[go: up one dir, main page]

CN105980544B - 生产l-氨基酸的微生物及使用所述微生物生产l-氨基酸的方法 - Google Patents

生产l-氨基酸的微生物及使用所述微生物生产l-氨基酸的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN105980544B
CN105980544B CN201580006219.5A CN201580006219A CN105980544B CN 105980544 B CN105980544 B CN 105980544B CN 201580006219 A CN201580006219 A CN 201580006219A CN 105980544 B CN105980544 B CN 105980544B
Authority
CN
China
Prior art keywords
amino acid
gene
inactivated
strain
producing
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201580006219.5A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105980544A (zh
Inventor
李知宣
徐昌一
丁起龙
高恩圣
权刀显
李光镐
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
CJ CheilJedang Corp
Original Assignee
CJ CheilJedang Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by CJ CheilJedang Corp filed Critical CJ CheilJedang Corp
Publication of CN105980544A publication Critical patent/CN105980544A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105980544B publication Critical patent/CN105980544B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70—Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/24—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia
    • C07K14/245—Escherichia (G)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/08—Lysine; Diaminopimelic acid; Threonine; Valine
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/22—Tryptophan; Tyrosine; Phenylalanine; 3,4-Dihydroxyphenylalanine
    • C12P13/227—Tryptophan

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

公开了具有增强的L‑氨基酸生产能力的重组微生物，其中所述重组微生物被转化而具有失活的其噬菌体受体，和使用所述重组微生物生产L‑氨基酸的方法。重组微生物的使用可以使L‑氨基酸能够以高度有效的方式生产。

