CN108553635B - 一种猪源抗菌肽pmap-36缓释胶囊 - Google Patents
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Abstract
本发明旨在提供一种猪源抗菌肽PMAP‑36缓释胶囊,其通过对猪源抗菌肽PMAP‑36进行改造,获得了一种抗菌活性更高、安全性更好的抗菌肽产品,通过微胶囊技术的运用,制备得到一种猪源抗菌肽PMAP‑36缓释胶囊,该缓释胶囊具有稳定性好、抗菌活性更长久的优点。
Description
技术领域:
本发明涉及生物技术领域,具体涉及一种猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊。
背景技术:
我国是世界上最大的抗生素生产和使用国,也是抗生素滥用和细菌耐药性的重灾区。抗生素滥用,特别是畜牧业领域尤其严重。畜牧业养殖户之所以喜欢使用抗生素,原因在于抗生素不仅可以防病治病,而且还能促进动物生长、提高产量,许多养殖户普遍将饲用抗生素添加到饲料中,当做保健品来促生长。而这导致的“超级细菌”风险、环境污染加重等问题,正在挑战国人健康底线,兽用抗生素所导致的细菌抗药性和所产生的“超级细菌”,不会局限于禽畜,也会影响到人类。 数据显示,全国2013年使用的 16.2万吨抗生素中,兽用52%,人用48%,一年超过5万吨抗生素排放进水土环境中。2014年以来,抗生素使用量仍在上升,其中绝大部分是作为饲料添加剂而不是治疗疾病使用。抗生素由于具有药物残留及细菌耐药性问题, 因此迫切需要发现一种绿色、无污 染和无细菌耐药性的抗生素替代物。
抗菌肽(antimicrobial peptide)是一种具广谱抗菌、抗病毒甚至抗寄生虫活性的阳离子短肽,是生物体内广泛存在一种具有抗菌作用的活性多肽,是生物非特异性防御系统的免疫应答产物, 具有广谱抗菌活性, 可以抑制多种细菌或真菌的生长。抗菌肽由于其主要通过物理渗透作用于细菌胞膜而产生抑菌或者杀菌作用, 而细菌等微生物很难改变其自身磷脂双分子层的胞膜结构, 因此使得抗微生物肽产生耐药性的几率大大降低。并且大部分抗菌肽具有热稳定性高的特点,所以抗菌肽越来越引起人们的重视。抗菌肽广泛存在于微生物以及动植物体内,目前已发现的抗菌肽有1800多种。至今在鱼类中鉴定出的抗菌肽包括hepcidin,defensins,pleurocidin,piscidin,moronecidin,misgurain,pardaxin,parasin,LEAP-2和NK-lysin等数十种。抗菌肽的研究已成为基因工程和 药物开发等领域的研究热点, 具有极为广阔的市场应用前景。
发明专利申请CN201510084023.X公开了一种抗菌肽C-BF在制备防治仔猪断奶应激药物中的应用;抗菌肽C-BF能改善肠道形态,增加绒毛高度,缓解肠道炎症,提高断奶仔猪生长性能,减少腹泻率;抗菌肽C-BF通过腹腔注射给药。发明专利申请CN201410669038.8通过生物软件对猪源抗菌肽PR-39的氨基酸序列进行空间结构分析,将其39个氨基酸中的3处氨基酸进行突变,获得一种新型猪源抗菌肽PR-39突变体,使其抗菌效力获得显著提高。在此基础上,选用毕赤酵母偏爱密码子,人工合成新型猪源抗菌肽PR-39突变体基因,克隆于毕赤酵母中表达,获得新型抗菌肽重组酵母菌株,并将发酵规模放大到发酵罐水平,实现抗菌肽产品的高密度发酵和高效表达。发酵液进一步纯化后可制成粉剂、液体等抗菌肽制剂用于畜禽疾病的预防和治疗。发明专利申请CN200710176477.5公开了一种提取猪血抗菌肽的方法,该方法包括以下步骤:1)将猪血粉溶入缓冲液中,然后在混合液中加入木瓜蛋白酶进行酶解,调整酶解液的pH为3.5~4.5;2)将氯仿和亚硫酸氢钠加入到所述酶解液中进行脱色,然后调整脱色后酶解液的pH值至6.0~7.0,成为猪血抗菌肽的粗提物。为了得到猪血抗菌肽的精制品,对所述粗提物进行以下纯化步骤:1)冷冻干燥所述猪血抗菌肽的粗提物,并将所述粗提物过凝胶型阳离子交换柱,对交换柱进行洗脱,收集洗脱液;2)对所述洗脱液进行真空冷冻干燥,成为猪血抗菌肽。翟少伟(水生生物学报)等研究了饲料中添加抗菌肽Surfactin对吉富罗非鱼肠道健康指标的影响,试验表明,吉富罗非鱼饲料中适量添加抗菌肽Surfactin可增加肠道皱襞高度、调节肠道菌群和提高肠道抗氧化能力而改善肠道健康状态。李伦锋(中国动物传染病学报)等以猪链球菌、金黄色葡萄球菌、多杀性巴氏杆菌、猪胸膜肺炎放线杆菌、猪支气管败血波氏杆菌、猪致病性大肠杆菌、化脓性链球菌7株猪呼吸道常见菌为实验菌,检测猪小肠抗菌肽对常见的猪呼吸道菌的抑菌效果。结果显示,猪小肠抗菌肽对这7株呼吸道菌均有不同程度的抑菌作用,对化脓性链球菌、多杀性巴氏杆菌、金黄色葡萄球菌的抑菌作用最为明显,最小抑菌浓度均为49.5μg/m L,对猪链球菌和大肠杆菌也有较为明显的抑菌活性,而对猪支气管败血波氏杆菌的最小抑菌浓度为398μg/mL。尽管抗生肽的研究较多,但是也存在一些问题,例如,抗菌活性低,对于正常细胞如红细胞等也造成溶血作用等等问题。
微胶囊(Microcapsule,简称MC)是指一些由天然或人工合成的高分子材料研制成的具有聚合物壁壳的微型容器或包装物,其外形一般呈球型。微胶囊的大小在几微米至几百微米范围内(直径一般为5um-200um),需要通过显微镜方能观察到。微胶囊化就是将固体、液体或气体物质包裹、封存在一种微型囊内而成为一种固体微粒产品的技术。这样做的目的是为了使被包裹的物料与外界不利环境相隔绝,达到最大限度地保护被包裹物料的原有性能、生物活性和色香味,防止各种营养物质和有效成分被破坏。此外,微胶囊具有靶向性,可将被包裹的物料按照设计要求运送到靶器官。
发明内容:
基于现有技术中抗菌肽生产和使用中存在的诸多问题,以及丰富抗菌肽种类的考虑,本发明旨在提供一种猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,其通过对猪源抗菌肽PMAP-36进行改造,获得了一种抗菌活性更高、安全性更好的抗菌肽产品,通过微胶囊技术的运用,制备得到一种猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,该缓释胶囊具有稳定性好、抗菌活性更长久的优点。
为解决以上技术问题,本发明采用如下技术方案:
一种猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,其特征在于,所述猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊由以下方法制备得到:
步骤一:人工合成氨基酸序列为SEQ ID No.1的猪源抗菌肽PMAP-36,并配置称浓度为200μg/mL的猪源抗菌肽PMAP-36溶液;
步骤二:将海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液和氯化钾溶液用高速匀质机混匀,形成缓释颗粒,所述高速匀质机以10000转/min的速度进行搅拌混合;
步骤三:将步骤一的猪源抗菌肽PMAP-36溶液和步骤二的缓释颗粒一同加入医用混合机中进行包埋,得到抗菌肽微粒,然后对抗菌肽微粒进行β-环糊精包埋,即得到猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊。
其中,所述SEQ ID No.1的氨基酸序列为:
VGRFRRVRKKSRKRLKKEGKVLKWAPPIVGSAPLGCG。
其中步骤二中海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液和氯化钾溶液的质量比为3:5:1。其中,壳聚糖酸溶液中壳聚糖质量体积浓度为 1.7%、脱乙酰度为 80%,壳聚糖由分子量为3.3×105-4.6×105 的高分子量壳聚糖和分子量为 0.72×105-1.19×105 的低分子量壳聚糖按1∶2的质量比组成;其中氯化钾溶液的浓度为1mol/L;海藻酸钠水溶液中海藻酸钠的质量浓度为2.1%。
步骤二中将海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液和氯化钾溶液混合后,调整pH值为6.0。
步骤二中壳聚糖酸溶液的溶剂为体积浓度为 2%的醋酸溶液;
步骤二形成的缓释颗粒的粒径约为20-30nm。
步骤三中猪源抗菌肽PMAP-36溶液与缓释颗粒的质量比为1:1。
步骤三中β-环糊精包埋按以下步骤进行:向抗菌肽微粒中加入β-环糊精和淀粉,然后用挤压制粒机或旋转制粒机进行β-环糊精包埋;β-环糊精与淀粉的质量比为5:95,β-环糊精和淀粉的总质量是抗菌肽微粒质量的20倍;β-环糊精包埋后得到的抗菌肽缓释微胶囊的粒径为2mm。
本发明所述的猪源抗菌肽PMAP-36相比原始的猪源抗菌肽PMAP-36氨基酸序列(SEQ ID No.2)中的5处氨基酸进行突变,分别是L7V,T11S,I18E,I25A和I32A。所述原始的猪源抗菌肽PMAP-36氨基酸序列为SEQ ID No.2:VGRFRRLRKKTRKRLKKIGKVLKWIPPIVGSIPLGCG。
本发明还请求保护猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊在制备治疗仔猪腹泻的药物中的应用。
其中所述药物为口服液饮剂,所述抗菌肽在该药物中的浓度为10μg/mL。
其中所述药物用于治疗仔猪腹泻时,每头份服用饮剂5mL。
本发明在对猪源抗菌肽PMAP-36 的氨基酸序列进行空间结构分析的基础上,将猪源抗菌肽PMAP-36氨基酸序列中的5处氨基酸进行突变,分别是L7V,T11S,I18E,I25A和I32A,获得了一种抗菌活性更高、安全性更好的抗菌肽产品。同时,本发明还通过微胶囊技术,制备得到了猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,该缓释胶囊相比传统的非缓释胶囊形式的抗菌肽溶液,具有更持久的抗菌活性,能有效降低抗菌肽的用量,节约生产成本。
附图说明:
图1:通过分析软件模拟的猪源抗菌肽PMAP-36改造后和改造前的二级结构模型。其中A为本发明的抗菌肽,即改造后的猪源抗菌肽PMAP-36;B为原始的猪源抗菌肽PMAP-36。
图2:步骤二形成的缓释颗粒的电镜扫描图像,其中A为本发明实施例1的缓释颗粒,B为不添加氯化钾溶液的对比实施例1的电镜扫描图像。扫描电镜结果表明,添加氯化钾后所制备得到的微胶囊相比不添加氯化钾溶液的对比实施例1的微胶囊而言,添加氯化钾能使得微胶囊颗粒更加完整,粒径分布更加均匀。
图3:猪源抗菌肽PMAP-36抑菌试验。其中阳性对照为氨苄青霉素溶液,阴性对照为蒸馏水,A和B孔分别滴加浓度为50μg/ml的改造后的猪源抗菌肽PMAP-36突变体和改造前的PMAP-36(其氨基酸序列为SEQ ID No.2)。
图4:猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊抑菌试验。其中孔1为实施例1的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊溶液,其中PMAP-36浓度为25μg/mL,孔2为猪源抗菌肽PMAP-36溶液,浓度为50μg/mL,孔3阴性对照(蒸馏水)。
具体实施方式:
实施例1:一种猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,所述猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊由以下方法制备得到:
步骤一:人工合成氨基酸序列为SEQ ID No.1的猪源抗菌肽PMAP-36,并配置称浓度为200μg/mL的猪源抗菌肽PMAP-36溶液;
步骤二:将海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液和氯化钾溶液按照3:5:1的质量比混合,调整pH值为6.0,用高速匀质机以10000转/min的速度进行搅拌混合,形成缓释颗粒;
步骤三:将步骤一的猪源抗菌肽PMAP-36溶液和步骤二的缓释颗粒以质量比1:1的比例一同加入医用混合机中进行包埋,得到抗菌肽微粒,然后对抗菌肽微粒进行β-环糊精包埋,即得到猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊。
其中,所述SEQ ID No.1的氨基酸序列为:
VGRFRRVRKKSRKRLKKEGKVLKWAPPIVGSAPLGCG。
其中步骤二中海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液和氯化钾溶液的质量比为3:5:1。其中,壳聚糖酸溶液中壳聚糖质量体积浓度为 1.7%、脱乙酰度为 80%,壳聚糖由分子量为3.3×105-4.6×105 的高分子量壳聚糖和分子量为 0.72×105-1.19×105 的低分子量壳聚糖按1∶2的质量比组成;其中氯化钾溶液的浓度为1mol/L;海藻酸钠水溶液中海藻酸钠的质量浓度为2.1%。
步骤二中壳聚糖酸溶液的溶剂为体积浓度为 2%的醋酸溶液;
步骤三中β-环糊精包埋按以下步骤进行:向抗菌肽微粒中加入β-环糊精和淀粉,然后用挤压制粒机或旋转制粒机进行β-环糊精包埋;β-环糊精与淀粉的质量比为5:95,β-环糊精和淀粉的总质量是抗菌肽微粒质量的20倍;β-环糊精包埋后得到的抗菌肽缓释微胶囊的粒径为2mm。
基于试验需要,设置以下对比实施例1,其技术方案如下:
一种猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,所述猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊由以下方法制备得到:
步骤一:人工合成氨基酸序列为SEQ ID No.1的猪源抗菌肽PMAP-36,并配置称浓度为200μg/mL的猪源抗菌肽PMAP-36溶液;
步骤二:将海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液按照3:5的质量比混合,调整pH值为6.0,用高速匀质机以10000转/min的速度进行搅拌混合,形成缓释颗粒;
步骤三:将步骤一的猪源抗菌肽PMAP-36溶液和步骤二的缓释颗粒以质量比1:1的比例一同加入医用混合机中进行包埋,得到抗菌肽微粒,然后对抗菌肽微粒进行β-环糊精包埋,即得到猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊。
其中,所述SEQ ID No.1的氨基酸序列为:
VGRFRRVRKKSRKRLKKEGKVLKWAPPIVGSAPLGCG。
其中步骤二中海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液的质量比为3:5。其中,壳聚糖酸溶液中壳聚糖质量体积浓度为 1.7%、脱乙酰度为 80%,壳聚糖由分子量为 3.3×105-4.6×105 的高分子量壳聚糖和分子量为 0.72×105-1.19×105 的低分子量壳聚糖按1∶2的质量比组成;海藻酸钠水溶液中海藻酸钠的质量浓度为2.1%。
步骤二中壳聚糖酸溶液的溶剂为体积浓度为 2%的醋酸溶液;
步骤三中β-环糊精包埋按以下步骤进行:向抗菌肽微粒中加入β-环糊精和淀粉,然后用挤压制粒机或旋转制粒机进行β-环糊精包埋;β-环糊精与淀粉的质量比为5:95,β-环糊精和淀粉的总质量是抗菌肽微粒质量的20倍;β-环糊精包埋后得到的抗菌肽缓释微胶囊的粒径为2mm。
实施例2:抑菌试验
试验一:
以实验室活化后的试验菌株大肠杆菌为受试对象,釆用抑菌操作方法,设置阳性对照(氨苄青霉素溶液),阴性对照(蒸馏水),研究改造前的抗菌肽PMAP-36以及实施例1所制备得到的改造后的氨基酸序列为SEQ ID No.1的猪源抗菌肽PMAP-36突变体的抑菌效果。其中以大肠杆菌为受试菌,做抗菌肽对大肠杆菌的抑菌试验,培养条件为37℃恒温培养箱中培养。其中各孔分别滴加50μL待测样品,阳性对照组的amp浓度为1M,A和B孔分别滴加浓度为50μg/ml的改造后的猪源抗菌肽PMAP-36突变体和改造前的PMAP-36(其氨基酸序列为SEQ ID No.2)。
由图3的试验结果可知,阳性对照组(氨苄青霉素溶液)的抑菌圈大小为2.31cm,而A孔(改造后的猪源抗菌肽PMAP-36突变体)的抑菌圈大小为2.96cm,B孔(固相合成的改造前的PMAP-36)的抑菌圈直径大小为1.76cm。由此可以表明,改造前的PMAP-36的抑菌能力弱于氨节青霉素溶液,而改造后的的猪源抗菌肽PMAP-36突变体的抑菌能力略强于氨苄青霉素溶液,明显强于改造前的PMAP-36。
试验二:
以实验室活化后的试验菌株大肠杆菌为受试对象,釆用抑菌操作方法,设置3个孔,其中孔1为实施例1的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊溶液,其中PMAP-36浓度为25μg/mL,孔2为猪源抗菌肽PMAP-36溶液,浓度为50μg/mL,孔3阴性对照(蒸馏水),研究传统的抗菌肽PMAP-36溶液以及实施例1所制备得到的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊的抑菌效果。其中以大肠杆菌为受试菌,做抗菌肽对大肠杆菌的抑菌试验,培养条件为37℃恒温培养箱中培养。其中各孔分别滴加50μL待测样品,1和2孔分别滴加猪源抗菌肽PMAP-36浓度为25μg/ml、50μg/ml的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊或猪源抗菌肽PMAP-36(其氨基酸序列为SEQ IDNo.1)。
由图4的试验结果可知,1孔的抑菌圈大小为3.25cm,而2孔的抑菌圈大小为2.96cm,由此可以表明,微胶囊包埋后PMAP-36的抑菌能力略强于未包埋的PMAP-36,其原因是微胶囊化的抗菌肽具有更持久的释放性能,保持较长时间的抗菌和抑菌活性,因而具有更好的抑菌效果。
实施例3:最低溶血浓度测定 (MHC)
参照发明专利申请CN201410669038.8的实施例5,进行抗菌肽的最低溶血浓度测定。具体方法如下:
(1)将重悬于 PBS 中的 8%猪红细胞 100μL加入 96 孔板中,再加入 PBS 系列稀释的抗菌肽 100μL,使各孔中抗菌肽的浓度分别为100μg/mL、50μg/mL、25μg/mL、12.5μg/mL、6.25μg/mL、3.12μg/mL、1.56μg/mL 和0.78μg/mL。阳性对照孔加入100μl 0.2%TritonX-100,阴性对照孔加100μL PBS,37℃孵育1h后,3000rpm离心5min后,从各孔吸取100μL上清到另一96 孔板中,550nm 波长测定 OD 值,计算溶血百分比=[(实验孔OD值 - 阴性孔OD值)/(阳性孔OD值-阴性孔OD值 )]×100。同时设立猪源抗菌肽 PMAP-36 作为对照。
(2)结果表明:原始的PMAP-36在浓度较高时出现一定的溶血现象,例如,浓度为50和100μg/mL时,表现出一定的溶血现象,当然不排除试验误差的存在。但是,改造后的PMAP-36突变体始终没有表现出溶血现象。表明猪源抗菌肽PMAP-36突变体对猪红细胞基本无溶血活性,是一种安全的抗菌肽。
表1 不同浓度抗菌肽对猪红细胞的溶血百分比 (% )
抗菌肽浓度(μg/mL) | 0.78 | 1.56 | 3.12 | 6.25 | 12.5 | 25 | 50 | 100 |
PMAP-36突变体 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 |
原始PMAP-36 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 2 | 2 |
实施例4:猪源抗菌肽突变体的最小抑菌浓度测定 (MIC)
委托陕西诺威利华生物科技有限公司参照发明专利申请CN201410669038.8的实施例4,进行抗菌肽的最低溶血浓度测定。具体结果如下:
表2 抗菌肽对多种细菌的最低抑菌浓度
MIC(μg/mL) | 原始的PMAP-36 | 实施例1 PMAP-36变体 |
金黄色葡萄球菌 | 24 | 8 |
大肠杆菌 | 12 | 6 |
鸡沙门氏菌 | 16 | 6 |
猪副伤寒沙门氏菌 | 18 | 5 |
由以上试验结果可知,实施例1 中改造后的PMAP-36变体相比原始的PMAP-36具有更高的抑菌活性。
实施例5:
陕西某猪场爆发仔猪腹泻,经检验为金黄色葡萄球菌和沙门氏菌感染所导致的仔猪腹泻,选取200只腹泻仔猪,随机分为2组,(每组设5个平行试验组,每个平行试验组有20头腹泻仔猪)。其中组1为抗生素对照组,采用注射青霉素和链霉素治疗;组2为猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊对照组,采用灌服饮剂的形式进行治疗,其中组2的抗菌肽在该药物中的浓度为10μg/mL,每头仔猪每天灌服5mL。观察治疗情况,结果见下表:
表3:治疗试验结果
痊愈率 | 3天 | 7天 | 10天 | 14天 | 21天 |
组1 | 50% | 78% | 96% | 100% | 100% |
组2 | 50% | 90% | 100% | 100% | 100% |
由以上治疗试验结果可知,本发明实施例1的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊能够有效的治疗由于金黄色葡萄球菌和沙门氏菌所导致的仔猪腹泻,且具有与青霉素和链霉素相近的治疗效果。
序列表
<110> 九江牧威利元科技中心(普通合伙)
<120> 一种猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 37
<212> PRT
<213> 猪源抗菌肽PMAP-36(pjg)
<400> 1
Val Gly Arg Phe Arg Arg Val Arg Lys Lys Ser Arg Lys Arg Leu Lys
1 5 10 15
Lys Glu Gly Lys Val Leu Lys Trp Ala Pro Pro Ile Val Gly Ser Ala
20 25 30
Pro Leu Gly Cys Gly
35
<210> 2
<211> 37
<212> PRT
<213> 原始的猪源抗菌肽PMAP-36氨基酸(pjg)
<400> 2
Val Gly Arg Phe Arg Arg Leu Arg Lys Lys Thr Arg Lys Arg Leu Lys
1 5 10 15
Lys Ile Gly Lys Val Leu Lys Trp Ile Pro Pro Ile Val Gly Ser Ile
20 25 30
Pro Leu Gly Cys Gly
35
Claims (10)
1.一种猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,其特征在于,所述猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊由以下方法制备得到:
步骤一:人工合成氨基酸序列为SEQ ID No.1的猪源抗菌肽PMAP-36,并配置称浓度为200μg/mL的猪源抗菌肽PMAP-36溶液;
步骤二:将海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液和氯化钾溶液用高速匀质机混匀,形成缓释颗粒,所述高速匀质机以10000转/min的速度进行搅拌混合;
步骤三:将步骤一的猪源抗菌肽PMAP-36溶液和步骤二的缓释颗粒一同加入医用混合机中进行包埋,得到抗菌肽微粒,然后对抗菌肽微粒进行β-环糊精包埋,即得到猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊。
2.根据权利要求1所述的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,其特征在于,其中步骤二中海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液和氯化钾溶液的质量比为3:5:1。
3.其中,壳聚糖酸溶液中壳聚糖质量体积浓度为 1.7%、脱乙酰度为 80%,壳聚糖由分子量为 3.3×105-4.6×105 的高分子量壳聚糖和分子量为 0.72×105-1.19×105 的低分子量壳聚糖按1∶2的质量比组成;其中氯化钾溶液的浓度为1mol/L;海藻酸钠水溶液中海藻酸钠的质量浓度为2.1%。
4.根据权利要求1所述的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,其特征在于,步骤二中将海藻酸钠水溶液、壳聚糖酸溶液和氯化钾溶液混合后,调整pH值为6.0。
5.根据权利要求1所述的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,其特征在于,步骤二中壳聚糖酸溶液的溶剂为体积浓度为 2%的醋酸溶液;步骤二形成的缓释颗粒的粒径约为20-30nm。
6.根据权利要求1所述的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,其特征在于,步骤三中猪源抗菌肽PMAP-36溶液与缓释颗粒的质量比为1:1。
7.根据权利要求1所述的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊,其特征在于,步骤三中β-环糊精包埋按以下步骤进行:向抗菌肽微粒中加入β-环糊精和淀粉,然后用挤压制粒机或旋转制粒机进行β-环糊精包埋;β-环糊精与淀粉的质量比为5:95,β-环糊精和淀粉的总质量是抗菌肽微粒质量的20倍;β-环糊精包埋后得到的抗菌肽缓释微胶囊的粒径为2mm。
8.根据权利要求1所述的猪源抗菌肽PMAP-36缓释胶囊在制备治疗仔猪腹泻的药物中的应用。
9.根据权利要求8所述的应用,其特征在于,其中所述药物为口服液饮剂,所述抗菌肽在该药物中的浓度为10μg/mL。
10.根据权利要求9所述的应用,其特征在于,其中所述药物用于治疗仔猪腹泻时,每头份服用饮剂5mL。
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