CN116769792B - 一种毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12及其应用,所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12具有如SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列。本发明首次提供了调控茎秆伸长相关的毛竹PheLBD12基因及其编码蛋白与应用。通过农杆菌介导的水稻愈伤组织将PheLBD12基因过表达载体转入野生型水稻中,结果显示过表达株系与野生型株系相比,其株高发生了明显的改变。本发明为揭示毛竹茎秆伸长的调控机制提供新的基因资源和育种资源。
Description
技术领域
本发明涉及植物分子生物学技术领域,具体涉及一种毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12及其应用。
背景技术
竹子作为世界上重要的非木材产品,以其独特快速生长模式而备受研究者的关注。之前研究者们对竹类植物的高生长研究主要集中在竹子高生长节律,竹笋细胞结构及生理生化变化和激素调控等方面。竹子的高生长一般遵循“慢-快-慢-停”的生长节律。组织解剖观察表明,竹子茎秆的快速生长是顶端分生组织和每节的居间分生组织共同作用的结果,细胞分裂是节间伸长的基础,细胞伸长是节间伸长的主要原因。蛋白质和糖类是竹子高生长过程中细胞的分化分裂、伸长和成熟所需要的重要营养物和能量。植物激素在植物生长过程中起着重要作用,植物激素的协同调控作用对竹笋的快速生长至关重要。竹子生长速率与赤霉素和生长素含量呈正相关,节间伸长时细胞分裂速率与细胞分裂素浓度呈显著正相关,与脱落酸浓度呈负相关。
随着对竹子高生长研究的深入及组学的发展,许多和竹子高生长相关的功能基因被发现,它们通过调控细胞的分裂与分化、伸长和成熟,参与植物激素的合成与降解等,从而影响竹子的高生长过程。绿竹中一类C2C2型锌指蛋白BohLOL1,在各种竹笋组织中有差异表达,且随着竹秆高生长的过程中,该基因在竹笋中也会上调表达,表明BohLOL1可能与竹子高生长有关。雷竹中SINAT蛋白PpSINA,为拟南芥SINAT5同源基因。PpSINA在竹笋所有器官中表达,且在鞭芽中的表达显著高于笋芽和竹笋,鞭芽是竹笋中生长素合成的主要部位。因此推断PpSINA可能通过参与生长素信号转导来调控竹笋的生长发育。毛竹中AUX/IAA家族的PheIAA1、PheIAA2和PheIAA3在竹笋的各个组织部位都有表达,且PheIAA1的表达量在整个竹笋生长过程中呈上升趋势;PheIAA2的表达量在竹笋发育的末期达到最大值;而PheIAA3的表达量在随着笋的生长发育而下降,说明这三个基因可能参与了毛竹笋快速生长调控。此外,毛竹中SAUR(small auxin up RNA)蛋白PheSAUR,在竹笋各部位都表达,基部的表达量变化不大,中部和顶部表达量高,尤其是在3-12m高度的竹笋中部有最高表达量,说明PheSAUR可能参与毛竹的快速生长过程,尤其在节间的伸长中发挥重要作用。然而,这些结果多是基因表达调控的相关研究,而关于毛竹高生长中功能基因调控的分子机制研究仍少之又少。
发明内容
本发明的目的在于提供一种可以改变水稻株高的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12及其应用。
为了解决现有技术的问题,本发明提供了如下技术方案:本发明的一种毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12,所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12具有如SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列。
本发明所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12编码的蛋白质,为如下(1)或(2)所述的蛋白质:
(1)由序列表中的SEQ ID No.2氨基酸序列组成的蛋白质;
(2)将序列表中的SEQ ID No.2氨基酸残基序列经过一至十个氨基酸残基的取代和/或添加且具有毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12功能由(1)衍生的蛋白质。
本发明含有所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12的植物过量表达载体或重组菌。
进一步地,所述的植物过量表达载体为多克隆位点区域依次连接有35S启动子、所述的PheLBD12基因和终止子的pCAMBIA1301a-PheLBD12的植物表达载体。
本发明含有所述的植物过量表达载体的宿主菌。
本发明的一种所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12在调节茎秆伸长中的应用。
本发明的用于克隆所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12的引物对,所述的引物对包括上游引物和下游引物,所述的上游引物具有如SEQ ID No.3所示的核苷酸序列,所述的下游引物具有如SEQ ID No.4所示的核苷酸序列。
本发明的一种遗传工程化的宿主细胞,所述的宿主细胞含有所述的植物过量表达载体,或基因组中整合有外源的所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12序列。
有益效果:本发明首次提供了调控茎秆伸长相关的毛竹PheLBD12基因及其编码蛋白与应用。通过农杆菌介导的水稻愈伤组织法将PheLBD12基因过表达载体转入野生型水稻中,结果显示过表达株系与野生型株系相比,其株高发生了明显的改变。该结果为研究毛竹茎秆伸长提供理论基础。
附图说明
图1为本发明的PheLBD12基因所编码的蛋白的结构域划分图。
图2为本发明的PheLBD12基因不同组织表达模式分析结果柱状图。
图3为本发明的过表达PheLBD12转基因水稻阳性苗的筛选图,图3A为本发明的目的基因PCR检测。N:阴性对照;P:阳性对照:OE1-OE7:不同的转基因株系;图3B为本发明的不同的株系叶片GUS染色。
图4为本发明的过表达PheLBD12转基因水稻表型分析图;图4A-图4B为本发明的野生型水稻与过表达PheLBD12转基因水稻在生长期的株高表型分析图;图4C-图4D为本发明的野生型水稻与过表达PheLBD12转基因水稻的节间长度统计分析图。
具体实施方式
下面对本发明的实施例作详细说明,本实施例在以本发明技术方案为前提下进行实施,给出了详细的实施方式和具体的操作过程,但本发明的保护范围不限于下述的实施例。
实施例1
本发明的一种毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12,所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12具有如SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列。
本发明所述的毛竹叶片形状相关基因PheLBD12编码的蛋白质,为如下(1)或(2)所述的蛋白质:
(1)由序列表中的SEQ ID No.2氨基酸序列组成的蛋白质;
(2)将序列表中的SEQ ID No.2氨基酸残基序列经过一至十个氨基酸残基的取代和/或添加且具有毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12功能由(1)衍生的蛋白质。
本发明所述的毛竹叶片形状相关基因PheLBD12在调节水稻株高中的应用。
本发明含有所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12的植物过量表达载体或重组菌。
本发明的一种植物过量表达载体,所述的植物过量表达载体为多克隆位点区域依次连接有35S启动子、所述的PheLBD12基因和终止子的pCAMBIA1301a-PheLBD12植物表达载体。
本发明含有所述的植物过量表达载体的宿主菌。
本发明用于克隆所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12的引物对,所述的引物对包括上游引物和下游引物,所述的上游引物的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示,所述的下游引物的核苷酸序列如SEQ ID No.4所示。
本发明一种遗传工程化的宿主细胞,所述的宿主细胞含有所述的植物过量表达载体,或其基因组中整合有外源的所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12序列。
试验例1
1材料
本实施例所用方法如无特别说明均为本领域的技术人员所知晓的常规方法,所用的试剂等材料,如无特别说明,均为市售购买产品。
2方法
2.1PheLBD29基因的蛋白序列分析
利用毛竹数据库查找PheLBD12基因,并且找到对应的蛋白序列(SEQ IDNo.2),通过NCBI-CDD网站对PheLBD12蛋白序列结构域进行分析,PheLBD12蛋白序列包含LOB结构域。表明PheLBD12蛋白属于LOB家族(图1)。
2.2PheLBD29基因不同组织表达模式分析
取毛竹不同高度的竹笋(0.2、1.5、3和6.7m)的顶部(Top portion),中部(Middleportion)和底部(Lower portion),每个样取完后,迅速放入液氮速冻,然后冻存于-70℃冰箱,用于后期RNA时提取使用。
RNA的提取步骤参考TaKaRa MiniBEST Universal RNA Extraction Kit试剂盒(TaKaRa:9767)。反转录步骤参照PrimeScriptTM RT reagent Kit(Perfect Real Time)试剂盒(TaKaRa:RR037Q)。荧光定量PCR引物:PheLBD12F:5’-CGGATCGTGAACCCCATCTA-3;PheLBD12F:5’-GTCCTTGTCGAGCTTGGAGA-3。
内参基因:TIP41F:5’-AAAATCATTGTAGGCCATTGTCG-3;TIP41R:5’-ACTAAATTAAGCCAGCGGGAGTG-3’。
定量反应使用的是TaKaRa定量试剂盒,反应体系为20μL,各组分为染料混合液7.0μL,cDNA模板为1.5μL,上下游引物各(10μmol/L)各0.5μL,最后补去离子水至20μL。PCR反应参数如下:95℃,10min;95℃,15s;60℃,1min,共40个循环。反应结束后,对产物进行加热,获得产物的溶解曲线。采用2–ΔΔCT[ΔCT=CT目标基因–CT内参基因.ΔΔCT=ΔCT处理后–ΔCT对照]法进行数据处理。
每次实验测定三次生物学重复,至少三次实验操作重复,测定结果见图2所示,图中可以看出,PheLBD12基因不同高度的竹笋中均有表达,且在不同高度笋的底部表达量最高。
2.3毛竹PheLBD12蛋白编码序列的克隆
以毛竹0.2m高度的笋cDNA为模板,根据毛竹基因组数据库公布的基因序列,结合克隆载体的多克隆位点设计引物,进行PCR扩增,获得PCR扩增产物。
引物序列如下:
PheLBD12F:5’-GGGGTACCCCATGAGGCTGAGCTGCAAC-3’;
PheLBD12R:5’-CGGGATCCCGCTACAGGAACCGGAGGCC-3’
PCR反应体系如表1所示:
表1
PCR反应条件为:预变性:98℃5min;变性:98℃10s;退火:55℃5s;延伸:72℃30s,33个循环;总延伸:72℃10min。
反应结束后,吸取PCR产物进行2%琼脂糖凝胶电泳,在凝胶成像系统中检测和切胶后,使用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收,将回收产物,送去上海生工公司进行测序,测序结果如:序列表中SEQ ID NO:2的DNA序列所示,由921bp个碱基组成,与公布的毛竹PheLBD12蛋白的编码序列进行比对,结果完全一致。
2.4过表达载体pCAMBI1301a-PheLBD12构建
使用KpnI和BamHI两个限制性内切酶对测序正确的含有PheLBD12基因编码序列的pEASY Blunt simple Cloning Vector重组质粒和过表达载体pCAMBIA1301a质粒于37℃水浴锅中进行双酶切3h;双酶切体系表如表2所示:
表2
双酶切后,通过2%琼脂糖凝胶电泳检测,利用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收。用T4DNA连接酶将获得的1301a载体大片段和目的基因小片连接,25℃反应20min,T4连接酶反应体系如表3所示:
表3
将连接产物轻轻打入到50μL EHA105农杆菌感受态细胞中,冰浴7min,液氮速冻3min,37℃金属浴热激3min后,加入500μL YEP液体培养基,28℃,220培养2~3h;离心30s,弃上清,加入100μL YEP液体培养基,重新悬浮细胞,涂布于含50μg/mL Kan和30μg/mL Rif的YEP固体平板上,28℃培养约48h;挑取平板上长出的单菌落,接种于含50μg/mL Kan和30μg/mL Rif的YEP液体培养液中,摇菌48h,提取质粒,分别用PCR和双酶切验证。
2.5过表达PheLBD12转基因水稻的获得及筛选
1.过表达PheLBD12转基因水稻的获得:
将成熟饱满的水稻种子,经过次氯酸钠消毒后,平铺在诱导培基上,大约两周长出淡黄色愈伤组织;将长有愈伤组织的种子放入农杆菌悬浮液中,轻轻摇晃30分钟,然后倒出菌液,愈伤组织平铺在无菌滤纸上,待愈伤组织周围的菌液被吸干;进而放入侵染培养基中,22℃暗培36小时;挑出侵染过的愈伤组织,用纯水进行清洗,直至表面的菌液都被洗掉;将清洗干净的愈伤组织放在筛选培养基上进行培养,30天生长出新的淡黄色的带有抗性的愈伤组织;将新的淡黄色的带有抗性的愈伤组织挑到分化培养基上,培养30天左右,长出抗性愈伤小苗;继而转到生根培养基中继续培养,至小苗长到瓶口处,打开封口膜,浇入灭过菌的纯水,开始来炼苗,约3天后,将其移栽到大田。
2.阳性苗的筛选:
首先提取PheLBD12基因的转基因水稻DNA,基因组提取参照Rapid Plant GenomicDNA Isolation Kit试剂盒(Sangon Biotech:B518231-0050)。以上述提取的基因组DNA为模板,使用引物PheLBD12-F和PheLBD12-R进行PCR分子检测,PCR反应同2.3。反应结束后,取PCR产物,进行2%琼脂糖凝胶电泳后,在凝胶成像系统中观察(图3A)。
通过PCR检测后,进一步地剪取阳性苗幼叶进行Gus组织化学染色。将剪去的叶片放入1.5mL Dof管中,加入Gus染色,染液应将叶片全部浸没,37℃,12小时。然后进行酒精脱色,观察叶片的染色情况,如图3B所示。
2.6PheLBD12过表达转基因水稻的株高表型分析
同时将野生型和转基因水稻种植于温室中,四周后,拍照观察表型差异。结果如图4所示,图中可以看出,过表达株系与野生型株系相比,其株高明显的变矮(图4A-B)。同时对野生型水稻与过表达PheLBD12转基因水稻的节间长度进行统计表型分析。结果发现,转基因水稻的节间都明显短于野生型水稻的,导致转基因水稻的株高明显矮于野生型水稻的(图4C-D)。
以上显示和描述了本发明的基本原理、主要特征和本发明的优点。本行业的技术人员应该了解,本发明不受上述实施例的限制,上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理,在不脱离本发明精神和范围的前提下,本发明还会有各种变化和改进,本发明要求保护范围由所附的权利要求书、说明书及其等效物界定。
Claims (1)
1.一种毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12在调节水稻株高中的应用,其特征在于:过表达PheLBD12转基因水稻的株高变矮,所述的毛竹茎秆伸长相关基因PheLBD12的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。
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PB01 | Publication | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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