CN103045530B - 一种悬浮培养细胞的方法 - Google Patents
一种悬浮培养细胞的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103045530B CN103045530B CN201210542003.9A CN201210542003A CN103045530B CN 103045530 B CN103045530 B CN 103045530B CN 201210542003 A CN201210542003 A CN 201210542003A CN 103045530 B CN103045530 B CN 103045530B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cell
- suspension
- culture
- serum
- add
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 239000000725 suspension Substances 0.000 title claims abstract description 22
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 21
- 238000012258 culturing Methods 0.000 title abstract description 7
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims abstract description 13
- 230000007910 cell fusion Effects 0.000 claims abstract description 7
- 230000004927 fusion Effects 0.000 claims abstract description 4
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 75
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 claims description 13
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 claims description 13
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims description 13
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 11
- 239000012930 cell culture fluid Substances 0.000 claims description 10
- 239000006143 cell culture medium Substances 0.000 claims description 10
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 claims description 9
- 210000000952 spleen Anatomy 0.000 claims description 9
- 230000029087 digestion Effects 0.000 claims description 8
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims description 7
- 239000011435 rock Substances 0.000 claims description 5
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims description 5
- 230000000527 lymphocytic effect Effects 0.000 claims description 4
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 claims description 3
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims description 3
- 108010019160 Pancreatin Proteins 0.000 claims description 2
- 238000010494 dissociation reaction Methods 0.000 claims description 2
- 230000005593 dissociations Effects 0.000 claims description 2
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 claims description 2
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 claims description 2
- 229940055695 pancreatin Drugs 0.000 claims description 2
- 230000003393 splenic effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000004114 suspension culture Methods 0.000 abstract description 20
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 abstract description 7
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 abstract description 6
- 239000007788 liquid Substances 0.000 abstract description 4
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 abstract description 3
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 abstract description 2
- 238000012216 screening Methods 0.000 abstract 1
- 238000004115 adherent culture Methods 0.000 description 5
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 2
- 210000004988 splenocyte Anatomy 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 240000001131 Nostoc commune Species 0.000 description 1
- 235000013817 Nostoc commune Nutrition 0.000 description 1
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 1
- 230000006907 apoptotic process Effects 0.000 description 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 1
- 239000013553 cell monolayer Substances 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000007812 deficiency Effects 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 229910052736 halogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000002367 halogens Chemical class 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000000050 nutritive effect Effects 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 239000012679 serum free medium Substances 0.000 description 1
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 231100000033 toxigenic Toxicity 0.000 description 1
- 230000001551 toxigenic effect Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明提供一种悬浮培养细胞的方法,其包括如下步骤:(1)利用细胞融合技术将贴壁无限传代细胞系与有限传代悬浮细胞融合,建立既能无限传代又能悬浮培养的融合细胞系;(2)筛选悬浮生长的融合细胞;(3)将融合细胞系传代培养10个以上代次,确定该细胞系的稳定性。本发明的有益效果是:本发明利用细胞融合技术将贴壁培养的细胞驯化为可悬浮培养的细胞,充分利用了悬浮培养的优点,为利用悬浮细胞获得目的产物奠定基础,本方法所驯化悬浮细胞可利用含有血清的普通细胞培养液进行培养,与无血清培养液相比,大大降低了培养成本。本方法采用全悬浮培养,简化生产过程,缩短生产时间,提高生产效率,并易于进行扩大培养。
Description
技术领域
本发明涉及医药生物领域,具体涉及一种悬浮培养细胞的方法。
体外细胞的培养方法包括贴壁培养和悬浮培养,贴壁培养(是指细胞贴附在一定的固相表面进行的培养;悬浮培养通过振荡或转动装置使细胞始终处于分散悬浮于培养液内的培养方法;其中悬浮培养又可分为微载体悬浮培养及全悬浮培养。与贴壁培养相比,悬浮培养具有如下优点:(1)可连续扩大生产量;(2)有利于细胞培养基中的营养物质和气体充分接触,而且易于控制培养条件(温度、pH、氧分压和CO2等);(3)培养条件稳定,趋于均一,便于进行定量研究;(4)易于在连续密闭的系统中进行,减少了操作步骤和污染的机会;(5)可以长期连续培养,既可节省人力,又使细胞能持续维持在对数生长期;(6)悬浮培养的细胞仍保持原先对病毒的敏感性和生物学特性。基于上述优点,如何克服贴壁细胞培养时的缺点,充分利用悬浮培养的优点成为细胞培养中的重大难题。
发明内容
针对以上不足,本发明提供了一种贴壁细胞进行悬浮培养的方法,本方法将贴壁细胞利用细胞融合技术进行悬浮培养,充分利用了悬浮培养的优点,使得贴壁细胞可以进行简化、高效、大量的培养。
本发明是通过以下技术方案实现的:
一种悬浮培养细胞的方法,其包括如下步骤:
(1)利用细胞融合技术将贴壁无限传代细胞系与有限传代悬浮细胞融合,建立既能无限传代又能悬浮培养的融合细胞系;
用方瓶贴壁培养从液氮中复苏的无限传代细胞系,培养条件为:pH7.0~7.2,温度36~37℃,培养基为细胞培养液;培养时间48~72h,细胞单层长至90%,细胞密度为3~6×105cells/mL;
将方瓶中单层长至90%的细胞用EDTA-胰酶消化分散,加入10mL 血清浓度为15% 细胞培养液,终止消化获得细胞悬液,并进行细胞计数;
取与上述传代细胞数目相等的动物源性淋巴细胞,混合后进行800rpm离心10min,获得混合细胞泥;
将上述混合细胞泥以10mL无血清细胞培养液重悬,在800rpm下离心10min,重复洗涤1次,除去残余血清;
弹动离心管底,将离心获得的细胞泥散开,向管中加入浓度为50%的PEG 1mL,在1min内匀速加完,并边加边轻轻晃动;加入9mL无血清细胞培养液,混合均匀,1000rpm离心5min,弃上清;缓慢加入10mL无血清细胞培养液,重悬细胞,1000rpm离心5min,弃上清;加入5mL 血清含量为15% 的细胞培养液,重悬细胞,转入5mL一次性细胞培养瓶中,置37℃温箱培养;同时设正常淋巴细胞对照;
(2)筛选悬浮生长的融合细胞;
培养24h,用吸管轻轻吹打培养瓶底部3~5次,将培养液连同悬浮生长细胞转移至新的细胞培养容器,37℃培养;培养3~5天,培养过程中,每隔6~8h晃动一下培养容器,以便于细胞的生长,连续培养7天以上,重复上述步骤数次,除去贴壁生长细胞,获得完全悬浮生长的细胞。
