny 10 minutovou centrifugaci při 5000 g a rozrušeny ultrazvukem. Aktivita DAO byla stanovena způsobem popsaným v části 1 příkladu 1. Pro takto získanou DAO byla naměřena aktivita 350 U/mg proteinu. Tím bylo potvrzeno, že získaný chimérický enzym DAO s histidinovým řetězcem (hisDAO) je aktivní. Dále bylo za použití SDS - elektroforézy na polyakrylamidovém gelu ověřeno, že v souladu s očekáváním jsou molekuly enzymu hisDAO poněkud větší než molekuly nativní DAO. Kmen E. coli TG1 transformovaný plazmidem pKDAOHIS byl dne 10. VI. 1997 uložen ve· Španělské sbírce typových kultur (CECT) na oddělení mikrobiologie fakulty biologických věd. University Valencia,. 46100 Burjasot (Valencia) pod katalogovým číslem CECT4888.
Příklad 5
I. - Příprava afinitního nosiče agaróza - kovový chelát Směs 5,7 ml epichlorhydrinu (3-chlor-l,2-propenoxidu) a
II, 4 ml ethylenglykoldimethyléteru byla zvolna přidána k suspenzi 7 g agarózy CL6B v 57 ml 0,1 M NaOH obsahujícího 340 mg NaBH4 a při 25°C byla ponechána za stálého mírného • · · · • 9 9 9
999 999
• 9
99 promíchávání po dobu 4 hodin. Takto získaný agaróza-epoxid byl promyt dostatečným množstvím destilované vody a přidán k roztoku, připravenému smícháním 2,5 ml 2 M iminodiacetátu sodného, 19 ml 0,1 M NaHCO3 pufru o pH 11. Tato suspenze byla za neustálého mírného míchání ponechána 12 hodin při 25°C. Nakonec byl nosič promyt destilovanou vodou a suspendován ve vodném roztoku soli požadovaného kovu (.5 mg/ml). Takto vytvořený nosič agaróza - kovový chelát byl promyt dostatečným množstvím vody .a připraven pro následné použití. Při použití C0CI2 jako soli kovu byl uvedeným způsobem získán nosič agaróza - kobaltový chelát.
2. Přečištění chimérického enzymu hisDAO na nosiči agaróza - kobaltový chelát
Kolona naplněná nosičem agaróza - kobaltový chelát byla ekvilibrována 20 mM fosfátovým pufrem (pH 7,0) a 0,2 M NaCl. Na kolonu byl nanesen rozpustný buněčný extrakt, získaný způsobem popsaným v předchozím příkladě z buněk E. coli kmene TG1 transformovaných plazmidem pKDAOHIS. Po nanesení extraktu byla- kolona promyta dostatečným množstvím téhož ekvilibračního pufru, čímž byly eliminovány všechny ostatní proteiny s výjimkou hisDAO, který zůstal zadržen na koloně. Enzym hisDAO byl poté eluován za použití 20 mM fosfátového pufru o pH '7,0 obsahujícího 10 mM imidazol. Frakce obsahující enzym hisDAO byly jímány a posléze dialyzovány proti 20 mM fosfátovému pufru (pH 7,0). Takto připravený enzym o aktivitě 9000 U/mg vykazuje více než 90% stupeň čistoty a je bezprostředně použitelný k přeměně cefalosporinu C na GL-7ACA.
• · · · · · · · · · · 9 9 9 · ··· · · · · • · · · 9 99 999999
9 9 9 9 9 9
9999 999 99 999 99 99
Popis obrázků
Obrázek 1 - konstrukce plazmidú pKDAOHIS
Dao-gen, neobsahující žádný intron a s restrikčním místem Ncol sekvenci kodónu ATG kódujícího první methionin proteinu, byl získán pomocí PCR z plazmidú pALT2. Fragment amplifikovaný prostřednictvím PCR byl poté překlonován do restrikčního místa HincII vektoru M13tgl30, čímž vznikl plazmid M13DA0. Fragment NcoI-HindlII získaný z M13DA0 byl překlonován do NcoI-HindlII . restrikčních míst plazmidú pKK233.2 za vzniku pKDA03. Tento plazmid nesl dao-gen, jehož exprese je řízena promotorem trc z E. coli. V posledním kroku byl vřazen na 5'-konec dao-genu fragment DNA, kódující polyhistidinový řetězec, čímž vznikl plazmid pKDAOHIS.
·· · ·« « · · ···· · · • · · · · · · · · ·
-9/1- ·· ····· · · ·
Yt · ···· ·»···
INFORMACE O SEKVENCI ID. Č. 1: ..........
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 3668 párů basí (B) TYP: deoxyribonukleová kyselina (ii) TYP MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: dao-gen (ix) CHARAKTERISTICKÉ RYSY:'
(A) JMÉNO/KLÍČ: CDS 1481. .1503, 1543..2506
(A) JMÉNO/KLÍČ: CDS 2952. .3668
(D) ORGANISMUS: - Trigonopsis variabilis
(xi) POPIS SEKVENCE ID.Č. 1:
GGATCCTTAC GAGGAAGATC TGATAATGGA GAATTCTCTC GCTTTATGCC ATGACTTGCA 60
GGTTCCTCGG GTAATGGAAC CACTGACAAA TCGGCTGCTT GAGGTTTTGT TCCCTTCAAC 120
ACTTCATCTT CCAAGGTTCT AATTCGTAGT TTCTTCTCAT TCAATAAAGC TGCAAACCGC 130
TCCAACATTT GTAGATCATT ATTCTTTGTC TTCACGGCAA CTGTATCTAG TTCCTTCTGA 240
AGGTCCTTCG TTTCTTTGGT TAGTAGATCT ACCATGCCAG TTAAGCGATC AATCTCCTCT 300
TGGACCTCCT’TCTTGAGCGA TAGCTCTCAC CAGAACCAAT CAAAAAGAAC ACCAGGATCG ' 360 GTACATGTTC CTTGTCGGGA TAGGGACAGT GATCCCAAAG TAATTGATAG ATCCTGAACT 420
TTCTGGGTAA TCGAGATAAT AACCGAACTC AAATCTTGTG ATGGCTTGGC GTTCAATTGA 480
ATGTTTTCGC TAGAAAGCCT CGGACTCTTA CGTTGGTCTT CATCTGTAAG CGACCGCGTG 540
AACACTTGTT GGAATAAGTC ATTCCATTCA CTTTCACTTT GAGGACTTCT ATTTGACCGT 600
AGATCTTTAA TTGACTCATT TCCAGTTACT GAAAGTTAGC TGGAAGCTTT CAACATGTCC 660
TCACCAGAGG TTTGATAGAG GTCTAACGAT GGCTTCATAC AGGČTGTGAA TGTGATTGTT. 720
TCGCCAGTCT CAACTCTGAC GATCAAACGC TTAGATCCAC CAATCTCAAT ACCGAACGAG· 730
TTAATTCGAC TCATTGCTCA ATATGATTGA TCGCGCGGGA TGACATCGAA GGTGACAACC 840
GTACGCGAAA GATGCGTGAC GATAAGGACA ACGACTAAGG GAGTAGATGG ACTGGGGAGT 900
GAAGGAAATG TGAGACTAGA GAAAAGCCAC TGACTGAGAG TAAAACAGCC ATGATTAGAC 960
AATCAGCCAT GACAGCACTA TAACGTGATA TGATAAGTAA GGCTCTGTTG CCCGCTGACG 102 0
GCCAACGGCT GACGGCCAAC TTGATGATTC TACCACAAAA AATCATACGA GAAGTCAACG 1080
AAAAGTCCTT AGTTTGGAAT TCCAGACATG GCAGAATTTA ACGGCCACTA CAGTTGGCCG 1140
TTCGTAAACG AGACAAGTGA CTCATGGCAG CACCGTCTCA GTCCACCGGT CTAAAGCACT 1200
TGGTGCCAGA TGAATTTGGA AACTGTCACC TTATAGAATT ACTTTTGGAT AGTTTTTGTA 1260
AGGCTGGAGA CTTGTAAGCC TGACTCAGTT GACTCATCGG CGAAAGCTTC CTATCTTGGA 1320
GCTAAGATCG CCTGATCGTT TTGCCCTACT TATCTTGGTT GCATGAGTTG GCCGGTCAGA 1330
GCCGCATTCT AGCCAAAGGG TTATAGCGTT ACACTCTTGA TAGGCAAATC CGTGCTCGGA 1440
TTATATATAA GGCAAAAGTC GATTCAACGG’ ATCAATAAAA ATG GCT AAA ATC GTT 1495 . Met Ala Lys Ile Val 1 5
GTT ATT GG . GTAAGTGCCT TGATACCAGA CGGCTGACAT TTGTTTAG T GCC GGT 154 8 val rie Gly Ala Gly
GTT GCC GGT TTA ACT ACA GCT CTT CAA CTT CTT , CGT AAA GGA CAT GAG 1596
Val Ala Gly Leu Thr Thr A i a Leu Gin Leu Leu Ard S Gly His Glu
15 20 25
GTT ACA ATT GTG TCC gag' m m rp . 1 x ACG CCC GGT GAT CTT AGT ATC GGA TAT 164 4
v a 1 Thr Ile Val Ser Glu Phe Thr Pro G1 ν- Asp Leu Ser Ile Gly Tyr
30 3 5 40
ACC TCG CCT -TGG GCA GGT Gcc AAC TGG ότα ACA TT” TAC GAT GGA GGC i -
Thr Ser Pro Trp Ala Gly Ala Asn Trp Leu Thr Fhe T y r Asp Gly Gly
45 50 55
AAG TTA GCC GAC TAC GAT GCC C-TC TCT TAT CCT ATC TTG CGA GAG CTG 1740
I.ys, Leu Ala Asp Tyr Asp Ala Val Ser Tyr Pro Ile Leu Arg Glu Leu
60 65 70
GCT CGA AGC AGC CCC GAG GCT GGA ATT CGA CTC ATC AAC CAA CGC TCC Γ7 88
Ala Arg Ser Ser Pro Glu Ala Gly Ile Arg Leu Ile Asn Gin Arg Ser
75 80 85 90
• · • · • • to to • to • • to to • to • · • to • · • · ···· • • toto • · • • · ·· • ·· β · · • « · toto •
CAT GTT CTC AAG CGT GAT CTT CCT AAA CTG GAA GGT **GCC *ÁTG TCG to · · GCC to · toto 1836
His Val Leu Lys Arg Asp Leu Pro Lys Leu Glu cly ?λ 1 a Met Ser Ala
95 100 105
ATC TGT CAA CGC AAC CCC TGG TTC AAA AAC ACA Ul- ..•A 1 TCT TTC GAG 1384
ile Cys Gin Arg Asn Pro Trp Phe Lys Asn Thr Va. Asp Ser Phe Glu
110 115 120
ATT ATC GAG GAC AGG TCC AGG ATT GTC CAC GAT GAI ,j . o GCT TAT CTA 1932
Ile Ilc Glu Asp Arg Ser Arg Ile Val His Asp Asc V a i Aid Tyr Leu
125 130 1 3 5
GTC GAA rprprp GCT TCC GTT TGT ATC CAC ACC GGA GTC AC TTG AAC TGG 1980
Val Glu Phe Ala Ser Val Cys Ile His Thr Gly Val Tyr Leu Asn Trp
i an i a s 1 5 ~
CTG ATG TCC CAA TGC TTA TCG CTC GGC GCC ACG GTG GTT AAA CGT CGA 2028
Leu Met Ser Gin Cys Leu Ser Leu Gly. Ala Thr Val Val Lys Arg Arg
155 160 165 170
GTG AAC CAT ATC AAG GAT GCC AAT TTA CTA CAC TCC TCA GGA TCA CGC 2076
Val Asn His Ile Lys Asp Ala Asn Leu Leu His Ser Ser Gly Ser Arg
175 180 185
CCC GAC GTG ATT GTC AAC TGT AGT GGT CTC TTT GCC CGG TTC TTG GGA 212-4
Pro Asp Val Ile Val Asn Cys Ser Gly Leu Phe Ala Arg Phe Leu Gly
190 195 200
GGC GTC GAG GAC AAG AAG ATG TAC CCT ATT CGA GGA CAA GTC GTC CTT 2172
Gly Val Glu Asp Lys Lys Met Tyr Pro Ile Arg Gly Gin Val Val Leu
205 210 215
GTT CGA AAC TCT GTT CCT TTT ATG GCC TCC TTT TCC AGC ACT CCT GAA 2220
Val Arg Asn Ser Leu Pro Phe Met Ala Ser Phe Ser Ser Thr Pro Glu
220 225 230
AAA GAA AAT GAA GAC GAA GCT CTA TAT ATC ATG ACC CGA TTC GAT GGT 2268
Lys Glu Asn Glu Asp Glu Ala Leu Tyr Ile Met Thr Arg Phe Asp Gly
235 240 245 250
ACT TCT ATC ATT GGC GGT TGT TTC CAA CCC AAC AAC TGG TCA TCC GAA 2 316
Thr Ser Ile Ile. Gly Gly Cys Phe Gin Pro Asn Asn Trp Ser Ser Glu
255 260 265
CCC GAT CCT TCT CTC ACC CAT CGA ATC CTG TCT AGA GCC CTC GAC CGA 2364
Pro Asp Pro Ser Leu Thr His Arg Ile Leu Ser Arg Ala Leu Asp Arg
270 275 280
TTC CCG GAA CTG ACC AAA GAT GGC CCT CTT GAC ATT GTG CGC GAA TGC 2412
Phe Pro Glu Leu Thr Lys Asp Giv Pro Leu Asp Ile V a 1 Arg Glu Cys
285 290 2 95
GTT GGC CAC CGT CCT GGT AGA GAG GGC GGT CCC CGA GTA GAA TTA GAG 2 460
Val Gly His Arg Pro Gly Arg Glu Gly Gly Pro Arg Val Glu Leu Giu
300 305 310
AAG ATC CCC GGC GTT GGC TTT GTT GTC CAT AAC TAT G GT GCC GCC GGT 2508
Lys Tle Pro Gly Val Gly Phe Val Val His Asn Tyr Gly Ala Ala Gly
315 320 325 330
GCT GGT TAC CAG TCC TCT TAC GGC ATG GCT GAT GAA GCT GTT TCT TAC 2 3 56
Ala Gly Tyr Gin Ser Ser Tyr Gly Met Ala Asp Glu Ala Val Ser Tyr
335 340 345
GTC GAA AGA GCT CTT ACT CGT CCA AAC CTT TAGAAATCAT GTATACAATT J c 'J 6
Val Glu Arg Ala Leu Thr Arg. Pro Asn Leu
350 355
ATTCTCTCTC TATAAATCTA ATTTTTTTGT GTGGTCTAAT ATTCGTAAAC ACGTCGCAGT 2666 CGTCTATGTC GCCCTCGTCA CCGTGTCCAA AGTCGTAAAG TGACTGATTG CAATTGCGAC 2726 AACACGTGAC TCGACCTGCC TCCTTACCTC CCATCAACAA CAAAA.GAAGC TGGCTAAGAT 2786 AGAGGTCTGT TGACGAGCAC TCGTAAGAAC GGCAAACATA GAAAGGAGGC T.CTATAATTA 284 6 CCTGGAAACT GTGTTATATA CTATCACTAG TGAGGGTGAG TGATTAGAAG CAAGGGGACT 2906 AGAATACTGA CATGGATAGA GATCCAGGAG CCTTATAAAT AATCA ATG AAT ACA ATT 2963
Met Asn Thr Ile
GAT TTG GAA TCT TGG GAT GAT GAT CCA GAT TTC GCA GAT GAC TTT GAG
Asp Leu Glu Ser Trp Asp Asp Asp Pro Asp Phe Ala Asp Asp Phe Glu
360 365 370 375
AAT TTA AAG ACT CCA GCT CCT ACG TTT TAT GAA GCC AAC GAT GAG ATT
Asn Leu Lys Thr Pro Ala Pro Thr Phe Tyr Glu Ala Asn Asp Glu Ile
380 385 390'
···· • · · · Β ···· ΒΒΒ ΒΒ ΒΒΒ
AGG GAT GGA GAA GAA GAG GAT GAT ΓΠφΓΠ i 1 i TTC TCT CAA GAT TTC GAG TTG
Arg Asp Gly Glu Glu Glu Asp Asp Phe Phe Ser Gin Asp Phe Glu Leu
395 400 405
GAT GAT AAG AAT ACA CTC GGA CGA CAG AAC AAG ATT TCG ACT AGT CAC·
Asp Asp Lys Asn Thr Leu Gly Arg Gin As n Lys Ile Ser Τ’Ηγ Ser His
410 415 4 2 n o
CTA AAG TCC GCG AGT CAG GAA CAA GCA GAG ACC TCC TTT CGT GAC TCG
Leu Lys Ser Ala Ser Gin, Glu Glh Ala Glu Thr Ser Phe Arg Asp Ser
425 430 435
AAC GCT GGC GTC AAT GCT TTC AGC TGG GGG ACT ATA AAA GCC TTA GGA
Asn Ala Gly Val Asn Ala Phe Ser Cys Gly Thr Ile Lys Ala Leu Gly
440 445 450 455
AAG AAT AGG ATG ACG ACG GTG GAA GAG AAG TGG GAA AAG GAA GTT AGA
Lys Asn Arg Met Thr Thr Val Glu Glu Lys Trp Glu Lys Glu Val Arg
460 465 470
CGC GAT CAA ATT GGG TTC AAT GAA GCT ACT CTT AGA GCT CAT GAG ACT
Arg Asp Gin iie Gly Phe Asn Glu Ala Thr Leu Arg Ala His Glu Thr
475 480 485
ACC AGA GAA TGG TTA AAA TCC CAG ACT GGC GAA GCT GGG ACT AAA AGC
Thr Arg Glu Trp Leu Lys Ser Gin Thr Gly Glu Ala Gly Thr Lys Ser
490 495 500
AAG GTC TTT AGC CCA ATT CTC GAC GGA TCA TTC TTC GAA CCG CCT TTG
Lys Val Phe Ser Pro Ile Leu Asp Gly Ser Phe Phe Glu Pro Pro Leu
505 510 515
GAA TCT AAA GTC AGG CGT TAT CAT TCA CCC CGG AAA CAG GCA CCT CCT
Clu Ser Lys Val Arg Arg Tyr His Ser Pro Arg Lys Gin Ala Pro Pro
520 525 530
CCT CCT CCT GAC GAT TTT TCA GAT GCA TTT GAA CTA TCT ACA GAA GAG
Pro Pro Pro Asp Asp Phe Ser Asp Aia Phe Glu Leu Ser Thr Glu Glu
535 540 545 550
CCA GTG AAA TTA AAA- GTC CAA CCA GTT CAA CCT CAT ATG ACG CCT GCT
Pro L ř U Lys Leu Lys Val Gin Pro Val Gin Pro His Met, Thr Pro Al a
555 560 565
CTG AGT GAT AAT GAT CTA TGG GGT GAG GAA TCT ATT GGT GTG CGA CGA
Leu Ser Asp Asn Asp Leu Trp Gly Glu Glu Ser Ile Gly Val Arg Arg
570 575 580
GGA GGC AGG GAC TCG TCA AGT ATG GGA GGA TCC
Cly Gly Arg Asp Ser Ser Ser Met Gly Gly Ser
585 590 ·· CB β· Β Β Β
ΒΒΒ ··' Β « Β · ·
3107
315 5
3203
3251
3299
3347
3395
3443
91
3539
3537
3635
3668
INFORMACE Ο SEKVENCI ID.' Č. 2:
(i) CHARAKTERISTIKA SEKVENCE:
(A) DÉLKA: 1128 párů basí (B) TYP: deoxyribonukleová kyselina (ii) TYP MOLEKULY: jiná nukleová kyselina (A) POPIS: dao-gen s přídamou sekvencí kódující histidinovou kotvu na 5'konci (ix) CHARAKTERISTICKÉ RYSY:
(A) JMÉNO/KLÍČ: CDS 16..1107 (D) ORGANISMUS: Trigonopsis variabilis (xi) POPIS SEKVENCE ID.Č. 2:
• · · · • « i
- 27 • · · · • · • · • · • · · · · · A • A A A • A A AAA • A • A A A
CACAGGAAAC AGACC ATG CAT CAT CAC CAC CAT CAC TTC ATG GCT AAA ATC 51
Met His His His His His His Phe Met Ala Lys Ile 1 5 10
GTT GTT ATT GGG GCC GGT GTT GCC GGT TTA ACT ACA GCT CTT CAA CTT 99
va-i Val Ile Gly Ala Gly Val Ala Gly Leu Thr Thr Ala Leu Gin Leu
15 20 25
CTT CGT AAA GGA CAT GAG GTT ACA ATT GTG TCC GAG TTT ACG CCC GGT 147
Leu Arg Lys Gly His Glu Val Thr Ile Val Ser Glu Phe Thr Pro Gly
.30 35 40
GAT CTT AGT ATC GGA TAT ACC TCG CCT TGG GCA GGT GCC AAC TGG CTC 195
Asp Leu Ser Ile Gly Tyr Thr Ser Pro Trp Ala Gly Ala Asn Trp Leu
4 5 50 55 60
ACA TTT TAC GAT GGA GGC AAG TTA GCC GAC TAC GAT GCC GTC TCT TAT 243
Thr Phe Tyr Asp Gly Gly Lys Leu Ala Asp Tyr Asp Ala Val Ser Tyr
65 70 75
CCT ATC TTG CGA GAG CTG GCT CGA AGC AGC CCC GAG GCT GGA ATT CGA 291
Pro Ile Leu Arg Glu Leu Ala Arg Ser Ser Pro Glu Ala Gly Ile Arg
80 85 90
CTC ATC AAC CAA CGC TCC CAT GTT CTC AAG CGT GAT CTT CCT AAA CTG 339
Leu Ile Asn Gin Arg Ser His Val Leu Lys Arg Asp Leu Pro Lys Leu
95 100 105
GAA GGT GCC ATG TCG GCC ATC TGT CAA CGC AAC CCC TGG TTC AAA AAC 387
Glu Gly Ala Met Ser Ala Ile Cys Gin Arg Asn Pro Trp Phe Lys Asn
110 115 120
ACA GTC GAT TCT TTC GAG ATT ATC GAG GAC AGG TCC AGG ATT GTC CAC 435
Thr Val Asp Ser Phe Glu Ile Ile Glu Asp Arg Ser Arg Ile Val His
L25 130 135 140
GAT GAT GTG GCT TAT CTA GTC GAA TTT GCT TCC /•'mm ϋϋ TGT ATC CAC ACC 483
Asp Asp Val Ala Tyr Leu Va l Glu Phe Ala Ser Val Cys Ile His Thr
145. 150 155
GGA GTC TAC TTG AAC TGG CTG ATG TCC CAA TGC. TTA TCG CTC GGC GCC 531
Giy Val Tyr Leu Asn Trp Leu Met Ser Gin Cys Leu Ser Leu Gly Ala
160 165 170
ACG GTG GTT AAA CGT CGA Gí G AAC CAT ATC AAG GAT GCC AAT TTA CTA 5 7 9
Thr V a 1 Val Lys Arg Arg r - i v m Asn His Ile Lys Asp Ala Asn Leu Leu'·
17 5 180 185
CAC TCC TCA GGA TCA CGC CCC GAC GTG ATT GTC AAC TGT AGT GGT CTC 62'
His Ser Ser Gly Ser Arg Pro Asp Val Ile' Val Asn Cys Ser Gly Leu
1 90 195 200
TTT GCC CGG TTC TTG GGA GGC GTC GAG GAC AAG AAG ATG TAC CCT ATT 67 5
phe Ala Arg Phe Leu Gly Gly Val Glu Asp Lys Lys Met Tyr Pro Ile .
205 210 215 220
CGA GGA CAA' GTC GTC CTT GTT CGA AAC TCT CTT CCT TTT ATG GCC TCC 723
Arg Gly Gin Val Val Leu Val Arg Asn Ser Leu Pro Phe Met Ala Ser
225 230 235
TTT TCC AGC ACT CCT GAA AAA GAA AAT GAA GAC GAA GCT CTA TAT ATC 771
Phe Ser Ser Thr Pro Glu Lys Glu Asn Glu Asp Glu Ala Leu Tyr Ile
240 245 250
ATG ACC CGA TTC GAT GGT ACT TCT ATC ATT GGC GGT TGT TTC CAA CCC 819
Met Thr Arg Phe Asp Gly Thr Ser Ile Ile Gly Gly Cys Phe Gin Pro
255 260 265
AAC AAC TGG TCA TCC GAA CCC GAT CCT TCT CTC ACC CAT CGA ATC CTG 867
Asn Asn Trp Ser Ser Glu Pro Asp Pro Ser Leu Thr His Arg Ile Leu
270 275 280
TCT AGA GCC CTC GAC CGA TTC CCG GAA CTG ACC AAA GAT GGC CCT CTT 915
Ger Arg Ala Leu Asp Arg Phe Pro Glu Leu Thr Lys Asp Gly Pro Leu
285 290 295 300
• · ·* »· 4 4 · 4 4 4 4 • · · 4··· 4 44 · * · >4 4 »4 444 444 • 4 4 4 4 4 4
4444 444 44 444 «4 44
GAC ATT GTG GGC GAA TGC GTT GGC CAC CGT CCT GGT AGA GAG GGC GGT 963
Asp Tle Val Arg Glu. Cys Val Gly His Arg Pro Gly Arg Glu Gly Gly
305 310 315
ccc CGA GTA GAA TTA GAG AA.G ATC CCC GGC GTT GGC TTT GTT GTC CAT 1011
Pro Arg Val·· Glu Leu Glu Lys Ile Pro Gly Val Gly Phe Val Val His
320 325 330
AAC TAT GGT GCC GCC GGT GCT GGT TAC CAG TCC TCT TAC GGC ATG GCT 1059
Asn Tyr Gly Ala Ala Gly Ala Gly Tyr Gin Ser Ser Tyr Gly Met Ala
335 340 345
GAT GAA GCT GTT TCT TAC GTC GAA AGA GCT CTT ACT CGT CCA AAC CTT 1107
Asp Glu Ala Val Ser Tyr Val Glu Arg Ala Leu Thr Arg Pro Asn Leu
350 355 360 364
TÁGAAGCTTG GCTGTTTTGG C 1128

Claims (8)

  1. PATENTOVE NÁROKY
    1. Způsob produkce modifikované oxidázy D-aminokyselin z Trigonopsis variabilis v libovolném hostitelském organismu vyjma člověka, vyznačující se tím, že zahrnuje následující kroky:
    a) izolaci DNA genu kódujícího enzym s oxidázovou aktivitou k D-aminokyselinám z libovolného kmenu mikroorganismu, který takový enzym produkuje;
    b) eliminaci intronů, které uvedený gen obsahuje pomocí způsobů založených na použití syntetických oligonukleotidů a polymerázové řetězové reakce PCR;
    c) vložení fragmentu DNA získaného v bodu (b) do plazmidu, který je schopen replikace v hostitelském organismu;
    d) fúzi syntetické sekvence oligonukleotidů kódující šest histidinových zbytků s 5'koncem strukturního regionu genu kódujícího oxidázovou aktivitu k D-aminokyselinám a zbaveného intronů;
    e) transformacihostitelského organismu rekombinantním plazmidem získaným v bodu (d)
    f) kultivaci tras formovaných buněk hostitelského organismu podle bodu (e) ve vhodném kultivačním médiu za podmínek, které umožňují produkci oxidázy D-aminokyselin;
    g) získání oxidázy D-aminokyselin z kultury podle bodu (f) pomocí afinitní chrornatografie
    30·· 9 · * 99 9 9 9 9 99
    9 9 99 . 9 9 9 9 9 9 9
    9 ' 9 9 9 999 9 9 9 9 • · · · · · ♦ · · · 99 9 • · * · · · · • ··· · · a 9 9 9 9 9 9 9 9 9
  2. 2. Způsob podle nároku 1 vyznačující se tím, že gen kódující oxidázu D-aminokyselin je genem Trigonopsis variabilis.
  3. 3. Způsob podle nároku 1 nebo 2 vyznačující se tím, že hostitelským organismem je Escherichia coli.
  4. 4. Způsob podle libovolného z předchozích nároků vyznačující se t í m ·, že afinitní chromatografie použitá k izolaci modifikovaného enzymu je založena na na médiu obsahujícím divalentní kationty.
  5. 5. Oxidáza D-aminokyselin modifikovaná, ..produkovaná a izolovaná způsobem podle libovolného z předchozích nároků.
  6. 6. Způsob využívající oxidázu D-aminokyselin podle nároku 5 v enzymatické syntéze 7β-(4-karboxybutanamido)cefalosporanové kyseliny.
  7. 7. Způsob podle nároku 6 vyznačující se tím, že se cefalosporin C podrobí reakci s oxidázou D-aminokyselin ve vodném médiu.
    ' (
  8. 8. Způsob podle nároku 6 a 7 v y z n a č u j i c í se tím, že pří enzymatické reakci je oxidáza D-aminokyselin imobilizována.
CZ991823A 1997-09-25 1998-09-24 Enzymatický způsob přípravy 7ß-(4-karboxybutanamido)cefalosporanové kyseliny pomocí modifikované oxidázy D-aminokyselin z Trigonopsis variabilis produkované v Escherichia coli CZ182399A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES009702008A ES2131018B1 (es) 1997-09-25 1997-09-25 Un procedimiento enzimatico para preparar acido 7beta-(4-carboxibutanamido)cefalosporanico utilizando la enzima d-aminoacido oxidasa de trigonopsis variabilis modificada producida en escherichia coli.

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ182399A3 true CZ182399A3 (cs) 1999-09-15

Family

ID=8300695

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ991823A CZ182399A3 (cs) 1997-09-25 1998-09-24 Enzymatický způsob přípravy 7ß-(4-karboxybutanamido)cefalosporanové kyseliny pomocí modifikované oxidázy D-aminokyselin z Trigonopsis variabilis produkované v Escherichia coli

Country Status (17)

Country Link
US (1) US6635458B2 (cs)
EP (1) EP0969088A1 (cs)
JP (1) JP2001506868A (cs)
KR (1) KR20000069110A (cs)
CN (1) CN1246147A (cs)
AU (1) AU9162898A (cs)
CA (1) CA2272354A1 (cs)
CZ (1) CZ182399A3 (cs)
EE (1) EE9900205A (cs)
ES (1) ES2131018B1 (cs)
HU (1) HUP0000797A2 (cs)
IL (1) IL129533A0 (cs)
LT (1) LT4628B (cs)
LV (1) LV12359B (cs)
SK (1) SK64899A3 (cs)
WO (1) WO1999015632A1 (cs)
ZA (1) ZA988754B (cs)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN100342014C (zh) * 2004-04-08 2007-10-10 百瑞全球有限公司 重组d-氨基酸氧化酶
CN1912130B (zh) * 2005-08-08 2011-06-15 百瑞全球有限公司 一种用于制备7-氨基头孢霉烷酸的两步酶法
CN101016540B (zh) * 2006-02-10 2010-04-07 台湾尖端先进生技医药股份有限公司 C-端含有组氨酸标记的hoxb4重组蛋白质的制造方法及用途
RU2412998C1 (ru) * 2009-11-18 2011-02-27 Общество с ограниченной ответственностью "Инновации и высокие технологии МГУ" Мутантная оксидаза d-аминокислот

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2268022B1 (cs) * 1974-04-22 1977-06-24 Rhone Poulenc Ind
JPS62262994A (ja) * 1986-05-12 1987-11-16 Asahi Chem Ind Co Ltd D−アミノ酸オキシダ−ゼ遺伝子
CA1340522C (en) * 1987-03-10 1999-05-04 Heinz Dobeli Fusion proteins containing neighbouring histidines for improved purification
CA2100987C (en) 1992-07-27 1999-06-15 Kaoru Furuya A transformant capable of producing d-amino acid oxidase
US5397653A (en) 1993-04-30 1995-03-14 Westinghouse Electric Corporation Filler wire composition and method of welding turbine component with filter wire composition and its product thereof
ES2109194B1 (es) 1996-04-22 1998-07-16 Antibioticos Sa Un procedimiento para producir la enzima d-aminoacido oxidasa de rhodotorula gracilis en celulas hospedantes.

Also Published As

Publication number Publication date
WO1999015632A1 (es) 1999-04-01
CN1246147A (zh) 2000-03-01
SK64899A3 (en) 2000-05-16
LV12359B (en) 2000-03-20
ES2131018B1 (es) 2000-04-01
HUP0000797A2 (en) 2000-07-28
IL129533A0 (en) 2000-02-29
CA2272354A1 (en) 1999-04-01
LT99051A (en) 1999-10-25
AU9162898A (en) 1999-04-12
ES2131018A1 (es) 1999-07-01
ZA988754B (en) 1999-06-28
LT4628B (lt) 2000-02-25
LV12359A (lv) 1999-10-20
KR20000069110A (ko) 2000-11-25
JP2001506868A (ja) 2001-05-29
US6635458B2 (en) 2003-10-21
EP0969088A1 (en) 2000-01-05
EE9900205A (et) 1999-12-15
US20030119087A1 (en) 2003-06-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Harms et al. S-formylglutathione hydrolase of Paracoccus denitrificans is homologous to human esterase D: a universal pathway for formaldehyde detoxification?
JP3950196B2 (ja) アルコールデヒドロゲナーゼ及びキラルヒドロキシ化合物の酵素的生産へのその使用
KR100506134B1 (ko) 신규한 카르보닐 환원효소 및 이것을 코딩하는 유전자 및 이러한 환원효소 및 유전자 이용방법
JPH0751070A (ja) ニトリラーゼ活性を有するポリペプチド
Morii et al. 3-Ketosteroid-Δ1-dehydrogenase of Rhodococcus rhodochrous: sequencing of the genomic DNA and hyperexpression, purification, and characterization of the recombinant enzyme
Alonso et al. Engineering the D-amino acid oxidase from Trigonopsis variabilis to facilitate its overproduction in Escherichia coli and its downstream processing by tailor-made metal chelate supports
CZ182399A3 (cs) Enzymatický způsob přípravy 7ß-(4-karboxybutanamido)cefalosporanové kyseliny pomocí modifikované oxidázy D-aminokyselin z Trigonopsis variabilis produkované v Escherichia coli
US6187574B1 (en) Process for producing the enzyme D-amino acid oxidase of Rhodotorula gracilis in host cells
JP4307609B2 (ja) コエンザイムq10の製造法
CA2365092A1 (en) Sorbitol dehydrogenase, gene encoding the same and use thereof
EP1553175A1 (en) Cephalosporin C acylase mutants
CA2389789A1 (en) Genes involved in cyclododecanone degradation pathway
JP5230234B2 (ja) 還元酵素及びその利用
JP3486942B2 (ja) 耐熱性エステラーゼ
JP4022784B2 (ja) 新規なヘキソキナーゼ
JP4039037B2 (ja) 還元酵素遺伝子及びその利用
KR20070069196A (ko) 당전이 효소의 효소활성을 향상시키는 방법
JP2729045B2 (ja) サルコシンオキシダーゼおよびその製造法
JPH10248574A (ja) 新規な乳酸酸化酵素
MXPA99004513A (en) ENZYMATIC PROCESS FOR THE PREPARATION OF CEPHALOSPORANIC 7$b(g)-(4-CARBOXYBUTANAMIDE) ACID BY MEANS OF THE MODIFIED ENZYME D-AMINOACID OXIDASE OF TRIGONOPSIS VARIABILIS
JP2001275669A (ja) 新規カタラーゼ遺伝子及び該遺伝子を用いた新規カタラーゼの製造方法
JP4161232B2 (ja) サルコシンオキシダーゼ活性を有する新規なタンパク質およびその製造方法
JPH11225769A (ja) 糖類変換酵素をコードするdna、それを含む組換えdna並びに形質転換体
JPH0779775A (ja) Nad(h)結合型酸化還元不均化酵素およびその遺伝子
KR20100088820A (ko) 신규 나이트릴레이즈 및 이를 이용한 시아노 카르복실산의 생산방법

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic