CN112225326A - 菌丝体材料在吸油中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及生物材料应用领域，公开了菌丝体材料在吸油中的应用，所述菌丝体材料由真菌的菌丝构成。所述菌丝体材料具有较好的吸油性能，在石油泄漏、水上油污清除，含油废水的处理，气体中油雾的吸附等方面有着良好的应用潜力。
Description
技术领域
本发明涉及生物材料应用领域，具体涉及菌丝体材料在吸油中的应用。
背景技术
油类污染主要分为溢油污染和含油废水污染。石油化工、采矿业、食品工业、纺织工业、金属工业、水上设备和餐饮业等均会产生含油废水，厨房和生活垃圾是城市污水中含油废水的主要来源。另外还有一类油污染，是随气体排放/挥发出来的油，有些内燃机、以油润滑的空气压缩机和真空泵等排出的气体中含有雾状的油和/或气态的油分子。
处理溢油污染、含油废水和气体中的油，使用吸油材料吸附是常用的有效方法之一。吸油也是清除地面及物体上油污的最佳选择之一。对于保持地面、走道、车间工作环境洁净，杜绝因油气挥发而引发爆炸事故，减少大气中的油污染均有积极作用。
近年来研制的很多新型吸油材料，尽管吸油率很高，但尚不具备商业上的可行性。从现实应用的角度，必须考虑吸油的成本，包括吸油材料的成本和使用成本，比如，吸收一定质量的油所需吸油材料的原料、制造、运输、储存、吸油操作过程的成本，吸油材料使用后的无害化处置成本等。此外，吸油材料的安全性和环境协调性也是重要的评价指标。目前使用最普遍的是合成高分子吸油材料，但其生产多是以石油为原料，不可生物降解，后续处理麻烦易造成二次污染，生产工艺复杂，生产过程的危险性较高，成本相对较高。
因此，开发原料廉价、易得、可再生，生产工艺简单，成本低及环境协调性好(环保性能，特别是生物可降解)的吸油材料具有重要的现实应用价值。
发明内容
本发明的目的是为了克服现有技术存在的问题，提供菌丝体材料在吸油中的应用。
本发明的发明人在研究中发现，真菌菌丝体具有优异的吸油性能，因此，为了实现上述目的，本发明一方面提供了一种菌丝体材料在吸油中的应用，其中，所述菌丝体材料由真菌的菌丝构成。
本发明第二方面提供了一种吸油的方法，该方法包括：将菌丝体材料与油进行接触，所述菌丝体材料由真菌的菌丝构成。
所述菌丝体材料具有较好的吸油性能，在石油泄漏、水上油污清除及气体油的吸附等方面有着良好的应用潜力；可用于水体净化或油污吸附，包括：海上、河域和湖泊等水体表面浮油污染处理，含油的工业污水净化，有机溶剂以及生活厨余油脂处理及地面油污吸附等；可用于揩拭物体表面的油污；也可用于吸附气体中的雾状的油和/或气态的油分子。
具体地，本发明具备以下优点：
(1)菌丝体材料的制备方法简便易行，固体培养和液体培养均可获得菌丝体材料，主要原料来自天然产物、生物质和工业副产物，可再生，来源广，成本低。
(2)菌丝体材料由菌丝构成，是有机体，不使用不可降解的有机物，因而可完全降解。
(3)本发明的菌丝体材料的制备过程节能环保，仅依靠培养的菌丝生长成片状，制备过程的意外事故(爆炸、火灾等)风险小，整个生命周期的碳排放少。
(4)菌丝体材料柔软，可折叠，可卷绕，可以揩擦的方式使用。
(5)进一步地，借助保藏编号为CGMCC No.10485的撕裂蜡孔菌(Ceriporialacerata)，培养基质(原料)可在不经灭菌或抑菌处理的情况下制备菌丝体材料，且制备过程不要求无菌环境，在很大程度上降低了制备成本。
具体实施方式
在本文中所披露的范围的端点和任何值都不限于该精确的范围或值，这些范围或值应当理解为包含接近这些范围或值的值。对于数值范围来说，各个范围的端点值之间、各个范围的端点值和单独的点值之间，以及单独的点值之间可以彼此组合而得到一个或多个新的数值范围，这些数值范围应被视为在本文中具体公开。
本发明第一方面提供了菌丝体材料在吸油中的应用，所述菌丝体材料由真菌的菌丝构成。诸多菌丝交织形成菌丝体，即菌丝体是由许多管状的菌丝交织形成。管状的菌丝内部充满原生质体、细胞核和线粒体等各种细胞器。隔膜将菌丝分隔成许多细胞，隔膜上有膜孔[张金霞等，中国食用菌菌种学[M]，北京：中国农业出版社，2011：62]。
本发明中，所述菌丝体材料呈一定厚度的片状，可以根据需要通过任何合适的技术(切割、冲孔、撕拉等方式)将其剪裁为各种形状的片状、条状、丝状；也可以制成颗粒状(方形或球形)，还可以为袋状；亦可以为不规则不平整的有凹凸立体形状的异形结构，不如盘状、碗状、桶状、管状等；也可以将二层或多层片状的菌丝体材料叠放，通过生长/粘接/压制等方式而制成更厚的材料。为了适应不同的吸油场景，本领域技术人员能够对所述菌丝体材料的形状进行选择。为了制备适应不同场景的菌丝体材料，可以通过高温、高压等方式对菌丝体材料进行成型或辅助成型，也可以通过添加其他辅助材料(如纸、纤维、网、纺织品、膜等)来增强材料的力学性能。可以通过改变培养条件，或是通过物理(如：刺孔)、化学的方法增加菌丝体材料的通透性，以提高气体的透过率。
本发明中，所述油可以是现有的在一定条件下能够呈液态的疏水性物质，也即包括在一定条件下呈液态，而在另一种条件下呈非液态(固态)的物质。例如，所述油可以是25℃时在100mL水中溶解度小于1g的物质。在实际应用时，所述菌丝体材料在被吸附对象(油)呈液态的温度下进行吸油。也可以是气体中含有的油雾或是气态的油分子。
优选地，所述油的表面张力小于40×10-3N/m。
优选地，所述油的密度小于1g/cm3。
本发明中，所述油可以是天然存在的，也可以是人工合成的。
优选地，所述油选自植物油、矿物油、动物油和人工合成的非水溶性液体中的至少一种。其中，所述植物油可以为花生油、豆油、亚麻油、蓖麻油、菜子油、玉米油、橄榄油、胡麻油、肉桂油、香精油等。所述矿物油可以为石油(原油)、凝析油、汽油、煤油、柴油、润滑油、变压器油、机油、液体石蜡、石蜡、煤焦油。所述动物油可以来源于猪、牛、羊、马、鸡、昆虫(如蜂蜡、虫蜡等)等。人工合成的非水溶性液体包括各种硅油、芳香烃(如苯、甲苯、二甲苯、二氯甲苯、溴苯等)、烷烃(如十五烷、十四烷、十三烷、十二烷、十一烷、壬烷、异辛烷、己烷、三氯甲烷、四氯甲烷等)、环烷烃(如环己烷、环戊烷、环庚烷等)、醚(如石油醚、丁醚等)、酯(如油酸丁酯、乙酸丁酯、棕榈酸丁酯等)、酮(如2-壬酮、甲基异丁酮、3-己酮等)、有机酸(如辛酸等)中的至少一种。
本发明中，所述菌丝体材料可以通过现有的各种制备菌丝的方法获得，本发明对此没有特别的限制，优选情况下，所述菌丝体材料的制备方法为：将真菌进行固体培养，在固体培养基质的表面获得有一定厚度的菌丝体，再该层菌丝体从培养基质上分离下来。根据更优选的实施方式，所述菌丝体材料的制备方法为：将真菌接种至可供其菌丝生长的固体培养基质中进行培养，获得含有菌丝体的培养物，再从培养物表层分离不含培养基质的菌丝体层，而后进行脱水。
所述菌丝体材料的制备方法分为液体培养和固体培养两种方式。液体培养的制备方式是在液体培养基中静置培养真菌的营养菌丝，菌丝在培养液的表面生长成片状的菌丝膜，将菌丝膜收集、(清洗)干燥，即获得菌丝体材料。固体培养的制备方式是将真菌接种至适宜的固态培养基质进行培养，在固态培养基质表面生长出有一定厚度的菌丝体膜，(将这层菌丝体膜从培养基质上分离下来，(清洗)干燥)这层菌丝体膜即为菌丝体材料。
本发明中，对所述固体培养基质的来源没有特别的限制，优选为能够为真菌菌丝的形成提供营养源或载体的原料，可以来源于植物、植物性废料、动物性营养源、微生物性营养源、合成营养源中的至少一种。
本发明中，所述固体培养基质可以来源于植物，例如种子、茎秆、根、叶和果实中的至少一种，即，可以来源于木、竹、棉花、棉绒、纸、麦秸、麻、甘蔗以及它们的加工或提取剩余物(即植物性废料)。也可以为玉米粉等谷物粉、淀粉、糊精、麦芽糖、葡萄糖、蔗糖、果糖、木糖等。还可以来源于动物和/或植物蛋白及其水解物，如牛肉浸膏、鱼粉、明胶、大豆蛋白、豆粕水解液等。也可来源于微生物，如酵母粉、酵母浸粉。所述固体培养基质还可以为合成营养源，根据需要还可以在培养基质中添加一定的无机盐、维生素等营养源，例如，硫酸钙，还可以添加钾盐、镁盐、磷酸盐、硫酸盐、亚铁盐、氨基酸、维生素B1等营养物质促进菌丝生长。
本发明中，对所述植物性原料的形状和大小没有特别的要求，可以为片状、条状、颗粒状或其他不规则形状。
本发明中，所述真菌可以选自各种常见的能够形成菌丝的真菌，如子囊菌(Ascomycote)和担子菌(Basidiomycota)中的大型真菌(蘑菇，又称蕈菌)，可以选自蘑菇科(Agaricaceae)、木耳科(Auriculariaceae)、瘤孢多孔菌科(Bondarzewiaceae)、拟层孔菌科(Fomitopsidaceae)、灵芝科(Ganodermataceae)、褐褶菌科(Gloeophyllaceae)、马鞍菌科(Helvllaceae)、羊肚菌科(Morchellaceae)、光茸菌科(Omphalotacea)、泡头菌科(Physalacriaceae)、侧耳科(Pleurotaceae)、光柄菇科(Pluteaceae)、多孔菌科(Polyporaceae)、红菇科(Russulaceae)、裂褶菌科(Schizophyllaceae)、革菌科(Stereaceae)、球盖菇科(Strophariaceae)、韧革菌科(Thelephoraceae)、银耳科(Tremellaceae)和白蘑科(Tricholomataceae)中真菌中的至少一种。
优选地，所述真菌选自蘑菇属(Agaricus)、田头菇属(Agrocybe)木耳属(Auricularia)、烟管菌属(Bjerkandera)、瘤孢多孔菌属(Bondarzewia)、蜡孔菌属(Ceriporia)、杯伞属(Clitocybe)、革盖菌属(Coriolus)、拟迷孔菌属(Daedaleopsis)、大孔菌属(Favolus)、冬菇属(Flammulina)、层孔菌属(Fomes)、拟层孔菌属(Fomitopsis)、灵芝属(Ganoderma)、粘褶菌属(Gloeophyllum)、马鞍菌属(Helvella)、沿丝伞属(Hypholoma)、纤孔菌属(Inonotus)、乳菇属(Lactarius)、香菇属(Lentinula)、离褶伞属(Lyophyllum)、羊肚菌属(Morchella)、韧伞属(Naematoloma)、丘伞属(Nolanea)、脐盖菇属(Omphalia)、革耳属(Panus)、木层孔菌属(Phellinus)、环锈伞菌属(Pholiota)、剥管菌属(Piptoporus)、侧耳属(Pleurotus)、乌茸属(Polyozellus)、多孔菌属(Polyporus)、茯苓属(Poria)、锈迷孔菌属(Porodaedalea)、褐层孔菌属(Pyropolyporu)、裂褶菌属(Schizophyllum)、韧革菌属(Stereum)、栓菌属(Trametes)、银耳属(Tremella)、口蘑属(Tricholoma)、干酪菌属(Tyromyces)和小包脚菇属(Volvariella)中的真菌中的至少一种。
更优选地，所述真菌选自双孢蘑菇(Agaricus bisporus)、双环林地蘑菇(Agaricus placomyces)、茶树菇(Agrocybe aegerita)木耳(Auricularia auricula)、烟色烟管菌(Bjerkandera fumosa)、伯氏圆孢地花(Bondarzewia berkeleyi)、撕裂蜡孔菌(Ceriporia lacerata)、大杯蕈(Clitocybe maxima)、二型革盖菌(Coriolus biformis)、毛革盖菌(Coriolus hirsutus)、云芝(Coriolus versicolor)、粗糙拟迷孔菌(Daedaleopsis confragosa)、三色拟迷孔菌(Daedaleopsis tricolor)、漏斗大孔菌(Favolus arcularius)、金针菇(Flammulina velutipes)、木质层孔菌(Fomes ligneus)、红缘拟层孔菌(Fomitopsis pinicola)、灵芝(Ganoderma lucidum)、松杉灵芝(Ganodermatsugae)、蜜粘褶菌(Gloeophyllum trabeum)、马鞍菌(Helvella elastica)、橙黄褐韧伞(Hypholoma capnoides)、桦褐孔菌(Inonotus oblique)、浓香乳菇(Lactariuscumphoratus)、香菇(Lentinula edodes)、洁丽香菇(Lentinus lepideus)、榆干离褶伞(Lyophyllum ulmarium)、小羊肚菌(Morchella deliciosa)、砖红韧黑伞(Naematolomasublateritium)、细毛柄丘伞(Nolanea hirtipes)、雷丸(Omphalia lapidescens)、野生革耳(Panus rudis)、裂蹄木层孔菌(Phellinus linteus)、滑菇(Pholiota nameko)、桦剥管菌(Piptoporus betulinus)、杏鲍菇(Pleurotus eryngii)、白灵菇(Pleurotusnebrodensis)、糙皮侧耳(Pleurotus ostreatus)、乌茸菌(Polyozellus multiplex)、冬生多孔菌(Polyporus brumalis)、桑生卧孔菌(Poria moricola)、金缘锈迷孔菌(Porodaedalea chrysoloma)、木蹄(Pyropolyporus fomentarius)、裂褶菌(Schizophyllum commune)、扁韧革菌(Stereum fasciatum)、毛韧革菌(Stereumhirsutum)、东方栓菌(Trametes orientalis)、血红栓菌(Trametes sanguinea)、银耳(Tremella fuciformis)、苦口蘑(Tricholoma acerbum)、接骨木状干酪菌(Tyromycessambuceus)和草菇(Volvariella volvacea)中的至少一种。
进一步优选地，所述真菌选自撕裂蜡孔菌和/或糙皮侧耳。
如前所述，所述菌丝体材料可以通过任何常规的方式制得，以下主要以撕裂蜡孔菌、糙皮侧耳为例描述所述菌丝体材料的制备方法。
本发明中，所述培养可以在常规的培养真菌的条件下进行，以撕裂蜡孔菌为例，固体培养制备菌丝体材料所述的培养条件包括：温度15-35℃，培养环境的相对湿度为40-95％。所述培养的时间可以根据接种量和菌丝体材料的预期用途进行适当的选择，一般地，所述培养的时间为5-15天。真菌的接种量可以为1-10g/kg培养基质。需要特别说明的是，本发明涉及的接种量和含菌量均以菌丝体的干重(105℃干燥至恒重时的重量)计；本发明涉及的培养基质的质量同样以干重(105℃干燥至恒重时的重量)计。
本发明中，所使用的撕裂蜡孔菌CGMCC No.10485具有较强的抵抗杂菌的能力，因此所述培养无需在无菌条件下进行操作，即，所使用的培养基质可以不经灭菌或抑菌处理(包括消毒和杀菌等各种常规的抑制菌生长或繁殖的方式)而直接使用，接种适量的撕裂蜡孔菌后也不需要将其与外界环境无菌地隔离而进行无菌培养(所述培养基质为未经灭菌或抑菌处理的培养基质，和/或所述培养方式为开放式培养(即非无菌式培养))。其中，灭菌或抑菌处理包括湿热灭菌、干热灭菌、热消毒、热杀菌、辐射杀菌、化学熏蒸，额外添加杀菌剂和/或抑菌剂和/或抗菌剂和/或有溶菌、抑菌作用的酶等各种杀菌或抑菌的处理方式。
本发明中，培养结束后，收获菌丝体层，即可获得菌丝体材料；可以对得到的菌丝体材料进行水洗，减少菌丝体材料中水溶性物质的含量；可以对得到的菌丝体材料进行脱水，获得干燥的菌丝体材料。对收获菌丝体层的方式没有特别的要求，可以是从培养液中捞出菌丝体膜，可以是从固态培养物表面将菌丝体层片切下来。所述脱水的方式优选为真空干燥、热风干燥、微波干燥、红外线干燥、冷冻干燥、晾晒和自然风干。所述干燥的条件可以为常规的干燥条件，例如，当采用热风干燥的方式进行干燥时，干燥的条件可以包括温度为50-260℃，时间为0.1-24h。
本发明中，所述菌丝体材料的吸油倍率不低于3g/g。“吸油倍率”是指在设定的测试时间内，单位质量的菌丝体材料能够吸附的油的质量，即特定时间内，菌丝体材料试样所吸附的油的质量与该试样吸油前的干燥质量之比，单位为g/g。
本发明第二方面提供了一种吸油的方法，该方法包括：将菌丝体材料与油(液态的油或气体中的油雾或气态的油分子)进行接触，所述菌丝体材料由真菌的菌丝构成。
本发明的方法中，对所述菌丝体材料的用量没有特别的要求，本领域技术人员能够根据待吸附的油量及菌丝体材料的吸油倍率进行选择。
本发明的方法中，所述油可以为各种场景下泄露或产生的油，因此，本发明的方法适用于：海洋、港湾和河湖等各类水体溢油和油污的捕集、回收；油车、油箱、输油管道、车间、机器周围等小面积漏油的围拦和吸附；工厂废水和循环水中油的吸附；养殖场或浴场等防油类入侵的保护围挡；有机溶剂的吸收及脱臭；油水分离装置的吸油填料；泄漏龙头、阀门、管道和设备下吸收有害滴漏；铺设在生产线、机器、汽车下，或者放在工作台上用于吸附清理油类溢漏、滴漏和泄漏；吸附市政污水中的油；可以用于吸附气体中的雾状的油和/或气态的油分子；也可用于揩拭物体表面的油污。
本发明的方法中，还可以包括制备所述菌丝体材料的步骤，以及将使用后或吸了油的菌丝体材料进行后处理(如焚烧)，并将焚烧产生的热量回收利用的步骤，从而使菌丝体材料的价值最大化，碳排放最少化。因此，根据一种具体的实施方式，所述方法包括以下步骤：
(1)制备菌丝体材料；
(2)将所述菌丝体材料与液态的油或气体中的油雾或气态的油分子进行接触；
(3)对步骤(2)中吸了油的菌丝体材料进行后处理，所述后处理选自再利用和焚烧中的至少一种。
需要说明的是，有关菌丝体材料和油等的具体内容(包括原料及制备方法及性能参数等)如前所述，此处不再赘述。
以下将通过实施例对本发明进行详细描述。以下实施例中，使用的撕裂蜡孔菌的保藏编号为CGMCC No.10485，已公开于CN106318876A。
制备例1
一级种子液和基础发酵液的制备
将撕裂蜡孔菌(以下简称YY菌)菌种转接入克氏瓶斜面，培养基采用PDA培养基，25℃培养7天，得到斜面菌种。
PDA培养基的制备方法：取去皮的马铃薯200g，切成小块，加水1L，煮沸30min，滤去马铃薯块，将滤液补足至1.0L，即为马铃薯浸取液。1.0L马铃薯浸取液加葡萄糖20.0g、琼脂15.0g，自然pH，121℃灭菌20min。
将斜面菌种接入一级种子的液体培养基，该培养基的质量百分比配方为：可溶性淀粉2％，玉米浆干粉0.6％，磷酸二氢钾0.1％，自然pH，121℃灭菌20min。培养条件：装液量为150mL/500mL挡板三角瓶，接种量约3cm2菌苔，于25℃摇床150rpm培养3天，得到一级种子液。
将一级种子液接入液体培养基，该培养基的质量百分比配方为：葡萄糖12％，玉米浆干粉0.4％，酵母膏0.2％，蛋白胨0.1％，磷酸二氢钾0.5％，MgSO4·7H2O 0.3％，pH自然，115℃灭菌30min。装液量150mL/500mL挡板三角瓶，按5％的体积比接种，于25℃摇床150rpm培养5天，获得YY菌的基础发酵液(生物量干重为9g/L)。
实施例1
将制备例1获得的基础发酵液置于盘中，25℃静置培养7天，在基础发酵液的液面生成2-3mm厚的片状菌丝体层，将该菌丝体片取出，水洗，60℃干燥5h，得到菌丝体材料A。该制备过程不需要无菌操作。
实施例2
将制备例1获得的基础发酵液过滤，分别收集滤液和菌丝体，将收集的菌丝体压成片状，置于培养皿中，加少量滤液，于90％湿度，25℃培养5天，菌丝体生长成更厚的片状，取出，水洗，65℃干燥4h，得到菌丝体材料B。上述工艺过程可以不需要无菌操作。
制备例2
制备固体菌种。
将制备例1制备的一级种子液或基础发酵液，接种固体菌种的培养基，接种量10％(质量比)，25℃，相对湿度90％培养5天，获得固体菌种。
固体菌种培养基成分的质量百分比是：杨树木屑(20目筛下物)35％，葡萄藤(20目筛下物)35％，麸皮10％，花生壳粉8.9％，糊精5％，甘油3％，硫酸铵2％，硫酸钙0.5％，KH2PO4 0.3％，MgSO4·7H2O 0.2％，维生素B1 0.1％。调整水份含量为65％，121℃灭菌30min。
实施例3
将制备例2制备的固体菌种按10％的质量比接入培养基质(该培养基质的质量百分比为：棉籽壳40％，玉米芯25，木屑13％，麸皮20％，玉米浆干粉0.5％，磷酸二氢钾0.5％，石膏1％。调水分含量为65％，pH自然，121℃灭菌30min)，平整上表面，于25℃培养20天，培养基质表面生成一层菌丝体，揭下该层菌丝体，60℃干燥5h，得菌丝体材料C。
制备例3
将制备例1制备的一级种子液按5％的体积比接入二级种子的液体培养基，该培养基的质量百分比配方为：葡萄糖8％，玉米浆干粉0.8％，磷酸二氢钾0.5％，pH自然，115℃灭菌30min。装液量150mL/500mL挡板三角瓶，于25℃摇床150rpm培养3天。获得二级种子液(生物量干重为5g/L)。
实施例4
将制备例3获得的二级种子液与未经灭菌处理的培养基质(培养基质成分的质量百分比为：大豆秆(粒径在2-15mm范围内)79％，麸皮20％，石膏1％)混合，接种量为4g/kg培养基质，培养基质的含水量控制在65-70％。将接种后的培养基质置于盘中，平整上表面，在25℃进行开放式培养，培养环境的相对湿度为85％，菌丝在培养基质中充分生长，培养9天，培养基质表面的菌丝体厚约5mm，将培养基质表面的菌丝体用刀片切下来，置于55℃干燥6h，得到菌丝体材料D。
实施例5-6
按照实施例4的方法制备菌丝体材料E、F，不同的是，分别用“质量比为1:1的大豆秆和玉米秸”、“质量比为1:1的大豆秆和棉籽壳”替换实施例4培养基质中的大豆秆。
实施例7
将制备例3获得的二级种子液与未经灭菌处理的培养基(培养基成分的质量百分比为：杨树的木屑(粒径在2-15mm范围内)79％，麸皮20％，石膏1％)混合，接种量为10g/kg培养基，在28℃进行开放式培养2天(培养环境的湿度为85％)，使菌丝在培养基质中充分生长，然后将培养物打散，平铺，开放式培养7天，培养基质表面菌丝体膜4mm厚，分离菌丝体与基质。菌丝体膜，于70℃干燥3h，得到菌丝体材料G。
制备例4
糙皮侧耳(Pleurotus ostreatus)即是可以食用的平菇。将糙皮侧耳(购自中国普通微生物保藏管理中心，CGMCC 5.759)菌种，转接入克氏瓶斜面，培养基采用PDA培养基，25℃培养7天，得到斜面菌种。
将斜面菌种接入PDL培养基，自然pH，121℃灭菌20min。培养条件：装液量为150mL/500mL挡板三角瓶，接种量约3cm2菌苔，于25℃摇床150rpm培养3天，得到糙皮侧耳种子液(生物量干重为9g/L)。
PDL培养基的制备方法：取去皮的马铃薯200g，切成小块，加水1L，煮沸30min，滤去马铃薯块，将滤液补足至1.0L，即为马铃薯浸取液。1.0L马铃薯浸取液加葡萄糖18.0g、乳糖5.0g，自然pH，121℃灭菌20min。
实施例8
采用无菌操作将制备例4获得的糙皮侧耳种子液接种于经灭菌处理的培养基质(培养基质成分的质量百分比为：苞米皮18％，玉米芯30％，甘蔗渣30％，麸皮20％，蔗糖1％，石膏1％)混合，接种量为8g/kg培养基质，培养基质的含水量65-70％。装入无菌盘中，平整培养基质的表面，25℃培养。培养环境要求无菌，防止杂菌污染。培养20天，培养基质表面的菌丝体6mm厚，剥离菌丝体，于65℃干燥3.5h，得到菌丝体材料H。
实施例9
将制备例3获得的二级种子液与未经灭菌处理的培养基质(培养基质成分的质量百分比为：经酸处理的竹纤维(宜宾长顺竹木产业有限公司生产竹原纤维的下脚料，长度30-80mm)30％，大豆秆67％，豆粕的酸水解液2％，石膏1％)混合，接种量为2g/kg培养基质，培养基质的含水量65-70％。25℃，相对湿度85％培养3天，打散培养物，摊平继续培养30天，培养基质表面菌丝体约6mm厚。揭下菌丝体片，于80℃下干燥10h，得到菌丝体材料I。
测试实施例1
本测试实施例示出了本发明的菌丝体材料吸油倍率的测定方法和结果。
(Ⅰ)全油体系的静态吸油倍率：
将适量的菌丝体材料置于测试的油中，菌丝体材料于23℃±2℃与油静置接触10min，将菌丝体材料与油一起倾倒于筛网上，沥油3min，称量菌丝体材料吸油后的质量。吸油倍率的计算公式如下：
其中，“试验前材料的干燥质量”是指材料试样在105℃干燥至恒重时的质量。
全油体系的静态吸油倍率测定结果见表1(每组试验3个平行)。
表1菌丝体材料在全油体系的静态吸油倍率
(Ⅱ)油水混合体系的动态吸油倍率：
将10g油和50mL去离子水置于250mL锥形瓶中，100r/min振荡混合10min；将适量的菌丝体材料置于该油水混合物中，于23℃±2℃，100r/min振荡10min，将菌丝体材料与油水混合物一起倾倒于筛网上，滴沥3min。称量滴沥后菌丝体材料的质量，然后将其置于105℃烘箱4h，脱去水分，称量其脱水后的质量。吸油倍率计算公式如下：
其中，“试验前材料的干燥质量”是指材料试样在105℃干燥至恒重时的质量。
油水混合体系的动态吸油倍率结果见表2。
表2菌丝体材料在油水混合体系的动态吸油倍率
测试实施例2
本测试实施例示出了本发明的菌丝体材料的持油率的测定方法和结果。
吸油后的材料在自然重力的作用下沥油，于不同时间点称量含油材料的质量，将沥油3min的作为持油率测定的起点(0min)，将沥油63min的作为持油率测定的60min(1h)，以此类推。
持油率的测定结果见表3。
表3菌丝体材料不同时间的持油率
测试实施例3
按照测试实施例1中之(Ⅰ)的方法测定菌丝体材料D在不同温度对大豆油(金龙鱼)的吸油倍率，测定条件100r/min振荡4h。结果见表4。
表4菌丝体材料D在不同温度对大豆油(金龙鱼)的吸油倍率
| 温度(℃) | 吸油倍率(g/g) |
| 5 | 12.72 |
| 10 | 12.89 |
| 20 | 12.78 |
| 25 | 13.12 |
| 30 | 12.96 |
| 40 | 12.87 |
测试实施例4
(1)按照测试实施例1中之(Ⅰ)的方法测试菌丝体材料E在牛油(市售)中的静态吸油倍率。测试的吸油和沥油温度均为60℃(该温度牛油为液体状态)，菌丝体材料E的吸油倍率为10.15g/g。
测试实施例5
(1)按照测试实施例1中之(Ⅰ)的方法测试菌丝体材料在不同油中的静态吸油倍率，结果见表5。
(2)按照测试实施例1中之(Ⅱ)的方法测试菌丝体材料在几种油水混合体系中的动态吸油倍率，不同的是，本测试实施例中测试的油不耐高温，因而采用分液称量方法。吸油后3min内滴沥下来的油要回到油水混合体系中。通过测量油水混合体系中油的减少量来计算材料的吸油倍率。吸油倍率的计算公式如下：
结果见表5。
表5菌丝体材料的吸油倍率
| 油 | 菌丝体材料 | 全油体系静态吸油倍率(g/g) | 油水混合体系动态吸油倍率(g/g) |
| 十五烷 | A | 3.04 | 2.67 |
| 十五烷 | G | 11.32 | 10.98 |
| 十二烷 | D | 14.32 | 未测定 |
| 十二烷 | H | 10.57 | 未测定 |
| 正己酸 | E | 11.23 | 10.08 |
| 环己烷 | F | 14.98 | 14.25 |
| 油酸丁酯 | A | 3.86 | 3.44 |
| 2-壬酮 | I | 12.22 | 未测定 |
| 三氯甲烷 | D | 13.65 | 12.84 |
本测试实施例使用的有机试剂均是市售分析纯试剂。
测试实施例6
本实施例用来说明菌丝体材料吸附气体中的油。
将菌丝体材料I热压成瓦楞状，再卷成外径5cm的圆棒状卷(吸油卷)，截取20cm长，105℃干燥至恒重，质量为4.2g。旋片式真空泵(XD-010型，抽气速度10L/s)排气管末端连接一段内径5cm，长20cm的管子，将吸油卷插入该段管子内，启动旋片式真空泵，运行1h。取下吸油卷，105℃干燥至恒重的质量是5.3g，该吸油卷的吸油量为1.1g。
以上详细描述了本发明的优选实施方式，但是，本发明并不限于此。在本发明的技术构思范围内，可以对本发明的技术方案进行多种简单变型，包括各个技术特征以任何其它的合适方式进行组合，这些简单变型和组合同样应当视为本发明所公开的内容，均属于本发明的保护范围。
Claims (6)
1.菌丝体材料在吸油中的应用，其中，所述菌丝体材料由真菌的菌丝构成。
2.一种吸油的方法，其特征在于，该方法包括：将菌丝体材料与油，特别是液态的油或气体中的油雾或气态的油分子进行接触，所述菌丝体材料由真菌的菌丝构成。
3.根据权利要求1所述的应用或权利要求2所述的方法，其中，所述菌丝体材料呈规则或不规则的片状。
4.根据权利要求1所述的应用或权利要求2所述的方法，其中，所述真菌为具有菌丝生长阶段的真菌，优选子囊菌(Ascomycote)和担子菌(Basidiomycota)中的大型真菌，选自蘑菇科(Agaricaceae)、木耳科(Auriculariaceae)、瘤孢多孔菌科(Bondarzewiaceae)、拟层孔菌科(Fomitopsidaceae)、灵芝科(Ganodermataceae)、褐褶菌科(Gloeophyllaceae)、马鞍菌科(Helvllaceae)、羊肚菌科(Morchellaceae)、光茸菌科(Omphalotacea)、泡头菌科(Physalacriaceae)、侧耳科(Pleurotaceae)、光柄菇科(Pluteaceae)、多孔菌科(Polyporaceae)、红菇科(Russulaceae)、裂褶菌科(Schizophyllaceae)、革菌科(Stereaceae)、球盖菇科(Strophariaceae)、韧革菌科(Thelephoraceae)、银耳科(Tremellaceae)和白蘑科(Tricholomataceae)中真菌中的至少一种；
仍优选地，所述真菌选自蘑菇属(Agaricus)、田头菇属(Agrocybe)木耳属(Auricularia)、烟管菌属(Bjerkandera)、瘤孢多孔菌属(Bondarzewia)、蜡孔菌属(Ceriporia)、杯伞属(Clitocybe)、革盖菌属(Coriolus)、拟迷孔菌属(Daedaleopsis)、大孔菌属(Favolus)、冬菇属(Flammulina)、层孔菌属(Fomes)、拟层孔菌属(Fomitopsis)、灵芝属(Ganoderma)、粘褶菌属(Gloeophyllum)、马鞍菌属(Helvella)、沿丝伞属(Hypholoma)、纤孔菌属(Inonotus)、乳菇属(Lactarius)、香菇属(Lentinula)、离褶伞属(Lyophyllum)、羊肚菌属(Morchella)、韧伞属(Naematoloma)、丘伞属(Nolanea)、脐盖菇属(Omphalia)、革耳属(Panus)、木层孔菌属(Phellinus)、环锈伞菌属(Pholiota)、剥管菌属(Piptoporus)、侧耳属(Pleurotus)、乌茸属(Polyozellus)、多孔菌属(Polyporus)、茯苓属(Poria)、锈迷孔菌属(Porodaedalea)、褐层孔菌属(Pyropolyporu)、裂褶菌属(Schizophyllum)、韧革菌属(Stereum)、栓菌属(Trametes)、银耳属(Tremella)、口蘑属(Tricholoma)、干酪菌属(Tyromyces)和小包脚菇属(Volvariella)中的真菌中的至少一种；
更优选地，所述真菌选自双孢蘑菇(Agaricus bisporus)、双环林地蘑菇(Agaricusplacomyces)、茶树菇(Agrocybe aegerita)木耳(Auricularia auricula)、烟色烟管菌(Bjerkandera fumosa)、伯氏圆孢地花(Bondarzewia berkeleyi)、撕裂蜡孔菌(Ceriporialacerata)、大杯蕈(Clitocybe maxima)、二型革盖菌(Coriolus biformis)、毛革盖菌(Coriolus hirsutus)、云芝(Coriolus versicolor)、粗糙拟迷孔菌(Daedaleopsisconfragosa)、三色拟迷孔菌(Daedaleopsis tricolor)、漏斗大孔菌(Favolusarcularius)、金针菇(Flammulina velutipes)、木质层孔菌(Fomes ligneus)、红缘拟层孔菌(Fomitopsis pinicola)、灵芝(Ganoderma lucidum)、松杉灵芝(Ganoderma tsugae)、蜜粘褶菌(Gloeophyllum trabeum)、马鞍菌(Helvella elastica)、橙黄褐韧伞(Hypholomacapnoides)、桦褐孔菌(Inonotus oblique)、浓香乳菇(Lactarius cumphoratus)、香菇(Lentinula edodes)、洁丽香菇(Lentinus lepideus)、榆干离褶伞(Lyophyllumulmarium)、小羊肚菌(Morchella deliciosa)、砖红韧黑伞(Naematolomasublateritium)、细毛柄丘伞(Nolanea hirtipes)、雷丸(Omphalia lapidescens)、野生革耳(Panus rudis)、裂蹄木层孔菌(Phellinus linteus)、滑菇(Pholiota nameko)、桦剥管菌(Piptoporus betulinus)、杏鲍菇(Pleurotus eryngii)、白灵菇(Pleurotusnebrodensis)、糙皮侧耳(Pleurotus ostreatus)、乌茸菌(Polyozellus multiplex)、冬生多孔菌(Polyporus brumalis)、桑生卧孔菌(Poria moricola)、金缘锈迷孔菌(Porodaedalea chrysoloma)、木蹄(Pyropolyporus fomentarius)、裂褶菌(Schizophyllum commune)、扁韧革菌(Stereum fasciatum)、毛韧革菌(Stereumhirsutum)、东方栓菌(Trametes orientalis)、血红栓菌(Trametes sanguinea)、银耳(Tremella fuciformis)、苦口蘑(Tricholoma acerbum)、接骨木状干酪菌(Tyromycessambuceus)和草菇(Volvariella volvacea)中的至少一种；
进一步优选地，所述真菌选自撕裂蜡孔菌和/或糙皮侧耳。
5.根据权利要求1所述的应用或权利要求2所述的方法，所述油选自植物油、矿物油、动物油和人工合成的非水溶性液体中的至少一种。
6.根据权利要求1所述的应用或权利要求2所述的方法，其中，所述菌丝体材料为保藏编号为CGMCC No.10485的撕裂蜡孔菌的菌丝构成的片状结构。
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