Description

生产L-氨基酸的微生物及使用所述微生物生产L-氨基酸的 方法
技术领域
本发明涉及生产L-氨基酸的重组微生物和使用重组微生物生产L-氨基酸的方法。
背景技术
已经使用各种使用微生物来大量生产有用代谢物，例如氨基酸的发酵方法，并且此外，为了使用微生物进行成功的发酵，已经开发出许多技术，包括菌株开发、发酵条件的建立，等等。特别地，为了开发用于大量生产有用的代谢物的宿主菌株，已经进行了许多尝试以诱导特定基因的过表达或低表达。
然而，在使用细菌的发酵生产中，有用的代谢物的生产可以由于噬菌体的污染而降低。噬菌体的污染主要由能够使噬菌体附着于细菌表面的噬菌体受体引起，所述噬菌体受体是蛋白质、脂质多糖，等等。在大肠杆菌(Escherichia coli，E.coli)的情况中，大肠杆菌受到多种噬菌体攻击，因而，用于每种噬菌体的受体的研究已经获得相对成功。然而，噬菌体受体和L-氨基酸生产之间的关系的研究仍然没有得到充分实施。
在这点上，本发明的发明人选择作为公知的噬菌体受体的基因，然后使基因中的每种失活，以降低L-氨基酸生产降低的风险，该风险被认为是大肠杆菌的弱点。此后，确认了对L-氨基酸生产的影响，并且对产L-氨基酸的菌株应用此类选择和基因的失活，从而完成本发明。
发明详述
技术问题
本发明提供了具有L-氨基酸生产能力和失活的噬菌体受体的重组微生物。
本发明提供了使用微生物生产L-氨基酸的方法。
技术方案
在一个方面中，本发明提供了生产L-氨基酸的重组微生物，其中NfrA和NfrB中的至少一种是失活的。
如本文中使用，术语“NrfA”指形成用于噬菌体N4的受体的蛋白质，并且可以是细菌的膜蛋白。例如，NrfA可以是外膜蛋白的亚基。例如，NfrA可以包括SEQ ID NO:40的氨基酸序列。例如，NfrA可以包括SEQ ID NO:40的氨基酸序列，或与SEQ ID NO:40的氨基酸具有约80％或更多、85％或更多、90％或更多、或95％或更多的序列同一性的氨基酸序列。编码NfrA的基因的序列可以包括编码SEQ ID NO:40的氨基酸序列的多核苷酸序列。例如，编码NfrA的基因的序列可以包括nfrA基因的序列(NCBI基因ID：12930896)。例如，编码NfrA的基因的序列可以包括SEQ ID NO:39的多核苷酸序列，或与SEQ ID NO:39的多核苷酸序列具有约80％或更多、85％或更多、90％或更多、或95％或更多的序列同一性的多核苷酸序列。
如本文中使用，术语“NfrB”指形成用于噬菌体N4的受体的蛋白质，并且可以是细菌的膜蛋白。例如，NfrB可以是内膜蛋白的亚基。例如，NfrB可以包括SEQ ID NO:42的氨基酸序列。例如，NfrB可以包括SEQ ID NO:42的氨基酸序列，或与SEQ ID NO:42的氨基酸具有约80％或更多、85％或更多、90％或更多、或95％或更多的序列同一性的氨基酸序列。编码NfrB的基因的序列可以包括编码SEQ ID NO:42的氨基酸序列的多核苷酸序列。例如，编码NfrB的基因的序列可以包括nfrB基因的序列(NCBI基因ID：12933943)。例如，编码NfrB蛋白的基因的序列可以包括SEQ ID NO:41的多核苷酸序列，或与SEQ ID NO:41的多核苷酸序列具有约80％或更多、85％或更多、90％或更多、或95％或更多的序列同一性的多核苷酸序列。
另外，在生产L-氨基酸的重组微生物中，Tsx和FhuA中的至少一种可以是进一步失活的。
如本文中使用，术语“Tsx”指形成核苷通道的蛋白质，即对核苷特异性的通道，并且可以是形成用于噬菌体T6和大肠菌素K的受体的组分。例如，Tsx可以包括SEQ ID NO:45的氨基酸序列，或者与SEQ ID NO:45的氨基酸序列具有约80％或更多、85％或更多、90％或更多、或95％或更多的序列同一性的氨基酸序列。编码基因Tsx的基因的序列可以包含编码SEQ ID NO:45的氨基酸序列的多核苷酸序列。例如，编码Tsx的基因的序列可以包括tsx基因的序列(NCBI基因ID:12934188)。例如，编码Tsx的基因的序列可以包括SEQ ID NO:44的多核苷酸序列，或与SEQ ID NO:44的多核苷酸序列具有约80％或更多、85％或更多、90％或更多、或95％或更多的序列同一性的多核苷酸序列。
如本文中使用，术语“FhuA”指转运(Fe3+)铁色素(ferrichrome)或抗生素，诸如阿波霉素(albomycin)和利福霉素(rifamycin)的细菌外膜中的多功能蛋白，并且可以是噬菌体T1、T5和phi80的受体。例如，FhuA可以包括SEQ ID NO:47的氨基酸序列，或与SEQ ID NO:47的氨基酸序列具有约80％或更多、85％或更多、90％或更多、或95％或更多的序列同一性的氨基酸序列。编码FhuA的基因的序列可以包括编码SEQ ID NO:47的氨基酸序列的多核苷酸序列。例如，编码FhuA蛋白的基因的序列可以包括fhuA基因的序列(NCBI基因ID:12930751)。例如，编码FhuA的基因的序列可以包括SEQ ID NO:47的多核苷酸序列，或与SEQID NO:47的多核苷酸序列具有约80％或更多、85％或更多、90％或更多、或95％或更多的序列同一性的多核苷酸序列。
如本文中使用，术语“同一性”指两种氨基酸序列之间的相同性，其可以通过本领域中公知的方法，例如BLAST 2.0算法测定，所述BLAST 2.0算法限定参数，诸如两种氨基酸序列之间的得分、同一性、和相似性。
如本文中使用，术语“重组微生物”指遗传修饰的微生物。重组微生物可以是遗传工程化的微生物，并且例如，可以根据遗传工程方法将外源核酸导入微生物，或者可以转化微生物中的内源基因的序列或位置。
如本文中使用，术语“L-氨基酸”指构成生物体的机体并且具有与相同碳原子附着的氨基基团和羧酸基团两者的蛋白质的基本结构单位。例如，L-氨基酸可以选自：L-亮氨酸、L-苯丙氨酸、L-赖氨酸、L-苏氨酸、L-缬氨酸、L-异亮氨酸、L-色氨酸和L-甲硫氨酸。例如，L-氨基酸可以是L-色氨酸或L-苏氨酸。
如本文中使用，术语“酶或蛋白质是失活的”或“酶或蛋白质的失活”指上文描述的蛋白质根本不在微生物中表达的情况、上文描述的蛋白质得到表达，但是没有任何活性的情况、或上文描述的蛋白质得到表达，但是其活性与内在活性相比较弱的情况。如本文中使用，术语“内在活性”指天然状态的微生物的活性，即最初存在于微生物中的活性，或者尚未遗传修饰的蛋白质的活性。
可以通过分别编码NfrA蛋白、NfrB蛋白、Tsx蛋白、和FhuA蛋白的基因的突变、缺失或破坏引起NfrA蛋白、NfrB蛋白、Tsx蛋白、和FhuA蛋白的失活。如本文中使用，术语“基因的突变、缺失或破坏”指突变、取代、缺失或用至少一个碱基插入部分或整个的基因或基因的启动子或终止子区域上的调节因子，使得不表达基因或少量表达基因，或者在不显示酶促活性的情况下或者在降低的酶促活性的情况下表达基因的情况。可以通过遗传操作，诸如同源重组、诱变或分子进化实现基因的突变、缺失或破坏。当细胞包含多个相同基因或至少两个同源基因时，可以在细胞中缺失或破坏一个或多个基因。为了失活本发明的一个实施方案中提供的基因，可以实施使用lambda Red重组酶制备突变体的方法。
重组微生物除去或降低本文中提供的每种蛋白质或组合的蛋白质的活性。因而，与蛋白质活性没被失活的情况相比，重组微生物可以具有增强的L-氨基酸生产能力(producibility)，并且因此，可以为了生产L-氨基酸的目的适当使用重组微生物。
重组微生物可以是埃希氏菌属(Escherichia)、肠杆菌属(Enterbacter)、欧文氏菌属(Erwinia)、沙雷菌属(Serratia)、普罗威登斯菌属(Providencia)、棒杆菌属(Corynebacterium)、和短杆菌属(Brevibacterium)的微生物。例如，重组微生物可以是埃希氏菌属的微生物。埃希氏菌属的微生物可以是大肠杆菌，例如大肠杆菌KCCM11501P。大肠杆菌KCCM11501P是通过使用产苏氨酸的菌株(KCCM10910P)作为母本菌株，并且实施nfrA和nfrB基因两者的缺失制备的KCCM10910PΔnfrAB菌株。这里，发现了大肠杆菌KCCM11501P中的糖消耗能力高于母本(KCCM10910P)中的。大肠杆菌KCCM11501P命名为“大肠杆菌CA03-8253P”，然后在布达佩斯条约下在2013年12月13日保藏于韩国微生物保藏中心(在下文，称为“KCCM”)。
根据本发明的另一个方面，公开了生产L-氨基酸的方法，所述方法包括：培养生产L-氨基酸的重组微生物；并且从培养产物中收集L-氨基酸。
生产L-氨基酸的重组微生物与上文的描述相同定义。
L-氨基酸可以选自：L-亮氨酸、L-苯丙氨酸、L-赖氨酸、L-苏氨酸、L-缬氨酸、L-异亮氨酸、L-色氨酸和L-甲硫氨酸。例如，L-氨基酸可以是L-苏氨酸或L-色氨酸。可以使用适当的培养基和根据本领域中公知的培养条件实现重组微生物的培养。另外，本领域普通技术人员可以根据选定的微生物适当调节培养基和培养条件。培养方法可以包括分批培养、连续培养、补料-分批培养、或其组合。
培养基可以包含多种碳源、氮源和微量元素成分。
例如，碳源可以包含碳水化合物，如葡萄糖，蔗糖，乳糖，果糖，麦芽糖，淀粉和纤维素；脂肪，如大豆油，向日葵油，蓖麻油和椰子油；脂肪酸，如棕榈酸，硬脂酸，亚油酸；醇，例如甘油和乙醇；和有机酸，如乙酸，或其组合。重组微生物的培养可以通过使用葡萄糖作为碳源进行。例如，氮源可以包括有机氮源，如蛋白胨，酵母提取物，肉汁，麦芽提取物，玉米浆(CSL)和大豆粉；和无机氮源，如尿素，硫酸铵，氯化铵，磷酸铵，碳酸铵和硝酸铵；或其组合。培养基可以包括磷酸二氢钾或磷酸氢钾作为磷源。另外，培养基可包括对应于磷源的含钠盐，和金属盐，如硫酸镁或硫酸铁。另外，培养基可包括氨基酸，维生素和适当的前体。培养基或培养基的个别成分可以以分批或连续的方式加入到培养基中。
另外，化合物，如氢氧化铵，氢氧化钾，氨水，磷酸和硫酸可以以适当的方式在重组微生物的培养过程中加入到培养基中，以便调节培养基的pH值。此外，防沫剂，如脂肪酸聚乙二醇酯，可在重组微生物的培养过程中使用的，以便抑制气泡的产生。为了维持培养基的需氧条件，氧气或含氧气体的需氧条件(例如，空气)可以被注入到培养基中。这里，培养基的温度通常可以在约20℃至约45℃的范围内。培养重组微生物的时段可以持续到获得L-氨基酸的期望量，并且例如，培养重组微生物可以持续约10小时至约160小时。
如本文中使用，术语“培养产物”指含有重组微生物的肉汤培养物、除去微生物细胞的培养上清液、或培养产物的稀释溶液。培养基可以进一步包含用于提高L-氨基酸的生产能力的成分。例如，组成可以进一步包含碳源、氮源或微量元素成分。
可以通过本领域中已知的适当培养条件，如分批培养、连续培养、或补料-分批培养实施从培养产物收集L-氨基酸，从而收集或回收培养产物中产生的L-氨基酸。
本发明的有益效果
根据一个方面，可以使用具有至少一种蛋白质的除去或降低的活性的微生物生产L-氨基酸，所述蛋白质选自：NfrA蛋白、NfrB蛋白、Tsx蛋白和FhuA蛋白。
根据另一个方面，可以使用生产L-氨基酸的方法以高效的方式生产L-氨基酸。
实施例
在下文中，将参考以下实施例更为详细描述本发明。这些实施例仅为了例示的目的，而并不意图限制本发明的范围。
实施例1：通过使用KCCM10910P制备具有失活的噬菌体受体的产苏氨酸的菌株
为了制备具有失活的噬菌体受体的产苏氨酸的菌株，使用KCCM10910P菌株(韩国专利公开文本No:10-0966324)作为母本菌株。然后，制备用于失活用于每种噬菌体受体的基因的盒，然后用于允许遗传转化。
1-1.制备具有失活的nfrA基因的产苏氨酸的菌株
为了制备具有失活的nfrA基因的产苏氨酸的菌株，制备用于失活nfrA基因的盒。所述盒使用一步失活的方法，该方法是由Datsenko KA等人(Proc Natl Acad Sci USA.,(2000)97:6640-6645)开发的使用lambda Red重组酶构建突变体的技术。为了确认盒对基因的插入，使用pUCprmfmloxC的氯霉素抗性基因作为标志物(韩国专利NO:2009-007554)。
通过使用SEQ ID NO:2和3的引物组获得1.1kb DNA片段，该DNA片段包含nfrA基因的序列(SEQ ID NO:39)的一部分和pUCprmfmloxC的氯霉素抗性基因的碱基序列的一部分。这里，通过在下述条件下使用PCR预混合物试剂盒(即BIONEER公司的产品，在下文中，使用相同的产品)实施聚合酶链式反应(在下文中，称为“PCR”)：于95℃变性30秒，于56℃退火30秒，和于72℃延长1分钟的27个循环。在0.8％琼脂糖凝胶上电泳PCR产物，然后洗脱。此后，通过在上文描述的相同条件下使用洗脱的产物作为模板和SEQ ID NO:1和4的引物组再次实施PCR，产生约1.2kb的DNA片段。在0.8％琼脂糖凝胶上电泳DNA片段，然后洗脱，最终用于制备用于失活nrfA基因的盒。
为了制备具有失活的nfrA基因的产苏氨酸的菌株，将产苏氨酸的菌株(KCCM10910P)(其依照Datsenko KA等人(Proc Natl Acad Sci USA.,(2000)97:6640-6645)开发的方法转化有pKD46质粒)制备为感受态菌株。然后，将为了失活nfrA基因而制备的盒的DNA导入菌株以允许转化。
在具有氯霉素抗性的LB板上选择获得的菌株。也就是说，使用SEQ ID NO:5和6的引物组(其具有位于用于基因组失活的盒的nfrA同源序列的两个末端外部的DNA序列)，从而选择所得的PCR产物的大小从2.8kb降低到1.5kb的菌落。
对具有氯霉素抗性的原代重组菌株除去pKD46质粒，然后导入pJW168质粒以从微生物细胞除去氯霉素标志物基因(Gene,(2000)247,255-264)。然后，使用SEQ ID NO:5和6的引物组实施PCR以获得0.4kb DNA产物，其指示最终获得的菌株具有降低的DNA大小。因而，制备好具有失活的nfrA基因的产L-苏氨酸的菌株(KCCM10910PΔnfrA)。
1-2.制备具有失活的nfrB基因的产苏氨酸的菌株
为了制备具有失活的nfrB基因(SEQ ID NO:41)的产苏氨酸的菌株，以与实施例1-1制备用于失活nfrA基因的盒中相同的方式制备用于失活nfrB基因的盒。通过使用SEQ IDNO:8和9的引物组获得1.1kb DNA片段，然后通过使用SEQ ID NO:7和10的引物组制备1.2kbDNA片段。
通过实施例1-1中描述的相同方法实施制备具有失活的nfrB基因的产苏氨酸的菌株的方法，其中使用SEQ ID NO:11和12的引物组来确认所得的PCR产物的大小。因而，最终制备具有失活的nfrB基因的产L-苏氨酸的菌株(KCCM10910PΔnfrB)。
1-3.制备具有失活的nfrAB基因的产苏氨酸的菌株
为了制备具有失活的nfrAB基因(SEQ ID NO:43)的产苏氨酸的菌株，以与实施例1-1制备用于失活nfrA基因的盒中相同的方式制备用于失活nfrAB基因的盒。通过使用SEQID NO:2和9的引物组获得1.1kb DNA片段，然后通过使用SEQ ID NO:1和10的引物组制备1.2kb DNA片段。
通过实施例1-1中描述的相同方法实施制备具有失活的nfrAB基因的产苏氨酸的菌株的方法，其中使用SEQ ID NO:5和12的引物组来确认所得的PCR产物的大小。因而，最终制备具有失活的nfrAB基因的产L-苏氨酸的菌株(KCCM10910PΔnfrAB)。
1-4.制备具有失活的tsx基因的产苏氨酸的菌株
为了制备具有失活的tsx基因(SEQ ID NO:44)的产苏氨酸的菌株，以与实施例1-1制备用于失活nfrA基因的盒中相同的方式制备用于失活tsx基因的盒。通过使用SEQ IDNO:13和14的引物组获得1.1kb DNA片段，然后通过使用SEQ ID NO:15和16的引物组制备1.2kb DNA片段。
通过实施例1-1中描述的相同方法实施制备具有失活的tsx基因的产苏氨酸的菌株的方法，其中使用SEQ ID NO:17和18的引物组来确认所得的PCR产物的大小。因而，最终制备具有失活的tsx基因的产L-苏氨酸的菌株(KCCM10910PΔtsx)。
1-5.制备具有失活的fhuA基因的产苏氨酸的菌株
为了制备具有失活的fhuA基因(SEQ ID NO:46)的产苏氨酸的菌株，根据上文描述的一步失活的方法制备用于失活fhuA基因的盒。为了获得与fhuA基因的序列具有同源性的碱基序列的DNA片段，使用SEQ ID NO:19和20的引物组和SEQ ID NO:21和22的引物组，导致产生PCR产物。另外，为了获得含具有氯霉素抗性的碱基序列的DNA片段，使用SEQ ID NO:23和24的引物组，导致产生PCR产物。因而，在0.8％琼脂糖凝胶上电泳这三种所得的PCR产物，然后洗脱。通过使用这三种洗脱的PCR产物作为模板和SEQ ID NO:19和22的引物盒实施PCR以制备用于失活fhuA基因的盒。
为了制备具有失活的fhuA基因的产苏氨酸的菌株，通过实施例1-1中描述的相同方法实施制备用于失活fhuA基因的盒，其中使用SEQ ID NO:25和26的引物组来确认所得的PCR产物的大小。因而，最终制备具有失活的fhuA基因的产L-苏氨酸的菌株(KCCM10910PΔfhuA)。
1-6.制备具有失活的lamB基因的产苏氨酸的菌株
为了制备具有失活的lamB基因(SEQ ID NO:48)的产苏氨酸的菌株，通过实施例1-1中描述的相同方法实施制备用于失活lamB基因的盒。通过使用SEQ ID NO:27和28的引物组获得1.1kb DNA片段，然后通过使用SEQ ID NO:29和30的引物组制备1.2kb DNA片段。
通过实施例1-1中描述的相同方法实施制备具有失活的lamB基因的产苏氨酸的菌株的方法，其中使用SEQ ID NO:31和32的引物组来确认所得的PCR产物的大小。因而，最终制备具有失活的lamB基因的产L-苏氨酸的菌株(KCCM10910PΔlamB)。
1-7.制备具有失活的btuB基因的产苏氨酸的菌株
为了制备具有失活的btuB基因(SEQ ID NO:50)的产苏氨酸的菌株，通过实施例1-1中描述的相同方法实施制备用于失活btuB基因的盒。通过使用SEQ ID NO:33和34的引物组获得1.1kb DNA片段，然后通过使用SEQ ID NO:35和36的引物组制备1.2kb DNA片段。
通过实施例1-1中描述的相同方法实施制备具有失活的btuB基因的产苏氨酸的菌株的方法，其中使用SEQ ID NO:37和38的引物组来确认所得的PCR产物的大小。因而，最终制备具有失活的btuB基因的产L-苏氨酸的菌株(KCCM10910PΔbtuB)。
实施例2：重组微生物间的L-苏氨酸生产能力的比较
在锥形瓶中在含有下文表1中显示的组成的苏氨酸滴定培养基中培养根据实施例1制备的重组微生物。然后，确认重组微生物是否具有L-苏氨酸的生产能力。
【表1】
组成 浓度(每升)
葡萄糖 70g
KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> 2g
(NH<sub>4</sub>)<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 27.5g
MgSO<sub>4</sub>·7H<sub>2</sub>O 1g
FeSO<sub>4</sub>·7H<sub>2</sub>O 5mg
MnSO<sub>4</sub>·4H<sub>2</sub>O 5mg
DL-甲硫氨酸 0.15g
酵母提取物 2g
碳酸钙 30g
pH 6.8
在25ml含有上文表1中显示的组成的滴度培养基中接种1铂环的在33℃的培养箱中在LB固体培养基中培养过夜的实施例1的7类大肠杆菌菌株之每种和KCCM10910P菌株，然后在培养箱中在33℃并且以200rpm培养48小时。
【表2】
Figure BDA0001062331500000091
Figure BDA0001062331500000101
如上文表2中显示，确认分别具有失活的nfrA、nfrB、nfrAB、tsx和fhuA基因的菌株的糖消耗率高于母本菌株(KCCM10910P)的糖消耗率。还确认了菌株的生产速率在48小时时段期间不降低。同时，确认分别具有失活的lamB和btuB基因的菌株的糖消耗率类似于母本菌株的糖消耗率，或略低于母本菌株的糖消耗率。还确认了48小时后的培养物菌株中显示的L-苏氨酸浓度都是类似的。分别具有失活的nfrA、nfrB和nfrAB基因的菌株产生相同的培养结果。也就是说，两种基因之一被缺失的情况和两种都被缺失的情况产生相同的结果。
实施例3：制备具有有效突变组合的菌株和其L-苏氨酸生产能力的比较
3-1.制备具有同时失活的nfrAB和fhuA基因、同时失活的nfrAB和tsx基因、和同时 失活的nfrAB、tsx和fhuA基因的菌株
为了确认具有增加的糖消耗能力的nfrAB、fhuA和tsx基因的组合失活的情况是否在产L-苏氨酸的菌株中具有进一步的糖消耗能力，制备KCCM10910PΔnfrABΔfhuA菌株、KCCM10910PΔnfrABΔtsx菌株和KCCM10910PΔnfrABΔtsxΔfhuA菌株。为了制备这些菌株，以与实施例1中的描述相同的方式根据实施例1-3的KCCM10910PΔnfrAB菌株制备分别具有失活的fhuA和tsx基因的菌株(产生KCCM10910PΔnfrABΔfhuA和KCCM10910PΔnfrABΔtsx菌株)。另外，根据KCCM10910PΔnfrABΔtsx菌株制备具有失活的fhuA基因的菌株，从而最终制备KCCM10910PΔnfrABΔtsxΔfhuA菌株。
如表2中显示，确定具有失活的nfrA、nfrB和nfrAB基因的菌株彼此具有相同的效果。在这点上，在制备具有有效突变组合的菌株中，通过使用具有失活的nfrAB基因的菌株制备具有失活的tsx和fhuA基因的菌株。然而，确定具有失活的tsx和fhuA基因的菌株的效果与具有仅失活的nfrA基因、仅失活的nfrB基因、或同时失活的nfrA和nfrB基因的菌株的效果相同。
3-2.具有有效的突变组合的菌株的L-苏氨酸生产能力的比较
为了比较上文制备的具有有效突变组合的菌株的L-苏氨酸生产能力，使用含有上文表1中显示的组成的培养基以与上文描述的相同方式培养菌株。
下文表3中显示了结果。
【表3】
Figure BDA0001062331500000111
作为具有增加的糖消耗能力的分别根据nfrAB、fhuA、和tsx基因的组合失活制备的KCCM10910PΔnfrABΔfhuA菌株、KCCM10910PΔnfrABΔtsx菌株和KCCM10910PΔnfrABΔtsxΔfhuA菌株上的效力测试的结果，确认除了仅通过nfrAB基因的突变外进一步失活fhuA基因或tsx基因的菌株增加糖消耗能力。因而，显示增加的糖消耗能力的经转化的大肠杆菌KCCM10910PΔnfrAB菌株命名为“CA03-8253P”，并且在2013年12月13日保藏于韩国微生物保藏中心(KCCM)(保藏号:KCCM 11501P)。
实施例4：通过使用KCCM-10132制备具有失活的噬菌体受体的菌株和其苏氨酸生产能力的比较
4-1.通过使用KCCM-10132制备具有失活的噬菌体受体的菌株
根据实施例1的7类失活盒，以与实施例1和3中描述的相同方式，通过使用KCCM-10132菌株制备各自具有失活的噬菌体受体的10类菌株(参见下文表4)。KCCM-10132菌株在韩国专利申请No:10-0270510中以从大肠杆菌衍生的具有苏氨酸生产能力的菌株公开。
4-2.通过使用KCCM-10132制备具有失活的噬菌体受体的菌株及其苏氨酸生产能 力的比较。
通过与实施例2中描述的相同方法在含有表1中显示的组成的培养基中培养通过使用实施例4-1的KCCM-10132菌株制备的具有失活的噬菌体受体的10类菌株和母本菌株(KCCM-10132)。然后，通过比较其苏氨酸的生长能力评估培养的菌株。
【表4】
Figure BDA0001062331500000121
如上文表4中显示，确认了分别具有失活的nfrA、nfrB、nfrAB、tsx和fhuA基因的菌株的糖消耗率高于母本菌株(KCCM-10132)的糖消耗率。还确认了菌株的生产速率在48小时时段中没有降低。同时，确认了分别具有失活的lamB和btuB基因的菌株的糖消耗率类似于母本菌株的糖消耗率，或者略低于母本菌株的糖消耗率。还确认了48小时后培养物的菌株中显示的L-苏氨酸浓度都是相似的。还确认了分别具有同时失活的nfrAB、fhuA、nfrAB和tsx基因和同时失活的nfrAB、tsx和fhuA基因的菌株与仅具有失活的nfrAB基因的菌株的糖消耗率相比具有改善的糖消耗率。
实施例5：通过使用KCCM11166P制备具有失活的噬菌体受体的菌株及其苏氨酸生产能力的比较
5-1.通过使用KCCM11166P制备具有失活的噬菌体受体的菌株
根据实施例1的7类失活盒，通过以与实施例1中描述的相同方式(韩国专利申请No:10-1261147)使用KCCM11166P(韩国专利申请NO:10-1261147)制备分别具有失活的噬菌体受体的7类产色氨酸的菌株。
5-2.通过使用KCCM11166P制备具有失活的噬菌体受体的菌株及其苏氨酸生产能 力的比较
为了评估通过使用实施例5-1的KCCM11166P菌株制备的分别具有失活的噬菌体受体的7类产色氨酸的菌株的生产能力，使用含有下文表5中显示的组成的培养基。也就是说，通过铂环接种微生物细胞，然后在LB固体培养基中培养过夜。此后，将1铂环的每种微生物在25ml含有下文表5中显示的组成的滴度培养基中接种，然后在培养箱中在37℃和以200rpm培养48小时。从其获得的结果显示于下文表6中。
【表5】
组成 浓度(每升)
葡萄糖 60g
K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> 1g
(NH<sub>4</sub>)<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 10g
MgSO<sub>4</sub>·7H<sub>2</sub>O 1g
NaCl 1g
柠檬酸钠 5g
酵母提取物 2g
碳酸钙 40g
苯丙氨酸 0.15g
酪氨酸(Thyrosine) 0.1g
pH 6.8
【表6】
Figure BDA0001062331500000131
Figure BDA0001062331500000141
如上文表6中显示，在nfrA、nfrB、nfrAB、tsx和fhuA基因中的每种的缺失的情况中，确认了分别具有失活的nfrA、nfrB、nfrAB、tsx和fhuA基因的菌株中生成的色氨酸的量是类似的，而分别具有失活的nfrA、nfrB、nfrAB、tsx和fhuA基因的菌株的糖消耗率略高于其它菌株。同时，在lamB和btuB基因中的每种的缺失的情况中，确认了由分别具有失活的lamB和btuB基因的菌株生成的色氨酸的量或分别具有lamB和btuB基因失活的菌株的糖消耗率没有变化。
实施例6：制备具有有效突变组合的菌株及其L-色氨酸生产能力的比较
6-1.制备具有同时失活的nfrAB和fhuA基因、同时失活的nfrAB和tsx基因、和同时 失活的nfrAB、tsx和fhuA基因的产L-色氨酸的菌株
为了确认具有增加的糖消耗能力的nfrAB、fhuA和tsx基因的组合失活的情况在产色氨酸的菌株中是否具有进一步的糖消耗能力，制备KCCM11166PΔnfrABΔfhuA菌株、KCCM11166PΔnfrABΔtsx菌株、和KCCM11166PΔnfrABΔtsxΔfhuA菌株。
6-2.具有有效突变组合的菌株的L-色氨酸生产能力的比较
为了比较根据实施例6-1制备的三类菌株的L-色氨酸生产能力，使用含有上文表5中显示的组成的培养基以与实施例5中描述相同的方式培养菌株。下文表7中显示了结果。
【表7】
Figure BDA0001062331500000142
Figure BDA0001062331500000151
作为具有有效突变组合的产色氨酸的菌株上的效力测试的结果，确认了在仅通过nfrAB基因的突变外进一步失活fhuA基因或/和tsx基因的菌株增加糖消耗能力。
应当理解，本文中描述的示例性的实施方案应当仅在描述的意义上而不出于限制目的考虑。每个实施方案内的特征或方面的描述通常应当视为可用于其它实施方案中的其它类似的特征或方面。虽然已经参考附图描述了本发明的一个或多个实施方案，但是本领域普通技术人员应当理解，可以在不偏离以所附权利要求书限定的本发明的精神和范围的前提下对其进行形式和细节上的各种变化。
[保藏号]
保藏机构：韩国微生物保藏中心(国际)
保藏号：KCCM11501P
保藏日：2013年12月13日
Figure BDA0001062331500000161
Figure IDA0001062331560000011
Figure IDA0001062331560000021
Figure IDA0001062331560000031
Figure IDA0001062331560000041
Figure IDA0001062331560000051
Figure IDA0001062331560000061
Figure IDA0001062331560000071
Figure IDA0001062331560000081
Figure IDA0001062331560000091
Figure IDA0001062331560000101
Figure IDA0001062331560000111
Figure IDA0001062331560000121
Figure IDA0001062331560000131
Figure IDA0001062331560000141
Figure IDA0001062331560000151
Figure IDA0001062331560000161
Figure IDA0001062331560000171
Figure IDA0001062331560000181
Figure IDA0001062331560000191
Figure IDA0001062331560000201
Figure IDA0001062331560000211
Figure IDA0001062331560000221
Figure IDA0001062331560000231
Figure IDA0001062331560000241
Figure IDA0001062331560000251
Figure IDA0001062331560000261
Figure IDA0001062331560000271
Figure IDA0001062331560000281

Claims (8)

1.生产L-氨基酸的埃希氏菌属的重组微生物，其中NfrA和NfrB中的至少一种是失活的，其中Tsx是进一步失活的。
2.权利要求1的重组微生物，其中所述NfrA包含SEQ ID NO:40的氨基酸序列，并且所述NfrB包含SEQ ID NO:42的氨基酸序列。
3.权利要求1的重组微生物，其中FhuA是进一步失活的。
4.权利要求3的重组微生物，其中所述Tsx包含SEQ ID NO:45的氨基酸序列，并且所述FhuA包含SEQ ID NO:47的氨基酸序列。
5.权利要求1的重组微生物，其中所述L-氨基酸是L-苏氨酸或L-色氨酸。
6.权利要求1的重组微生物，其中所述重组微生物是大肠杆菌。
7.生产L-氨基酸的方法，所述方法包括：
培养权利要求1至6中任一项的重组微生物；并
从培养物中收集L-氨基酸。
8.权利要求7的方法，其中所述L-氨基酸是L-苏氨酸或L-色氨酸。
CN201580006219.5A 2014-03-21 2015-03-17 生产l-氨基酸的微生物及使用所述微生物生产l-氨基酸的方法 Active CN105980544B (zh)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR10-2014-0033697 2014-03-21
KR1020140033697A KR101608734B1 (ko) 2014-03-21 2014-03-21 L-아미노산을 생산하는 미생물 및 이를 이용하여 l-아미노산을 생산하는 방법
PCT/KR2015/002548 WO2015142020A1 (en) 2014-03-21 2015-03-17 Microorganisms producing l-amino acids and process for producing l-amino acids using the same

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105980544A CN105980544A (zh) 2016-09-28
CN105980544B true CN105980544B (zh) 2020-06-23

Family

ID=54144918

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201580006219.5A Active CN105980544B (zh) 2014-03-21 2015-03-17 生产l-氨基酸的微生物及使用所述微生物生产l-氨基酸的方法

Country Status (15)

Country Link
US (1) US10202609B2 (zh)
EP (1) EP3119875B1 (zh)
JP (2) JP6490714B2 (zh)
KR (1) KR101608734B1 (zh)
CN (1) CN105980544B (zh)
AR (1) AR099810A1 (zh)
BR (1) BR112016017281B1 (zh)
DK (1) DK3119875T3 (zh)
ES (1) ES2720032T3 (zh)
MY (1) MY181143A (zh)
PL (1) PL3119875T3 (zh)
TR (1) TR201903145T4 (zh)
TW (1) TWI547558B (zh)
UA (1) UA114997C2 (zh)
WO (1) WO2015142020A1 (zh)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101991207B1 (ko) * 2018-11-29 2019-06-19 씨제이제일제당 (주) cAMP 수용 단백질 변이체 및 이를 이용한 L-아미노산 제조방법
CA3157881A1 (en) * 2019-10-14 2021-04-22 Inbiose N.V. Production of bioproduct in a host cell
KR102283628B1 (ko) * 2019-10-31 2021-08-02 대상 주식회사 바이러스 감염 관련 유전자 불활성에 의해 방향족 아미노산 생산능력이 향상된 균주
CN111363018B (zh) * 2020-03-26 2021-10-01 廊坊梅花生物技术开发有限公司 重组菌株及其在l-色氨酸制备中的应用