将悬浮细胞在37℃连续培养7天以上,待残存的淋巴细胞或自身融合的淋巴细胞自然凋亡后,以获得无限传代细胞与淋巴细胞的融合细胞。
(3)细胞稳定性的确定;
上述步骤(2)细胞培养过程中培养3~4天,补加血清含量为15% 的细胞培养液1次;培养7天以上,获得完全悬浮生长的无限传代细胞与淋巴细胞的融合细胞,1000rpm离心5min,去上清,以新鲜培养液重悬,置于新的细胞培养容器中继续培养,传代1次;重复上述步骤,将细胞传10个代次以上,显微镜下观察。
上述步骤(3)中细胞培养温度:36~37℃、pH:7.0~7.4。
本发明的有益效果是:本发明利用细胞融合技术将贴壁培养的细胞驯化为可悬浮培养的细胞,充分利用了悬浮培养的优点,为利用悬浮细胞获得目的产物奠定基础,本方法所驯化悬浮细胞可利用含有血清的普通细胞培养液进行培养,与无血清培养液相比,大大降低了培养成本。本方法采用全悬浮培养,与微载体悬浮培养相比有以下优势:无需昂贵的微载体,从而有效降低生产成本;可省去微载体培养中附加步骤如消化收获细胞等,从而简化生产过程,缩短生产时间,提高生产效率,并易于进行扩大培养。
附图说明
图1为本发明显微镜下观察培养细胞的情况。
图中:A:培养10天,融合细胞生长情况;B:培养10天,正常鸡胚脾细胞(淋巴细胞)生长情况;C:培养17天,融合细胞生长情况;D:培养17d,正常鸡胚脾细胞生长情况。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例对本发明做进一步说明,以便本领域技术人员可以更好的了解本发明,但并不因此限制本发明。
实施例1
(1)利用细胞融合技术,将DF1与鸡胚脾脏淋巴细胞进行融合,获得DF1与鸡胚淋巴细胞的融合悬浮细胞系。
将18日龄SPF鸡胚无菌取脾脏,剪刀剪碎,加入1mL胰酶,37℃水浴消化10min,反复吹打数次,加入10mL 15% MEM培养液,终止消化,4层纱布过滤。将滤液转移至15mL离心管,并进行细胞计数,细胞密度约为106/mL;
将方瓶中单层长至90%的DF1细胞消化,加入10mL 15% MEM终止消化,计数细胞数目;
取等量的DF1与鸡脾淋巴细胞混合(共约2×106个细胞),800rpm离心10min,去上清,以无血清细胞培养液重悬,800rpm离心10min,再重复洗涤1次,除去残余血清;
轻轻弹动离心管,将上步获得的细胞泥松动,慢慢向管中加入浓度为50%的PEG 1mL,且在1min匀速加完,并边加边轻轻晃动;
慢慢加入9mL无血清细胞培养液,混匀,1000rpm离心5min,弃上清;缓慢加入10mL无血清细胞培养液,重悬细胞,1000rpm离心5min,弃上清;加入5mL血清含量为15% 的细胞培养液,重悬细胞,转入5mL一次性细胞培养瓶中,置37℃温箱培养。同时,另取一部分脾脏悬液(约106个细胞),置于15mL离心管,1000rpm离心5min,弃上清,加5mL血清含量为15% 的细胞培养液,重悬细胞,转入5mL一次性细胞培养瓶中,置37℃温箱培养,作为对照。
(2)筛选悬浮生长的融合细胞并确定细胞稳定性;
培养3d,补加2mL血清含量为15% 的细胞培养液培养液;培养1周,轻轻晃动培养液,并收集培养液,1000rpm离心5min,去上清,加入新鲜培养液进行培养,次为传代1次;重复上述步骤,将细胞传10个代次以上,显微镜下观察,见图1;
通过上述步骤和观察,可以看到在培养17天后正常鸡胚脾脏淋巴细胞基本全部死亡,而DF1与鸡胚脾脏淋巴细胞的融合细胞生长正常,表明成功实现了DF1与鸡胚脾脏淋巴细胞的融合,并获得了可稳定、悬浮培养的融合细胞系。在普通培养液中,淋巴细胞基本不发生分裂,且生命周期较短,而融合细胞则能分裂生长,并表现出可无限传代的特性。
Claims (1)
1.一种悬浮培养细胞的方法,其包括如下步骤:
(1)利用细胞融合技术将DF1与鸡胚脾脏淋巴细胞进行融合,获得DF1与鸡胚淋巴细胞的融合悬浮细胞系;
将18日龄SPF鸡胚无菌取脾脏,剪刀剪碎,加入1mL胰酶,37℃水浴消化10min,反复吹打数次,加入10mL 15% MEM培养液,终止消化,4层纱布过滤;
将滤液转移至15mL离心管,并进行细胞计数,细胞密度为106/mL;
将方瓶中单层长至90%的DF1细胞消化,加入10mL 15% MEM终止消化,计数细胞数目;
取等量的DF1与鸡脾淋巴细胞混合,800rpm离心10min,去上清,以无血清细胞培养液重悬,800rpm离心10min,再重复洗涤1次,除去残余血清;
轻轻弹动离心管,将上步获得的细胞泥松动,慢慢向管中加入浓度为50%的PEG 1mL,且在1min匀速加完,并边加边轻轻晃动;
慢慢加入9mL无血清细胞培养液,混匀,1000rpm离心5min,弃上清;缓慢加入10mL无血清细胞培养液,重悬细胞,1000rpm离心5min,弃上清;加入5mL血清含量为15% 的细胞培养液,重悬细胞,转入5mL一次性细胞培养瓶中,置37℃温箱培养;
同时,另取一部分脾脏悬液,置于15mL离心管,1000rpm离心5min,弃上清,加5mL血清含量为15% 的细胞培养液,重悬细胞,转入5mL一次性细胞培养瓶中,置37℃温箱培养,作为对照;
(2)筛选悬浮生长的融合细胞并确定细胞稳定性;
培养3d,补加2mL血清含量为15% 的细胞培养液培养液;培养1周,轻轻晃动培养液,并收集培养液,1000rpm离心5min,去上清,加入新鲜培养液进行培养,此为传代1次;重复上述步骤,将细胞传10个代次以上,显微镜下观察。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210542003.9A CN103045530B (zh) | 2012-12-14 | 2012-12-14 | 一种悬浮培养细胞的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210542003.9A CN103045530B (zh) | 2012-12-14 | 2012-12-14 | 一种悬浮培养细胞的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103045530A CN103045530A (zh) | 2013-04-17 |
CN103045530B true CN103045530B (zh) | 2015-06-17 |
Family
ID=48058395
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201210542003.9A Active CN103045530B (zh) | 2012-12-14 | 2012-12-14 | 一种悬浮培养细胞的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103045530B (zh) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108486061B (zh) * | 2018-03-16 | 2021-08-20 | 李军涛 | 一种贴壁细胞的悬浮培养化方法及其应用 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1556203A (zh) * | 2003-12-31 | 2004-12-22 | 中国人民解放军军事医学科学院生物工 | 动物细胞多孔微载体固定化高效培养方法及其培养基 |
CN102154197A (zh) * | 2011-03-02 | 2011-08-17 | 马忠仁 | 一种在低血清和无血清培养基中高密度悬浮培养的bhk-21细胞及其制备方法 |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE60142506D1 (de) * | 2000-03-03 | 2010-08-19 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | In serumfreier kultur verwendbare zelle, kultursuspension und verfahren zur virusproduktion als impfstoff unter verwendung der zelle |
-
2012
- 2012-12-14 CN CN201210542003.9A patent/CN103045530B/zh active Active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1556203A (zh) * | 2003-12-31 | 2004-12-22 | 中国人民解放军军事医学科学院生物工 | 动物细胞多孔微载体固定化高效培养方法及其培养基 |
CN102154197A (zh) * | 2011-03-02 | 2011-08-17 | 马忠仁 | 一种在低血清和无血清培养基中高密度悬浮培养的bhk-21细胞及其制备方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
BHK-21细胞的悬浮驯化及其在悬培条件下对口蹄疫A型病毒的培养;薛英等;《广东畜牧兽医科技》;20080218;第33卷(第01期);35-37 * |
犬肾细胞MDCK无血清贴壁及单细胞悬浮培养;黄锭等;《生物工程学报》;20110425;第27卷(第04期);645-658 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103045530A (zh) | 2013-04-17 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP7219303B2 (ja) | 培養方法 | |
Quinn et al. | Nannochloropsis production metrics in a scalable outdoor photobioreactor for commercial applications | |
Tao et al. | Enhanced biomass/biofuel production and nutrient removal in an algal biofilm airlift photobioreactor | |
CN101979519A (zh) | 一种制备伪狂犬病疫苗的方法 | |
CN103205396A (zh) | 一种hek-293t细胞的悬浮驯化和无血清驯化方法 | |
CN109722388A (zh) | 微藻共栖细菌分离培养基、分离方法以及影响微藻生长的关键细菌高通量筛选方法 | |
CN102240400A (zh) | 一种应用生物反应器及片状载体生产狂犬疫苗的方法 | |
CN114317405A (zh) | 无血清全悬浮培养型f81细胞系及其构建方法与应用 | |
CN102703319B (zh) | 贴壁型细胞培养装置及贴壁型细胞培养系统 | |
CN103045530B (zh) | 一种悬浮培养细胞的方法 | |
CN102703374B (zh) | 贴壁型细胞培养方法 | |
CN102038946A (zh) | 应用生物反应器工业化生产伪狂犬病疫苗的方法 | |
CN110218655A (zh) | 一种利用磁力转子收获城市污水附着式培养含油微藻的系统 | |
CN104894054A (zh) | 一种猴胚胎肾上皮细胞Marc-145悬浮适应株及其在培养蓝耳病病毒、生产蓝耳病毒疫苗中的应用 | |
CN102002481A (zh) | 猪呼吸与繁殖障碍综合征病毒的生产方法 | |
CN101570740B (zh) | 一种新型哺乳动物工程细胞亚群人胚肾293细胞HEK293ar及应用 | |
CN206666503U (zh) | 一种高密度富油微藻的自动化培养箱体 | |
CN204434602U (zh) | 一种浮游藻类细胞微孔阵列培养装置 | |
CN103060276B (zh) | 人二倍体细胞狂犬病疫苗病毒液制备方法 | |
CN102327609B (zh) | 一种乙型脑炎疫苗的生产方法 | |
CN109609436A (zh) | 一种无co2环境的mdck细胞全悬浮无血清细胞系的制备方法 | |
Horiguchi et al. | An orbital shaking culture of mammalian cells in O-shaped vessels to produce uniform aggregates | |
CN102363764A (zh) | 一种培养胰腺干/祖细胞的方法 | |
CN103087993B (zh) | 一种猪传染性胃肠炎病毒的大规模生产方法 | |
KR101658529B1 (ko) | 미세조류 배양 및 수확장치와 이를 이용한 이산화탄소 고정장치, 공기 또는 수질 정화장치 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant |