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CN108309987B - Pcn在制备用于治疗急性肾损伤相关病症的药物中的应用 - Google Patents

Pcn在制备用于治疗急性肾损伤相关病症的药物中的应用 Download PDF

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CN108309987B CN201810121267.4A CN201810121267A CN108309987B CN 108309987 B CN108309987 B CN 108309987B CN 201810121267 A CN201810121267 A CN 201810121267A CN 108309987 B CN108309987 B CN 108309987B
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Abstract

本发明公开了一种pregnenolone‑16a‑carbonitrile(PCN)的新适应症。本发明提出了PCN可以减轻顺铂和缺血再灌注诱导的急性肾损伤相关病症,包括急性肾小管损伤、肾功能、肾小管细胞凋亡、炎症因子的表达及分泌等病症,主要是通过抑制肾小管细胞的凋亡来减轻急性肾损伤。

Description

PCN在制备用于治疗急性肾损伤相关病症的药物中的应用
技术领域
本发明涉及PCN的新应用,具体地涉及PCN在制备用于减轻缺血再灌注和顺铂诱导的急性肾损伤相关病症的药物中的应用。
背景技术
急性肾损伤(acute kidney injury,AKI)是指突然发生的肾功能下降,可伴或不伴有少尿或无尿,为由肾小球、肾小管、肾间质或血管等病变引起的肾功能在短期内急剧下降或丧失的临床综合征,表现为突然不能保持正常的水电解质平衡,体内代谢产物堆积,出现氮质血症、水及电解质紊乱和代谢性酸中毒等症状。急性肾损伤是一种可继发于多种疾病的临床综合征,在重症监护病房更为常见,具有发病急、进展快、病死率高的特点,是慢性肾脏病的重要病因之一。它是一组严重的临床综合征群,死亡率高,延误诊治或治疗不当可导致肾功能呈不可逆改变,使患者进入维持性透析,给社会经济带来很大负面影响。
AKI的患病率社区为1%,在医院为7.1%。发病率为每年医院获得的AKI的病死率为10%~80%,合并多脏器功能衰竭的病死率>50%,需要肾替代疗法的病死率是80%,因此AKI具有高发病率和致死率。它的主要病因是缺血,肾有毒物质所致或原发性肾脏病,肾小管上皮细胞(Renal tubular epithelial cells,RTEC)损伤是AKI的主要病理基础。在疾病状态下,功能活跃的RTEC更容易受到肾毒素等造成的损伤而发生急性肾小管坏死(AcuteTubular Necrosis,ATN),引起AKI及肾功能衰竭。
缺血再灌注(ischemia reperfusion,IR)损伤是临床AKI的常见病因。缺血再灌注损伤涉及多种损伤机制,包括自由基的作用、细胞内钙超载和白细胞激活。而肾脏小管上皮细胞损伤又是各种损伤因子的靶细胞。虽然目前治疗方法有了改进,但是缺血再灌注的死亡率仍然居高不下,所以寻找新的治疗方法迫在眉睫。
顺铂(Cisplatin,CP)是临床上治疗实体肿瘤包括头部、颈部、卵巢和睾丸最常用及最有效的化疗药物之一,因其抗癌作用强,与其他肿瘤药物无交叉耐药,也是联合化疗中最常用的抗肿瘤药物之一。临床调查表明,由于其具有剂量依赖性急性肾脏毒性作用,极大地限制其临床应用,顺铂诱导的AKI发生率为25%~35%,其引起损伤的主要机制包括诱导肾小管上皮细胞的氧化应激引起细胞凋亡,并且能够触发炎症反应参与肾脏损伤。如何切实有效地预防和减轻顺铂引起的AKI,更好地发挥顺铂抗肿瘤作用已成为当前亟待解决的问题。
在病人和动物模型中肾小管细胞丢失——包括小管凋亡和坏死被认为是AKI发生发展中主要的参与细胞。另外,脱落的肾小管细胞与蛋白在管腔中形成管型阻断尿流,损伤的小管可能会进一步促进肾脏间质纤维化、间质炎症、毛细血管丢失。所以如何阻止肾小管细胞丢失是治疗AKI的关键。
线粒体是细胞的“能量工厂”,是合成ATP、电子传递和氧化磷酸化的主要场所。线粒体功能障碍在肾损伤中的作用已得到广泛关注。业已证明,肾毒性药物所致的急性肾损伤模型中,均存在线粒体形态异常、线粒体DNA突变、线粒体DNA拷贝数下降以及细胞凋亡。线粒体在细胞凋亡中具有核心地位和作用,是细胞凋亡发生的主要途径。顺铂进入细胞后能够激活Bcl-2家族中的促凋亡蛋白如Bax,促使线粒体通透性转换孔开放,细胞色素C、凋亡诱导因子等促凋亡因子从线粒体释放到胞浆,产生caspase级联反应,最终导致凋亡的发生。
PCN是孕烷X受体(pregnane X receptor,PXR)的激动剂。PXR作为内源及外源物激活受体在机体的防御机制中发挥重要的生物调节作用和"解毒"功能。此外,大量研究还表明PXR通过调节下游靶基因的表达而广泛参与机体的物质及能量代谢,并在某些疾病的发生发展中发挥重要作用。目前关于PXR的研究较多集中于肝脏脂质代谢、心血管、肥胖等方面。而在AKI方面尚未有研究报道。目前,也尚未有PCN可以对抗缺血再灌注和顺铂引起的AKI的报道。
发明内容
本发明的目的在于提供一种PCN在制备用于减轻缺血再灌注和顺铂诱导的AKI相关病症的药物中的应用。
本发明通过动物实验和体外细胞实验两个方面发现PCN对于减轻缺血再灌注或顺铂诱导的AKI相关病症的药物中的应用。
具体地,本发明提出了PCN在制备用于减轻缺血再灌注和顺铂诱导的AKI肾功能的药物中的应用。
本发明还提出了PCN在制备用于减轻顺铂诱导的肾脏炎症分子的表达及分泌的药物中的应用。
进一步地,本发明发现了PCN在制备用于减轻顺铂诱导的肾小管细胞凋亡的药物中的应用。
同时,本发明还发现PCN在制备用于顺铂诱导的肾脏小管细胞线粒体损伤药物中的应用。
附图说明
图1为用顺铂和缺血再灌注后造模以及用PCN治疗后的肾功能及糖原染色(PAS)结果;
图2为QPCR法及ELISA法研究PCN对顺铂诱导的肾脏炎症分子的表达及分泌的影响;
图3为QPCR法研究PCN对顺铂诱导的小管细胞凋亡及肾脏损伤相关分子的影响;
图4为流式细胞及QPCR法检测PCN在体外对顺铂诱导的小管细胞凋亡、活性氧及线粒体DNA拷贝数的影响;
图5为Western blot法研究PCN在体外对顺铂诱导的肾脏小管细胞凋亡的影响。
具体实施方式
本发明中Western blot、实时荧光定量PCR、PAS染色、流式细胞法的具体操作步骤如下:
Western blot:
组织裂解液提取肾脏组织总蛋白,采用BCA法测定蛋白质浓度,取30μg蛋白上样,10%或12%聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS.PAGE),300mA×1.5h湿转转至PVDF膜上,封闭液室温封闭1h,TBST洗脱后加入一抗,Bax(Cell Signaling Technology),Bcl-2(CellSignalingTechnology),cleaved caspase3(Cell SignalingTechnology),PXR(Abcam),GAPDH(Cell SignalingTechnology),4℃孵育过夜。TBST洗膜5次,每次5min,以相应二抗室温孵育1h,TBST洗膜5次。抗原.抗体复合物用增强化学发光法(ECL)显示,暗室X线胶片曝光并扫描,蛋白质定量采用对目的条带进行灰度值分析,以目的条带灰度值/GAPDH灰度值表示目的蛋白的相对表达量。
实时荧光定量PCR(QPCR):
提取肾脏组织总RNA,用分光光度法测定RNA溶液浓度和纯度。利用逆转录试剂盒(Takara,DaLian)将1μgRNA逆转录成cDNA,按照下面的反应体系检测不同基因的变化情况。
a.反应体系
Figure BDA0001572150960000041
b.PCR热循环参数
Figure BDA0001572150960000042
55℃-95℃,snap every 0.5℃,repeat 81circles.
PAS染色:
4%多聚甲醛固定组织48h,石蜡包埋切片,脱蜡至水,蒸馏水冲洗,70%酒精冲洗3次。浸入高碘酸酒精溶液10min(此溶液温度以17-20度为好),70%酒精洗后,入还原液中1min(此溶液温度以17-20度为好),70%酒精洗后,入无色盐基性品红溶液1-1.5h,冬天室温较低时,可放入37度温箱。流水冲洗10min,用Mayer\'s苏木素复染液复染细胞核3-5min,再用1%盐酸酒精分化,流水冲洗后,脱水透明,最后封片。
Annexin V/PI凋亡双染实验:
取对数生长期肾小管上皮细胞(RTEC)接种于6孔板中,分别给予顺铂及PCN,药物作用24h后,用无EDTA胰酶消化细胞,以1000rpm转速离心5min,收集细胞,弃掉培养基。用预冷过的PBS溶液洗涤细胞两次,在其中加入400μL1×Binding Buffer悬浮细胞,细胞密度大约为1×106cells/mL。每组细胞悬液分别加入5μLAnnexin V和5μL PI,轻轻混匀后室温避光条件下孵育15min。1h内用流式细胞仪检测。
线粒体膜电位(JC-1)检测:
线粒体膜电位的下降是细胞凋亡早期的一个标志性事件。通过JC-1从红色荧光到绿色荧光的转变可以很容易地检测到细胞膜电位的下降,同时也可以用JC-1从红色荧光到绿色荧光的转变作为细胞凋亡早期的一个检测指标。选择对数生长期的细胞接种于6孔板中,分别给予顺铂及PCN,药物作用24h后,用无EDTA胰酶消化细胞,以1000rpm转速离心5min,收集细胞,弃掉培养基。用预冷过的PBS溶液洗涤细胞两次,加入1mL JC-1染色工作液,充分混匀。细胞培养箱中37℃孵育20min。在孵育期间,按照每1mL JC-1染色缓冲液(5×)加入4mL超纯水的比例,配制适量的JC-1染色缓冲液(1X),并放置于冰浴。37℃孵育结束后,吸除上清,用JC-1染色缓冲液(1X)洗涤2次。加入2mL细胞培养液,在1h内用流式细胞仪检测。
活性氧(ROS)检测:
选择对数生长期的细胞接种于6孔板中,分别给予顺铂及PCN,药物作用24h后,用无EDTA胰酶消化细胞,以1000rpm转速离心5min,收集细胞,弃掉培养基。用预冷过的PBS溶液洗涤细胞一次,加入500μLmitoSOX染色工作液(1X),充分混匀。细胞培养箱中37℃孵育20min。37℃孵育结束后,离心吸除上清,PBS溶液洗涤细胞两次,加入500μL细胞培养液,在1小时内用流式细胞仪检测。
下面通过具体的实施例详细说明本发明。
实施例1PCN对顺铂和缺血再灌注诱导的急性肾损伤肾功能的影响。
取体重18~22g的雄性C57BL/6小鼠,分为3组,即对照组,顺铂模型组以及PCN治疗组(n=8)。
对照组:每日1次腹腔注射等体积介质,共5天;
顺铂模型组:腹腔注射,20mg/kg,单次给药;
PCN治疗组:PCN提前给药2天(腹腔注射,100mg/kgPCN,200μL/次),每日1次,随后单次给药顺铂(腹腔注射,20mg/kg),PCN再治疗3天,顺铂注射72h后取血,留取肾组织。
将血标本离心(20min,3000r/min),用肌酐试剂盒(Creatinine Assay Kit(cat:K625-100,biomars))、尿素氮试剂盒(QuantiChrom Urea Assay kit(cat:DIUR-500,Hayward,CA))测定血肌酐、尿素氮,实验结果见图1A。
同时我们用缺血再灌注模型,PCN对缺血再灌注损伤是否有治疗作用。取体重18~22g的雄性C57BL/6小鼠,分为3组,即对照组,缺血再灌注模型组以及PCN治疗组(n=8)。
对照组:每日1次腹腔注射等体积介质,共3天;
缺血再灌注组:给予单纯介质每日1次,共3天;
PCN治疗组:PCN提前给药2天(腹腔注射,100mg/kgPCN,200μL/次),每日1次,随后对小鼠肾脏缺血再灌注,PCN再治疗1天,缺血再灌注24h后取血,留取肾组织。利用上文方法分别测取各组血肌酐、尿素氮,实验结果见图1A。
图1B为用顺铂和缺血再灌注造模以及用PCN治疗后的PAS染色结果,从结果中可以看出,使用顺铂和缺血再灌注以后造模成功,血肌酐、尿素氮显著升高,提示肾脏受到损伤。而使用PCN治疗后,可以明显改善肾功能,肌酐、尿素氮水平与模型组相比模型降低,p<0.05。根据PAS染色结果,顺铂组和缺血再灌注组肾小管结构破坏,蛋白管型形成,PCN能够显著改善顺铂和缺血再灌注诱导的肾脏损伤。
实施例2PCN对顺铂诱导的肾脏炎症分子的表达及分泌的影响。
利用QPCR法及ELISA法研究PCN对顺铂诱导的肾脏炎症分子的表达及分泌的影响。
如图2A所示,利用ELISA法研究PCN对顺铂诱导的肾脏炎症分子的表达及分泌的影响。在顺铂诱导的AKI模型中,顺铂模型组的炎症因子IL-6、TNF-α表达水平与对照组相比明显升高,p<0.001。而PCN治疗组能够显著降低IL-6、TNF-α表达水平,p<0.05。
如图2B所示,利用QPCR法研究PCN对顺铂诱导的肾脏炎症分子的表达及分泌的影响。在顺铂诱导的AKI模型中,顺铂模型组的炎症因子IL-6、TNF-α表达水平与对照组相比明显升高,p<0.05。而PCN治疗组能够显著降低IL-6、TNF-α表达水平,p<0.01。
结果表明,PCN能够明显降低顺铂诱导的AKI模型中IL-6、TNF-α表达水平。
实施例3PCN对顺铂诱导的小管细胞凋亡及肾脏损伤相关分子的影响。
利用QPCR法检测肾脏凋亡及损失相关分子的表达水平来测定PCN对顺铂诱导的AKI的改善情况,结果如图3所示,顺铂模型组的凋亡相关分子Bax表达明显升高,Bcl-2表达明显降低;损伤相关分子Kim-1、NGAL表达均明显升高,p<0.05。而PCN治疗组能够显著降低Bax、Kim-1、NGAL的表达水平,升高Bcl-2的表达,p<0.05。
结果表明,PCN能够明显降低顺铂诱导的肾脏凋亡及损失相关分子的表达水平。
实施例4PCN在体外对顺铂诱导的小管细胞凋亡、活性氧及线粒体DNA拷贝数的影响。
体外应用RTEC细胞(小鼠肾小管上皮细胞系),选择对数生长期的细胞接种于6孔板中,分别给予顺铂(5μg/mL)及PCN(5μM),药物作用24h后,利用流式细胞仪检测小管细胞的凋亡发生率和活性氧水平,QPCR法检测小管细胞线粒体DNA拷贝数的变化。结果如图4A所示,顺铂模型组细胞发生凋亡的比率明显升高,可以观察到约30%的凋亡率,PCN治疗组与顺铂模型组相比,发生凋亡的比率明显降低,观察到约20%的凋亡率。如图4B所示,顺铂模型组细胞内的活性氧水平与对照组相比明显升高,P<0.001。PCN治疗组与顺铂模型组相比能够明显降低细胞内的活性氧水平,P<0.05。如图4C所示,顺铂模型组细胞线粒体DNA拷贝数与对照组相比明显降低,P<0.05。PCN治疗组与顺铂模型组相比能够明显升高细胞线粒体DNA拷贝数,P<0.01。
结果表明,顺铂刺激RTEC细胞24h,可以明显诱导细胞凋亡的发生,并能导致细胞内ROS水平升高、线粒体DNA拷贝数的减少。给予PCN治疗后,能够明显减少顺铂诱导的细胞凋亡的发生,并能降低细胞内ROS水平、增加线粒体DNA拷贝数,提示PCN有可能改善顺铂诱导的线粒体功能损伤。
实施例5PCN在体外对顺铂诱导的小管细胞凋亡的影响。
体外应用RTEC细胞(小鼠肾小管上皮细胞系),选择对数生长期的细胞接种于6孔板中,分别给予顺铂(5μg/mL)及PCN(5μM),药物作用24h后,利用western blot检测Bax、Bcl-2、cleaved-caspase 3的表达,同时检测PXR的蛋白表达情况。结果如图5所示,顺铂模型组,PXR的表达下调,同时凋亡相关蛋白Bax及cleaved-caspase 3表达水平上调,Bcl-2表达下调。PCN治疗组与顺铂模型组相比,能够明显上调PXR、Bcl-2的表达,下调Bax及cleaved-caspase3表达水平。
结果表明,顺铂刺激RTEC细胞24h,可以下调细胞内PXR的表达。给予PXR激动剂PCN处理能上调PXR的表达,同时抑制由顺铂所诱导的小管细胞凋亡。

Claims (1)

1.PCN在制备用于减轻顺铂诱导的急性肾损伤相关病症的药物中的应用,所述PCN为pregnenolone-16a-carbonitrile,是孕烷X受体的激动剂,所述减轻顺铂诱导的急性肾损伤相关病症为减轻顺铂诱导的肾小管细胞凋亡、减轻顺铂诱导的肾脏炎症因子的表达及分泌以及改善顺铂诱导的肾脏小管细胞线粒体功能。
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