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100498971B1 (ko) 2003-04-04 2005-07-04 씨제이 주식회사 염색체 내 ｔｄｃＢＣ 및 ｐｃｋＡ 유전자가 불활성화된 미생물 및 이를 이용하여 Ｌ-쓰레오닌을 제조하는 방법
EP1829965A4 (en) 2004-11-26 2008-09-24 Kyowa Hakko Kogyo Kk MOST SUITABLE MICROORGANISM
ATE521633T1 (de) 2004-12-10 2011-09-15 Zymogenetics Inc Fgf18 produktion in prokaryotischen zellen
WO2007119891A1 (en) 2006-04-18 2007-10-25 Ajinomoto Co., Inc. A METHOD FOR PRODUCING AN L-AMINO ACID USING A BACTERIUM OF THE ENTEROBACTERIACEAE FAMILY WITH ATTENUATED EXPRESSION OF THE fhuA GENE
JP2010183841A (ja) 2007-05-29 2010-08-26 Ajinomoto Co Inc Ｌ−アミノ酸の製造法
WO2009116566A1 (ja) * 2008-03-18 2009-09-24 協和発酵キリン株式会社 工業的に有用な微生物
JP2012223092A (ja) 2009-08-28 2012-11-15 Ajinomoto Co Inc Ｌ−アミノ酸の製造法
KR101261147B1 (ko) 2011-01-18 2013-05-06 씨제이제일제당 (주) Ｌ-아미노산의 생산능이 향상된 미생물 및 이를 이용하여 ｌ-아미노산을 생산하는 방법

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
The Tail Sheath of Bacteriophage N4 Interacts with the Escherichia coli Receptor;Jennifer McPartland.et al;《J Bacteriol.》;20081114;第191卷(第2期);摘要，第525页左栏 *
抗噬菌体工程菌的筛选;李彦英等;《物技术通讯》;20031130;第14卷(第6期);摘要，第515页左栏 *

Also Published As

Publication number Publication date
TWI547558B (zh) 2016-09-01
KR101608734B1 (ko) 2016-04-04
MY181143A (en) 2020-12-19
JP2017504359A (ja) 2017-02-09
BR112016017281A2 (pt) 2017-10-17
CN105980544A (zh) 2016-09-28
JP6490714B2 (ja) 2019-03-27
TW201538724A (zh) 2015-10-16
US10202609B2 (en) 2019-02-12
JP2019047790A (ja) 2019-03-28
WO2015142020A1 (en) 2015-09-24
TR201903145T4 (tr) 2019-06-21
KR20150109989A (ko) 2015-10-02
ES2720032T3 (es) 2019-07-17
EP3119875A4 (en) 2017-11-15
UA114997C2 (uk) 2017-08-28
EP3119875A1 (en) 2017-01-25
US20170044553A1 (en) 2017-02-16
DK3119875T3 (en) 2019-04-15
AR099810A1 (es) 2016-08-17
EP3119875B1 (en) 2019-02-27
PL3119875T3 (pl) 2019-09-30
BR112016017281B1 (pt) 2022-02-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6297134B2 (ja) プトレシン生産性を有する微生物及びそれを用いたプトレシン生産方法
US11365400B2 (en) Microorganism for producing ornithine and process for producing ornithine using them
JP2023504236A (ja) Ｌ－アルギニンを生産する遺伝子組換え菌、その構築方法及び使用
JP6476212B2 (ja) Ｌ−アルギニンを生産するコリネバクテリウム属の微生物及びそれを用いたｌ−アルギニンの製造方法
CN115135767B (zh) 具有提高的l-谷氨酸生产能力的谷氨酸棒状杆菌突变体菌株，以及用于使用其生产l-谷氨酸的方法
KR20130082124A (ko) 자일로즈 이용능이 부여된 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 ｌ-라이신의 생산방법
CN105980544B (zh) 生产l-氨基酸的微生物及使用所述微生物生产l-氨基酸的方法
JP2019013256A (ja) Ｌ−トリプトファン生産能を有するエシェリキア属微生物及びこれを用いたｌ−トリプトファンの製造方法
JP2019115341A (ja) Ｌ−リジンを生産するコリネバクテリウム属微生物、及びそれを利用したｌ−リジンの生産方法
JP2018161154A (ja) Ｌ−スレオニン産生能を有する組換えエシェリキア属微生物およびこれを用いたｌ−スレオニンの産生方法
JP2010515468A (ja) Ｌ−アルギニン生産コリネバクテリウムグルタミカム変異株およびその製造方法
RU2672323C2 (ru) Микроорганизм для продуцирования диамина и способ получения диамина с его использованием
CN103476922A (zh) 用来源于埃希氏菌(Escherichia sp.)的果糖激酶基因转化的棒杆菌(Corynebacterium sp.)及使用该棒杆菌制备L-氨基酸的方法
CN106574234A (zh) 产生二胺的微生物和使用该微生物产生二胺的方法
CN118541476A (zh) 新型乙酰羟酸合酶亚基变体和使用其生产l-缬氨酸的方法
CN118613586A (zh) 产l-精氨酸棒状杆菌属微生物和使用其生产l-精氨酸的方法
KR101687474B1 (ko) L-아르기닌 생산능이 향상된 코리네박테리움속 미생물 및 이를 이용한 l-아르기닌의 생산 방법
CN115044490B (zh) L-赖氨酸生产能力得到提高的谷氨酸棒状杆菌突变株及利用其的l-赖氨酸的生产方法
KR20220126610A (ko) L-라이신 생산능이 향상된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이주 및 이를 이용한 l-라이신의 생산 방법
CN115261295A (zh) L-赖氨酸生产能力得到提高的谷氨酸棒状杆菌突变株及利用其的l-赖氨酸的生产方法
CN118515736A (zh) 支链氨基酸转运蛋白突变体及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant