CN113025627A - 水稻分蘖控制基因OsMYB27及其在育种上的应用 - Google Patents

Abstract

本发明公开了水稻分蘖控制基因OsMYB27及其在育种上的应用，属于植物基因工程技术领域。本发明从水稻基因组中克隆获得控制水稻分蘖的基因OsMYB27，其核苷酸如SEQ ID NO：1或SEQ ID NO：2所示；通过对转基因植株表型等初步分析，结果发现该基因超表达植株显著增加水稻的有效分蘖数，有效分蘖数达到135～145个，说明OsMYB27基因能明显改变分蘖；该基因不仅提高水稻分蘖数，而且不影响结实率。因此，通过基因工程提高OsMYB27基因的表达可以控制植物分蘖数，从而有利于形成理想株型，达到增产优质的目的，这对于植物重要农艺性状的研究以及高产作物新品种的培育具有重要意义。

Description

水稻分蘖控制基因OsMYB27及其在育种上的应用

技术领域

本发明涉及植物基因工程领域，涉及一种水稻分蘖控制基因OsMYB27及其在育种上的应用。

背景技术

水稻是我国主要粮食作物之一，面对人口剧增、环境恶化和耕地面积减少的严峻形势，保证粮食安全成为我国面临的一个日益突出的大问题和严峻挑战，而培育具有理想株型的高产水稻品种是解决这一问题的重要途径，也是粮食生产者一直追求的目标，对保证我国的粮食安全、促进国民经济的发展有举足轻重的作用。水稻产量是复杂的数量性状，主要取决于有效分蘖数、穗粒数和千粒重。分蘖是水稻、小麦等禾谷类作物的一种特殊的分枝现象，它是决定水稻穗数多少进而影响单产的重要因素之一，也是构成水稻理想株型的主要农艺性状之一，长期以来一直是很多作物育种改良的重要目标。单子叶植物分蘖与双子叶植物分枝的本质区别如下：分蘖生有不定根且由茎秆基部的不伸长节间产生，可以脱离主茎单独存活，然而分枝没有不定根且在茎秆上部的伸长节间产生，不能与主茎分离单独存活。

近10多年来，“超级稻”育种备受人们期待，其采用的最主要的技术就是理想株型和优势利用相结合。由此可见，水稻理想株型研究上的突破是水稻育种能够更好更快地开展下去的前提和基础。分蘖作为单子叶植物水稻理想株型重要构成因素，对产量有很大的影响，是培育“超级稻”的一个重要方面。因此，进行水稻分蘖基因挖掘及分子机理和高产种质遗传改良研究尤为必要，且亟需进行。培育高产、稳产、优质的水稻新品种将会极大促进水稻的大面积推广种植，提高其产量的稳定性，促进水稻育种产业快速发展。

剖析水稻分蘖形成方式及分子机理，是定向精细调节某些代谢途径，改良现有优质品系、进而提高作物产量的必要条件。作物高产遗传改良的方法有多种，传统育种是基于现有的种质资源，通过后代的表型选择和有性杂交对作物优良品质进行遗传改良，其遗传改良效率低、育种周期长且方向性不强。而分子育种具有效率高、育种年限短、目的性强的特点，是未来作物遗传育种的主要手段。在水稻等禾本科作物中，分蘖的形成由三部分组成，即腋生分生组织(axillary meristem)的建立、腋芽(axillary bud)的形成和腋芽的伸长(Hussien et al.,2014)。控制水稻分蘖的基因可以分为独脚金内酯途径的基因和非独脚金内酯途径的基因(Hussien et al.,2014)。独脚金内酯(Strigolactones，SL)途径的基因如参与调控SL合成的基因D17/HTD1(Zou et al.,2006)，D10(Arite et al.,2007)和D27(Lin et al.,2009)，遗传学和嫁接实验表明D10，D17位于SL合成成员OsMAX1s/MAX1的上游(黎舒佳等2015；Zhang et al.,2014),然而D27位于MAX1基因的上游(Waters et al.,2012)，这些基因突变后均导致水稻体内SL含量下降，进而呈现矮生多分蘖的表型；以及参与调控SL信号转导的重要基因D3(Yan et al.,2007)，D14/HTD2(Arite et al.,2009)和D53(Zhou et al.,2013)，这些基因的突变体表现出对SL不敏感，且呈现矮生多分蘖的水稻表型。非SL途径基因如MOC1(GRAS家族转录因子)，LAX1，LAX2，OsNAC2等(Hussien et al.,2014；Mao et al.,2007)，moc1突变导致水稻植株高度降低，引起水稻丧失分蘖能力，反之，提高MOC1表达显著增加了分蘖数(Li et al.,2003)；lax2突变体拥有和lax1突变体相似的表型，这两个基因突变后都导致分蘖芽不能正常的形成，且呈现分蘖数显著降低的表型(Oikawa and Kyozuka,2009；Tabuchi et al.,2011)；OsNAC2正调控水稻的分蘖，提高OsNAC2的表达促进水稻分蘖芽伸长，从而引起分蘖数增加(Mao et al.,2007)。与此对应，通过增加有效分蘖数来达到增产的植物分子育种，通常也是对这两类途径的部分基因进行调控表达，有目的的进行遗传改良。如在水稻中过表达MOC1,LRK2和OsNAC2(Kang et al.,2017；Li et al.,2003；Mao et al.,2007),在柳枝稷中过表达Osa-miR393a(Liu et al.,2017)，均显著增加了转基因植株的有效分蘖数，从而达到增产目的。

目前，依靠传统的育种模式提高水稻品质已经在过去的几十年内到达了一个瓶颈期。而依托于基因工程的分子育种，针对性更强，周期更短，通过基因工程来定向改良作物，是当今品质改良的重要课题。

发明内容

本发明的目的是提供一种水稻分蘖控制基因OsMYB27及其在育种上的应用，该基因是水稻分蘖的关键调控基因，可应用到水稻、小麦等禾谷类作物高产品种的培育中，实现禾谷类作物产量的提高。

为实现上述目的，本发明提供了如下方案：

本发明提供了一种控制水稻分蘖基因OsMYB27，其核苷酸序列为如下(a)或(b)所示序列：

(a)如SEQ ID NO：1所示的核苷酸序列；

(b)如SEQ ID NO：2所示的核苷酸序列。

本发明还提供一种蛋白，其氨基酸序列由权利要求1所述的控制基因OsMYB27编码。

优选的是，所述蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO：3所示。

优选的是，所述蛋白还包括与如SEQ ID NO：3所示序列具有至少30％同源性且具有和SEQ ID NO：3所示序列相同的功能的氨基酸序列。

本发明还提供一种重组载体，包括所述的控制基因OsMYB27。

本发明还提供一种所述的控制水稻分蘖基因OsMYB27或所述的蛋白或所述的重组载体在植物组织表达中的应用。

优选的是，所述植物组织为单子叶植物或双子叶植物的根、茎、叶、花、分蘖芽或种子。

优选的是，所述单子叶植物为水稻、小麦、大麦或玉米，所述双子叶植物为番茄、烟草或土豆。

本发明还提供一种所述的控制水稻分蘖基因OsMYB27或所述的蛋白或所述的重组载体在培育禾谷类作物高产品种中的应用。

优选的是，应用于构建转基因禾谷类作物，所述转基因禾谷类作物的分蘖数增加，进而增加单产，从而用于高产品种的培育。。

本发明公开了以下技术效果：

(1)本发明公开的水稻分蘖控制基因OsMYB27超表达植株，可显著增加水稻的有效分蘖数(有效分蘖数达到135个)，说明OsMYB27基因对改变分蘖效果很明显，通过基因工程技术提高OsMYB27基因的表达可以控制植物分蘖的数目，从而有利于形成理想株型，达到增产、优质的目的。

(2)本发明公开的水稻分蘖控制基因OsMYB27不仅提高水稻分蘖数，而且不影响结实率，该基因的功能研究对于植物重要农艺性状的研究意义深远。

(3)尽管目前已经克隆了一些控制植物分蘖的基因，但对植物分蘖的分子机理仍不清楚；而本发明克隆的OsMYB27基因能够控制植物的分蘖数，这对植物分蘖的分子机理研究将有极大的促进作用。

(4)目前，拟南芥中一些MYB家族基因已经被克隆且进行功能研究，但在禾本科植物中控制分蘖的基因鲜有报道，本发明克隆的OsMYB27基因对水稻分蘖有明显的影响，这对综合认识MYB家族基因的生物学功能具有重要的意义。

附图说明

为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案，下面将对实施例中所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动性的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。

图1为OsMYB27基因在水稻不同组织中的表达量；

图2为OsMYB27基因编码蛋白亚细胞定位，比例尺：10μm；

图3为OsMYB27超表达转基因植株的表型分析；

图4为OsMYB27基因在转基因植株和野生型植株中的表达量比对结果；

图5为OsMYB27超表达转基因植株萌发以后不同时间段分蘖数目统计结果；

图6为OsMYB27基因超表达转基因植株二级分蘖分表型分析

图7为OsMYB27基因超表达转基因植株三级分蘖分表型分析

图8为OsMYB27转基因植株结实率统计分析结果

图9为OsMYB27基因超表达转基因植株株高表型；

图10为OsMYB27超表达转基因植株株高统计学分析结果。

具体实施方式

现以实施例方式对本发明技术方案进行具体说明，但其不应该被认为是对本发明的限制，而应理解为是对本发明的某些方面、特性和实施方案的更详细的描述。

下述实施例中所使用的试验方法如无特殊说明，均为常规方法；所使用的材料、试剂等，如无特殊说明，为可从商业途径得到的试剂和材料。

实施例1水稻转基因株系获得及表型分析实验

1、材料与方法

1.1植物材料及种植方式

供试的水稻品种：水稻粳稻品种中花11即水稻(Oryza sativa L.)cv.中花11，保存在周口师范学院植物遗传与分子育种重点实验室。

新收的种子种植前，先用质量百分比浓度为5％次氯酸钠消毒40min或者用1/1000的多菌灵消毒12h，再用0.1mol/L HNO₃(1mL 63％的浓HNO₃加入100mL水)浸种16h，自来水冲洗干净后，将消毒后的种子置于28℃环境下浸种1d，然后将种子均匀的平铺在培养皿中，其中培养皿中放置一层滤纸，并用水湿润；盖上盖子，然后放入32℃下培养，每天换水两到三次，看到大多数种子破壳出根后转入30℃下培养。保存半年以上的种子播种前先晒种2d，消毒后浸种，消毒方法：55℃温汤浸种30min，待水稻芽长到4.8-5.2mm长时，播种到纱窗布上(水稻营养液中培养)，3叶期后，将水稻幼苗移入土壤中，并做好对应的标签进行表型观察和后续的试验分析。水稻每间隔8d或者10d进行一次施肥。

1.2试剂及载体

大肠杆菌为DH5α，农杆菌为EHA105，这些菌株为周口师范学院植物遗传与分子育种重点实验室保存，植物表达载体为pCAMBIA1301；其中，限制性内切酶、克隆载体pMD18-T、T4 DNA连接酶、Taq DNA聚合酶购自于TaKaBa生物公司；DNA回收试剂盒为Magen生物公司产品；潮霉素(Hyg)、卡那霉素(Kan)和氨卡霉素(Amp)等购自北京鼎国生物技术有限公司，试验所有引物均由北京奥克鼎盛生物公司合成。

1.3 RNA的提取、cDNA合成和RT-PCR扩增目的基因

RNA提取使用Magen公司的植物RNA提取试剂盒，参考方法为较易提取植物组织RNA小量提取法。

以1μg的RNA为模板，按照cDNA合成试剂盒(TaKaRa)操作说明合成第一链cDNA。根据OsMYB27基因cDNA全长序列设计特异引物，特异引物序列见表1。RT-PCR反应体系(20μL)：10×PCR反应缓冲液2μL，dNTP(2.5mmol/L)1μL，引物(10pm/μL)各1μL，Taq聚合酶(5U/μL)0.2μL，模板cDNA 2μL，ddH₂O 12.8μL。

PCR反应条件：94℃预变性5min；94℃变性30s，54℃退火30s，72℃延伸1min，33个循环；72℃延伸10min，4℃保存。

表1 RT-PCR扩增目的基因的引物序列

1.4 OsMYB27基因组织特异性表达分析

OsMYB27基因表达量检测选用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)。用于qRT-PCR分析的引物根据基因全长序列设计，选用水稻的Ubiquitin1(Ubi1；Os06g0681400)作为定量PCR内参引物，见表2。

表2定量qRT-PCR的引物序列

1.5 OsMYB27基因植物表达载体的构建

目的基因的PCR产物，按照宝生物(Takara)Agarose Gel DNA Purification Kit试剂盒操作进行纯化。限制性内切酶KpnI和XbaI双酶切酶切有目的基因片段的pMD18-T质粒或pCAMBIA1301质粒后，用T4 DNA连接酶将目的基因连接到植物表达载体pCAMBIA1301上，反应体系如下：T4 DNA连接酶(5U/μL)1μL，10×buffer 1μL，目的基因片段5μL，pCAMBIA1301载体3μL；反应条件：16℃，2h。连接产物转化感受态E.coli DH5α，涂布LB平板(50mg/L Kan)培养，37℃过夜倒置培养形成单菌落。

1.6 OsMYB27基因亚细胞定位载体构建

目的基因的PCR产物，按照宝生物(Takara)Agarose Gel DNA Purification Kit试剂盒操作进行纯化。限制性内切酶Bsa I和Eco31I双酶切酶切有目的基因片段的pMD18-T质粒或pBWA(V)HS-GLosgfp质粒后，用T4 DNA连接酶将目的基因连接到亚细胞定位载体上，反应体系如下：T4 DNA连接酶(5U/μL)1μL，10×buffer 1μL，目的基因片段5μL，pBWA(V)HS-GLosgfp载体3μL；反应条件：16℃，2h。连接产物转化感受态E.coli DH5α，涂布LB平板(50mg/L Kan)培养，37℃过夜倒置培养形成单菌落。

1.7原生质体细胞制备及OsMYB27亚细胞定位分析

原生质体制备方法如下：选择3～4周大、生长状态良好的拟南芥叶片，叶片的上表皮固定在美纹胶纸上，利用透明胶带撕去叶片下表皮，然后沿着叶片轮廓剪下后将其放入酶溶液中，24℃光照条件下50rpm摇1～2h，用于亚细胞定位分析。通过PEG介导的转化方法将OsMYB27融合GFP亚细胞定位载体和空对照载体转入拟南芥原生质体细胞中，激光扫描共聚焦显微镜(Zeiss LSM780)下观察定位情况。

1.8 OsMYB27基因植物表达载体的鉴定

挑取OsMYB27基因植物表达载体质粒转化E.coli DH5α后形成的单克隆，提取质粒进行PCR鉴定。阳性质粒转化至感受态农杆菌EAH105，涂布LB平板(50mg/L Kan、50mg/LRif)培养，28℃倒置培养2d，挑选阳性克隆提取质粒并进行酶切验证。

1.9农杆菌侵染和转基因苗的获得

以水稻愈伤组织为实验材料。OsMYB27基因植物表达载体(质粒)通过冻融法转化农杆菌EHA105。分别挑取农杆菌(含有OsMYB27基因植物超表达载体)单克隆于28℃培养过夜，取10mL培养液，3000rpm，20min，离心收集菌体沉淀，分别重悬于AAI培养液(AAI培养液，30g/L蔗糖，70g/L葡萄糖，200μmol/L乙酰丁香酮，PH5.2)内，OD₆₀₀＝1.0，然后将悬浮液在摇床上28℃振荡培养3-5h。将长到一定大小的水稻愈伤组织挑出，放入农杆菌悬浮液浸染30min；然后将愈伤组织取出，置于灭菌滤纸上沥干50min；将愈伤组织置于共培养基(2N6，10g/L葡萄糖，200μmol/L乙酰丁香酮，PH 5.5)上，28℃暗培养3d。三天后用500mg/L头孢霉素的灭菌水清洗6遍，100mL灭菌水(包含16μL吐温)清洗5遍，然后用无菌水清洗一遍。将沥干的水稻愈伤组织转移到筛选培养基(2N6，500mg/L头孢美素，50mg/L潮霉素)，28℃暗培养30d。将新长出的抗性愈伤组织转入分化培养基(MS+30g/L蔗糖+30g/L山梨醇+2mg/L6-BA(花之舞用KT)+0.8％琼脂+1.0mg/L NAA+250mg/L头孢霉素+50mg/L潮霉素+2g/L水解酪蛋白，PH 5.8)。挑取出现绿芽的水稻愈伤移入装有生根培养基(MS/2+30g/L蔗糖+250mg/L头孢霉素+50mg/L潮霉素)的三角瓶中，放入恒温培养箱28℃光培养15d。准备移栽。首先通过潮霉素抗性基因和GUS活性分析对阳性转基因植株进行初步筛选，然后通过qRT-PCR技术检测目的基因在野生型和转基因植株中的表达情况，进一步对初次筛选的阳性植株进行再次筛选。

2、结果与分析

2.0 OsMYB27基因组织特异性表达分析

经过实时荧光定量PCR分析，结果如图1所示，该基因分布广泛，但是主要分布在水稻分蘖中。

2.1 OsMYB27基因编码一个核定位蛋白

构建了OsMYB27融合GFP表达载体即35S::OsMYB27-GFP，然后将其和对照载体35S::GFP一起转化拟南芥原生质体细胞，并置于荧光共聚焦显微镜下观察定位情况。

结果如图2所示表明，OsMYB27定位于细胞核。

2.2 OsMYB27基因在野生型和转基因水稻中的表达情况检测

取14d的野生型和转基因水稻叶片进行RNA提取，以1μg的RNA 做模板，按照cDNA合成试剂盒(TaKaRa)操作说明合成第一链cDNA。以OsMYB27基因cDNA设计特异定量PCR引物(见表2)，通过qRT-PCR检测了OsMYB27基因在野生型和转基因株系OvOsMYB27(OE1,OE2和OE3)中表达情况。

结果如图4所示，OsMYB27基因在OsMYB27转基因植株中的表达显著高于在野生型中的表达。

2.3 OsMYB27基因在野生型和转基因水稻中的表型分析

如图3所示：表型分析表明，超表达OsMYB27基因显著增加了转基因植株分蘖数目；如图5所示，统计学分析表明，OsMYB27转基因植株从萌发后30天开始，其分蘖数目显著高于野生型，超表达OsMYB27基因后水稻分蘖数从20-27个增加到135-145个；如图6和图7所示，表型分析表明，与野生型相比，OsMYB27基因转基因植株在第二茎处和第三茎处均出现了分蘖且是有效分蘖；如图8所示，统计学分析表明，与野生型相比，OsMYB27基因转基因植株结实率没有明显差异；如图9和图10所示，与野生型植株相比，OsMYB27转基因植株株高显著低于野生型。

上述结果为进一步使OsMYB27基因应用于水稻、小麦高产品种改良奠定了良好的基础和新的基因资源。

2.4 OsMYB27序列对应基因的全长

OsMYB27序列对应基因的全长序列为1197bp，如SEQ ID NO：1所示，其中包含完整读码框序列长度为447bp，序列如EQ ID NO：2。

采用NCBI ORF-finder预测其编码蛋白质为148个氨基酸，序列如SEQ ID NO：3所示

根据序列分析，OsMYB27为一个功能未知的新的和水稻分蘖相关的基因，尚没有与其同源的任何功能已知的基因被发现。

以上所述的实施例仅是对本发明的优选方式进行描述，并非对本发明的范围进行限定，在不脱离本发明设计精神的前提下，本领域普通技术人员对本发明的技术方案做出的各种变形和改进，均应落入本发明权利要求书确定的保护范围内。

序列表

<110> 周口师范学院

<120> 水稻分蘖控制基因OsMYB27及其在育种上的应用

<160> 3

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 1197

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

accggcacac gcaacgccat catcgtcgct cgtagcagca gtagcgtacc acacttcgca 60

ccgcgatcgt ccgtgtttgt gtcgtccacg ggaagggacc gagaggcttg gaggaaagga 120

ggggagactc actcggcatg gatttgtacg gcgcggcggc gggcggggga ccggtggcga 180

ggcgaccgtg gagcaaggtg gaggacaagg tgttcgagag cgcgctggtg ctgtgcccgg 240

aggacgtccc cgaccggtgg gcgctcgtcg cggcgcagct cccagggcgc acgccgcagg 300

aggccttgga gcactaccag gtgctcgtcg ccgacatcga tctcatcatg cgcggcgccg 360

tcgacgcccc cgggtcctgg gacgataacg acggcaacga ccgccgcggc ggcggcggca 420

agccccgcgg cgaggagcgg cgccgcggcg taccctggtc cgaagacgag cacaggtacg 480

gacggaagca cacctcaaac cctcgtctcc ttcccttccc tcctcctccc ctgctcgtct 540

ctgttccaga ggcttctcga tttttctcgc gatcttttcc gcattgcttc gtcaaagccg 600

agagaaacca acaaactctt cccagctggc agatggcccc cacctgccag ccaccccccc 660

tcaatcgcaa ccgcctttcc cgtgtaaatt cacttcgttt tgctccacca tgcgtgtgtg 720

tgcaggttgt ttctcgaggg gttggacagg tacgggcggg gagactggag gaacatctcg 780

cggttctcgg tgaggacgcg gacgccgacg caggtggcga gccacgcgca gaagtacttc 840

atccggcagg ccaacgccgg cgcccgcgac tccaagcgca agagcatcca tgacatcacc 900

accccttgac cagcgtcggc gacggcgacc cacccccttt ctttgcaact ctttggatta 960

agtgaaacaa gcaaggggta ggcgatgacg tgtacattat atcctacacc acaacatagg 1020

caagtagtac tgtcaaaccg tttgtcactt ggggctctct gatccataac cgtggacggc 1080

ctacttgccg gaaacagagg ctgttgagag ctccggtcgg cacacggttt gggctttagg 1140

tttttcagca ttaattagga ttagctaagt caaggactaa tggggtttga cgtggca 1197

<210> 2

<211> 447

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

atggatttgt acggcgcggc ggcgggcggg ggaccggtgg cgaggcgacc gtggagcaag 60

gtggaggaca aggtgttcga gagcgcgctg gtgctgtgcc cggaggacgt ccccgaccgg 120

tgggcgctcg tcgcggcgca gctcccaggg cgcacgccgc aggaggcctt ggagcactac 180

caggtgctcg tcgccgacat cgatctcatc atgcgcggcg ccgagcggcg ccgcggcgta 240

ccctggtccg aagacgagca caggttgttt ctcgaggggt tggacaggta cgggcgggga 300

gactggagga acatctcgcg gttctcggtg aggacgcgga cgccgacgca ggtggcgagc 360

cacgcgcaga agtacttcat ccggcaggcc aacgccggcg cccgcgactc caagcgcaag 420

agcatccatg acatcaccac cccttga 447

<210> 3

<211> 148

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

Met Asp Leu Tyr Gly Ala Ala Ala Gly Gly Gly Pro Val Ala Arg Arg

1 5 10 15

Pro Trp Ser Lys Val Glu Asp Lys Val Phe Glu Ser Ala Leu Val Leu

20 25 30

Cys Pro Glu Asp Val Pro Asp Arg Trp Ala Leu Val Ala Ala Gln Leu

35 40 45

Pro Gly Arg Thr Pro Gln Glu Ala Leu Glu His Tyr Gln Val Leu Val

50 55 60

Ala Asp Ile Asp Leu Ile Met Arg Gly Ala Glu Arg Arg Arg Gly Val

65 70 75 80

Pro Trp Ser Glu Asp Glu His Arg Leu Phe Leu Glu Gly Leu Asp Arg

85 90 95

Tyr Gly Arg Gly Asp Trp Arg Asn Ile Ser Arg Phe Ser Val Arg Thr

100 105 110

Arg Thr Pro Thr Gln Val Ala Ser His Ala Gln Lys Tyr Phe Ile Arg

115 120 125

Gln Ala Asn Ala Gly Ala Arg Asp Ser Lys Arg Lys Ser Ile His Asp

130 135 140

Ile Thr Thr Pro

145

Claims (10)

1.一种控制水稻分蘖基因OsMYB27，其特征在于，其核苷酸序列为如下(a)或(b)所示序列：

(a)如SEQ ID NO：1所示的核苷酸序列；

(b)如SEQ ID NO：2所示的核苷酸序列。

2.一种蛋白，其特征在于，其氨基酸序列由权利要求1所述的控制基因OsMYB27编码。

3.如权利要求2所述的蛋白，其特征在于，所述蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO：3所示。

4.如权利要求3所述的蛋白，其特征在于，所述蛋白还包括与如SEQ ID NO：3所示序列具有至少30％同源性且具有和SEQ ID NO：3所示序列相同的功能的氨基酸序列。

5.一种重组载体，其特征在于，包括权利要求1所述的控制基因OsMYB27。

6.一种如权利要求1所述的控制水稻分蘖基因OsMYB27或权利要求2-4任一项所述的蛋白或权利要求5所述的重组载体在植物组织表达中的应用。

7.如权利要求1所述的应用，其特征在于，所述植物组织为单子叶植物或双子叶植物的根、茎、叶、花、分蘖芽或种子。

8.如权利要求7所述的应用，其特征在于，所述单子叶植物为水稻、小麦、大麦或玉米，所述双子叶植物为番茄、烟草或土豆。

9.一种如权利要求1所述的控制水稻分蘖基因OsMYB27或权利要求2-4任一项所述的蛋白或权利要求5所述的重组载体在培育禾谷类作物高产品种中的应用。

10.如权利要求9所述的应用，其特征在于，应用于构建转基因禾谷类作物，所述转基因禾谷类作物的分蘖数增加，进而增加单产，从而用于高产品种的培育。

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