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CN115025037A - 一种负载活性小球藻的可分离微针及其制备方法 - Google Patents

一种负载活性小球藻的可分离微针及其制备方法 Download PDF

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CN115025037A CN202210654296.3A CN202210654296A CN115025037A CN 115025037 A CN115025037 A CN 115025037A CN 202210654296 A CN202210654296 A CN 202210654296A CN 115025037 A CN115025037 A CN 115025037A
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Abstract

本发明涉及一种治疗糖尿病伤口用的负载活性小球藻的可分离微针及其制备方法,具体是将GelMA水凝胶和光引发剂以及小球藻溶液混合均匀,加入到微针模具中,负压消泡5 min,重复3次,用紫外灯固化15 s,制得微针尖;再加入PVA溶液至覆盖微针尖,离心去除气泡,37℃干燥12 h即得负载活性小球藻的可分离微针。本发明通过将活性小球藻负载到以水凝胶为材料的微针针尖中,以PVA作为基底,制备出了一种负载小球藻的可分离微针。将这种可分离微针制成贴片,施加到皮肤伤口处时,PVA在几分钟内迅速溶解,将水凝胶尖端留在伤口上。在近红外LED的照射下,小球藻通过光合作用可连续地释放溶解氧,促进细胞的增殖、迁移和血管的生成,从而缓解伤口处的缺氧微环境。

Description

一种负载活性小球藻的可分离微针及其制备方法
技术领域
本发明涉及一种可分离微针的制备方法,具体地说是一种治疗糖尿病伤口用的负载活性小球藻的可分离微针及其制备方法。
背景技术
全球有数亿人患有糖尿病,其中很多患者都面临着糖尿病足溃疡的风险,严重者将面临截肢的风险。糖尿病慢性伤口不仅发病率和死亡率高,而且相关的医疗费用也给医疗系统带来沉重的经济负担。研究表明,氧气对于正常的细胞生长和呼吸至关重要,充足的氧气是治疗糖尿病伤口的关键因素。因此,解决缺氧问题是糖尿病慢性创面治疗中亟待解决的关键问题。然而,现有的临床治疗方法不容易向糖尿病伤口输送或维持足够的氧气。比如高压氧吸入不能防止糖尿病伤口局部缺血;局部气态氧疗法则因外部气体对组织的渗透作用有限而效果不佳。
目前已开发出的多种载氧材料对促进糖尿病伤口的愈合虽有一定的疗效,但大多数载氧体系的氧气渗透率低,且难以维持长期供氧,这是由于伤口敷料只能接触伤口表面,无法深入伤口内部,因而导致疗效不佳。
发明内容
本发明的目的就是提供一种治疗糖尿病伤口用的负载活性小球藻的可分离微针及其制备方法,以解决大多数载氧体系因氧气渗透率低而导致疗效不佳的问题。
本发明是这样实现的:一种负载活性小球藻的可分离微针的制备方法,将GelMA水凝胶和光引发剂以及小球藻溶液混合均匀,加入到微针模具中,负压消泡5 min,重复3次,用紫外灯固化15 s,制得微针尖;再加入PVA溶液至覆盖微针尖,离心去除气泡,37 ℃干燥12 h即得负载活性小球藻的可分离微针。
本发明负载活性小球藻的可分离微针的制备方法,具体包括以下步骤:
a、小球藻的培养:将培养基置于灭菌培养瓶中,再将小球藻菌株接种于灭菌培养瓶内,密封后进行无菌培养;
b、微针尖的制备:将GelMA水凝胶10%(w/v)和光引发剂苯基-2,4,6-三甲基苯甲酰基亚磷酸锂0.5%(w/v)混合均匀,得GelMA水凝胶溶液,取步骤a培养好的小球藻溶液用PBS缓冲液清洗,再经离心处理后得到小球藻沉淀物,将小球藻沉淀物与GelMA水凝胶溶液按重量1︰1的比例混合均匀,加入到微针模具中,对微针模具中的混合溶液进行负压消泡处理,再用紫外灯照射,以对针尖固化处理,光照结束,得到微针尖;
c、成品的制备:将PVA溶液加入制得微针尖的微针模具中,溶液覆盖微针尖,离心去除气泡,经干燥处理后即得负载活性小球藻的可分离微针。
进一步地,步骤a中所用的菌株是编号为FACHB-482的Chlorella vulgaris
进一步地,步骤a中的无菌培养方式是,将灭菌培养瓶放置在培养温度为25 ℃的光照培养箱内静态培养5~10天,每天给予12 h的光照和12 h的暗处理。
进一步地,步骤b中的负压消泡处理方式是,使用真空干燥器对混合溶液进行负压消泡5 min,重复3次。
进一步地,步骤c中的干燥处理方式是,37℃干燥12 h。
本发明治疗糖尿病伤口用的负载活性小球藻的可分离微针,通过将GelMA水凝胶和光引发剂以及小球藻溶液混合均匀,加入到微针模具中,负压消泡5 min,重复3次,用紫外灯固化15 s,制得微针尖;再加入PVA溶液至覆盖微针尖,离心去除气泡,37 ℃干燥12 h后制备而成。
小球藻(Cv)是一种微小的绿藻,富含蛋白质、脂质、多糖、膳食纤维、维生素和微量元素,其不但具有良好的生物相容性,更重要的是,小球藻具有其它植物十倍以上的光合作用能力,能够产生大量的溶解氧,被称为“罐装的太阳”。因此,小球藻可以作为“氧气供应工厂”,持续提供溶解氧,缓解糖尿病伤口处的缺氧微环境。可分离微针具有一定的透气性,并可以微创、无痛、高效的透皮给药方式进入内部组织。
本发明通过将活性小球藻负载到以水凝胶为材料的微针针尖中,以PVA作为基底,制备出了一种负载小球藻的可分离微针(CvMN)。将这种可分离微针制成贴片,施加到皮肤伤口处时,PVA在几分钟内迅速溶解,将水凝胶尖端留在伤口上。在近红外LED的照射下,小球藻通过光合作用可连续地释放溶解氧,促进细胞的增殖、迁移和血管的生成,从而缓解伤口处的缺氧微环境。同时,小球藻内部富含有微量元素Zn2+和Mg2+,其固有的抗氧化作用可以有效清除自由基,降低糖尿病伤口的炎症反应,从而加速糖尿病伤口的愈合。实验表明可分离微针内部所负载的小球藻至少可以保持6天的活性,由此确保了产生氧气的连续性。总之,本发明所制备的负载活性小球藻的可分离微针具有高生物相容性、降低炎症反应,诱导血管生成,再上皮化和胶原沉积,能够有效加速糖尿病伤口的愈合。
附图说明
图1是负载活性小球藻的可分离微针的制备流程图。
图2是负载活性小球藻的可分离微针的结构示意图。
图3是负载活性小球藻的可分离微针的SEM图。
图4是负载活性小球藻的可分离微针的分离能力示意图,其中,图4a是PVA基底层的溶解性能图;图4b是可分离微针针尖保留在琼脂糖水凝胶内部的横截面荧光图像;图4c是可分离微针应用于琼脂糖水凝胶后的平面荧光图像。
图5是小球藻与负载活性小球藻的可分离微针的产氧能力示意图;其中,图5a是不同浓度 Cv释放溶解氧的比较图;图5b是CvMN在光照或黑暗条件下释放溶解氧的比较图;图5c是添加不同浓度葡萄糖的 Cv(1×109 CFU/mL)释放溶解氧的比较图;图5d是 Cv溶液和CvMN(1×109 CFU/mL)在添加或没有添加 500 μM葡萄糖的条件下,两者之间释放溶解氧的比较图;图5e是一周内不同组的氧气释放比较图。
图6是小球藻的抗氧化能力示意图。
图7是负载活性小球藻的可分离微针用于治疗糖尿病小鼠伤口的愈合图片。
图8是治疗后伤口组织的病理分析。
具体实施方式
如图1所示,本发明负载活性小球藻的可分离微针(CvMN)的制备过程包括以下步骤:
(1)小球藻的培养:
小球藻菌株(拉丁种名Chlorella vulgaris,编号为:FACHB-482)购买于中科院淡水藻种库。将配置好的BG-11培养基置于50 mL灭菌培养瓶中,随后在超净台内将菌株接种于灭菌培养瓶内,密封瓶口并标明接种日期,进行无菌培养。灭菌培养瓶放置在培养温度为25 ℃的光照培养箱内,静态培养5-10天,每天给予12 h的光照和12 h的暗处理。制备好的小球藻溶液备用。
(2)微针尖的制备:
将GelMA水凝胶10%(w/v)和光引发剂苯基-2,4,6-三甲基苯甲酰基亚磷酸锂0.5%(w/v)混合均匀,得GelMA水凝胶溶液。取小球藻溶液,用PBS缓冲液清洗3次,离心处理(4000rpm,5 min)后,得到小球藻沉淀物。将小球藻沉淀物与制得的GelMA水凝胶溶液混合均匀,加入到微针模具中,使用真空干燥器对混合溶液负压消泡5 min,重复3次,随后用紫外灯照射15 s,以对微针尖进行固化处理。光照结束后,得到微针尖。
(3)成品的制备:
加入20%(w/v)PVA溶液加入制得微针尖的微针模具中,并使其完全覆盖微针尖,离心去除气泡,经37 ℃干燥12 h即得负载活性小球藻的可分离微针成品。
用光学显微镜对制备的负载活性小球藻的CvMN进行拍照,得到图2所示的产品结构。结果中可以看出,所制备的CvMN具有15×15的微针阵列,针尖长度相同且排列整齐,尖端呈金字塔形,高度为600 μM。
喷金到微针表面,再用冷场发射扫描电子显微镜(SEM)观察产品的微针结构,得到图3所示的SEM图。从图中可以看出,所制备的负载活性小球藻的可分离微针呈深绿色。
PVA基底层的溶解性能:将PVA基底层浸泡在装有PBS缓冲液的烧杯中,并置于磁力搅拌器上,在37 ℃条件下,以400 rpm的转速进行搅拌,在不同时间点(0、1、2、3、4、5 min)对PVA基底层的重量变化进行测定。每次称量时,使用移液枪除去原来的PBS缓冲液,加入等量新的PBS缓冲液。最后通过PVA基底层的重量变化与初始重量的比率来计算溶解速度。由图4a可见,CvMN的基底层在37 ℃的PBS缓冲液中5 min内完全溶解,表明当CvMN应用于皮肤时,PVA基底层在短时间内能够迅速溶解,从而实现微针尖端与基底分离,将针尖保留在皮肤内部。
CvMN的分离能力测定:首先将3%(w/v)的琼脂糖粉末溶解在去离子水中,用微波炉加热30 s至沸腾,取出迅速倒入24孔板中,待琼脂糖溶液冷却后形成水凝胶。用镊子夹取FITC标记的微针,将其压在琼脂糖凝胶的表面,5 min后用吸水纸擦去琼脂糖凝胶表面溶解的PVA背衬层。随后使用荧光显微镜观察琼脂糖凝胶内部针尖形貌,并拍摄图像。使用琼脂糖水凝胶模拟皮肤表面,将针尖用FITC标记的微针应用在水凝胶表面时,基底层迅速溶解,仅留下荧光尖端保留在水凝胶内部(如图4b、图4c所示),以上结果表明CvMN具有理想的可分离能力。
如图5所示,CvMN的产氧能力测定:
首先是小球藻的产氧能力测定:收集不同浓度的小球藻沉淀(105、106、107、108与109 CFU/mL),PBS清洗三遍并重悬于PBS中。以PBS作为测量介质,在635 nm NIR LED(光剂量为50 mW/cm2)的照射下,使用溶氧仪测量氧气含量,每组平行测定三次。
其次是CvMN的产氧能力测定:通过CvMN(1×109 CFU/mL)的光响应性能,检测CvMN内部小球藻的活性。将CvMN置于(635 nm,50 mW/cm2)NIR LED下照射30 min,避光处理30min,一共循环6个周期,使用溶氧仪检测氧气含量,每组平行测定三次。接下来验证葡萄糖是否可以增加Cv(1×109 CFU/mL)和CvMN(1×109 CFU/mL)的产氧量,将二者分别置于PBS中,添加125、250和500 μM的葡萄糖,使用NIR LED(635 nm,50 mW/cm2)照射30 min,用溶氧仪检测氧气含量,每组平行测定三次。在4 ℃条件下,将小球藻及CvMN分散在BG11(pH=7.4)培养基中,每天监测氧气产量,为期一周。
如图5a所示,在近红外LED的照射下,小球藻能够通过光合作用并产生大量氧气,且产氧量与小球藻的浓度呈正相关。图5b所示,在光照充足的情况下,CvMN的溶解氧浓度在30 min内从0 mg/L逐渐增加到6.8 mg/L。在黑暗条件下,溶解氧在30 min内从6.8 mg/L逐渐下降至0 mg/L,表明可分离微针尖端所负载的小球藻具有完全的活性,可以进行光合作用和呼吸作用。
在小球藻溶液或CvMN中加入不同浓度的葡萄糖(0、125、250、500 μM),用来模拟高糖环境,如图5c、5d所示,糖分的增加可以提高CvMN和小球藻的产氧量,相同浓度的CvMN和小球藻的产氧量之间没有明显差异。图5e所示,在光照条件下,CvMN和小球藻的产氧量保持相对稳定的,具有良好的稳定性,可以持续可控地产生氧气,满足治疗糖尿病伤口的需要。
测定DPPH清除自由基的能力:将150 uL不同浓度小球藻溶液加入到150 uL(0.1mmol/L)1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)的甲醇溶液中。剧烈振摇,在室温下避光孵育30min后,使用酶标仪在517 nm波长处测定样品吸光度,所有实验平行测定三次,得到如图6所示的清除自由基的能力。小球藻内部富含维生素、γ-亚麻酸、亚油酸等多种抗氧化物质,如图6所示,清除自由基的效率随着小球藻浓度的增加而增加,表明小球藻可以通过有效清除伤口组织处的自由基,进一步改善伤口愈合过程。
将DB/DB糖尿病小鼠随机等分为4组(Con、DM-Con、CvMN+Dark、CvMN+Light),每组6只小鼠。Con组是正常小鼠,不接受任何治疗。CvMN+Light组是糖尿病小鼠,使用CvMN治疗且每天给予光照90 min。CvMN+Dark组同样采用CvMN进行治疗,但是不给予光照处理。DM-Con组是糖尿病小鼠,且不接受任何治疗,得到如图7所示的治疗效果。与其他组相比,CvMN(Light)的恢复效果最好,第12天时,伤口几乎完全愈合,接近正常小鼠的愈合时间。
为了评估伤口区域的表皮再生和炎症,将收集的皮肤标本在10%甲醛溶液中固定,脱水,制作成5µm厚的石蜡切片,随后进行HE、Masson染色,结果如图8所示:通过H&E染色和Masson三色染色可以观察到伤口上皮化、胶原沉积和肉芽组织形成的过程。CvMN(Light)组通过光合作用为糖尿病创面提供了足够的溶解氧,所以上皮间隙和肉芽组织的厚度值最高、皮肤创面上皮结构更完整、胶原蛋白含量最高,而DM-Con和CvMN(Dark)组的伤口表皮厚度和胶原沉积相对较低。由于胶原蛋白沉积在伤口组织重塑中发挥了极其重要的作用,因此,CvMN(Light)在伤口愈合中具有最佳的治疗效果。

Claims (8)

1.一种负载活性小球藻的可分离微针的制备方法,其特征是,将GelMA水凝胶和光引发剂以及小球藻溶液混合均匀,加入到微针模具中,负压消泡5 min,重复3次,用紫外灯固化15 s,制得微针尖;再加入PVA溶液至覆盖微针尖,离心去除气泡,37 ℃干燥12 h即得负载活性小球藻的可分离微针。
2.一种负载活性小球藻的可分离微针的制备方法,其特征是,包括以下步骤:
a、小球藻的培养:将培养基置于灭菌培养瓶中,再将小球藻菌株接种于灭菌培养瓶内,密封后进行无菌培养;
b、微针尖的制备:将GelMA水凝胶10%(w/v)与光引发剂苯基-2,4,6-三甲基苯甲酰基亚磷酸锂0.5%(w/v)混合均匀,得GelMA水凝胶溶液,取步骤a培养好的小球藻溶液用PBS缓冲液清洗,再经离心处理后得到小球藻沉淀物,将小球藻沉淀物与GelMA水凝胶溶液按重量1︰1的比例混合均匀后,加入到微针模具中,对微针模具中的混合溶液进行负压消泡处理,再用紫外灯照射,以对针尖进行固化处理,光照结束,得到微针尖;
c、成品的制备:将20%(w/v)PVA溶液加入制得微针尖的微针模具中,溶液覆盖微针尖,离心去除气泡,经干燥处理后即得负载活性小球藻的可分离微针。
3.根据权利要求1所述的负载活性小球藻的可分离微针的制备方法,其特征是,步骤a中所用的小球藻菌株是编号为FACHB-482的Chlorella vulgaris
4.根据权利要求1所述的负载活性小球藻的可分离微针的制备方法,其特征是,步骤a中的无菌培养方式是,将灭菌培养瓶放置在培养温度为25 ℃的光照培养箱内静态培养5~10天,每天给予12 h的光照和12 h的暗处理。
5.根据权利要求1所述的负载活性小球藻的可分离微针的制备方法,其特征是,步骤b中的负压消泡处理方式是,使用真空干燥器对混合溶液进行负压消泡5 min,重复3次。
6.根据权利要求1所述的可负载活性小球藻的分离微针的制备方法,其特征是,步骤c中的干燥处理方式是,37℃干燥12 h。
7.一种负载活性小球藻的可分离微针,其特征是,利用权利要求2~6任一权利要求所述的负载活性小球藻的可分离微针的制备方法制备而成。
8.一种负载活性小球藻的可分离微针,其特征是,通过将GelMA水凝胶和光引发剂以及小球藻溶液混合均匀,加入到微针模具中,负压消泡5 min,重复3次,用紫外灯固化15 s,制得微针尖;再加入PVA溶液至覆盖微针尖,离心去除气泡,37 ℃干燥12 h后制备而成。
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