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CN1440453A - 从体积较大的样品中制备要分析的样品 - Google Patents

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CN1440453A
CN1440453A CN01812039A CN01812039A CN1440453A CN 1440453 A CN1440453 A CN 1440453A CN 01812039 A CN01812039 A CN 01812039A CN 01812039 A CN01812039 A CN 01812039A CN 1440453 A CN1440453 A CN 1440453A
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Abstract

本发明涉及过滤装置的使用，该过滤装置包括室(2)，在室(2)中有许多相互平行排列着的空心纤维(3)，这些纤维的多孔壁(3a)限定了孔(4)，这样所述装置包括内部通路(A)和对应于这些纤维和圆盘分离器之间的有效体积的外部通路(B)；该装置用于处理呈稀释状态的含有多种不同大小的微生物的大体积起始液体样品。本发明的特征是，在进行至少一个浓缩步骤期间，仅需要一个过滤装置，纤维的多孔壁(3a)的原子质量单位阈值是确定的，以留住起始样品中最小的微生物，所述装置以正向模式和间断地使用，从而提供出口液体样品，即浓缩物。

Description

从体积较大的样品中制备要分析的样品
本发明涉及分析存在于液体介质中的污染物的领域，该分析要求对处于稀释状态的、含有大量不同大小的微生物(病毒、细菌、寄生虫)以及各种有机或无机大分子的大体积样品进行处理，以获得呈浓缩状态的、含有实际上相同的相应组分的污染物的小体积最终液体样品。
采用生化或生物分析技术，尤其是免疫检测和分子生物学技术(例如多样品检测)，使得这种污染物(具体是微生物)的富集和小体积分析的要求成为必要。
已知采用例如吸附的方法分离和浓缩微生物，尤其是病毒。除了这些方法不能保证这些微生物的存活力以外，它们还不可能获得与上述分析技术相匹配的体积的样品。
用于收集液体介质中的微生物的其它方法需要过滤方法，并需要对仅仅一种类型的微生物进行分析，但不总会提供要获得的定量结果。
例如，对于细菌和寄生虫的例子，可按照标准化方法的建议，根据种类使用孔径为0.2-1μm的平面薄膜。
FR-B-2693474中描述了一种以切线超滤为基础的技术，该技术以常规的方式使用一种或多种膜，使各种大小的微生物得以分离，而同时确保了这些微生物的存活力。
但是，对于最终液体样品的体积的要求使得该技术不可能用于制备采用生化或生物学分析技术进行分析的样品。
对于微过滤膜的性能，还可从Otaki等〔《水科学技术》(Wat.Sci.Tech.)，37，10，107-116，1998〕的方法得到证实，该方法是以连续和切线模式在空心纤维上使用超滤装置，通过从供应源(分别为滤液和浓缩物)抽取样品，周期性地对抽取物进行分析。
切线式过滤和超滤方法的采用要求存在一种线路，该线路使全部或一些浓缩物再环流，以便在膜上维持一种切向速度，使悬浮液中的颗粒被过滤，而同时避免所使用的膜发生快速的堵塞〔《微过滤和超滤——原理和应用》(Microfiltration andUltrafiltration-Principles and Applications)，Leos J.Zwman，Andrew L.Zydney，Marcel Dekker，Inc.，纽约—巴塞尔—香港，1996〕。
过滤液体的再循环使过滤时间延长，而且还会产生额外的体积，该体积中的一些浓缩物和微生物又不能以不影响最终体积的方式收集。
由于管道系统的体积以及洗脱液的体积而产生的大体积浓缩物需要抽提可能仍留在壁上的微生物，过滤时间的延长也使得这些技术不适合于要求进行小体积分析以及迅速获得结果的分析方法，例如，答复有关饮用水或人用的其它任何液体的污染的询问。
本发明的目的是使用一种过滤装置，使其可能在有限长的时间内从大且预定的体积的起始液体样品中获得用于分析的样品，该用于分析的样品的体积小到足以采用生化的或生物学的分析技术进行分析(例如多样品检测)，尤其是免疫检测和分子生物学技术，而同时又能确保这些微生物的存活力。
本发明的过滤装置的基础是以正向模式在空心纤维上进行的超滤技术。
与切向模式相对，正向模式是指使用上述过滤装置使起始液体样品以单通路的方式通过，而没有至少一些相同的样品循环回到上述过滤装置的入口。
采用这种正向模式超滤方法使获得小体积浓缩物成为可能，可以在1小时的时间范围内以单通路的方式浓缩样品，而同时确保微生物的存活力、多次收集以及100％级别的得率。
“多次收集”指从最终样品中收集实际上存在于起始样品中的所有不同类型或种类的微生物的可能性。
由于在如其它装置上存在辅助管道系统(如循环管道系统)和沿着空心纤维总长度的孔隙度的可靠性而不存在称为死体积的体积的缘故，故获得了这些高得率。
在阅读结合附图进行描述的说明书之后，将会理解所采用的过滤装置的特征，其中，图1以纵剖面示意性地描述本发明的过滤装置，图2描述了相同过滤装置横截面的放大图。纤维的尺寸被故意放大，以利于理解本发明。
该过滤装置包括室(2)，在室(2)中有许多相互平行排列着的空心纤维(3)，这些纤维的多孔壁(3a)限定了孔(4)，这样所述装置包括由所述各个空心纤维的许多平行的孔(4)组成的内部通路(A)和对应于这些纤维和该室之间的有效体积的外部通路(B)。
根据本发明，这个装置用于处理呈稀释状态的、含有多种不同大小的微生物的大体积起始液体样品，以获得呈浓缩状态的、含有相同组成的微生物的小体积最终液体样品。
在使用这种装置时，要进行至少一个浓缩步骤，其中：
a)采用单过滤装置；
b)以正向模式使用所述过滤装置；
c)确定纤维的多孔壁(3a)的截留阈值，以留住起始样品中尺寸最小的微生物；并间断地进行以下步骤：
d)在过滤阶段，通过过滤装置的通路(A，B)导入所有的起始液体样品，通过该过滤装置的其它通路(B，A)移出滤液，浓缩物在导入液体样品的通路中积聚；
e)在收集阶段，在使所有的样品通过后，起始液体样品在所述过滤装置(1)中从所述通路到所述其它通路的流通停止，从浓缩物获得出口液体样品。
采用重力作用的简单方法或者使用压缩气体或通过物理搅拌所述过滤装置，可收集由浓缩物形成的出口液体样品，但也可使用任何适当的物质进行洗脱，从而进行收集，如使用PBS盐水溶液(如，120mmol NaCl，2.7mmol KCl，10mmolNaH2PO4)的微生物例子中，该溶液中可能含有去污剂TWEEN 20和或表面活性剂BSA(牛血清白蛋白)。
根据另一实施例，对由浓缩物形成的出口液体样品进行第二个浓缩步骤，在此第二浓缩阶段中，该出口液体样品为起始液体样品。
空心纤维的壁(3a)可由能制造确定的孔隙度的空心纤维的任何材料制成，如有机膜，如乙酸纤维素、乙基纤维素、聚醚砜或聚丙烯腈，或者是无机膜，如陶瓷。
确定这些纤维的多孔壁(3a)的截留阈值，以留住起始样品中尺寸最小的微生物。因此，所使用的纤维，对于超滤而言，其孔隙度为10-100nm，这样浓缩物中将包含尺寸超过病毒的所有微生物，其中也包括病毒。但是，如果对所寻找的颗粒的尺寸有特殊要求，尤其是在颗粒小于10nm的情况中，则可使用用于纳米级过滤的孔隙度为1-10nm的纤维。
根据一个实施例，导入起始样品的通路是内部通路(A)，抽提出口样品的通路是外部通路(B)，这样微生物在纤维内积聚，形成浓缩物，而滤液沿着纤维和室(B)之间的有效体积中的纤维外部流过。
由阀门(C)将由体积为如10-100升的收回样品的水溶液组成的要处理的样品导入组件的空心纤维中，由蠕动式泵或者其它任何装置〔如由滤液一侧阀门(E)产生的低压〕的吸入作用而带走，而阀门(D)和阀门(F)仍保持关闭。
当所有要处理的体积通过该组件时，停止泵的运转，关闭阀门(C)，使其与样品源分离。
然后如通过阀门(F)给该组件施加大气压〔如打开阀门(E)〕，然后增加压力，例如增加到0.5bar的压缩空气，然后再次关闭阀门(E)，从而排空该室，移出滤液。
然后打开阀门(C)，在重力作用下从阀门(D)收集浓缩物，以关闭阀门(C)和将压缩空气注入纤维中来终止收集。
根据另一实施例，导入起始样品的通路是外部通路(B)，抽提出口样品的通路是内部通路(A)，这样微生物在纤维和室之间的有效体积中的纤维外部积聚，形成浓缩物，滤液则沿着纤维的内部流过而被去除。
通过阀门(E)将由体积为如10-100升的收回样品的水溶液组成的要处理的样品导入室中，通过施加例如由蠕动式泵或其它任何装置进行的吸入作用产生的低压而带走，这种低压是由如阀门(D)施加在空心纤维内的滤液一侧上，而阀门(C)仍保持关闭。
当所有要处理的体积通过该组件时，保持该泵运转，使阀门(E)与样品源断开，以减少该组件的室中含有的浓缩物的体积，这种减少可以是完全的或者是部分的减少。
当达到所需浓缩物的浓度水平时，使泵停止运转，将阀门(D)和其它所有的阀门一起关闭。
可将洗脱液导入室中，然后搅拌该组件，之后通过阀门(F)收集浓缩物或洗脱物，也可以从阀门(E)注入压缩空气而终止收集。
为了限制吸附现象，可预先用如TWEEN型去污剂和/或BSA(牛血清白蛋白)型表面活性剂处理纤维。
根据一实施例，如果有可能分析液体的悬浮物含量的话，那么进行过滤阶段(C)，起始液体样品无需预过滤。
在通过内部通路(A)导入的方法中，所获得的浓缩物的体积与过滤装置的尺寸直接相关；对于通过外部通路(B)导入的方法，所述浓缩物的体积并不依赖于过滤装置的尺寸，而依赖于室中剩下的体积和/或导入该室中的洗脱放的体积。
限定过滤装置的大小，以使起始样品的体积和所获得的浓缩物的体积之比至少等于50，较佳在150-500之间，过滤时间在20分钟到一小时之间。
如果可以如此应用，则该组件可在反洗或用去污染剂处理后再次使用，例如使用50ppm的氯溶液以及可能的酶处理。
根据导入样品的通路是内部通路(A)还是外部通路(B)，可采用两种反洗方法，以与用于分析的样品导入的流向相对的方向导入洗涤水。
当样品是通过阀门(C)由内部通路(A)导入时，可使用传送装置〔如放置于水源和所述阀门之间的蠕动式泵〕由阀门(F)导入自来水，进行反洗，关闭阀门(D)，而阀门(E)暂时保持开启。
当室被充满时，关闭阀门(E)，压迫水沿着纤维的内侧流过，然后从阀门(C)或(D)流出。
当导入样品的通路是外部通路(B)时，则通过阀门(D)导入自来水进行反洗，而关闭阀门(E)和(F)。
当纤维中充满水时，即不再看到起泡从阀门(C)中逸出时，关闭此阀门，强迫水通过室中的纤维的外周，以通过阀门(E)或阀门(F)流出。
也可单次使用该组件，可进行如γ射线灭菌处理对其进行初始的灭菌。
在另一实施例中，可使用无密封的组件，因为这可以避免外部污染的任何风险(组件外部的流体，如周围的空气)；这也可避免从浓缩物穿过污染物的密封到达滤液的任何通道。如图1所示，将空心纤维的两端埋植在树脂中可以实现密封，从而可防止污染物的任何泄漏，有些并不是具有密封的系统中发生的情况。
在另一实施例中，为了获得与所采用的分析方法向适应的浓缩物的体积，可对所获得的浓缩物进行第二次浓缩步骤。
在这个第二次浓缩步骤中，所使用的过滤装置可以与第一次步骤所使用的装置相同，但其体积较小，这个体积是根据起始体积和所需的浓缩物体积之间的比值计算得到的。
由于所处理的体积是一百毫升级别的，所以可使用已知的装置，如采用离心分离技术的过滤装置，如Millipore销售的名为Centricon-Plus 80的装置。
这些过滤装置是被加工成所需尺寸，并且处理进行的时间长度是确定的，这样起始样品的体积和最终样品的体积之间的比值至少等于5000，较佳在15000到100000之间。
因此，使用本发明的过滤装置具有以下的优点：可进行多次收集，每次收集存在于用于分析的大体积液体中的微生物的得率接近100％，并确保由此收集得到的微生物的存活力，所进行的多次收集的时间至多为1小时，这适合于如连续的健康监测的需求，并且获得的用于分析的浓缩物的体积可用于生化或生物学分析技术，尤其是免疫检测和分子生物学技术。
下面的实施例非限制性地阐述了本发明过滤装置的使用。实施例1
装置和方法：
使用的过滤装置包括1m2的过滤面积，该面积由空心的乙酸纤维素纤维构成；
通过内部通路导入由掺入MS2噬菌体的50升的自来水组成的样品；
在重力和压力作用下收集浓缩物；
采用溶菌斑技术，定量(在连结十倍稀释样品后)或定性(在由MS-2敏感的细菌培养物的感染进行生物学扩增后)测量噬菌体的存活力和感染性，从而分析该浓缩物。
步骤：
先对接种物进行超声波处理，然后将其加入从水箱中取出的自来水中，以解集病毒颗粒。
加入20mg/l的硫代硫酸钠〔STS(Merck 106516)，即在50升中含有1g的量〕之后，在样品中加入MS2。
进行第一次过滤循环，然后排空该室，并将其密封，放置在空气压下(0.5b)。接着，在重力作用下收集浓缩物。然后还将压缩空气(0.5b)注入纤维中，以收集保留在纤维中的最后毫升级的浓缩物。
先对浓缩物进行超声波处理，然后采用溶菌斑技术使用大肠杆菌(E.coli)Hfr敏感株进行计数。接种物的制备：
MS2稀释度  MS2稀释体积   SPW  最终滴度(PFU/ml)
 原液     -   -  2.108
 I107  500μl原液  9.5ml  107
 I106  I107的1ml  9ml  106
 I105  I106的1ml  9ml  105
 I104  I105的1ml  9ml  104
 I103  I104的1ml  9ml  103
 I100  I103的1ml  9ml  100
 I10  I100的1ml  9ml  10
 I1  I10的1ml  9ml  1
SPW＝盐水蛋白胨水；PFU＝噬斑形成单位(感染病毒单位)；I10x＝含有10xPFU/ml的接种物。
过滤：
过滤50升的STS中和的自来水，排空该室后，收集到浓缩物，该浓缩物构成空白对照(即空白对照1，B1)。
在反洗以洗净膜后，过滤50升STS中和的自来水，然后，在排空该室后，收集浓缩物，该浓缩物为空白对照2(B2)。
在反洗以洗净膜后，用STS中和50升自来水。
等待15分钟后，取出1升水稀释接种物供水箱用。
使用1升的水稀释1ml的I10(10PFU)。
在一个过滤循环后，收集浓缩物(C10)。
进行反洗。
在这个实施例中，用至少20升的水进行反洗。
然后重复相同的步骤，加入1ml的I104(104PFU)。
取出过滤期间的滤液样品，得到样品(F)。过滤结束时，收集浓缩物(C104)。
将1ml的I104(104PFU)加到100ml的B1组分中，得到掺入的空白对照样品(BD104)。
分析：
——I100、I10、I1、C104、BD104的定量分析
将各份纯样品和接种物的等分试样加到试管中，进行超声波处理，然后稀释。
采用溶菌斑技术给感染颗粒计数，步骤如下：
将2ml熔融(44℃)的软顶层琼脂(0.95％)与1ml的病毒悬浮液和0.3ml的指数生长期的大肠杆菌Hfr培养物混合。快速和轻微搅拌该混合物，然后将其倒入培养皿中的硬营养琼脂的整个表面上。37℃培育后，在第二天读取溶菌斑。所得结果：
  稀释度                计数   平均值   标准偏差   总平均值     备注
   I100I10I1     6191   7871   74170   7580   72.010.30.5   6.54.00.5     74.5
   C104纯C10410-1     141   133   151  *60   14.01.3   0.81.1     13.9  *6不考虑：读数可疑
   BD10410-1BD10410-2     6113   8119   6014   7818   70.016.0   9.62.5     78.2
例如，C104 10-1表示从掺入104PFU的样品中获得的浓缩物的1/10稀释度。
  体积(ml)   期望滴度(PFU/ml)   实际滴度(PFU/ml)   期望数量(PFU)   实际数量(PFU)   实际值/期望值
  I104   -   1.E+04   7.45E+03      -      -   74.5％
  C104   325   31   14     1.E+04     4506   45.1％
  BD104   100   1.E+02   78     1.E+04     7818   78.2％
  C＝   45.1％
  C/BD＝   57.6％
  C/I＝   60.4％
定性测定：检测I107(阳性对照＝T+)、F(1份50ml的样品)、B2(6×50ml+剩余物，以涵盖整个样品)、C10(6×50ml+剩余物，以涵盖整个样品)上噬菌体的存在或缺乏。
将1体积的样品与1体积两倍浓缩的营养肉汤混合。37℃培育30分钟后，用指数生长期的大肠杆菌Hfr培养液接种。37℃过夜培育后(病毒繁殖期)，在培养皿中的营养琼脂上平板培养大肠杆菌Hfr的指数生长期培养液，并使其干燥。沉积出病毒扩增肉汤，使其在37℃至少培育6小时。
在肉汤沉积点上铺满或多或少的溶菌斑的存在揭示了感染的颗粒的存在。
在感染颗粒不存在的例子中，大肠杆菌Hfr的生长在沉积的位置上产生厚厚一层的细胞。
总体积  样品体积(ml)      PFU期望的/样品 定性测试    部分评估(PFU/体积)     外推(PFU/PFU)
B2     325     25     0                 N     0     na
    50     0  N  N  N  N  N  N     0     na
F     50     50     0                 N     0     na
C10     302     6     1                 N     0/6ml     4-6/10
    50     1.5   P   P   P   P   N   N     4-6/300ml
T+     na     na     na   P   P   P   P   P   P     Na     na
N：阴性；P：阳性；na：不适用
结果的解释：
空白对照(B2)含有未感染的噬菌体，因此该组件之前并未受到MS2的污染，之后进行的10PFU的浓缩是有效的。
浓缩104PFU期间采集的滤液样品(50ml)含有不可检测的MS2，因此膜有效地保留了这种直径为25nm的病毒。
由于在C10中检测到4个感染单位，所以其检测阈值低于10PFU。
因为测量涉及噬菌体的感染性，所以在没有任何具体的收集方法的情况下(没有搅拌和洗脱)加入104PFU时实际的得率(即涉及接种物的测量滴度：C/I)为60％，并且考虑到存活力。
C/BD的比值非常接近该实际得率，这证明由于浓缩的缘故而没有干扰。实施例2：装置和方法：
使用包括0.6m2的过滤面积的过滤装置，该面积由乙酸纤维素空心纤维制成。
样品由加了寄生虫小隐孢子虫(Cryptosporidium parvum)的卵母细胞的50升自来水组成。它由外部通路导入。
在重力作用和压力下搅拌和收集浓缩物。
采用IMS-IFA(免疫磁性分离-免疫荧光检测技术，ImmunoMagneticSeparation-ImmunoFluorescence Assay技术，参见美国环境保护机构的标准方法1622——EPA-EPA-821-R-99-001)，使用Dynal抗隐孢子虫属Dynabeads试剂盒(参考号730.01，与卵母细胞的完整性有关)进行分析。
步骤：
从水箱中取得自来水后，加入20mg/l的硫代硫酸钠(STS，Merck 106516)，即1g/50升；
在样品中加入小隐孢子虫(C.parvum)的卵母细胞；
采用外部通路方法进行过滤；
对室进行部分排空后，搅拌该组件，以依靠留在室中的液体收集纤维外表面上所有的卵母细胞，在重力作用下收集浓缩物，然后将压缩空气(0.5b)注入室中收集。
采用IMS-IFA给卵母细胞的原液和浓缩物的原液计数。
过滤：
方法：
过滤50升的STS中和的自来水，然后排空，收集浓缩物(空白对照，B)，此过滤结束后进行反洗，以清洁膜；
然后用STS中和50升的自来水，之后加入I10稀释度的卵母细胞原液(即约10个卵母细胞)。
过滤后进行排空，然后收集浓缩物(C10)；
此过滤结束后用至少10升水反洗。
然后重复相同的步骤，加入I100(大约100个卵母细胞)，得到浓缩物C100，然后加入I1000(大约1000个卵母细胞)，得到浓缩物C1000。分析：—采用IMS/IFA进行I10、I100、I1000、B、C10、C100和C1000计数。结果：
        接种物         浓缩物     得率
     -     -     B     0      -
    I10     4     C10     15     ≈100％
    I100     43     C100     57     ≈100％
    I1000     335     C1000     236     70％
不应对高于测量接种物所得的值的C10和C100的结果有多大的惊讶：在显微镜下计算卵母细胞数量的样品具有波动，与在计数为1以上、且相同的样品被倍增的情况下所看到的一样。这种现象在卵母细胞稀少时更显著。
因此，对于C10和C100，在过滤恒定后必须考虑放大的倍数。
对于C1000，也可以谈到得率。
结果的解释：
采用外部通路进行的过滤方法对10个或10个以下的卵母细胞具有敏感性。
对于1000个卵母细胞的接种，所得的得率是70％，这个结果没有最佳化。实施例3：
除了过滤装置外，本实施例中的其它步骤和方法与实施例1中的相同。
使用由乙酸纤维素空心纤维制成的过滤面积为0.6m2的过滤装置过滤。
该样品由掺入MS2噬菌体的50升自来水组成；通过内部通路(A)导入。
在重力作用下和压力下收集浓缩物。
仅产生一个空白对照(B1)，连续加入1、10和100PFU。
如实施例1，采用溶菌斑技术进行分析。
根据下面所述的步骤进行过滤从前述过滤步骤中得到的浓缩物的第二步。
将空白对照浓缩物(B1)和各个噬菌体浓缩物(C11、C110、C1100)(每份大约230ml)等分成3份相同的试样(70-80ml)，以用于在3个市售的Centricon-Plus 80组件(Millipore，参考号UFC5LGC08)中进行第二次浓缩。
混合由此获得的各加入物的3份浓缩物C2(＜1ml)，然后采用溶菌斑技术定量分析滴度。对从浓缩物B1得到的3份空白对照浓缩物(B2)采用相同的步骤。
结果：
—接种物的滴度：I100＝144PFU(与实施例1一样，是总的平均值)；
—在第二次过滤后获得的浓缩物的滴度：
  滴度读数(PFU)     接种物(PFU)
 B2     0     0
 C21     2     1.44
 C210     8     14.4
 C2100     61     144
例如，C21表示加了1PFU的初始样品在进行第二步浓缩结束时所获得的3份浓缩物的混合物。
结果的解释：
通过这两个浓缩步骤，将样品的体积从50升减少到3ml以下，其敏感性接近1PFU。
当然，本发明并不限于所述和/或叙述的示范性例子，而包括所有的属于附加的权利要求的范围之内的可交换的形式(尤其关于用于浓缩样品的膜的性质和特征方面)。实施例4：
装置和方法：
使用包括第一过滤阶段中使用的由乙酸纤维素空心纤维制成的过滤面积为0.12m2的过滤装置，和用于第二过滤阶段的Vivacel170消耗品(SartoriusVivasciences，参考号VS6002)。
样品由同时掺入300个寄生虫小隐孢子虫的卵母细胞和300个CFU的大肠杆菌的30升自来水组成。
浓缩：
从水箱中取得水后，加入20mg/l的硫代硫酸钠(Merck 106516)，即0.6g/301；
将小隐孢子虫的卵母细胞和大肠杆菌细胞加到样品中。
阶段1：从30升到70ml
采用外部通路模式进行过滤。
在对室进行部分排空和搅拌该组件后，通过将压缩空气(0.5b)注射到该室中，收集含有上述微生物的滞留物，大约有35ml。
通过注射入密闭的内部腔室而将未加入微生物的中和化自来水(大约35ml)由纤维再导入室中，然后如先前进行搅拌和收集。
两份收集的样品的组合(即70ml)构成滞留物R1。
阶段2：从70ml到300微升
如供应商所示，在Vivacel170消耗品中浓缩该滞留物R1，25℃时以1000g的离心力离心10分钟。为了促进收集，在过滤室中的浓缩物中加入1ml的滤液，然后使过滤元件以高速短暂地“涡旋”(vortexed)。在和先前相同的条件下进行进一步的离心操作，获得最大体积为300微升的再浓缩物。这就是最终的滞留物R2。
平行产生三份滞留物R2，以获得三个结果。
分析：
对小隐孢子虫的研究：
先后采用IMS(免疫磁性分离-Dynal抗隐孢子虫属Dynabeads试剂盒，参考号730.01)和IFA(免疫荧光检测)计算卵母细胞的原液和滞留物的馏分(参见方法1622)。
根据下述步骤采用IMS(同上)和PCR先后分析滞留物的馏分：
—从IMS中获取珠/卵母细胞复合物，放到10μl的超纯无菌水+10μl的50％Chelex-100的水溶液中；
—进行5组热冲击：95℃2分钟/-80℃2分钟；
—离心沉淀浓缩物；
—加入30μl的扩增混合物(PCR缓冲液，MgCl2：1.5mM，牛血清白蛋白：10pg/μl，dNTP：200pmol/μl，Taq DNA聚合酶：0.5U，引物BB-3和BB-4：各为1pmol/μl，加入超纯水，使总体积达到50μl)。
Balatbat A.B.等在《临床微生物杂志》(J.Clin.Microbiol.)，1996，34，1769-1772中描述了引物BB-3和BB-4。
—采用下述PCR程序：94℃5分钟，共40轮循环，其中包括：94℃30秒、60℃45秒、72℃1分钟；然后为72℃5分钟。
—将10μlPCR反应产物移到含有2％琼脂糖且存在溴乙锭的电泳凝胶上进行电泳。
对大肠杆菌的研究：
根据IDEXX供应商的建议，采用“Colilert 18h’技术计算大肠杆菌培养液和滞留物的馏分的数量。此方法是以大肠杆菌的β-葡糖醛酸酶活性的检测为基础。
对编码β-葡糖醛酸酶的uidA基因进行嵌套式PCR，从而分析滞留物的馏分，其步骤如下：
—在膜(Millipore，直径为13mm，孔隙度为0.2μm，Durapore GVWP013 00)上过滤浓缩物馏分；
—将膜插入0.2ml PCR管中；
—热冲击式裂解细胞(85℃1分钟/冰中1分钟，共6轮)；
—使用引物U270和L1054在裂解试管中进行第一次扩增
  U270：5′-ggT CAC TCA TTA Cgg CAA Ag-3′
  L1054：5′-TTA Aag CCg ACA gCA gCA gT-3′
将扩增混合物(150μl)放在含有膜的PCR管中：PCR缓冲液，MgCl2：1.5mM，dNTP：200pmol/μl，Taq DNA聚合酶：1.5U，引物：各为1pmol/μl，加入超纯水，使总体积达到150μl。
PCR程序：95℃10分钟，共30轮，其中包括：94℃1分钟、60℃1分钟；然后维持在4℃。
—在超纯水中稀释所得的扩增子100倍，使用1μl此稀释液作为第二次扩增(即嵌套式PCR)的底物，引物为Val754和Val900：
Val 754：5′-AAA ACg gCA AgA AAA AgC Ag-3′
Val 900：5′-Acg CgT ggT TAC AgT CTT gCg-3′
将扩增混合物(50μl)放到新的试管中：PCR缓冲液，MgCl2：1.5mM，dNTP：200pmol/μl，Taq DNA聚合酶：0.5U，引物：各为1pmol/μl，加入超纯水，使总体积达到50μl。
PCR程序：同上。
—取出10μlPCR反应产物，将其加到含有2％琼脂糖且存在溴乙锭的电泳凝胶上进行电泳。
滞留物R2的处理：
将各滞留物分别分成100μl的3组馏分，分别为R2a、R2b和R2c。
再将馏分R2a分成两份：采用“Colilert 18h’方法处理其中的50μl(用于大肠杆菌计数)，另50μl由IMS-IFA处理(用于小隐孢子虫计数)。
采用uidA嵌套式PCR分析馏分R2b(用于大肠杆菌的分子检测)，但在进行此分析前，先将其等分成2份，其中50μl直接用于分析，而另50μl则加入大肠杆菌基因组DNA(抑制试验)。
采用IMS-PCR分析馏分R2c(用于小隐孢子虫的分子检测)，但在进行此分析前，先将其等分成2份，其中50μl直接用于分析，而另50μl则加入小隐孢子虫基因组DNA(抑制试验)。
各PCR有各自的阴性对照(无靶DNA和无滞留物)和阳性对照(具有靶DNA但没有滞留物)。
在溴乙锭存在的琼脂糖凝胶上进行电泳，观察所有的扩增子。
结果：
每个点重复进行3次，重复进行得到的结果在下表中用“/”分开。
所分析的馏分的理论计数 结果(计数或凝胶上的条带)
大肠杆菌计数(Colilert)     50     0/1/2
E.coli uidA嵌套式PCR检测     50     +/+/+
uidA PCR抑制试验     50     +/+/+
uidA PCR阳性对照     50     +
uidA PCR阴性对照     50     -
小隐孢子虫计数(IMS-IFA)     50     1/11/9
小隐孢子虫IMS-PCR检测     50     +/+/+
小隐孢子虫IMS-PCR抑制试验     50     +/+/+
小隐孢子虫IMS-PCR阳性对照     50     +
小隐孢子虫IMS-PCR阴性对照     50     -
结果的解释：
采用Colilert检测到浓缩物中大肠杆菌细胞数量少乃至死亡率可解释为在浓缩过程中细菌所经受的应力所致，因为这个试验是以酶活性的检测为基础。
uidA PCR对于三次重复都是阳性的，这表明该方法对于总的50个细菌/5升(即每升5个细菌)具有可重复的敏感性。
从逻辑上说，将细菌DNA加到馏分中作为抑制对照也获得阳性反应。在隐孢子虫属的例子中，表型方法(IMS-IFA)获得比期望的理论值低得多的计数。同样，这也可能是一些卵母细胞在浓缩过程中受到不利的影响的缘故，而非这些卵母细胞保留在过滤装置中的缘故，因为基于分子生物学的其它试验表明，在10升中可重复收集1个卵母细胞(在本专利中未公开数据)。
顺便说一下，IMS-PCR对于三次重复都是阳性的，它获得50个卵母细胞/5升的最小敏感性，即5个卵母细胞/升。
结论：
本实施例阐明了采用分子生物学方法检测一份且相同的掺入水样品中的细菌和寄生虫的两步浓缩装置的有效性。

Claims (17)

1.一种过滤装置的用途，该过滤装置包括室(2)，在室(2)中有许多相互平行排列着的空心纤维(3)，这些纤维的多孔壁(3a)限定了孔(4)，这样，所述装置包括由所述各个空心纤维的许多平行的孔(4)组成的内部通路(A)和对应于这些纤维和该室之间的有效体积的外部通路(B)；该装置用于处理呈稀释状态的、含有多种不同大小的微生物的大体积起始液体样品，以获得呈浓缩状态的、含有相同的相应组分的微生物的小体积最终液体样品；在使用这种装置时，要进行至少一个浓缩步骤，其中：
a)采用单过滤装置；
b)以正向模式使用所述过滤装置；
c)确定纤维的多孔壁(3a)的截留阈值，以留住起始样品中尺寸最小的微生物；并间断地进行以下步骤：
d)在过滤阶段，通过过滤装置的通路(A，B)导入所有的起始液体样品，从该过滤装置的其它通路(B，A)移出滤液，浓缩物在导入液体样品的所述通路中积聚；
e)在收集阶段，在使所有的样品通过后，起始液体样品在所述过滤装置(1)中从所述通路到所述其它通路的流通停止，获得出口液体样品，即浓缩物。
2.如权利要求1所述的用途，其特征在于，进行所述过滤阶段(d)时没有预过滤所述起始液体样品。
3.如权利要求1或2所述的用途，其特征在于，所述过滤装置是超滤装置。
4.如权利要求1-3中任一项所述的用途，其特征在于，所述过滤装置的纤维由有机膜(如由乙酸纤维素、乙基纤维素、聚醚砜或聚丙烯腈制成)组成，或者由无机膜如陶瓷组成。
5.如权利要求1-4中任一项所述的用途，其特征在于，所述过滤装置的空心纤维的两端埋植于树脂中，以防止污染物在内部通路(A)和外部通路(B)之间以及该过滤装置和外部之间的任何通过。
6.如权利要求1-5中任一项所述的用途，其特征在于，所述过滤装置的大小确定，过滤阶段的时间长短确定，这样起始样品与最终样品之间的体积比值至少等于50，较佳在150-500之间。
7.如权利要求1-6中任一项所述的用途，其特征在于，导入起始样品的通路是内部通路(A)，提取出口样品的通路是外部通路(B)。
8.如权利要求1-6中任一项所述的用途，其特征在于，导入起始样品的通路是外部通路(B)，提取出口样品的通路是内部通路(A)。
9.如权利要求7所述的用途，其特征在于，在过滤阶段d)和收集阶段e)之间，外部通路是空的，并且有可能用空气增压。
10.如权利要求7所述的用途，其特征在于，在浓缩物的自流作用下进行收集阶段(e)，和/或通过使增压空气进入内部通路而进行收集阶段(e)。
11.如权利要求7所述的用途，其特征在于，在进行过滤阶段(d)期间，通过将起始液体样品传送到内部通路的入口和/或在所述外部通路的出口处抽吸，使该样品环流通过该内部通路。
12.如权利要求8所述的用途，其特征在于，在过滤阶段(d)和收集阶段(e)之间，外部通路被部分或完全排空。
13.如权利要求12所述的用途，其特征在于，通过洗脱外部通路中的浓缩物而获得最终液体样品。
14.如权利要求1-13中任一项所述的用途，其特征在于，在反洗阶段，将可能没有微生物的液体从所述通路环流通过所述其它通路。
15.如权利要求1-14中任一项所述的用途，其特征在于，进行至少两步连续的浓缩步骤，这两个步骤使用权利要求1所述的浓缩装置进行，在第一次浓缩步骤结束时获得的浓缩物构成第二次浓缩步骤的起始液体样品。
16.如权利要求1-14中任一项所述的用途，其特征在于，对一份液体样品进行至少两次连续的处理，至少一个这样的处理是权利要求1中所述的浓缩步骤，第一次处理结束时获得的浓缩物构成第二次处理的起始液体样品。
17.如权利要求15或16所述的用途，其特征在于，所述过滤装置被加工成所需尺寸，所述处理进行的时间长度是确定的，这样，起始样品的体积与最终样品的体积比值至少等于5000，较佳在15000-100000之间。
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